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一种rhIL-10重组载体构建及其蛋白提纯的方法

阅读:465发布:2021-04-09

专利汇可以提供一种rhIL-10重组载体构建及其蛋白提纯的方法专利检索,专利查询,专利分析的服务。并且一种hIL‑10重组载体,采用IMPACT系统表达,其融合蛋白标签为6个组 氨 酸(6×His)的重组载体,如重组载体的质粒图谱所示;重组载体的构建、表达及鉴定方法步骤包括:1)rh‑IL10基因的扩增;2)重组载体的构建、表达及其鉴定;rh‑IL10融合蛋白的纯化方法步骤为:1)融合蛋白his‑intein‑IL10‑RGD的粗提;2)包涵体洗涤;3)包涵体溶解;4)融合蛋白his‑intein‑IL10‑RGD的纯化;5)融合蛋白his‑intein‑IL10‑RGD的复性及自切割;6)IL10‑RGD纯化;增加了hIL‑10在体内的靶向性,赋予了蛋白具有抗 肿瘤 以及 机体 免疫功能的活性,更为重要的是其在 伤口愈合 过程中能够与新生血管内皮细胞特异靶向结合,从而 预防 抑制瘢痕 纤维 化的形成。,下面是一种rhIL-10重组载体构建及其蛋白提纯的方法专利的具体信息内容。

1.一种hIL-10重组载体,其特征在于,采用IMPACT系统表达,其融合蛋白标签为6个组酸的重组载体,如重组载体的质粒图谱图1所示;
所述的一种hIL-10重组载体的构建、表达及鉴定方法包括以下步骤:
(一)rh-IL10基因的扩增
1)总RNA的提取
正常人外周血经淋巴细胞分离液分离单个核细胞,PBS洗涤2次,重悬于10%PRMI1640培养液,加入终浓度为10g/L的ConA,置5% CO2培养箱,37℃培养48h,收集细胞,根据SigmaRNA抽提试剂盒方法,提取总RNA,-80℃保存备用;
2)RNA反转录及IL-10 cDNA的扩增
利用Takara公司反转录试剂盒,按照说明进行RT-PCR反应:第一步去除基因组DNA,5×gDNA Eraser Buffer 2μl,gDNA Eraser 1μl,Total RNA 500ng,Rnase Free dH2O加至10μl,42℃温育2min;第二步反转录,分别加PrimeScript RT Enzyme Mix I 1μl,RTPrimer Mix1μl,5×PrimeScript Buffer 24μl,第一步反应液10μl,Rnase Free dH2O加至20μl,37℃温育30min,85℃反应3min后得到cDNA;
(二)重组载体的构建、表达及其鉴定
1)pTWIN1-IL10表达载体的构建
按大肠杆菌惯用密码子设计RGD基因序列、引物及相应的酶切位点,合成如下2条引物F1、R1;
RGD导向肽氨基酸序列如下:H2N-Cys Asp Cys Lys Gly Asp Cys Phe Cys-COOH;
RGD基因序列:5′tgt gat tgc cgt ggt gat tgt ttc tgt 3′;
F1:5′GCTCTTCAGCCCAGGCCAGGGCACCCAGTCTGAGAACAG3′BspQI
R1:5′CTGCAGTCAACAGAAACAATCACCACGGCAATCACAGTTTCGTATCTTCATTGTC3′Pstl以F1、R1为引物,cDNA为模板,随之按95℃ 10s预变性,95℃ 30s,55℃ 30s,72℃ 
1min,30个循环后72℃进行延伸5min,得到PCR产物,产物及pTWIN1载体分别经BspQ I/Pstl双酶切,回收目的片段进行连接,连接产物转化DH5α,挑取单克隆,抽提质粒,进行酶切和测序鉴定,得到pTWIN1-IL10-RGD表达载体;
2)pTWIN1-his-IL10表达载体的构建
带有his标签his-IL10-RGD扩增引物:
F2:5′CGCAACATATGCATCATCATCATCATCATAACAACGGTAACAACGGTCTCG3′Ndel/6xhisR2:5′AACTGCAGTCAACAGAAACAATCACCACG3′Pstl
以F2、R2为引物,pTWIN1-IL10-RGD为模板,随之按95℃ 10s预变性,95℃ 30s,60℃ 
30s,72℃ 1.2min,30个循环后72℃进行延伸5min,得到PCR产物,产物及pTWIN1-IL10-RGD载体分别经Ndel/Pstl双酶切,回收目的片段进行连接,连接产物转化Rosetta,挑取单克隆,抽提质粒,酶切鉴定,进一步经测序鉴定,构建成pTWIN1-his-IL10-RGD表达载体的工程菌;
3)rhIL-10重组蛋白在大肠杆菌中的表达
上述工程菌pTWIN1-his-IL10-RGD/Rosetta接种于含氨苄青霉素的LB培养基中,37℃震荡培养过夜,次日以1%的接种量接种到含有氨苄青霉素和氯霉素发酵培养基中,继续在
37℃震荡培养至对数生长中期,培养液光密度OD600为0.6时,加入1mM IPTG继续培养5hr诱导表达,离心收集菌体;
4)rhIL-10蛋白表达的检测及鉴定
将诱导表达的菌体培养物离心,收集菌体,采用12%的SDS-PAGE电泳分析表达产物,IPTG诱导与未诱导样相比,在分子量相应处有一条明显的深染新生蛋白带,与预计融合蛋白的分子量大小相符;将蛋白从凝胶电转移至PVDF膜上,常规Western blot分析,ECL发光,可见一明显显色带,分子量一致,未诱导菌株,标准蛋白及表达菌中其它条带无阳性反应;
rh-IL10融合蛋白的纯化方法,包括以下步骤:
1)融合蛋白his-intein-IL10-RGD的粗提
取诱导表达的菌体20g,用200ml裂解液:10mM Tris-Cl,pH8.5;1mM EDTA,pH8.0,磁搅拌器充分搅拌15min后,加入200μl的50μg/ml溶菌酶,充分搅拌15min,4℃静置1hr,取样
50μl,12000rpm离心5min,上清中加入2×loading buffer混匀,沉淀中加入50μl ddH2O重悬,加入2xloading buffer混匀;煮5min,12000rpm离心5min,经SDS-PAGE检测发现表达的融合蛋白存在于沉淀中,说明诱导表达的重组蛋白是以包涵体形式存在的;
2)包涵体洗涤
第一,加入0.1%单位为w/v的脱胆酸钠DOC,继续加入1mM MgCl2,加入2.5μg/ml DNA酶Dnase l,磁力搅拌器充分搅拌20min,取样50μl后静置10min,4℃离心,12000rpm/min,离心20min,弃上清;
第二,加入200ml裂解液,0.5%单位为w/v的脱氧胆酸钠DOC进行洗涤,磁力搅拌器搅拌
15min,取样50μl后静置10min,4℃离心,12000rpm/min,离心20min,弃上清;
第三,加入200ml裂解液,0.5%单位为v/v Triton X-100,磁力搅拌器搅拌15min,取样
50μl后静置10min,4℃离心,12000rpm/min,离心20min,弃上清;
第四,重复上一步操作;
3)包涵体溶解
第一,400ml溶解液溶解包涵体,磁力搅拌器搅拌1.5hr,4℃静置过夜;其中,溶解液为
0.1M Tris-Cl,pH 10.0,0.1M NaCl,8M尿素,10mM 2-巯基乙醇
第二,将上述溶解液12000rpm离心20min,收集上清;
第三,将上清装入透析袋,用pH8.0溶解液不含β-ME透析24-36hr,换液2-3次,离心收集上清;
4)融合蛋白his-intein-IL10-RGD的纯化
取GE公司镍柱基质NI Sepharose Fast Flow装柱,柱体积5.4×15cm,用pH8.0溶解液不含β-ME平衡,上样后分别用含0.01、0.02、0.05、0.1、0.2、0.3M咪唑pH8.0溶解液线性梯度洗脱,收集各个峰样品,SDS-PAGE鉴定;
5)融合蛋白his-intein-IL10-RGD的复性及自切割
于4℃时,在复性缓冲液的逐渐稀释下缓慢复性,在pH6.0缓冲液中融合蛋白his-intein-IL10-RGD发生自切割,透析至pH8.0缓冲液中;SDS-PAGE跑胶鉴定;
6)IL10-RGD纯化
0.1M pH为8.0的Tris-ClpH8.0,0.1M NaCl缓冲液平衡柱,上样后缓冲液平衡柱后用含
0.01、0.02、0.15、0.25M咪唑线性洗脱,收集各个峰样品,浓缩后SDS-PAGE鉴定;染结果证明样品纯度达95%以上,即为rhIL-10-RGD。

说明书全文

一种rhIL-10重组载体构建及其蛋白提纯的方法

技术领域

[0001] 本发明属于基因工程及蛋白纯化技术领域,具体涉及一种rhIL-10重组载体构建及其蛋白提纯的方法。

背景技术

[0002] 在体外将目的基因与载体结合成一具有自我复制能的重组体,继而通过转化大肠杆菌,筛选出含有目的基因的转化子细菌,再进行扩增、提取获得大量同一DNA分子拷贝,即重组克隆或表达载体的构建。构建完毕的质粒可进行酶切及测序鉴定,得到与目的基因相符且没有突变的重组载体,将其转化大肠杆菌感受态进行诱导表达。蛋白诱导表达后进行分离纯化,鉴于rhIL-10在非融合系统中表达量低或不表达,因此后期采用融合系统进行诱导表达,并成功创新性的利用了IMPACT表达系统,分离纯化得到rhIL-10。
[0003] 白细胞介素10(IL10)是由多种细胞产生并作用于多种细胞的免疫调节细胞因子,其功能包括免疫抑制和免疫促进两方面,可调节多种免疫细胞的分化和增殖,同时也具有调节免疫刺激的特性。
[0004] RGD多肽(CDCRGDCFC,9肽)能够特异性结合在成体中相对缺乏的αvβ3、αvβ5整合素,此两种整合素在血管发生中会选择性上调升高,因此,RGD是新生血管内皮细胞特异性识别并结合的多肽序列。将新生血管内皮特异性结合的RGD导向肽与IL-10融合表达,可以降低用药剂量及治疗成本,减用药带来的毒副作用;同时在体内能够使IL-10药物定向作用于血管内皮细胞而发挥药理作用。

发明内容

[0005] 为克服上述现有技术的不足,本发明的目的在于提供一种rhIL-10重组载体构建及其蛋白提纯的方法,建立了适宜重组蛋白rhIL-10的表达载体,并利用此表达载体进行目的蛋白的纯化,检测其具有生物活性;该重组蛋白增加了hIL-10在体内的靶向性,赋予了蛋白具有抗肿瘤以及机体免疫功能的活性,更为重要的是其在伤口愈合过程中能够与新生血管内皮细胞特异靶向结合,从而预防抑制瘢痕纤维化的形成。
[0006] 为实现上述目的,本发明采用的技术方案为:一种hIL-10重组载体,其特征在于,采用IMPACT系统表达,其融合蛋白标签为6个组酸(6×His)的重组载体,如重组载体的质粒图谱所示。
[0007] 一种hIL-10重组载体的构建、表达及鉴定方法,包括以下步骤:
[0008] (一)rh-IL10基因的扩增
[0009] 1)总RNA的提取
[0010] 正常人外周血经淋巴细胞分离液分离单个核细胞,PBS洗涤2次,重悬于10%PRMI1640培养液,加入终浓度为10g/L的ConA,置5%CO2培养箱,37℃培养48h,收集细胞,根据Sigma RNA抽提试剂盒方法,提取总RNA,-80℃保存备用;
[0011] 2)RNA反转录及IL-10 cDNA的扩增
[0012] 利用Takara公司反转录试剂盒,按照说明进行RT-PCR反应:第一步去除基因组DNA,5×gDNA Eraser Buffer 2μl,gDNA Eraser 1μl,Total RNA 500ng,Rnase Free dH2O加至10μl,42℃温育2min;第二步反转录,分别加入PrimeScript RT Enzyme Mix I 1μl,RT Primer Mix1μl,5×PrimeScript Buffer 24μl,第一步反应液10μl,Rnase Free dH2O加至20μl,37℃温育30min,85℃反应3min后得到cDNA。
[0013] (二)重组载体的构建、表达及其鉴定
[0014] 1)pTWIN1-IL10表达载体的构建
[0015] 按大肠杆菌惯用密码子设计RGD基因序列、引物及相应的酶切位点,合成如下2条引物F1、R1;
[0016] RGD导向肽氨基酸序列如下:H2N-Cys Asp Cys Lys Gly Asp Cys Phe Cys-COOH;
[0017] RGD基因序列:5’tgt gat tgc cgt ggt gat tgt ttc tgt 3’;
[0018] F1:5′GCTCTTCAGCCCAGGCCAGGGCACCCAGTCTGAGAACAG3′BspQI
[0019] R1:5′CTGCAGTCAACAGAAACAATCACCACGGCAATCACAGTTTCGTATCTTCATTGTC3′PstI[0020] 以F1、R1为引物,cDNA为模板,随之按95℃10s预变性,95℃30s,55℃30s,72℃1min,30个循环后72℃进行延伸5min,得到PCR产物,产物及pTWIN1载体分别经BspQ I/Pst I双酶切,回收目的片段进行连接,连接产物转化DH5α,挑取单克隆,抽提质粒,进行酶切和测序鉴定,得到pTWIN1-IL10-RGD表达载体;
[0021] 2)pTWIN1-his-IL10表达载体的构建
[0022] 带有his标签his-IL10-RGD扩增引物:
[0023] F2:5’CGCAACATATGCATCATCATCATCATCATAACAACGGTAACAACGGTCTCG3’NdeI/6×his[0024] R2:5’AACTGCAGTCAACAGAAACAATCACCACG 3’PstI
[0025] 以F2、R2为引物,pTWIN1-IL10-RGD为模板,随之按95℃10s预变性,95℃30s,60℃30s,72℃1.2min,30个循环后72℃进行延伸5min,得到PCR产物,产物及pTWIN1-IL10-RGD载体分别经NdeI/PstI双酶切,回收目的片段进行连接,连接产物转化Rosetta,挑取单克隆,抽提质粒,酶切鉴定,进一步经测序鉴定,构建成pTWIN1-his-IL10-RGD表达载体的工程菌;
[0026] 3)rhIL-10重组蛋白在大肠杆菌中的表达
[0027] 上述工程菌pTWIN1-his-IL10-RGD/Rosetta接种于含氨苄青霉素的LB培养基中,37℃震荡培养过夜,次日以1%(v/v)的接种量接种到含有氨苄青霉素和氯霉素发酵培养基中,继续在37℃震荡培养至对数生长中期,培养液光密度OD600为0.6时,加入1mM IPTG继续培养5hr诱导表达,离心收集菌体;
[0028] 4)rhIL-10蛋白表达的检测及鉴定
[0029] 将诱导表达的菌体培养物离心,收集菌体,采用12%的SDS-PAGE电泳分析表达产物,IPTG诱导与未诱导样相比,在分子量相应处有一条明显的深染新生蛋白带,与预计融合蛋白的分子量大小相符。将蛋白从凝胶电转移至PVDF膜上,常规Western blot分析,ECL发光,可见一明显显色带,分子量一致,未诱导菌株,标准蛋白及表达菌中其它条带无阳性反应。
[0030] rh-IL10融合蛋白的纯化方法,包括以下步骤:
[0031] 1)融合蛋白his-intein-IL10-RGD的粗提
[0032] 取诱导表达的菌体20g,用200ml裂解液(10mM Tris-Cl,pH8.5;1mM EDTA,pH 8.0),磁力搅拌器充分搅拌15min后,加入200μl溶菌酶(50μg/ml),充分搅拌15min,4℃静置
1hr,取样50μl,12000rpm离心5min,上清中加入2×loadingbuffer混匀,沉淀中加入50μl ddH2O重悬,加入2×loading buffer混匀。煮5min,12000rpm离心5min,经SDS-PAGE检测发现表达的融合蛋白存在于沉淀中,说明诱导表达的重组蛋白是以包涵体形式存在的;
[0033] 2)包涵体洗涤
[0034] 第一步,加入0.1%(w/v)脱胆酸钠(DOC),继续加入1mM MgCl2,加入2.5μg/ml DNA酶(Dnase I),磁力搅拌器充分搅拌20min,取样50μl后静置10min,4℃离心,12000rpm/min,离心20min,弃上清;
[0035] 第二步,加入200ml裂解液,0.5%DOC(w/v)进行洗涤,磁力搅拌器搅拌15min,取样50μl后静置10min,4℃离心,12000rpm/min,离心20min,弃上清;
[0036] 第三步,加入200ml裂解液,0.5%Triton X-100(v/v),磁力搅拌器搅拌15min,取样50μl后静置10min,4℃离心,12000rpm/min,离心20min,弃上清;
[0037] 第四步,重复上一步操作;
[0038] 3)包涵体溶解
[0039] 第一步,400ml溶解液(0.1M Tris-Cl(pH 10.0),0.1M NaCl,8M尿素,10mM 2-巯基乙醇(β-ME))溶解包涵体,磁力搅拌器搅拌1.5hr,4℃静置过夜;
[0040] 第二步,将上述溶解液12000rpm离心20min,收集上清;
[0041] 第三步,将上清装入透析袋,用pH8.0溶解液不含β-ME透析24-36hr,换液2-3次,离心收集上清;
[0042] 4)融合蛋白his-intein-IL10-RGD的纯化
[0043] 取GE公司镍柱基质NI Sepharose Fast Flow装柱,柱体积5.4×15cm,用pH8.0溶解液不含β-ME平衡,上样后分别用含0.01、0.02、0.05、0.1、0.2、0.3M咪唑pH8.0溶解液线性梯度洗脱,收集各个峰样品,SDS-PAGE鉴定;
[0044] 5)融合蛋白his-intein-IL10-RGD的复性及自切割
[0045] 于4℃时,在复性缓冲液的逐渐稀释下缓慢复性,在pH6.0缓冲液中融合蛋白his-intein-IL10-RGD发生自切割,透析至pH8.0缓冲液中。SDS-PAGE跑胶鉴定;
[0046] 6)IL10-RGD纯化
[0047] 0.1M Tris-Cl(pH 8.0),0.1M NaCl缓冲液平衡柱,上样后缓冲液平衡柱后用含0.01、0.02、0.15、0.25M咪唑线性洗脱,收集各个峰样品,浓缩后SDS-PAGE鉴定;染结果证明样品纯度达95%以上,即为rhIL-10-RGD。
[0048] 本发明的有益效果是:
[0049] 上述重组载体pTWIN1-his-IL10诱导表达后,在蛋白纯化过程中大大减少了纯化的难度。在前期的实验过程中,尝试很多种表达载体,表达效果都不理想,即使采用pTWIN1原始载体的特性进行纯化也没有达到纯化的目的,因此采用二次构建,即将pTWIN1-IL10载体中Intein-IL10-RGD再次PCR,而后将PCR产物与pTWIN1-IL10同时酶切,连入。诱导表达,SDS-PAGE灰度扫描鉴定目的蛋白诱导表达量45%以上,证明此表达系统的可靠性;多次纯化均得到目的蛋白,进而表明其稳定性。后期实验表明此表达纯化系统可有效重复。
[0050] 本发明通过基因工程手段将人白介素10(human interlenkin 10,hIL-10)与新生血管内皮细胞特异结合的RGD多肽在基因水平融合表达,重组形成新的蛋白(rhIL-10),并赋予了该蛋白抗肿瘤以及机体免疫功能活性。更为重要的是其在伤口愈合过程中能够与新生血管内皮细胞特异靶向结合,从而预防抑制瘢痕纤维化的形成。附图说明
[0051] 图1是本发明重组载体的质粒图谱。
[0052] 图2是本发明纯化工艺流程图

具体实施方式

[0053] 下面结合附图和具体实施例对本发明作进一步详细说明。
[0054] 实施例1:
[0055] rhIL-10重组载体的构建及在大肠杆菌中表达、纯化
[0056] (一)rh-IL10基因的扩增
[0057] 1)总RNA的提取
[0058] 正常人外周血经淋巴细胞分离液分离单个核细胞,PBS洗涤2次,重悬于10%PRMI1640培养液,加入终浓度为10g/L的ConA,置5%CO2培养箱,37℃培养48h,收集细胞。根据Sigma RNA抽提试剂盒方法,提取总RNA,-80℃保存备用;
[0059] 2)RNA反转录及IL-10 cDNA的扩增
[0060] 利用Takara公司反转录试剂盒,按照说明进行RT-PCR反应:第一步去除基因组DNA,5×gDNA Eraser Buffer 2μl,gDNA Eraser 1μl,Total RNA 500ng,Rnase Free dH2O加至10μl,42℃温育2min;第二步反转录,分别加入PrimeScript RT Enzyme Mix I 1μl,RT Primer Mix1μl,5×PrimeScript Buffer 24μl,第一步反应液10μl,Rnase Free dH2O加至20μl,37℃温育30min,85℃反应3min后得到cDNA。
[0061] (二)重组载体的构建、表达及其鉴定
[0062] 1)pTWIN1-IL10表达载体的构建
[0063] 按大肠杆菌惯用密码子设计RGD基因序列、引物及相应的酶切位点,合成如下2条引物F1、R1;
[0064] RGD导向肽氨基酸序列如下:H2N-Cys Asp Cys Lys Gly Asp Cys Phe Cys-COOH;
[0065] RGD基因序列:5’tgt gat tgc cgt ggt gat tgt ttc tgt 3’;
[0066] F1:5′GCTCTTCAGCCCAGGCCAGGGCACCCAGTCTGAGAACAG3′BspQI
[0067] R1:5′CTGCAGTCAACAGAAACAATCACCACGGCAATCACAGTTTCGTATCTTCATTGTC3′PstI[0068] 以F1、R1为引物,cDNA为模板,随之按95℃10s预变性,95℃30s,55℃30s,72℃1min,30个循环后72℃进行延伸5min,得到PCR产物,产物及pTWIN1载体分别经BspQ I/Pst I双酶切,回收目的片段进行连接,连接产物转化DH5α,挑取单克隆,抽提质粒,进行酶切和测序鉴定,得到pTWIN1-IL10-RGD表达载体。
[0069] 2)pTWIN1-his-IL10表达载体的构建
[0070] 带有his标签his-IL10-RGD扩增引物:
[0071] F2:5’CGCAACATATGCATCATCATCATCATCATAACAACGGTAACAACGGTCTCG3’NdeI/6×his[0072] R2:5’AACTGCAGTCAACAGAAACAATCACCACG 3’PstI
[0073] 以F2、R2为引物,pTWIN1-IL10-RGD为模板,随之按95℃10s预变性,95℃30s,60℃30s,72℃1.2min,30个循环后72℃进行延伸5min,得到PCR产物,产物及pTWIN1-IL10-RGD载体分别经NdeI/PstI双酶切,回收目的片段进行连接,连接产物转化Rosetta,挑取单克隆,抽提质粒,酶切鉴定,进一步经测序鉴定,构建成pTWIN1-his-IL10-RGD表达载体的工程菌;
[0074] 3)rhIL-10重组蛋白在大肠杆菌中的表达
[0075] 上述工程菌pTWIN1-his-IL10-RGD/Rosetta接种于含氨苄青霉素的LB培养基中,37℃震荡培养过夜,次日以1%的接种量接种到含有氨苄青霉素和氯霉素发酵培养基中,继续在37℃震荡培养至对数生长中期,培养液光密度OD600为0.6时,加入1mM IPTG继续培养
5hr诱导表达,离心收集菌体。
[0076] 4)rhIL-10蛋白表达的检测及鉴定
[0077] 将诱导表达的菌体培养物离心,收集菌体,采用12%的SDS-PAGE电泳分析表达产物,IPTG诱导与未诱导样相比,在分子量相应处有一条明显的深染新生蛋白带,与预计融合蛋白的分子量大小相符。将蛋白从凝胶电转移至PVDF膜上,常规Western blot分析,ECL发光,可见一明显显色带,分子量一致,未诱导菌株,标准蛋白及表达菌中其它条带无阳性反应。
[0078] (三)rh-IL10融合蛋白的纯化方法,如图2所示
[0079] 1)融合蛋白his-intein-IL10-RGD的粗提
[0080] 如图1所示,取诱导表达的菌体20g,用200ml裂解液(10mM Tris-Cl,pH8.5;1mM EDTA,pH 8.0),磁力搅拌器充分搅拌15min后,加入200μl溶菌酶(50μg/ml),充分搅拌15min,4℃静置1hr,取样50μl,12000rpm离心5min,上清中加入2×loading buffer混匀,沉淀中加入50μl ddH2O重悬,加入2×loading buffer混匀。废水煮5min,12000rpm离心5min,经SDS-PAGE检测发现表达的融合蛋白存在于沉淀中,说明诱导表达的重组蛋白是以包涵体形式存在的;
[0081] 2)包涵体洗涤
[0082] 第一步,加入0.1%(w/v)脱氧胆酸钠(DOC),继续加入1mM MgCl2,加入2.5μg/ml DNA酶(Dnase I),磁力搅拌器充分搅拌20min,取样50μl后静置10min,4℃离心,12000rpm/min,离心20min,弃上清;
[0083] 第二步,加入200ml裂解液,0.5%DOC(w/v)进行洗涤,磁力搅拌器搅拌15min,取样50μl后静置10min,4℃离心,12000rpm/min,离心20min,弃上清;
[0084] 第三步,加入200ml裂解液,0.5%Triton X-100(v/v),磁力搅拌器搅拌15min,取样50μl后静置10min,4℃离心,12000rpm/min,离心20min,弃上清;
[0085] 第四步,重复上一步操作;
[0086] 3)包涵体溶解
[0087] 第一步,400ml溶解液(0.1M Tris-Cl(pH 10.0),0.1M NaCl,8M尿素,10mM 2-巯基乙醇(β-ME))溶解包涵体,磁力搅拌器搅拌1.5hr,4℃静置过夜;
[0088] 第二步,将上述溶解液12000rpm离心20min,收集上清;
[0089] 第三步,将上清装入透析袋,用pH8.0溶解液不含β-ME透析24-36hr,换液2-3次,离心收集上清。
[0090] 4)融合蛋白his-intein-IL10-RGD的纯化
[0091] 取GE公司镍柱基质NI Sepharose Fast Flow装柱,柱体积5.4×15cm,用pH8.0溶解液不含β-ME平衡,上样后分别用含0.01、0.02、0.05、0.1、0.2、0.3M咪唑pH8.0溶解液线性梯度洗脱,收集各个峰样品,SDS-PAGE鉴定;
[0092] 5)融合蛋白his-intein-IL10-RGD的复性及自切割
[0093] 于4℃在复性缓冲液的逐渐稀释下缓慢复性。最终在pH6.0缓冲液中融合蛋白his-intein-IL10-RGD发生自切割。透析至pH8.0缓冲液中。SDS-PAGE跑胶鉴定;
[0094] 6)IL10-RGD纯化
[0095] 0.1M Tris-Cl(pH 8.0),0.1M NaCl缓冲液平衡柱,上样后缓冲液平衡柱后用含0.01、0.02、0.15、0.25M咪唑线性洗脱,收集各个峰样品,浓缩后SDS-PAGE鉴定;
[0096] 银染结果证明样品纯度达95%以上。即为rhIL-10-RGD。
[0097] (四)rhIL-10-RGD的生物学活性测定
[0098] MC/9细胞来源于小鼠的肥大细胞,在小鼠IL-4或IL-3以及人IL-10的协同刺激下生长繁殖,具体如下:
[0099] 100μl MC/9细胞(1×105cells/ml),加入小鼠IL-4(mIL-4 200U/ml)、人IL-10(hIL-10 25U/ml)或rhIL-10-RGD 400U/ml 37℃,5%CO2培养箱培养72hr,cell counting kit(CCK-8)检测细胞增殖情况,mIL-4、hIL-10、rhIL-10-RGD与对照组比较差异均无显著意义(P>0.05),而mIL4和hIL10、mIL4和rhIL10两组分别不同程度刺激MC/9细胞增殖,与对照组相比较差异均有显著意义(p<0.05)。因此,Rosetta表达包涵体复性的rhIL-10-RGD具有生物学活性。包涵体复性rhIL-10-RGD比活性为5×103U/mg。
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