本发明涉及从全血或体液中除去成分的改进。更具体地，本发明涉 及一种方法，其中能够使血液或体液经过刚性并整合的分离基质而不会 被其排阻。

炎性过程，如脓毒症，是导致人类发病率和死亡率的主要原因。据 估计，每年仅在美国就发生400000～500000例脓毒症，导致100000～ 175000人死亡。在德国，已有报道显示在加强监护病房内患者的脓毒 症发生率已高达19％。脓毒症也已成为加强监护病房内非外伤性疾病患 者的主要致死原因。尽管在过去的几十年中对严重感染的治疗已取得较 大进展，但脓毒症的发病率和致死率仍持续上升。

根据感染生物体的类型将脓毒症分为三个主要类型。革兰阴性的脓 毒症最为常见。这些感染的大多数是由大肠杆菌、肺炎克雷伯杆菌和绿 脓假单胞菌引起的。革兰阳性病原体，如葡萄球菌和链球菌，是导致脓 毒症的第二位主要的因素。第三位主要的类型包括真菌。真菌性感染占 脓毒症病例相对小的百分比，但其能导致高死亡率。

脓毒症中已被很好确定的机制涉及革兰阴性菌的毒性成分，即脂多 糖细胞壁结构(LPS，内毒素)，其由脂肪酸基、磷酸基和糖链组成。

已经鉴定了针对内毒素的某些宿主反应，如局部产生的细胞因子的 释放。然而，在强烈刺激的情况下，其从外周血溢出并产生潜在有害效 应，如诱导器官功能障碍。

感染性休克的关键性介质是由单核细胞和巨噬细胞释放的肿瘤坏 死因子(TNF-α)、白介素1(IL-1)和白介素17(IL-17)。它们协 同作用产生能导致循环崩溃和多器官衰竭的生理学变化的级联反应。高 浓度的TNF-α确实可以模拟脓毒症的症状和结局。

正常情况下，内毒素被保持在肠腔中。例如，心肺转流术期间内脏 缺血或氧化障碍(dysoxia)的存在导致粘膜屏障瓦解以及内毒素从肠 腔至门脉循环的易位(即内毒素从肠至循环系统的转运)。

多种类型的抗生素被广泛用于预防和治疗感染。然而，在不同的细 菌种类中已经发展出了对很多常用抗生素的抗生素抗性。这对于医院驻 留菌丛是尤为确切，医院中生物体处于持续选择压力下从而发展出抗 性。此外，在医院中高密度的潜在感染患者和医务人员-至-医务人员和 医务人员-至-患者的接触范围均有利于抗生素耐药生物体的播散。所使 用的抗生素对施药者来说是最经济，最安全和简便的，而其可能不具有 抑制特定感染的足够广的抗菌谱。由于抗生素能导致变态反应、与其它 要药物交叉作用和导致对主要器官(例如肝，肾)的直接损害，而具有 不同程度的毒性。很多抗生素还改变了正常肠内菌丛，这会导致腹泻和 营养吸收不良。

已知某些抗生素能够中和内毒素的作用，如多粘菌素B。该抗生素 结合内毒素的脂质A部分并中和其活性。由于其毒性，故多粘菌素未能 常规使用。其只能被给予处于持续监护且肾功能的监测下的患者。

此外，为了克服抗细菌成分的主动免疫接种的某些固有局限，已经 将多种技术用于制备内毒素结合抗体。通过用细菌免疫人类已经制备了 大量抗体。为了发展治疗性抗体的更稳固的制品，已经开发了数目众多 的LPS-反应性单克隆抗体。不幸的是，临床研究并未得出有益结果。然 而，应注意到这些试验是在脓毒症症状开始后对人体实施的。已得到广 泛确信的是抗内毒素抗体治疗，在脓毒症后实施的，可产生较少有益作 用，因为这些抗体不能逆转由内毒素启动的炎性级联反应。

在JP 06022633中，描述了抗脂质抗体的吸附剂，其包括固定在水 -不溶性多孔材料上的具有阴离子官能团的化合物。该多孔材料可以是 琼脂糖，纤维素，葡聚糖，聚丙烯酰胺，玻璃，硅胶，或苯乙烯-二乙 烯基苯共聚物所制备的刚性聚合物，且将该多孔材料作为分离颗粒床填 充在分离装置中。

在从血液中除去成分的尝试中，制备了不同的吸附材料。WO 01/23413中公开了包含固定在固相支持介质上的配体的内毒素清除吸 附剂。优选的支持介质是珠子的形式。当填充在分离装置中时，固相支 持介质的多孔性足以允许血细胞在珠子间通过。

在WO 00/62836中，吸附材料具有适于从血液中除去β-2微球蛋 白的大小和结构。该文献中的吸附材料可以是具有被修饰以便阻止蛋白 质和血小板吸附的珠子和孔的表面的大孔合成聚合物。然而，聚合物的 独立球形珠在载荷约为500g时会被机械性破坏，所述载荷在例如用珠 子填充柱时产生。所述载荷导致超过柱的显著压降。

为了减少压降，EP 464872中制备了吸附剂，其包括具有排阻极限 为106～109道尔顿的水-不溶性多孔刚性凝胶颗粒。凝胶床被用于在体 外循环治疗中从血液或血浆中选择性除去脂蛋白。

而且，在WO 01/23413中，清除内毒素的多孔支持材料是珠子，其 可被填充至容器中，所述珠子具有当填充至柱和滤床时足以提供珠子间 必需空间的大小。所述多孔支持材料还可以是微孔过滤空心纤维或平板 膜以便将压降最小化。

在EP 424698中描述了用于清除生物大分子的吸附剂，其包含粒度 为50～150微米和排阻极限至少为105道尔顿的多孔球形颗粒载体。将 多粘菌素B偶联至所述颗粒，随后将颗粒填充至用于从全血中体外除去 内毒素的系统中的套筒(cartridge)。

在这些用于从血液中体外除去毒性成分的传统系统中，首先用液体 填充容器或套筒然后导入吸附性多孔珠。在US 6,408,894中公开了一 种方法，其提供了珠子的更均匀分布和更致密填塞。该方法包括将液体 和珠子的混合物以液体从混合物中挤出和从容器中挤出的方式强行填 至容器中。

因此，血细胞的除去有利于清除存在于血浆中的化合物如上述，例 如在WO 00/62836或WO 01/23413中所述。然而，所述技术包括两个分 离步骤，所述两个步骤均可以促成由于生物不相容性而产生的不利细胞 活化的增高风险。

本发明的目的是提供一种从全血或体液中选择性结合和分离至少 一种成分的新方法，由此消除上述与炎性进程相关的问题。

另一目的是提供这样一种方法，由此可对全血实施选择性结合和分 离而无需将血液分离为血浆和血细胞。

本发明更进一步的目的是提供这样一种方法，其不是大小依赖性 的，即血液成分不通过排阻法进行分离。

本发明更进一步的目的还在于提供这样一种方法，由此可在分离装 置中获得高流速而不会产生随时间的显著压降。

而更进一步的目的是提供这样一种方法，即使在高流速下也不需要 将血液置于分离装置中的剪力下而能保持低管压力以便避免损伤血管。

这些目标通过具有权利要求1的特征的本发明得以实现。本发明的 其它优势将从权利要求21和从属权利要求中显而易见地得出。

根据本发明，提供了从全血或体液中选择性结合和分离至少一种成 分的方法。能使血液或体液经过刚性并整合的分离基质而不会被其排 阻，所述基质具有孔径为5微米～500微米的多孔结构以及0.5cm2～ 10m2的活性表面，其能够结合一种或几种成分。

在本发明优选的实施方案中基质还包括至少一种通过多孔结构的 被覆和/或表面修饰的方法而引入的官能团。这导致所获活性表面，单 独或与其自身的非官能化区联合，能够结合全血或体液的至少一种成 分。要除去的成分可以是天然的以及非天然的，即与成分结合的特异性 配体，如抗体。

此外，官能团，通过多孔结构表面的直接或间接选择性转化获得的， 已被进一步用于配体的固定。然而，多孔结构的官能团的使用可按本发 明的方法进行。

孔径以及骨骼样多孔结构的表面已被适用于进行全血纯化的本发 明的分离基质中。然而，根据本发明的方法还可用于从其它体液以及水 溶液中除去成分。本发明的一个重要方面是在分离步骤中既不会有任何 成分也不会有任何溶剂从基质排阻。

根据本发明，刚性并整合的基质应具有0.5cm2～10m2的可用面积， 而基质结构的密度在实施本发明方法中是非限制性的。

关于这一点，术语“刚性”是指基质为非挠性的，不能被弯曲或变 形，但能抵抗至少0.5巴的压力。术语“整合的”是指具有高表面积的 基质是一个整体。

本发明方法中基质的多孔结构由金属，无机氧化物，碳，玻璃，陶 瓷，合成聚合物，和/或天然聚合物，或其混合物制成。具有明确孔径 和高表面积的多孔固体金属结构可通过使用制备均一大小的孔的严格 控制的烧结过程来制备。

不同的聚合物已经制备成具有多孔结构、具有所需孔径以及对于基 质的高表面积的经模塑的或挤出的多孔材料。它们还被发泡制备。例如， 从异氰酸盐和多种其它有机化合物制备的聚氨基甲酸酯具有活性氢原 子，其已经用于制备聚加成反应产物。该活性氢可来自双功能性或多功 能性化合物，如多元醇、多胺。与水的反应可产生能用于特定配体共价 固定的伯胺。

已使用了广泛类型的金属和合金，如不锈钢、镍、钛、莫内尔合金、 铬镍铁合金、哈斯特洛伊合金和其它特殊金属材料。高表面积无机氧化 物，尤其是氧化铝和氧化锆，其已用制备具有确定孔结构的陶瓷材料的 相同技术进行使用。而且，可购买具有适宜孔径的所述陶瓷以及热压结 的玻璃。

还使用了其它天然刚性材料，如无定形硅，例如沸石，和火山岩。

天然材料及其杂化物(可用作本发明方法中的基质材料)是多糖， 如纤维素，和其它聚合糖类材料。其它适宜的天然聚合材料是聚氨基酸， 还可以是包括合成氨基酸、聚乳酸、聚乙醇酸及其与乳酸的共聚物的那 些。

关于这一点术语杂化物包括所述天然材料的衍生物，例如纤维素双 乙酸盐，其优选是多糖衍生物。

用于本发明中所使用基质的适宜的合成聚合物是聚烯烃，如聚乙 烯、聚丙烯、聚丁烯、聚甲基戊烯和乙烯乙酸乙烯共聚物；乙烯聚合物， 如聚乙烯醇、聚乙烯缩醛和聚乙烯吡咯酮；含氟聚合物、如聚四氟乙烯、 氟化乙烯-丙烯共聚物、聚氯氟乙烯、聚氟乙烯和聚偏1，1-二氟乙烯； 聚丙烯酸酯、如聚甲基丙烯酸甲酯、氰基丙烯酸酯、聚丙烯腈、和聚甲 基丙烯酸酯；聚酰胺，如聚丙烯酰胺；聚酰亚胺，如聚乙烯亚胺；聚苯 乙烯及其共聚物，如聚苯乙烯和丙烯腈-丁二烯-苯乙烯聚合物；硅橡胶； 多元酯或聚醚；聚碳酸酯；聚氨基甲酸酯；聚-磺酸酯；聚乙二醇；聚 环氧烷如聚环氧乙烷、聚环氧丙烷；及其共聚物或杂化物。

在优选的实施方案中，将至少一种官能团引入刚性并整合的分离基 质的多孔结构上。官能团可以是不同类型的，即阴离子类型、阳离子类 型或非离子性类型。多孔结构的官能团已用于共价结合物质如肽/蛋白 质和胆汁酸(例如脱氧胆酸)，抗体及其片段以及其它生物分子和具 有选择性结合内毒素和/或促炎症介质的物质。

表面修饰，即间接方式的表面官能化，可通过电沉积，电蒸发，等 离子体化学沉积，从离子等离子体流的沉积，或化学气相沉积(例如等 离子体聚合，等离子体增强的表面聚合体沉积)的方法实施。表面修饰 方法本身是已知的且可见于N.Inagaki，1996，Technomic Publishing， Lancaster，USA“Plasma surface modification and plasma polymerization”。已经通过这些方法处理不同的三维基质结构，实现 了活性表面非常均质的修饰。

丙烯酸性或烯丙基性双键的双官能单体的和极性基团如OH、NH2、 CN和COOH的聚合已经用于制备具有高密度官能团的等离子体聚合物。 例如，无机和有机表面的表面官能化已经在烯丙基化合物，如丙烯胺的 等离子体环境中实施。

在NH3、O2或CO2等离子体环境中的有机聚合表面也是可能的，所述 等离子体环境或者产生官能团＝NH、-NH2、＝CN、-OH、或者-COOH。所使 用气体的其它实例是本领域众所周知的。

等离子体化学过程也已与经典的化学合成联合，而显著增强了表面 修饰对聚合物的选择性。一种方法是在共存等离子体官能团的化学联合 之后即应用特定等离子体气体表面官能化。

引入官能团的另一方式是通过直接官能化的方法，即用聚合材料被 覆表面。关于这一点已经将合成或天然聚合物被覆在高表面金属、无机 氧化物、碳、玻璃、陶瓷，以及其它适宜的合成聚合物，和/或天然聚 合物，或其混合物上。

很多上述聚合物，尤其是那些无官能团的聚合物，如聚乙烯、聚丙 烯、聚四氟乙烯等，需要进一步的处理以便改变其表面特性。由此，聚 合物表面的等离子体或电晕处理，如上述，将产生非常独特的官能团， 象羟基、羰基、羧基、氨基和亚氨基等，其可共价附着于表面。

所述被覆还可以通过含有官能团的聚合物质的附着和吸附的方式 而实施。所述物质的实例是聚赖氨酸、聚精氨酸、和聚乙烯亚胺。

通过例如使用等离子体技术，可在多孔表面上获得聚乙烯亚胺样物 质。当分离基质用于根据本发明的方法中从全血或体液中选择性结合和 分离至少一种成分时，蛋白质性血液成分的亲水区和疏水区可与处理的 表面发生相互作用以便除去所要除去的成分。在官能化后，当用于选择 性结合和分离的基质表面包含聚烯烃，例如聚乙烯或聚丙烯时，氨基的 正电荷也可用于静电相互作用而疏水区用于疏水作用。将该过程用在本 发明方法中从而选择性结合例如脂多糖的不同区域。

聚合物和金属，具有例如反应性羟基，也可通过硅烷化而被官能化。

由此，已经将多种不同的官能团共价偶联于高表面多孔基质结构。 在直接和/或间接官能化后，多孔结构可具有亲水区以及疏水区，其可 与不同的血液成分相互作用。由此，在制备用在根据本发明的方法中的 表面时，使用了兴趣物质的特性。

优选地，活性表面的官能团是巯基、羧化物、胺、醛、酮、羟基、 卤素、肼类和活性氢。

在另一优选的实施方案中，配体以共价的方式与高表面多孔结构的 至少一种官能团偶联。关于这一点，配体是具有对要从全血或体液中除 去的成分高亲和力的物质。由此，所述配体用于增强吸附特性和结合效 能。

配体可以是蛋白质，优选是重组蛋白质、肽、抗体或其片段、糖类 例如多糖、激素、抗氧化剂、糖蛋白、脂蛋白、脂质、脂溶性维生素例 如维生素E、胆汁酸、活性染料、尿囊素、尿酸、或多粘菌素，或其组 合。

适宜的胆汁酸是脱氧胆酸，其是内源性疏水性物质。所述胆汁酸可 或借助间隔臂与官能团直接偶联，或借助大分子偶联，然后按根据本发 明的方法用于从血液、体液和水溶液中除去内毒素。

关于这一点，间隔臂是能够将配体连接于多孔结构表面的分子，大 或小。

例如，如果在本发明方法中分离基质的多孔结构包括具有附加氨基 的聚烯烃，该基团可含有与其偶联的白蛋白和依次与该大分子偶联的至 少一种胆汁酸部分。

由此，本发明还涉及固定在支持物上的胆汁酸部分用于从包含相同 内容的水溶液中去除成分的新用途。优选地，胆汁酸部分是脱氧胆酸部 分。

由此，固定胆汁酸部分的适宜的固体支持物是具有孔径为5微米～ 500微米，优选70微米～170微米，以及活性表面为0.5cm2～10m2的 多孔结构的刚性并整合分离基质。

本发明方法中的基质的配体还优选是白蛋白或用重组方法制备的 白蛋白，其可用于替代血清白蛋白、多粘菌素B(即疏水性结构上的 带电荷的基团)或脱氧胆酸。

由此，配体还可以以根据本发明的方法中的间隔臂而发挥作用。例 如，其还可首先将人重组蛋白质或另一大分子(例如透明质酸)共价附 着于多孔结构，其能允许随后的特异性针对要被除去成分的配体的结 合。

如必须，交联臂可在至少一种官能团和配体间以共价方式偶联。关 于这一点，交联臂是将配体共价结合于支持性多孔结构的元件，当将配 体连接在多孔结构自身的远侧时，该元件是间隔臂。所述分子间隔臂是 本领域已知的。将其引入以便通过提供对配体更好的可用性从而增加对 要从全血或体液中结合和分离的成分的亲和力。通过引入这些分子间隔 臂还能增加多孔基质结构表面的生物相容性。

交联臂/间隔臂可单独包括零长度交联臂或与介入性交联臂组合， 获得的最终复合物通过将结构加入交联物质的化学物质的特性而结合 在一起。这些介入性交联臂可以是同双官能性(例如二醛)、异双官能 性(例如氨基酸)或三官能性交联类型。

间隔臂的主要目的是增加所使用的特定配体的生物利用度。

间隔臂可以是例如硅烷、二异氰酸酯、乙醇酸酯、聚乙二醇、琥珀 酰亚胺试剂、二肼、己二酸、二氨、氨基酸、多或寡氨基酸、聚氨基酸、 肽、或蛋白质。优选地，蛋白质是人重组蛋白质。

交联臂的官能团被设计为与氨基(Lys，Arg)，与巯基(Cys)， 或与羧基(Asp，Glu)反应，以便例证少数实例。

关于反应基团化学这一点，可参照Bioconjugate Techniques，Greg T Hermanson，Academic Press，USA 1996。

由此，本发明方法中的活性多孔基质表面能够单独或与多孔结构的 可用表面的非官能化区联合除去例如内毒素。活性表面还可用作共价固 定化学试剂，如生物分子象氨基酸，多肽和抗体的工具以便选择性增强 所述特定成分的消除。

分离基质，意在从全血或体液中选择性除去至少一种成分，可用具 有依赖于预期应用的特定孔径和/或特定孔径范围的多孔结构制备。优 选地，该多孔结构应允许血细胞通过。由此，特定类型的血细胞也可通 过本发明方法而从全血中除去。所述细胞为存在疾患的细胞或具有特定 表面受体的细胞，例如活化的吞噬细胞。

用于特殊用途的金属结构可以是磁性的。磁性基质可以例如通过被 覆热压结磁体和聚合物，例如聚乙烯而获得。然后实施细胞的有效去除 而使得抗体，具有磁性葡聚糖铁标记，附着于血液中的特定细胞。

孔径应为5微米～500微米，优选70微米～170微米，最优选80 微米～100微米，因此可保持高流速而不会发生细胞性损伤或细胞性排 阻。由此，采用根据本发明的方法实施的分离不基于成分的任何大小分 布。事实上，全血或体液的所有成分均可通过本发明方法进行清除。

在除去一个或多个原发毒性效应物，即内毒素之后，可除去进一步 的继发毒性效应物。继发效应物可以是细胞因子(例如TNF-α)，白介 素(例如I1-1)，活性氧和氮根，等。

当实施根据本发明的方法时，一种或几种分离基质被保护在罩内， 所述罩可具有根据应用而不同的形状和可变化的和/或不同的入口和出 口。然后可将所述装置用于内毒素清除和/或细胞因子清除和/或细胞因 子中和。这可以通过将血液或其它体液经过装置，体内、并行或体外应 用的，而得以实现，而不会发生液体被其中的刚性并整合的分离基质排 阻。多孔结构的活性表面，其上的官能团和/或特异性配体然后选择性 地从液体中结合和分离至少一种成分。该装置还适用于从水溶液中除去 内毒素。

本发明方法的重要特征是可以提供给感染性休克的所有方面，即原 发以及继发毒性效应物可通过本发明方法而被除去。

关于实施根据本发明的方法可以参照图1。装置1包含罩2，将装 置的罩(或套筒)整合至闭式循环中，其中全血或体液通过泵的方式进 行循环。在罩2中，排列至少一种分离基质5a，5b，...，每种分离基 质被预期能从全血或体液中除去一种成分。罩2具有入口3和出口4， 其位置并不重要只要在分离基质和罩中能获得足够的流量即可。优选 地，将泵置于入口3的上游。

以这种方式，可获得能够保持5ml/小时～6000ml/分钟的流速而 无显著压降的装置。当体外应用时，即使在非常高的流速下仍能获得从 泵至管不超过300mmHg的管压力。

刚性的整合的分离基质可被制成用于本发明方法的不同的形状。例 如，其可被设计为盘、杆、筒、环、球、管、空心管、平板或其它模塑 的形状。

因为每个基质中的流量依赖于其孔隙率，故可控制血液或体液中的 成分与活性表面的接触时间。此外，通过改变孔隙率和分离装置中各分 离基质的构型可在分离装置中产生所需流量梯度。

图2和图3中显示了装置的不同图式实施方式，其可在实施根据本 发明的方法时使用。箭头指示独立的分离基质和其罩内的血液或体液 流，大箭头表示具有比小箭头更高的流速。在不同构型的这些实例中， 分离基质可具有相同或不同孔隙率，具有或不具有相同或不同类型的官 能团或配体，以便从血液或体液中除去一种或几种成分。

分离基质优选与罩(每个均具有入口3和出口4)结合以便确保无 液体或其中的成分被阻止进入基质或基质，即被其排阻。在图2(a)和 (b)中，给出罩2内一个分离基质5的实例，该基质具有不同的构型。 图2(c)和(d)中显示了罩2内两个分离基质5a，5b的实例。在图2 (c)的装置中，在分离基质5a的外周的不可透过性被覆6，如实用的 皮，确保应用于该装置的所有材料将经过该整个基质。在图2(d)的装 置中，另一方面，部分应用的材料在分离基质5a中的停留时间将短于 在分离基质5b中的停留时间，反之亦然。

图3中每个装置包括若干分离基质5a-5g。图3中(a)隔断壁7 确保流动通过所有基质。分离基质可相对其纵向而旁侧或横向放置，如 图3(b)和(c)分别所示。图3中(d)装置包括不同大小的分离基 质。

总之，本发明方法可与体内、并行或体外使用的或独立的装置进行 使用，由此所述装置能够降低循环内毒素和可能的有害的前炎性介质， 尤其是TNF-α，IL-1和IL-17，优选在血液中。其还可能从其它水溶 液中选择性除去内毒素。所述成分被认为通过附着的方式而结合于刚性 并整合的分离基质的活性表面。

实施例

参照下述精心选择以便涵盖本发明的实施例进一步描述和例证本 发明。因此，下述实施例不应被理解为在任何形式上限制本发明。

表面修饰

实施例1.

对于孔隙率为350微米以及活性表面为10cm2的多孔聚乙烯 (Porex Technologies，Germany)基质的表面，通过使用O2以等离子 体增强的化学气相沉积法(Plasma Science，USA，Type PS 0350 Plasma Surface Treatment System)进行修饰。

通过染料试验测定所获基质的多孔结构表面上羟基的形成，其亲水 性得以证实。

实施例2.

对于孔隙率为100微米以及活性表面为20cm2的多孔聚乙烯 (Porex Technologies，Germany)基质的表面，通过使用CO2以等离子 体增强的化学气相沉积法(Plasma Science，USA，Type PS 0350 Plasma Surface Treatment System)进行修饰。

所获基质的多孔结构表面上羟基的形成和量通过转化为异羟肟酸 而进行测定。关于这一点，所有异羟肟酸与三氯化铁在酸溶液中呈现红 色或紫色，如Feigel等；Microchemie 15：18，1934中所述。

实施例3.

对于孔隙率为170微米以及活性表面为0.04m2的多孔聚乙烯 (Porex Technologies，Germany)基质的表面，通过使用丙烯胺以等 离子体聚合法(Plasma Science，USA，Type PS 0350 Plasma Surface Treatment System)进行修饰。

所获基质的多孔结构表面上伯胺的量通过磺酸三硝基甲苯(TNBS) 测定法进行测定。

实施例4.

对于孔隙率为70微米以及活性表面为0.26m2的多孔聚乙烯 (Porex Technologies，Germany)基质的表面，通过使用丙烯酸以等 离子体聚合法(Plasma Science，USA，Type PS 0350 Plasma Surface Treatment System)进行修饰。

所获基质的多孔结构表面上羟基的量按实施例2中所述进行测定。

实施例5.

对于孔隙率为5微米以及活性表面为0.9m2的多孔聚乙烯(Porex Technologies，Germany)基质的表面，通过使用NH3以等离子体聚合法 (Plasma Science，USA，Type PS 0350 Plasma Surface Treatment System)进行修饰。

所获基质的多孔结构表面上伯胺的量按实施例3中所述进行测定。

实施例6.

对于孔隙率为10微米以及活性表面为100cm2的多孔聚四氟乙烯， PTFE(W.L.Gore & Associates Inc.，USA)基质的表面，通过使用 NH3以等离子体增强的化学气相沉积法(Plasma Science，USA，Type PS 0350 Plasma Surface Treatment System)进行修饰。

所获基质的多孔结构表面上伯胺的量按实施例3中所述进行测定。

实施例7.

对于孔隙率为10微米以及活性表面为300cm2的多孔，聚苯乙烯 (Dow Chemical，USA)基质的表面，通过使用CO2以等离子体增强的化 学气相沉积法(Plasma Science，USA，Type PS 0350 Plasma Surface Treatment System)进行修饰。

所获基质的多孔结构表面上羟基的量按实施例2中所述进行测定。

实施例8.

对于孔隙率为80微米以及活性表面为100cm2的多孔聚氨基甲酸 酯(Polymers Unlimited，Sweden)基质的表面，在95％乙醇中通过 2％Aldehydic Alkoxy Silane溶液，Art No.(PSX 1050，United Chemical Technologies Inc.，USA)的方法进行修饰。用乙酸将溶液的pH调整 至pH 5.5，然后用溶液灌注经过基质，将其在室温下温育过夜并最后用 0.9％生理盐水洗涤。

所获基质的醛官能度通过用对苯二胺由过氧化氢的氧化的催化加 速使用进行评价，对苯二胺在酸溶液中由过氧化氢的氧化的催化加速作 用进行评价已知为Bandrowski氏碱。

实施例9.

对于孔隙率为200微米以及活性表面为0.5m2的多孔聚硅氧烷 (Nusil，France)基质的表面，在95％乙醇中通过2％胺-硅烷溶液(Art No.0750，United Chemical Technologies Inc.，USA)的方法进行修 饰。将溶液灌注经过基质，将其在室温下温育过夜并最后用0.9％生 理盐水洗涤。

所获基质的多孔结构表面上伯胺的量按实施例3中所述进行测定。

通过共价结合方法的被覆

实施例10.

将聚赖氨酸(200mg)溶于10ml的50mM碳酸钠溶液中然后将孔 隙率为100微米的多孔聚碳酸酯(MicroPore Plastics，USA)基质浸 入溶液中并保持于4℃24小时以便获得聚赖氨酸和聚碳酸酯基质间的 共价结合。最后用过量蒸馏水洗涤多孔基质。

所获基质的多孔结构表面上伯胺的量按实施例3中所述进行测定。

实施例11.

根据实施例4所获的多孔聚乙烯基质用1-环己基-3-(2-吗啉代乙 基)碳二亚胺甲基-对-甲苯磺酸盐(WCCM)(Aldrich)的水溶液以5ml/ 分钟的流速在闭路中于室温下灌注6小时。然后其用水冲洗并最后加入 聚乙烯亚胺溶液(Sigma)(10mg/ml，pH 7.0)然后将基质温育过夜。

所获基质的多孔结构表面上伯胺的量按实施例3中所述进行测定。

实施例12.

根据实施例3所获的多孔聚乙烯基质在0.2M磷酸盐缓冲液，pH 7.5中通过使用1.0％戊二醛而进行结合，然后以1ml/分钟的流速于 室温灌注6小时。然后在与透明质酸溶液(2mg/ml)于室温温育16小 时前用缓冲液洗涤基质。最后冲洗掉过量的透明质酸。

所获基质的多孔结构表面上透明质酸含量采用阿辛蓝(Sigma)进 行证实和测定。

通过附着方法的被覆

实施例13.

具有70微米孔隙率和0.18m2的活性表面的多孔聚乙烯(Porex Technologies，Germany)基质用2mg/ml透明质酸溶液(BioHyos， Sweden，12.106Da)pH 3.3(用0.1M HCl调整的)以1ml/分钟的流 速在闭路中于室温下灌注16小时。

所获基质的多孔结构表面上透明质酸含量按实施例12进行确定证 实。

实施例14.

将具有70微米孔隙率和7.0m2活性表面的多孔聚乙烯(Porex Technologies，Germany)基质置于玻璃管中。用在350ml水中且以 0.1M HCl调整至pH 3.3的0.13％聚赖氨酸(Sigma)溶液填充所述 具有多孔基质的管。然后将聚赖氨酸溶液用其滤过基质以＜5ml/分钟的 流速在室温下经过管再循环16小时。最后用反渗水冲洗多孔基质。

所获基质的多孔结构表面上伯胺的量按实施例3进行测定。

实施例15.

将具有70微米孔隙率和3.4m2的活性表面的多孔聚乙烯(Porex Technologies，Germany)基质置于玻璃管中。用在350ml反渗水中 且以0.1M HCl调整至pH 3.3的0.2％Recombumin(重组人血清白 蛋白，Hoechst-Pharma，USA)溶液填充所述具有多孔基质的管。

然后将Recombumin溶液用其滤过基质通过使用泵以＜5ml/分钟 的流速在室温下经过管再循环16小时。最后用反渗水冲洗多孔基质。

所获基质的多孔结构表面上表面蛋白质的含量通过使用考马斯亮 蓝(BioRad，USA)进行测定。

实施例16.

根据实施例4所获的多孔聚乙烯基质用聚乙烯亚胺(Sigma)溶液， 10mg/ml，以5ml/分钟的流速在闭路中灌注过夜。然后，用水冲洗多 孔基质。

所获基质的多孔结构表面上伯胺的量按实施例3中所述进行测定。

配体的直接结合

实施例17.

通过使用WCCM水溶液将根据实施例5所获多孔聚乙烯基质与脱氧 胆酸盐(DOC)结合。将300ml 40％二-甲酸甲酯(DMF)(Sigma)在 水中的溶液(包含1mmol去氧胆酸钠)搅拌加入多孔聚碳酸酯，同时 用0.3M HCl将pH调整至pH 4.8。然后在10分钟的时间内，加入在 DMF∶水(1∶1.8)中6mM WCCM的溶液。通过加入0.3M HCl将悬液在 pH 4.8保持3小时。

使用胆汁酸试剂盒(Sigma)测定所获基质的多孔结构表面上的DOC 含量。

实施例18.

根据实施例3所获的多孔聚乙烯基质通过使用12％的戊二醛的 0.15M磷酸盐缓冲液(pH 7.0)于室温24小时而进行结合。用0.15M 磷酸盐缓冲液洗涤基质然后以1mg/ml的浓度加入抗CD14抗体(DAKO， Denmark)然后8℃温育24小时。随后实施氰基硼氢化钠还原以便制备 稳定的仲胺键。

通过在多孔基质温育前和后的抗体缓冲溶液的UV光谱学方法而间 接地测定所获基质的多孔结构表面上的抗体含量。

实施例19.

用0.15M磷酸盐缓冲液洗涤根据实施例8所获的多孔聚乙烯基质 然后以1mg/ml的浓度加入重组IL-1受体(Kineret，Amgen，USA)然 后8℃温育24小时。随后实施氰基硼氢化钠还原以便制备稳定的仲胺键。

通过在多孔基质温育前和后的IL-1受体缓冲溶液的UV光谱学方 法而间接地测定所获基质的多孔结构表面上的IL-1受体含量。

实施例20.

根据实施例5所获的多孔聚乙烯基质通过使用1.0％戊二醛和0.2 M磷酸盐缓冲液(pH 7.5)而进行结合。将基质用该溶液温育3小时。 在用磷酸盐缓冲液洗涤后，将基质温育在硫酸多粘菌素B(Sigma)溶 液(1mg/ml)中，经再循环过夜。最后用0.1M磷酸盐缓冲液(pH 7.4) 洗涤基质。

实施例21.

根据实施例2所获的多孔聚乙烯基质与0.1M 2-(N-吗啉代)甲磺酸 (MES)缓冲液(Sigma)(pH 4.8)中浓度为5mg/ml重组TNF-α受体(Enbrel， Wyeth，UK)结合。然后加入30mg/ml WCCM的水溶液，然后将基质于8℃ 温育过夜。最后用0.1M磷酸盐缓冲液(pH 7.4)洗涤基质。

通过在多孔基质温育前和后的TNF-α受体缓冲溶液的UV光谱学 方法而间接地测定所获基质的多孔结构表面上的TNF-α受体含量。

实施例22.

根据实施例3所获的多孔聚乙烯基质与抗-人TNF-α抗体(Sigma) 通过使用于0.2M磷酸盐缓冲液(pH 7.5)中1.0％的戊二醛进行结合。 将基质与TNF-α抗体缓冲溶液温育3小时。在用磷酸盐缓冲液洗涤多孔 基质后，磷酸盐缓冲液中的抗人TNF-α抗体(1mg/ml)被加入，然 后以1ml/分钟的流速经再循环于室温温育6小时。最后用0.1M磷酸 盐缓冲液(pH 7.4)洗涤基质。

通过在多孔基质温育前和后的TNF-α抗体缓冲溶液的UV光谱学 方法而间接地测定所获基质的多孔结构表面上的TNF-α抗体含量。

实施例23.

根据实施例5所获的多孔聚乙烯基质与0.1M MES缓冲液(pH 4.8) 浓度为2mg/ml人杀菌性透过性增加的蛋白质(BPI)(Wieslab，Sweden) 进行结合。将WCCM水溶液以15mg/ml的浓度加入该基质，然后将基质 于8℃温育过夜。最后用0.1M磷酸盐缓冲液(pH 7.4)洗涤基质。

通过在多孔基质温育前和后的BPI缓冲溶液的UV光谱学方法而 间接地测定所获基质的多孔结构表面上的BPI含量。

实施例24.

根据实施例15所获的多孔聚乙烯基质在浓度为1mg/ml的DOC的 0.1M MES缓冲液(pH 4.8)的溶液中进行温育。然后加入WCCM的水 溶液，然后将基质于8℃温育过夜。最后用0.1M磷酸盐缓冲液(pH 7.4) 洗涤基质。

所获基质的多孔结构表面上的DOC含量如实施例17进行测定。

使用间隔臂的配体结合

实施例25.

根据实施例3所获的多孔聚乙烯基质使用1.2％戊二醛的0.2M磷酸 盐缓冲液(pH 7.0)于室温下活化24小时。用缓冲液洗涤基质，然后在 1，6-二氨基己烷(DAH)(Sigma)的50mg/ml 0.2M磷酸盐缓冲液(pH 7.0)温育24小时。此后，在溶液中加入10mg/ml氰基硼氢化钠(Sigma)。 用0.1M磷酸盐缓冲液洗涤多孔基质，然后温育于DOC(1mg/ml)的0.1 M MES缓冲液(pH 4.8)溶液中。然后加入WCCM的水溶液，然后将基质 于8℃温育过夜。最后用0.1M磷酸盐缓冲液，pH 7.4洗涤基质。

所获基质的多孔结构表面上的DOC含量如实施例17进行测定。

实施例26.

根据实施例5所获的多孔聚乙烯基质用1.2％戊二醛的0.2M磷酸 盐缓冲液(pH 7.0)于室温活化24小时。

用缓冲液洗涤基质，然后用浓度为10mg/ml的已二酸二酰肼 (Aldrich)的0.2M磷酸盐缓冲液(pH 7.4)温育24小时。然后在 溶液中加入10mg/ml氰基硼氢化钠(Sigma)。

用0.1M磷酸盐缓冲液洗涤多孔基质，然后用浓度为1mg/ml的 DOC的0.1M MES缓冲液(pH 4.8)溶液进行温育。然后加入WCCM的 水溶液，然后将基质于8℃温育过夜。最后用0.1M磷酸盐缓冲液(pH 7.4)洗涤基质。

所获基质的多孔结构表面上的DOC含量如实施例17进行测定。

实施例27.

通过使用WCCM水溶液将根据实施例10所获基质与DOC结合。将 300ml 40％DMF(Sigma)的水溶液(包含1mmol去氧胆酸钠)在搅 拌时加入多孔聚碳酸酯基质。用0.3M HCl将悬液的pH调整为4.8。 在10分钟的时间内加入在DMF∶水(1∶1.8)中6mM WCCM的溶液然后 通过周期性加入0.3M HCl而将悬液在pH 4.8保持3小时。然后将其 保持于室温24小时。

所获基质的多孔结构表面上的DOC含量如实施例17进行测定。

实施例28.

根据实施例14所获基质用1.2％戊二醛的0.2M磷酸盐缓冲液(pH 7.0)于室温活化10小时，然后用过量缓冲液冲洗。将浓度为10mg/ml 的聚乙烯亚胺(Sigma)的0.1M碳酸氢盐缓冲液(pH 8.0)，导入多 孔基质中，然后将基质与该溶液温育16小时。

然后用缓冲液洗涤基质并通过使用WCCM水溶液与DOC结合。将300 ml于水中的40％DMF(Sigma)溶液(包含1mmol去氧胆酸钠)经搅 拌加入多孔基质。用0.3M HCl将悬液的pH调整为4.8。在10分钟的 时间内加入6mM WCCM的DMF∶水(1∶1.8)的溶液。然后通过周期性 加入0.3M HCl而将悬液于pH 4.8保持3小时。然后将其保持在室温 24小时。

所获基质的多孔结构表面上的DOC含量如实施例17进行测定。

实施例29.

根据实施例3所获多孔聚乙烯基质用1.2％戊二醛的0.2M磷酸盐 缓冲液(pH 7.0)于室温活化24小时。然后用缓冲液洗涤基质，然后 用浓度为50mg/ml的1，6-二氨基己烷(DAH)(Sigma)的0.2M磷酸 盐缓冲液(pH 7.0)温育24小时。然后用0.1M磷酸盐缓冲液洗涤多 孔基质，并于8℃作为悬液在浓度为10mg/ml的TNF-α受体(Enbrel， Wyeth，UK)的0.1M磷酸盐缓冲液(pH 7.4)溶液中温育12小时。 然后将浓度为10mg/ml的氰基硼氢化钠溶液(Sigma)加入悬液。最 后用0.1M磷酸盐缓冲液(pH 7.4)洗涤基质。

通过在多孔基质温育前和后的TNF-α受体缓冲溶液的UV光谱学 方法而间接地测定所获基质的多孔结构表面上的TNF-α受体含量。

选择性结合和分离血液成分

通过将金血经过成形为盘且活性表面为0.02m2的基质的滤器而实 施细胞分离。

用如图4所示的检测系统实施内毒素和细胞因子的去除。容器8， 用直至2升全血或血浆填充的，与泵9相连，压力监控器10和具有直 至40个基质板的过滤装置1，即提供直至7m2的活性表面，所述基质 具有70～130微米的孔隙率。

细胞分离

实施例30.

具有100微米孔隙率的包含聚乙烯和磁性铁氧体(80％FeO，20％ BaO2，Porex Technologies，Germany)混合物的磁性多孔基质，用于 通过使用特异性标记的抗CD45+抗体(MACS Antibody Microbeads； Miltenyi Biotec，Germany)而从全血中分离白细胞。在用所述抗体磁 性标记白细胞后，将血液经过多孔基质。

自动细胞计数器实施白细胞的细胞计数，其在分离后显示出血液中 白细胞减少90％。

实施例31.

将孔隙率为200微米和活性表面为0.2m2的多孔纤维素双乙酸盐 (Tenite，Eastman Chemicals，USA)基质的表面，用于分离人吞噬性 血细胞如中性粒细胞和单核细胞。在EDTA真空容器(vacutainer)管 (B&D，UK)中收集人全血然后将血液经过多孔基质。

收集的血液中中性粒细胞和单核细胞数量分别减少50％和35％，如 通过使用Türks试剂在Bürkner腔中差异的细胞计数而在显微镜下所 确定的。

细胞因子的除去

实施例32.

根据实施例22所获基质，其已经用内毒素除去性基团，用作图4 所示检测系统中的多孔盘。

在将抗TNF-α和戊二醛的多克隆抗体固定在多孔聚合物结构上的 氨基上后研究从全血中清除TNF-α。通过将LPS加入血液而诱导TNF- α的产生，然后将活化的全血灌注装置中的固定的滤器。

全血中TNF-α的量(图5)被通过酶免疫分析法 (Enzymimmuno-assay，Milenia Biotec GmbH，Germany)而确定为前 (◆)和后(■)装置以便研究TNF-α由滤盘的摄取。如所示，可获得 TNF-α在全血中病理浓度的显著的降低。

内毒素的除去

实施例33.

根据实施例25所获的基质，即等离子体修饰的聚乙烯基质，其上 具有借助间隔臂二氨基己烷而固定在其上的DOC，其首先经由戊二醛而 偶联于基质然后通过使用碳二亚胺而偶联于脱氧胆酸。将所获基质用作 如图4所示的系统的滤器装置中的多孔盘。

按照与实施例32相似的方式实施从血浆中除去LPS。

血浆中LPS的量通过鲎阿米巴样细胞溶解物测定法(Limulus Amebocyte Lysate assay)(Endochrome-K，Charles River Laboratories Inc.USA)在经滤器装置的再循环期间以不同的时间间隔大批测定。

图6中显示了内毒素(pg/ml)的量随时间减少。在再循环2小时 后内毒素载荷从初始的75pg/ml降至检测极限15pg/ml。

实施例34.

将根据实施例3所获的基质(非固定化氨基)和实施例17(固定 化DOC)分别用作多孔盘并参照其消除LPS的能力进行比较。实施与实 施例33相似的再循环实验，差别在于将LPS溶于蒸馏水中。

按图4中所示测定LPS从水溶液中的消除，而再循环以0.22ml/ 分钟的流速流经10ml装置中的每个滤器。

下述表1中以再循环120分钟后占初始LPS浓度百分数给出来自实 施例3和实施例17的两种基质分别清除LPS的值。

表1.   实施例3   实施例17   LPS消除(％)   81   96

血浆(实施例34)和水(实施例35)间消除程度的差异可用蛋白 质，LPS和配体的竞争相互作用进行解释。

联合除去

实施例35.

将根据实施例19和实施例29所获基质分别用于TNF-α和IL-1的 联合除去。

具有不同特异性的两种基质在如图4所示的两种滤器装置的闭环试 验系统中串联连接。将容器中的全血保持在37℃，通过加入LPS而活化， 然后导入系统。从容器和滤器出口同时以不同的时间间隔进行取样以进 行细胞因子分析。

两种基质的结果均显示细胞因子TNF-α和IL-1β的浓度分别降低 了70％和55％。

下述表2总结了本发明方法用于从全血或体液中选择性结合和分 离不同成分的多适用性和可观效能。为此目的，使用不同的多孔基质作 为具有或不具有间隔臂时附着配体的支持。由此，固定方法分别用戊二 醛通过使用两种末端-NH2和用具有一个末端-NH2和一个末端-OH或 -COOH的1-乙基-3(3-二甲胺基丙胺)碳二亚胺进行实施。

还使用了经由醛或氨基官能性硅烷偶联剂而用于氨基、抗体、酶、 肽、蛋白质特异性结合的硅烷化，醛基自发地与胺、肽和蛋白质反应。

表2   多孔基质   方法   间隔臂   配体   成分   效能％   聚乙烯   -   HA   DOC   LPS   80.1   聚乙烯   -   Poly-Lys   DOC   LPS   12.8   聚乙烯   -NH2   DAH   DOC   LPS   29.6   聚乙烯   -NH2   -   DOC   LPS   12.5   聚乙烯   -NH2   DAH   多粘菌素B   LPS   16.3   聚乙烯   -NH2   DAH   精氨酸   LPS   14.3   聚乙烯   -NH2   DAH   Recombumin   LPS   18.3   聚乙烯   -NH2   -   抗-TNFαAb   TNF-α   63.2   聚乙烯   丙烯胺   PEI   DOC   LPS   33.4   聚乙烯   丙烯胺   聚赖氨酸   DOC   LPS   85.5   聚乙烯   -COOH   -   TNF-α受体   TNF-α   59.2   聚乙烯   -COOH   -   白介素-1受体   IL-1   64.0   聚乙烯   -COOH   -   血栓调节蛋白   凝血酶   70.8   聚乙烯   -COOH   -   BPI   LPS   91.2   聚乙烯   -OH   Sil.ald.   TNF-α受体   TNF-α   61.8   聚乙烯   -OH   Sil.ald.   白介素-1受体   IL-1   62.0   聚乙烯   -OH   Sil.ald.   血栓调节蛋白   凝血酶   73.7   聚乙烯   -OH   Sil.ald.   BPI   LPS   89.3   聚乙烯   HA   DAH   DOC   LPS   29.6   聚乙烯   聚赖氨酸   DAH   DOC   LPS   73.3

表2.(续)   多孔基质   方法   间隔臂   配体   成分   效能％   聚乙烯   Recombumin   -   DOC   LPS   20.8   聚乙烯   -NH2   GDA   抗CD 11b Ab   粒细胞和单核细胞   50.2   聚乙烯   -OH   Sil.ald.   抗CD 11b Ab   粒细胞和单核细胞   56.1   聚碳酸酯   -   聚赖氨酸   DOC   LPS   44.4   聚碳酸酯   -OH   Sil.ald.   TNF-α受体   TNF-α   75.9   聚碳酸酯   -COOH   -   血栓调节蛋白   凝血酶   72.0   聚氨基甲酸酯   -   DHA   DOC   LPS   30.2   聚氨基甲酸酯   -   DHA   Recombumin   LPS   18.5   聚氨基甲酸酯   -   聚赖氨酸   DOC   LPS   14.8   聚氨基甲酸酯   -   Sil.ald.   TNF-α受体   TNF-α   56.7   聚氨基甲酸酯   -   Sil.ald.   BPI   LPS   88.0   聚硅氧烷   -   Sil.ald.   TNF-α受体   TNF-α   55.3   聚硅氧烷   -   Sil.ald.   血栓调节蛋白   凝血酶   68.2   沸石   -   Sil.ald.   TNF-α受体   TNF-α   63.9   沸石   -   Sil.-NH2   DOC   LPS   48.3   沸石   -   Sil.ald.   白介素-1受体   IL-1   60.1   纤维素   CNBr   DAH   DOC   LPS   28.5   纤维素   CNBr   聚赖氨酸   DOC   LPS   39.2   PTFE   丙烯胺   DAH   TNF-α受体   TNF-α   73.0   PTFE   -COOH   -   白介素-1受体   IL-1   77.7

缩写：BPI＝杀菌透性增加的蛋白质；DAH＝1，6-二氨基-己烷； DOC＝脱氧胆酸；EDC＝1-乙基-3(3-二甲胺基丙胺)碳二亚胺；GDA＝ 戊二醛；HA＝透明质酸；IL-1＝白介素-1；PEI＝聚乙烯亚胺； Recombumin＝重组人血清白蛋白；Sil.ald.＝醛官能性硅烷偶联剂； Sil.-NH2＝氨基官能性硅烷偶联剂；TNF-α＝肿瘤坏死因子-α。

附图说明：

图1为包含分离基质的套筒的横截面的概略图，

图2a、b、c和d为包含不同构形的分离基质的套筒的横截面的概 略图；

图3a、b、c和d为包含其它不同构形的分离基质的套筒的横截面 的概略图；

图4为包含具有很多基质板的套筒的测试系统的流程线概略图；

图5全血在经套筒之前和之后的TNF-α含量的线图。

图6为内毒素含量减少的线图。

本分案申请是基于申请号为03809335.9，申请日为2003年4月4 日，发明名称为“改进的分离”的中国专利申请的分案申请。