【発明の詳細な説明】

【０００１】

【発明の属する技術分野】本発明は、脱炭酸共役エネルギー生成系に関わる蛋白質、それをコードする遺伝子、
及びそれらの使用に関する。 具体的には、本発明は、アスパラギン酸脱炭酸酵素及びアスパラギン酸輸送体、該蛋白質をコードする遺伝子、該遺伝子を含むベクター、
該ベクターを含む形質転換体、ならびに該遺伝子または該蛋白質を用いて細胞においてエネルギーを生成する方法に関する。

【０００２】

【従来の技術】従来、簡便に、細胞へ組み込み可能なエネルギー生成系については知られておらず、細胞が本来有しているエネルギー生成系によって、一次及び二次代謝産物の生産を賄ってきたのが現状である。 物質生産を行なっている細胞は、細胞に対する負荷が大きく、一般にエネルギーが欠乏した状態にあるため、効率的に物質生産を行なうためにはエネルギーの補給が必要である。
しかしながら、外因的にエネルギー生成系を細胞に組み込まれた例はない。

【０００３】

【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、従来存在しなかった簡便に細胞に組み込み可能なエネルギー生成系の遺伝子をクローニングし、目的の細胞に組み込み、必要時にエネルギー、例えば、ATPを生成させることである。 生産されたエネルギー（ATP）は、細胞が増殖あるいは物質生産に利用できるという利点を有する。

【０００４】

【課題を解決するための手段】そこで、本発明者等は、
種々検討した結果、テトラジェノコッカス(Tetragenoco
ccus)〔ペディオコッカス(Pediococcus)〕・ハロフィラ
(halophila)〔ハロフィルス(halophilus)〕の菌体中にそのようなエネルギー生成にかかわる反応としてアスパラギン酸：アラニン変換反応を見出し、また、テトラジェノコッカス・ハロフィラのある株がアスパラギン酸：
アラニン変換能を示すことを見出した。

【０００５】さらに、その反応を触媒する酵素をコードする遺伝子が、プラスミド上に存在することを見出し、
また、さらにその形質がプラスミドに起因することを確認し、そのプラスミドより該遺伝子のクローニングに成功した。 また、クローニングを通して、アスパラギン酸：アラニン変換反応が、アスパラギン酸脱炭酸酵素及びアスパラギン酸輸送体から構成されていることを見出した。

【０００６】さらに、本発明者等は、それら二つの酵素をコードする遺伝子を単離し、発現用ベクターに組み込み、エネルギーレベルを上昇させたい対象細胞に形質転換し、それら二つの酵素をコードする遺伝子を発現させることに成功した。 また、本発明者等は、そのプラスミドを大腸菌ベクターにクローニングし、塩基配列を決定した結果、アスパラギン酸：アラニン変換に関わると推定される遺伝子を見出し、大腸菌において発現ベクターを用いて発現した結果、アスパラギン酸：アラニン変換能を確認した。 上記の知見に基づき本発明を完成した。

【０００７】すなわち本発明は、以下のものからなる。 (1) 以下の(a)または(b)のアスパラギン酸脱炭酸酵素。 (a)配列番号１に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質 (b)配列番号１に示されるアミノ酸配列において１もしくは複数のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、アスパラギン酸脱炭酸酵素活性を有する蛋白質

【０００８】(2) 以下の(a)または(b)の蛋白質をコードするアスパラギン酸脱炭酸酵素遺伝子。 (a)配列番号１に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質 (b)配列番号１に示されるアミノ酸配列において１もしくは複数のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、アスパラギン酸脱炭酸酵素活性を有する蛋白質

【０００９】(3) 以下の(a)または(b)のＤＮＡからなるアスパラギン酸脱炭酸酵素遺伝子。 (a)配列番号３に示される塩基配列からなるＤＮＡ (b)配列番号３に示される塩基配列からなるＤＮＡの相補配列とストリンジェントな条件でハイブリダイズし、
かつアスパラギン酸脱炭酸酵素活性を有する蛋白質をコードするＤＮＡ

【００１０】(4) 上記(2)または(3)のアスパラギン酸脱炭酸酵素遺伝子をベクターＤＮＡに挿入してなることを特徴とする組み換え体ＤＮＡ。 (5) 上記(4)の組み換え体ＤＮＡを含む形質転換体。 (6) 上記(5)の形質転換体を培地に培養し、培養物からアスパラギン酸脱炭酸酵素を採取することを特徴とするアスパラギン酸脱炭酸酵素の製造法。

【００１１】(7) 以下の(a)または(b)のアスパラギン酸輸送体。 (a)配列番号２に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質 (b)配列番号２に示されるアミノ酸配列において１もしくは複数のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、アスパラギン酸輸送体活性を有する蛋白質

【００１２】(8) 以下の(a)または(b)の蛋白質をコードするアスパラギン酸輸送体遺伝子。 (a)配列番号２に示されるアミノ酸配列からなる蛋白質 (b)配列番号２に示されるアミノ酸配列において１もしくは複数のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、アスパラギン酸輸送体活性を有する蛋白質

【００１３】(9) 以下の(a)または(b)のＤＮＡからなるアスパラギン酸輸送体遺伝子。 (a)配列番号４に示される塩基配列からなるＤＮＡ (b)配列番号４に示される塩基配列からなるＤＮＡの相補配列とストリンジェントな条件でハイブリダイズし、
かつアスパラギン酸輸送体活性を有する蛋白質をコードするＤＮＡ

【００１４】(10)上記(8)または(9)のアスパラギン酸輸送体遺伝子をベクターＤＮＡに挿入し てなることを特徴とする組み換え体ＤＮＡ。 (11)上記(10)の組み換え体ＤＮＡを含む形質転換体。 (12)上記(11)の形質転換体を培地に培養し、培養物からアスパラギン酸輸送体を採取することを特徴とするアスパラギン酸輸送体の製造法。 (13)上記(2)または(3)のアスパラギン酸脱炭酸酵素遺伝子と上記(8)または(9)のアスパラギン酸輸送体遺伝子とがプロモーターの存在下に共発現可能に含むベクター。 (14)上記(13)のベクターによって形質転換された真核または原核細胞。

【００１５】(15)アミノ酸または有機酸の脱炭酸反応に共役したエネルギー生成系に関わる複数の蛋白質をコードする遺伝子が共発現可能に導入された真核または原核細胞を作製し、該細胞に該アミノ酸または有機酸を添加してエネルギー生成を誘発することを含む、細胞においてエネルギーを生成する方法。 (16)上記(15)において、前記遺伝子が、上記(2)または
(3)のアスパラギン酸脱炭酸酵素遺伝子及び上記(8)または(9)のアスパラギン酸輸送体遺伝子であることを特徴とする方法。 (17)上記(15)において、前記細胞が、上記(14)の真核または原核細胞であることを特徴とする方法。

【００１６】以下は、本明細書で使用される用語の定義である。 本明細書中で使用される「ストリンジェントな条件」とは、本発明の遺伝子が、ＤＮＡの塩基レベルにおいて相同性７０％以上、好ましくは８０％以上、より好ましくは９０％以上、さらにより好ましくは９５％以上の任意のＤＮＡとハイブリダイゼーション可能な条件を意味する。 一般にハイブリダイゼーションは、温度、
イオン強度、プローブの長さなどによって影響を受けることが知られており、通常より高い温度、より低いイオン強度は高ストリンジェントな条件を付与する。 好ましくはハイブリダイゼーション温度は、融解温度Ｔｍよりも約１５〜約２５℃低い温度を使用する。 また、たとえば0.1〜0.2×ＳＳＣ/0.1％ＳＤＳなどの溶液条件を使用することができる。 ハイブリダイゼーションは、高ストリンジェント条件でのハイブリダイゼーション及び高ストリンジェント条件での洗浄、あるいは、低ストリンジェントまたは中ストリンジェント条件でのハイブリダイゼーション及び高ストリンジェント条件での洗浄によって行ない得る。 ハイブリダイゼーション条件については、たとえばF. Ausbel等, Short Protocols InMolecul
ar Biology, Third Edition, John Wiley & Sons, Inc.
(1995)に記載されており参照可能である。

【００１７】さらに本明細書中で使用される「形質転換」
とは、異種遺伝子が原核または真核細胞中に導入されることを意味し、そのようにして導入された細胞を形質転換体という。 異種遺伝子は単独にかまたは適切なベクター（プラスミド、ファージ、ウイルスなど）ＤＮＡに挿入された形態で標的細胞中に導入される。 導入方法としてはたとえば、マイクロインジェクション、塩化カルシウム法、リン酸カルシウム法、エレクトロポレーション、リポフェクション法、スフェロプラスト法、プロトプラスト法、遺伝子銃、アグロバクテリウム法などの慣用法を使用できる。

【００１８】ベクターは自律的複製可能なものまたは相同組み換え可能なもののいずれも使用できる。 ベクターは、異種遺伝子の転写/発現を作動可能とするプロモーターを含んでおり、必要に応じてエンハンサー、リボソーム結合配列、転写終結配列等の配列を含み得る。 細菌類の発現ベクターとしては、たとえばpGEX（ファルマシア社製）、pGEMEX-1（プロメガ社製）、pQEシリーズ（キアゲン社製）、pBluescriptII SK+（ストラタジーン社製）、pSTV28（宝酒造社製）などがある。 プロモーターの例は、trpプロモーター、lacプロモーター、P _Lプロモーター、P _Rプロモーターである。

【００１９】酵母類の発現ベクターとしては、たとえば
Yep13 (ATCC37115)、Yep24 (ATCC37051)、pHS19、pXT
1、pBPV（ストラタジーン社製）などがある。 プロモーターの例は、PHO5プロモーター、GAPプロモーター、ADH
プロモーター等である。 昆虫細胞の発現ベクターとしては、pVL1392、ｐVL1393、pBlueBacIII（インビトロジェン社製）が例示される。

【００２０】植物細胞の発現ベクターとしては、たとえばＴｉプラスミド、タバコモザイクウイルスベクターを例示できる。 プロモーターの例は、カリフラワーモザイクウイルスの３５Ｓプロモーター、イネアクチン１プロモーター等である。 動物細胞の発現ベクターとしては、
たとえばpcDNAI、pcDM8（フナコシ社）pcDNAI/Amp、pRE
P4（インビトロジェン社製）、pAGE210、pAMo、pAMoA等が挙げられる。 プロモーターとしては、ＳＶ４０初期プロモーター、メタロチオネインプロモーター、レトロウイルスプロモーター、ヒートショックプロモーター等が例示される。

【００２１】本明細書中で使用される「原核または真核細胞」とは、細菌、菌類（酵母を含む）、昆虫細胞、植物細胞、動物細胞等、本発明の目的で使用できる任意のものである。 たとえば、エシェリヒア属、バチルス属、
シュードモナス属、ブレビバクテリウム属等の細菌類、
サッカロマイセス属、シゾサッカロマイセス属、ピチア属、トリコスポロン属など酵母類、Spodopterafrugiper
daの卵巣細胞、カイコ卵巣由来細胞（Bombyxmori N4）
などの昆虫細胞、双子葉、単子葉植物細胞、ヒト胎児腎臓細胞、ヒト白血病細胞、ＣＨＯ細胞等の動物細胞が挙げられる。 本明細書中で使用される「エネルギー生成系」は、アミノ酸または有機酸の酵素的脱炭酸反応を介して生体膜に形成されるプロトンの電気化学的勾配（pm
f）をＦ ₁ Ｆ _o −ＡＴＰアーゼにてＡＴＰに変換する系を指す。

【００２２】本明細書中で使用される「アスパラギン酸輸送体」とは、細胞膜に存在して膜外液中のアスパラギン酸を膜内部に輸送する蛋白質である。 したがってそのような輸送能をアスパラギン酸輸送体活性という。 この蛋白質をコードする遺伝子をベクターに組み込んで細胞に移入した場合であっても、その発現蛋白質は細胞膜に自ずから移動し定着することができる。 本明細書中で使用される「共発現可能に」とは、２つの異なる蛋白質をコードする遺伝子が、同じかまたは異なるプロモーターに作動可能に結合されており同時に発現され得る状態を意味する。

【００２３】

【発明の実施の形態】以下、本発明を詳細に説明する。
本発明の一態様において、本発明は、アミノ酸または有機酸の脱炭酸反応に共役したエネルギー生成系に関わる複数の蛋白質をコードする遺伝子が共発現可能に導入された真核または原核細胞を作製し、該細胞に該アミノ酸または有機酸を添加してエネルギー生成を誘発することを含む、細胞においてエネルギーを生成する方法を提供する。

【００２４】本発明のエネルギー生成系で使用可能なアミノ酸の例は非限定的にアスパラギン酸、グルタミン酸、リジン、フェニルアラニン、チロシン、ヒスチジンなどであり、一方有機酸の例は非限定的にクエン酸、リンゴ酸、シュウ酸などであり、さらにこのようなアミノ酸または有機酸の脱炭酸反応を行ない得るすべての酵素類をコードする遺伝子（ｃＤＮＡ、ゲノムＤＮＡなど）
が本発明で使用できる。 脱炭酸酵素としてたとえばアスパラギン酸脱炭酸酵素、グルタミン酸脱炭酸酵素、リジン脱炭酸酵素、フェニルアラニン脱炭酸酵素、チロシン脱炭酸酵素、ヒスチジン脱炭酸酵素などのアミノ酸脱炭酸酵素類、あるいはクエン酸リアーゼ・オギザロ酢酸脱炭酸酵素・乳酸脱水素酵素複合系（C. Marty-Teysset
等, J. Biol.Chem. 270:25370-25376, 1995）、マロラクティック酵素（リンゴ酸脱水素酵素・乳酸脱水素酵素複合系）、シュウ酸脱炭酸酵素などの脱炭酸酵素類を例示できる。 アスパラギン酸脱炭酸酵素の場合、アスパラギン酸はβ位カルボキシル基の脱炭酸によってアラニンに変換される。 同様に、グルタミン酸、リジン、フェニルアラニン、チロシン、ヒスチジンはそれぞれ、γ−アミノ酪酸、カダベリン、フェニルエチルアミン、チラミン、ヒスタミンに変換される。 また、リンゴ酸、シュウ酸はそれぞれ乳酸、ギ酸に変換される。

【００２５】本発明のエネルギー生成系に関わる別の蛋白質は、細胞外の上記アミノ酸または有機酸を細胞内に輸送する膜蛋白質（すなわち、輸送体蛋白質）である。
アミノ酸輸送系または有機酸輸送系に関わる該膜蛋白質はたとえばPC Maloney等,J. Exp. Biol. 196:471-48
2, 1994等の文献に記載されている。 本発明の好適実施態様においては、アスパラギン酸輸送体が使用される。

【００２６】脱炭酸酵素及び輸送体蛋白質をコードする遺伝子は、該遺伝子の配列が公知である場合、その配列に基いてプライマーを作製しポリメラーゼ連鎖反応（Ｐ
ＣＲ）に用いて、別途調製または購入された生物細胞、
組織由来のｃＤＮＡライブラリーもしくはゲノムライブラリーから目的の遺伝子を増幅し、精製することによって得ることができるし、あるいは、該遺伝子の配列が明らかでない場合、先ず対応の蛋白質を精製してその部分配列を決定し、その配列に基き放射性標識プローブを作り、これを用いてｃＤＮＡライブラリーもしくはゲノムライブラリーから目的の遺伝子を含むクローンをスクリーニングし、必要に応じて再クローン化することによって該遺伝子を得ることができる。 遺伝子クローニング及びスクリーニングの手法については、たとえばJ. Sambr
ook等, Molecular Cloning, second edition, Cold Spr
ing Harbor Laboratory Press, 1989に記載される方法を使用することができる。

【００２７】本発明では、アミノ酸または有機酸を脱炭酸する酵素をコードする遺伝子及び、該アミノ酸または有機酸を細胞内に輸送する膜蛋白質をコードする遺伝子を共発現可能にプロモーター配列に連結した組み換えベクターを作製し、原核または真核細胞内に導入することによって、脱炭酸共役エネルギー生成系が組み込まれた細胞を得ることができる。 これらの遺伝子は、共発現が可能であるならば、同一のベクターに組み込まれてもよいし、または、異なるベクターに組み込まれてバイナリーベクターとして使用されてもよい。 ベクターの例は上記のもの以外にpTrc99A（アマシャム・ファルマシアバイオテク社製）である。 また、細胞の例は上記のもの以外に大腸菌XL-1blue Kahr（ストラタジーン社製）である。

【００２８】該遺伝子が一旦細胞内で共発現されると、
輸送体蛋白質は細胞膜に移動し定着する。 細胞外液にアミノ酸または有機酸を存在させるときには、該酸が輸送体蛋白質の仲介により細胞内に輸送され、同時発現産物の脱炭酸酵素の作用によって該酸の脱炭酸が生じ、この脱炭酸産物の細胞外への排出に伴って生体膜に生じるpm
fはＦ ₁ Ｆ _o −ＡＴＰアーゼを駆動しＡＴＰを合成する。
該ＡＴＰアーゼは、通常、細胞が本来もつものを利用することができる。

【００２９】本方法においては、脱炭酸酵素のために補酵素（ＮＡＤ ⁺ 、ＮＡＤＰ ⁺またはピリドキサールリン酸など）を要するが、これらは細胞から本来供給されるものを利用できる。 本発明の好適実施態様において、アスパラギン酸脱炭酸酵素／アスパラギン酸輸送体（アスパラギン酸：アラニン変換活性）に基く脱炭酸共役エネルギー生成系を作製することができる。 以下では該エネルギー生成系を例示してさらに具体的に本発明を説明する。 なお、この特定例で使用される方法、物質及びそこに示される文献等はいずれも他の脱炭酸共役エネルギー生成系の作製にも全体的にまたは部分的に適用し得る。

【００３０】アスパラギン酸脱炭酸酵素及び／またはアスパラギン酸輸送体（アスパラギン酸：アラニン変換活性）を有するドナー微生物としては、テトラジェノコッカス属に属し、アスパラギン酸脱炭酸酵素及び／またはアスパラギン酸輸送体（アスパラギン酸：アラニン変換酵素）を生産するものであれば如何なるものでもよい。
例えば、テトラジェノコッカス(Tetragenococcus)〔ペディオコッカス(Pediococcus)〕・ハロフィラ(halophil
a)〔ハロフィルス(halophilus)〕A-2(FERM-P 5427)(特公昭60−4708号公報)等が挙げられる。 この微生物は、
例えば特開平5-49440号公報記載の培地及び培養法を用いて培養することができる。 この培養微生物を例えば1
0,000rpmで１０分間遠心分離してテトラジェノコッカス
(Tetragenococcus)〔ペディオコッカス(Pediococcus)〕
・ハロフィラ(halophila)〔ハロフィルス(halophilu
s)〕A-2の菌体を得ることができる。

【００３１】この菌体より、公知の方法〔例えば、D.
G. Anderson, and LL McKay, Simple and rapid met
hod for isolating large plasmid DNA from lactic st
reptococci. Appl. Environ. Microbiol., 46：549-552
(1983)〕によりプラスミドＤＮＡを得る。 次いで、このプラスミドＤＮＡに、例えば、制限酵素Sal I（宝酒造社製）を、温度30℃以上、好ましくは、37℃、酵素濃度１〜１０ユニット/mlで１０分〜２０時間作用させて消化し、約１１kb及び１２kbのＤＮＡ断片を得る。 このＤＮＡ断片をカレント・プロトコルズ・イン・モレキュラー・バイオロジー（Current Protocols In Molecular
Biology）第１巻、第２号記載の方法等により0.7%寒天平板で電気泳動を行なって、１１kb断片をQuiagen (キアゲン)社製QuiaquickGel Extraction Kit(キアクイックゲル抽出キット)により寒天平板より回収し、精製する。

【００３２】一方、本発明において用いることのできるベクターとしては、如何なるものでもよく、例えば、プラスミドベクター、ファージベクター等が挙げられ、それらの好ましい例としては、pBluescript II KS-ベクターＤＮＡ（Stratagene社製）等が挙げられる。 そして、
例えば、pBluescript II KS-ベクターＤＮＡをSal I
（宝酒造製）にて温度37℃、酵素濃度５〜１００ユニット/mlで１時間以上、好ましくは１〜３時間消化し、切断されたベクター断片を得る。 さらに、これらのベクター断片を必要によりフェノール抽出処理、フェノール-
クロロホルム抽出処理、あるいはエタノール沈澱処理等の既知の方法により精製する。 ここで得た切断ベクターＤＮＡと先の純化されたSal I断片(1１ kb)をT4-ＤＮＡ
リガーゼにて反応させ組み換え体ＤＮＡを得る。

【００３３】この組み換え体ＤＮＡで、例えば、大腸菌
JM109(宝酒造社製)等の細菌細胞を形質転換してアスパラギン酸：アラニン変換代謝系遺伝子を含む菌株を得、
次いで、この菌株より純化された組み換え体ＤＮＡを得る。 なお、この形質転換及び組み換え体ＤＮＡの取得は、カレント・プロトコルズ・イン・モレキュラー・バイオロジー、第１巻、第１号（1987年）記載の方法で行なうことができる。 このアスパラギン酸：アラニン変換代謝系遺伝子を含むＤＮＡを用いて、アスパラギン酸：
アラニン変換代謝系遺伝子の塩基配列解析を行なって（配列番号３及び４参照）、翻訳されるポリペプチドのアミノ酸配列を確定する（配列番号１及び２参照）。 このようにして確定されたアミノ酸配列をコードする遺伝子がアスパラギン酸：アラニン変換代謝系酵素活性体ポリペプチドの遺伝子である。

【００３４】なお、配列番号１または２に示されるアミノ酸配列において夫々１もしくは複数のアミノ酸が付加、欠失もしくは置換されており、かつ、アスパラギン酸脱炭酸酵素またはアスパラギン酸輸送体活性を有するアミノ酸配列を持つポリペプチドをコードする遺伝子は、全て本発明に含まれる。 そして、これらの遺伝子を得るには、如何なる方法でも良く、例えば、点変異または欠失変異を生じさせるために遺伝子を変異源で処理する方法；遺伝子を選択的に開裂し、次いで、選択されたヌクレオチドを除去または付加し、遺伝子を連結する方法；オリゴヌクレオチド変異誘発；ＰＣＲによる部位特異的変異誘発法等が挙げられる。

【００３５】このようにして得られたアスパラギン酸脱炭酸酵素及び／またはアスパラギン酸輸送体を生産することのできる形質転換体、好ましくは、エシェリシア（Escherichia）属に属する菌体を用いてアスパラギン酸脱炭酸酵素及び／またはアスパラギン酸輸送体を生産するには、以下のようにして行なうことができる。 上記微生物を培養するには、通常の固体培養法で培養してもよいが、なるべく液体培養法を採用して培養するのが好ましい。

【００３６】また、上記微生物を培養するには、例えば、酵母エキス、ペプトン、肉エキス、コーンスチィープリカー、大豆、もしくは小麦麹の浸出液等の１種以上の窒素源に、リン酸二水素カリウム、リン酸水素二カリウム、硫酸マグネシウム、塩化第二鉄、硫酸第二鉄もしくは硫酸マンガンの無機塩類の１種以上を添加し、さらに必要により糖質原料、ビタミン等を適宜添加したものが用いられる。

【００３７】なお、培地の初発pHは、7〜9に調整するのが適当である。 また培養は、30〜42℃、好ましくは37℃
前後で6〜24時間、振とう培養、通気撹拌深部培養、静置培養等により実施するのが好ましい。 培養終了後、該培養物よりアスパラギン酸脱炭酸酵素及び／またはアスパラギン酸輸送体を採取するには、通常の酵素採取手段を用いることができる。

【００３８】培養物から、例えば、濾過、遠心分離等の操作により菌体を分離し、洗菌する。 この菌体からアスパラギン酸脱炭酸酵素及び／またはアスパラギン酸輸送体を採取することが好ましい。 この場合、菌体をそのまま用いることもできるが、超音波破壊機、フレンチプレス、ダイナミル等の種々の破壊手段を用いて菌体を破壊する方法、リゾチームの如き細胞壁溶解酵素を用いて菌体細胞壁を溶解する方法、トリトンＸ-100等の界面活性剤を用いて菌体から酵素を抽出する方法等により菌体からアスパラギン酸脱炭酸酵素及び／またはアスパラギン酸輸送体を採取するのが好ましい。

【００３９】このようにして得られた粗酵素液からアスパラギン酸脱炭酸酵素及び／またはアスパラギン酸輸送体を単離するには通常の酵素精製に用いられる方法が使用できる。 例えば、硫安塩析法、有機溶媒沈殿法、イオン交換クロマトグラフ法、ゲル濾過クロマトグラフ法、
吸着クロマトグラフ、電気泳動法等を適宜組み合わせて行なうのが好ましい。

【００４０】

【実施例】以下、本発明を実施例を挙げてさらに具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。 ＜実施例＞ (1) テトラジェノコッカス・ハロフィラA−２プラスミ
ドＤＮＡの調製テトラジェノコッカス(Tetragenococcus)〔ペディオコッカス(Pediococcus)〕・ハロフィラ(halophila)〔ハロフィルス(halophilus)〕A-2(FERM-P 5427)を、5%(W/V)N
aClを含むMRS培地（DIFCO社製）１Ｌに接種し、温度３
０℃にて７２時間静置培養し、培養物を得た。 この培養物を10,000rpmで１０分間常法により遠心分離し、湿潤菌体４ｇを得た後、この菌体から公知の方法〔DG An
derson, and LL McKay, Simple and rapid method f
or isolating large plasmid DNA from lactic strepto
cocci.Appl. Environ. Microbiol., 46：549-552 (198
3)〕を用いてプラスミドＤＮＡを単離した。

【００４１】(2) テトラジェノコッカス(Tetragenococc
us)〔ペディオコッカス(Pediococcus)〕・ハロフィラ(h
alophila)〔ハロフィルス(halophilus)〕A-2プラスミド
ＤＮＡSal I １１ kb断片の精製次いで、このプラスミドＤＮＡ１０μｇ及び制限酵素Sa
l I（宝酒造社製）５０ユニットを各々50mMトリス緩衝液[100mM NaCl, 10mM MgCl ₂ , 1mMジチオスレイトール含有 (pH 7.5)]に混合し、３７℃で３０分〜１６時間反応させた。 反応終了液を常法により0.7%(W/V)アガロースゲル（宝酒造社製）電気泳動処理したものより、およそ１１ｋｂの大きさのＤＮＡ断片をQuiagen (キアゲン)社製Quiaquick Gel Extraction Kit(キアクイックゲル抽出キット)にて精製した。

【００４２】(3) 組み換え体プラスミドpAsp10Sの作製プラスミドpBluescriptII KS-ＤＮＡ（ストラタジーン社製）2.5μｇ及び制限酵素、Sal I 10ユニットを50mM
トリス緩衝液[100mM NaCl, 10mM MgCl ₂ , 1mMジチオスレイトール含有 (pH 7.5)]に混合し、温度３７℃で４時間反応させて消化液を得、該溶液を常法によりフェノール抽出及びエタノール沈澱処理した後、１ユニットのアルカリ性フォスファターゼ（宝酒造社製）と共に５０mMトリス塩酸緩衝液(pH8)に添加し、温度３７℃で４５分間反応して５'末端のリン酸を除去した。 この反応終了液を常法によフェノール抽出処理及びエタノール沈澱処理することにより、Sal Iで消化されたプラスミドpBluesc
riptII KS-ＤＮＡを得た。

【００４３】次いで、この組み込み可能なpBluescriptI
I KS-ＤＮＡ１μｇ、上記項目(2)で得られたSal Iで消化されたテトラジェノコッカス・ハロフィラのプラスミドＤＮＡSal I消化断片（１１kb）３μｇ及び１ユニットのT4ＤＮＡリガーゼ（宝酒造社製）を、6.6mM MgC
l ₂ 、10mMジチオスレイトール及び１０mMＡＴＰを含有する６６mMトリス緩衝液(pH7.5)に添加し、温度１６℃で１６時間反応させて、ＤＮＡを連結させた。

【００４４】次いで、該連結ＤＮＡを用いて公知の方法〔カレント・プロトコルズ・インモレキュラー・バイオロジー、第１巻、第３号(1987年)記載の方法〕で大腸菌
JM109（宝酒造社製）を形質転換し、得られた形質転換株を５０μｇ/mlアンピシリン、0.5mM イソプロピル-β
-チオガラクトシド(IPTG)及び0.004%(W/V) 5-ブロモ-4-
クロロ-3-インドリル-β-D-ガラクトシド(X-GAL)を夫々含有するTY寒天平板培地を用いて温度３７℃で２４時間培養し、白色のコロニーを形成するものがテトラジェノコッカス(Tetragenococcus)〔ペディオコッカス(Pedi
ococcus)〕・ハロフィラ(halophila)〔ハロフィルス(ha
lophilus)〕A-2のプラスミドＤＮＡSal I消化断片（１
１kb）の挿入された組み換え体プラスミドを保有するものであり、その一つとしてpAspSを得た。

【００４５】(4) 組み換え体プラスミドの単離 50μｇ/mlのアンピシリンを含むTY培地に、大腸菌JM10
9(pAspS)を接種して、温度３７℃で２４時間振とう培養し、培養液を得た。 次いで、この培養液よりカレント・
プロトコルズ・イン・モレキュラー・バイオロジー、第１巻、第６号(1987年)記載のアルカリ法によりプラスミドを抽出し、さらにキアゲン社製のキアゲン-マキシ-プラスミド精製キットにて該プラスミドpAspS１００μｇ
を得た。

【００４６】(5) アスパラギン酸：アラニン変換代謝系
遺伝子を含有するＤＮＡの塩基配列の解析前記項目(4)で得られたプラスミドpAspSに組み込まれた挿入断片について、ストラタジーン社製 ExoIII/Mung B
eanＤＮＡディリーションキットを用いて、種々の長さの断片を作製したものについて、二本鎖DNAによるダイプライマー-タック-シークエンシング-キット（アプライドバイオシステムズ社製）及び50%(W/V)の尿素を含む、6%(W/V)ポリアクリルアミドゲル（National Diagno
stics社製）を用い、ＤＮＡシーケンサ370A（アプライドバイオシステムズ社製) にて塩基配列の解析を行なった。 得られた塩基配列中には、オペロンを形成する主要な２種のオープンリーディングフレームが見出された。
推定されたアスパラギン酸脱炭酸酵素及びアスパラギン酸輸送体の塩基配列を配列番号３及び４に夫々示した。
また該遺伝子より翻訳されるアスパラギン酸脱炭酸酵素のポリペプチドのアミノ酸配列は配列番号１に、翻訳されるアスパラギン酸輸送体のポリペプチドのアミノ酸配列は配列番号２に夫々示した。

【００４７】(6) 発現ベクターpTrAspD/Tの作製 pAspS上の推定されるアスパラギン酸脱炭酸酵素遺伝子
(aspD)の開始コドン部位にNcoIサイトを導入するために、以下の変異用オリゴＤＮＡプライマーすなわち変異プライマー１(配列番号５)及び変異プライマー２(配列番号６)をＤＮＡ合成機Model 392（アプライドバイオシステムズ社製）を用いて合成した。

【００４８】これら２本の変異プライマー各々125 ng、
pAspS 10ng及びストラタジーン社のQuickChange Site-D
irected Mutagenesis Kitを用いて、添付Instruction M
anualに従ってpAspSの推定されるアスパラギン酸脱炭酸酵素遺伝子(aspD)の開始コドン部位にNco I サイトを導入し、変異プラスミドpAspS(NcoI)を得た。 pAspS(NcoI)
２０μｇを制限酵素Nco I及びSal I（共に宝酒造社製）
５０ユニットを各々10mMトリス緩衝液[150mM NaCl, 10m
M MgCl ₂ , 1mMジチオスレイトール, 牛血清アルブミン（BSA） 100μｇ/ml含有 (pH 7.9)]に混合し、３７℃で３０分〜１６時間反応させた。 反応終了液を常法により
0.7%(W/V)アガロースゲル（宝酒造社製）電気泳動処理したものより、約3.9ｋｂの大きさのＤＮＡ断片２μｇ
をQuiagen (キアゲン)社製Quiaquick Gel Extraction K
it(キアクイックゲル抽出キット)にて精製した。 この約
3.9kbの断片は、アスパラギン酸脱炭酸酵素遺伝子(asp
D)→アスパラギン酸輸送体遺伝子(aspT)の遺伝子構成を有し、aspDのN-末にNcoIサイト及びaspT C-末側下流にS
al Iサイトを有する。

【００４９】一方、pTrcA99（アマシャム・ファルマシアバイオテク社製）４μｇを制限酵素Nco I及びSal I
（共に宝酒造社製）５０ユニットを各々10mMトリス緩衝液[150mM NaCl, 10mM MgCl ₂ , 1mMジチオスレイトール,
BSA 100μｇ/ml含有 (pH 7.9)]に混合し、３７℃で３０
分〜１６時間反応させたものをフェノール抽出処理、フェノール-クロロホルム抽出処理、あるいはエタノール沈澱処理等の既知の方法により精製した。 ここで得た切断ベクターＤＮＡ及び先の純化されたaspD→aspTを含む
Nco I-Sal I断片(3.9 kb)をT4-ＤＮＡリガーゼにて反応させ、組み換え体ＤＮＡpTrAspD/Tを得た。 このプラスミドは、trcプロモータ下流に推定されるアスパラギン酸脱炭酸酵素遺伝子(aspD)、アスパラギン酸輸送体遺伝子(aspT)が連なった形で連結され、IPTG等のインデューサーによりポリシストロニックに転写される構成である。

【００５０】(7) 大腸菌XL-1 Blue Kanr(pTrAspD/T)の
作製このプラスミドpTrAspD/Tを常法に従って、大腸菌XL-1
Blue Kanr（ストラタジーン社製）に形質転換し、大腸菌XL-1 Blue Kanr(pTrAspD/T) を得た。 この大腸菌XL-1
Blue Kanr (pTrAspD/T)は、平成１１年３月４日に通商産業省工業技術院生命工学工業技術研究所にブタペスト条約下に国際寄託し、その寄託番号は、FERM BP-6671である。

【００５１】(8) 酵素活性等の発現得られた上記大腸菌XL-1 Blue Kanr(pTrAspD/T)を、１
ｍＭイソプロピルーβーＤーチオガラクトピラノシドを含む５０ｍｌＴＹ培地（1％バクトトリプトン、0.5%バクトイーストエキストラクト、0.5％NaCl，pH7）にて４時間振とう培養した後、遠心集菌後、５０ｍＭリン酸バッファー(pH7.5)にて洗浄し、５ｍｌの同一バッファーに懸濁した。 その後３７℃で２５分間保温し、菌体内のAT
Pを枯渇状態にした後、KCNを終濃度１mMになるように添加して呼吸阻害を行ない、さらに５分間保温した。 次いで、アスパラギン酸を終濃度１０mMになるように添加し、３７℃にて０〜４５分間反応させた。 経時的に反応液１００μｌを採取し、アスパラギン酸：アラニン変換及び菌体内ATP生成を阿部等の方法(J.Biol.Chem.271:30
79-3084,1996)に従って測定し、図１及び図２に示す結果を得た。 対照実験区として、pTrcA99プラスミドのみを有する大腸菌XL-1 Blue(pTrcA99)を比較した。 各試験区は、細胞濃度を10 ⁸細胞/ml濃度に合わせて反応を行なった。 図２にアスパラギン酸からアラニンへの変換を示した。

【００５２】図１に示したようにXL-1 Blue Kanr(pTrAs
pD/T)は、Asp(Asp+)とAsp(Asp-)の比較において、呼吸阻害下で、アスパラギン酸脱炭酸に伴って、菌体内にAT
Pを生成した（アスパラギン酸の添加と無添加区との差で示される。）。 対照区のpTrcA99のベクターのみではアスパラギン酸添加、無添加に差がなく、アスパラギン酸を利用してATPを生産することができない（Vec(Asp+)
とVec(Asp-)の比較）。 図２においても、大腸菌XL-1 Bl
ue Kanr(pTrAspD/T)は、アスパラギン酸をアラニンに変換し（Asp(Test)とAla(Test)の比較）、対照の大腸菌XL
-1 Blue Kanr(pTrcA99)は、変換しない(Asp(Vec)とAla
(Vec)の比較)ことが判明した。

【００５３】

【発明の効果】本発明によって、脱炭酸共役エネルギー生成系、特にアスパラギン酸：アラニン変換代謝系、の蛋白質及びそれをコードする遺伝子が初めて提供される。 これらの遺伝子を用いれば、目的とする細胞（例えば大腸菌）に組み込んでアスパラギン酸：アラニン変換をさせることが可能となり、その結果、細胞にエネルギー（ATP）を供給することが可能である。 この反応により供給されるATPは、細胞増殖あるいは、一次、二次代謝産物の増産に利用することが可能となり、本発明によって多大の利益が付与されるであろう。

【００５４】

【配列表】 SEQUENCE LISTING <110> KIKKOMAN CORPORATION <120> Proteins involved in the energy-generating system linked to decarb oxylation, genes encoding the same, and use thereof <130> P99-0016 <160> 6 <170> PatentIn Ver. 2.0 <210> 1 <211> 532 <212> PRT <213> Tetragenococcus(Pediococcus) halophila(halophilus) <400> 1 Met Glu Ser Leu Asp Ile Glu Gln Leu Lys Gly Met Ser Asn Phe Glu 1 5 10 15 Val Ala Ala Leu Phe Leu Glu Asn Ser Glu Lys Asn Thr Met His Asn 20 25 30 Thr Pro Ile Asn Val Gly Arg Gly Asn Pro Asn Trp Ile Asn Thr Arg 35 40 45 Ala Arg Leu Ala Phe Asn Lys Ile Ala Glu Phe Gly Ile Gly Glu Ser 50 55 60 Ala Lys Thr Ile Asp Glu Ala Asp Gly Asp Met Ala Gly Tyr Val Glu 65 70 75 80 Lys Glu Gly Ile Ala Gln Arg Leu His Asp Tyr Leu Asp Ala Asn Asp 85 90 95 Lys Thr Asp Lys Phe Ile Leu Asp Phe Leu Ala Tyr Thr Glu Asn Asn 100 105 110 Met His Leu Asn Gln Asp Asp Leu Val His Glu Phe Val Asp Gly Ala 115 120 125 Ile Gly Asn His Tyr Pro Val Pro Ser Arg Ser Leu Val Asn Val Glu 130 135 140 Lys Ile Leu Asn Lys Tyr Leu Glu Val Ser Leu Tyr Asn Gly Glu Lys 145 150 155 160 Leu Ala Asp His Thr Asn Val Phe Pro Thr Glu Gly Gly Thr Ala Ala 165 170 175 Met Val Tyr Leu Phe Asn Glu Leu Lys Ile Ser His Ile Leu Glu Ala 180 185 190 Gly Asp Thr Ile Ala Ile Asn Thr Pro Ile Phe Thr Pro Tyr Leu Gln 195 200 205 Ile Pro Glu Leu Ser Glu Phe Lys Leu Lys Glu Leu Asp Val Ser Ser 210 215 220 Val Glu Asp Asn Asn Trp Gln Met Leu Asp Ala Lys Phe Glu Glu Leu 225 230 235 240 Lys Asp Pro Ser Val Lys Ala Phe Phe Val Val Asn Pro Thr Asn Pro 245 250 255 Thr Ser Arg Ala Phe Ser Gln His Ala Leu Asp Lys Ile Lys Glu Val 260 265 270 Val Ala Ala Asn Pro Glu Ile Ile Ile Ile Thr Asp Asp Val Tyr Gly 275 280 285 Thr Phe Val Asn Asn Phe Gln Thr Ile Tyr Ser Val Ala Pro Lys Asn 290 295 300 Thr Leu Leu Val Tyr Ser Tyr Ser Lys Leu Tyr Gly Ala Thr Gly His 305 310 315 320 Arg Leu Gly Leu Ile Ala Ala His Glu Asp Asn Val Phe Asp Glu Ile 325 330 335 Ile Ala Lys Arg Thr Ala Glu Asn Ala Ala Ile Lys Glu Glu Phe Glu 340 345 350 Lys Arg Tyr Ser Leu Val Val Ala Asn Pro Leu Asp Met Lys Phe Ile 355 360 365 Asp Arg Thr Val Ala Asp Ser Arg Glu Ile Gly Leu Tyr His Thr Ala 370 375 380 Gly Leu Ser Thr Pro Gln Gln Val Leu Met Ala Leu Phe Ser Leu Thr 385 390 395 400 Asn Leu Ile His Glu Gly Glu Lys Asp Pro Tyr Ile Glu Ala Ser Lys 405 410 415 Lys Val Val Asp Val Arg Tyr Asn Thr Phe Trp Lys Ser Met Gly Ile 420 425 430 Glu Gly Asp His Ser Ala Glu Lys Ala Glu Tyr Tyr Thr Val Phe Asn 435 440 445 Ile Tyr Glu Leu Ala Glu Lys Lys Tyr Gly Lys Asp Phe Arg Asp Tyr 450 455 460 Phe Glu Asn Asn Phe Ser Tyr Leu Glu Phe Glu Gly Glu Leu Ala Gly 465 470 475 480 Lys Tyr Gly Val Val Ala Met Asp Gly Ala Gly Met Gly Thr Glu Glu 485 490 495 Gly Tyr Leu Arg Val Ser Leu Ala Asn Gln Pro Ala Glu Asn Tyr Thr 500 505 510 Ile Thr Gly Lys Arg Ile Ala Glu Leu Leu Ala Glu Tyr Tyr Asp Lys 515 520 525 Phe Gln Gln Lys 530 <210> 2 <211> 543 <212> PRT <213> Tetragenococcus(Pediococcus) halophila(halophilus) <400> 2 Met Asn Ala Ile Gly Asn Phe Leu Val Gly Thr Pro Val Phe Thr Ile 1 5 10 15 Phe Ile Cys Leu Ala Leu Gly Tyr Leu Leu Gly Lys Leu Lys Ile Gly 20 25 30 Ser Phe Thr Leu Gly Ala Thr Val Gly Val Leu Ile Val Ala Leu Leu 35 40 45 Ile Gly Gln Leu Gly Val Phe Pro Arg Asp Thr Leu Leu Gly Asp Ile 50 55 60 Phe Phe Asp Phe Phe Met Phe Ala Ile Gly Tyr Arg Val Gly Pro Ser 65 70 75 80 Phe Ile Ser Ser Met Lys Lys Phe Gly Ala Lys Ile Val Tyr Ala Thr 85 90 95 Leu Ile Phe Leu Val Ser Ala Phe Ile Val Ala Tyr Ala Cys Phe Lys 100 105 110 Met Phe His Ile Gly Pro Gly Ile Ala Ala Gly Ile Ile Ala Gly Gly 115 120 125 Leu Thr Gln Ser Ala Val Ile Gly Ser Ser Leu Glu Thr Ile Ser Lys 130 135 140 Leu Pro Ile Ser Asp His Leu Lys Thr Leu Tyr Ser Asn Gln Ile Pro 145 150 155 160 Ile Val Tyr Thr Leu Thr Tyr Val Phe Gly Thr Ile Gly Val Leu Ile 165 170 175 Phe Leu Arg Asp Ile Met Pro Lys Leu Met His Ile Asp Leu Lys Lys 180 185 190 Gln Ala Val Lys Thr Ala Lys Glu Leu Asp Met Ile Pro Val Pro Val 195 200 205 Ile Val Ala Ser Thr His Phe Tyr Thr Ile Asn Asp Gly Ser Ser Leu 210 215 220 Ile Gly Gln Thr Leu Gly Thr Val Asn Thr Lys Phe Ala Lys Gly Leu 225 230 235 240 Val Ala Ala Gly Leu Asn Asp Ser Ala Asp Met Ala Ser Val Ile Asn 245 250 255 Ala Gly Asp Val Leu Ala Ile Ser Gly Gly Ile Asp Glu Ile Gly Arg 260 265 270 Ala Val Gln Glu Phe Asn Leu Leu Glu Val Thr Gly Lys Thr Lys Ala 275 280 285 Tyr Val Ser Lys Gln Val Val Leu Lys Lys Asn Phe Ser Ala Asp Val 290 295 300 Leu Lys Asn Ala Gln Asp Lys Gly Val Leu Val Ala Thr Leu Ala Gly 305 310 315 320 Asp Val Met Asp Pro Ala Gln Phe Ser Thr Leu Lys Pro Ala Glu Ser 325 330 335 Val Thr Leu Val Gly Gln Lys Asp Ala Val Ser Glu Val Gln Ser Gln 340 345 350 Leu Gly Arg Leu Arg Ala Ala Glu Asn Ile Ile Asn Tyr Ser Trp Phe 355 360 365 Ala Leu Gly Ile Ala Leu Ser Ala Ala Leu Gly Ile Val Gly Thr Lys 370 375 380 Val Ser Gly Val Pro Ile Ala Leu Gly Gly Gly Thr Ala Ser Leu Ile 385 390 395 400 Val Gly Leu Val Gln Ser Ile Tyr Arg Asp Lys His Ala His Met Asp 405 410 415 Thr Ile Pro Asp Ser Leu Leu Glu Phe Phe Gln Ser Ile Gly Leu Asn 420 425 430 Leu Phe Ile Ala Thr Val Gly Leu Ser Ala Ala Lys Thr Phe Ile Ser 435 440 445 Ala Ile Gln Ser Met Gly Ile Ser Val Leu Leu Ile Gly Ala Val Ile 450 455 460 Ser Ile Leu Pro His Ile Ile Thr Phe Val Ile Cys Tyr Tyr Leu Met 465 470 475 480 Lys Met Glu Pro Ile Ser Ile Ile Gly Ala Gln Thr Gly Ala Asp Thr 485 490 495 Leu Ser Ala Ala Leu Asn Asp Val Ser Glu Arg Val Gly Ser Asp Ala 500 505 510 Ser Pro Phe Phe Ala Ala Ala Val Ala Pro Ala Tyr Ala Ile Gly Asn 515 520 525 Ile Phe Leu Thr Leu Met Gly Pro Ile Phe Ile Val Leu Leu Ser 530 535 540 <210> 3 <211> 1599 <212> DNA <213> Tetragenococcus(Pediococcus) halophila(halophilus) <400> 3 atggaatcat tagatattga acaattaaaa ggtatgtcga actttgaagt tgctgccctt 60 ttcttggaaa attcagaaaa aaacacaatg cacaatacac caattaacgt tggtcgtggg 120 aaccctaact ggattaacac acgtgcgcgt ttagcattta acaaaattgc tgaattcggt 180 attggcgaat cagcaaaaac aattgacgaa gctgatggcg atatggctgg ctatgttgaa 240 aaagaaggca tcgcacaacg tcttcatgat tatttagatg caaacgacaa aactgataaa 300 tttatcttag atttcttagc atatacagaa aataatatgc acttaaacca agatgattta 360 gttcatgaat ttgttgatgg cgctattggt aaccattatc cagttccatc aagaagtctt 420 gttaatgttg aaaaaatctt gaacaagtat cttgaagtat cactttataa tggcgaaaaa 480 ttagccgatc ataccaatgt tttccctact gaagggggga cagcagctat ggtttactta 540 ttcaacgaat tgaaaatcag tcacatctta gaagctggtg acacgattgc aatcaataca 600 ccaatcttca caccatattt acaaattcct gaattaagtg aattcaaatt aaaagaactt 660 gatgttagct cagttgaaga taataactgg caaatgctag atgctaaatt tgaagaattg 720 aaagatcctt cagttaaagc attcttcgtt gttaacccaa ctaacccaac atcacgtgcc 780 tttagccaac atgctttaga caaaatcaag gaagttgttg cagctaaccc agaaattatc 840 attattactg atgatgttta tggcacattt gttaataatt tccaaacaat ttactcagta 900 gcaccaaaga atactttatt agtttactca tattcaaaac tttatggtgc aacaggccac 960 cgtctaggcc taattgcagc tcacgaagat aacgtctttg acgaaatcat cgctaaacgg 1020 actgctgaaa acgccgcaat caaagaagaa tttgaaaaac gttattcatt agtagtagct 1080 aacccattag acatgaagtt catcgacaga actgttgctg atagtcgtga aatcggcttg 1140 tatcatactg caggtctttc aacaccacaa caagtcttaa tggcattgtt cagtttaacg 1200 aacttaatcc atgaaggcga aaaagatcca tacatcgaag cttctaagaa agttgttgac 1260 gttcgctaca acacattctg gaaatcaatg ggtatagaag gcgatcattc agctgaaaaa 1320 gcagaatatt atacagtatt taatatttat gaacttgctg aaaagaaata tggcaaagac 1380 ttccgtgatt acttcgaaaa taactttagc taccttgaat ttgaaggcga attggccggc 1440 aaatatggtg ttgtcgctat ggacggcgct ggtatgggta ctgaagaagg ctacttacga 1500 gtatcattgg ctaaccaacc agctgaaaac tatacaatta caggtaaacg gattgctgaa 1560 ttattagctg aatactatga taaattccaa caaaaataa 1599 <210> 4 <211> 1632 <212> DNA <213> Tetragenococcus(Pediococcus) halophila(halophilus) <400> 4 atgaatgcaa ttggtaattt ccttgtggga actcctgtct ttactatttt catttgtttg 60 gcattaggtt atttgttagg taagttgaaa attggttcat ttacacttgg cgcaaccgtc 120 ggtgttttga ttgttgcttt attaattggc caattaggtg tcttcccccg tgatacactt 180 ttaggtgata tctttttcga cttctttatg tttgcaattg gttaccgtgt tgggcctagc 240 ttcatctcaa gtatgaagaa atttggggcc aagattgttt atgcgacatt aattttctta 300 gtatcagcgt ttatcgttgc atacgcatgt ttcaaaatgt tccacatcgg acccggaatt 360 gcagctggga ttattgctgg tggattaaca caatctgctg ttattggtag ttctttagaa 420 acaatttcta aattgccaat ttcagatcat ttgaagactt tatactcaaa ccaaattcca 480 atcgtatata ctttaacata tgtttttggg actatcgggg ttttaatctt cttacgtgat 540 attatgccaa aattaatgca catcgattta aagaaacaag ctgttaaaac agccaaggaa 600 ttggatatga ttcctgtgcc tgttatcgtt gctagcacgc atttctacac aattaacgat 660 ggttcatcat taattggtca aaccttaggt actgttaaca ctaaatttgc taaaggttta 720 gtagcagctg gcttgaatga ttctgctgat atggcatcag ttattaatgc cggcgatgtt 780 cttgcaatta gtggtgggat tgatgaaatc ggtcgtgctg tgcaagaatt taacttgctt 840 gaagtaactg gtaagacaaa agcttatgtt tcaaaacaag ttgtcttgaa gaagaacttt 900 tctgctgacg ttctaaaaaa cgctcaagac aaaggggttt tagtggcgac attggccggt 960 gacgtaatgg atccagcaca gttcagtact ttaaaacctg ctgaaagtgt aacattagtt 1020 ggtcaaaaag acgccgttag tgaagtccaa agccaattag gtcgtctccg tgctgctgag 1080 aatattatta actattcatg gtttgcactt gggattgctt tgagtgctgc ccttgggata 1140 gttggaacta aagttagtgg tgtgccaatc gccttaggtg gtgggactgc tagtttaatc 1200 gtcggtttag tacaaagtat ttaccgtgat aaacatgctc atatggacac gattcctgat 1260 agtttattgg aattcttcca aagtattggt ttgaacttat ttatcgctac ggttggttta 1320 tcagctgcta agacatttat tagcgctatc caatcaatgg gaatctctgt attattaatt 1380 ggtgcagtaa tttctatctt gccacatatc attactttcg taatttgtta ctatttaatg 1440 aaaatggaac ccatctcaat tattggggca caaactggtg ctgatacatt gtcagctgct 1500 ttgaatgatg tctcagaacg tgttggttct gatgctagcc cattctttgc cgctgcagtt 1560 gcacctgcat atgctattgg taatattttc ttaaccttaa tgggaccaat ctttatcgtg 1620 ttacttagct aa 1632 <210> 5 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Designated is a mutation primer for introducing an Nco I site at t he initiation codon site of an aspartate decarboxylase gene on plasmid p AspS. <400> 5 aaaggtggga gaaccatgga atcattag 28 <210> 6 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Designated is a mutation primer for introducing an Nco I site at t he initiation codon site of an aspartate decarboxylase gene on plasmid p AspS. <400> 6 ctaatgattc catggttctc ccaccttt
２８

【００５５】

【配列表フリーテキスト】配列番号５：プラスミドｐＡ
ｓｐＳ上のアスパラギン酸脱炭酸酵素遺伝子の開始コドン部位にNco Iサイトを導入するための変異用プライマーを示す。 配列番号６：プラスミドpAspS上のアスパラギン酸脱炭酸酵素遺伝子の開始コドン部位にNco Iサイトを導入するための変異用プライマーを示す。

【図面の簡単な説明】

【図１】細胞内のATPの経時的変化を示す図である。 Asp
(Asp+)は、XL-1 Blue Kanr(pTrAspD/T)細胞に基質アスパラギン酸を添加した場合を、Asp(Asp-)は、XL-1 Blue
Kanr(pTrAspD/T)細胞に基質アスパラギン酸を添加しない場合を、Vec(Asp+)は、XL-1 Blue Kanr(pTrcA99)細胞に基質アスパラギン酸を添加した場合を、Vec(Asp-)
は、XL-1 Blue Kanr(pTrcA99)細胞に基質アスパラギン酸を添加しない場合をそれぞれ示す。

【図２】アスパラギン酸からアラニンへの変換を示す図である。 Asp(Test)は、XL-1 Blue Kanr(pTrAspD/T)細胞に基質アスパラギン酸を添加した場合のアスパラギン酸減少量を、AlaT(Test)は、XL-1 Blue Kanr(pTrAspD/T)
細胞に基質アスパラギン酸を添加した場合のアラニン生成量を、Asp(Vec)は、XL-1 Blue Kanr(pTrc99A)細胞に基質アスパラギン酸を添加した場合のアスパラギン酸減少量を、Ala(Vec)は、XL-1 Blue Kanr(pTrc99A)細胞に基質アスパラギン酸を添加した場合のアラニン生成量をそれぞれ示す。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl. ⁷識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ｃ１２Ｎ 5/10 Ｃ１２Ｎ 9/88 9/88 Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｃ Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｃ１２Ｎ 5/00 Ａ Ｆターム(参考） 4B024 AA03 AA05 BA07 CA04 DA06 EA04 GA11 HA01 4B050 CC03 DD02 LL02 LL05 4B064 AG01 CA02 CA19 CC24 DA01 DA20 4B065 AA01Y AA26X AB01 BA02 CA27 4H045 AA10 BA10 CA11 DA89 EA01 EA50 FA74