包含丙型肝炎病毒多肽和用于引起免疫应答的Fc片段的嵌合抗原
阅读：917发布：2024-01-27
专利汇可以提供包含丙型肝炎病毒多肽和用于引起免疫应答的Fc片段的嵌合抗原专利检索，专利查询，专利分析的服务。并且本 发明 披露了嵌合 抗原 ，其包括丙型 肝炎 病毒(HCV)抗原以及用于引起抗所述抗原的免疫应答的免疫球蛋白的Fc 片段 。通过将免疫应答结构域(来自HCV核心、包膜或非结构蛋白片段的HCV抗原)和靶结合结构域(Fc片段)呈递给宿主免疫系统，来增强免疫应答。通过靶结合结构域，抗原呈递细胞内化并加工该嵌合抗原用于抗原呈递，从而引起体液和细胞免疫应答两者。，下面是包含丙型肝炎病毒多肽和用于引起免疫应答的Fc片段的嵌合抗原专利的具体信息内容。
1.一种用于引起免疫应答的嵌合抗原，所述嵌合抗原包括免疫应 答结构域和靶结合结构域，其中，所述免疫应答结构域包括丙 型肝炎(HCV)抗原，而所述靶结合结构域包括抗体片段。
2.根据权利要求1所述的嵌合抗原，其中，所述抗体片段是异源 抗体片段。
3.根据权利要求1或2所述的嵌合抗原，其中，所述嵌合抗原引 起体液免疫应答、细胞免疫应答、或体液免疫应答和细胞免疫 应答两者。
4.根据权利要求1-3中任一项所述的嵌合抗原，其中，所述嵌合 抗原引起Th1免疫应答、Th2免疫应答、或Th1免疫应答和 Th2免疫应答两者。
5.根据权利要求1-4中任一项所述的嵌合抗原，其中，所述免疫 应答是体内免疫应答。
6.根据权利要求1-5中任一项所述的嵌合抗原，其中，所述免疫 应答结构域包括一个以上的蛋白。
7.根据权利要求1-6中任一项所述的嵌合抗原，其中，所述免疫 应答结构域包括一种或多种蛋白的一个或多个免疫原部分，所 述蛋白选自由HCV核心(1-191)蛋白、HCV核心(1-177) 蛋白、HCV p7蛋白、HCV E1蛋白、HCV E2蛋白、HCV E1-E2 蛋白、HCV NS3蛋白、HCV NS4B蛋白、以及HCV NS5A蛋 白组成的组。
8.根据权利要求1-7中任一项所述的嵌合抗原，其中，所述靶结 合结构域能够结合于抗原呈递细胞(APC)。
9.根据权利要求2-8中任一项所述的嵌合抗原，其中，所述抗体 片段是Fc片段。
10.根据权利要求1-9中任一项所述的嵌合抗原，进一步包括 6xHis标签、蛋白酶切割位点、以及用于连接所述免疫应答结 构域和所述靶结合结构域的连接子中的一种或多种。
11.根据权利要求10所述的嵌合抗原，其中，所述连接子选自由 亮氨酸拉链、结合于抗生物素蛋白的生物素、以及共价肽键组 成的组。
12.根据权利要求1-11中任一项所述的嵌合抗原，其中，所述嵌 合抗原被糖基化。
13.根据权利要求1-12中任一项所述的嵌合抗原，其中，所述嵌 合抗原被甘露糖糖基化。
14.根据权利要求1-13中任一项所述的嵌合抗原，其中，所述抗 体片段包括免疫球蛋白重链片段。
15.根据权利要求14所述的嵌合抗原，其中，所述免疫球蛋白重 链片段包括铰链区。
16.根据权利要求14所述的嵌合抗原，其中，所述免疫球蛋白重 链片段包括一个抗体片段的全部或部分，所述抗体片段选自由 CH1、铰链区、CH2结构域、以及CH3结构域组成的组。
17.一种将抗原递送至抗原呈递细胞的方法，所述方法包括将根据 权利要求1-16中任一项所述的嵌合抗原给予所述抗原呈递细 包。
18.根据权利要求17所述的方法，其中，所述抗原呈递细胞是树 突细胞。
19.一种活化抗原呈递细胞的方法，所述方法包括使所述抗原呈递 细胞与根据权利要求1-16中任一项所述的嵌合抗原接触。
20.根据权利要求19所述的方法，其中，所述接触发生在体外。
21.根据权利要求19所述的方法，其中，所述接触发生在体内。
22.根据权利要求21所述的方法，其中，所述接触发生在人体内。
23.根据权利要求21或22所述的方法，其中，所述方法包括将包 括根据权利要求1所述的嵌合抗原的组合物给予受治疗者，并 且其中所述抗原呈递细胞存在于受治疗者体内。
24.根据权利要求20-23中任一项所述的方法，其中，所述接触引 起体液免疫应答、细胞免疫应答、或体液免疫应答和细胞免疫 应答两者。
25.根据权利要求24所述的方法，其中，所述细胞免疫应答是Th1 应答、Th2应答、以及CTL应答中的一种或多种。
26.根据权利要求23-25中任一项所述的方法，其中，所述受治疗 者患有或可能患有免疫-可治疗的疾病。
27.根据权利要求26所述的方法，其中，所述免疫-可治疗的疾病 是急性感染。
28.根据权利要求26所述的方法，其中，所述免疫-可治疗的疾病 是慢性感染。
29.根据权利要求28所述的方法，其中，所述慢性感染是慢性丙 型肝炎病毒感染。
30.根据权利要求26-29中任一项所述的方法，其中，所述免疫- 可治疗的疾病是丙型肝炎病毒感染，并且所述免疫应答结构域 包括一种或多种蛋白的一个或多个免疫原部分，所述蛋白选自 由HCV核心(1-191)蛋白、HCV核心(1-177)蛋白、HCV E1蛋白、HCV E2蛋白、HCV E1-E2蛋白、HCV P7蛋白、 HCV NS3蛋白、HCV NS4B蛋白、以及HCV NS5A蛋白组成 的组。
31.根据权利要求23-30中任一项所述的方法，其中，所述受治疗 者经接种以抵抗病毒感染。
32.根据权利要求23-31中任一项所述的方法，其中，所述受治疗 者被预防性接种以抵抗病毒感染。
33.根据权利要求31或32所述的方法，其中，所述受治疗者被治 疗性接种以抵抗现存病毒感染。
34.一种生成嵌合抗原的方法，包括：
(a)提供微生物或细胞，所述微生物或细胞包括编码嵌 合抗原的多核苷酸；以及
(b)在所述嵌合抗原被表达的条件下，培养所述微生物 或细胞。
35.根据权利要求34所述的方法，其中，所述微生物或细胞是真 核微生物或细胞。
36.根据权利要求34或35所述的方法，其中，所述细胞是酵母细 胞、植物细胞或昆虫细胞。
37.根据权利要求34-36中任一项所述的方法，其中，所述嵌合抗 原被翻译后修饰以包括糖基化。
38.根据权利要求34-37中任一项所述的方法，其中，所述嵌合抗 原被翻译后修饰以包括甘露糖糖基化。
39.一种编码嵌合抗原的多核苷酸，所述多核苷酸包括编码免疫应 答结构域的第一多核苷酸部分和编码靶结合结构域的第二多 核苷酸部分，其中，所述靶结合结构域包括抗体片段。
40.根据权利要求39所述的多核苷酸，其中，所述抗体片段是异 源抗体片段。
41.根据权利要求39-40中任一项所述的多核苷酸，其中，所述多 核苷酸包括选自由在SEQ ID NO：39以及41-51中列出的核苷 酸序列组成的组中的核苷酸序列。
42.根据权利要求39-41中任一项所述的多核苷酸，其中，所述多 核苷酸编码嵌合抗原，所述嵌合抗原与选自由在SEQ ID NO：40以及52-62中列出的氨基酸序列组成的组中的完整的氨 基酸序列至少90％相同。
43.根据权利要求39-42中任一项所述的多核苷酸，其中，所述多 核苷酸在严格的条件下选择性地与具有选自由在SEQ ID NO：39以及41-51中列出的核苷酸序列组成的组中的核苷酸序 列的多核苷酸杂交。
44.一种载体，包括根据权利要求39-43中任一项所述的多核苷 酸。
45.根据权利要求44所述的载体，其中，所述多核苷酸可操作性 地连接于转录调节元件(TRE)。
46.一种微生物或细胞，包括根据权利要求39-43中任一项所述的 多核苷酸。
47.一种制品，包括根据权利要求1-16中任一项所述的嵌合抗原 以及用于将所述嵌合抗原给予需要其的受治疗者的说明书。
48.一种药物组合物，包括根据权利要求1-16中任一项所述的嵌 合抗原以及药用赋形剂。
49.一种生成嵌合抗原的方法，包括：
(a)提供微生物或细胞，所述微生物或细胞包括编码靶结合 结构域-连接子分子的多核苷酸，其中，所述靶结合结构 域-连接子分子包括结合于连接子分子的靶结合结构域。
(b)在表达所述靶结合结构域-连接子分子的条件下，培养所 述微生物或细胞；以及
(c)在允许使所述连接子与所述免疫应答结构域结合的条件 下，使所述靶结合结构域-连接子分子与免疫应答结构域 接触，所述结合得到嵌合抗原。
技术领域
本发明涉及嵌合抗原(例如，融合蛋白)，用于靶向并活化抗 原呈递细胞(抗原提呈细胞，APC)，以引起(引发，elicit)细胞 和体液免疫应答。特别地，本发明描述了包含或使用一种或多种嵌 合抗原的组合物和方法，所述嵌合抗原包含一种或多种预选的丙型 肝炎病毒(HCV)抗原以及免疫球蛋白片段，其中所述嵌合抗原能 够结合并活化APC特别是树突细胞，其加工并执行抗原呈递以引 发(引起)细胞和体液免疫应答。
背景技术
全世界有多于1.7亿的人是慢性HCV携带者[Delwaide et al. (2000)Rev.Med.Liege 55：337-340]。目前不存在可用于HCV的预防 性或治疗性疫苗。感染途径是通过血液和其他体液，并且70％以上 的患者成为慢性病毒携带者。持续感染引起可能导致进展性肝病的 慢性活动性肝炎[Alter et al.(1999)N.Engl.J.Med.341：556-562]。目 前，用于丙型肝炎感染的唯一治疗是干扰素-I(IFN-I)和利巴韦 林(病毒唑)。然而，该治疗昂贵，具有显著副作用，并且仅在约 50％的患者选择组中有效。增强宿主免疫应答以消除慢性HCV感 染的治疗性疫苗将成为治疗该疾病的一个主要进展。
免疫系统在HCV感染的结局中起关键作用。暴露于HCV的大 多数个体均会发起对病毒的广泛强大且多抗原特异性CD4+(调节 性)和CD8+(细胞毒性)T细胞应答。这些个体仅发展成自限性 感染(self-limited infection)。然而，在某些暴露于HCV的个体中， 微弱或不可检测且局部(narrowly)免疫应答引起慢性感染。
HCV是RNA病毒的黄病毒家族的一个成员。该HCV基因组 是约9.5Kb的编码单个多聚蛋白的正义单链RNA分子，该多聚蛋 白可由宿主和病毒蛋白酶催化而切割成单个蛋白(individual protein)，以产生3种结构蛋白(核心、E1、E2)、p7蛋白以及6 种非结构蛋白(NS2、NS3、NS4A、NS4B、NS5A、NS5B)[Hijikkata et al.(1991)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 88：5547-5551]，NS3蛋白是在所 述非结构蛋白的蛋白水解加工中涉及的病毒丝氨酸蛋白酶 [Bartenschlager et al.(1993)J.Virol.67：3835-3844]。
病毒逃避宿主免疫过程(immune machinery)的机制尚未清楚 地确立[Shoukry et al.(2004)Ann.Rev.Microbiol.58：391-424]。已经 证明几种HCV蛋白与免疫逃避机制有关。这些蛋白包括：NS5A， 已表明其诱导IL-8(其抑制IFN诱导的抗病毒反应)生成[Polyak at al.(2001)J.Virol.75：6095-6106]，并抑制细胞IFN-γ-诱导的PKR 蛋白激酶，从而抑制抗病毒免疫应答[Tan et al.(2001)Virol 284：1-12]；核心和NS3，已表明其抑制DC分化[Dolganiuc et al.(2003) J.Immunol.170：5615-5624]；以及核心和E1[Sarobe et al.(2002)J. Virol.77：10862-10871；以及Grakoui et al.(2003)Science 302：659-662]，已表明通过调节DC成熟而调节T细胞应答；以及 最后的缺乏记忆T细胞的辅助[Shoji et al.(1999)Virology 254： 315-323]。
免疫系统在HCV感染的结局中起关键作用。暴露于HCV的大 多数个体均会发起对病毒的广泛强大且多抗原特异性CD4+(调节 性)和CD8+(细胞毒性)T细胞应答。这些个体仅发展成自限性 感染(self-limited infection)。然而，在某些暴露于HCV的个体中， 微弱或不可检测且局部(narrowly)免疫应答引起慢性感染。
HCV是RNA病毒的黄病毒家族的一个成员。该HCV基因组 是约9.5Kb的编码单个多聚蛋白的正义单链RNA分子，该多聚蛋 白可由宿主和病毒蛋白酶催化而切割成单个蛋白(individual protein)，以产生3种结构蛋白(核心、E1、E2)、p7蛋白以及6 种非结构蛋白(NS2、NS3、NS4A、NS4B、NS5A、NS5B)[Hijikkata et al.(1991)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 88：5547-5551]，NS3蛋白是在所 述非结构蛋白的蛋白水解加工中涉及的病毒丝氨酸蛋白酶 [Bartenschlager et al.(1993)J.Virol.67：3835-3844]。
病毒逃避宿主免疫过程(immune machinery)的机制尚未清楚 地确立[Shoukry et al.(2004)Ann.Rev.Microbiol.58：391-424]。已经 证明几种HCV蛋白与免疫逃避机制有关。这些蛋白包括：NS5A， 已表明其诱导IL-8(其抑制IFN诱导的抗病毒反应)生成[Polyak at al.(2001)J.Virol.75：6095-6106]，并抑制细胞IFN-γ-诱导的PKR 蛋白激酶，从而抑制抗病毒免疫应答[Tan et al.(2001)Virol 284：1-12]；核心和NS3，已表明其抑制DC分化[Dolganiuc et al.(2003) J.Immunol.170：5615-5624]；以及核心和E1[Sarobe et al.(2002)J. Virol.77：10862-10871；以及Grakoui et al.(2003)Science 302：659-662]，已表明通过调节DC成熟而调节T细胞应答；以及 最后的缺乏记忆T细胞的辅助[Shoji et al.(1999)Virology 254： 315-323]。
发明内容
本发明涉及用于靶向并活化APC(引发免疫应答的最初步骤之 一)的组合物和方法。本发明的组合物包括一类新的分子(下文中 指定为“嵌合抗原”)，该分子包含免疫应答结构域(功能区)(IRD) 例如重组蛋白，其连接于靶结合结构域(TBD)例如抗体片段部分。 更具体地说，嵌合抗原是使病毒抗原例如丙型肝炎核心、如E1和 E2的包膜蛋白、或非结构蛋白与免疫球蛋白片段例如鼠免疫球蛋白 G Fc片段相偶联的分子。在某些具体实施方式中，抗体片段是异源 (嗜异性，xenotypic)抗体片段。
本发明的组合物和方法可用于靶向并活化APC。本发明的组合 物和方法可用于诱导抗任何与HCV有关的病毒抗原的细胞和/或体 液宿主免疫应答。本发明包括用于治疗慢性HCV感染的治疗性疫 苗以及用于预防HCV感染的预防性疫苗。
本发明的一个或多个具体实施方式包括一种或多种适合于引 起抗HCV的免疫应答的嵌合抗原。在发明的这些具体实施方式中， 将选择的HCV抗原连接于抗体的片段。得到的嵌合抗原能够靶向 并活化诸如树突细胞的APC。
本发明还包括用于克隆编码融合蛋白的DNA构建体 (construct)以及在异源表达系统中生成融合蛋白的方法。在本发 明的优选具体实施方式中，克隆和生产方法引入独特的翻译后修 饰，该修饰包括但不限于表达的融合蛋白的糖基化(例如，甘露糖 化(mannosylation))。
为了提供抗原的有效呈递(提呈)，本发明的发明人研发了一 种新型病毒抗原-鼠单克隆抗体Fc片段融合蛋白。借助于该Fc片段， 这种分子可由APC(例如，树突细胞)通过特异性受体高效识别， 加工融合蛋白，并将来自病毒抗原的肽表位与主要组织相容性复合 物(MHC)I类一起作为复合体而呈递。该加工和抗原呈递导致细 胞毒性T淋巴细胞的反应(应答)上调，由此消除病毒感染的细胞 群。此外，由于MHC II类分子的抗原呈递以及辅助T细胞的活化， 可诱导抗病毒抗原的体液反应将有助于预防和/或消除病毒感染。
该分子的嵌合性质有助于将抗原靶向于适当的抗原呈递细胞 (例如，树突细胞)，通过特异性靶向APC受体使其成为慢性感染 性疾病治疗中的独特途径(方法)。这一点可用于开发用于治疗慢 性丙型肝炎感染的治疗性疫苗。
给予这些嵌合性融合蛋白可引起宿主广泛的免疫应答，包括细 胞和体液应答两者。因此，可将它们用作治疗性疫苗以治疗对HCV 感染为免疫耐受的受治疗者。
更具体地说，本发明的特征在于一种用于引起免疫应答的嵌合 抗原，该嵌合抗原包含免疫应答结构域和靶结合结构域(目标结合 结构域)，该免疫应答结构域包含丙型肝炎(HCV)抗原，而该靶 结合结构域包含抗体片段。该抗体片段可为异源(异种型)抗体片 段。该嵌合抗原可引起体液免疫应答、细胞免疫应答，或体液免疫 应答和细胞免疫应答两者。此外，该嵌合抗原可以引起Th1免疫应 答、Th2免疫应答，或可引起Th1免疫应答和Th2免疫应答两者。 该免疫应答可以为体内(in vivo)或体外(离体，ex vivo)免疫应 答。该免疫应答结构域可以包含一个以上蛋白；例如，该免疫应答 结构域可以包含一种或多种蛋白的一个或多个免疫原部分，所述一 种或多种蛋白包括，例如HCV核心(1-191)蛋白、HCV核心(1-177) 蛋白、HCV p7蛋白、HCV E1蛋白、HCV E2蛋白、HCV E1-E2 蛋白、HCV NS3蛋白、HCV NS4B蛋白、或HCV NS5A蛋白。该 靶结合结构域能与抗原呈递细胞(APC)结合。该抗体片段可以为 Fc片段。该嵌合抗原可以进一步包括6xHis标签(tag)、蛋白酶切 割位点以及用于连接免疫应答结构域和靶结合结构域的连接子(连 接体)中的一种或多种。该连接子可以选自亮氨酸拉链、结合于抗 生物素蛋白的生物素以及共价肽键。而且，该嵌合抗原可以为糖基 化的，例如甘露糖糖基化的。该抗体片段可以包括免疫球蛋白重链 片段，而所述免疫球蛋白重链片段可以包含铰链区。此外，该免疫 球蛋白重链片段可以包含一个抗体片段的全部或部分，所述抗体片 段选自由CH1、铰链区、CH2结构域、以及CH3结构域组成的组。
本发明的另一个具体实施方式是一种将抗原递送至抗原呈递 细胞的方法，该方法包括将本文中披露的任何嵌合抗原给予抗原呈 递细胞。该抗原呈递细胞可以为树突细胞。
本发明还提供了一种活化抗原呈递细胞的方法；该方法可以涉 及使抗原呈递细胞与本文中披露的任何一种嵌合抗原相接触。该接 触可以发生在体外(离体)或体内。例如，该接触可以发生在人体 内。所述方法可以包括将包含本发明的任何嵌合抗原的组合物给予 受治疗者，而所述抗原呈递细胞存在于受治疗者体内。接触可以引 起体液免疫应答、细胞免疫应答、或可以引起体液免疫应答和细胞 免疫应答两者。该细胞免疫应答可以为Th1应答、Th2应答、以及 CTL应答中的一种或多种。受治疗者可以患有或可能患有免疫-可 治疗的疾病。免疫-可治疗的疾病可以为急性感染(例如，急性病毒 感染)或者其可以为慢性感染(例如，慢性病毒感染)。慢性感染 可以是慢性丙型肝炎病毒感染。免疫-可治疗的疾病可以是丙型肝炎 病毒感染，而免疫应答结构域可以包含一种或多种蛋白的一个或多 个抗原部分，所述一种或多种蛋白选自由HCV核心(1-191)蛋白、 HCV核心(1-177)蛋白、HCV E1蛋白、HCV E2蛋白、HCV E1-E2 蛋白、HCV p7蛋白、HCV NS3蛋白、HCV NS4B蛋白、以及HCV NS5A蛋白组成的组。利用该方法，受治疗者可接种以抵抗病毒感 染，例如预防性接种以抵抗病毒感染或治疗性接种以抵抗现有病毒 感染。
本发明的另一方面是一种生产嵌合抗原的方法。该方法可以包 括：(a)提供微生物或细胞，所述微生物或细胞包含编码嵌合抗原 的多核苷酸；以及(b)在表达嵌合抗原的条件下，培养所述微生 物或细胞。该微生物或细胞可以为真核微生物或细胞。该细胞可以 为酵母细胞、植物细胞或昆虫细胞。此外，嵌合抗原可以被翻译后 修饰以包括糖基化，例如其可以被翻译后修饰以包括甘露糖糖基 化。
本发明的又一具体实施方式是一种编码嵌合抗原的多核苷酸， 该多核苷酸包含编码免疫应答结构域的第一多核苷酸部分以及编 码靶结合结构域的第二多核苷酸部分，该靶结合结构域包含抗体片 段。该抗体片段可以为异源抗体片段。该多核苷酸可以包含，例如 选自由在SEQ ID NO：39以及41-51中列出的核苷酸序列组成的组 中的核苷酸序列。此外，该多核苷酸可以编码嵌合抗原，其至少90％ 相同于选自由在SEQ ID NO：40以及52-62中列出的氨基酸序列组 成的组中的整个氨基酸序列。该多核苷酸可以在严格的条件下选择 性地杂交于一种多核苷酸，所述一种多核苷酸具有选自由在SEQ ID NO：39以及41-51中列出的核苷酸序列组成的组中的核苷酸序列。 本发明还提供了一种包含本文中所披露的任何多核苷酸的载体，例 如，其中所述多核苷酸可操作性地连接于转录调节元件(TRE)的 载体。此外，本发明还包括一种含有本文所披露的任何多核苷酸的 微生物或细胞。
本发明的另一个具体实施方式是一种制品(产品)，该制品可 以包含本文中披露的任何嵌合抗原以及用于将所述嵌合抗原给予 需要该抗原的受治疗者的说明书。
本发明的又一个方面是一种药物组合物，该组合物包含本文中 披露的任何嵌合抗原以及药用赋形剂。
另外，本发明提供了另一种生产嵌合抗原的方法。该方法可以 包括：(a)提供微生物或细胞，所述微生物或细胞包含编码靶结合 结构域-连接子分子(linker molecule)的多核苷酸，该靶结合结构 域-连接子分子包含结合于连接子分子的靶结合结构域；(b)在表达 所述靶结合结构域-连接子分子的条件下，培养所述微生物或细胞； 以及(c)在适合于使连接子与免疫应答结构域结合的条件下，使 靶结合结构域-连接子分子与免疫应答结构域相接触，所述结合产生 嵌合抗原。所述微生物或细胞、多核苷酸、靶结合结构域、连接子 分子、以及免疫应答结构域可以为本文中所披露的任何一种。
除非另有定义，本文中所使用的所有技术和科学术语具有与如 本发明所属领域中的普通技术人员通常所理解的相同的含义。在矛 盾的情况下，则将受包括该定义的本申请文件支配。下文将描述优 选的方法和材料，尽管与本文所描述的那些相似或等同的方法和材 料也可用于实施或试验本发明。所有的出版物、专利中请、专利以 及其他本文中提到的参考资料的全部内容均结合于此作为参考。本 文中所披露的材料(物质)、方法、以及实施例仅是举例说明并且 不用于限制本发明。
根据以下的说明、附图以及权利要求，本发明的其他特征和优 点，例如用于治疗或预防免疫-可治疗的疾病的嵌合抗原，将变得显 而易见。
本发明的组合物和方法可用于靶向并活化APC。本发明的组合 物和方法可用于诱导抗任何与HCV有关的病毒抗原的细胞和/或体 液宿主免疫应答。本发明包括用于治疗慢性HCV感染的治疗性疫 苗以及用于预防HCV感染的预防性疫苗。
本发明的一个或多个具体实施方式包括一种或多种适合于引 起抗HCV的免疫应答的嵌合抗原。在发明的这些具体实施方式中， 将选择的HCV抗原连接于抗体的片段。得到的嵌合抗原能够靶向 并活化诸如树突细胞的APC。
本发明还包括用于克隆编码融合蛋白的DNA构建体 (construct)以及在异源表达系统中生成融合蛋白的方法。在本发 明的优选具体实施方式中，克隆和生产方法引入独特的翻译后修 饰，该修饰包括但不限于表达的融合蛋白的糖基化(例如，甘露糖 化(mannosylation))。
为了提供抗原的有效呈递(提呈)，本发明的发明人研发了一 种新型病毒抗原-鼠单克隆抗体Fc片段融合蛋白。借助于该Fc片段， 这种分子可由APC(例如，树突细胞)通过特异性受体高效识别， 加工融合蛋白，并将来自病毒抗原的肽表位与主要组织相容性复合 物(MHC)I类一起作为复合体而呈递。该加工和抗原呈递导致细 胞毒性T淋巴细胞的反应(应答)上调，由此消除病毒感染的细胞 群。此外，由于MHC II类分子的抗原呈递以及辅助T细胞的活化， 可诱导抗病毒抗原的体液反应将有助于预防和/或消除病毒感染。
该分子的嵌合性质有助于将抗原靶向于适当的抗原呈递细胞 (例如，树突细胞)，通过特异性靶向APC受体使其成为慢性感染 性疾病治疗中的独特途径(方法)。这一点可用于开发用于治疗慢 性丙型肝炎感染的治疗性疫苗。
给予这些嵌合性融合蛋白可引起宿主广泛的免疫应答，包括细 胞和体液应答两者。因此，可将它们用作治疗性疫苗以治疗对HCV 感染为免疫耐受的受治疗者。
更具体地说，本发明的特征在于一种用于引起免疫应答的嵌合 抗原，该嵌合抗原包含免疫应答结构域和靶结合结构域(目标结合 结构域)，该免疫应答结构域包含丙型肝炎(HCV)抗原，而该靶 结合结构域包含抗体片段。该抗体片段可为异源(异种型)抗体片 段。该嵌合抗原可引起体液免疫应答、细胞免疫应答，或体液免疫 应答和细胞免疫应答两者。此外，该嵌合抗原可以引起Th1免疫应 答、Th2免疫应答，或可引起Th1免疫应答和Th2免疫应答两者。 该免疫应答可以为体内(in vivo)或体外(离体，ex vivo)免疫应 答。该免疫应答结构域可以包含一个以上蛋白；例如，该免疫应答 结构域可以包含一种或多种蛋白的一个或多个免疫原部分，所述一 种或多种蛋白包括，例如HCV核心(1-191)蛋白、HCV核心(1-177) 蛋白、HCV p7蛋白、HCV E1蛋白、HCV E2蛋白、HCV E1-E2 蛋白、HCV NS3蛋白、HCV NS4B蛋白、或HCV NS5A蛋白。该 靶结合结构域能与抗原呈递细胞(APC)结合。该抗体片段可以为 Fc片段。该嵌合抗原可以进一步包括6xHis标签(tag)、蛋白酶切 割位点以及用于连接免疫应答结构域和靶结合结构域的连接子(连 接体)中的一种或多种。该连接子可以选自亮氨酸拉链、结合于抗 生物素蛋白的生物素以及共价肽键。而且，该嵌合抗原可以为糖基 化的，例如甘露糖糖基化的。该抗体片段可以包括免疫球蛋白重链 片段，而所述免疫球蛋白重链片段可以包含铰链区。此外，该免疫 球蛋白重链片段可以包含一个抗体片段的全部或部分，所述抗体片 段选自由CH1、铰链区、CH2结构域、以及CH3结构域组成的组。
本发明的另一个具体实施方式是一种将抗原递送至抗原呈递 细胞的方法，该方法包括将本文中披露的任何嵌合抗原给予抗原呈 递细胞。该抗原呈递细胞可以为树突细胞。
本发明还提供了一种活化抗原呈递细胞的方法；该方法可以涉 及使抗原呈递细胞与本文中披露的任何一种嵌合抗原相接触。该接 触可以发生在体外(离体)或体内。例如，该接触可以发生在人体 内。所述方法可以包括将包含本发明的任何嵌合抗原的组合物给予 受治疗者，而所述抗原呈递细胞存在于受治疗者体内。接触可以引 起体液免疫应答、细胞免疫应答、或可以引起体液免疫应答和细胞 免疫应答两者。该细胞免疫应答可以为Th1应答、Th2应答、以及 CTL应答中的一种或多种。受治疗者可以患有或可能患有免疫-可 治疗的疾病。免疫-可治疗的疾病可以为急性感染(例如，急性病毒 感染)或者其可以为慢性感染(例如，慢性病毒感染)。慢性感染 可以是慢性丙型肝炎病毒感染。免疫-可治疗的疾病可以是丙型肝炎 病毒感染，而免疫应答结构域可以包含一种或多种蛋白的一个或多 个抗原部分，所述一种或多种蛋白选自由HCV核心(1-191)蛋白、 HCV核心(1-177)蛋白、HCV E1蛋白、HCV E2蛋白、HCV E1-E2 蛋白、HCV p7蛋白、HCV NS3蛋白、HCV NS4B蛋白、以及HCV NS5A蛋白组成的组。利用该方法，受治疗者可接种以抵抗病毒感 染，例如预防性接种以抵抗病毒感染或治疗性接种以抵抗现有病毒 感染。
本发明的另一方面是一种生产嵌合抗原的方法。该方法可以包 括：(a)提供微生物或细胞，所述微生物或细胞包含编码嵌合抗原 的多核苷酸；以及(b)在表达嵌合抗原的条件下，培养所述微生 物或细胞。该微生物或细胞可以为真核微生物或细胞。该细胞可以 为酵母细胞、植物细胞或昆虫细胞。此外，嵌合抗原可以被翻译后 修饰以包括糖基化，例如其可以被翻译后修饰以包括甘露糖糖基 化。
本发明的又一具体实施方式是一种编码嵌合抗原的多核苷酸， 该多核苷酸包含编码免疫应答结构域的第一多核苷酸部分以及编 码靶结合结构域的第二多核苷酸部分，该靶结合结构域包含抗体片 段。该抗体片段可以为异源抗体片段。该多核苷酸可以包含，例如 选自由在SEQ ID NO：39以及41-51中列出的核苷酸序列组成的组 中的核苷酸序列。此外，该多核苷酸可以编码嵌合抗原，其至少90％ 相同于选自由在SEQ ID NO：40以及52-62中列出的氨基酸序列组 成的组中的整个氨基酸序列。该多核苷酸可以在严格的条件下选择 性地杂交于一种多核苷酸，所述一种多核苷酸具有选自由在SEQ ID NO：39以及41-51中列出的核苷酸序列组成的组中的核苷酸序列。 本发明还提供了一种包含本文中所披露的任何多核苷酸的载体，例 如，其中所述多核苷酸可操作性地连接于转录调节元件(TRE)的 载体。此外，本发明还包括一种含有本文所披露的任何多核苷酸的 微生物或细胞。
本发明的另一个具体实施方式是一种制品(产品)，该制品可 以包含本文中披露的任何嵌合抗原以及用于将所述嵌合抗原给予 需要该抗原的受治疗者的说明书。
本发明的又一个方面是一种药物组合物，该组合物包含本文中 披露的任何嵌合抗原以及药用赋形剂。
另外，本发明提供了另一种生产嵌合抗原的方法。该方法可以 包括：(a)提供微生物或细胞，所述微生物或细胞包含编码靶结合 结构域-连接子分子(linker molecule)的多核苷酸，该靶结合结构 域-连接子分子包含结合于连接子分子的靶结合结构域；(b)在表达 所述靶结合结构域-连接子分子的条件下，培养所述微生物或细胞； 以及(c)在适合于使连接子与免疫应答结构域结合的条件下，使 靶结合结构域-连接子分子与免疫应答结构域相接触，所述结合产生 嵌合抗原。所述微生物或细胞、多核苷酸、靶结合结构域、连接子 分子、以及免疫应答结构域可以为本文中所披露的任何一种。
除非另有定义，本文中所使用的所有技术和科学术语具有与如 本发明所属领域中的普通技术人员通常所理解的相同的含义。在矛 盾的情况下，则将受包括该定义的本申请文件支配。下文将描述优 选的方法和材料，尽管与本文所描述的那些相似或等同的方法和材 料也可用于实施或试验本发明。所有的出版物、专利中请、专利以 及其他本文中提到的参考资料的全部内容均结合于此作为参考。本 文中所披露的材料(物质)、方法、以及实施例仅是举例说明并且 不用于限制本发明。
根据以下的说明、附图以及权利要求，本发明的其他特征和优 点，例如用于治疗或预防免疫-可治疗的疾病的嵌合抗原，将变得显 而易见。
附图说明
图1是Chimigen3疫苗二聚化形式的示意图。其包含两个亚单 位(亚单元)，每个亚单位均由免疫应答结构域(IRD)和靶结合结 构域(TBD)构成。
图2A和2B分别是质粒pFastBacHTa-TBD中ORF(开放阅读 框架(可译框架))的核苷酸序列(SEQ ID NO：9)以及由该ORF 编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：10)的视图。
图3A和3B分别是质粒pFastBacHTa-NS5A-TBD中ORF的核 苷酸序列(SEQ ID NO：39)以及由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：40)的视图。图3A和图3B中的下划线和粗体位置处存在 保守自发突变(TTC(Phe)至TTT(Phe))。
在该核苷酸序列中：
核苷酸1-3：起始密码子
核苷酸13-30：6xHis表位标签(附加表位)
核苷酸91-1431：HCV NS5A
核苷酸1432-1461：连接肽
核苷酸1462-2157：TBD
核苷酸2158-2187：末端肽
核苷酸2188-2190：终止密码子
核苷酸1639-1641：TBD TTC-TTT保守突变
在该氨基酸序列中：
氨基酸5-10：6xHis表位标签
氨基酸31-477：HCV NS5A
氨基酸478-487：连接肽
氨基酸488-719：TBD
氨基酸720-729：末端肽
图4A和B分别是质粒pFastBacHTa-gp64-NS5A-TBD中ORF 的核苷酸序列(SEQ ID NO：41)以及由该ORF编码的氨基酸序列 (SEQ ID NO：52)的视图。图4A和图4B中的下划线和粗体位置 处存在人工突变(GAT(Asp)至TAT(Tyr))以及保守自发突变 (TTC(Phe)至TTT(Phe))。
在该核苷酸序列中：
核苷酸1-3：起始密码子
核苷酸1-72：gp64信号肽
核苷酸97-114：6xHis表位标签
核苷酸175-1515：HCV NS5A
核苷酸1516-1545：连接肽
核苷酸1546-2241：TBD
核苷酸2242-2271：末端肽
核苷酸2272-2274：终止密码子
核苷酸61-63：信号肽GAT至TAT人工突变
核苷酸1725：TBD TTC至TTT保守突变
在该氨基酸序列中：
氨基酸1-24：gp64分泌信号
氨基酸33-38：6xHis表位标签
氨基酸59-505：HCV NS5A
氨基酸506-515：连接肽
氨基酸516-747：TBD
氨基酸748-757：末端肽
氨基酸21：信号肽D至Y人工突变
图5A和B分别是质粒pPSC12-NS5A-TBD中ORF的核苷酸序 列(SEQ ID NO：42)以及由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：53)的视图。
图6A和B分别是质粒pFastBacHTa-gp64-NS3-TBD中ORF的 核苷酸序列(SEQ ID NO：43)以及由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：54)的视图。存在由图6A中的下划线密码子和图6B中的 氨基酸所示的两个突变。对于图6A从上游至下游以及对于图6B 从N末端至C末端，突变为：(基因)工程CGG(Arg)至GCG(Ala) 突变；以及自发CCA(Pro)至GGA(Gly)突变。
图7A和B分别是质粒pFastBacHTa NS3mut-TBD中ORF的核 苷酸序列(SEQ ID NO：44)以及由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：55)的视图。存在由图7A中的下划线密码子和图7B中的 氨基酸所示的两个突变。对于图7A从上游至下游以及对于图7B 从N末端至C末端，突变为：自发保守AGG(Arg)至CGG(Arg) 突变；以及基因工程CGG(Arg)至GCG(Ala)突变。
在核苷酸序列中：
核苷酸1-3：起始密码子
核苷酸13-30：6xHis表位标签
核苷酸91-1965：HCV NS3mut
核苷酸1966-1995：连接肽
核苷酸1996-2691：TBD
核苷酸2692-2721：末端肽
核苷酸2722-2724：终止密码子
核苷酸1462-1464：NS3mutAGG至CGG自发突变
核苷酸1474-1476：NS3mut CGG至GCG基因工程突变
在该氨基酸序列中：
氨基酸5-10：6xHis表位标签
氨基酸31-655：HCV NS3mut
氨基酸656-665：连接肽
氨基酸666-897：TBD
氨基酸898-907：末端肽
氨基酸488：NS3mut R至R自发突变
氨基酸492：NS3mut R至A基因工程突变
图8A和B分别是质粒pFastBacHTa-gp64-NS3mut-TBD中ORF 的核苷酸序列(SEQ ID NO：45)以及由该ORF编码的氨基酸序列 (SEQ ID NO：56)的视图。存在由图8A中的突出显示的密码子和 图8B中的氨基酸表示的三个突变。对于图8A从上游至下游以及对 于图8B从N末端至C末端，突变为：人工突变(GAT(ASP)至 TAT(Tyr))；自发保守AGG(Arg)至CGG(Arg)突变；以及基 因工程CGG(Arg)至GCG(Ala)突变。
在该核苷酸序列中：
核苷酸1-3：起始密码子
核苷酸1-72：gp64信号肽
核苷酸97-114：6xHis表位标签
核苷酸175-2049：HCV NS3mut
核苷酸2050-2079：连接肽
核苷酸2080-2775：TBD
核苷酸2776-2805：末端肽
核苷酸2806-2808：终止密码子
核苷酸61-63：信号肽GAT至TAT人工突变
核苷酸1546-1548：NS3mut AGG至CGG保守突变
核苷酸1558-1560：NS3mut CGG-GCG基因工程突变
在该氨基酸序列中：
氨基酸1-24：gp64分泌信号
氨基酸33-38：6xHis表位标签
氨基酸59-683：HCV NS3mut
氨基酸684-693：连接肽
氨基酸694-925：TBD
氨基酸926-935：末端肽
氨基酸21：信号肽D至Y人工突变
氨基酸520：NS3mut R至A基因工程突变
图9A和B分别是质粒pFastBacHTa-gp64 NS3-NS4B-NS5A-TBD中ORF的核苷酸序列(SEQ ID NO：46)以 及由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：57)的视图。存在由 图9A中的下划线且粗体密码子和图9B中的氨基酸表示的四个突 变。对于图9A从上游至下游以及对于图9B从N末端至C末端， 突变为：人工突变(GAT(Asp)至TAT(Tyr))；基因工程TCG(Ser) 至GCG(Ala)突变；基因工程CGG(Arg)至GCG(Ala)突变；以 及自发CCA(Pro)至GGA(Gly)突变。
图10A和B分别是质粒pFastBacHTa-gp64-NS3-NS5A-TBD中 ORF的核苷酸序列(SEQ ID NO：47)以及由该ORF编码的氨基酸 序列(SEQ ID NO：58)的视图。存在由图10A中的下划线密码子和 图10B中的氨基酸表示的四个突变。对于图10A从上游至下游以及 对于图10B从N末端至C末端，突变为：人工突变(GAT(Asp) 至TAT(Tyr))；基因工程TCG(Ser)至GCG(Ala)突变；基因 工程CGG(Arg)至GCG(Ala)突变；以及自发CCA(Pro)至GGA (Gly)突变。
在该核苷酸序列中：
核苷酸1-3：起始密码子
核苷酸1-72：gp64信号肽
核苷酸97-114：6xHis表位标签
核苷酸175-2049：HCV NS3mut
核苷酸2050-2058：连接肽
核苷酸2059-3402：HCV NS5A
核苷酸3403-3426：连接肽
核苷酸3427-4122：TBD
核苷酸4123-4152：末端肽
核苷酸4153-4155：终止密码子
核苷酸61-63：信号肽GAT至TAT人工突变
核苷酸589：NS3mut TCG至GCG基因工程突变
核苷酸1558-1559：NS3mut CGG至GCG基因工程突变
核苷酸2050-2052：NS3mut CCA至GGA自发突变
在该氨基酸序列中：
氨基酸1-24：gp64分泌信号
氨基酸33-38：6xHis表位标签
氨基酸59-683：HCV NS3
氨基酸684-686：连接肽
氨基酸687-1134：HCV NS5A
氨基酸1135-1374：TBD
氨基酸1375-1384：末端肽
氨基酸21：信号肽D至Y人工突变
氨基酸197：NS3mut S至A基因工程突变
氨基酸520：NS3mut R至A基因工程突变
氨基酸684：NS3mut P至G自发突变
图11A和B分别是质粒pFastBacHTa HCV核心(1-177)-TBD 中ORF的核苷酸序列(SEQ ID NO：48)以及由该ORF编码的氨基 酸序列(SEQ ID NO：59)的视图。
图12A和B分别是质粒pFastBacHTa-E1-TBD中ORF的核苷 酸序列(SEQ ID NO：49)以及由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：60)的视图。
图13A和B分别是质粒pFastBacHTa-E2-TBD中ORF的核苷 酸序列(SEQ ID NO：50)以及由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：61)的视图。
图14A和B分别是质粒pFastBacHTa-E1-E2-TBD中ORF的核 苷酸序列(SEQ ID NO：51)以及由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：62)的视图。
图15是一系列示出了以三种不同的浓度使NS5A Chimigen3蛋 白与未成熟DC结合的荧光流式细胞仪(FFC)谱图(外形，profile)。
图16是一对条形图，示出了通过特异于CD32和CD206的抗 体抑制NS5A Chimigen3蛋白与未成熟DC的结合。
图17是一系列条形图，示出了通过如在实施例中所描述而生 成的成熟DC指定的细胞表面标记物的表达。通过FFC获得数据， 并以“阳性细胞％”(上图)和“平均荧光强度”(“MFI”)(下图) 示出。
图18A-C是三组条形图，示出了第4天时表达CD69的T细胞 (图18A)、表达CD69的CD8+T细胞(图18B)、以及表达CD69 的CD4+T细胞(图18C)在不同浓度的T细胞和NS5A Chimigen3 蛋白或破伤风类毒素负载(致敏，loaded)的DC的培养物中的比 率。通过FFC获得数据。5AC1和5AC2：NS5A Chimigen3蛋白的 两种不同制备物(制剂)。
图19A-C是三组条形图，示出了第4天时CFSElo T细胞(图 19A)、CFSElo CD8+T细胞(图19B)、以及CFSElo CD4+T细胞 (图19C)在不同浓度的T细胞和NS5A Chimigen3蛋白或破伤风 类毒素负载的DC的培养物中的比率。通过FFC获得数据。5AC1 和5AC2：NS5A Chimigen3蛋白的两种不同制备物。
图20A-C是三组条形图，示出了第7天时表达CD69的T细胞 (图20A)、表达CD69的CD8+T细胞(图20B)、以及表达CD69 的CD4+T细胞(图20C)在不同浓度的T细胞和NS5A Chimigen3 蛋白或破伤风类毒素负载的DC或植物凝集素(PHA；在图20A中) 的培养物中的比率。通过FFC获得数据。5AC1和5AC2：NS5A Chimigen3蛋白的两种不同制备物。
图21A-C是三组条形图，示出了第7天时CFSElo T细胞(图 21A)、CFSElo CD8+T细胞(图21B)、以及CFSElo CD4+T细胞(图 21C)在不同浓度的T细胞和NS5A Chimigen3蛋白或破伤风类毒 素负载的DC或PHA(在图21A中)的培养物中的比率。通过FFC 获得数据。5AC1和5AC2：NS5A Chimigen3蛋白的两种不同制备 物。
图22是一系列条形图，示出了第7天时在不同浓度的T细胞 和NS5A Chimigen3蛋白或破伤风类毒素负载的DC或PHA的培养 物中胚细胞的T细胞比例。通过FFC获得数据。5AC1和5AC2： NS5A Chimigen3蛋白的两种不同制备物。
图23是一系列条形图，示出了通过指示细胞表面标记物的成 熟的、抗原负载的DC的表达。通过FFC获得数据。
图24是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后胚细胞的T细胞的比率，通过 FFC获得数据。5AC：NS5A Chimigen3蛋白。
图25是一系列条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其 如实施例中所述而制备)刺激三次后含细胞内干扰素K(IFN-K) 的T细胞的比率。通过FFC获得数据。5AC：NS5A Chimigen3蛋 白；PMA：佛波醇肉豆蔻酸；杜尔贝科磷酸盐缓冲盐水(DPBS)。
图26是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后含细胞内IFN-K的CD8+T细胞 的比率。通过FFC获得数据。5AC：NS5A Chimigen3蛋白。
图27是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后含细胞内IFN-K的CD4+T细胞 的比率。通过FFC获得数据。5AC：NS5A Chimigen3蛋白。
图28是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后含细胞内肿瘤坏死因子I(TNF- I)的T细胞的比率。通过FFC获得数据。5AC：NS5A Chimigen3 蛋白；PMA：佛波醇肉豆蔻酸；杜尔贝科磷酸盐；DPBS。
图29是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后含细胞内TNF-I的CD8+T细胞 (左图)和CD4+T细胞(右图)的比率。通过FFC获得数据。5AC： NS5A Chimigen3蛋白。
图30是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后表达颗粒蛋白GrB(左图)和Pfn (右图)的CD8+T细胞的比率。通过FFC获得数据。5AC：NS5A Chimigen3蛋白。
图31是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后淋巴细胞的总数(R1门细胞 (gated cell))以及母细胞的比率。在最后刺激6天后对细胞进行分 析。通过FFC获得数据。5AC：NS5A Chimigen3蛋白。
图32是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后表达CD69的CD8+T细胞(左图) 以及表达CD69的CD4+T细胞(右图)的相对比率。在最后刺激6 天后对细胞进行分析。通过FFC获得数据。5AC：NS5A Chimigen3 蛋白。
图33是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后，具有抗原特异性T细胞受体 (TCR)(其结合EBV肽/HLA-A2四聚体(阳性对照)或对照四聚 体(阴性四聚体))的CD8+T细胞(左图)以及CD4+T细胞(右图) 的相对比率。在最后刺激6天后对来自三个不同培养孔(对应于测 试组和对照组的三个条(bar))的细胞进行分析。通过FFC获得数 据。
图34是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次(利用不同数量的T细胞和DC) 后，具有结合NS5A肽/HLA-A2五聚体的TCR的CD8+T细胞的相 对比率。在最后刺激6天后对来自三个不同培养孔(对应于测试组 和对照组的三个条)的细胞进行分析。通过FFC获得数据。5AC： NS5A Chimigen3蛋白。
图35是一系列FFC谱图，示出了在两个不同浓度下NS3 Chimigen3蛋白与未成熟DC的结合。
图36是一对条形图，示出了通过对CD32和CD206特异性的 抗体抑制NS3 Chimigen3蛋白与未成熟DC的结合。
图37是一系列条形图，示出了第4天(上图)和第7天在含 NS3 Chimigen3蛋白或破伤风类毒素负载的DC的培养物中，表达 CD69的CD8+T细胞(左图)以及表达CD69的CD4+T细胞(右图) 的相对比率。通过FFC获得数据。3C：NS3 Chimigen3蛋白。
图38是一系列条形图，示出了第4天(上图)和第7天在含 NS3 Chimigen3蛋白或破伤风类毒素负载的DC的培养物中， CFSElo CD8+T细胞(左图)以及CFSElo CD4+T细胞(右图)的比 率。通过FFC获得数据。3C：NS3 Chimigen3蛋白。
图39是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中用于NS5A Chimigen3蛋白所述而制备)刺激三次后胚细 胞T细胞的比率(比例)。利用两种不同T细胞和两个不同DC浓 度进行刺激。通过FFC获得数据。3C：NS3 Chimigen3蛋白。
图40是一系列条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其 如实施例中所述而制备)刺激三次后，含细胞内IFN-K的T细胞的 比率。通过FFC获得数据。3C：NS3 Chimigen3蛋白。
图41是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后，含细胞内IFN-K的CD8+T细 胞(左图)和CD4+T细胞(右图)的比率。通过FFC获得数据。 3C：NS3 Chimigen3蛋白。
图42是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后，含细胞内TNF-I的CD8+T细 胞(左图)和CD4+T细胞(右图)的比率。通过FFC获得数据。 3C：NS3 Chimigen3蛋白。
图43是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后表达颗粒蛋白GrB(左图)和Pfn (右图)的CD8+T细胞的比率。通过FFC获得数据。3C：NS3 Chimigen3蛋白。
图44是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后表达CD69的CD8+T细胞(左图) 以及表达CD69的CD4+T细胞(右图)的相对比率。在最后刺激6 天后对细胞进行分析。通过FFC获得数据。3C：NS3 Chimigen3蛋 白。
图45是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后淋巴细胞的总数(R1门细胞)(左 图)以及母细胞的比率(右图)。在最后刺激6天后对细胞进行分 析。通过FFC获得数据。3C，AS60-1：NS3 Chimigen3蛋白。
图46是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次(利用不同数量的T细胞和DC) 后，具有结合NS3肽/HLA-A2五聚体的TCR的CD8+T细胞的相对 比率。在最后刺激5天后对来自三个不同培养孔(对应于测试组和 对照组的三个条)的细胞进行分析。通过FFC获得数据。3C：NS3 Chimigen3蛋白。
图47是一系列荧光流式细胞仪(FFC)谱图，示出了在三种不 同的浓度下HCV核心Chimigen3蛋白与未成熟DC的结合。
图48是一对条形图，示出了通过对CD32和CD206特异性的 抗体、甘露糖化的牛血清白蛋白(mBSA)和鼠IgG片段来抑制HCV Chimigen3核心蛋白与未成熟DC的结合。
图49是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后，含细胞内IFN-K的CD8+T细 胞(左图)和CD4+T细胞(右图)的比率。通过FFC获得数据。 HCV核心-TBD：HCV核心Chimigen3蛋白。
图50是一对二维FFC点图，示出了用负载有HCV核心 Chimigen3蛋白(HCV核心-TBD)(右侧点图)或仅用TBD(TBD) (左侧点图)的DC刺激三次后，具有结合HCV核心肽/HLA-B7 四聚体的TCR的CD8+T细胞的比率。
图2A和2B分别是质粒pFastBacHTa-TBD中ORF(开放阅读 框架(可译框架))的核苷酸序列(SEQ ID NO：9)以及由该ORF 编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：10)的视图。
图3A和3B分别是质粒pFastBacHTa-NS5A-TBD中ORF的核 苷酸序列(SEQ ID NO：39)以及由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：40)的视图。图3A和图3B中的下划线和粗体位置处存在 保守自发突变(TTC(Phe)至TTT(Phe))。
在该核苷酸序列中：
核苷酸1-3：起始密码子
核苷酸13-30：6xHis表位标签(附加表位)
核苷酸91-1431：HCV NS5A
核苷酸1432-1461：连接肽
核苷酸1462-2157：TBD
核苷酸2158-2187：末端肽
核苷酸2188-2190：终止密码子
核苷酸1639-1641：TBD TTC-TTT保守突变
在该氨基酸序列中：
氨基酸5-10：6xHis表位标签
氨基酸31-477：HCV NS5A
氨基酸478-487：连接肽
氨基酸488-719：TBD
氨基酸720-729：末端肽
图4A和B分别是质粒pFastBacHTa-gp64-NS5A-TBD中ORF 的核苷酸序列(SEQ ID NO：41)以及由该ORF编码的氨基酸序列 (SEQ ID NO：52)的视图。图4A和图4B中的下划线和粗体位置 处存在人工突变(GAT(Asp)至TAT(Tyr))以及保守自发突变 (TTC(Phe)至TTT(Phe))。
在该核苷酸序列中：
核苷酸1-3：起始密码子
核苷酸1-72：gp64信号肽
核苷酸97-114：6xHis表位标签
核苷酸175-1515：HCV NS5A
核苷酸1516-1545：连接肽
核苷酸1546-2241：TBD
核苷酸2242-2271：末端肽
核苷酸2272-2274：终止密码子
核苷酸61-63：信号肽GAT至TAT人工突变
核苷酸1725：TBD TTC至TTT保守突变
在该氨基酸序列中：
氨基酸1-24：gp64分泌信号
氨基酸33-38：6xHis表位标签
氨基酸59-505：HCV NS5A
氨基酸506-515：连接肽
氨基酸516-747：TBD
氨基酸748-757：末端肽
氨基酸21：信号肽D至Y人工突变
图5A和B分别是质粒pPSC12-NS5A-TBD中ORF的核苷酸序 列(SEQ ID NO：42)以及由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：53)的视图。
图6A和B分别是质粒pFastBacHTa-gp64-NS3-TBD中ORF的 核苷酸序列(SEQ ID NO：43)以及由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：54)的视图。存在由图6A中的下划线密码子和图6B中的 氨基酸所示的两个突变。对于图6A从上游至下游以及对于图6B 从N末端至C末端，突变为：(基因)工程CGG(Arg)至GCG(Ala) 突变；以及自发CCA(Pro)至GGA(Gly)突变。
图7A和B分别是质粒pFastBacHTa NS3mut-TBD中ORF的核 苷酸序列(SEQ ID NO：44)以及由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：55)的视图。存在由图7A中的下划线密码子和图7B中的 氨基酸所示的两个突变。对于图7A从上游至下游以及对于图7B 从N末端至C末端，突变为：自发保守AGG(Arg)至CGG(Arg) 突变；以及基因工程CGG(Arg)至GCG(Ala)突变。
在核苷酸序列中：
核苷酸1-3：起始密码子
核苷酸13-30：6xHis表位标签
核苷酸91-1965：HCV NS3mut
核苷酸1966-1995：连接肽
核苷酸1996-2691：TBD
核苷酸2692-2721：末端肽
核苷酸2722-2724：终止密码子
核苷酸1462-1464：NS3mutAGG至CGG自发突变
核苷酸1474-1476：NS3mut CGG至GCG基因工程突变
在该氨基酸序列中：
氨基酸5-10：6xHis表位标签
氨基酸31-655：HCV NS3mut
氨基酸656-665：连接肽
氨基酸666-897：TBD
氨基酸898-907：末端肽
氨基酸488：NS3mut R至R自发突变
氨基酸492：NS3mut R至A基因工程突变
图8A和B分别是质粒pFastBacHTa-gp64-NS3mut-TBD中ORF 的核苷酸序列(SEQ ID NO：45)以及由该ORF编码的氨基酸序列 (SEQ ID NO：56)的视图。存在由图8A中的突出显示的密码子和 图8B中的氨基酸表示的三个突变。对于图8A从上游至下游以及对 于图8B从N末端至C末端，突变为：人工突变(GAT(ASP)至 TAT(Tyr))；自发保守AGG(Arg)至CGG(Arg)突变；以及基 因工程CGG(Arg)至GCG(Ala)突变。
在该核苷酸序列中：
核苷酸1-3：起始密码子
核苷酸1-72：gp64信号肽
核苷酸97-114：6xHis表位标签
核苷酸175-2049：HCV NS3mut
核苷酸2050-2079：连接肽
核苷酸2080-2775：TBD
核苷酸2776-2805：末端肽
核苷酸2806-2808：终止密码子
核苷酸61-63：信号肽GAT至TAT人工突变
核苷酸1546-1548：NS3mut AGG至CGG保守突变
核苷酸1558-1560：NS3mut CGG-GCG基因工程突变
在该氨基酸序列中：
氨基酸1-24：gp64分泌信号
氨基酸33-38：6xHis表位标签
氨基酸59-683：HCV NS3mut
氨基酸684-693：连接肽
氨基酸694-925：TBD
氨基酸926-935：末端肽
氨基酸21：信号肽D至Y人工突变
氨基酸520：NS3mut R至A基因工程突变
图9A和B分别是质粒pFastBacHTa-gp64 NS3-NS4B-NS5A-TBD中ORF的核苷酸序列(SEQ ID NO：46)以 及由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：57)的视图。存在由 图9A中的下划线且粗体密码子和图9B中的氨基酸表示的四个突 变。对于图9A从上游至下游以及对于图9B从N末端至C末端， 突变为：人工突变(GAT(Asp)至TAT(Tyr))；基因工程TCG(Ser) 至GCG(Ala)突变；基因工程CGG(Arg)至GCG(Ala)突变；以 及自发CCA(Pro)至GGA(Gly)突变。
图10A和B分别是质粒pFastBacHTa-gp64-NS3-NS5A-TBD中 ORF的核苷酸序列(SEQ ID NO：47)以及由该ORF编码的氨基酸 序列(SEQ ID NO：58)的视图。存在由图10A中的下划线密码子和 图10B中的氨基酸表示的四个突变。对于图10A从上游至下游以及 对于图10B从N末端至C末端，突变为：人工突变(GAT(Asp) 至TAT(Tyr))；基因工程TCG(Ser)至GCG(Ala)突变；基因 工程CGG(Arg)至GCG(Ala)突变；以及自发CCA(Pro)至GGA (Gly)突变。
在该核苷酸序列中：
核苷酸1-3：起始密码子
核苷酸1-72：gp64信号肽
核苷酸97-114：6xHis表位标签
核苷酸175-2049：HCV NS3mut
核苷酸2050-2058：连接肽
核苷酸2059-3402：HCV NS5A
核苷酸3403-3426：连接肽
核苷酸3427-4122：TBD
核苷酸4123-4152：末端肽
核苷酸4153-4155：终止密码子
核苷酸61-63：信号肽GAT至TAT人工突变
核苷酸589：NS3mut TCG至GCG基因工程突变
核苷酸1558-1559：NS3mut CGG至GCG基因工程突变
核苷酸2050-2052：NS3mut CCA至GGA自发突变
在该氨基酸序列中：
氨基酸1-24：gp64分泌信号
氨基酸33-38：6xHis表位标签
氨基酸59-683：HCV NS3
氨基酸684-686：连接肽
氨基酸687-1134：HCV NS5A
氨基酸1135-1374：TBD
氨基酸1375-1384：末端肽
氨基酸21：信号肽D至Y人工突变
氨基酸197：NS3mut S至A基因工程突变
氨基酸520：NS3mut R至A基因工程突变
氨基酸684：NS3mut P至G自发突变
图11A和B分别是质粒pFastBacHTa HCV核心(1-177)-TBD 中ORF的核苷酸序列(SEQ ID NO：48)以及由该ORF编码的氨基 酸序列(SEQ ID NO：59)的视图。
图12A和B分别是质粒pFastBacHTa-E1-TBD中ORF的核苷 酸序列(SEQ ID NO：49)以及由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：60)的视图。
图13A和B分别是质粒pFastBacHTa-E2-TBD中ORF的核苷 酸序列(SEQ ID NO：50)以及由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：61)的视图。
图14A和B分别是质粒pFastBacHTa-E1-E2-TBD中ORF的核 苷酸序列(SEQ ID NO：51)以及由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：62)的视图。
图15是一系列示出了以三种不同的浓度使NS5A Chimigen3蛋 白与未成熟DC结合的荧光流式细胞仪(FFC)谱图(外形，profile)。
图16是一对条形图，示出了通过特异于CD32和CD206的抗 体抑制NS5A Chimigen3蛋白与未成熟DC的结合。
图17是一系列条形图，示出了通过如在实施例中所描述而生 成的成熟DC指定的细胞表面标记物的表达。通过FFC获得数据， 并以“阳性细胞％”(上图)和“平均荧光强度”(“MFI”)(下图) 示出。
图18A-C是三组条形图，示出了第4天时表达CD69的T细胞 (图18A)、表达CD69的CD8+T细胞(图18B)、以及表达CD69 的CD4+T细胞(图18C)在不同浓度的T细胞和NS5A Chimigen3 蛋白或破伤风类毒素负载(致敏，loaded)的DC的培养物中的比 率。通过FFC获得数据。5AC1和5AC2：NS5A Chimigen3蛋白的 两种不同制备物(制剂)。
图19A-C是三组条形图，示出了第4天时CFSElo T细胞(图 19A)、CFSElo CD8+T细胞(图19B)、以及CFSElo CD4+T细胞 (图19C)在不同浓度的T细胞和NS5A Chimigen3蛋白或破伤风 类毒素负载的DC的培养物中的比率。通过FFC获得数据。5AC1 和5AC2：NS5A Chimigen3蛋白的两种不同制备物。
图20A-C是三组条形图，示出了第7天时表达CD69的T细胞 (图20A)、表达CD69的CD8+T细胞(图20B)、以及表达CD69 的CD4+T细胞(图20C)在不同浓度的T细胞和NS5A Chimigen3 蛋白或破伤风类毒素负载的DC或植物凝集素(PHA；在图20A中) 的培养物中的比率。通过FFC获得数据。5AC1和5AC2：NS5A Chimigen3蛋白的两种不同制备物。
图21A-C是三组条形图，示出了第7天时CFSElo T细胞(图 21A)、CFSElo CD8+T细胞(图21B)、以及CFSElo CD4+T细胞(图 21C)在不同浓度的T细胞和NS5A Chimigen3蛋白或破伤风类毒 素负载的DC或PHA(在图21A中)的培养物中的比率。通过FFC 获得数据。5AC1和5AC2：NS5A Chimigen3蛋白的两种不同制备 物。
图22是一系列条形图，示出了第7天时在不同浓度的T细胞 和NS5A Chimigen3蛋白或破伤风类毒素负载的DC或PHA的培养 物中胚细胞的T细胞比例。通过FFC获得数据。5AC1和5AC2： NS5A Chimigen3蛋白的两种不同制备物。
图23是一系列条形图，示出了通过指示细胞表面标记物的成 熟的、抗原负载的DC的表达。通过FFC获得数据。
图24是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后胚细胞的T细胞的比率，通过 FFC获得数据。5AC：NS5A Chimigen3蛋白。
图25是一系列条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其 如实施例中所述而制备)刺激三次后含细胞内干扰素K(IFN-K) 的T细胞的比率。通过FFC获得数据。5AC：NS5A Chimigen3蛋 白；PMA：佛波醇肉豆蔻酸；杜尔贝科磷酸盐缓冲盐水(DPBS)。
图26是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后含细胞内IFN-K的CD8+T细胞 的比率。通过FFC获得数据。5AC：NS5A Chimigen3蛋白。
图27是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后含细胞内IFN-K的CD4+T细胞 的比率。通过FFC获得数据。5AC：NS5A Chimigen3蛋白。
图28是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后含细胞内肿瘤坏死因子I(TNF- I)的T细胞的比率。通过FFC获得数据。5AC：NS5A Chimigen3 蛋白；PMA：佛波醇肉豆蔻酸；杜尔贝科磷酸盐；DPBS。
图29是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后含细胞内TNF-I的CD8+T细胞 (左图)和CD4+T细胞(右图)的比率。通过FFC获得数据。5AC： NS5A Chimigen3蛋白。
图30是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后表达颗粒蛋白GrB(左图)和Pfn (右图)的CD8+T细胞的比率。通过FFC获得数据。5AC：NS5A Chimigen3蛋白。
图31是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后淋巴细胞的总数(R1门细胞 (gated cell))以及母细胞的比率。在最后刺激6天后对细胞进行分 析。通过FFC获得数据。5AC：NS5A Chimigen3蛋白。
图32是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后表达CD69的CD8+T细胞(左图) 以及表达CD69的CD4+T细胞(右图)的相对比率。在最后刺激6 天后对细胞进行分析。通过FFC获得数据。5AC：NS5A Chimigen3 蛋白。
图33是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后，具有抗原特异性T细胞受体 (TCR)(其结合EBV肽/HLA-A2四聚体(阳性对照)或对照四聚 体(阴性四聚体))的CD8+T细胞(左图)以及CD4+T细胞(右图) 的相对比率。在最后刺激6天后对来自三个不同培养孔(对应于测 试组和对照组的三个条(bar))的细胞进行分析。通过FFC获得数 据。
图34是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次(利用不同数量的T细胞和DC) 后，具有结合NS5A肽/HLA-A2五聚体的TCR的CD8+T细胞的相 对比率。在最后刺激6天后对来自三个不同培养孔(对应于测试组 和对照组的三个条)的细胞进行分析。通过FFC获得数据。5AC： NS5A Chimigen3蛋白。
图35是一系列FFC谱图，示出了在两个不同浓度下NS3 Chimigen3蛋白与未成熟DC的结合。
图36是一对条形图，示出了通过对CD32和CD206特异性的 抗体抑制NS3 Chimigen3蛋白与未成熟DC的结合。
图37是一系列条形图，示出了第4天(上图)和第7天在含 NS3 Chimigen3蛋白或破伤风类毒素负载的DC的培养物中，表达 CD69的CD8+T细胞(左图)以及表达CD69的CD4+T细胞(右图) 的相对比率。通过FFC获得数据。3C：NS3 Chimigen3蛋白。
图38是一系列条形图，示出了第4天(上图)和第7天在含 NS3 Chimigen3蛋白或破伤风类毒素负载的DC的培养物中， CFSElo CD8+T细胞(左图)以及CFSElo CD4+T细胞(右图)的比 率。通过FFC获得数据。3C：NS3 Chimigen3蛋白。
图39是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中用于NS5A Chimigen3蛋白所述而制备)刺激三次后胚细 胞T细胞的比率(比例)。利用两种不同T细胞和两个不同DC浓 度进行刺激。通过FFC获得数据。3C：NS3 Chimigen3蛋白。
图40是一系列条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其 如实施例中所述而制备)刺激三次后，含细胞内IFN-K的T细胞的 比率。通过FFC获得数据。3C：NS3 Chimigen3蛋白。
图41是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后，含细胞内IFN-K的CD8+T细 胞(左图)和CD4+T细胞(右图)的比率。通过FFC获得数据。 3C：NS3 Chimigen3蛋白。
图42是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后，含细胞内TNF-I的CD8+T细 胞(左图)和CD4+T细胞(右图)的比率。通过FFC获得数据。 3C：NS3 Chimigen3蛋白。
图43是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后表达颗粒蛋白GrB(左图)和Pfn (右图)的CD8+T细胞的比率。通过FFC获得数据。3C：NS3 Chimigen3蛋白。
图44是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后表达CD69的CD8+T细胞(左图) 以及表达CD69的CD4+T细胞(右图)的相对比率。在最后刺激6 天后对细胞进行分析。通过FFC获得数据。3C：NS3 Chimigen3蛋 白。
图45是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后淋巴细胞的总数(R1门细胞)(左 图)以及母细胞的比率(右图)。在最后刺激6天后对细胞进行分 析。通过FFC获得数据。3C，AS60-1：NS3 Chimigen3蛋白。
图46是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次(利用不同数量的T细胞和DC) 后，具有结合NS3肽/HLA-A2五聚体的TCR的CD8+T细胞的相对 比率。在最后刺激5天后对来自三个不同培养孔(对应于测试组和 对照组的三个条)的细胞进行分析。通过FFC获得数据。3C：NS3 Chimigen3蛋白。
图47是一系列荧光流式细胞仪(FFC)谱图，示出了在三种不 同的浓度下HCV核心Chimigen3蛋白与未成熟DC的结合。
图48是一对条形图，示出了通过对CD32和CD206特异性的 抗体、甘露糖化的牛血清白蛋白(mBSA)和鼠IgG片段来抑制HCV Chimigen3核心蛋白与未成熟DC的结合。
图49是一对条形图，示出了用成熟的、抗原负载的DC(其如 实施例中所述而制备)刺激三次后，含细胞内IFN-K的CD8+T细 胞(左图)和CD4+T细胞(右图)的比率。通过FFC获得数据。 HCV核心-TBD：HCV核心Chimigen3蛋白。
图50是一对二维FFC点图，示出了用负载有HCV核心 Chimigen3蛋白(HCV核心-TBD)(右侧点图)或仅用TBD(TBD) (左侧点图)的DC刺激三次后，具有结合HCV核心肽/HLA-B7 四聚体的TCR的CD8+T细胞的比率。
具体实施方式
A.概述
本文披露了用于引起针对抗原的免疫应答的组合物和方法。在 特定的具体实施方式中，该组合物和方法引起针对抗原的免疫应 答，该抗原以其它方式被宿主识别为“自体”抗原。通过将包括免 疫应答结构域和靶结合结构域的嵌合抗原呈递给宿主免疫系统来 增强免疫应答，其中所述靶结合结构域包括抗体片段。通过该靶结 合结构域，APC内化、加工并呈递引起体液和细胞免疫应答两者的 嵌合抗原。
HCV是黄病毒家族的成员，其可以感染人类，引起急性和慢 性肝炎，并且可能导致肝细胞癌[Hoofnagle(2002)Hepatology 36：S21-S29]。HCV基因组是9.6 Kb无帽正极性(positive polarity) 单链RNA分子，并通过负链中间体而实现复制[Lindenbach and Rice(2005)Nature 436：933-938]。HCV基因组编码单个开放阅读框 架，该开放阅读框架编码多聚蛋白，加工该多聚蛋白以生成核心或 衣壳蛋白(C)、两种包膜糖蛋白(E1和E2)、一种小的疏水蛋白(p7)、 以及6种非结构蛋白(NS2、NS3、NS4A、NS4B、NS5A和NS5B)。 将该多聚蛋白加工成单个蛋白是通过宿主和病毒蛋白酶来催化的 [Lohmann et al.(1996)J.Hepatol.24：11-19，Penin et al.(2004) J.Hepatol.24：11-19]。
当健康宿主(人或动物)遭遇异种蛋白(foreign antigen)(例 如来自细菌、病毒和/或寄生虫的蛋白)时，宿主通常引发免疫应答。 适应性的免疫应答可以为体液、细胞或两者[Whitton et al.(2004)Adv. Virus Res.63：181-238]。细胞应答的特征在于选择并扩增能直接消除 包含该抗原的细胞的特异性T辅助细胞和T淋巴细胞(CTL)。在 体液反应的情况下，响应于抗原刺激，抗体由B细胞生成并被分泌 入血液和/或淋巴中。抗体中和(neutralize)抗原(例如，病毒)， 通过特异性地结合于抗原表面上的表位，对其进行标记以用于吞噬 细胞破坏和/或通过补体介导机制以裂解受感染细胞[Carroll(2005) Nature Immunol.5：981-986]。辅助细胞(多数为CD4T细胞)提供 CTL(多数为CD8T细胞)和B细胞介导的抗体反应(应答)所必 需的辅助活性。
在患有慢性病毒感染的个体中，免疫系统不对新来的病原体发 生反应以产生适应性免疫应答从而清除感染，因此宿主变得对该病 原体耐受。虽然HCV用来逃避免疫监视的机制尚未完全理解，但 已经提出了几种可能性。这些可能的机制包括由NS3-4A、E2和 NS5A序列阻断IRF3介导的I型IFN诱导、阻断PKR(双链RNA 活化的蛋白激酶)以及通过NK细胞的功能来干扰HCV蛋白 [Rehermann et al.(2005)Nature Rev.Immunol.5：215-229]。最近的结 果也表明T细胞在HCV感染的控制和消除中具有关键作用[Bowen et al.(2005)Nature 436：946-952；Wieland et al.(2005)J.Virol. 79：9369-9380]。在急性HCV感染中，尽管HCV感染后7-8周可 检测到病毒特异性抗体[Pawlotsky(1999)J.Hepatol.31(suppl)：71 -79]，但抗体的作用仍不清楚，因为已证实黑猩猩体内的HCV感染 可在无抗HCV抗体的情况下消退[Cooper et al.(1999)Immunity 10：439-449]，而人体内的HCV感染则可在无血清转化的情况下消 退[Post et al.(2004)J.Infect.Dis.189：1846-1855]。此外，最近有证 据表明个体不能产生抗引起慢性感染的HCV的可检测水平CD4+ 和CD8+T细胞应答，[上文，Cooper et al.(1999)；Thirnme et al.(2001) Proc.Natl.Acad.Sci.USA 99：15661-15668；Thimme et al.(2002)J. Exp.Med.194：1395-1406；Shoukry et al.(2003)J.Exp.Med.197： 1645-1655]。尽管已表明如在I型IFN反应中与在抗病毒复制过程 中产生的双链RNA的免疫反应中的转录变化的免疫功能存在相互 作用，但在病毒感染的清除中尚未观察到该效应的直接证据[上文， Rehermann et al.(2005)]。已经观察到在消退HCV感染的患者中， 免疫系统产生强烈的多表位特异性CD4+和CD8+T细胞应答[上文， Rehermann et al.(2005)]，然而在患有慢性HCV感染的患者中，T细 胞应答较晚、短暂或局限[上文，Thimme et al.(2001)；Diepolder et al. (1995)Lancet 36：1006-1007；Lechner et al.(2000)J.Exp.Med. 191：1499-1522]。
导致慢性感染的强健的抗HCV抗原的T细胞应答的缺乏还可 能是由于缺乏将合适的病毒抗原呈递至宿主免疫系统的适当呈递。 消除病毒方面的成功可能由通过APC加工和呈递抗原的方式以及 涉及调节性T辅助细胞和细胞毒性T淋巴细胞(CTL)而产生。
抗原呈递过程中的主要参与者是捕获并加工抗原的树突细胞 (DC)。此外，DC表达淋巴细胞协同刺激分子并将其迁移至淋巴 器官，其中它们分泌细胞因子以引发免疫应答。DC还控制B和T 淋巴细胞增殖，而B和T淋巴细胞是免疫介导者[Steinman et al.(1999) Hum.Immunol.60：562-567]。CTL反应的产生在消除病毒感染的细 胞并且由此在感染的消退方面是关键的。
取决于抗原定位通过APC对接触到的抗原进行不同的加工[上 文，Steinman et al.(1999)]。外源性抗原在APC的内涵体内加工，并 将生成的肽片段呈递于与主要组织相容性复合体(MHC)II类分子 复合的细胞表面上。将该复合物呈递至CD4+T细胞可使其活化。 结果，由辅助T细胞分泌的细胞因子提供B细胞活化所需的可溶性 因子，以产生针对外源性抗原的抗体(体液反应)。
相反，细胞内抗原在蛋白酶体内加工，并且得到的肽片段作为 与MHC I类分子的复合物而呈递于APC的表面上。在该复合物结 合于T细胞受体(TCR)后，可将抗原呈递至CD8+T细胞，这引 起CTL免疫应答。CTL可以通过杀死受感染细胞以及生成诸如细 胞因子干扰素-γ(IFN-γ)的因子(其发挥作用以抑制病毒复制) 而消除病毒。
由于病毒在患有慢性病毒感染的个体中复制活跃，因此在宿主 细胞内产生病毒抗原，并且分泌的抗原存在于循环中。尽管存在这 些抗原，但仍然缺乏抗病毒的有效免疫应答。有效的免疫应答将涉 及生成CTL，其能够以高亲和力识别大量(board array)的病毒表 位。因此，含病毒抗原的适宜治疗性疫苗必须被内化并在适当的细 胞腔隙内加工，以使病毒肽可呈递于MHC I类分子的沟内。在I 类呈递的背景下，病毒表位的识别可允许CD8+T细胞的活化、生 成并分化为功能性CTL，该功能性CTL能够发起抗病毒感染的有 效反应(应答)。
因此，如果将含病毒抗原的治疗性疫苗通过蛋白酶体 (proteasomal)途径加工并通过MHC I类呈递，则其将会是有效 的[Larsson et al.(2001)Trends Immunol.22：141-148]。这可以通过在 宿主细胞内生成该抗原或通过递送至适当的细胞腔隙以使该抗原 以将引起期望细胞应答的方式而被加工并呈递来实现。在文献中已 记载了几种用于抗原的细胞内递送的途径，包括病毒载体[Lorenz et al.(2001)Hum.Gene Ther.10：1095-1103]，使用DNA转染的细胞 [Donnelly et al.(1997)Annu.Rev.Immunol.15：617-648]以及通过注 射的DNA载体表达该抗原[Lai et al.(1998)Crit.Rev.Immunol. 18：449-484]。
借助于其APC功能性，已表明来源于单核细胞的DC具有作为 能刺激原发T细胞应答的免疫调节剂的巨大潜能[Banchereau et al. (1998)Nature 392：245-252]。DC能捕获、加工并有效地呈递抗原的 这种独特性能使其成为治疗性疫苗研发非常重要的工具[Laupeze et al.(1999)Hum Immunol.60：591-597]。使抗原靶向于DC是一个决定 性步骤，并且已采用几种存在于对单克隆抗体(mAb)的Fc区域 特异性的DC上的受体用于该目的[Regnault et al.(1999)J.Exp.Med. 189：371-380]。这种途径的实例包括卵巢癌mAb-B43.13[Berlyn et al. (2001)Clin Immunol.101：276-283]、抗PSA mAb、以及抗HBV抗体 抗原复合物[Wen et al.(1999)Int.Rev.Immunol.18：251-258]。利用负 载有肿瘤相关抗原的DC的癌症免疫疗法已表明可产生肿瘤特异性 免疫应答和抗肿瘤活性[Campton et al.(2000)J.Invest.Dermatol. 115：57-61；Fong et al.(2000)Annu.Rev.Immunol.18：245-273]。体内 使用肿瘤抗原搏动的DC，在临床试验中获得了有前途的结果[Tarte et al.(1999)Leukemia 13：653-663]。这些研究清楚地表明利用DC来 产生抗癌症抗原的免疫应答的效力。治疗性疫苗必须能够引起抗病 毒抗原的宿主免疫应答，且宿主免疫系统能耐受该免疫应答。该过 程涉及将抗原递送至DC、适当的抗原呈递以及启动在慢性携带者 中可引起治疗效应的HCV特异性CD8+T细胞。
本发明的嵌合抗原疫苗是一类新型的重组“嵌合抗原”，其以 选定抗原与抗体的特异性区域的融合蛋白的形式生成。分子的双功 能设计适合于将病毒抗原靶向于APC特别是DC，以引起抗选定抗 原的体液和细胞免疫应答两者。图1中示意性地示出了其二聚化 (dimerized)形式的HCV ChimigenTM疫苗。
该疫苗具有两个结构域：含有重组HCV病毒抗原的免疫应答 结构域(IRD)以及含有单克隆抗体的Fc片段的靶结合结构域 (TBD)。该疫苗的设计为其功能赋予几种独特性能。该嵌合设计 有利于形成抗体样(抗体状)结构并引起适当的抗原呈递，该抗体 样结构能促进其通过特异性受体而吸收。该嵌合设计可通过蛋白酶 体途径加工，并且肽以与MHC I类的复合体而被呈递，引起CTL 反应。ChimigenTM疫苗还可以通过内涵体(endosomal)途径加工， 由MHC II类呈递，以产生体液反应。
TBD介导ChimigenTM疫苗与特异性APC受体例如Fcγ受体的 结合。虽然本发明不受任何特定的作用机制的限制，但似乎该分子 与APC(例如，未成熟DC)上Fcγ受体的结合可引起该抗原通过 MHCI类通路而加工。在某些具体实施方式中，异源TBD、重组 抗原、结合于该抗原氨基和羧基末端的不同长度的连接肽使得整个 分子成为“异质(foreign)”并允许宿主免疫系统发起抗包括HCV 抗原的融合蛋白的多表位免疫应答。融合蛋白Chimigen3蛋白还可 以在非哺乳动物细胞(例如，酵母或昆虫细胞)中生成，以使它们 以非哺乳动物方式糖基化，从而增强其在哺乳动物(例如，人类) 宿主体内的免疫原性。昆虫细胞内引入的甘露糖/寡甘露糖糖基化也 允许该疫苗通过APC上的甘露糖受体而吸收。
因此，ChimigenTM疫苗可以由APC通过特异性Fcγ受体I、 II和III(CD64、CD32、CD16)、甘露糖受体(CD206)、其他C型 凝集素受体并通过吞噬作用而内化[Geijtenbeek et al.(2004)Annu. Rev.Immunol.22：33-54]。通过特异性受体的吸收、通过内涵体和蛋 白酶体途径的加工、以及在两类MHC分子上的呈递，可以引起广 泛的能够预防病毒感染或清除病毒感染的细胞的免疫应答。CTL反 应的发生对于清除病毒感染的细胞是关键的[Whitton et al.(2004) Adv.Virus Res.63：181-238]。用于治疗慢性HBV感染的Hepa Vaxx B，ViRexx’s first ChimigenTM治疗性疫苗，已经在临床前研究中表现 出非常有前景的结果[George et al.(2003)A novel class of therapeutic vaccines for the treatment of chronic viral infections：evaluation in ducks chronically infected with duck hepatitis B virus(DHBV)，in Hepdart 2003，Frontiers in Drug Development for Viral Hepatitis： December 14-18，Kauai，Hawaii，USA；George et al.(2003)A novel class of therapeutic vaccines for the treatment of chronic viral infections.International Meeting of the Molecular Biology of Hepatitis B Viruses. September 7-10，Centro Congressi Giovanni XXIII， Bergamo，Italy；George et al.(2004)Immunological Evaluation of a Novel Chimeric Therapeutic Vaccine for the Treatment of Chronic Hepatitis B Infections.(2004)International Meeting of the Molecular Biology of Hepatitis B Viruses.Woods Hole，MA，USA，October 24-27， 2004；George et al.(2005)BioProcessing Journal 4：39-45；George et al. (2006)A new class of therapeutic vaccines for the treatment of chronic hepatitis B infections.In″Framing the Knowledge of Viral Hepatitis″ Schinazi，R.F.Editor，IHL Press USA]。
B.定义
本申请中所使用的术语具有下列定义中规定的含义(除非另有 指明)。
“抗体”是指由B淋巴细胞产生的免疫球蛋白分子。这些分子 的特征在于具有与抗原特异性结合的能力，每一个分子均可根据另 一个而确定。
“抗体应答”或“体液应答”指一种免疫应答，其中抗体由B 淋巴细胞产生，并响应于抗原刺激而分泌入血液和/或淋巴中。在适 当作用的免疫应答中，抗体特异性结合于细胞(例如，病原体)表 面上的抗原，使得该细胞被吞噬细胞、抗体依赖的细胞毒性(ADCC) 效应细胞、和/或补体介导机制而破坏。抗体还在全身循环，且可以 结合于游离病毒体(free virion)。这种抗体结合可以中和所述病毒 体，并防止其感染细胞以及使该病毒体在肾内通过吞噬作用或过滤 而从宿主中清除。
“抗原”指任何物质，作为与适当的细胞接触的结果，该物质 可诱导敏感性和/或免疫应答性状态，且可在体内或体外(in vitro) 以一种可论证性方式与致敏受治疗者的抗体和/或免疫细胞反应。因 此，抗原可包括，例如细胞或病毒颗粒和/或其组件(组成， component)中的一种。在病毒的情况下，该组件特异性地包括病 毒蛋白。
“抗原呈递细胞”(“APC”)是指抗原诱导事件的辅助细胞(佐 细胞)，其主要通过内化抗原、加工抗原并在主要组织相容性复合 物(MHC)I类或II类分子的背景下将抗原表位呈递给淋巴细胞而 起作用。APC与抗原的相互作用是免疫诱导中的一个必要步骤，因 为其使得淋巴细胞接触并识别抗原性分子，并使淋巴细胞变得活 化。示例性的APC包括巨噬细胞、单核细胞、朗格汉斯细胞、交 错树突状细胞、滤泡树突状细胞，以及B细胞。
“B细胞”是指一类淋巴细胞，该淋巴细胞可产生与抗原相互 作用的免疫球蛋白(抗体)。
“CH1区”、“CH2区”、“CH3区”每一个均指抗体重链恒定域 (恒定结构域)的不同区域。
“细胞应答”或“细胞宿主应答”是指一类由特异性辅助和杀 伤T细胞介导的免疫应答，所述特异性辅助和杀伤T细胞能够直接 或间接清除病毒感染的细胞或癌细胞。
如在本文中所使用的，术语“嵌合抗原”是指一种包括免疫应 答结构域(IRD)和靶结合结构域(TBD)的多肽。该免疫应答结 构域和靶结合结构域可通过共价或非共价方式直接或间接地连接。
“复合物”或“抗原-抗体复合物”是指抗体与抗原之间的反应 产物。由多价抗原形成的复合物在含水体系中倾向于不可溶。
“细胞毒性T淋巴细胞”是一种专门类型的淋巴细胞，其能够 破坏外源细胞和感染有传染性病原体(infectious agent)(其能产生 病毒性抗原)的宿主细胞。
“表位”是指复杂抗原分子上抗原决定簇的最简单形式；其为 由抗体或T细胞受体识别的抗原的特异性部分。
“片段”是指已破坏的实体(entity)的一部分。在本发明的背 景中，其还可以用来指相应的实体的一部分。因此，包括Fc片段 的融合蛋白可以指包括与天然片段相同肽序列的重组分子。
“融合蛋白”指通过由合并两个或多个编码序列得到的杂合基 因表达而形成的蛋白。
“铰链区”指抗体中连接Fab片段与Fc片段的部分；所述铰 链区包含将两条重链共价地连接在一起以形成二聚分子的二硫键。
术语“同系物”指与另一个分子表现出同源性的分子，例如在 相应位置具有相同或相似的化学残基序列。短语“同源百分比”或 “同源性百分比”指在相同或类似的同源多核苷酸或多肽的相同位 置处的核苷酸或氨基酸百分比。例如，如果在两个蛋白中80个残 基中有75个是相同的，则所述两个蛋白是93.75％同源的。同源性 百分比可以使用本领域中普通技术人员已知的各种软件程序来确 定。
“宿主”指例如可给予嵌合抗原的温血动物。
在本发明的背景中，“杂交”意思是指低聚化合物的互补链的 配对。在本发明中，优选的配对机制涉及氢键，该氢键可为低聚化 合物的互补核苷或核苷酸碱基(核苷酸碱基(nucleobase))链之间 的Watson-Crick、Hoogsteen或反Hoogsteen氢键。例如，腺嘌呤和 胸腺嘧啶是通过形成氢键而配对的互补核苷酸碱基。杂交可在不同 的情况下发生。杂交可以在不同的环境下发生。在多核苷酸的背景 中使用的术语“杂交”以及类似用语，意思是指常规杂交条件，优 选例如在50％甲酰胺/6X SSC/0.1％SDS/100μg/mL mDNA中的杂 交，其中杂交的温度高于37℃，而在0.1X SSC/0.1％SDS中的洗涤 温度高于55℃。
“免疫性”或“免疫应答”是指身体(body)对抗原的应答(反 应)。在特定的具体实施方式中，其指身体抵抗感染性疾病或保护 自身免于感染性疾病的能力。
“免疫应答结构域(IRD)”指嵌合分子的不同构象的抗原部分。 IRD包括一个或多个抗原或者一个或多个重组抗原。优选的病毒抗 原包括但不限于：HCV核心、HCV E1-E2、HCV E1、HCV E2、HCV P7、HCV NS3-丝氨酸蛋白酶、HCV NS4A、HCV NS4B、以及HCV NS5A。
如在本文中使用的，短语“免疫-可治疗的疾病”指一种可以通 过在受治疗者体内引发或调节免疫应答来预防、抑制或缓解的病症 或疾病。
“淋巴细胞”指的是存在于例如血液中的有核细胞的亚类，其 介导特异性免疫应答。
“单克隆抗体”或“mAb”指由融合的杂交细胞(即，杂交瘤 细胞)克隆或其遗传同源性(同质)种群产生的抗体。克隆杂交细 胞以建立产生特异性单克隆抗体的细胞系，所述特异性单克隆抗体 是化学上或免疫学上同源的，即仅识别一类抗原。
如在本文中使用的，“可操作性(operably)连接”意思是结合 入遗传构建体中，使得表达控制序列可有效控制感兴趣编码序列的 表达。
“肽键”指两个或多个氨基酸之间的共价化学键。其是一个氨 基酸的α氨基与另一个氨基酸的α羧基之间的取代的酰胺键。
“药物赋形剂”包括一种材料例如佐剂、载体、pH调节和缓 冲剂、张力(张度)调节剂、湿润剂、防腐剂等。
“药用”是指生理上可与人或其他动物相容的无毒组合物。
如在本文中使用的，术语“多核苷酸”是指任何长度的核苷酸 (核糖核酸或脱氧核糖核酸)的聚合形式(多聚形，polymeric form)。 该术语仅指分子的一级结构。因此，该术语包括双链和单链DNA 和RNA。其还包括已知类型的修饰，例如本领域中已知的标记物、 甲基化，“帽(cap)”，用类似物取代天然存在的核苷酸中的一个或 多个，核苷酸间修饰例如诸如那些带有不带电键(如，膦酸甲酯、 磷酸三酯、磷酰胺化物(磷酰胺酶，phosphoamidate)、氨基甲酸酯 等)和带电键(例如，硫代磷酸酯(phosphorothioate)、二硫代磷 酸酯)的修饰、那些含悬挂物(下垂物，pendant)部分的修饰例如 蛋白(包括例如核酸酶、毒素、抗体、信号肽、聚-L-赖氨酸等)、 那些具有插入剂(例如，吖啶、补骨脂素等)的修饰、那些含有螯 合剂(例如，金属、放射性金属、硼、氧化性金属等)的修饰、那 些含有烷化物(alkylator)的修饰、那些具有改性键合的(modified linkage)(例如，α-端基核酸)，以及未修饰形式的多核苷酸。
“多肽”和“蛋白”可互换使用，并意思是指任何肽连接的 (peptide-linked)氨基酸链，无论长度或翻译后的修饰如何。
如在本文中所使用的，“预防”意思是指完全防止疾病的症状、 延缓疾病症状发作、或减弱随后发展的疾病症状的严重性。
“防止”疾病意思是指该疾病的症状基本上不存在。
“蛋白酶切割位点”是指一个位点，在该位点蛋白水解酶催化 多肽链中氨基酸之间肽键的水解(断裂)。
在本发明中，短语“严格的杂交条件”或“严格的条件”是指 这样的条件，在该条件下本发明的化合物将杂交于其靶序列，但仅 杂交于最小数量的其他序列。
术语“受治疗者”指任何温血动物，优选人。
“标签”指用来分离或纯化含该标签的分子的标记物或标记物 序列。示例性的标签包括6xHis(即：6个组氨酸的序列)标签。
“T细胞”指一类淋巴细胞，其可以发起针对抗原的抗原特异 性应答并且在体液和细胞免疫应答中起作用。
“靶结合结构域(TBD)”指免疫球蛋白重链恒定区的全部或 一部分(例如，CH1(全部或部分)-CH2-CH3)。
短语“治疗有效量”指试剂(例如，嵌合抗原或编码嵌合抗原 的多核苷酸)的量足以引起有效的针对抗原的B细胞、细胞毒性T 淋巴细胞(CTL)和/或辅助T淋巴细胞(Th)应答并阻断或治愈或 至少部分地阻止或减慢疾病或病症的症状和/或并发症。通过分泌细 胞因子，一个T细胞亚群起T辅助细胞的作用，所述细胞因子有助 于活化B细胞以分泌抗体或有助于另一种T细胞亚群使成为效应子 细胞毒性T淋巴细胞(CTL)。
如在本文中使用的，术语“治疗”覆盖任何可通过嵌合抗原治 疗的动物(特别是人)体中的病症的治疗，并且包括：(i)防止该 病症在受治疗者体内发生，该受治疗者可能易感染所述病症，但尚 未诊断患有该病症；(ii)抑制该病症，例如阻止或减慢其发展；或 (iii)减缓该病症，例如使该病症或其症状消退。
如在本文中使用的，“治疗性”的药剂是指这样的试剂，该药 剂能导致疾病的症状完全消失，或降低该疾病症状的严重性。
“异源(异种型，xenotypic)”意思是指来自于除了宿主之外 的种属。例如，由小鼠基因组克隆的重组表达的抗体对人是异源的 但对小鼠并不是异源的，不管该重组表达的抗体在细菌、昆虫、人 还是小鼠细胞内产生。因此，在本发明的嵌合抗原的背景中，异源 TBD(例如，异源抗体分子或异源抗体片段)指衍生自不同于嵌合 抗原结合的种属。
C.嵌合抗原
本发明的组合物包括嵌合抗原，该嵌合抗原包括免疫应答结构 域(IRD)和靶结合结构域(TBD)组成。在本发明的优选具体实 施方式中，IRD部分能够诱导体液和/或T细胞应答，而靶结合部分 能够结合APC如树突细胞。本发明的嵌合抗原还可以包括下列中 的一个或多个：免疫球蛋白的铰链区(或其节段)、免疫球蛋白的 CH1区(或其节段)、肽连接子、蛋白酶切割位点、以及适用于提纯 步骤的标签。本发明的嵌合抗原能够结合于APC并活化APC。通 常但非必需的，该IRD是TBD的N末端。
在本发明的某些具体实施方式中，嵌合抗原的IRD包括一种或 多种(例如，2、3、4、5、6、7、8、9或10)蛋白(抗原)，所述 蛋白(抗原)选自包括诸如本文中所述的一种或多种HCV蛋白或 一种或多种重组HCV蛋白。在这样的蛋白之间可以可选地是连接 子，诸如本文中所披露的任何连接子。在本发明的嵌合抗原中，可 以使用这些抗原的免疫原片段而非全长抗原。如果嵌合抗原中存在 一种以上抗原，则可仅使用全长抗原、仅使用免疫原片段，或使用 全长抗原与全长蛋白的混合物。
本发明的嵌合抗原可以为单体(即，它们包含包括IRD和TBD 的单个单位)或者它们可以为多体(即，它们可以包含多个单位， 每个单位包括IRD和TBD)。多体可以为例如二聚体、三聚体、四 聚体、五聚体、六聚体、七聚体(septamer)、或八聚体。在这样的 多聚体中，单个单位可以相同或不同，或者某些相同而其他不同。 图1示出了二聚嵌合抗原。
在本发明的另一具体实施方式中，嵌合抗原的IRD包括融合于 一种或多种HCV蛋白或者一种或多种重组HCV蛋白的6xHis肽。
在本发明的某些具体实施方式中，嵌合抗原的TBD可以为抗 体片段。该TBD可以为与待给予相关嵌合抗原的宿主(受治疗者) 相同的种属。另一方面，在本发明的优选具体实施方式中，嵌合抗 原的TBD是与宿主异源的抗体片段。例如，如果宿主是人，则示 例性的异源抗体片段是非人动物抗体片段，如小鼠抗体片段。在本 发明的某些具体实施方式中，该异源抗体片段包括鼠Fc片段。在 本发明的最优选的具体实施方式中，TBD包括异源Fc片段(或其 节段)、铰链区(或其节段)、CH1区(或其节段)、以及适合于将靶 结合结构域连接于该IRD的肽键。
本发明还包括连接分子(linking molecule)的用途，该连接分 子将IRD连接于TBD。示例性的连接子分子(连接分子，linker molecule)包括亮氨酸拉链、和生物素/抗生物素蛋白。其他可使用 的连接子(例如在融合蛋白中)是肽序列。这样的肽连接子的长度 通常为约2至约40个氨基酸(例如，约4-10个氨基酸)。示例性的 肽连接子包括氨基酸序列SRPQGGGS(SEQ ID NO：1)。其他连接 子在本领域中是众所周知，并且通常富含甘氨酸和/或丙氨酸，以允 许其区域之间连接的灵活性。通常，在本发明的嵌合抗原中，IRD 和TBD不通过TBD(例如，抗体分子或抗体分子片段)的抗原结 合部分与IRD上适当的抗原表位之间的物理性抗原-抗体相互作用 而连接。
在一个具体实施方式中，本发明的嵌合抗原是具有两个部分的 融合蛋白，即，含抗原序列(例如病毒抗原)的IRD、以及含异源 Fc片段的TBD。异源鼠Fc片段结合于APC，特别是树突细胞上的 特异性受体。因此，嵌合抗原的结合区特异性地靶向抗原呈递细胞。 然后，APC的内部工具(internal machinery)加工该嵌合抗原，并 呈递MHC I类和II类分子上的特异性肽以接触并活化T细胞并且 产生体液和细胞免疫应答来清除感染细胞或其他适当的不期望的 细胞如癌细胞。
在另一个具体实施方式中，该嵌合抗原可以为具有两个部分的 融合蛋白，即修饰的病毒抗原或多种抗原、抗原蛋白片段或肽、或 者其特异位点具有糖基化的任何一种、以及也可以被糖基化的异源 鼠Fc片段。
在又一具体实施方式中，本发明提供了另一种修饰的嵌合抗 原，其中所述抗原(IRD)是生物素化的，而所述TBD(例如，Fc 片段)与抗生物素蛋白(如抗生物素蛋白链菌素)轭合，例如在融 合蛋白中。这样的抗生物素蛋白轭合的TBD促进了一大类 IRD-TBD轭合物的生成。当然，应该理解，IRD可与抗生物素蛋白 轭合(例如，以融合蛋白的形式)，而TBD(例如，Fc片段)可为 生物素化的。
在又一具体实施方式中，本发明提供了IRD(抗原)与TBD (例如，抗体Fc片段)之间通过化学轭合的结合。
本发明的一个具体实施方式包括HCV的重组抗原(其通过分 子生物学技术融合于抗体片段)的用途、在杆状病毒表达系统中生 成融合蛋白以及其用作(use as)抵抗慢性HCV感染的治疗性疫苗。 本发明提供了一种有效的方法，用于在体内将HCV抗原递送至 APC以便产生广泛的免疫应答，涉及CTL和Th2(抗体)应答的 Th1应答。预选的病毒抗原(例如，不能被宿主免疫系统识别的抗 原)的免疫原性可由于异源抗体片段的存在以及昆虫细胞表达系统 中特异性糖基化的存在而提高。由于存在抗体组分，抗原-抗体片段 的融合蛋白将结合于在免疫系统的多种细胞(例如APC)上存在的 特异性受体，其中所述多种细胞包括树突细胞、巨噬细胞、单核细 胞、B细胞、以及粒细胞。给予人或动物的融合蛋白将由APC，特 别是DC内化，将被水解为小肽，并与MHC I类和/或MHC II类分 子形成复合物而呈递于细胞表面，T细胞具有适当特异性的抗原特 异性T细胞受体(TCR)。以这种方式，该嵌合抗原(融合蛋白) 可以引起广泛的免疫应答并清除病毒感染。
如在本文中所使用的，术语“靶结合结构域(TBD)”指免疫 球蛋白重链恒定区的全长或部分，其是能够结合于APC上Fc受体 的抗体片段。根据本发明，TBD是一种能够结合于APC，特别是 树突细胞上的Fc受体的蛋白，并且随后可通过受体介导的吸收(摄 取)而转运到APC内。根据本发明，Fc片段的存在增加了嵌合抗 原通过APC，特别是DC上的Fc受体的吸收。通过特异性吸收， 可加工该病毒抗原并作为异质而呈递；因此，可有效地引起针对该 病毒抗原的免疫应答，其本身可被宿主耐受或引起宿主体内极其微 弱的免疫应答。
此外，根据本发明，优选地，嵌合抗原能够结合于巨噬细胞甘 露糖受体/C-型凝集素受体。巨噬细胞甘露糖受体(MMR)，也称为 CD206，在诸如DC的APC上表达。该分子是内吞受体的C型凝集 素家族的一个成员。甘露糖化的嵌合抗原可以被CD206结合并内 化。通常，认为外源性抗原主要通过MHC II类途径加工和呈递。 然而，在通过CD206靶向的情况下，有证据表明，涉及MHC I类 和MHC II类途径[Apostolopoulos et al.(2000)Eur.J.Immunol. 30：1714；Apostolopoulos et al.(2001)Curr.Mol.Med.1：469； Ramakrishna et al.(2004)J.Immunol.172：2845-2852]。因此，用特异 性靶向CD206的嵌合抗原负载的单核细胞源树突细胞将诱导potent I类依赖性CD8+CTL应答和II类依赖性增殖T辅助细胞应答 [Ramakrishna et al.(2004)J.Immunol.172(5)：2845-52]。
示例性的TBD来自小鼠抗HBVsAg mAb(杂交瘤2C12)(如 在pFastBac HTa表达载体中克隆的)，并且在昆虫细胞表达系统 (Invitrogen，Carlsbad，CA，USA)中表达。从小鼠抗HBVsAg mAb 的N末端到C末端，该TBD由部分CH1(含有氨基酸序列VDKKI； SEQ ID NO：2)和铰链-CH2-CH3组成。用于实施本发明的IgG1分 子的恒定区可以包含连接肽、部分CH1-铰链以及CH2和CH3区。 单体TBD的铰链区可以与另一个TBD分子形成双硫键。该蛋白可 以表达为N末端融合蛋白，该N末端融合蛋白具有6xHis标签、7 个氨基酸rTEV(重组性烟草蚀纹病毒)蛋白酶切割位点、以及抗 HBVsAg(杂交瘤2C12)而生成的异源(鼠)mAb靶结合结构域 (TBD)的N末端融合。该示例性的TBD是来自2C12的IgG1 mAb 恒定链的片段，其中氨基酸序列包括8个氨基酸的肽连接子、CH1 区的5个氨基酸、铰链序列、CH2和CH3区序列，以及可选地，由 来源于表达载体的核苷酸编码的另外10个氨基酸的C末端肽。本 文中限定的示例性TBD片段形成亲代分子，用于与来自HCV病毒 的抗原一起生成融合蛋白。
D.新型多核苷酸
本发明的另一方面涉及编码本文所披露的所有嵌合抗原的多 核苷酸。该多核苷酸包括编码免疫应答结构域的第一多核苷酸部分 以及编码靶结合结构域的第二多核苷酸部分。该第一和第二多核苷 酸部分可以位于相同或不同的核苷酸链上。
除了上文所描述的本发明嵌合抗原区域外，本发明的多核苷酸 通常包含前导序列，该前导序列编码促进使嵌合抗原从其生成细胞 (如，酵母或昆虫细胞)中分泌出来的前导肽。相关前导序列通常 在从细胞中分泌前而从该嵌合抗原中切割。前导序列可以是本文所 披露的那些序列中的任何一种并且可以是本领域中已知的其他序 列，例如具有的氨基酸序列为MPLYKLLNVLWLVAVSNAI(SEQ ID NO：37)的AcNPV甲壳酶信号序列，该氨基酸序列由核苷酸序列 ATGCCCTTGTACAAATTGTTAAACGTTTTGTGGTTGGTCGCCG TTTCTAACGCGATT(SEQ ID NO：38)以及α-交配因子前导序列 (leader)编码，其中该核苷酸序列可用于昆虫细胞中的表达；而 该α-交配因子前导序列可用于在酵母细胞(例如，巴斯德毕赤 (Pichia pastoris)酵母细胞)中的表达。
本发明提供了对应于或互补于编码嵌合抗原、mRNA的基因、 和/或编码序列的多核苷酸，优选以隔离型(isolated form)，包括编 码嵌合抗原变异蛋白的多核苷酸；DNA、RNA、DNA/RNA杂合体， 以及相关分子、多核苷酸或寡核苷酸(其互补于编码嵌合抗原或 mRNA序列或其部分的基因或与其具有至少90％的同源性)；以及 杂交于编码嵌合抗原、mRNA的基因、或杂交于编码嵌合抗原的多 核苷酸的多核苷酸或寡核苷酸。
此外，本发明还包括本文中所披露的可特异性编码嵌合抗原的 基因的类似物。类似物包括例如突变体，该突变体保留可引起免疫 应答的能力，且优选与任何一种编码嵌合抗原的多核苷酸具有至少 80％、更优选90％、并且最优选95％的同源性，如由在SEQ ID NO：39 和41-51中列出的序列所特别描述的。典型地，这样的类似物仅通 过1-10个密码子变化而区分。实例包括具有来自病毒抗原或抗体片 段的天然氨基酸序列的较小氨基酸变异的多肽；特别地，具有保守 性氨基酸置换的多肽。保守性置换是那些发生在其侧链中相关的氨 基酸家族内的置换。可遗传性编码的(genetically-encoded)氨基酸 通常分为四个家族：(1)酸性＝天冬氨酸、谷氨酸；(2)碱性＝赖氨 酸、精氨酸、组氨酸；(3)非极性＝丙氨酸、缬氨酸、亮氨酸、异 亮氨酸、脯氨酸、苯丙氨酸、蛋氨酸、色氨酸；以及(4)不带电 荷的极性＝甘氨酸、天冬酰胺、谷氨酰胺、胱氨酸、丝氨酸、苏氨 酸、酪氨酸。苯丙氨酸、色氨酸、以及酪氨酸有时共同地分类为芳 香族氨基酸。例如，预计用异亮氨酸或缬氨酸置换亮氨酸、用谷氨 酸置换天冬氨酸、用丝氨酸置换苏氨酸的隔离置换(isolated replacement)，或用结构上相关的氨基酸置换氨基酸的相似保守性置 换将不会对生物活性产生大的影响，是合情合理的。与本文中所披 露的任一多肽具有基本上相同的氨基酸序列，但具有基本上并不影 响该嵌合抗原引起免疫应答能力的较小氨基酸置换(取代)的多肽 分子也在嵌合抗原的定义范围内。衍生物包括具有其他嵌合抗原分 子的聚集轭合物以及具有非相关化学基团(moieties)的共价轭合物。 通过本领域中已知的方式，将官能团连接于嵌合抗原氨基酸链中或 在N或C末端残基中存在的基团来制备共价衍生物。
表1中给出了氨基酸的缩写。
表1：氨基酸缩写
丙氨酸 Ala A 精氨酸 Arg R 天冬酰胺 Asn N 天冬氨酸 Asp D 半胱氨酸 Cys C 谷氨酸 Glu E 谷氨酰胺 Gln Q 甘氨酸 Gly G 组氨酸 His H 异亮氨酸 Ile I 亮氨酸 Leu L 赖氨酸 Lys K 蛋氨酸 Met M 苯丙氨酸 Phe F 脯氨酸 Pro P 丝氨酸 Ser S 苏氨酸 Thr T 色氨酸 Trp W 酪氨酸 Tyr Y 缬氨酸 Val V
可在蛋白内进行保守性氨基酸置换而不改变该蛋白的构象或 功能。本发明的蛋白，或可用于本发明的蛋白，可以包括不超过15 个(例如，不超过14、13、12、11、10、9、8、7、6、5、4、3、2、 或1)保守置换。这样的变化包括用异亮氨酸(I)、缬氨酸(V)和 亮氨酸(L)中任何一种置换(代替)这些疏水性氨基酸中其他任 何一种；用天冬氨酸(D)置换谷氨酸(E)，并且反之亦然；用谷 氨酰胺(Q)置换天冬酰胺(N)，并且反之亦然；以及用丝氨酸(S) 置换苏氨酸(T)，并且反之亦然。根据特定氨基酸的环境及其在蛋 白三维结构中的作用，其他置换也可以认为是保守的。例如，甘氨 酸(G)和丙氨酸(A)经常可互换，正如可以是丙氨酸(A)和缬 氨酸(V)。相对疏水的蛋氨酸(M)通常可以与亮氨酸和异亮氨酸 互换，并且有时与缬氨酸互换。在某些位置赖氨酸(K)和精氨酸 (R)经常可互换，其中在所述位置中氨基酸残基的显著特征是其 带电并且这两个氨基酸残基的pK′s差别不显著，在特殊环境中，还 有一些变化可认为是“保守的”[参见例如，Biochemistry 4 th Ed.， Lubert Stryer ed.(W.H.Freeman and Co.)，pages 18-23；Henikoff et al. (1992)Proc Natl Acad Sci USA 89：10915-10919；Lei et al.(1995)J. Biol.Chem.270：11882-11885]。
其他类似多核苷酸包括那些在任一TBD和/或任一IRD中具有 一个或多个(例如，2、3、4、5、6、7、8、9、10、12、15、或20) 插入(添加)或缺失的多核苷酸，其中TBD和/或IRD用来增加相 关嵌合抗原的可溶性。所述插入或缺失可以为该嵌合抗原中由多核 苷酸编码的一个或多个(例如，2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、 12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、30、 40、50、60、70、80、90、100、或更多)氨基酸(以及多核苷酸 本身内相应数量的核苷酸)。
本发明还包括与编码嵌合抗原的多核苷酸选择性杂交的多核 苷酸。优选地，本发明的多核苷酸将在严格的条件下与SEQ ID NO：39和41-51中所列出的序列中的一个或多个杂交。杂交反应的 严格性可由本领域中的普通技术人员很容易地确定，并且通常是根 据探针长度、洗涤温度以及盐浓度的经验计算。通常，较长的探针 需要较高的适当退火温度，而较短的探针则需要较低的温度。当互 补链存在于低于其解链温度的环境中时，杂交通常取决于变性核酸 序列对重新退火的能力。探针与可杂交序列之间的期望同源性程度 越高，则所使用的相对温度越高。因此，其遵循如下规则，即，较 高的相对温度将倾向于使杂交条件更严格，而较低温度则使得杂交 条件不那么严格。关于杂交反应严格性的另外的细节和解释，参见 例如Ausubel et al.，Current Protocols in Molecular Biology，Wiley Interscience Publishers，(1995，作为April 2004补充的，增刊66) 在2.9.1-2.10.8和4.9.1-4.9.13页。
如本文中所定义的，“严格性条件”或“高严格性条件”可以 通过但不限于以下来鉴别：(1)在50℃利用低离子强度和高洗涤温 度，例如0.015M氯化钠/0.0015M柠檬酸钠/0.1％十二烷基硫酸钠； (2)在杂交过程中，在42℃下，采用变性剂如甲酰胺，例如50％ (v/v)甲酰胺(含0.1％牛血清白蛋白)/0.1％菲柯尔(Ficoll)/0.1％ 聚乙烯吡咯烷酮/50mM、pH 6.5的磷酸钠缓冲液(含750mM氯化 钠、75mM柠檬酸钠)；或者(3)在42℃下，采用50％甲酰胺、 5X SSC(0.75M氯化钠、0.075M柠檬酸钠)、50mM磷酸钠(pH 6.8)、0.1％焦磷酸钠、5X Denhardt溶液、超声鱼精DNA(50μg/mL)、 0.1％SDS、以及10％硫酸葡聚糖，其中洗涤为在42℃的0.2X SSC (氯化钠/柠檬酸钠)和55℃的50％甲酰胺，接着在55℃下高严格 性洗液由含EDTA的0.1X SSC组成。“中度严格性条件”是那些 由在(但不限于)Sambrook et al.，Molecular Cloning：A Laboratory Manual，2 nd Ed.，New York：Cold Spring Harbor Press，1989中描述的 条件，并且包括使用那些不如上述条件严格的洗涤液和杂交条件 (例如，温度、离子强度和％SDS)。中度严格条件的一个实例是 在37℃下、在包含20％甲酰胺、5X SSC(150mM氯化钠、15mM 柠檬三钠)、50mM磷酸钠(pH 7.6)、5X Denhardt溶液、10％硫 酸葡聚糖以及20mg/mL变性(denatured sheared)鱼精DNA的溶 液中孵育过夜，随后在约37-50℃下、在1X SSC中洗涤滤膜(过滤 器，filters)。本领域的技术人员将认识到如何调节温度、离子强度 等，如对适应诸如探针长度等因素所必需的。
本发明的多核苷酸的具体实施方式包括：编码嵌合抗原的多核 苷酸，其中所述嵌合抗原具有选自如在SEQ ID No：40和52-62中所 列出的任一序列中的序列，嵌合抗原的核苷酸序列选自如在SEQ ID No：39和41-51中所列出的序列中的任何一个，但用U核苷酸置换 (取代)T核苷酸。例如，嵌合抗原核苷酸的具体实施方式包括但 不限于：
(a)多核苷酸，该多核苷酸包含选自如在SEQ ID No：39和 41-51中所列出的任一序列中的序列，其中T还可以为U；
(b)多核苷酸，其序列至少80％与选自如在SEQ ID No：39和 41-51中所列出的任一序列中的序列同源；
(c)多核苷酸，其编码嵌合抗原，该嵌合抗原的序列由包含 在本文所披露的任一质粒中的DNA编码；
(d)多核苷酸，其编码嵌合抗原，该嵌合抗原的序列是选自 如在SEQ ID No：40和52-62中所列出的任一序列中的序列；
(e)多核苷酸，其编码嵌合抗原相关的蛋白，该蛋白至少90％ 等同于其序列为选自如在SEQ ID No：40和52-62中所列出的序列中 的任何一个的全长氨基酸序列；
(f)多核苷酸，其完全互补于(a)-(e)中任一个的多核苷 酸；
(g)多核苷酸，其在严格的条件下选择性杂交于(a)-(f) 中的多核苷酸；以及
(h)多核苷酸，其包含选自如在SEQ ID No：39和41-51中所 列出的任一序列的序列，但缺乏除IRD(例如，本文中所列出的 HCV蛋白)和TBD之外的全部或部分序列，并且可选地包含例如 一个或多个可替替换的连接子和/或可替替换的分泌(前导)肽。此 外，可将额外序列(例如，编码TBD的C末端的氨基酸的载体衍 生序列)从本发明的多核苷酸中缺失掉。这样的额外序列可以为那 些编码1-15(例如2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、或 14)个氨基酸的序列。
本发明还提供了包含嵌合抗原多核苷酸、其类似物或同源物的 重组DNA或转录的RNA分子，包括但不限于噬菌体、质粒、噬菌 粒、粘粒、YAC(酵母人工染色体)、BAC(细菌人工染色体)、 以及各种本领域中众所周知的病毒和非病毒载体，以及用这样的重 组DNA或RNA分子转化或转染的细胞。用于生成这样的分子的方 法是众所周知的[参见，例如上文Sambrook et al.，1989]。
本发明进一步提供了一种在适合的原核或真核宿主细胞内包 括重组DNA分子的宿主-载体系统，该重组DNA分子包含嵌合抗 原多核苷酸、其类似物或同源物。适合的真核宿主细胞的实例包括 酵母细胞、植物细胞、或动物细胞如哺乳动物细胞或昆虫细胞(例 如，杆状病毒可感染的细胞如Sf9、Sf21、expressSF+ 、果蝇S2或 High FiveTM细胞)。适合的哺乳动物细胞的实例包括各种前列腺癌 细胞系如DU145和TsuPr1、其他可转染或可转导的前列腺癌细胞 系、原代细胞(PrEC)以及多种常规用于表达重组蛋白的哺乳动物 细胞(例如，COS、CHO、293、293T细胞)。更具体地说，利用 本领域中常规采用且广为人知的任何数量的宿主-载体系统，包含嵌 合抗原或其片段、类似物或同系物的编码序列的多核苷酸可以用来 生成其嵌合抗原。
各种各样的适合于表达其嵌合抗原的宿主-载体系统是可获得 的，参见例如上文Sambrook et al.，1989；上文Ausubel，Current Protocols in Molecular Biology，1995。优选的用于昆虫细胞表达的载 体包括但不限于转移载体质粒pFastBac HTa(Invitrogen)。利用这 样的转移载体质粒，可在昆虫细胞内生成重组杆状病毒，并可以使 用其来感染几种包括例如Sf9、Sf21、express SF+ 、果蝇S2以及 High FiveTM的昆虫细胞系，以表达嵌合抗原。一个实例是Bac-to-Bac 杆状病毒表达系统(Invitrogen)。可替换地，优选的酵母表达系统 包括酿酒酵母、粟酒裂殖酵母(schizosaccharomyces pombe)、巴斯 德毕赤酵母(pichia pastoris)、以及八月毕赤酵母(pichia august)。 本发明的宿主-载体系统可以用于生产嵌合抗原。
嵌合抗原或者其类似物或同系物还可以通过用含有适当的启 动子(例如，昆虫细胞启动子)并编码嵌合抗原的质粒构建体稳定 转染细胞(例如，昆虫细胞)而生成。例如，编码嵌合抗原或者其 类似物或同系物的重组质粒pMIB-V5(Invitrogen)可用于稳定转染 Sf9昆虫细胞。在Sf9细胞中表达嵌合抗原或相关蛋白，并利用标 准的纯化方法分离该嵌合抗原。还可以采用各种本领域中众所周知 的其他表达系统。编码在框架内连接于所述嵌合抗原编码序列的前 导肽的表达构建体可以用于生成分泌形式的嵌合抗原。
如本文中讨论的，遗传密码的冗余度允许嵌合抗原基因序列中 的变异。特别地，本领域已知，特异性宿主种属经常具有特异性密 码子偏好，因此技术人员可将所披露的序列改造为优选用于期望宿 主。例如，优选的类似物密码子序列通常具有用较高频率的密码子 取代的稀有密码子(即，其在期望宿主的已知序列中的使用频率低 于约20％)。特异种属的密码子偏好例如通过利用互联网例如环球 网URL www.kazusa.or.jp/codon上可获得的密码子使用表来计算。
已知另外的序列修饰可增强细胞宿主内的蛋白表达。这些修饰 包括去除编码假性多腺苷酸化信号、外显子/内含子剪接位点信号、 转座子样重复序列，和/或其他这样的已确定对基因表达有害的序 列。将序列的GC含量调整为给定细胞宿主的平均水平，如通过参 照在宿主细胞中表达的已知基因所计算的。在可能的情况下，修饰 序列以避免预测的发夹二级mRNA结构。其他有用的修饰包括在开 放阅读框架起始位置插入翻译起始共有序列，如在Kozak[(1989) Mol.Cell Biol.9：5073-5080]中所描述的。本领域技术人员应当理解， 真核生物核糖体仅在5’附近AUG密码子启动翻译的一般规则仅 在极少数条件下会失效[参见，例如Kozak(1995)Proc.Natl.Acad. Sci USA 92：2662-2666；Kozak(1987)Nucl. Acids Res. 15：8125-8148]。
大肠杆菌(大肠埃希杆菌，Escherichia coli)克隆(每一种均 用下面列出的质粒中的一种转化)于2006年10月11日在布达佩 斯条约下保藏于加拿大国际保藏机构(IDAC)，1015 Arlington Street Winnipeg，Manitoba，R3E 3R2 Canada(电话号码：(204)789-6030； 传真号：(204)789-2018)。通过指定的IDAC登录号很容易地鉴别 每一克隆。
质粒 IDAC登录号
pFastBacHTa-gp64 HCV NS3mutS-TBD 111006-01
pFastBacHTa-gp64 HCV NS3mut-TBD 111006-02
pFastBacHTa-gp64 NS3-NS5A-TBD 111006-03
pFastBacHTa-gp64 HCV NS5A-TBD 111006-04
pFastBacHTa HCV NS3mut-TBD 111006-05
pFastBacHTa HCV NS3-NS4B-NS5A-TBD 111006-06
从提交本申请之前，通过IDAC保藏的样品取自与由ViRexx Medical Corporation保存的相同的保藏物。所述保藏物将在IDAC 保藏处无限制的保存30年或最后一次索取(要求)后5年或该专 利的有效年限，哪个更长则将选用哪个，并且如果在该期限内所述 保藏物变得无法存活，则其将被取代。
E.本发明的药物组合物
本发明的一个方面涉及包含药用赋形剂和嵌合抗原的药物组 合物，该嵌合抗原包括免疫应答结构域和靶结合结构域，其中所述 靶结合结构域包括抗体片段。在治疗性应用中，可将药物组合物以 一定量给予患者，其中所述量足以引起有效的针对抗原的B细胞、 细胞毒性T淋巴细胞(CTL)和/或辅助T淋巴细胞(Th)应答并 预防感染或者治愈或至少部分地阻止或减缓感染的症状和/或并发 症。对该用途有效的用量将根据例如所给予的特定组合物、给药方 式、待治疗疾病的分期(阶段)和严重性、受治疗者的体重和总体 健康状态、以及开药医生的判断。
对于初始治疗性免疫(用嵌合抗原)的剂量通常存在于单位剂 量范围中，其中较低值为约1、5、50、500或1,000ng，而较高值 为约10,000、20,000、30,000或50,000μg。对于人类的剂量值通常 在约500ng至约50,000μg/70kg受治疗者体重。可根据受治疗者的 反应和病症(情况)给予按照几天至几个月的加强方案的约1.0ng 至约50,000μg之间的嵌合抗原的加强剂量。给药应持续直到至少 临床症状或实验室检测表明该病症已被防止、阻止、减缓或消除并 持续一段时间。根据本领域中已知的方法学来调整剂量、给药途径， 以及给药方案。
人嵌合抗原的单位剂型通常包括在药物组合物中，该药物组合 物包括可接受的载体(在一个具体实施方式中为含水载体)的人类 单位剂量并且以本领域普通技术人员已知的体积/用量给予以便用 于将这类多肽给予人类(参见例如，Remington：The Science and Practice of Pharmacy.20th Edition，A.Gennaro，Editor，Lippincott Williams & Wilkins，Baltimore，Md.，2000)。如本领域普通技术人员 所理解的，多种因素可影响特定病例的理想剂量。这样的因素包括 例如嵌合抗原的半衰期、嵌合抗原的亲合力、组合物的免疫原性、 期望的稳态浓度水平、给药途径、治疗频率、和与本发明的治疗方 法联合使用的其他药剂的影响、以及特定受治疗者的健康状态。
通常，给予受治疗者可引起针对嵌合抗原的免疫应答的足够的 嵌合抗原。TBD使该嵌合抗原靶向于APC如DC上的特异性受体。 该嵌合抗原经抗原呈递途径被内化、加工以引起体液以及细胞免疫 应答两者。
在某些具体实施方式中，将本发明的组合物应用于严重疾病状 态，即威胁生命或潜在威胁生命的情形。在这样的情况中，由于本 发明优选的组合物的嵌合抗原的相对无毒性质，给予比这些所述的 剂量超过很多的嵌合抗原是可能的并且被治疗医师认为是理想的。
本发明的嵌合抗原在药物制剂中的浓度可很大的变化，即重量 从低于约0.1％，通常为或至少约2％至高达20％至50％或更高，并 且将按照所选择的特定给药模式主要通过液体体积、粘度等进行选 择。
该药物组合物可以通过本领域中已知的任何途径来递送，例如 胃肠外、鞘内、血管内、静脉内、肌内、经皮、皮内、皮下、鼻内、 局部、口服、直肠、阴道、肺或腹膜内。优选地，该组合物通过胃 肠外途径递送，例如皮下或皮内给药。
该药物组合物可以通过将期望的嵌合抗原与适当的适合于预 期给药途径的载体混合来制备。在制备本发明的药物组合物时，通 常将该嵌合抗原与赋形剂混合、用赋形剂稀释或包装在载体内，该 载体可以是胶囊、囊剂、纸或其他外壳(容器，container)形式。 当药用赋形剂用作稀释剂时，其可以为固态、半固态或液态材料， 该材料用作用于治疗剂的赋形物、载体或介质。因此，该组合物可 以是片剂、丸剂、粉剂(散剂)、锭剂、囊剂、扁胶囊(扁囊剂)、 酏剂、悬浮液、乳剂、溶液、糖浆、气溶胶(固态或在液体介质中)、 软膏(例如，含按重量计达10％的嵌合抗原)、软和硬明胶胶囊、 栓剂、无菌可注射溶液、以及无菌包装粉末。
适合的赋形剂的某些实例包括但不限于葡萄糖、蔗糖、丙三醇、 山梨醇、甘露醇、淀粉、阿拉伯胶、磷酸钙、藻(朊)酸盐、西黄蓍 胶、明胶、硅酸钙、微晶纤维素、聚乙烯吡咯烷酮、纤维素、无菌 水、糖浆、以及甲基纤维素。所述制剂还可以包括：润滑剂如滑石、 硬脂酸镁和矿物油；湿润剂；乳化和悬浮剂；防腐剂如羟基苯甲酸 甲酯和羟基苯甲酸丙酯；甜味剂；以及调味剂(增香剂)。可以通 过采用本领域已知的程序来配制本发明的组合物以使在给予受治 疗者后提供嵌合抗原的快速、持续或缓释。参见，例如上文 Remington第903-92页和1015-1050页。
为了制备固态组合物如片剂，可将嵌合抗原与药用赋形剂混 合，以形成包含本发明嵌合抗原的同源混合物的固态预制剂组合 物。当将这些预制组合物称为同源的时，是指使该嵌合抗原在整个 组合物中均匀分散，以使该组合物可以容易地再分为同等有效的单 位剂型如片剂、丸剂和胶囊。
可对本发明的片剂或丸剂进行包衣(涂敷)或以其他方式混合 以提供一种能提供延长作用的优势的剂型。例如，该片剂或丸剂可 以包括内部剂量和外部剂量组分，后者为前者上的包膜形式。该两 个组分可以由肠层分开，该肠层用来抵抗胃内分解并允许内部组分 完整通过十二指肠或延缓释放。各种物质可以用于这样的肠层或涂 层，这样的物质包括大量聚合物酸(高分子酸，polymerci acid)以 及聚合物酸与这样的物质诸如虫胶、鲸蜡醇和醋酸纤维素的混合 物。
其中可结合本发明的新型组合物并用于口服或通过注射的液 态形式包括含水溶液、适合地调味的糖浆、含水或油悬浮液以及调 味乳浊液(具有食用油如玉米油、棉籽油、芝麻油、椰子油、或花 生油)、以及酏剂及类似药用载体。
在制备用于胃肠外给药的组合物时，必须严格注意进行紧张性 调整以降低刺激。可重组性组合物(reconstitutable composition)是 以干燥形式包装的无菌固体。优选可重组性组合物，因为当其以干 燥固体而非即时给予的溶液储存时会更稳定。干燥固体通常包装于 具有丁基橡胶塞的无菌容器中，以确保该固体以最佳湿度范围保 存。可重组性干燥固体通过干式充填法、喷雾干燥法、或冻干法形 成。这些方法的描述可在例如上文Remington，第681-685页和 802-803页中找到。
用于胃肠外注射的组合物通常是稀释的，且其中以较高比例存 在的组分是载体。该载体通常不具有治疗活性且是无毒的，但能以 适于吸收的形式将嵌合抗原呈递给身体组织。当嵌合抗原以含水溶 液呈递时，吸收通常将最迅速且完全地发生。然而，用水溶性液体 对载体进行修饰或者用水不溶性液体对载体进行置换(取代)可以 影响吸收速率。优选地，用于该组合物的最有价值的载体是等张盐 水。在制备适合于注射的组合物时，可以使用含水载体、水溶性载 体、以及非水性载体。
在本发明的可注射性组合物中还可以包括其他物质以改善或 保障组合物的质量。因此，加入的物质可以影响溶解性，适于受治 疗者舒适度、增强化学稳定性或保护该制备物免于微生物生长。因 此，该组合物可以包括适当的增溶剂、作为抗氧化剂的物质、以及 用作防腐剂以防止微生物生长的物质。这些物质将以适合于其功能 但并不不利地影响该组合物的作用的量存在。适当的抗微生物药剂 的实例包括硫柳汞、氯化苄乙氧铵、氯化苯甲烃铵、酚、对羟基苯 甲酸甲酯、对羟基苯甲酸丙酯。适当的抗氧化剂可以在上文 Remington，第1015-1017页中找到。
在某些具体实施方式中，脂质体、毫微型胶囊、微粒、脂质颗 粒、小囊泡等用于本发明的嵌合抗原的给药。特别地，本发明的组 合物可被配制成用于包封在脂质颗粒、脂质体、小囊泡、毫微球或 毫微型颗粒等的递送。可替换地，本发明的组合物可共价或非共价 结合于这样的载体赋形剂的表面。
通过脂质体给予的组合物还可以用来：1)使嵌合抗原靶向于 特定组织如淋巴组织；2)选择性靶向于APC；3)携带另外的刺激 性或调节性分子；或4)增加嵌合抗原组合物的半衰期。脂质体包 括乳液、泡沫、微团、不溶性单层、液晶、磷脂分散体、薄片状层 (lamellar layer)等。在这些制备物中，将待递送的嵌合抗原单独 合并为脂质体的一部分，或者与结合于淋巴细胞中常见受体的分子 如结合于CD45抗原的单克隆抗体或与其他治疗性或免疫原性组合 物一起合并。因此，用本发明期望的嵌合抗原填充或装饰的的脂质 体可以直接定向于淋巴细胞的位置，随后脂质体在该位置递送所述 嵌合抗原。根据本发明使用的脂质体由标准的成泡脂质形成，所述 脂质通常包括中性和带负电荷的磷脂和固醇如胆固醇。通常，通过 考虑例如脂质体大小、用于期望给药途径的脂质体如在血流中的酸 不稳定性和稳定性而指导脂质的选择。多种方法可用于制备脂质体 [如在例如Szoka et al.(1980)Ann.Rev.Biophys.Bioeng.9：467-508； 以及美国专利第4,235,871号、第4,501,728号、第4,837,028号和 第5,019,369号中所描述的]。包含嵌合抗原的脂质体悬浮液可经静 脉、附近或局部等途径以一定剂量给予，所述剂量根据特别是给药 方式、待递送的嵌合抗原、以及待治疗疾病的阶段而变化。
用于吸入法或吹入法的组合物包括药用、含水或有机溶剂中的 溶液和悬浮液，或其混合物以及粉末。该液态或固态组合物可以包 含如本文所描述的适合的药用赋形剂。该组合物可以通过口服或鼻 呼吸途径给予，以用于局部或全身效应。药用溶剂中的组合物可以 通过使用惰性气体来雾化。喷化溶液可以直接从喷化装置吸入或者 该雾化装置可以连接到面罩支管上或间歇正压呼吸机上。溶液、悬 浮液或粉末组合物可以优选口服或经鼻从以适合方式递送制剂的 装置来给予。
本发明的方法中所采用的另一种制剂采用经皮递送装置(“贴 片”)。这样的经皮贴片可以用来以可控量提供连续或间断输注本 发明的嵌合抗原。用于递送药物试剂的经皮贴片的构建和用途在本 领域是众所周知的。参见，例如美国专利第5,023,252号，将其结 合于此作为参考。这样的贴片可构建用于连续、脉冲或按要求递送 药物试剂。
此外，除了嵌合抗原和药用赋形剂外，包括至少一种抗病毒性 治疗剂或化疗剂可能是有利的。这些药剂包括但不限于干扰素-α 2a/b以及抗病毒剂如利巴韦林。
在某些具体实施方式中，可能期望在本发明的药物组合物中包 括至少一种初始化B淋巴细胞或T淋巴细胞的组分。脂质已鉴定为 能在体内初始化CTL的药剂。例如，可将棕榈酸残基连接于赖氨酸 残基的ε-和α-氨基，然后例如通过一种或多种连接残基如Gly、 Gly-Gly-、Ser、Ser-Ser等连接于免疫原肽。随后可以将该脂质肽 以微团或颗粒直接给予、合并入脂质体或在佐剂如不完全福氏 (Freund)佐剂中乳化。在优选的具体实施方式中，一种特别有效 的免疫原性组合物包括连接于赖氨酸的ε-和α-氨基的棕榈酸，其 通过键例如Ser-Ser连接于所述免疫原肽的氨基末端。
作为初始化CTL应答的脂质的另一个实例，当共价连接于适 合的肽时，E.coli脂蛋白如三棕榈酰-S-甘油基半胱氨酰丝氨酰-丝氨 酸(P3CSS)可以用来初始化病毒特异性CTL[参见，例如Deres et al. (1989)Nature 342：561]。例如，本发明的嵌合抗原可偶联于P3CSS， 并将所述脂质肽给予个体以特异性初始化针对靶抗原的免疫应答。
虽然本发明的组合物并不必须使用佐剂，但可以使用佐剂。根 据宿主种属，可使用不同佐剂来增强免疫应答，并且包括但不限于 福氏佐剂(完全和不完全)、矿物凝胶如氢氧化铝、表面活性物质如 溶血卵磷脂、去垢剂、复合多元醇、聚阴离子、肽、油乳胶、匙孔 血蓝蛋白、二硝基酚、免疫刺激性多核苷酸序列，以及可能有用的 人类佐剂如BCG(卡介苗)和短小棒状杆菌。另外的佐剂在本领域 中也是众所周知的。
F.利用嵌合抗原的方法
本发明的另一方面提供了增强通过APC的抗原呈递，所述方 法包括将包含免疫应答结构域和靶结合结构域的嵌合抗原给予该 APC，其中，所述靶结合结构域包括抗体片段(例如，异源抗体片 段)。在优选的具体实施方式中，该APC是树突细胞。
本发明的一个方面涉及活化APC的方法，包括使该APC与包 含免疫应答结构域和靶结合结构域的嵌合抗原接触，其中，所述靶 结合结构域包括抗体片段(例如，异源抗体片段)。在优选的具体 实施方式中，所述APC在体内与该嵌合抗原接触。在另一个优选 的具体实施方式中，所述接触在人体内进行。
本发明的又一方面提供了引起免疫应答的方法，所述方法包括 将包含免疫应答结构域和靶结合结构域的嵌合抗原给予动物，其 中，所述靶结合结构域包括抗体片段(例如，异源抗体片段)。该 免疫应答可以为体液和/或细胞免疫应答。在优选的具体实施方式 中，所述细胞免疫应答是Th1、Th2、和/或CTL应答。
本发明的另一方面提供了治疗免疫-可治疗性病症的方法，包括 将包含免疫应答结构域和靶结合结构域的嵌合抗原给予需要该抗 原的动物，其中，所述靶结合结构域包括异源抗体片段。优选地， 该免疫-可治疗的病症是慢性丙型肝炎病毒感染。对于HCV的治疗， 优选地所述免疫应答结构域包括一种蛋白，所述蛋白选自由HCV 核心(1-191)蛋白、HCV核心(1-177)蛋白、HCV E1蛋白、HCV E2蛋白、HCV E1-E2蛋白、HCV NS2蛋白、HCV NS3蛋白、HCV NS4A蛋白、HCV NS4B蛋白、HCV NS5A蛋白、HCV NS5B蛋白、 HCV p7蛋白、以及其组合组成的组。
本发明的另一方面提供了接种动物抵抗病毒感染的方法，包括 将包含免疫应答结构域和靶结合结构域的嵌合抗原给予动物，其 中，所述靶结合结构域包括抗体片段。本发明的方法可预防性地或 治疗性地接种该动物以抵抗病毒感染。
本发明还包括使用本发明的组合物来结合并活化APC如DC 的方法。本发明还包括使用本发明的组合物来活化T细胞的方法。 本发明还包括将抗原递送至免疫系统细胞如APC的方法。本发明 还包括用于活化动物或人体内的体液和/或细胞免疫应答的组合物 或方法，所述方法包括给予本发明的一种或多种嵌合抗原。
克隆并表达后，对嵌合抗原在产生免疫应答中的效力进行评 价。评价涉及将嵌合抗原离体或在体内呈递给DC。该DC评价结 合并内化该嵌合抗原。将用嵌合抗原负载的幼稚DC呈递给T淋巴 细胞并评价干扰素-γ(作为T细胞应答的标记物)的产生。具体地， 在离体情形下，单核细胞从外周血中分离并分化为DC。DC将抗原 结合、内化、加工并呈递至幼稚自体T淋巴细胞。识别由DC呈递 的加工过的抗原的T细胞被活化为效应细胞例如辅助T细胞或细胞 毒性T淋巴细胞。随后，通过树突细胞的T细胞活化通过已知步骤 测定标记物如干扰素-γ水平来评价[例如Berlyn，et al.(2001)Clin. Immunol.101(3)：276-283]。相对于背景，产生干扰素-γ的T细胞百 分比增加至少50％，则预测体内效力。在优选的具体实施方式中， 所述百分比增加为至少55％、60％、65％、70％、75％、80％、90％ 或100％。在体内情形的情况下，将嵌合抗原经胃肠外直接导入宿 主体内，其中可获得的树突和其他抗原呈递细胞具有与所有抗原相 互作用并从而处理该抗原的能力。
G.联合治疗
本发明的另一方面提供了用于治疗病毒感染的组合物，其包含 嵌合抗原和抗病毒剂。本发明还提供了治疗病毒感染的方法，包括 同时或依次给予嵌合抗原和抗病毒剂。
在治疗患有慢性丙型肝炎的受治疗者的过程中，可表明将嵌合 抗原与抗病毒剂如核苷类似物联合应用，在诱导持续应答方面高度 有效。这两种药剂联合应用的作用机制在治疗丙型肝炎受治疗者中 可以产生协同效应。例如，HCV抗病毒剂如利巴韦林与本文中所描 述的HCV嵌合抗原的组合将产生抗原特异性细胞以及体液免疫应 答，从而清除慢性感染受治疗者体内的HCV感染。
H.制备嵌合抗原的方法
本发明的一个方面提供了用于生产嵌合抗原的方法，包括(a) 提供微生物或细胞系(或细胞)，优选地真核，更优选地非哺乳动 物微生物或细胞系(或细胞)，其包含编码嵌合抗原的多核苷酸； 以及(b)在表达所述嵌合抗原的条件下，培养所述微生物或细胞 系(或细胞)。优选地，所述微生物或细胞系(或细胞)是酵母、 植物细胞系(或细胞)或昆虫细胞系(或细胞)。更优选地，所述 细胞系(或细胞)是选自由Sf9、Sf21、expressSF+ 、果蝇S2、以 及High FiveTM细胞系(或细胞)组成的组的昆虫细胞系(或细胞)。
本发明利用已建立的重组DNA技术，以生产给定抗原与TBD 的融合蛋白，所述TBD对于实施本发明是必需的。融合蛋白构建 体在结合特异性限制性酶切位点的DNA水平产生，所述酶切位点 在将期望的DNA片段结合到表达载体的过程中采用，并用来在异 源表达系统中表达期望的融合蛋白。如在本文中使用的，术语“载 体”表示能够携带编码期望蛋白的DNA的质粒。本发明中所使用 的质粒载体包括但不限于pFastBac HTa以及在DH10BacTM E.coli(Invitrogen)中产生的相应重组“杆粒”(细菌人工染色体)。可 以动员(mobilize)期望蛋白的ORF，并产生用于在本发明中采用 的除Bac-to-Bac杆状病毒表达系统(Invitrogen)之外的其他系统 (细菌或哺乳动物)中表达该蛋白的其他重组质粒。术语“表达” 用来表示将DNA序列转录成mRNA，并将该mRNA转录体翻译成 融合蛋白。
这可通过将感兴趣基因转座入杆粒中，转染到Sf9昆虫细胞中 且产生重组杆状病毒而实现。这些重组杆状病毒可用来感染Sf9或 High FiveTM昆虫细胞，其产生感兴趣的蛋白。所产生的重组蛋白可 以具有N末端6xHis标签，其可用于通过采用Ni-NTA琼脂糖 (Qiagen，Hilden，Germany)纯化蛋白的过程中。所述蛋白还可以具 有N末端rTEV蛋白酶或其他已克隆入的切割位点。将Ni纯化的 蛋白用例如rTEV蛋白酶(Invitrogen)进行消化，该蛋白也具有N末 端6xHis标签。蛋白酶消化后，将混合物加载到Ni-NTA琼脂糖柱 上，并可以将纯蛋白洗出，同时6xHis标记的片段将结合于该柱上。 这种纯化方法是标准步骤，并且本领域的普通技术人员能够理解该 方法而无需进一步解释。
DNA序列的克隆和表达可以通过两种途径实现，该DNA序列 编码病毒抗原和鼠单克隆抗体的Fc片段以生成嵌合抗原。第一种 途径涉及将所述两种蛋白克隆为融合蛋白，而第二种途径涉及将特 异性“生物连接子”如生物素或抗生蛋白链菌素整合入两种分子之 一中、将其单独纯化并生成嵌合抗原。
在示例性的具体实施方式中，杂交瘤2C12(其产生抗乙肝病 毒表面抗原的单克隆抗体)用作鼠免疫球蛋白G的总RNA的来源。 分离总RNA并用来克隆鼠Fc片段。具体地，利用Trizol试剂 (Invitrogen/Gibco BRL，产品目录号10551-018，10298-016；酚和 异硫氰酸胍的单相溶液，如在美国专利第5,346,994中所描述的) 从表达鼠IgG的杂交瘤中分离所述总RNA。通过亲和层析在寡dT 柱(Invitrogen/Gibco BRL，产品目录号15939-010)上将mRNA从 总RNA中纯化出来。利用逆转录酶在聚合酶链反应中生成互补 DNA(cDNA)。设计寡核苷酸引物以添加独特的限制性酶识别位 点，以利于克隆。该cDNA利用Bac-to-Bac杆状病毒表达系统 (Invitrogen/Gibco BRL，产品目录号15939-010)克隆。
优先使用杆状病毒系统，这是因为不仅其生成大量异源性蛋 白，而且在受感染昆虫细胞内发生了蛋白的翻译后修饰如磷酸化和 糖基化。在该表达系统中，可以将所述DNA克隆入称为pFastBacTM (Invitrogen/Gibco BRL，产品目录号15939-010)的载体中。在 Bac-to-Bac系统中，重组物的生成基于通过细菌转座子Tn7的位点 特异性转座。将感兴趣基因克隆入pFastBac中，其在克隆位点侧 翼具有微型Tn7元件。将该质粒转化入大肠杆菌菌株DH10BacTM (Invitrogen/Gibco BRL，产品目录号10361-012)中，其具有杆状 病毒穿梭质粒(杆粒)，该质粒在LacZ基因内含有Tn7附着位点。 转座破坏LacZ基因，使得仅重组体产生白色克隆并易于选择。在 E.coli中使用转座的优势在于单个克隆仅包含重组体，以致无需空 斑纯化和筛选。将重组杆粒转染入昆虫细胞中以产生表达重组蛋白 的杆状病毒。
所述Bac-to-Bac杆状病毒表达系统可从Invitrogen商业上购 得，并且所采用的方案(程序)如在公司协议(如 www.Invitrogen.com)中所描述的。将感兴趣的基因克隆入例如 pFastBac HTa供体质粒中，而重组蛋白的生产基于Bac-to-BacTM杆 状病毒表达系统(Invitrogen)。
在接着的步骤中，为了将所克隆的基因转移入杆状病毒穿梭载 体(杆粒)中，将包含感兴趣基因的pFastBac HTa供体质粒用于位 点特异性转座中。这是在E.coli菌株DH10BacTM中完成的。将具有 感兴趣基因的重组pFastBac HTa质粒转化入DH10BacTM细胞中用 于转座，以生成重组杆粒。
通过标准方案(Sambrook，上文)来分离重组杆粒；所述DNA 样品用于转染。
为了生产杆状病毒，将该杆粒转染入Sf9昆虫细胞中。转染后， 将该细胞在适当条件下孵育，收集并储存包含杆状病毒的培养基。
一旦已经确认了杆状病毒的生成和蛋白的表达，则扩增病毒原 种(virus stock)，以生产携带感兴趣基因的浓缩杆状病毒原种。将 杆状病毒扩增至少两次是本领域中的标准操作，并且在本文所描述 的所有方案中均遵循该标准操作。在第二轮扩增后，可根据由制造 商描述的试剂盒(Invitrogen)方案，利用空斑测定(噬菌斑测定) 来定量所生成的杆状病毒的浓度。还建立了感染昆虫细胞的最适合 的病毒浓度以及用于生成期望蛋白的最佳时间点。
编码感兴趣蛋白的DNA可利用寡核苷酸引物通过PCR而生 成，所述引物含有来自质粒的独特限制性酶切位点，而该质粒含有 一个拷贝的全病毒基因组并与Fc DNA一起克隆为融合蛋白。该嵌 合蛋白通过Ni-NTA、凝集素、蛋白A或蛋白G亲和层析或本领域 中普通技术人员已知的其他标准纯化方法而纯化。
用于连接IRD和TBD的第二种途径涉及将特异性“生物连接 子”如生物素或抗生物素蛋白(例如抗生蛋白链菌素)整合入两种 分子之一中、将其单独纯化并生成所述嵌合抗原。将感兴趣的病毒 抗原克隆入质粒中，该质粒通过噬菌体T7启动子控制蛋白表达。 随后将该重组质粒转化入E.coli菌株如BL21(DE3)Codon PlusTM RIL细胞(Stratagene，产品目录号230245)中，该细胞中T7 RNA 聚合酶的产生通过lac抑制子调节。T7 RNA聚合酶对T7启动子高 度特异，并且比E.coli宿主的RNA聚合酶显著快得多(快约8倍)。 当T7 RNA聚合酶的生成由异丙基硫代-β-D-半乳糖苷(IPTG)诱导 时，T7 RNA聚合酶的特异性和持续合成能力(processivity)引起 在T7启动子控制下的高水平基因转录。为了将两种蛋白偶联在一 起，利用生物素与抗生物素蛋白(例如抗生蛋白链菌素)之间的紧 密结合。在E.coli中，BirA酶将特异性识别序列内的生物素共价键 催化为确定的赖氨酸残基。如上所述，将鼠Fc片段在杆状病毒系 统内表达为具有抗生物素蛋白的融合蛋白。通过生物素-抗生蛋白链 菌素结合，可以混合这两种蛋白以形成二聚蛋白复合物。
除非另有指明，本发明的实施采用分子生物学、微生物学、重 组DNA和免疫学的常规技术，其为本领域技术人员所掌握。这样 的技术在文献中有充分解释。参见，例如上文Sambrook；及上文 Ausubel。
I.制品和试剂盒
本发明的另一方面提供了一款产品，其包括容纳包含嵌合抗原 的组合物的容器，所述组合物适合于注射或适合于重建用于注射； 与印刷的标签说明书结合，提供如何在胃肠外，例如皮下、肌内、 皮内、经鼻或血管内给予该组合物的论述。该组合物可以包含在任 何适合的容器中，该容器不会与所述组合物发生显著的相互作用， 并且可以标记有适当的标记表明其适于胃肠外使用。所述标记说明 书可与容器结合在一起，且该说明书与上文所述的治疗方法一致。 容纳本发明组合物的容器可以是具有适合于注射的液态组合物的 容器。该容器可以被改造适于注射器针头进入。该款产品可以包括 用于注射的适当的针头和注射器，使得受治疗者、医生、护士或其 他执业者均可给予所述嵌合抗原。可替换地，组合物可以为包含可 溶性形式的嵌合抗原的干燥或浓缩组合物，可与含水或不含水载体 结合或用其稀释，以溶解或悬浮该组合物。可替换地，所述容器可 以含有以液体的悬浮液，或可以为与载体结合的不溶性形式的盐， 其中所述不溶性形式将被悬浮。适当的容器在上文Remington第 788-789、805、850-851和1005-1014页中加以讨论。
本发明的试剂盒通常将包括上文所述的容器以及一种或多种 其他容器，所述一种或多种其他容器容纳有从商业和使用者立场所 需的物质，所述材料包括缓冲液、稀释剂、滤器、针头、注射器、 以及带有使用说明书的药品说明书。该容器上可存在标签，以指示 所述组合物用于特殊疗法或非治疗性应用，并且还可以指示用于体 内或离体应用的说明，如上文所述的那些。说明和/或其他信息还可 以包括在试剂盒内的说明书上。
V.实施例
下面的非限制性实施例提供对本发明的进一步说明。
实施例1.材料和方法
材料
用于在这些实施例中描述的Chimigen3分子中的TBD(并且， 为了方便，在这些实施例中称为“TBD”)来自杂交瘤2C12，其产 出鼠HBsAg特异性mAb，并且其来自Tyrrell实验室，通过Alberta 大学，Edmonton，Alberta，Canada批准。包含编码HCV抗原的DNA 的质粒pCV-H77C从Alberta大学的Tyrrell实验室获得。
pFastBac HTa克隆载体、昆虫细胞系Sf9、Cellfectin试剂、磷 酸缓冲盐(PBS)、铂Pfx DNA聚合酶、TRizol试剂、Superscript First-Strand Synthesis逆转录酶、X-gal、异丙基-β-D-硫代半乳吡喃 糖苷(thiogalactopyranoside)(IPTG)和胎牛血清(FBS)从Invitrogen (Carlsbad，CA，USA)购买。
昆虫细胞生长和表达培养基ESF 921从表达系统(Expression Systems)(Woodland，CA，USA)购买。限制性内切酶EcoR I、Spe I、 Hind III、RsrII、AvaII和Not I从新英格兰Biolabs(Ipswich，MA， USA)购买。
病毒原种利用Expression Systems杆状病毒滴定分析来进行浓 度测定。将IgG2A-PE(BD Biosciences，San Diego，USA)1∶10稀释并用 作同种型对照。杆状病毒滴度利用FACS采集和分析而确定。Becton Dickinson Biosciences FACSCalibur3(四色、双激光)采集细胞，并 采用CELLQuest Pro3软件(BD Biosciences)分析数据。由Expression Systems提供微软Excel电子表格，以输入数据并根据标准曲线确定 病毒滴度。纯化利用Ni-NTA Superflow3(Qiagen，Hilden，Germany) 和Toyopearl Super Q3 650C(Tosoh Biosciences，Grove City，OH， USA)来实施。
用于制备十二烷基硫酸钠聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS PAGE) 的30％丙烯酰胺溶液从Bio-Rad(Hercules，CA，USA)购买。页蓝 3染料、5x加样缓冲液、页蓝3预染的蛋白梯和20X还原剂从 Fermentas(Burlington，ON，Canada)购买。
Hybond3 ECL硝基纤维素和ECL Western检测试剂盒(GE Healthcare)用于蛋白质印迹。
吐温20、溴化十六烷基三甲基铵(CTAB)、抗小鼠IgG(Fc 特异)辣根过氧化物酶轭合的抗体、抗小鼠(Fab特异)辣根过氧化物 酶轭合的第二抗体、羊抗兔辣根过氧化物酶轭合的第二抗体以及抗 生素卡那霉素、氨苄西林和庆大霉素从Sigma(St.Louis，MO，USA) 购买。
兔抗NS5A、羊抗NS3和羊抗NS4多克隆抗体以及鼠抗NS5A 单克隆抗体从Abcam(Cambridge，MA，USA)获得。6xHis辣根过氧 化物酶轭合的单克隆抗体从Clontech(Palo Alto，CA，USA)购买。
Slide-a-lyzer3盒式录像带(cassette)和Micro BCA3分析试剂 盒从Pierce(Rockford，IL，USA)购买。
Pro-QEmerald 300糖蛋白凝胶和Blot Stain试剂盒从 Molecular Probes(Carlsbad，CA，USA)购买。
来自健康供者的白细胞分离法样品从SeraCare Life Sciences (Oceanside，CA，USA)购买。用于T细胞阴性分离的Dynal Dynabeads3从Invitrogen(Carlsbad，CA，USA)购买。含L-谷氨酰 胺、硫酸链霉素(50μg/mL)和硫酸庆大霉素(10μg/mL)的AIM V培养基从Invitrogen获得。匹配的供者血清从Ficoll-Hypaque血 液制备物离心后的血清馏分获得。将血清(浓度为50％/AIM V培 养基)热灭活、等分并储存于-20℃。Dulbecco磷酸缓冲盐(PBS) 从Invitrogen获得。
具有下列特异性的轭合单克隆抗体(mAbs)从BD Biosciences(San Diego，CA)获得：CD64-异硫氰酸荧光素(FITC)、 CD32-R-藻红蛋白(PE)、CD 16-PE、CD206-PE-Cy5、CD80-PE、 CD86-FITC、CD83-PE、CD40-FITC、CD11c-PE、CD14-FITC、 CD19-FITC、CD3-FITC、CD3-PE、CD3-别藻蓝蛋白(APC)、 CD8-PE-Cy5、CD4-APC、CD69-FITC、CD69-APC、HLA-ABC-FITC、 HLA-DR-PE、IFN-γ-PE、TNF-α-PE、grB-FITC、pfn-FITC和小鼠 IgG1-生物素。生物素化抗6xHis从Qiagen(Mississauga，Ontario， Canada)获得。羊抗兔IgG-生物素抗体来自Jackson ImmunoResearch Laboratories(West Grove，PA)。鼠同种型mAbs和SA-PE-Cy5从 BD Biosciences获得。混合的同分异构体5-(和6-)二醋酸羧基荧光 素、琥珀酰亚胺酯(succinimidyl ester)(5(6)-CFDA，SE；CFDA) 从Invitrogen获得。
通过使用特异性PE轭合的四聚体(Beckman Coulter， Mississauga，Ontario，Canada)或五聚体(Prolmmune，Springfield， VA)测定T细胞对抗原的特异性。所使用的五聚体包括HCV NS5A 肽VLSDFKTWL(SEQ ID NO：3)/HLA-A2和HCV NS3肽 CINGVCWTV(SEQ ID NO：4)/HLA-A2。所使用的四聚体包括EBV 肽GLCTLVAML(SEQ ID NO：5)/HLA-A2、HCV NS3肽 KLVALGINAV(SEQ ID NO：6)/HLA-A2和阴性对照四聚体(多等位 基因的)。
下列细胞因子从R&D Systems(Minneapolis，MN)：白介素-1β (IL-1β)、白介素-4(IL-4)、白介素-6(IL-6)、粒细胞-巨噬细 胞集落刺激因子(GM-CSF)、肿瘤坏死因子I(TNF-α)、干扰 素-K(IFN-γ)和干扰素-I(IFN-α)购买。根据制造商的说明重 建细胞因子、等分并储存于-70℃。聚IC从Sigma获得。
Wave Bioreactor System23/1 0EH和Cellbag 10L/O从Wave Biotech(Somerset，NJ.，USA)购买。
方法
表达质粒构建
pFastBac HTa-TBD，亲代质粒构建体
编码CH1-铰链-CH2-CH3区氨基酸的小鼠IgG1 DNA序列由从 杂交瘤2C12分离的mRNA生成，所述杂交瘤2C12产生抗HBV表 面抗原(sAg)的mAb。总mRNA利用TRizol试剂分离，而TBD 的cDNA通过利用Superscript First-Strand Synthesis的RT-PCR而生 成。PCR引物包含连接子序列，该连接子序列编码5’末端的连接 肽-SRPQGGGS-(SEQ ID NO：1)、5’末端独特的Not I位点和3’末端 独特的HindIII限制性位点。得到的cDNA包含(5’-Not I)-连接 子序列-部分CH1(VDKKI；SEQ ID NO：2)-CH2-CH3(3’HindIII)。用 各个酶消化后，利用相同的限制性酶切位点将片段与pFastBac-HTa 表达载体质粒相连接。用于PCR扩增的5’引物是(正义)5’-TGT CATTCTGCGGCCGCAAGGCGGCGGGATCCGTGGACAAGAAA ATTGTGCCAGG-3’(SEQ ID NO：7)，并且3’引物是(反义)5’ -ACGAATCAAGCTTTGCAGCCCAGGAGAGTGGGAGAG-3′(SEQ ID NO：8)，其分别含有Not I和Hind III位点。将扩增的DNA用 Not I和Hind III消化，所述片段通过琼脂糖凝胶纯化并与用相同限 制性酶消化的pFastBac-HTa表达载体质粒相连接，以生产表达载体 质粒pFastBacHTa-TBD。该产物用于表达所述融合蛋白6xHis标签 -rTEV蛋白酶切割位点-TBD。通过标准测序法来验证DNA序列及 开放阅读框架(ORF)的准确性。pFastBacHTa-TBD中ORF的核苷 酸序列(SEQ ID NO：9)及由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：10)在图2中示出。
pFastBacHTa-gp64的构建
为了分泌，将来自苜蓿银纹夜蛾(Autographa californica)核 型多角体病毒(AcNPV)gp64蛋白的信号序列克隆入pFastBac-HTa 中。合成两种寡核苷酸并将其复性(对合，anneal)在一起。所述 寡核苷酸序列是5’-GCATGGTCCATGGTAAGCGCTATTGTTTTA TATGTGCTTTTGGCGGCGGCGGCGCATTCTGCCTTTGCGGATC TGCAGGTACGGTCCGATGC-3’(SEQ ID NO：11)和5’- GCATCGGACCGTACCTGCAGATCCGCAAAGGCAGAATGCGC CGCCGCCGCCAAAAGCACATATAAAACAATAGCGCTTACCAT GGACCATGC-3’(SEQ ID NO：12)。所述寡核苷酸包含5’Ava II 位点和3’Rsr II位点。在用Ava II和Rsr II消化以后，将该片段克隆 入Rsr II消化的pFastBac-HTa中，该消化的pFastBac-HTa将所述 gp64信号序列置于6xHis标签的紧邻上游，以生成 pFastBacHTa-gp64。
pFastBacHTa HCV NS5A Chimigen TM 疫苗融合蛋白表达载体质 粒的构建
利用PCR法从质粒pCV-H77C模板得到编码HCV NS5A片段 的DNA。用于PCR的5’引物是含有限制性酶EcoR I位点的(正 义)5’-CCGGAATTCTCCGGTTCCTGGCTMGG-3’(SEQ ID NO：13)。 用于3’末端的PCR引物是含有限制性酶Spe I位点的(反义)5’ -GGACTAGTCCGCACACGACATCTTCCGT-3’(SEQ ID NO：14)。扩增的 DNA用各个酶消化并连接于pFastBac HTa-TBD，以生成表达质粒 pFastBacHTa HCV NS5A ChimigenTM疫苗(或pFastBacHTa -NS5A-TBD)。核苷酸序列(SEQ ID NO：39)和由 pFastBacHTa-NS5A-TBD中ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：40) 在图3中示出。对于仅NS5A，将该NS5A片段连接入EcoR I/Spe I消化的pFastBac-HTa，以生成pFastBacHTa-NS5A。
用于分泌的pFastBacHTa-gp64 NS5A Chimigen TM 疫苗表达质粒 的构建
为了将NS5A ChimigenTM疫苗克隆入pFastBacHTa-gp64中，用 Rsr II和Hind III消化质粒pFastBacHTa HCV NS5A ChimigenTM疫苗 (如上所述)，并且所述NS5A ChimigenTM疫苗片段通过琼脂糖凝 胶电泳纯化。将NS5A ChimigenTM疫苗片段连接于Rsr II和Hind III 消化的pFastBacHTa-gp64质粒，以得到pFastBacHTa-gp64 HCV NS5A ChimigenTM疫苗(pFastBacHTa-gp64-NS5A-TBD)表达质粒 (IDAC登录号111006-04)。pFastBacHTa-gp64-NS5A-TBD中ORF 的核苷酸序列(SEQ ID NO：41)和由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：52)在图4中示出。
用于分泌的pPSC12-NS5A-TBD Chimigen TM 疫苗表达质粒的构 建
为了促进NS5A ChimigenTM疫苗分子的分泌，将其克隆入质粒 pPSC12(Protein Sciences Corporation)中。该质粒具有来自杆状病 毒苜蓿银纹夜蛾核型多角体病毒(AcNPV)的甲壳酶基因信号肽。 将感兴趣基因克隆入转移载体需要四种PCR引物。感兴趣基因利用 两种独特引物扩增(引物1 GTTTCTAACGCGTCGTACTACCATCACCATCAC (SEQ ID NO：15)和2 CCGGGGTACCTTACAGCCCAGGAGAGTGGGAGAG (SEQ ID NO：16))。扩增多面体上游区域需要两种不同的引物，所 述区域包括上游多面体启动子和信号肽序列(引物3 CTGGTAGTTCTTCGGAGTGTG(SEQ ID NO：17)和4 GGTAGTACGACGCGTTAGAAACGGCGACCAAC(SEQ ID NO：18))。 最终，将两种外部引物(引物3和2，上述序列)用于关键的重叠 延伸PCR中。NS5A-TBD利用引物1和引物2通过PCR从 pFastBacHTa-NS5A-TBD扩增而来，其中引物1包含将与引物4的 5’末端退火的序列，而引物2则添加了3’Kpn I位点，用于克隆 入载体中。pPSC12的上游多面体区域通过引物3和引物4扩增， 所述引物允许其在重叠延伸PCR过程中退火于引物1的3’末端。 该上游区域还包含独特的NgoM IV位点，该位点用于克隆入载体 中。所述上游多面体启动子、信号肽序列、以及期望基因通过利用 引物2和3的重叠延伸PCR而严密地融合。全长融合产物用NgoM IV和Kpn I消化，并将得到的片段连接入同样消化的pPSC12，以 生成pPSC12-NS5A-TBD。pPSC12-NS5A-TBD中ORF的核苷酸序 列(SEQ ID NO：42)和由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：53) 在图5中示出。
pFastBacHTa HCV NS3 Chimigen TM 疫苗质粒的构建
编码NS3的DNA利用下列引物通过PCR从质粒pCV-H77C 模板(HCV多蛋白的氨基酸1027至1652(nt3420至5294))生成。 NS3 C末端最后6个氨基酸未包括在该构建体中，这是因为该序列 是NS3丝氨酸蛋白酶活性的靶序列。所使用的5’末端引物是含有 Eco RI限制性位点的5’- CCGGAATTCGCGCCCATCACGGCGTA-3’(SEQ ID NO：19)，而3’末端引 物是含有Spe I限制性位点的5’-CCGGACTAGTCC GGCCGACATGCATGTCATGAT-3’(SEQ ID NO：20)。用EcoR I和 Spe I进行双消化，得到的产物与质粒pFastBacHTa-TBD连接，以 生成pFastBacHTa NS3-TBD。
pFastBacHTa HCV NS3 Chimigen TM 疫苗质粒载体的诱变
Shoji et al.[(1999)Virology 254：315-323]已经报道了当在昆虫细 胞中表达时，NS3蛋白的内部切割发生于1488位的精氨酸残基， 可能由细胞蛋白酶介导。重叠延伸(OE)PCR用来产生氨基酸精 氨酸至丙氨酸的突变，从而避免这样的NS3 ChimigenTM蛋白中NS3 部分的切割。从亲代pFastBacHTa NS3-TBD质粒生成两个NS3 DNA 片段。5’NS3片段通过含Eco RI限制性位点的引物 5’-CCGGAATTCGCGCCCATCACGGCGTA-3’(SEQ ID NO：19)和突 变引物(含精氨酸至丙氨酸的突变) 5’-CTGCCAGTCCTGCCCGCGCGTTGAGTCCTGGAG-3’(SEQ ID NO：21)。3’NS3片段通过5’引物5’- GGCAGGACTGGCAGGGGGAAGCCAGGCAT-3’(SEQ ID NO：22)和含 SpeI限制性位点的3’引物 5’-CCGGACTAGTCCGGCCGACATGCATGTCATGAT-3’(SEQ ID NO：20) 而生成。OE PCR通过5’和3’NS3片段以及所述两个外部引物 而实现。用Eco RI和Spe I进行双消化，得到的产物可与质粒 pFastBacHTa-TBD连接，以生成pFastBacHTa NS3mut-TBD(IDAC 登录号111006-05)。pFastBacHTa NS3mut-TBD中ORF的核苷酸序 列(SEQ ID NO：44)和由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：55) 在图7中示出。预测该蛋白的分子量是98.3 kDa。对于仅NS3mut， 通过EcoR I和Spe I消化而分离NS3mut片段，并克隆入 pFastBac-HTa中，以生成pFastBacHTa-NS3mut。
pFastBacHTa-gp64 HCV NS3mut Chimigen TM 疫苗载体质粒的 构建
将pFastBacHTa HCV NS3mut-TBD质粒用Rsr II和Hind III限 制酶消化，并将该NS3mut-TBD片段克隆入Rsr II和Hind III消化 的pFastBacHTa-gp64中，以生成pFastBacHTa-gp64-NS3mut-TBD (IDAC登录号111006-02)。pFastBacHTa-gp64-NS3mut-TBD中 ORF的核苷酸序列(SEQ ID NO：45)和由该ORF编码的氨基酸序列 (SEQ ID NO：56)在图8中示出。预测该蛋白的分子量是101.5 kDa。 将类似于用来制备pFastBacHTa-gp64-NS3mut-TBD(但缺乏自发突 变并包含另一个)的片段的突变NS3mut-TBD片段克隆也连接入 pFastBacHTa-gp64中，以生成第二克隆 pFastBacHTa-gp64-NS3mut-TBD。第二克隆 pFastBacHTa-gp64-NS3mut-TBD中ORF的核苷酸序列(SEQ ID NO：43)和由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：54)在图6中示 出。
pFastBacHTa HCV多抗原Chimigen TM 融合蛋白表达载体质粒 的构建
为了制备HCV多抗原载体质粒，首先克隆NS4B-NS5A序列。 编码NS4B-NS5A的DNA序列通过PCR从质粒pCV-H77C中生成， 其中利用用于5’末端的引物5’- GCGCACTAGTGTCTCAGCACTTACCGTACATC-3’(SEQ ID NO：23)和用于3’ 末端的5’-CGGCGCGGCCGCCCGCAGCACACGACATCTTCCG-3’(SEQ ID NO：24)。利用这些引物的PCR得到的产物具有独特的限制性酶切 位点：5’末端Spe I位点和3’末端Not I位点。用Spe I和Not I消化该PCR产物，并连接入Spe I和Not I消化的 pFastBacHTa-gp64中，以生成pFastBacHTa-gp64 NS4B-NS5A。接 着，将TBD部分添至构建体中。用Spe I和Hind III消化质粒 pFastBacHTa-TBD和pFastBacHTa-gp64 NS4B-NS5A。分离Spe I /Hind III消化的TBD并连接至所述消化的pFastBacHTa-gp64 NS4B-NS5A，以生成pFastBacHTa-gp64 NS4B-NS5A-TBD。
NS3活性位点丝氨酸残基的诱变
在NS3中，将活性位点丝氨酸(ser1165)突变为丙氨酸，以 使蛋白酶活性失效。利用四种不同引物(两种巢式引物，两种互补 于5’和3’末端的引物)，以pFastBacHTa-gp64 NS3mut-TBD作为 模板，通过OE PCR生成两种NS3片段。5’NS3片段利用含限制 性酶Eco RI位点的5’末端引物(正义) 5’CCGGAATTCGCGCCCATCACGGCGTA-3’(SEQ ID NO：19)和突 变引物(含ser-ala突变)(反义)5’- CAACAGCGGACCCCCCGCGGAGCCTTFCAAGTAG-3’(SEQ ID NO：25) 来生成。3’NS3片段利用5’末端引物(正义) 5’GTCCGCTGTTGTGCCCCGCGGGACACG-3’(SEQ ID NO：26)和含 限制性酶Spe I位点的3’末端引物(反义) 5’-CCGGACTAGTCCGGCCGACATGCATGTCA-3’(SEQ ID NO：27)来生成。全长NS3(ser1165→ala)通过OE-PCR从5’和3’ 片段和两种外部引物生成。得到的具有在Arg1488突变为Ala以及 在Ser1165突变为Ala的产物称为NS3mutS。将该片段克隆入 pFastBacHTa-gp64中，以生成FastBacHTa-gp64-NS3mutS-TBD (IDAC登录号111006-001)。
pFastBacHTa-gp64HCV NS3-NS4B-NS5A多抗原融合蛋白载 体质粒的构建
为了制备可用于表达融合蛋白HCV NS3mutS-NS4B-NS5A的 构建体，用限制性酶Eco RI和Spe I消化所述NS3mutS OE-PCR产 物。将消化的NS3mutS连接入Eco RI和Spe I消化的质粒 pFastBacHTa-gp64NS4B-NS5A-TBD中，以制备pFastBacHTa-gp64 NS3-NS4B-NS5A-TBD(IDAC 登录号111006-06)，其是 pFastB acHTa-gp64HCV多抗原质粒。pFastBacHTa-gp64 NS3-NS4B-NS5A-TBD中ORF的核苷酸序列(SEQ ID NO：46)和由该 ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：57)在图9中示出。
pFastBacHTa-gp64HCV NS3-NS5A多抗原融合蛋白载体质粒 的构建
通过PCR 从模板pFastBacHTa-gp64HCV NS3-NS4B-NS5A-TBD ChimigenTM疫苗融合蛋白表达载体质粒生 成用于HCV NS5A和TBD的DNA。用于PCR的5’引物是含有限 制性酶Spe I的识别位点的(正义)5’- GAGGGACTAGTGTCCGGTTCCTGGCTAAGGGAC-3’(SEQ ID NO：28)。 用于3’末端的PCR引物是(反义) 5’-CCGGTCTAGATTATGATCCTCTAGTACTTCTCGAC-3’(SEQ ID NO：29)。将PCR产物(NS5A-TBD)用凝胶纯化，随后用Spe I和 Hind III限制性酶消化。用限制性酶Spe I和Hind III消化质粒 pFastBacHTa-gp64NS3-NS4B-NS5A-TBD，释放由编码HCV NS4B-NS5A和所述TBD的序列组成的片段。将得到的 pFastBacHTa-gp64HCV NS3载体骨架经凝胶纯化并连接至所述 NS5A-TBD片段，以生成表达质粒pFastBacHTa-gp64HCV NS3-NS5A ChimigenTM疫苗(pFastBacHTa-gp64NS3-NS5A-TBD) (IDAC登录号111006-03)。pFastBacHTa-gp64-NS3-NS5A-TBD中 ORF的核苷酸序列(SEQ ID NO：47)和由该ORF编码的氨基酸序列 (SEQ ID NO：58)在图10中示出。
pFastBacHTa HCV核心(1-177)-TBD融合蛋白质粒和 pFastBacHTa HCV核心(1-177)的构建
编码HCV多蛋白的氨基酸1-177(nt342-872)的HCV核心 DNA序列通过PCR利用5’引物 CGGAATTCATGAGCACGAATCCTAAAC(SEQ ID NO：30)和3’引 物GGACTAGTCCGAAGATAGAGAAAGAGC(SEQ ID NO：31)从 pCV-H77C来扩增。所采用的引物添加了独特的5’EcoR I和3’ Spe I位点。将PCR产物用EcoR I和Spe I消化并连接入 pFastBacHTa-TBD和pFastBac-HTa中，以分别生成ChimigenTM疫 苗构建体pFastBacHTa HCV核心(1-177)-TBD和pFastBacHTa HCV 核心(1-177)。pFastBacHTa HCV核心(1-177)-TBD中ORF的核 苷酸序列(SEQ ID NO：48)和由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：59)在图11中示出。
为了生成分泌形式的蛋白，将HCV核心(1-177)克隆入 pFastBacHTa-gp64和pPSC12中。为了克隆入pFastBacHTa-gp64中， 将HCV核心(1-177)-TBD片段通过Rsr II和Hind III消化而从 pFastBacHTa HCV核心(1-177)-TBD中分离出来，并克隆入同样 消化的pFastBacHTa-gp64中，以生成pFastBacHTa HCV核心(1-177) -TBD。
为了克隆入pPSC 12中，采用与如NS5A-TBD所述类似的方案， 只是引物2编码独特的3’Bg1 II位点 (AGTAAGATCTTTACAGCCCAGGAGAGTGGGAGAG；SEQ ID NO：32)。得 到的构建体是pPSC12-HCV核心(1-177)-TBD。
pFastBacHTa HCV E1-TBD融合蛋白质粒和pFastBacHTa-E1的 构建
编码HCV多蛋白的氨基酸192-369(914-1452)的DNA序列 通过5’引物CCGGAATTCTACCAAGTGCGCAATTCCT(SEQ ID NO：33) 和3’引物GCGCACTAGTCCCTTCGCCCAGTTCCCCACC(SEQ ID NO：34) 从pCV-H77C而扩增，所述引物添加独特的5’EcoR I位点和独特 的3’Spe I位点。整个E1开放阅读框架终止于氨基酸383，但氨 基酸370至383之间的区域是E2的信号序列，因此不被扩增。用 EcoR I和Spe I消化PCR产物，并连接入同样消化的 pFastBacHTa-TBD中，以生成HCV E1ChimigenTM构建体 pFastBacHTa-E1-TBD。为了仅表达E1，将消化的PCR产物克隆入 EcoR I和Spe I消化的pFastBac-HTa中，以生成pFastBacHTa-E1。 pFastBacHTa-E1-TBD中ORF的核苷酸序列(SEQ ID NO：49)和由该 ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：60)在图12中示出。
pFastBacHTa E2-TBD融合蛋白质粒和pFastBacHTa-E2的构建
从氨基酸384至718(HCV多蛋白的nt 1494-2495)的E2序列 利用PCR通过5’引物 GCGCACTAGTCACCCACGTCACCGGGGGAAATG(SEQ ID NO：35)和3’ 引物GCGCGCGGCCGCCCGTACTCCCACTTAATGGC(SEQ ID NO：36)从 pCV-H77C而扩增，所述引物添加独特的5’Spe I位点和独特的3’ Not I位点。氨基酸719至746是p7的信号序列，因此不包括在构 建体中。用Spe I和Not I消化PCR产物，并连接于同样消化的 pFastBacHTa-TBD，以生成HCV E2ChimigenTM构建体pFastBacHTa E2-TBD。为了仅表达E2蛋白，将消化的E2也克隆入pFastBac-HTa 中，以生成pFastBacHTa-E2。pFastBacHTa E2-TBD中ORF的核苷 酸序列(SEQ ID NO：50)和由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：61)在图13中示出。
pFastBacHTa-E1-E2-TBD融合蛋白质粒和pFastBacHTa-E1-E2 的构建
E1和E2的融合蛋白通过将pFastBacHTa-E1中的E1序列亚克 隆入pFastBacHTa-E2中而生成。将该pFastBacHTa-E1质粒用Eco RI 和Spe I消化，并将片段克隆入Eco RI和Spe I消化的 pFastBacHTa-E2中，以生成pFastBacHTa-E1-E2。为了制备E1-E2 ChimigenTM构建体，将pFastBacHTa-E1-E2用Eco RI和Not I消化， 并克隆入同样消化的pFastBacHTa-TBD中，以生成 pFastBacHTa-E1-E2-TBD。pFastBacHTa-E1-E2-TBD中ORF的核苷 酸序列(SEQ ID NO：51)和由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：62)在图14中示出。
在Bac-to-Bac 表达系统中生成重组杆状病毒
E.coli的转化
已连接的质粒用来转化E.coli DH5α，并通过标准方案来分离 质粒。序列和开放阅读框架通过测序验证，并用于生成重组杆状病 毒。
转座(转位)
重组体的生成基于Bac-to-Bac克隆系统(Invitrogen)，该系 统利用具有细菌转座子Tn7的位点特异性转座。这可在E.coli菌株 DH10Bac内实现。所述DH10Bac细胞包含杆粒pMON14272和辅 助质粒(pMON7124)，其中杆粒pMON14272赋予对卡那霉素的耐 药性，而辅助质粒编码转座酶并赋予四环素抗性。
将感兴趣基因克隆入pFastBac质粒中，该质粒具有位于克隆位 点侧翼的mini-Tn7元件。将质粒转化入具有杆状病毒穿梭质粒(杆 粒)的E.coli菌株DH10Bac，其中所述杆状病毒穿梭质粒(在LacZ α基因内含有Tn7的附着位点。转座破坏LacZα基因，以致仅重 组体产生白色克隆，因此易于选择。
在E.coli中使用转座的优势在于单个克隆仅包含重组体。该重 组杆粒利用标准质粒分离步骤而分离，并用于转染入昆虫细胞中， 以生成表达重组蛋白的杆状病毒。
Donor(供体)质粒和pFastBacHTa-gp64ChimigenTM疫苗载体 用于将克隆的基因位点特异性地转座入杆状病毒穿梭载体(杆粒) 中。将含有感兴趣基因的重组pFastBacHTa-gp64质粒转化入 DH10Bac细胞中用于转座以生成重组杆粒。将40μL等份的感受态 DH10Bac细胞在冰上解冻，加入基于pFastBacHTa-gp64的质粒， 并通过电穿孔进行转化。将转化混合物加入到1mL的SOC培养基 (介质)中，并在37℃下孵育4小时。所述转化的细胞(变异细胞) 用LB连续地稀释至10-1和10-2，并将100μL的每种稀释物涂于LB 琼脂平板上，该琼脂平板中补充了卡那霉素(50μg/mL)、庆大霉 素(7μg/mL)、四环素(10μg/mL)、X-gal(200μg/mL)和IPTG (40μg/mL)，并在37℃下孵育至少36小时。
庆大霉素抗性由所述pFastBacHTa-gp64质粒赋予，而X-gal和 IPTG用来将白色克隆(重组杆粒)与蓝色克隆(非重组)区分开。 挑选白色克隆并接种入2mL的LB中，该LB中补充了卡那霉素(50 μg/mL)、庆大霉素(7μg/mL)和四环素(10μg/mL)，并在37℃下 振荡孵育过夜。用无菌环来取少量过夜培养物，并将该样品划线在 新鲜LB琼脂平板上，该琼脂平板中补充了卡那霉素(50μg/mL)、 庆大霉素(7μg/mL)、四环素(10μg/mL)、X-gal(100μg/mL)和 IPTG(40μg/mL)，并在37℃下孵育至少36小时以确定白色表型。
通过标准方案来分离重组杆粒[Sambrook et al.(2001)In Molecular Cloning，A Laboratory Manual.Cold Spring Harbor Press]， 将DNA样品溶解于40μL的TE(10mM Tris-HCl pH8，1mM EDTA) 中并用于转染。
转染：重组杆状病毒的产生
为了产生重组杆状病毒，将相关杆粒转染入Sf9昆虫细胞中。 将Sf9细胞(9×105)接种于6孔细胞培养皿(35mm孔)的每一 个孔的2mL ESF 921内，并允许其在27℃下贴附至少1小时。通 过Sf9细胞供应商提供的方案，利用Cellfectin试剂进行转染。转 染后，将所述细胞在27℃下孵育72小时。收集含杆状病毒的培养 基并在4℃下储存于暗处。
通过检查杆状病毒DNA的产生，确定转染效率。对分离的杆 状病毒DNA进行PCR，以筛选感兴趣的插入基因。利用6xHis标 签-HRP轭合的单克隆抗体或抗小鼠IgG(Fc特异)辣根过氧化物 酶轭合的抗体作为探针，细胞内异种蛋白的表达可通过SDS-PAGE 和蛋白质印迹而验证。
重组杆状病毒原种的扩增
一旦已经确认了杆状病毒的生成和期望蛋白的表达，则增大病 毒浓度，以生成携带感兴趣基因的浓缩杆状病毒原种。在本文所描 述的所有方案中，均遵循将杆状病毒扩增至少两次的标准操作。第 二轮扩增后，利用杆状病毒滴定分析(Expression Systems)定量所 生成的杆状病毒的浓度。还建立了感染Sf9细胞的最适合病毒浓度 以及用于生成期望蛋白的最佳时间。根据标准步骤，开发用于单层 以及悬浮培养的Sf9细胞表达的方案。
杆状病毒滴定分析
所有的病毒原种均利用Expression Systems杆状病毒滴定分析 来测定浓度。将病毒原种从10-1至10-4连续进行稀释。将100μL等 份的每种稀释样品加入到Costar Low Attachment396孔板的孔内， 随后，将100μL的Sf9细胞以2×106细胞/mL的浓度加入到每个 孔内，并在27℃下将该板在振荡摇床孵箱中以200-250rpm孵育18 小时。
孵育后，将gp64-PE轭合的抗体1∶200稀释，并将同种型对照 (IgG2A-PE)1∶10稀释。将该板以1800rpm离心3分钟。通过翻转 板来去除培养基，并往孔内加入50μL的gp64-PE轭合的抗体或50 μL的同种型对照。随后将该板在4℃下在暗处孵育20分钟。
通过向每个孔内加入150μL冷PBS并如上文所述离心板而洗 涤细胞。接着，向每个孔内加入200μL的冷PBS，随后另一旋转， 最后向每个孔内加入200μL的PBS/0.1％BSA以重悬细胞并转移至 FACS管中用于分析。所述同种型对照用来在荧光流式细胞仪上设 定门(gate)。通过将表达阳性细胞群的百分比插入到所提供的Excel 电子表格中并生成一条基于对照病毒的标准曲线而确定病毒浓度。
蛋白表达的优化
将ChimigenTM蛋白表达在一定的MOI和时间范围内优化。将 ESF 921中的4份50mL的Sf9细胞培养物以2×106细胞/mL接种 并以0.5、1.5和10的MOI感染，在感染后的不同时间点收集1mL 的培养物。将取样的培养物以12,000x g离心1分钟，并分离上清 液和细胞。立即制备细胞和上清液用于SDS-PAGE分析。将细胞重 悬于500μL的PBS中，并将150μL的悬浮液加入到40μL5×加 样缓冲液和10μL20×还原剂中。此外，将150μL上清液与40μL5 ×加样缓冲液和10μL20×还原剂混合。将样品煮沸5分钟，并加 样到12％SDS-PAGE凝胶上用于蛋白质印迹分析。经评估，对于 NS5A ChimigenTM蛋白，蛋白生成以36小时和0.5MOI为最适；对 于NS3ChimigenTM蛋白，以48小时和2MOI为最适；而对于多抗 原ChimigenTM蛋白，则以36小时和1.5MOI为最适。
细胞内Chimigen TM 疫苗的纯化
NS5A Chimigen TM 蛋白的大量表达以及细胞裂解物(溶解产物) 的制备
在ESF 921培养基中的5升Sf9细胞培养物(密度约2×106细 胞/mL)用杆状病毒以0.5MOI感染。当细胞存活达约95％时，在 感染开始后约36小时收获细胞。较长的表达时间导致细胞生存力 丧失增加以及NS5A ChimigenTM蛋白强烈降解。通过离心收集感染 细胞并储存在-80℃下直到使用。
通过在冰上在200ml含高浓度吐温20的裂解缓冲液(6M GuHCl，50mM NaH2PO4，0.5M NaCl，1％吐温20，10mM β-巯 基乙醇，pH8.0)中漩涡，将来自1L感染细胞培养物的冰冻沉淀迅 速重悬。高浓度的吐温20对于NS5A ChimigenTM蛋白与Ni-NTA树 脂的有效结合是必需的。将重悬的悬浮液在冰上超声处理3次，每 次1分钟，其中每次超声脉冲之间的间隔为2分钟。随后将超声处 理的裂解物在室温下搅拌2小时。搅拌的裂解物通过离心(约27,000 xg，15分钟，10℃)而澄清，并将上清液用于在Ni-NTA superflow 上亲和层析。
NS3Chimigen TM 蛋白的表达以及细胞裂解物的制备
使用标准化的感染多重性(MOI)的编码HCV NS3 Chimigen TM 蛋白的重组杆状病毒来感染Sf9昆虫细胞用于表达。将Sf9细胞以 6×105细胞/mL的密度接种于2L Erlenmeyer瓶中的500mL的ESF 921培养基中。将该细胞培养物在27.5℃下以120rpm振荡孵育， 直到细胞密度达到2-3×106细胞/mL。对于HCV NS3 ChimigenTM 蛋白，将细胞以MOI 2感染48小时。对细胞裂解物进行蛋白质印 迹分析，用于监测感兴趣蛋白的表达。通过在4℃下以3000rpm (1593xg，JA10，Beckman Coulter AvantiTMJ 25)离心10分钟来 收获细胞，并将新鲜细胞沉淀用于纯化重组蛋白。可替换地，用条 件培养基重悬细胞沉淀，分散于50mL锥形管(每管250mL细胞 培养物)中，在4℃下在Beckman GS-6R离心机中以2,200rpm旋 转8分钟。将细胞沉淀快速冰冻于液氮中，并储存于-80℃。
通过78W(设置为(setting)6.5)超声处理1分钟，将冰冻细 胞沉淀(相当于2×500mL细胞培养基)重悬于200mL冰冻裂解 缓冲液(6M GuHCl，150mM NaCl，20mM Tris-HCl，pH 8.00中的冰上。将 该混合物转移至250mL玻璃烧杯中，并超声处理4次以上，每次1 分钟，78W，且具有5分钟的冷却间歇期。将混合物移至室温，并 加入CTAB至终浓度为1％(w/v)。检查pH并调至pH 8.00，并将 裂解物孵育2小时。利用JA 25.50转头在BeckmanAvanti J-25离心 机内将所述裂解物在10℃下以15,000rpm(27,000xg)离心30分 钟，然后对上清液进行Ni-NTA亲和层析。
多抗原Chimigen TM 蛋白的大量表达以及细胞裂解物的制备
将4升ESF921培养基转移入Cellbag中，并在Wave Bioreactor System 2/10EH上加热至27.5℃。将1升Sf9细胞培养物以6×106 细胞/mL加入该Cellbag中。随后将该袋在27.5℃与注射空气(0.3 L/min)一起孵育，并以130rpm振荡。当细胞密度达到2×106细 胞/mL时，将重组杆状病毒以MOI 1.5接种。注射后36小时，在冰 上冷冻该袋，并通过在4℃下以4500xg离心10分钟而收获细胞。 将细胞沉淀悬浮于冰冻PBS中然后转移至50mL锥形管(来自300 mL培养物沉淀/管的沉淀)中。所述细胞沉淀通过在4℃下以2800 xg离心15分钟而回收。该沉淀立即在液氮中冷冻，并储存于-80 ℃冰箱中直至使用。
将来自250mL培养物的冰冻Sf9细胞沉淀悬浮于20ml 1X PBS、1％吐温20、50mM DTT、5mM EDTA，pH8.0中，并于冰 上孵育30分钟。用NaOH将该裂解物的pH调至pH 12.0，并在室 温下搅拌30分钟。用HCl将pH降至8.0，并以39191xg离心30 分钟。去除上清液，并将沉淀悬浮于20ml 1X PBS、1％吐温20、 10mM DTT、1mM EDTA，pH8.0中。如上所述，将pH升至12.0 然后降至8.0。收集上清液并对20mM Tris、0.05％吐温20、0.1mM EDTA、10mM β巯基乙醇，pH8.0(用于体积排阻(大小排阻)和 疏水作用层析)透析。
对于Ni-NTA亲和层析，将来自500ml培养物的冰冻Sf9细胞 沉淀悬浮于50mL冰冻裂解缓冲液(6M盐酸胍、50mM碳酸钠、 20％乙醇，pH10)中。通过超声仪3000(Misonic Inc.)将该细胞裂 解物冰上以80W超声5次(1分钟)。将吐温20加入裂解物中(终 浓度1％)，并在室温下搅拌该裂解物2小时。通过在4℃下以39191 x g离心30分钟而去除裂解物中的不溶性颗粒，并进行Ni-NTA亲 和层析。
HCV核心Chimigen TM 蛋白的表达以及细胞裂解物的制备
HCV核心ChimigenTM在两种系统中表达。重组病毒通过在Sf9 细胞内共转染pPSC12-HCV核心(1-177)-TBD和线性化杆状病毒 基因组而生成、经空斑纯化并扩增。优化后，Sf9培养物以MOI 5 感染，并在27.5℃下孵育50小时后收获。重组病毒还可利用 Bac-to-Bac系统，通过用pFastBacHTa-gp64HCV核心(1-177)-TBD 转染E.coli DH10Bac细胞而生成。分离重组杆粒并用来转染Sf9细 胞以产生重组杆状病毒。将Sf9培养物以MOI 5在27.5℃感染49 小时，随后通过离心而收获。裂解物以与如上所述用于其他 ChimigenTM蛋白基本相同的方式而制备，并进行Ni-NTA亲和层析。
Ni-NTA亲和层析
将细胞裂解物加样到Ni-NTA superflow柱(10ml树脂床体积 /2.5L细胞培养物沉淀)，该柱已经用10倍床体积的裂解缓冲液加 以平衡。用含有百分比降低的吐温20的洗涤缓冲液(6M GuHCl， 50mM NaH2PO4，0.5M NaCl，0.1％吐温20，10mM β巯基乙醇， pH 8.0)的洗涤缓冲液洗涤该柱，直至A280＜0.01，随后用含15mM咪 唑的相同洗涤缓冲液进行洗涤。随后用10ml床体积的洗脱缓冲液 (6M GuHCl，50mM NaH2PO4，250M咪唑，0.1％吐温20，10mM β巯基乙醇，pH 8.0)/床体积馏分来洗脱靶蛋白。收集包含洗脱蛋 白的馏分并对透析缓冲液3×4L(8M尿素、20mM Tris、0.1％吐 温20、25mM氨茶碱、10mM β-巯基乙醇，pH8.5)透析。所有含 尿素的缓冲液均用去离子尿素制备，以防止蛋白氨甲酰化。尿素通 过AmberliteMB-1(Supelco，PA，USA)(10g/L/hr)去离子，并向缓冲液中加 入氰酸盐清除剂乙二胺(终浓度25mM)。
离子交换层析
接下来，使通过Ni-NTA亲和层析获得的含已透析的NS5A Chimigen3蛋白的样品通过已在透析缓冲液中平衡过的Toyopearl Super Q3树脂柱(2.5ml床体积/2.5L细胞培养物沉淀)。所述离子 交换柱用离子交换洗涤缓冲液(8M尿素、20mM Tris、0.05％吐 温20、25mM乙二胺、10mM β-巯基乙醇，pH8.5)洗涤直至 A280＜0.01。随后用10倍床体积含盐浓度递增(75mM、150mM和 500mM NaCl)的洗涤缓冲液将蛋白从柱上洗脱。收集1倍床体积 的馏分。该NS5A ChimigenTM蛋白主要在150mM NaCl馏分中洗脱 下来。轻微较低MW的污染蛋白则以75mM NaCl洗脱下来。收集 洗脱的蛋白馏分，并在4℃下立即对最终透析缓冲液(150mM NaCl、 10mM NaH2PO4、0.05％吐温20，pH8.5)进行透析。每次透析2L， 并更换5次透析缓冲液。将透析的蛋白通过已预湿的0.2μm滤器过 滤，以防止蛋白黏连于此。纯化的NS5A ChimigenTM蛋白储存于4 ℃。
为了进一步提纯NS3Chimigen3蛋白，将CM-Sepharose3 Fast Flow基质用8M尿素(去离子)、25mM NaH2PO4、5mM乙二胺、0.05％ (v/v)吐温20、10mM DTT，pH8.5加以平衡。利用线性梯度(0- 至0.6M)氯化钠在相同缓冲液中以1mL/min的流速洗脱蛋白。收 集含该蛋白的馏分(25-50mM NaCl)。
将通过Ni-NTA柱捕获的含多抗原Chimigen3蛋白的样品进一 步通过HiTrap3Q XL 1ml柱利用AKTAexplorer3100FPLC系统而 纯化。来自Ni-NTA亲和层析洗脱缓冲液中的蛋白通过Amicon Ultra-15(MWCO 30,000Da)浓缩，随后将该缓冲液换成缓冲液A (8M尿素、50mM碳酸钠、25mM乙二胺、1％吐温20，pH10)。 将蛋白加样到HiTrap QTM XL柱上，用50ml的缓冲液A平衡，流速60 mL/小时。用缓冲液A洗涤该柱直至洗脱A280＜0.01。蛋白通过线性 梯度洗脱(100％缓冲液A至100％缓冲液B)在20倍柱体积中洗 脱。HCV多抗原ChimigenTM蛋白在无逆流馏分(flow-through fraction)和在40％至50％缓冲液B之间洗脱的馏分中洗脱。
尺寸排阻层析
在3MPa压力下，利用AKTAexplorer 100FPLC系统(GE healthcare)将制备级Superdex3200填充于Tricon3柱10/300(1× 30cm，Pharmacia Biotech)中。用100ml 6M胍、50mM碳酸钠， pH10洗涤该柱。将0.5mL含Chimigen3多抗原蛋白的裂解物加样 到Superdex 200柱上。以30ml/小时的流速洗脱蛋白，并收集0.5mL 馏分。通过在280nm处的吸收监测蛋白洗脱。
疏水作用层析
将Phenyl-650C Toyopearl(0.5mL，TOSOH Corp.)装载到 Poly-prep柱(Bio-Rad)中。该柱用20mL HIC结合缓冲液(0.1M Tris、 2M氯化钠，pH8)进行平衡。将终浓度为2M的氯化钠加入到0.5mL 含Chimigen3多抗原蛋白的裂解物中，并用3.5mL HIC结合缓冲液 稀释该提取物。通过以18,000rpm(39,191xg，利用JA25.50转子， Beckman Coluter AvantiTM J-25离心机)离心20分钟而除去不溶性颗 粒。将上清液以30mL/小时的流速通过重力流加样到柱上。随后， 用10mL HIC结合缓冲液洗涤该柱，并用5mL HIC洗脱缓冲液(8M 尿素、50mM乙二胺、0.5％吐温20，pH10.5)洗脱结合于柱上的蛋 白。
纯化的Chimigen TM 蛋白的生化评估
按照制造商提供的方案，利用Micro BCA3蛋白分析试剂盒以 微板步骤评估蛋白浓度。
对于SDS-PAGE分析，等份的纯化的蛋白通过加入5X蛋白加 样缓冲液和20X还原剂而变性并煮沸5分钟。变性蛋白在12％SDS 聚丙烯酰胺凝胶上分离，并在由生产商提供的条件下用页蓝3对该 凝胶染色。
对于蛋白质印迹分析，通过12％SDS-PAGE分离蛋白并利用含 48mM Tris碱、39mM甘氨酸、20％甲醇和0.0375％SDS的缓冲液 将其电转染到Hybond3ECL3硝基纤维素膜上。该膜首先在室温下 在封闭缓冲液(1％脱脂乳、在PBS中的0.1％吐温20)中孵育1小 时。将用于检测的抗体在封闭缓冲液稀释至期望浓度。在室温下， 通过持续混合使该膜与稀释抗体一起孵育1小时。在与每种抗体孵 育后，在室温下用封闭缓冲液冲洗该膜3次，每次冲洗10min。通 过利用ECL3蛋白质印迹检测试剂盒的化学发光并暴露于Kodak Biomax XAR X射线膜而进行蛋白检测。
为了定性检测蛋白糖基化，使用由Molecular Probes开发的 Pro-QEmerald 300糖蛋白凝胶和Blot Stain试剂盒。该试剂盒可 以用于检测在凝胶或印迹上已通过SDS-PAGE分离的蛋白上的糖 类。该染料(stain)与大多数全蛋白染色兼容，并且如果需要，可 利用质谱进行分析。当染料与高碘酸氧化的糖基相互作用时，产生 亮绿色萤光信号，每条带均检测低至0.5ng的糖蛋白。该染料是高 碘酸和Schiff法的一种改良，并且制造商宣称可达50倍高的敏感 度水平。试剂盒中还包括CandyCaneTM分子量标准。该标准由改变 糖基化和非糖基化蛋白(分别用作阳性和阴性对照)而构成。蛋白 样品SDS-PAGE后，将凝胶在50％MeOH和5％醋酸中固定过夜。 在3％冰醋酸中洗涤凝胶2次(20分钟)，随后在氧化溶液高碘酸中 聚糖氧化30分钟。用3％冰醋酸洗涤凝胶3次(20分钟)，随后在 新鲜Pro-Q3 Emerald300染色液中暗处染色最长120分钟。成像前， 还需要在3％冰醋酸中暗处再洗涤两个20分钟。染料的刺激/发射最 大值是280/530nm，其中最佳可视度在约300nm。利用GeneGenius (Syngene)透照器和相应软件可视化并扫描凝胶。
Chimigen TM 疫苗的免疫学鉴定
人PBMC(外周血单核细胞)
PBMC通过白细胞分离制备物的Ficoll-Hypaque梯度离心而获 得，所述制备物来自具有HLA-A2单元型(Biological Specialty Corporation)的非HCV感染个体。在液氮中，PBMC以3×107细 胞/冷冻管储存于冻存培养基(50％Human AB serum，40％AIM V， 和10％DMSO)中。
单核细胞的分离并分化为未成熟DC(树突细胞)
在100mm组织培养板(BD Biosciences)上，将PBMC在37 ℃下在AIMV培养基(含2.5％配型血清)中培养1小时。培养后， 去除非贴壁细胞(非粘附细胞)，并用AIM V培养基洗涤该板。随 后用含IL-4和GM-CSF(每种1000IU/mL)的2mL AIM V/2.5％ 配型血清培养贴壁细胞。
HCV Chimigen TM 蛋白与未成熟DC的结合
未生熟DC是由在IL-4和GM-CSF存在的情况下培养单核细 胞24-72小时而获得的。培养后，收获细胞，用含2.5％配型血清的 AIMV培养基洗涤一次，随后用含0.1％(w/v)BSA的Dulbecco磷 酸缓冲盐(Invitrogen)(PBSB)洗涤2次。所述细胞用来评估 ChimigenTM蛋白的结合和内化。未成熟DC的表型通过标记多种细 胞表面标记物而评估，该细胞表面标记物包括CD64、CD32、CD16、 CD206、HLA-ABC、HLA-DR、CD14、CD11c、CD86、CD80、CD40、 CD83、CD19、CD3、和CD4。
对于结合分析，所有步骤均在4℃下进行，孵育后进行洗涤。 将细胞与不同浓度的ChimigenTM蛋白或相应的透析缓冲液一起在 PBSB中孵育60min(96孔V-底板，2×105细胞/孔，体积25微升)。 蛋白结合通过将细胞与生物素化抗小鼠IgG1或抗6xHis抗体在 PBSB中一起孵育20min，随后SA-PE-Cy520分钟而检测。将细胞 重悬于含2％低聚甲醛(PF)的PBSB中。在采用NS5A ChimigenTM 蛋白的实验中，通过联用兔抗NS5A多克隆抗体、羊抗兔IgG-生物 素、SA-PE-Cy5来检测结合。将细胞重悬于含2％低聚甲醛(PF)的 PBSB中，并通过荧光流式细胞仪(FFC)评估细胞结合。
利用结合抑制剂鉴定用于Chimigen TM 疫苗的DC受体
将未成熟DC与抗CD32mAb(IgG2b同种型)、抗CD206(IgG1 同种型)、或同种型对照小鼠IgG2b或IgG1mAbs一起在4℃下孵 育60分钟。随后，将所述细胞与ChimigenTM疫苗一起在PBSB中 4℃孵育60分钟。洗涤后，通过FFC分析，利用生物素化抗小鼠IgG1 mAb或生物素化抗-6xHis mAb以及随后的SA-PE-Cy5来检测与该 细胞的结合。
荧光流式细胞仪(FFC)分析
细胞通过装配有CellQuest Pro采集和分析软件(BD Biosciences)的FACSCalibur而获得。对活细胞群设定门，如通过 FFC和SSC散射谱确定的，并采集了≥20,000个事件。特异性阳性 细胞的百分比计算如下：(阳性细胞检测样品％-阳性细胞对照％)/ (100-对照阳性细胞％)×100。相对平均荧光强度(MFI)如下确 定：检测样品的MFI-对照样品的MFI。
抗原呈递分析(APA)
APA用来测定T细胞对由APC所呈递的抗原的免疫应答。所 述分析将功能性T细胞免疫应答以及抗原负载的成熟DC对诱导抗 原特异性T细胞增殖的能力加以量化。步骤包括将PBMC衍生的单 核细胞分化为未成熟DC、用抗原(ChimigenTM蛋白或TT)负载该 未成熟DC、将该未成熟DC分化为成熟DC以及随后将成熟的抗 原负载的DC与自体幼稚T细胞一起培养。对于活化和增殖分析， 培养7天后对T细胞进行分析。为了分析T细胞功能和特异性，将 T细胞用抗原负载的成熟DC再刺激两次，并评估IFN-γ、TNF-α、 粒酶B(grB)和穿孔素(pfn)的生成。T细胞对抗原的特异性用 特异性MHC I类四聚体或五聚体进行评估。
抗原负载的成熟DC的生成
如上所述生成未成熟DC并与抗原或缓冲液(对照)一起孵育 8小时。随后将该细胞与催熟剂poly IC(20μg/mL)、重组人(rh) IL-1β(10ng/mL)、rh TNF-α(10ng/mL)、rhIL-6(10ng/mL)、rh IFN- αA(1000U/mL)和rh IFN-γ(1000U/mL)一起培养16小时。 所述DC的成熟程度通过表型分析而评估。将细胞标记多种细胞表 面标记物，包括CD64、CD32、CD16、CD205、CD206、CD209、 HLA-ABC、HLA-DR、CD14、CD11c、CD86、CD80、CD83、CD40、 CD19、CD3、CD8和CD4。洗涤该成熟的抗原负载DC并将其与T 细胞一起培养。
人PBMC(外周血单核细胞)衍生的T细胞的分离
按照制造商的步骤，利用Dynal Biotech T细胞阴性选择试剂盒 (Invitrogen)通过阴性选择而从PBMC中分离T细胞。使用匹配 血清来代替BSA和FBS。通过多种细胞标记物的表型标记而评估 分离细胞的表型。T细胞(CD3+细胞)构成所分离细胞群的98％ 以上。该T细胞用CFSE标记(见下文)，或直接加入到含有DC 的细胞培养物中。
T细胞的CFSE标记
将新鲜分离的T细胞(1-5×107细胞)悬浮于500μl的PBSB 中并与500μl新鲜制备的10μg/ml的CFSE工作贮存液混合。在37 ℃下孵育10min后，用含血清培养基(AIM V/10％匹配血清)充 分洗涤细胞，以除去未结合的CFSE。T细胞的CFSE标记通过FFC 而确定。
人PBMC衍生的T细胞的培养
将T细胞与抗原负载的成熟DC以AIM V/2.5％匹配血清中的 1-20×104T细胞至1-5×104DC/孔的比例一起孵育。为了进行T细 胞活化和增殖APA实验，培养4天和7天后收获T细胞(见下文)。 对于T细胞功能和特异性APA实验，将T细胞培养7天，随后用 抗原负载的成熟DC再次刺激并再培养7天。随后将培养14天的T 细胞分为两组(细胞内细胞因子(ICC)板和四聚体板)，并用抗原 负载的DC进行第三次刺激。将1μg/mL布雷菲德菌素A(BD Biosciences)加入到ICC IFN-γ板的孔内，并将该细胞培养6小时。 IFN-γ、TNF-α、grB和pfn的表达如下文所列出的进行评估。刺激 后5-6天进行四聚体分析，如下文所述。
T细胞活化和增殖分析
为了活化/增殖APA，与抗原负载的DC一起培养4或7天后， 收获T细胞。评估该T细胞的CD69(早期活化标记物)表达和CFSE 强度(增殖程度)。用抗CD3-PE、抗CD3-PE-Cy5和抗CD69-APC 标记收获的细胞。利用缓冲液对照样品可鉴定未经过任何倍增的T 细胞群。在FL1通道中检测到标记有高度荧光的细胞群，并命名为 CFSEhi。经过一次分裂的细胞群具有CFSEhi细胞群的MFI的一半。 类似地，经过两次分裂的细胞群具有CFSEhi细胞群的MFI的约25％ (小于4倍)。所具有的CFSE荧光低于CFSEhi荧光的细胞命名为 CFSElo。某些细胞群具有接近背景FL1通道荧光，并且可以称为 CFSE-(CFSE阴性)。然而，为了此处所列出实验的目的，可认为 T细胞是CFSEhi(无细胞分裂)或CFSElo(至少一次细胞分裂)。
T细胞活化通过评估CD69的表达而定量。在某些实验中，通 过圈定高FSC和SSC强度CD3+T细胞而定量T母细胞。因此，与 细胞群中小(G0)的静息细胞相比，细胞群中母细胞的相对数量表 示为具有较大直径(FSChi)和较高细胞复杂度(SSChi)的细胞的 比例。
细胞内IFN-γ、TNF-α、grB和pfn的检测
利用标准ICC(细胞内细胞因子)方案(BD Biosciences)，定 量IFN-γ和TNF-α的生成和丝氨酸蛋白酶粒酶B(grB)[Lobe et al. (1986)Science 232：858-861]以及成孔蛋白穿孔素(pfn)[Hameed et al. (1992)Am.J.Pathol.140：1025-1030]的表达。简单的说，该过程包括 用特异性荧光染料轭合的mAbs标记所述细胞，用于检测CD3(抗 CD3-APC)和CD8(抗CD8-PE-Cy5)，然后进行固定和渗透。随 后将细胞样品分为两份，一份与抗IFN-γ-PE抗体和抗-grB-FITC抗 体一起孵育，而另一份与抗TNF-α-PE和抗穿孔素-FITC一起孵育。 利用BD FACSCalibur，平均每份样品可采集到20,000-100,000个细 胞。
四聚体和五聚体分析
将T细胞用抗CD8-PE-Cy5、抗CD4-APC和抗CD69-FITC抗 体以及下列PE轭合的iTagTM四聚体(Beckman Coulter)或五聚 体(ProImmune)中的一种进行标记： HCV NS5A(VLSDFKTWL；SEQ ID NO：3)HLA-A*0201， EBV(GLCTLVAML；SEQ ID NO：5)HLA-A*0201，HCV NS3peptide(CTNGVCWTV； SEQ ID NO：4)HLA-A*0201，HCV.NS3peptide(KLVALGINAV；SEQ ID NO：6)HLA- A*0201，以及一种阴性对照四聚体(多等位基因的)。利用 FACSCalibur可采集到约100,000个细胞。
通过共聚焦显微镜分析Chimigen TM 蛋白结合、内化和加工
利用共聚焦显微镜研究ChimigenTM蛋白被未成熟DC结合、内 化和加工的过程。这些研究中所使用的未成熟DC通过在GM-CSF 和IL-4存在的情况下，使贴壁的PBMC起源单核细胞在含2.5％供 体匹配血清的AIM V培养基中分化2天而得到。第2天，将未成 熟DC转移至腔室玻片，使用前再孵育一天。第3天，则选择为具 有适当细胞表面受体和形态的细胞之间的中间物。
为了研究ChimigenTM蛋白与DC表面的结合，将细胞用5Tg/mL ChimigenTM蛋白或缓冲液(仅作为阴性对照)在4℃下在PBSB中 孵育1小时。1小时后，用PBSB洗涤细胞并用生物素化的抗小鼠 IgG1抗体标记，随后用抗生蛋白链菌素AlexaFluor546标记。每一个 步骤之间均进行PBSB洗涤。标记并洗涤后，用4％低聚甲醛(在 PBSB中制备)将细胞在4℃下固定10min。随后用含4′，6-二脒基-2- 苯基吲哚、二氢氯化物(DAPI；Invitrogen)的SlowFadeGold抗淬 灭剂封片，并将盖玻片用指甲油密封于所述玻片上。
通过DC内化ChimigenTM蛋白(5Tg/mL)的研究可通过直接 将该细胞在37℃(7％CO2)含ChimigenTM蛋白的培养基中孵育， 或通过首先在PBSB中在4℃下标记表面受体、洗去未结合蛋白， 随后研究该受体结合的蛋白在37℃(7％CO2)AIM V/2.5％匹配血 清的培养基中随时间(0min、15min、60min和240min)的吸收。 用PBSB洗涤在37℃下孵育的细胞，随后用BD Biosciences Cytofix/CytopermTM溶液固定并渗透10分钟。随后用在BD BiosciencesPerm/WashTM溶液中的生物素抗小鼠IgG1对细胞洗涤并 标记(1小时)，接着用抗生蛋白链菌素AlexaFluor546标记。如有需 要，可用其他抗体共同标记。最后一次洗涤该细胞后，如上所述安 装玻片。
为了确定ChimigenTM蛋白被内吞，实施了脉冲追踪试验，用 ChimigenTM蛋白(5Tg/mL)在冰上冲击未成熟DC 30分钟。用PBSB 洗涤细胞，并在不含ChimigenTM蛋白的AIM V/2.5％匹配血清的培 养基中追踪，然后在37℃下(7％CO2)孵育15分钟。脉冲追踪的 细胞用PBSB洗涤、用4％低聚甲醛固定并用MHC II类抗体标记， 以仅标记质膜。为了确定如果ChimigenTM蛋白存在于内涵体中，则 随后用BD BiosciencesCytofix/CytopermTM溶液将质膜标记的细胞 固定并渗透10分钟。如上所述，在用BD Perm/WashTM洗涤后，利 用抗小鼠IgG1生物素/抗生蛋白链菌素检测ChimigenTM蛋白。
为了研究微胞饮作用，5mg/ml的FITC葡聚糖(MW 70,000， 阴离子，赖氨酸可固定的，Invitrogen)在含或不含ChimigenTM蛋 白(5Tg/mL)的AIMV/2.5％匹配血清的培养基中用作液相标记 物。
为了研究受体介导的胞吞作用，将20Tg/mL的Alexa Fluor488转铁蛋白轭合物(Invitrogen)用于含ChimigenTM蛋白(5 Tg/mL)的PBSB中。乳胞素(Sigma)既用作半胱氨酸蛋白酶抑制剂 又用作蛋白酶体抑制剂(终浓度5Tg/mL)。
在体内动物模型中免疫应答的评估
这些研究利用两种近亲实验室动物(小鼠和大鼠)和一种远亲 大动物(小猪)种属。特别地，采用BALB/c小鼠(6-8周大，来 自Charles River实验室)、Wistar大鼠(4-6周大，来自Charles River 实验室)和杂交小猪(4-6周大，来自 Prairie Swine Center，University of Saskatchewan)。所述研究确定 ChimigenTM蛋白的免疫应答和保护效力。
安全性评估
HCV ChimigenTM蛋白经皮下(s.c.)或皮内(i.d.)给予。下列 方案和剂量用于注射。动物经s.c.或i.d.接种4次，分别是第0天、 第14天、第28天和第42天，每两周一次。对于小鼠s.c.和i.d.注 射，采用0.1Tg、1ug或10Tg/小鼠。用于大鼠接种的剂量将为0.15 Tg、1.5Tg或15Tg/大鼠，而对于小猪则为0.2Tg、2Tg或20Tg/ 小猪。
接种前(第1天)以及每次注射后7天(第7、21、35、49天) 收集血液样品，通过ELISA技术用于分析特异抗体的量以及 IgG1/IgG2a比率。
最后一次接种后两周处死动物。通过接种后每周至少三次对动 物进行体检，而评估HCV ChimigenTM蛋白的安全谱。这包括体重 和不良事件观测。对于全身毒性，采用以固定间隔收集的血液样品 来监测血清化学物质的变化，包括天冬氨酸氨基转移酶(AST)和 丙氨酸氨基转移酶(ALT)水平。此外，实验结束时，将尸体剖检 时从脾、肝、肾、心、肺、肌肉和脑收集的组织在10％缓冲福尔马 林中固定并在石蜡中包埋，用于将来分析可能的病理学变化。周龄 匹配的动物用作对照。
对Chimigen TM 蛋白的免疫应答
预测ChimigenTM蛋白可诱导强烈的细胞和体液免疫应答。实施 动物实验以确定小猪体内的宿主对HCV ChimigenTM疫苗的免疫应 答。核心、NS5A、NS3和多抗原ChimigenTM蛋白用于这些研究。 在第一轮中，评估对HCV ChimigenTM蛋白的免疫应答。如上所述， 该蛋白经s.c.或i.d.给予。
小鼠或大鼠的脾细胞以及小猪的外周血单核细胞(PBMC)用 来确定在s.c.和i.d.途径给药后对HCV ChimigenTM蛋白的免疫应答 的质和量，如下文所述。这些实验允许我们确定哪种ChimigenTM 疫苗以及哪种给药途径将能够诱导最强烈的免疫应答。除了强烈的 体液应答之外，靶向性递送所述HCV ChimigenTM蛋白还能引起潜 在的Th1偏离的免疫应答。来自VIDO对HCV疫苗的研究已经证 明用DNA疫苗初始化并随后用蛋白加强可诱导强烈的和Th1/Th2 平衡的免疫应答[Yu et al.(2004)J.Gen.Virol.85：533-1543。
免疫应答的评估
i)抗体应答。通过ELISA来确定HCV抗原特异性抗体的存 在，以检测总IgG以及IgG1和IgG2a抗体水平。所述IgG水平表 明免疫应答的数量，而IgG1和IgG2a的相对水平则表明免疫应答 的性质(Th1或Th2)。这些实验利用已建立的方案而实施。
ii)淋巴细胞增殖测定。用HCV抗原在体外刺激小鼠或大鼠 的脾细胞、小猪的外周血单核细胞(PBMC)。增殖反应通过将[甲 基-3H]胸腺嘧啶整合入分裂细胞的DNA而测定。
iii)细胞因子ELISPOT测定。为了进一步确定免疫应答的性 质，按照我们已建立的方案用HCV抗原刺激后，在ELISPOT测定 中确定脾细胞(小鼠和大鼠)或PBMC(小猪)中分泌干扰素-γ和 白介素-4的细胞数量。
由HCV Chimigen TM 蛋白诱导的保护性抗病毒免疫
HCV具有非常窄的宿主范围，仅在人和黑猩猩体内复制。用 活HCV激发接种动物是不实际的，因为黑猩猩费用昂贵且供应受 限。然而，用编码HCV抗原的重组牛痘病毒接种后激发是一种替 代性模型，用于评估由HCV预防性疫苗在动物模型中诱导的保护 性能力。ChimigenTM蛋白，单独或作为组合物，用来免疫接种动物。 为了评估接种后诱导的保护性免疫，完成利用预定策略的计划免疫 接种后2周，通过编码相同HCV抗原的重组牛痘病毒作为相关 Chimigen3蛋白而腹膜内激发动物。激发剂量将为：小鼠1×107空 斑形成单位(PFU)、大鼠2×107PFU以及小猪1×109PFU。5天 后，处死动物并通过空斑测定按照已建立的方案确定病毒滴度。
鉴定最适合的用于HCV治疗性和预防性疫苗的候选物
治疗性疫苗基于HCV病毒的非结构蛋白(例如NS5A、NS3)， 而预防性疫苗则基于结构蛋白(例如E1、E2)以及非结构蛋白。 所述ChimigenTM疫苗中的一种或多种的组合物用于离体DC/T细胞 抗原呈递分析以及动物模型中，并评估免疫学结局。
目前正在研究用于治疗性和预防性用途的ChimigenTM疫苗的 免疫接种方案以及给药途径。通过测定抗体水平、淋巴细胞增殖以 及细胞因子生成而评估免疫应答。由预防性HCV ChimigenTM疫苗 候选物诱导的保护性抗病毒免疫还可在激发试验中被评估，如上文 所述。
实施例2.NS5A Chimigen3蛋白的结果
NS5A Chimigen TM 蛋白已被提纯并鉴定
纯化的NS5A ChimigenTM蛋白通过SDS-8％PAGE迁移为一条 约105kDA的带，尽管该蛋白的预测分子量是约81kDA。观察到 的分子量与预测的分子量之间的差异可能部分由于该蛋白中的高 脯氨酸含量(～11％)、糖基化以及其他可能的翻译后修饰而引起。 该纯化蛋白用抗小鼠IgG1Fc、6xHis和NS5A的抗体进行检测。对 该纯化蛋白(从凝胶上切下的条带)进行MS/MS ID(质谱)分析， 得到明显的NS5A、小鼠IgG1重链以及HCV多蛋白点，表明其的 确是NS5A ChimigenTM蛋白。将纯化的NS5A ChimigenTM蛋白在8％ SDS凝胶上分离，并利用Pro-QEmerald 300糖蛋白凝胶以及Blot Stain试剂盒染色糖基化，并用UV光照进行检测。该操作表明所 述纯化的NS5A ChimigenTM蛋白的糖基化。
NS5A Chimigen TM 蛋白结合于未成熟DC
对NS5A ChimigenTM蛋白结合于未成熟DC的能力加以检测。 在不同浓度的NS5A ChimigenTM蛋白存在或缺失的情况下，将该细 胞在4℃下孵育1小时。通过生物素化的抗小鼠IgG1mAb和 SA-PE-Cy5检测结合的疫苗。结合该疫苗的细胞百分比(阳性细胞 ％)以及结合蛋白的相对量(MFI)通过流式细胞仪确定(图15)。 当NS5A ChimigenTM蛋白为4-50μg/mL时，大多数DC结合均为阳 性，且结合蛋白的量存在剂量依赖性递增(图15和16)。相比于 50μg/mL，20μg/mL时蛋白的结合并不是更大，表明与未成熟DC 的结合是可饱和的。观察到的高结合MFI提示NS5A ChimigenTM 蛋白与未成熟DC的结合非常有效且处于高水平。4℃时的结合是可 饱和的，表明该过程是受体介导的。该结合也非常迅速，因为结合 的蛋白在4℃孵育5分钟后即可检测到，其中结合MFI约为孵育1 小时后观察到该值的一半(数据未示出)。
NS5A Chimigen TM 蛋白结合于未成熟DC上的特异性受体
通过其所包含的Fc片段，推测所述NS5A ChimigenTM蛋白通 过其TBD区结合于未成熟DC上的CD32(FcγR II)。此外，由于 其甘露糖糖基化，推测该NS5A ChimigenTM蛋白还结合于C型凝 集素受体如CD206(MMR)。为了确定所述疫苗候选物的结合特异 性，在阻断性抗CD32和/或抗CD206mAbs存在的情况下，将未成 熟DC与NS5A ChimigenTM蛋白一起孵育。
将未成熟DC与缓冲液对照、或5μg/ml同种型对照mAb、抗 CD32mAb、抗CD206mAb、或者抗CD32mAb和抗CD206mAb 在4℃下一起孵育1小时，随后在4℃下与NS5A ChimigenTM蛋白 一起孵育1小时。结合的NS5A ChimigenTM蛋白用生物素化的抗 6xHis mAb随后是SA-PE-Cy5进行检测。相比于缓冲液对照，同种 型对照mAb(鼠IgG1和IgG2b)并未抑制结合。然而，相比于缓 冲液对照，抗CD32和抗CD206分别抑制结合达约60％和40％。
加入两种mAb进一步抑制NS5A ChimigenTM蛋白结合，导致 80％抑制。这些数据表明CD32和CD206两者在结合NS5A ChimigenTM蛋白过程中的作用。通过共聚焦显微镜，相比于仅用缓 冲液，在4℃下与NS5A ChimigenTM蛋白一起孵育的细胞表面上表 现出强烈的标记，表明ChimigenTM蛋白结合于细胞表面。
通过未成熟DC的NS5A ChimigenTM蛋白内化在37℃下加以评 估。与ChimigenTM蛋白一起于37℃孵育1小时的未成熟DC表现 为点状标记模式，常位于核附近，提示ChimigenTM蛋白被内化且(即 使有)几乎非常小的表面标记。
DC能够通过几种途径吸收抗原，包括吞噬、巨胞饮、网格蛋 白介导的胞吞作用以及非网格蛋白/细胞膜穴样凹陷胞吞作用。已报 道巨胞饮是未成熟DC内的一个组成性过程(Trombetta and Mellman 2005)。未成熟DC通过巨胞饮在37℃下对内化NS5A ChimigenTM 蛋白的能力，利用巨胞饮标记物FITC葡聚糖加以评估 [Hewlett et al.(1994)J.Cell Biology 124：689-703]。将未成熟DC与 ChimigenTM蛋白和FITC葡聚糖一起孵育15分钟和60分钟后，观 察到囊泡样结构，其包含蛋白和FITC葡聚糖，表明在37℃所述 ChimigenTM蛋白可通过巨胞饮吸收。还应注意到，FITC葡聚糖可 结合于巨噬细胞甘露糖受体(CD206)，因此通过受体介导的胞吞作 用，可以出现一些包含ChimigenTM蛋白和FITC葡聚糖的内涵体
受体介导的胞吞作用在ChimigenTM蛋白吸收中的作通过脉冲- 追踪实验而研究。未成熟DC用荧光标记的ChimigenTM蛋白于4℃ 下进行冲击、洗涤并在37℃下孵育15分钟。将该细胞固定、渗透 并用抗体标记，以检测ChimigenTM蛋白以及转铁蛋白受体。所述转 铁蛋白受体通过受体介导的胞吞作用而吸收，随后从早期内涵体循 环回质膜。在4℃下，所述NS5A ChimigenTM蛋白结合于该细胞表 面，而转铁蛋白受体则主要存在于细胞内部。变至37℃后，观察到 形成内涵体，其中一部分内涵体包含ChimigenTM蛋白和转铁蛋白受 体两者。在实验开始时(4℃)，大量细胞内已存在的转铁蛋白受体 很可能对多个包含转铁蛋白的内涵体(与ChimigenTM蛋白并非共定 位)负责。
利用共聚焦显微镜，通过与抗转铁蛋白受体的抗体共同标记， 还可评估NS5A ChimigenTM蛋白通过DC的吸收及其与转铁蛋白的 共定位。转铁蛋白结合于转铁蛋白受体，并已知通过受体介导的过 程而内化。该分析表明两种分子的共定位，从而表明NS5A ChimigenTM蛋白通过受体介导的胞吞作用而被吸收。
在尝试增加ChimigenTM蛋白与转铁蛋白受体信号之间的重叠 时，将细胞与轭合于人转铁蛋白的Alexa Fluor 488一起孵育，以便 间接检测仅最近内吞的转铁蛋白受体而非细胞内全部转铁蛋白受 体。在4℃下，将未成熟DC用ChimigenTM蛋白与轭合于转铁蛋白 的Alexa Fluor 488混合物一起进行表面标记。几乎未观察到Alexa Fluor 488转铁蛋白阳性内涵体，但当存在时，则其包含NS5A ChimigenTM蛋白，表明ChimigenTM蛋白确实是通过受体介导的胞吞 作用而吸收的。这些结果表明Chimigen3蛋白主要通过受体介导的 胞吞作用而被内化。
研究了NS5A ChimigenTM蛋白通过未成熟DC的加工过程。因 为疫苗(特别是)被设计成治疗慢性感染，需要通过MHC I类受 体CD8+细胞的活化以及抗原交叉呈递。已经提出了两种不同的加 工途径用于抗原交叉呈递[Lizée et al.(2005)Trends Immunol.26(3)： 141-149]。第一种途径涉及通过吞噬吸收的抗原的加工，而第二种 途径则涉及由其他胞吞作用途径(如受体介导的胞吞作用)吸收的 抗原的加工。在第二种途径中，蛋白吸收入早期内涵体并靶向于晚 期内涵体，其中它们通过组织蛋白酶降解并装载到MHC I类受体 上。因此，进行实验，以确定NS5A ChimigenTM蛋白能否在晚期内 涵体中检测到，并确定其是否与这样的结构中的MHC I类受体共 定位。对已经在4℃下用NS5A ChimigenTM蛋白冲击并随后在37℃ 下追踪的细胞进行共标记，以检测ChimigenTM蛋白和LAMP1(晚 期内涵体/溶酶体的标记物)两者。第4小时和24小时，观察到NS5A Chimigen蛋白与LAMP1之间的重叠，表明该NS5A Chimigen蛋白 处于晚期内涵体/溶酶体内。在另一个共标记实验中，发现所述NS5A ChimigenTM蛋白存在于与MHC I类分子相似的结构中，从而表明 该ChimigenTM蛋白通过MHC I类分子加工而用于呈递。
相信蛋白酶体与抗原破坏有关，用于通过吞噬溶酶体途径的交 叉呈递。用细胞可透过的蛋白酶体抑制剂乳胞素(以5μg/mL的浓 度)处理细胞。最近已表明乳胞素在抑制溶酶体蛋白酶CathepsinA 方面不如之前所认为的特异[Kozlowski et al.(2001)Tumour Biol. 22(4)：211-215]。如果NS5A ChimigenTM蛋白的加工如在吞噬溶酶体 途径中一样涉及到蛋白酶体，则将能预料到不完全降解的肽在胞质 溶胶中部分累积，且这样的累积预期不再晚期内涵体中加工[上文， Lizée et al.(2005)]。4小时追踪后，用5μg/mL的乳胞素处理的脉冲 细胞(脉冲和追踪)表现为较大数量含有NS5A ChimigenTM蛋白的 内涵体。此外，与那些对照细胞的内涵体相比，所述内涵体似乎包 含更多的该蛋白。用抗鼠IgG1的单克隆抗体未检测到细胞质NS5A ChimigenTM蛋白的增加。这些数据再次表明受体介导的胞吞作用而 非吞噬溶酶体途径是Chimigen3蛋白内化于DC内的机制。
通过DC的NS5A Chimigen TM 蛋白呈递导致CD8+和CD4+T细 胞活化和增殖两者
对NS5A ChimigenTM蛋白的功能性免疫应答通过离体APA加 以评估。该分析可用来在用抗原负载的DC刺激T细胞后测定功能 性T细胞免疫应答的多个参数。该分析包括首先通过加入IL-4和 GM-CSF由PBMC起源的单核细胞生成未成熟DC。随后将该未成 熟DC与疫苗候选物、载体缓冲液(阴性对照)或破伤风类毒素(TT) (阳性对照)一起孵育。随后用细胞因子处理所述DC以促进成熟、 洗涤并与自体幼稚T细胞一起孵育。为了测定细胞因子的生成、细 胞毒性颗粒组分的存在、以及NS5A特异性T细胞的生成，再刺激 所述T细胞两次以允许ChimigenTM蛋白特异性T细胞的扩增。活 化通过测定早期T细胞活化标记物CD69而评估，而增殖则通过追 踪CFSE标记的T细胞荧光而测定。与抗原负载的DC一起培养4 天和7天后，评估CD69表达和CFSE荧光两者。
初步分析已经表明培养液中DC和T细胞的浓度是确定T细胞 免疫应答的重要参数。因此，设计APA，以便评估6种不同的T细 胞：DC的比率。采用两组DC浓度，高浓度为5×104DC/孔，而低 浓度为1×104DC/孔。培养48小时后，将所述未成熟DC与缓冲液 (阴性对照)、NS5A ChimigenTM蛋白(5AC，5μg/mL)的两种不 同制备物、TT(阳性对照)或PBS一起孵育。随后将该DC培养8 小时，并通过加入polyIC、IL-1、IL-6、TNF-α、IFN-α和IFN-γ 而催熟。过夜(16小时)培养后，洗涤来自PBS对照组的DC并 检测多种成熟DC标记物的表达。高浓度和低浓度DC均表达高水 平HLA-ABC(MHC I类)、HLA-DR(MHC II类)、CD86、CD80、 CD83(图17)。通常，所述高浓度DC表达轻微较高水平的DC成 熟标记物。
通过阴性选择步骤分离自体T细胞，并利用CFSE标记来确定 细胞分裂。向96孔板中100μl/孔的DC中，加入100μl/孔的T细 胞，每孔浓度为：20×104、5×104或2×104。对于高DC浓度孔(5 ×104DC/孔)，每孔中T细胞/DC 的比例组合为： 20×104∶5×104(4∶1)，5×104∶5×104(1∶1)，以及2×104∶5×104(0.4∶1)。 对于低DC浓度孔(1×104DC/孔)，每孔中T细胞/DC的比例组合 为：20×104∶1×104(20∶1)，5×104∶1×104(5∶1)，以及2×104∶1×104(2∶ 1)。在无任何外源性细胞因子的情况下，将T细胞加入到DC中。 作为对照，培养第3天时，将PHA(1μg/mL)加入到T细胞中， 其中所述T细胞加载到PBS处理的DC组上。
培养4天后，收获一半细胞培养物(100μl)，用于活化和增殖 分析。将100μl新鲜AIM V/2.5％匹配的血清加入到剩余的一半细 胞培养物中，再培养细胞3天。培养4天后T细胞上CD69的表达 示于图18A-C中。图18A示出了对于不同T细胞∶DC的比率的表 达CD69的CD3+细胞的百分比。无论T细胞∶DC的比率如何，大 多数PHA处理的细胞均表达CD69。与高DC浓度一起培养时，也 在T细胞中检测到了CD69；但与低DC浓度一起培养时，则在T 细胞中几乎未检测到CD69。相比于缓冲液对照，抗原刺激的T细 胞表达较高水平的CD69。第4天时，NS5A ChimigenTM蛋白负载 的DC诱导的表达CD69的CD8+T细胞百分比高于CD4+T细胞(图 18B和C)。相比于回忆抗原TT，CD8+T细胞中表达CD69的百分 比等于或大于Chimigen3蛋白的百分比。这表明NS5A ChimigenTM 蛋白是幼稚CD8+T细胞的强活化剂。
培养4天后，经过至少一次分裂的细胞(CFSElo)的百分比示 于图19A-C中。用PHA处理24小时的T细胞较早开始分裂(图 19A)。用TT负载的DC处理的CD8+和CD4+T细胞在培养4天后 出现可检测性增殖，但仅在高DC浓度比较明显(图19B和C)。 第4天时，在ChimigenTM蛋白处理组几乎检测不到T细胞增殖。 因此，第4天时，幼稚T细胞通过NS5A ChimigenTM蛋白负载的 DC活化(如通过CD69表达而证明的)，但这些T细胞尚未分裂或 其分裂尚不能通过所采用的分析检测到。
培养7天后，收获细胞用于活化和增殖的分析。培养7天后， T细胞上CD69的表达示于图20A-C中。图20A示出了对于不同T 细胞∶DC的比率的表达CD69的CD3+细胞的百分比。用PHA处理 的T细胞中CD69表达出现了显著增加。然而，表达CD69的细胞 百分比相比第4天时观察到的值已经有所下降，与预期的PHA反 应一致：CD69快速诱导其后随时间出现表达降低。对于Chimigen3 蛋白刺激的T细胞，在与高浓度DC一起培养的T细胞中，以高于 5％的水平检测到CD69，但在与低浓度DC一起培养的T细胞中， 则几乎检测不到。因此，低DC浓度(1×104DC/孔)不足以用于抗 原特异性T细胞活化。相比于缓冲液对照，对于5×104T细胞和2 ×104T细胞∶5×104DC的比率，较高数量的Chimigen3蛋白刺激的 T细胞表达CD69。第7天时，回忆TT应答的CD69表达有所降低。 第7天时，与d4T细胞相反，NS5A ChimigenTM蛋白负载的DC诱 导的表达CD69的CD4+T细胞百分比高于CD8+T细胞(图20B和 C)。相比于缓冲液或回忆抗原TT，对于高DC浓度(5×104/孔)， CD8+和CD4+T细胞中表达CD69的百分比等于或大于表达 ChimigenTM蛋白百分比。因此，NS5A ChimigenTM首先活化幼稚 CD8+T细胞，随后活化CD4+T细胞。
培养7天后，经过至少一次分裂的细胞(CFSElo)的百分比示 于图21A-C中。结果表明基本上每个用PHA处理的T细胞均已经 分裂(图21A)。在培养7天后，用Chimigen3蛋白或TT负载的 DC导致显著的T细胞增殖，但这在高DC浓度时最明显。由于抗 原负载，仅高DC浓度孔诱导显著的CD8+T细胞增殖(图21B)。 然而，用抗原负载的低浓度DC足以诱导CD4+T细胞增殖(图21C)。 特别地，在高DC浓度下，Chimigen3蛋白负载的DC诱导T细胞 增殖至可与TT负载的DC相比的水平。
T细胞增殖的另一个衡量标准(测量)是T细胞群中T母细胞 的相对比例。T母细胞定义为那些具有较高FSC(前光散射，forward light scatter)和SSC(侧光散射)的细胞，而且淋巴细胞门中的休 止淋巴细胞定义为通过流式细胞仪所评估的。培养物中T母细胞的 百分比示于图22中。这些结果与如图21A中示出的经历分裂的细 胞百分比非常好地相关联。因此，评估细胞群中T母细胞可作为 CFSE分析的替代方案。总体来说，这些结果表明NS5A ChimigenTM 蛋白对于诱导初始T细胞应答非常有效，如通过T细胞活化和增殖 所测定的。
通过DC的NS5A Chimigen TM 蛋白呈递引起产生IFN-γ和TNF- α的CD8+和CD4+T细胞的生成
通过三次刺激离体APA来评估针对NS5A ChimigenTM疫苗的 功能性免疫应答。将4×104DC/孔(高浓度)或2×104DC/孔(低 浓度)的未成熟DC用对照载体缓冲液、PBS、TT(阳性对照)、或 NS5A ChimigenTM蛋白负载。随后催熟DC并评估其表型。DC的成 熟利用MHC I类、MHC II类、CD86、CD80和CD83的高水平表 达而确认(图23)。将自体T细胞与成熟的抗原负载DC以20×104T 细胞/孔∶4×104DC/孔或者4×104T细胞/孔∶2×104DC/孔的比例 一起孵育。刺激该T细胞三次，并在第三次刺激后6小时通过检测 Th1细胞因子IFN-γ和TNF-α的细胞内水平来评估T细胞功能。此 外，还评估了T母细胞的含量。
图24示出了高和低DC浓度下的T母细胞百分比。相比于5∶1 的比率，2∶1的T细胞∶DC的比率导致较低的背景(缓冲液)T细 胞增殖反应。由于使用2∶1的比率，在缓冲液与抗原负载的T细胞 增殖反应之间存在较显著的差异。
以5∶1和2∶1的T细胞∶DC的比率来测定IFN-γ应答。数据以 该组每一个孔的应答以及三个孔的平均值和标准差来表示(图25)。 T细胞IFN-γ应答的比较在5∶1和2∶1的T细胞∶DC的比率之间显示 出显著差异。在较高DC浓度的情况下，相比于对照缓冲液，并无 Chimigen3诱导的IFN-γ应答的证据。然而，在较低DC浓度的情 况下，与对照缓冲液负载的DC一起培养的T细胞极少生成IFN-γ， 而与Chimigen3蛋白负载的DC一起培养的T细胞则有较高百分比 生成IFN-γ。相比于2.5μg/mL的NS5A ChimigenTM蛋白，在已用 由5μg/mL NS5A ChimigenTM蛋白负载的DC刺激的T细胞中，存 在较多产生IFN-γ的细胞。还测定了CD8+和CD4+细胞群中表达 IFN-γ的T细胞百分比(图26和27)。由于Chimigen3-DC的刺激， 低DC浓度组表现出高百分比的表达IFN-γ的CD8+T细胞。相比于 TT负载的DC，对于用Chimigen3蛋白负载的DC刺激的T细胞， 表达IFN-γ的CD8+T细胞的百分比较高(图26)。类似地，相比于 用对照缓冲液刺激，一旦用NS5A ChimigenTM蛋白刺激，还存在高 百分比表达IFN-γ的CD4+T细胞(图27)。相比于用TT负载的DC 刺激，对于用Chimigen3蛋白负载的DC刺激的T细胞表达IFN-K 的CD4+T细胞的百分比是可比较的(图27)。这些结果表明NS5A ChimigenTM蛋白在CD8+和CD4+T细胞群两者中诱导显著的IFN-γ 应答并暗示该分子在MHC I类和II类通路两者中均由所述DC加 工。
图28示出了用抗原负载的成熟DC刺激6小时而得到的产生 TNF-α的T细胞百分比。这些结果类似于IFN-γ的结果。尽管由于 通过高DC浓度(5∶1的比率)的T细胞抗原刺激导致产生TNF-α 的细胞百分比增加，但用低DC浓度(2∶1的比率)刺激存在更大 的差异。相比于2.5μg/mL蛋白，当用5μg/mL的Chimigen3蛋白 负载的DC刺激时，较高百分比的T细胞产生TNF-α。相比于TT， 对于NS5A ChimigenTM蛋白，TNF-α应答较高。利用TT负载的 DC的刺激导致表达TNF-α的CD4+T细胞的百分比高于CD8+T细 胞(图29)。然而，NS5A ChimigenTM蛋白负载的DC在CD8+和 CD4+T细胞群两者中诱导类似程度的TNF-α生成(图29)。
通过DC的NS5A Chimigen TM 抗原呈递在第三次刺激后6小时 导致表达grB和pfn+的CD8+T细胞和CD4+T细胞的生成
还通过离体抗原呈递分析评估了T细胞产生细胞毒性颗粒蛋 白grB和pfn的能力。将未成熟DC用对照缓冲液、TT(阳性对照) 或不同浓度的NS5A ChimigenTM蛋白负载，并且一旦成熟即与自体 T细胞一起孵育。grB表达可以以不同方式进行检测，包括酶分析 和利用特异性抗体[Ewen et al.(2003)J.Immunol.Meth.276：89-101； Spaeny-Dekking et al(1998)J.Immunol.160：3610；Hamann et al. (1997)J.Exp.Med.186：1407]。通过细胞内染色，分别利用抗grB和 抗pfn mAb来检测GrB和pfn表达。图30示出了用抗原负载的成 熟DC刺激三次后，表达grB和pfn的CD8+T细胞的百分比。相比 于无抗原对照，NS5A ChimigenTM蛋白负载的DC诱导CD8+T细胞 中grB和pfn表达增加。这些结果表明NS5A ChimigenTM蛋白诱导 grB和pfn在CD8+T细胞中表达，且这暗示该蛋白在I类通路中由 DC加工，以有效的呈递至T细胞，这引起其从幼稚CD8+T细胞分 化为细胞毒性T淋巴细胞(CTL)。
通过成熟DC的NS5A Chimigen TM 抗原呈递导致CD8+和 CD4+T细胞的产生和持续活化
在APA中，用抗原负载的DC刺激T细胞三次。第三次刺激 后培养6天，收获T细胞并通过FFC研究母细胞的百分比，其作为 增殖和活化标记物CD69表达的一个量度。此外，作为一种估计从 培养物中回收的T细胞绝对数量的方法(means)，还根据FSC和 SSC流式细胞仪分析确定落在淋巴细胞门(R1门)内的被圈定细胞的 数量。
相比于缓冲液对照，在从TT和ChimigenTM蛋白刺激的细胞中 回收T细胞方面存在显著差异(图31)。相比于Chimigen3蛋白刺 激的细胞，TT刺激的细胞获得较高的T细胞回收率。然而，所述 TT应答是一种回忆应答，因此预计与TT发生特异性反应的初始T 细胞群将高于特异于NS5A的初始幼稚T细胞群的该值。特别地， 根据对母细胞群的评估，实际上NS5A Chimigen3蛋白培养物中的 母细胞/增殖细胞的百分比高于所述TT培养物。在缓冲液对照培养 物中几乎不存在母细胞/增殖细胞。如通过CD69表达而评估的，活 化的CD8+和CD4+T细胞群的百分比示于图32中。相比于缓冲液 对照，用Chimigen3蛋白负载的DC刺激的T细胞中存在较高百分 比的表达CD69的CD4+和CD8+T细胞两者。这些结果表明用 Chimigen3蛋白刺激引起显著的T细胞活化和增殖，即在第三次刺 激后6天(T细胞培养的第20天)依然很明显。因此，该Chimigen3 蛋白在CD8+和CD4+T细胞的活化和扩增中是非常有效的。
通过成熟DC的NS5A Chimigen TM 蛋白呈递引起NS5A特异性 CD8+T细胞的产生
为了评估免疫应答对NS5A ChimigenTM蛋白的抗原特异性，对 HLA-A2情形中特异于免疫显性NS5A表位的T细胞百分比进行定 量。该百分比通过用轭合于PE的NS5A肽/HLA-A2五聚体标记T 细胞而确定。在APA中，幼稚T细胞通过用不同浓度的NS5A ChimigenTM蛋白负载的DC刺激三次，并与无抗原(缓冲液)负载 的各个对照DC进行比较。第三次刺激后6天，收获T细胞，并通 过四聚体标记和FFC检测NS5A特异性T细胞或EBV特异性T细 胞(对照)。
阴性四聚体标记(阴性对照)和EBV四聚体标记(阳性对照) 的CD8+和CD4+T细胞的百分比示于图33中。在CD8+T细胞群中， 三个检测孔之一是EBV四聚体标记(阳性四聚体)阳性。由于评 估的T细胞来自缓冲液对照处理孔，将预料到EBV四聚体标记的T 细胞的数目会相对低。APA后，标记有NS5A五聚体的CD8+T细 胞的百分比示于图34中。用NS5A ChimigenTM蛋白负载DC导致 生成具有对NS5A表位VLSDFKTWL(SEQ ID NO：3)特异性的T细胞。 在两个高DC浓度孔和三个低DC浓度孔中，具有该特异性的 CD8+T细胞的显著扩增比较明显。因此，该NS5A Chimigen3蛋白 能够诱导生成对这种NS5A免疫显性表位特异的T细胞，并且可能 存在对其他NS5A表位具有特异性的T细胞。
实施例3.NS3Chimigen3蛋白的结果
NS3Chimigen TM 蛋白已被提纯并鉴定
Sf9细胞中表达的NS3ChimigenTM蛋白通过Ni-NTA亲和层析 以及随后的阴离子交换层析而纯化。纯化的样品利用 10％SDS-PAGE凝胶进行分析，电泳后，将凝胶转移至硝基纤维素 用于蛋白质印迹。该SDS-PAGE凝胶用页蓝染色，并用特异于NS3 ChimigenTM蛋白不同组分的抗体进行蛋白质印迹。纯化的蛋白显示 为约110KDa和120KDa的双联体。两种组分(species)均通过抗 N末端(抗6xHis)、TBD(抗Fc)和NS3(多克隆抗NS3)的抗 体进行检测，结果表明该纯化的蛋白是完整的。
利用Pro-QR Emerald 300糖蛋白凝胶以及Blot Stain试剂盒， 对纯化的NS3ChimigenTM蛋白的糖基化进行定量估计。将纯化的蛋 白在8％SDS聚丙烯酰胺凝胶上电泳后，利用制造商的方案对凝胶 进行染色并在紫外光照下扫描。由于纯化的蛋白是双联体，推测分 子量差异是由于糖基化的不同水平。
NS3Chimigen TM 蛋白结合于未成熟DC
对NS3ChimigenTM蛋白结合于未成熟DC的能力加以检测。在 不同浓度NS3ChimigenTM蛋白存在或缺失的情况下，将该细胞在4 ℃下孵育1小时。通过生物素化的抗小鼠IgG1mAb和SA-PE-Cy5 检测结合的蛋白。结合该Chimigen3蛋白的细胞百分比(阳性细胞 ％)以及结合蛋白的相对量(MFI)通过FFC来确定。在NS3 ChimigenTM蛋白为4-55μg/mL的情况下，大多数DC结合均为阳性， 且结合蛋白的量存在剂量依赖性递增(图35和36)。相比于55 μg/mL，22μg/mL时蛋白的结合并未表现出更大，表明与未成熟DC 的结合是可饱和的。观察到的高结合MFI表明NS3ChimigenTM蛋 白与未成熟DC的结合非常有效且处于高水平。4℃下的结合是可饱 和的，表明该过程是受体介导的。该结合也非常迅速，因为结合的 蛋白在4℃下孵育5分钟后即可检测到，其中结合MFI约为孵育60 min后观察到的值的一半(数据未示出)。
NS3Chimigen TM 蛋白结合于未成熟DC上的特异性受体
由于存在Fc片段，推测NS3ChimigenTM蛋白通过其TBD区而 结合于未成熟DC上的CD32(FcγR II)。此外，由于其甘露糖糖基 化，推测NS3ChimigenTM蛋白结合于C型凝集素受体如CD206 (MMR)。为了确定所述蛋白的结合特异性，在阻断性抗CD32和/ 或抗CD206mAb存在的情况下，将未成熟DC与NS3ChimigenTM 蛋白一起孵育。
将未成熟DC与缓冲液对照或5μg/mL的同种型对照mAb、抗 CD32mAb、抗CD206mAb或者抗CD32mAb和抗CD206mAb两 者在4℃下一起孵育1小时，随后与NS3ChimigenTM蛋白在4℃下 一起孵育1小时。结合的NS3ChimigenTM蛋白用生物素化的抗 6xHis mAb随后是SA-PE-Cy5进行检测。相比于缓冲液对照，同种 型对照mAb(鼠IgG1和IgG2b)并未抑制结合。然而，相比于缓 冲液对照，抗CD32和抗CD206分别抑制结合约70％和60％(图 36)。加入两种阻断性mAb则进一步抑制NS3ChimigenTM蛋白结合， 产生90％抑制(图36)。因此，这些数据表明CD32和CD206两者 在NS3ChimigenTM蛋白结合于未成熟DC过程中的作用。
通过共聚焦显微镜使NS3ChimigenTM蛋白的结合可视化。将未 成熟DC与NS3ChimigenTM蛋白在4℃下一起孵育。相比于仅用缓 冲液对照，该细胞表面上的强烈标记表明ChimigenTM蛋白结合于细 胞表面，可能结合于受体。
为了研究内化作用，将未成熟DC与NS3ChimigenTM蛋白在 37℃下一起孵育1小时。所述细胞几乎未表现出任何表面标记(质 膜轮廓)，但反而表现为点状标记模式，常位于核附近，表明 ChimigenTM蛋白被内化。
通过DC的NS3Chimigen TM 蛋白呈递导致CD8+和CD4+T细 胞两者活化和增殖
对NS3ChimigenTM蛋白的功能性免疫应答通过离体抗原呈递 分析(APA)加以评估。该分析可用来在用抗原负载的DC刺激T 细胞后测定功能性T细胞免疫应答的多个参数。该分析包括首先通 过加入IL-4和GM-CSF从PBMC起源的单核细胞生成未成熟DC。 随后将该未成熟DC与疫苗候选物、载体缓冲液(阴性对照)或TT (阳性对照)一起孵育。随后用细胞因子处理DC以促进成熟、洗 涤并与自体幼稚T细胞一起孵育。为了测定细胞因子的生成、细胞 毒性颗粒组分的存在、以及NS3特异性T细胞的生成，再刺激所述 T细胞两次，以允许ChimigenTM蛋白特异性T细胞的扩增。然而， 预计单次刺激也能启动从幼稚T细胞群的扩增。活化通过测定早期 T细胞活化标记物CD69而评估，而增殖则通过追踪CFSE标记的T 细胞荧光而测定。与抗原负载的DC一起培养4天和7天后，评估 CD69表达和CFSE荧光两者。
初步分析已经表明培养液中DC和T细胞的浓度是确定T细胞 免疫应答的重要参数。因此，设计APA使得评估6种不同的T细 胞∶DC浓度。采用两组DC浓度，高浓度为5×104DC/孔，而低浓 度为1×104DC/孔。培养48小时后，将未成熟DC与缓冲液(阴性 对照)、NS3ChimigenTM蛋白(3C，5μg/mL)、TT(阳性对照)、 或PBS一起孵育。随后将该DC培养8小时，并通过加入polyIC、 IL-1、IL-6、TNF-α、IFN-a和IFN-γ而催熟。过夜(16小时)培 养后，洗涤来自PBS对照组的DC并检测多种成熟DC标记物的表 达。高浓度和低浓度DC均表达高水平HLA-ABC(MHC I类)、 HLA-DR(MHC II类)、CD86、CD80和CD83。
通过阴性选择步骤来分离自体T细胞，并利用CFSE标记用于 确定细胞分裂。向96孔板中100μl/孔的DC中，加入100μl/孔的T 细胞，每孔浓度为：20×104、5×104或2×104。对于高DC浓度孔 (5×104DC/孔)，每孔中T细胞/DC的比例组合为： 20×104∶5×104(4∶1)，5×104∶5×104(1∶1)，以及2×104∶5×104(0.4∶1)。 对于低DC浓度孔(5×104DC/孔)，每孔中T细胞/DC的比例组合 为：20×104∶1×104(20∶1)，5×104∶1×104(5∶1)，以及2×104∶1×104 (2∶1)。在无任何外源性细胞因子的情况下，将T细胞加入到DC 中。作为对照，培养第3天时，将PHA(1μg/mL)加入到T细胞 中，其中该T细胞被加载到PBS处理的DC组上。
培养4天后，收获一半细胞培养物(100μl)，用于活化和增殖 分析。将100μl的新鲜AIM V/2.5％匹配的血清加入到剩余的一半 细胞培养物中，并对细胞再培养3天。以5×104T细胞/孔∶5×104DC/ 孔的比率(1∶1)培养4天和7天后，T细胞上CD69的表达示于图 37中。无论T细胞∶DC的比率如何，大多数PHA处理的细胞均表 达CD69。与高DC浓度一起培养的T细胞中检测到了CD69；但与 低DC浓度一起培养的T细胞中几乎未检测到CD69(数据未示出)。 相比于缓冲液对照，抗原刺激的T细胞表达较高水平的CD69。第 4天时，NS3ChimigenTM蛋白负载的DC诱导的表达CD69的CD8+T 细胞百分比高于CD4+T细胞。培养4天后，经过至少一次分裂的 细胞(CFSElo)百分比示于图38中。结果表明用PHA处理24小时 的T细胞较早开始分裂。用TT负载的DC处理的CD8+和CD4+T 细胞在培养4天后出现可检测性增殖，但这仅在高DC浓度时比较 明显(数据未示出)。第4天时，在疫苗候选物处理组中几乎检测 不到T细胞增殖。因此，第4天时，幼稚T细胞通过NS3ChimigenTM 蛋白负载的DC活化(如通过CD69表达而证明的)，但这些T细胞 尚未分裂。
培养7天后，收获细胞用于活化和增殖分析。培养7天后，T 细胞上CD69的表达示于图37中。对于Chimigen3蛋白刺激的T 细胞，在与高DC浓度一起培养的T细胞中，以高于5％的水平检 测到CD69，但在与低DC浓度一起培养的T细胞中，则几乎检测 不到CD69(数据未示出)。因此，低DC浓度(1×104DC/孔)不 足以用于抗原特异性T细胞的活化。第7天时，回忆TT应答的CD69 表达有所降低。第7天时，与d4T细胞相反，NS3ChimigenTM蛋 白负载的DC诱导的表达CD69的CD4+T细胞百分比高于CD8+T 细胞。相比于回忆抗原TT，第7天时CD8+和CD4+T细胞中表达 CD69的百分比等于或大于表达Chimigen3蛋白的百分比。因此， Chimigen3蛋白首先活化幼稚CD8+T细胞，随后活化CD4+T细胞。 培养7天后，经过至少一次分裂的细胞(CFSElo)的百分比示于图 38中。用Chimigen3蛋白或TT负载的DC引起显著的CD8+和 CD4+T细胞增殖，并且这在高DC浓度时最明显(结果未示出)。
通过DC的NS3Chimigen TM 蛋白呈递导致产生IFN-γ和TNF- α的CD8+和CD4+T细胞的生成
通过三次刺激离体APA，评估针对NS3ChimigenTM蛋白的功 能性免疫应答。将4×104DC/孔(高浓度)或2×104DC/孔(低浓 度)的未成熟DC用对照载体缓冲液、PBS、TT(阳性对照)、或 NS3ChimigenTM蛋白负载。随后催熟DC并评估其表型。如果其表 达高水平的MHC I类、MHC II类、CD86、CD80和CD83，则该 DC可评价为成熟。将自体T细胞与成熟的抗原负载的DC以20× 104T细胞/孔∶4×104DC/孔或者4×104T细胞/孔∶2×104DC/孔的 比例一起孵育。刺激该T细胞三次，并在第三次刺激后6小时通过 检测Th1细胞因子IFN-γ和TNF-α的细胞内水平来评估T细胞功 能。此外，还评估了T母细胞的程度。
T细胞群中T母细胞的百分比测量可用作T细胞增殖程度的量 度。T母细胞定义为那些具有较高FSC和SSC散射的细胞，而且 淋巴细胞门中的休止淋巴细胞定义为通过流式细胞仪所评估的。培 养14天后，培养物中T母细胞的百分比示于图39中。NS3 ChimigenTM蛋白在诱导T细胞增殖(母细胞产生)方面非常有效， 其中相比于5∶1的比率，2∶1的T细胞∶DC比率导致较低的背景(缓 冲液)T细胞增殖反应。因此，在T细胞∶DC比率为2∶1时，相比 于缓冲液，NS3ChimigenTM蛋白刺激的T细胞增殖存在显著差异。
以5∶1和2∶1的T细胞∶DC比率来测定IFN-γ应答。数据以该 组每一个孔的应答以及三个孔的平均值和标准差表示(图40)。T 细胞IFN-γ应答的比较在5∶1和2∶1的T细胞∶DC比率之间显示出 显著差异。在较高DC浓度的情况下，相比于对照缓冲液，几乎不 存在疫苗候选物诱导的IFN-γ应答的证据。然而，在较低DC浓度 的情况下，与对照缓冲液负载的DC一起培养的T细胞极少生成 IFN-γ，而与疫苗候选物负载的DC一起培养的T细胞则有较高百分 比生成IFN-γ。相比于5Tg/mL的NS3ChimigenTM蛋白，在已用由 2.5μg/mL NS3ChimigenTM蛋白负载的DC刺激的T细胞中，产生 IFN-γ的细胞并未减少。对CD8+和CD4+细胞群中表达IFN-γ的T 细胞百分比进行了定量，并示于图41中。相比于TT负载的DC， 在用2.5μg/mL疫苗候选物负载的DC刺激的T细胞中，表达IFN-γ 的CD8+T细胞百分比是可比较的。同样，相比于用对照缓冲液刺 激，一旦用NS3ChimigenTM蛋白刺激，还出现高百分比表达IFN-γ 的CD4+T细胞。相比于用TT负载的DC刺激，用疫苗候选物负载 的DC刺激的T细胞中表达IFN-γ的CD4+T细胞的百分比是可比 较的。这些结果表明NS3ChimigenTM蛋白在CD8+和CD4+T细胞 群两者中诱导显著的IFN-γ应答并暗示该分子在MHC I类和II类 通路中均由DC加工。
图42示出了用抗原负载的成熟DC刺激6小时而得到的产生 TNF-α的T细胞百分比。这些结果类似于IFN-γ的结果。相比于 TT，NS3ChimigenTM蛋白的TNF-α应答大约相同或较高。利用TT 或NS3ChimigenTM蛋白负载的DC的刺激导致表达TNF-α的 CD4+T细胞的百分比高于CD8+T细胞。
通过DC的NS3Chimigen TM 蛋白呈递导致表达grB和pfn的 CD8+T细胞的生成
还通过离体APA评估T细胞产生细胞毒性颗粒蛋白grB和pfn 的能力。将未成熟DC用对照缓冲液、TT(阳性对照)或不同浓度 的NS3ChimigenTM蛋白负载，并且一旦成熟即与自体T细胞一起 孵育。通过细胞内染色，分别利用抗grB和抗pfn mAb检测GrB和 pfn表达。图43示出了用抗原负载的成熟DC刺激三次后，表达grB 和pfn的CD8+T细胞百分比。相比于缓冲液对照处理的DC，NS3 ChimigenTM蛋白负载的DC诱导CD8+T细胞中grB和pfn表达增加。 这些结果表明NS3ChimigenTM疫苗诱导grB和pfn在CD8+T细胞 中表达。该发现表明该疫苗候选物在MHC I类通路中由DC加工， 用于有效的呈递至T细胞，以引起其从幼稚CD8+T细胞分化为细 胞毒性T淋巴细胞(CTL)。
通过成熟DC的NS3Chimigen TM 蛋白呈递导致CD8+和CD4+T 细胞的产生和持续活化
在APA中，用抗原负载的DC刺激T细胞三次。第三次刺激 后培养6天，收获T细胞并通过流式细胞仪研究母细胞的百分比， 其作为增殖和活化标记物CD69表达的量度。此外，作为一种估计 从培养物中回收的T细胞绝对数量的方法，还根据FSC和SSC FFC 分析确定落在淋巴细胞门(R1门)内的被圈定细胞的数量。
如通过CD69表达而评估的，活化的CD8+和CD4+T细胞的百 分比示于图44中。相比于缓冲液对照，在用Chimigen3蛋白负载 DC刺激的T细胞中，表达CD69的CD4+和CD8+T细胞的百分比 均有所增加。相比于缓冲液对照，在从TT和ChimigenTM蛋白刺激 的细胞中回收T细胞方面存在显著差异(图45)。相比疫苗候选物 刺激的细胞，TT刺激的细胞获得较高的T细胞回收率。然而，TT 应答是一种回忆应答，因此预计与TT发生特异性反应的初始T细 胞群将高于特异于NS3的初始幼稚T细胞群的该值。特别地，根据 对培养物中存在的T母细胞的评估，含有NS3Chimigen3蛋白的培 养物中的母细胞/增殖细胞的百分比高于所述TT培养物。在缓冲液 对照的培养物中，几乎不存在母细胞/增殖细胞。因此，用Chimigen3 蛋白刺激引起显著的T细胞活化和增殖，即在第三次刺激后6天(T 细胞培养的第20天)依然很明显。因此，NS3ChimigenTM蛋白在 CD8+和CD4+T细胞两者的活化和扩增中非常有效。
通过成熟DC的NS3Chimigen TM 蛋白呈递引起NS3特异性 CD8+T细胞的产生
为了评估免疫应答对NS3ChimigenTM蛋白的特异性，对 HLA-A2情形中特异于两种免疫显性NS3表位的T细胞百分比进行 定量。该百分比通过用轭合于PE的NS3肽/HLA-A2五聚体标记T 细胞而确定。在APA中，幼稚T细胞通过用不同浓度NS3 ChimigenTM蛋白负载的DC刺激三次，并与无抗原(缓冲液)负载 的各个对照DC进行比较。第三次刺激后6天，收获T细胞，NS3 特异性T细胞或EBV特异性T细胞(对照)通过四聚体标记来检 测并利用流式细胞仪分析。CD8+T细胞群中，所述缓冲液对照组的 三个孔中有一个是EBV四聚体标记(阳性四聚体)阳性，且不存 在对阴性四聚体标记为阳性的孔(数据未示出)。由于被评估的T 细胞来自缓冲液对照处理孔，预计EBV四聚体标记的T细胞数量 将相对较低。APA后，标记有NS3五聚体的CD8+T细胞的百分比 示于图46中。用NS3ChimigenTM蛋白负载DC导致生成对NS3表 位具有特异性的T细胞。在6个低DC浓度孔中，其中4个孔内具 有该特异性的CD8+T细胞的显著扩增比较明显。因此，该NS3 ChimigenTM蛋白能够诱导生成对NS3免疫显性表位特异的T细胞， 且可能存在对其他NS3表位具有特异性的T细胞。
实施例4.NS3-NS4B-NS5A多抗原Chimigen3蛋白的结果
HCV NS3-NS4B-NS5A Chimigen TM 蛋白的表达
SDS-PAGE后，通过蛋白质印迹分析HCV多抗原ChimigenTM 蛋白在Sf9细胞内表达的时间进程。通过考虑HCV多抗原 ChimigenTM蛋白表达和降解两方面因素，确定蛋白表达的最佳条件 为注射后MOI 1.5达36个小时。
从Sf9细胞沉淀的清亮裂解物中纯化HCV NS3-NS4B-NS5A Chimigen TM 蛋白
Ni-NTA亲和层析
作为纯化的第一步，将HCV NS3-NS4B-NS5A ChimigenTM蛋白 捕获于Ni-NTA Superflow3柱上。结合于Ni-NTA Superflow3柱上的 蛋白通过SDS-PAGE并利用蛋白质印迹进行分析。该蛋白质印迹表 现出该ChimigenTM蛋白的优势条带(显性条带)，然而硝基纤维素 膜银染色则示出另外的非免疫反应性蛋白条带。
HiTRap Q-XL离子交换层析
通过Ni-NTA Superflow柱捕获的蛋白进一步通过HiTrap Q-XL 1mL柱层析加以分离。将蛋白在无逆流馏分中洗脱，且所述馏分在 0.4至0.5M NaCl之间的盐浓度下进行洗脱。与无逆流馏分中的蛋 白相比，结合于柱上的HCV NS3-NS4B-NS5A多抗原ChimigenTM 蛋白含有较少污染物。通过银染色，观察到至少6条非免疫反应性 蛋白条带。
Superdex 200层析
裂解物中的蛋白通过Superdex 200柱分馏。该HCV NS3-NS4B-NS5A多抗原ChimigenTM蛋白在第一个峰内洗脱。对该 馏分进行蛋白质印迹和银染色。该蛋白显示为银染色上的一条优势 条带；然而，还可见多个污染物条带。蛋白质印迹的结果表明纯化 过程中蛋白聚集。
Phenyl-650C Toyopearl上的疏水作用层析
将含有所述HCV NS3-NS4B-NS5A多抗原ChimigenTM蛋白的 细胞裂解物加样于Phenyl-650C Toyopearl上并在未吸收和吸收的 馏分两者中洗脱。对该馏分进行蛋白质印迹和银染色。在两种馏分 中，在蛋白质印迹和硝基纤维素膜的银染色上，HCV多抗原 ChimigenTM蛋白可视为一条优势条带。
实施例5.HCV核心Chimigen3蛋白的结果
HCV核心Chimigen TM 蛋白已被提纯并鉴定
HCV核心Chimigen3蛋白通过在变性条件下的Ni鳌合层析 (Ni-NTA superflow)以及随后的阴离子交换层析(CM琼脂糖) 进行纯化。纯化的蛋白在12％SDS-PAGE凝胶上进行分析，主要条 带为融合蛋白(约55KDa)，在28kDa观察到的次要条带很可能是 降解产物。在12％SDS-PAGE凝胶上分离后，将纯化的蛋白电转至 硝基纤维素膜上。蛋白质印迹通过抗6xHis-HRP轭合抗体、抗Fc 特异性HRP轭合的抗体以及抗HCV核心抗体并以抗Fab特异性 HRP轭合的抗体作为第二抗体而实施。结合的抗体通过化学发光检 测。所述抗体与印迹的结合表明纯化的HCV核心TBD具有完整的 N末端、核心和TBD部分。此外，所有3种抗体均检测到较低分 子量条带，表明其为来自全长HCV核心ChimigenTM分子的蛋白， 且可能是降解的结果。
HCV核心Chimigen TM 蛋白结合于未成熟DC
对HCV核心ChimigenTM疫苗结合于未成熟DC的能力加以检 测。在不同浓度HCV核心ChimigenTM蛋白存在或缺失的情况下， 将该细胞在4℃下孵育1小时，并通过FFC或通过共聚焦显微镜检 测结合。对于FFC分析，通过生物素化的抗小鼠IgG1mAb和 SA-PE-Cy5检测结合的HCV核心ChimigenTM蛋白。
结合HCV核心ChimigenTM蛋白的细胞百分比(阳性细胞％) 以及结合的蛋白的相对量(MFI)通过FFC确定。在HCV核心 ChimigenTM蛋白为5-40μg/mL的情况下，所述细胞几乎100％结合 均为阳性，且结合的HCV核心ChimigenTM蛋白的量存在剂量依赖 性递增(图47)。观察到的高结合MFI表明HCV核心ChimigenTM 蛋白与未成熟DC的结合非常有效且处于高水平。
还使用共聚焦显微镜研究了HCV核心ChimigenTM蛋白的结 合。所述结合通过FITC轭合的羊抗鼠IgG进行检测。蓝色荧光染 料DAPI用来成像核。共聚焦图像和相应的光图像表明所述蛋白在 4℃下脉冲1小时后结合于未成熟DC膜。
HCV核心Chimigen TM 蛋白结合于未成熟DC上的特异性受体
由于存在Fc片段，推测所述HCV核心ChimigenTM蛋白通过 其TBD区能结合于未成熟DC上的CD32(FcγR II)。此外，由于 其甘露糖糖基化，推测HCV核心ChimigenTM蛋白还结合于C型凝 集素受体如CD206(MMR)。为了确定HCV核心ChimigenTM蛋白 的结合特异性，在对CD32或CD206特异性的阻断mAb存在的情 况下，将未成熟DC与HCV核心ChimigenTM蛋白一起孵育。所述 结合还在竞争性配体、用于Fcγ受体的鼠IgG Fc片段以及用于C 型凝集素受体的甘露糖化BSA(mBSA)存在的情况下进行检测。
将未成熟DC与PBS(缓冲液对照)、鼠IgG Fc片段(500 μg/mL)、CD32mAb(200μg/mL)、甘露糖化BSA(500μg/mL)、 或抗CD206(200μg/mL)在4℃下一起孵育1小时，随后与HCV 核心ChimigenTM蛋白(30μg/mL)在4℃下一起孵育1小时。结合 的蛋白用生物素化的抗小鼠IgG 1mAb或生物素化的抗HCV核心 mAb随后是SA-PE-Cy5进行检测。结合的HCV核心ChimigenTM 蛋白的相对量(MFI)通过FFC而确定。来自所述结合和抑制研究 的结果表明HCV核心ChimigenTM蛋白结合于Fcγ受体如CD32和 C型凝集素受体如CD206(图48)。
通过DC的HCV核心Chimigen TM 蛋白呈递导致CD8+和 CD4+T细胞中的细胞内IFN-γ水平升高
对HCV核心ChimigenTM蛋白的功能性免疫应答通过离体抗原 呈递分析加以评估。将未成熟DC用PBS(缓冲液对照)、破伤风 类毒素(阳性对照)、或不同浓度的HCV核心ChimigenTM蛋白负 载。一旦DC成熟，将其与自体T细胞一起孵育。T细胞功能通过 检测Th1细胞因子IFN-γ的细胞内水平而评估。还通过FFC确定该 细胞的CD3和CD8表型。图49A和B分别示出了用抗原负载的成 熟DC第三次刺激后12小时表达IFN-γ的CD8+和CD4+T细胞的 百分比。破伤风类毒素被用作有效抗原呈递的阳性对照。相比于无 抗原对照，HCV核心ChimigenTM蛋白负载的DC诱导IFN-γ在 CD8+T细胞中的表达显著增加。用HCV核心ChimigenTM蛋白负载 的DC刺激后，CD4+T细胞群中也存在IFN-γ表达的增加。这些结 果表明HCV核心ChimigenTM蛋白诱导IFN-γ在CD8+和CD4+T细 胞群中的应答，并暗示在MHC I类和MHC II类通路中该分子均由 DC加工。
通过成熟DC的HCV核心Chimigen TM 蛋白呈递引起HCV核 心特异性CD8+T细胞的产生
为了评估免疫应答对HCV核心的特异性，对HLA-B7情形中 特异于免疫显性HCV核心表位的T细胞百分比进行定量。这是通 过用轭合于PE的HCV核心肽/HLA-B7四聚体标记T细胞而实现 的。此外，将T细胞用CD4和CD8特异性mAb标记。
HCV核心幼稚T细胞通过用由不同浓度HCV核心ChimigenTM 蛋白负载的DC刺激三次，并与无抗原、破伤风类毒素或TBD负载 的各个对照DC进行比较。第三次刺激后5天，收获T细胞，并通 过二维FFC检测HCV核心特异性T细胞。图50中，所述二维FFC 点图表明与用HCV核心ChimigenTM蛋白负载的DC一起孵育的T 细胞表现出在核心四聚体阳性T细胞中仅有少量增加。
美国临时申请第60/726,701号所披露的内容(包括全部附录) 均结合于此作为参考。
在上述说明书中提及的所有出版物、专利申请以及专利以引用 方式结合于此作为参考。对于本领域的技术人员来说，在不偏离本 发明的精神和范围的情况下，本发明的方法和系统的各种更改和变 化都是显而易见的。虽然结合特定的优选具体实施方式描述了本发 明，但是应该明了，本发明的保护范围不应当不恰当地局限于这些 特定的具体实施方式。实际上，所述用于实施本发明的方式的各种 更改，对于本领域的技术人员来说是显而易见的，而这些都在本发 明的权利要求的范围内。
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本文披露了用于引起针对抗原的免疫应答的组合物和方法。在 特定的具体实施方式中，该组合物和方法引起针对抗原的免疫应 答，该抗原以其它方式被宿主识别为“自体”抗原。通过将包括免 疫应答结构域和靶结合结构域的嵌合抗原呈递给宿主免疫系统来 增强免疫应答，其中所述靶结合结构域包括抗体片段。通过该靶结 合结构域，APC内化、加工并呈递引起体液和细胞免疫应答两者的 嵌合抗原。
HCV是黄病毒家族的成员，其可以感染人类，引起急性和慢 性肝炎，并且可能导致肝细胞癌[Hoofnagle(2002)Hepatology 36：S21-S29]。HCV基因组是9.6 Kb无帽正极性(positive polarity) 单链RNA分子，并通过负链中间体而实现复制[Lindenbach and Rice(2005)Nature 436：933-938]。HCV基因组编码单个开放阅读框 架，该开放阅读框架编码多聚蛋白，加工该多聚蛋白以生成核心或 衣壳蛋白(C)、两种包膜糖蛋白(E1和E2)、一种小的疏水蛋白(p7)、 以及6种非结构蛋白(NS2、NS3、NS4A、NS4B、NS5A和NS5B)。 将该多聚蛋白加工成单个蛋白是通过宿主和病毒蛋白酶来催化的 [Lohmann et al.(1996)J.Hepatol.24：11-19，Penin et al.(2004) J.Hepatol.24：11-19]。
当健康宿主(人或动物)遭遇异种蛋白(foreign antigen)(例 如来自细菌、病毒和/或寄生虫的蛋白)时，宿主通常引发免疫应答。 适应性的免疫应答可以为体液、细胞或两者[Whitton et al.(2004)Adv. Virus Res.63：181-238]。细胞应答的特征在于选择并扩增能直接消除 包含该抗原的细胞的特异性T辅助细胞和T淋巴细胞(CTL)。在 体液反应的情况下，响应于抗原刺激，抗体由B细胞生成并被分泌 入血液和/或淋巴中。抗体中和(neutralize)抗原(例如，病毒)， 通过特异性地结合于抗原表面上的表位，对其进行标记以用于吞噬 细胞破坏和/或通过补体介导机制以裂解受感染细胞[Carroll(2005) Nature Immunol.5：981-986]。辅助细胞(多数为CD4T细胞)提供 CTL(多数为CD8T细胞)和B细胞介导的抗体反应(应答)所必 需的辅助活性。
在患有慢性病毒感染的个体中，免疫系统不对新来的病原体发 生反应以产生适应性免疫应答从而清除感染，因此宿主变得对该病 原体耐受。虽然HCV用来逃避免疫监视的机制尚未完全理解，但 已经提出了几种可能性。这些可能的机制包括由NS3-4A、E2和 NS5A序列阻断IRF3介导的I型IFN诱导、阻断PKR(双链RNA 活化的蛋白激酶)以及通过NK细胞的功能来干扰HCV蛋白 [Rehermann et al.(2005)Nature Rev.Immunol.5：215-229]。最近的结 果也表明T细胞在HCV感染的控制和消除中具有关键作用[Bowen et al.(2005)Nature 436：946-952；Wieland et al.(2005)J.Virol. 79：9369-9380]。在急性HCV感染中，尽管HCV感染后7-8周可 检测到病毒特异性抗体[Pawlotsky(1999)J.Hepatol.31(suppl)：71 -79]，但抗体的作用仍不清楚，因为已证实黑猩猩体内的HCV感染 可在无抗HCV抗体的情况下消退[Cooper et al.(1999)Immunity 10：439-449]，而人体内的HCV感染则可在无血清转化的情况下消 退[Post et al.(2004)J.Infect.Dis.189：1846-1855]。此外，最近有证 据表明个体不能产生抗引起慢性感染的HCV的可检测水平CD4+ 和CD8+T细胞应答，[上文，Cooper et al.(1999)；Thirnme et al.(2001) Proc.Natl.Acad.Sci.USA 99：15661-15668；Thimme et al.(2002)J. Exp.Med.194：1395-1406；Shoukry et al.(2003)J.Exp.Med.197： 1645-1655]。尽管已表明如在I型IFN反应中与在抗病毒复制过程 中产生的双链RNA的免疫反应中的转录变化的免疫功能存在相互 作用，但在病毒感染的清除中尚未观察到该效应的直接证据[上文， Rehermann et al.(2005)]。已经观察到在消退HCV感染的患者中， 免疫系统产生强烈的多表位特异性CD4+和CD8+T细胞应答[上文， Rehermann et al.(2005)]，然而在患有慢性HCV感染的患者中，T细 胞应答较晚、短暂或局限[上文，Thimme et al.(2001)；Diepolder et al. (1995)Lancet 36：1006-1007；Lechner et al.(2000)J.Exp.Med. 191：1499-1522]。
导致慢性感染的强健的抗HCV抗原的T细胞应答的缺乏还可 能是由于缺乏将合适的病毒抗原呈递至宿主免疫系统的适当呈递。 消除病毒方面的成功可能由通过APC加工和呈递抗原的方式以及 涉及调节性T辅助细胞和细胞毒性T淋巴细胞(CTL)而产生。
抗原呈递过程中的主要参与者是捕获并加工抗原的树突细胞 (DC)。此外，DC表达淋巴细胞协同刺激分子并将其迁移至淋巴 器官，其中它们分泌细胞因子以引发免疫应答。DC还控制B和T 淋巴细胞增殖，而B和T淋巴细胞是免疫介导者[Steinman et al.(1999) Hum.Immunol.60：562-567]。CTL反应的产生在消除病毒感染的细 胞并且由此在感染的消退方面是关键的。
取决于抗原定位通过APC对接触到的抗原进行不同的加工[上 文，Steinman et al.(1999)]。外源性抗原在APC的内涵体内加工，并 将生成的肽片段呈递于与主要组织相容性复合体(MHC)II类分子 复合的细胞表面上。将该复合物呈递至CD4+T细胞可使其活化。 结果，由辅助T细胞分泌的细胞因子提供B细胞活化所需的可溶性 因子，以产生针对外源性抗原的抗体(体液反应)。
相反，细胞内抗原在蛋白酶体内加工，并且得到的肽片段作为 与MHC I类分子的复合物而呈递于APC的表面上。在该复合物结 合于T细胞受体(TCR)后，可将抗原呈递至CD8+T细胞，这引 起CTL免疫应答。CTL可以通过杀死受感染细胞以及生成诸如细 胞因子干扰素-γ(IFN-γ)的因子(其发挥作用以抑制病毒复制) 而消除病毒。
由于病毒在患有慢性病毒感染的个体中复制活跃，因此在宿主 细胞内产生病毒抗原，并且分泌的抗原存在于循环中。尽管存在这 些抗原，但仍然缺乏抗病毒的有效免疫应答。有效的免疫应答将涉 及生成CTL，其能够以高亲和力识别大量(board array)的病毒表 位。因此，含病毒抗原的适宜治疗性疫苗必须被内化并在适当的细 胞腔隙内加工，以使病毒肽可呈递于MHC I类分子的沟内。在I 类呈递的背景下，病毒表位的识别可允许CD8+T细胞的活化、生 成并分化为功能性CTL，该功能性CTL能够发起抗病毒感染的有 效反应(应答)。
因此，如果将含病毒抗原的治疗性疫苗通过蛋白酶体 (proteasomal)途径加工并通过MHC I类呈递，则其将会是有效 的[Larsson et al.(2001)Trends Immunol.22：141-148]。这可以通过在 宿主细胞内生成该抗原或通过递送至适当的细胞腔隙以使该抗原 以将引起期望细胞应答的方式而被加工并呈递来实现。在文献中已 记载了几种用于抗原的细胞内递送的途径，包括病毒载体[Lorenz et al.(2001)Hum.Gene Ther.10：1095-1103]，使用DNA转染的细胞 [Donnelly et al.(1997)Annu.Rev.Immunol.15：617-648]以及通过注 射的DNA载体表达该抗原[Lai et al.(1998)Crit.Rev.Immunol. 18：449-484]。
借助于其APC功能性，已表明来源于单核细胞的DC具有作为 能刺激原发T细胞应答的免疫调节剂的巨大潜能[Banchereau et al. (1998)Nature 392：245-252]。DC能捕获、加工并有效地呈递抗原的 这种独特性能使其成为治疗性疫苗研发非常重要的工具[Laupeze et al.(1999)Hum Immunol.60：591-597]。使抗原靶向于DC是一个决定 性步骤，并且已采用几种存在于对单克隆抗体(mAb)的Fc区域 特异性的DC上的受体用于该目的[Regnault et al.(1999)J.Exp.Med. 189：371-380]。这种途径的实例包括卵巢癌mAb-B43.13[Berlyn et al. (2001)Clin Immunol.101：276-283]、抗PSA mAb、以及抗HBV抗体 抗原复合物[Wen et al.(1999)Int.Rev.Immunol.18：251-258]。利用负 载有肿瘤相关抗原的DC的癌症免疫疗法已表明可产生肿瘤特异性 免疫应答和抗肿瘤活性[Campton et al.(2000)J.Invest.Dermatol. 115：57-61；Fong et al.(2000)Annu.Rev.Immunol.18：245-273]。体内 使用肿瘤抗原搏动的DC，在临床试验中获得了有前途的结果[Tarte et al.(1999)Leukemia 13：653-663]。这些研究清楚地表明利用DC来 产生抗癌症抗原的免疫应答的效力。治疗性疫苗必须能够引起抗病 毒抗原的宿主免疫应答，且宿主免疫系统能耐受该免疫应答。该过 程涉及将抗原递送至DC、适当的抗原呈递以及启动在慢性携带者 中可引起治疗效应的HCV特异性CD8+T细胞。
本发明的嵌合抗原疫苗是一类新型的重组“嵌合抗原”，其以 选定抗原与抗体的特异性区域的融合蛋白的形式生成。分子的双功 能设计适合于将病毒抗原靶向于APC特别是DC，以引起抗选定抗 原的体液和细胞免疫应答两者。图1中示意性地示出了其二聚化 (dimerized)形式的HCV ChimigenTM疫苗。
该疫苗具有两个结构域：含有重组HCV病毒抗原的免疫应答 结构域(IRD)以及含有单克隆抗体的Fc片段的靶结合结构域 (TBD)。该疫苗的设计为其功能赋予几种独特性能。该嵌合设计 有利于形成抗体样(抗体状)结构并引起适当的抗原呈递，该抗体 样结构能促进其通过特异性受体而吸收。该嵌合设计可通过蛋白酶 体途径加工，并且肽以与MHC I类的复合体而被呈递，引起CTL 反应。ChimigenTM疫苗还可以通过内涵体(endosomal)途径加工， 由MHC II类呈递，以产生体液反应。
TBD介导ChimigenTM疫苗与特异性APC受体例如Fcγ受体的 结合。虽然本发明不受任何特定的作用机制的限制，但似乎该分子 与APC(例如，未成熟DC)上Fcγ受体的结合可引起该抗原通过 MHCI类通路而加工。在某些具体实施方式中，异源TBD、重组 抗原、结合于该抗原氨基和羧基末端的不同长度的连接肽使得整个 分子成为“异质(foreign)”并允许宿主免疫系统发起抗包括HCV 抗原的融合蛋白的多表位免疫应答。融合蛋白Chimigen3蛋白还可 以在非哺乳动物细胞(例如，酵母或昆虫细胞)中生成，以使它们 以非哺乳动物方式糖基化，从而增强其在哺乳动物(例如，人类) 宿主体内的免疫原性。昆虫细胞内引入的甘露糖/寡甘露糖糖基化也 允许该疫苗通过APC上的甘露糖受体而吸收。
因此，ChimigenTM疫苗可以由APC通过特异性Fcγ受体I、 II和III(CD64、CD32、CD16)、甘露糖受体(CD206)、其他C型 凝集素受体并通过吞噬作用而内化[Geijtenbeek et al.(2004)Annu. Rev.Immunol.22：33-54]。通过特异性受体的吸收、通过内涵体和蛋 白酶体途径的加工、以及在两类MHC分子上的呈递，可以引起广 泛的能够预防病毒感染或清除病毒感染的细胞的免疫应答。CTL反 应的发生对于清除病毒感染的细胞是关键的[Whitton et al.(2004) Adv.Virus Res.63：181-238]。用于治疗慢性HBV感染的Hepa Vaxx B，ViRexx’s first ChimigenTM治疗性疫苗，已经在临床前研究中表现 出非常有前景的结果[George et al.(2003)A novel class of therapeutic vaccines for the treatment of chronic viral infections：evaluation in ducks chronically infected with duck hepatitis B virus(DHBV)，in Hepdart 2003，Frontiers in Drug Development for Viral Hepatitis： December 14-18，Kauai，Hawaii，USA；George et al.(2003)A novel class of therapeutic vaccines for the treatment of chronic viral infections.International Meeting of the Molecular Biology of Hepatitis B Viruses. September 7-10，Centro Congressi Giovanni XXIII， Bergamo，Italy；George et al.(2004)Immunological Evaluation of a Novel Chimeric Therapeutic Vaccine for the Treatment of Chronic Hepatitis B Infections.(2004)International Meeting of the Molecular Biology of Hepatitis B Viruses.Woods Hole，MA，USA，October 24-27， 2004；George et al.(2005)BioProcessing Journal 4：39-45；George et al. (2006)A new class of therapeutic vaccines for the treatment of chronic hepatitis B infections.In″Framing the Knowledge of Viral Hepatitis″ Schinazi，R.F.Editor，IHL Press USA]。
B.定义
本申请中所使用的术语具有下列定义中规定的含义(除非另有 指明)。
“抗体”是指由B淋巴细胞产生的免疫球蛋白分子。这些分子 的特征在于具有与抗原特异性结合的能力，每一个分子均可根据另 一个而确定。
“抗体应答”或“体液应答”指一种免疫应答，其中抗体由B 淋巴细胞产生，并响应于抗原刺激而分泌入血液和/或淋巴中。在适 当作用的免疫应答中，抗体特异性结合于细胞(例如，病原体)表 面上的抗原，使得该细胞被吞噬细胞、抗体依赖的细胞毒性(ADCC) 效应细胞、和/或补体介导机制而破坏。抗体还在全身循环，且可以 结合于游离病毒体(free virion)。这种抗体结合可以中和所述病毒 体，并防止其感染细胞以及使该病毒体在肾内通过吞噬作用或过滤 而从宿主中清除。
“抗原”指任何物质，作为与适当的细胞接触的结果，该物质 可诱导敏感性和/或免疫应答性状态，且可在体内或体外(in vitro) 以一种可论证性方式与致敏受治疗者的抗体和/或免疫细胞反应。因 此，抗原可包括，例如细胞或病毒颗粒和/或其组件(组成， component)中的一种。在病毒的情况下，该组件特异性地包括病 毒蛋白。
“抗原呈递细胞”(“APC”)是指抗原诱导事件的辅助细胞(佐 细胞)，其主要通过内化抗原、加工抗原并在主要组织相容性复合 物(MHC)I类或II类分子的背景下将抗原表位呈递给淋巴细胞而 起作用。APC与抗原的相互作用是免疫诱导中的一个必要步骤，因 为其使得淋巴细胞接触并识别抗原性分子，并使淋巴细胞变得活 化。示例性的APC包括巨噬细胞、单核细胞、朗格汉斯细胞、交 错树突状细胞、滤泡树突状细胞，以及B细胞。
“B细胞”是指一类淋巴细胞，该淋巴细胞可产生与抗原相互 作用的免疫球蛋白(抗体)。
“CH1区”、“CH2区”、“CH3区”每一个均指抗体重链恒定域 (恒定结构域)的不同区域。
“细胞应答”或“细胞宿主应答”是指一类由特异性辅助和杀 伤T细胞介导的免疫应答，所述特异性辅助和杀伤T细胞能够直接 或间接清除病毒感染的细胞或癌细胞。
如在本文中所使用的，术语“嵌合抗原”是指一种包括免疫应 答结构域(IRD)和靶结合结构域(TBD)的多肽。该免疫应答结 构域和靶结合结构域可通过共价或非共价方式直接或间接地连接。
“复合物”或“抗原-抗体复合物”是指抗体与抗原之间的反应 产物。由多价抗原形成的复合物在含水体系中倾向于不可溶。
“细胞毒性T淋巴细胞”是一种专门类型的淋巴细胞，其能够 破坏外源细胞和感染有传染性病原体(infectious agent)(其能产生 病毒性抗原)的宿主细胞。
“表位”是指复杂抗原分子上抗原决定簇的最简单形式；其为 由抗体或T细胞受体识别的抗原的特异性部分。
“片段”是指已破坏的实体(entity)的一部分。在本发明的背 景中，其还可以用来指相应的实体的一部分。因此，包括Fc片段 的融合蛋白可以指包括与天然片段相同肽序列的重组分子。
“融合蛋白”指通过由合并两个或多个编码序列得到的杂合基 因表达而形成的蛋白。
“铰链区”指抗体中连接Fab片段与Fc片段的部分；所述铰 链区包含将两条重链共价地连接在一起以形成二聚分子的二硫键。
术语“同系物”指与另一个分子表现出同源性的分子，例如在 相应位置具有相同或相似的化学残基序列。短语“同源百分比”或 “同源性百分比”指在相同或类似的同源多核苷酸或多肽的相同位 置处的核苷酸或氨基酸百分比。例如，如果在两个蛋白中80个残 基中有75个是相同的，则所述两个蛋白是93.75％同源的。同源性 百分比可以使用本领域中普通技术人员已知的各种软件程序来确 定。
“宿主”指例如可给予嵌合抗原的温血动物。
在本发明的背景中，“杂交”意思是指低聚化合物的互补链的 配对。在本发明中，优选的配对机制涉及氢键，该氢键可为低聚化 合物的互补核苷或核苷酸碱基(核苷酸碱基(nucleobase))链之间 的Watson-Crick、Hoogsteen或反Hoogsteen氢键。例如，腺嘌呤和 胸腺嘧啶是通过形成氢键而配对的互补核苷酸碱基。杂交可在不同 的情况下发生。杂交可以在不同的环境下发生。在多核苷酸的背景 中使用的术语“杂交”以及类似用语，意思是指常规杂交条件，优 选例如在50％甲酰胺/6X SSC/0.1％SDS/100μg/mL mDNA中的杂 交，其中杂交的温度高于37℃，而在0.1X SSC/0.1％SDS中的洗涤 温度高于55℃。
“免疫性”或“免疫应答”是指身体(body)对抗原的应答(反 应)。在特定的具体实施方式中，其指身体抵抗感染性疾病或保护 自身免于感染性疾病的能力。
“免疫应答结构域(IRD)”指嵌合分子的不同构象的抗原部分。 IRD包括一个或多个抗原或者一个或多个重组抗原。优选的病毒抗 原包括但不限于：HCV核心、HCV E1-E2、HCV E1、HCV E2、HCV P7、HCV NS3-丝氨酸蛋白酶、HCV NS4A、HCV NS4B、以及HCV NS5A。
如在本文中使用的，短语“免疫-可治疗的疾病”指一种可以通 过在受治疗者体内引发或调节免疫应答来预防、抑制或缓解的病症 或疾病。
“淋巴细胞”指的是存在于例如血液中的有核细胞的亚类，其 介导特异性免疫应答。
“单克隆抗体”或“mAb”指由融合的杂交细胞(即，杂交瘤 细胞)克隆或其遗传同源性(同质)种群产生的抗体。克隆杂交细 胞以建立产生特异性单克隆抗体的细胞系，所述特异性单克隆抗体 是化学上或免疫学上同源的，即仅识别一类抗原。
如在本文中使用的，“可操作性(operably)连接”意思是结合 入遗传构建体中，使得表达控制序列可有效控制感兴趣编码序列的 表达。
“肽键”指两个或多个氨基酸之间的共价化学键。其是一个氨 基酸的α氨基与另一个氨基酸的α羧基之间的取代的酰胺键。
“药物赋形剂”包括一种材料例如佐剂、载体、pH调节和缓 冲剂、张力(张度)调节剂、湿润剂、防腐剂等。
“药用”是指生理上可与人或其他动物相容的无毒组合物。
如在本文中使用的，术语“多核苷酸”是指任何长度的核苷酸 (核糖核酸或脱氧核糖核酸)的聚合形式(多聚形，polymeric form)。 该术语仅指分子的一级结构。因此，该术语包括双链和单链DNA 和RNA。其还包括已知类型的修饰，例如本领域中已知的标记物、 甲基化，“帽(cap)”，用类似物取代天然存在的核苷酸中的一个或 多个，核苷酸间修饰例如诸如那些带有不带电键(如，膦酸甲酯、 磷酸三酯、磷酰胺化物(磷酰胺酶，phosphoamidate)、氨基甲酸酯 等)和带电键(例如，硫代磷酸酯(phosphorothioate)、二硫代磷 酸酯)的修饰、那些含悬挂物(下垂物，pendant)部分的修饰例如 蛋白(包括例如核酸酶、毒素、抗体、信号肽、聚-L-赖氨酸等)、 那些具有插入剂(例如，吖啶、补骨脂素等)的修饰、那些含有螯 合剂(例如，金属、放射性金属、硼、氧化性金属等)的修饰、那 些含有烷化物(alkylator)的修饰、那些具有改性键合的(modified linkage)(例如，α-端基核酸)，以及未修饰形式的多核苷酸。
“多肽”和“蛋白”可互换使用，并意思是指任何肽连接的 (peptide-linked)氨基酸链，无论长度或翻译后的修饰如何。
如在本文中所使用的，“预防”意思是指完全防止疾病的症状、 延缓疾病症状发作、或减弱随后发展的疾病症状的严重性。
“防止”疾病意思是指该疾病的症状基本上不存在。
“蛋白酶切割位点”是指一个位点，在该位点蛋白水解酶催化 多肽链中氨基酸之间肽键的水解(断裂)。
在本发明中，短语“严格的杂交条件”或“严格的条件”是指 这样的条件，在该条件下本发明的化合物将杂交于其靶序列，但仅 杂交于最小数量的其他序列。
术语“受治疗者”指任何温血动物，优选人。
“标签”指用来分离或纯化含该标签的分子的标记物或标记物 序列。示例性的标签包括6xHis(即：6个组氨酸的序列)标签。
“T细胞”指一类淋巴细胞，其可以发起针对抗原的抗原特异 性应答并且在体液和细胞免疫应答中起作用。
“靶结合结构域(TBD)”指免疫球蛋白重链恒定区的全部或 一部分(例如，CH1(全部或部分)-CH2-CH3)。
短语“治疗有效量”指试剂(例如，嵌合抗原或编码嵌合抗原 的多核苷酸)的量足以引起有效的针对抗原的B细胞、细胞毒性T 淋巴细胞(CTL)和/或辅助T淋巴细胞(Th)应答并阻断或治愈或 至少部分地阻止或减慢疾病或病症的症状和/或并发症。通过分泌细 胞因子，一个T细胞亚群起T辅助细胞的作用，所述细胞因子有助 于活化B细胞以分泌抗体或有助于另一种T细胞亚群使成为效应子 细胞毒性T淋巴细胞(CTL)。
如在本文中使用的，术语“治疗”覆盖任何可通过嵌合抗原治 疗的动物(特别是人)体中的病症的治疗，并且包括：(i)防止该 病症在受治疗者体内发生，该受治疗者可能易感染所述病症，但尚 未诊断患有该病症；(ii)抑制该病症，例如阻止或减慢其发展；或 (iii)减缓该病症，例如使该病症或其症状消退。
如在本文中使用的，“治疗性”的药剂是指这样的试剂，该药 剂能导致疾病的症状完全消失，或降低该疾病症状的严重性。
“异源(异种型，xenotypic)”意思是指来自于除了宿主之外 的种属。例如，由小鼠基因组克隆的重组表达的抗体对人是异源的 但对小鼠并不是异源的，不管该重组表达的抗体在细菌、昆虫、人 还是小鼠细胞内产生。因此，在本发明的嵌合抗原的背景中，异源 TBD(例如，异源抗体分子或异源抗体片段)指衍生自不同于嵌合 抗原结合的种属。
C.嵌合抗原
本发明的组合物包括嵌合抗原，该嵌合抗原包括免疫应答结构 域(IRD)和靶结合结构域(TBD)组成。在本发明的优选具体实 施方式中，IRD部分能够诱导体液和/或T细胞应答，而靶结合部分 能够结合APC如树突细胞。本发明的嵌合抗原还可以包括下列中 的一个或多个：免疫球蛋白的铰链区(或其节段)、免疫球蛋白的 CH1区(或其节段)、肽连接子、蛋白酶切割位点、以及适用于提纯 步骤的标签。本发明的嵌合抗原能够结合于APC并活化APC。通 常但非必需的，该IRD是TBD的N末端。
在本发明的某些具体实施方式中，嵌合抗原的IRD包括一种或 多种(例如，2、3、4、5、6、7、8、9或10)蛋白(抗原)，所述 蛋白(抗原)选自包括诸如本文中所述的一种或多种HCV蛋白或 一种或多种重组HCV蛋白。在这样的蛋白之间可以可选地是连接 子，诸如本文中所披露的任何连接子。在本发明的嵌合抗原中，可 以使用这些抗原的免疫原片段而非全长抗原。如果嵌合抗原中存在 一种以上抗原，则可仅使用全长抗原、仅使用免疫原片段，或使用 全长抗原与全长蛋白的混合物。
本发明的嵌合抗原可以为单体(即，它们包含包括IRD和TBD 的单个单位)或者它们可以为多体(即，它们可以包含多个单位， 每个单位包括IRD和TBD)。多体可以为例如二聚体、三聚体、四 聚体、五聚体、六聚体、七聚体(septamer)、或八聚体。在这样的 多聚体中，单个单位可以相同或不同，或者某些相同而其他不同。 图1示出了二聚嵌合抗原。
在本发明的另一具体实施方式中，嵌合抗原的IRD包括融合于 一种或多种HCV蛋白或者一种或多种重组HCV蛋白的6xHis肽。
在本发明的某些具体实施方式中，嵌合抗原的TBD可以为抗 体片段。该TBD可以为与待给予相关嵌合抗原的宿主(受治疗者) 相同的种属。另一方面，在本发明的优选具体实施方式中，嵌合抗 原的TBD是与宿主异源的抗体片段。例如，如果宿主是人，则示 例性的异源抗体片段是非人动物抗体片段，如小鼠抗体片段。在本 发明的某些具体实施方式中，该异源抗体片段包括鼠Fc片段。在 本发明的最优选的具体实施方式中，TBD包括异源Fc片段(或其 节段)、铰链区(或其节段)、CH1区(或其节段)、以及适合于将靶 结合结构域连接于该IRD的肽键。
本发明还包括连接分子(linking molecule)的用途，该连接分 子将IRD连接于TBD。示例性的连接子分子(连接分子，linker molecule)包括亮氨酸拉链、和生物素/抗生物素蛋白。其他可使用 的连接子(例如在融合蛋白中)是肽序列。这样的肽连接子的长度 通常为约2至约40个氨基酸(例如，约4-10个氨基酸)。示例性的 肽连接子包括氨基酸序列SRPQGGGS(SEQ ID NO：1)。其他连接 子在本领域中是众所周知，并且通常富含甘氨酸和/或丙氨酸，以允 许其区域之间连接的灵活性。通常，在本发明的嵌合抗原中，IRD 和TBD不通过TBD(例如，抗体分子或抗体分子片段)的抗原结 合部分与IRD上适当的抗原表位之间的物理性抗原-抗体相互作用 而连接。
在一个具体实施方式中，本发明的嵌合抗原是具有两个部分的 融合蛋白，即，含抗原序列(例如病毒抗原)的IRD、以及含异源 Fc片段的TBD。异源鼠Fc片段结合于APC，特别是树突细胞上的 特异性受体。因此，嵌合抗原的结合区特异性地靶向抗原呈递细胞。 然后，APC的内部工具(internal machinery)加工该嵌合抗原，并 呈递MHC I类和II类分子上的特异性肽以接触并活化T细胞并且 产生体液和细胞免疫应答来清除感染细胞或其他适当的不期望的 细胞如癌细胞。
在另一个具体实施方式中，该嵌合抗原可以为具有两个部分的 融合蛋白，即修饰的病毒抗原或多种抗原、抗原蛋白片段或肽、或 者其特异位点具有糖基化的任何一种、以及也可以被糖基化的异源 鼠Fc片段。
在又一具体实施方式中，本发明提供了另一种修饰的嵌合抗 原，其中所述抗原(IRD)是生物素化的，而所述TBD(例如，Fc 片段)与抗生物素蛋白(如抗生物素蛋白链菌素)轭合，例如在融 合蛋白中。这样的抗生物素蛋白轭合的TBD促进了一大类 IRD-TBD轭合物的生成。当然，应该理解，IRD可与抗生物素蛋白 轭合(例如，以融合蛋白的形式)，而TBD(例如，Fc片段)可为 生物素化的。
在又一具体实施方式中，本发明提供了IRD(抗原)与TBD (例如，抗体Fc片段)之间通过化学轭合的结合。
本发明的一个具体实施方式包括HCV的重组抗原(其通过分 子生物学技术融合于抗体片段)的用途、在杆状病毒表达系统中生 成融合蛋白以及其用作(use as)抵抗慢性HCV感染的治疗性疫苗。 本发明提供了一种有效的方法，用于在体内将HCV抗原递送至 APC以便产生广泛的免疫应答，涉及CTL和Th2(抗体)应答的 Th1应答。预选的病毒抗原(例如，不能被宿主免疫系统识别的抗 原)的免疫原性可由于异源抗体片段的存在以及昆虫细胞表达系统 中特异性糖基化的存在而提高。由于存在抗体组分，抗原-抗体片段 的融合蛋白将结合于在免疫系统的多种细胞(例如APC)上存在的 特异性受体，其中所述多种细胞包括树突细胞、巨噬细胞、单核细 胞、B细胞、以及粒细胞。给予人或动物的融合蛋白将由APC，特 别是DC内化，将被水解为小肽，并与MHC I类和/或MHC II类分 子形成复合物而呈递于细胞表面，T细胞具有适当特异性的抗原特 异性T细胞受体(TCR)。以这种方式，该嵌合抗原(融合蛋白) 可以引起广泛的免疫应答并清除病毒感染。
如在本文中所使用的，术语“靶结合结构域(TBD)”指免疫 球蛋白重链恒定区的全长或部分，其是能够结合于APC上Fc受体 的抗体片段。根据本发明，TBD是一种能够结合于APC，特别是 树突细胞上的Fc受体的蛋白，并且随后可通过受体介导的吸收(摄 取)而转运到APC内。根据本发明，Fc片段的存在增加了嵌合抗 原通过APC，特别是DC上的Fc受体的吸收。通过特异性吸收， 可加工该病毒抗原并作为异质而呈递；因此，可有效地引起针对该 病毒抗原的免疫应答，其本身可被宿主耐受或引起宿主体内极其微 弱的免疫应答。
此外，根据本发明，优选地，嵌合抗原能够结合于巨噬细胞甘 露糖受体/C-型凝集素受体。巨噬细胞甘露糖受体(MMR)，也称为 CD206，在诸如DC的APC上表达。该分子是内吞受体的C型凝集 素家族的一个成员。甘露糖化的嵌合抗原可以被CD206结合并内 化。通常，认为外源性抗原主要通过MHC II类途径加工和呈递。 然而，在通过CD206靶向的情况下，有证据表明，涉及MHC I类 和MHC II类途径[Apostolopoulos et al.(2000)Eur.J.Immunol. 30：1714；Apostolopoulos et al.(2001)Curr.Mol.Med.1：469； Ramakrishna et al.(2004)J.Immunol.172：2845-2852]。因此，用特异 性靶向CD206的嵌合抗原负载的单核细胞源树突细胞将诱导potent I类依赖性CD8+CTL应答和II类依赖性增殖T辅助细胞应答 [Ramakrishna et al.(2004)J.Immunol.172(5)：2845-52]。
示例性的TBD来自小鼠抗HBVsAg mAb(杂交瘤2C12)(如 在pFastBac HTa表达载体中克隆的)，并且在昆虫细胞表达系统 (Invitrogen，Carlsbad，CA，USA)中表达。从小鼠抗HBVsAg mAb 的N末端到C末端，该TBD由部分CH1(含有氨基酸序列VDKKI； SEQ ID NO：2)和铰链-CH2-CH3组成。用于实施本发明的IgG1分 子的恒定区可以包含连接肽、部分CH1-铰链以及CH2和CH3区。 单体TBD的铰链区可以与另一个TBD分子形成双硫键。该蛋白可 以表达为N末端融合蛋白，该N末端融合蛋白具有6xHis标签、7 个氨基酸rTEV(重组性烟草蚀纹病毒)蛋白酶切割位点、以及抗 HBVsAg(杂交瘤2C12)而生成的异源(鼠)mAb靶结合结构域 (TBD)的N末端融合。该示例性的TBD是来自2C12的IgG1 mAb 恒定链的片段，其中氨基酸序列包括8个氨基酸的肽连接子、CH1 区的5个氨基酸、铰链序列、CH2和CH3区序列，以及可选地，由 来源于表达载体的核苷酸编码的另外10个氨基酸的C末端肽。本 文中限定的示例性TBD片段形成亲代分子，用于与来自HCV病毒 的抗原一起生成融合蛋白。
D.新型多核苷酸
本发明的另一方面涉及编码本文所披露的所有嵌合抗原的多 核苷酸。该多核苷酸包括编码免疫应答结构域的第一多核苷酸部分 以及编码靶结合结构域的第二多核苷酸部分。该第一和第二多核苷 酸部分可以位于相同或不同的核苷酸链上。
除了上文所描述的本发明嵌合抗原区域外，本发明的多核苷酸 通常包含前导序列，该前导序列编码促进使嵌合抗原从其生成细胞 (如，酵母或昆虫细胞)中分泌出来的前导肽。相关前导序列通常 在从细胞中分泌前而从该嵌合抗原中切割。前导序列可以是本文所 披露的那些序列中的任何一种并且可以是本领域中已知的其他序 列，例如具有的氨基酸序列为MPLYKLLNVLWLVAVSNAI(SEQ ID NO：37)的AcNPV甲壳酶信号序列，该氨基酸序列由核苷酸序列 ATGCCCTTGTACAAATTGTTAAACGTTTTGTGGTTGGTCGCCG TTTCTAACGCGATT(SEQ ID NO：38)以及α-交配因子前导序列 (leader)编码，其中该核苷酸序列可用于昆虫细胞中的表达；而 该α-交配因子前导序列可用于在酵母细胞(例如，巴斯德毕赤 (Pichia pastoris)酵母细胞)中的表达。
本发明提供了对应于或互补于编码嵌合抗原、mRNA的基因、 和/或编码序列的多核苷酸，优选以隔离型(isolated form)，包括编 码嵌合抗原变异蛋白的多核苷酸；DNA、RNA、DNA/RNA杂合体， 以及相关分子、多核苷酸或寡核苷酸(其互补于编码嵌合抗原或 mRNA序列或其部分的基因或与其具有至少90％的同源性)；以及 杂交于编码嵌合抗原、mRNA的基因、或杂交于编码嵌合抗原的多 核苷酸的多核苷酸或寡核苷酸。
此外，本发明还包括本文中所披露的可特异性编码嵌合抗原的 基因的类似物。类似物包括例如突变体，该突变体保留可引起免疫 应答的能力，且优选与任何一种编码嵌合抗原的多核苷酸具有至少 80％、更优选90％、并且最优选95％的同源性，如由在SEQ ID NO：39 和41-51中列出的序列所特别描述的。典型地，这样的类似物仅通 过1-10个密码子变化而区分。实例包括具有来自病毒抗原或抗体片 段的天然氨基酸序列的较小氨基酸变异的多肽；特别地，具有保守 性氨基酸置换的多肽。保守性置换是那些发生在其侧链中相关的氨 基酸家族内的置换。可遗传性编码的(genetically-encoded)氨基酸 通常分为四个家族：(1)酸性＝天冬氨酸、谷氨酸；(2)碱性＝赖氨 酸、精氨酸、组氨酸；(3)非极性＝丙氨酸、缬氨酸、亮氨酸、异 亮氨酸、脯氨酸、苯丙氨酸、蛋氨酸、色氨酸；以及(4)不带电 荷的极性＝甘氨酸、天冬酰胺、谷氨酰胺、胱氨酸、丝氨酸、苏氨 酸、酪氨酸。苯丙氨酸、色氨酸、以及酪氨酸有时共同地分类为芳 香族氨基酸。例如，预计用异亮氨酸或缬氨酸置换亮氨酸、用谷氨 酸置换天冬氨酸、用丝氨酸置换苏氨酸的隔离置换(isolated replacement)，或用结构上相关的氨基酸置换氨基酸的相似保守性置 换将不会对生物活性产生大的影响，是合情合理的。与本文中所披 露的任一多肽具有基本上相同的氨基酸序列，但具有基本上并不影 响该嵌合抗原引起免疫应答能力的较小氨基酸置换(取代)的多肽 分子也在嵌合抗原的定义范围内。衍生物包括具有其他嵌合抗原分 子的聚集轭合物以及具有非相关化学基团(moieties)的共价轭合物。 通过本领域中已知的方式，将官能团连接于嵌合抗原氨基酸链中或 在N或C末端残基中存在的基团来制备共价衍生物。
表1中给出了氨基酸的缩写。
表1：氨基酸缩写
丙氨酸 Ala A 精氨酸 Arg R 天冬酰胺 Asn N 天冬氨酸 Asp D 半胱氨酸 Cys C 谷氨酸 Glu E 谷氨酰胺 Gln Q 甘氨酸 Gly G 组氨酸 His H 异亮氨酸 Ile I 亮氨酸 Leu L 赖氨酸 Lys K 蛋氨酸 Met M 苯丙氨酸 Phe F 脯氨酸 Pro P 丝氨酸 Ser S 苏氨酸 Thr T 色氨酸 Trp W 酪氨酸 Tyr Y 缬氨酸 Val V
可在蛋白内进行保守性氨基酸置换而不改变该蛋白的构象或 功能。本发明的蛋白，或可用于本发明的蛋白，可以包括不超过15 个(例如，不超过14、13、12、11、10、9、8、7、6、5、4、3、2、 或1)保守置换。这样的变化包括用异亮氨酸(I)、缬氨酸(V)和 亮氨酸(L)中任何一种置换(代替)这些疏水性氨基酸中其他任 何一种；用天冬氨酸(D)置换谷氨酸(E)，并且反之亦然；用谷 氨酰胺(Q)置换天冬酰胺(N)，并且反之亦然；以及用丝氨酸(S) 置换苏氨酸(T)，并且反之亦然。根据特定氨基酸的环境及其在蛋 白三维结构中的作用，其他置换也可以认为是保守的。例如，甘氨 酸(G)和丙氨酸(A)经常可互换，正如可以是丙氨酸(A)和缬 氨酸(V)。相对疏水的蛋氨酸(M)通常可以与亮氨酸和异亮氨酸 互换，并且有时与缬氨酸互换。在某些位置赖氨酸(K)和精氨酸 (R)经常可互换，其中在所述位置中氨基酸残基的显著特征是其 带电并且这两个氨基酸残基的pK′s差别不显著，在特殊环境中，还 有一些变化可认为是“保守的”[参见例如，Biochemistry 4 th Ed.， Lubert Stryer ed.(W.H.Freeman and Co.)，pages 18-23；Henikoff et al. (1992)Proc Natl Acad Sci USA 89：10915-10919；Lei et al.(1995)J. Biol.Chem.270：11882-11885]。
其他类似多核苷酸包括那些在任一TBD和/或任一IRD中具有 一个或多个(例如，2、3、4、5、6、7、8、9、10、12、15、或20) 插入(添加)或缺失的多核苷酸，其中TBD和/或IRD用来增加相 关嵌合抗原的可溶性。所述插入或缺失可以为该嵌合抗原中由多核 苷酸编码的一个或多个(例如，2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、 12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、30、 40、50、60、70、80、90、100、或更多)氨基酸(以及多核苷酸 本身内相应数量的核苷酸)。
本发明还包括与编码嵌合抗原的多核苷酸选择性杂交的多核 苷酸。优选地，本发明的多核苷酸将在严格的条件下与SEQ ID NO：39和41-51中所列出的序列中的一个或多个杂交。杂交反应的 严格性可由本领域中的普通技术人员很容易地确定，并且通常是根 据探针长度、洗涤温度以及盐浓度的经验计算。通常，较长的探针 需要较高的适当退火温度，而较短的探针则需要较低的温度。当互 补链存在于低于其解链温度的环境中时，杂交通常取决于变性核酸 序列对重新退火的能力。探针与可杂交序列之间的期望同源性程度 越高，则所使用的相对温度越高。因此，其遵循如下规则，即，较 高的相对温度将倾向于使杂交条件更严格，而较低温度则使得杂交 条件不那么严格。关于杂交反应严格性的另外的细节和解释，参见 例如Ausubel et al.，Current Protocols in Molecular Biology，Wiley Interscience Publishers，(1995，作为April 2004补充的，增刊66) 在2.9.1-2.10.8和4.9.1-4.9.13页。
如本文中所定义的，“严格性条件”或“高严格性条件”可以 通过但不限于以下来鉴别：(1)在50℃利用低离子强度和高洗涤温 度，例如0.015M氯化钠/0.0015M柠檬酸钠/0.1％十二烷基硫酸钠； (2)在杂交过程中，在42℃下，采用变性剂如甲酰胺，例如50％ (v/v)甲酰胺(含0.1％牛血清白蛋白)/0.1％菲柯尔(Ficoll)/0.1％ 聚乙烯吡咯烷酮/50mM、pH 6.5的磷酸钠缓冲液(含750mM氯化 钠、75mM柠檬酸钠)；或者(3)在42℃下，采用50％甲酰胺、 5X SSC(0.75M氯化钠、0.075M柠檬酸钠)、50mM磷酸钠(pH 6.8)、0.1％焦磷酸钠、5X Denhardt溶液、超声鱼精DNA(50μg/mL)、 0.1％SDS、以及10％硫酸葡聚糖，其中洗涤为在42℃的0.2X SSC (氯化钠/柠檬酸钠)和55℃的50％甲酰胺，接着在55℃下高严格 性洗液由含EDTA的0.1X SSC组成。“中度严格性条件”是那些 由在(但不限于)Sambrook et al.，Molecular Cloning：A Laboratory Manual，2 nd Ed.，New York：Cold Spring Harbor Press，1989中描述的 条件，并且包括使用那些不如上述条件严格的洗涤液和杂交条件 (例如，温度、离子强度和％SDS)。中度严格条件的一个实例是 在37℃下、在包含20％甲酰胺、5X SSC(150mM氯化钠、15mM 柠檬三钠)、50mM磷酸钠(pH 7.6)、5X Denhardt溶液、10％硫 酸葡聚糖以及20mg/mL变性(denatured sheared)鱼精DNA的溶 液中孵育过夜，随后在约37-50℃下、在1X SSC中洗涤滤膜(过滤 器，filters)。本领域的技术人员将认识到如何调节温度、离子强度 等，如对适应诸如探针长度等因素所必需的。
本发明的多核苷酸的具体实施方式包括：编码嵌合抗原的多核 苷酸，其中所述嵌合抗原具有选自如在SEQ ID No：40和52-62中所 列出的任一序列中的序列，嵌合抗原的核苷酸序列选自如在SEQ ID No：39和41-51中所列出的序列中的任何一个，但用U核苷酸置换 (取代)T核苷酸。例如，嵌合抗原核苷酸的具体实施方式包括但 不限于：
(a)多核苷酸，该多核苷酸包含选自如在SEQ ID No：39和 41-51中所列出的任一序列中的序列，其中T还可以为U；
(b)多核苷酸，其序列至少80％与选自如在SEQ ID No：39和 41-51中所列出的任一序列中的序列同源；
(c)多核苷酸，其编码嵌合抗原，该嵌合抗原的序列由包含 在本文所披露的任一质粒中的DNA编码；
(d)多核苷酸，其编码嵌合抗原，该嵌合抗原的序列是选自 如在SEQ ID No：40和52-62中所列出的任一序列中的序列；
(e)多核苷酸，其编码嵌合抗原相关的蛋白，该蛋白至少90％ 等同于其序列为选自如在SEQ ID No：40和52-62中所列出的序列中 的任何一个的全长氨基酸序列；
(f)多核苷酸，其完全互补于(a)-(e)中任一个的多核苷 酸；
(g)多核苷酸，其在严格的条件下选择性杂交于(a)-(f) 中的多核苷酸；以及
(h)多核苷酸，其包含选自如在SEQ ID No：39和41-51中所 列出的任一序列的序列，但缺乏除IRD(例如，本文中所列出的 HCV蛋白)和TBD之外的全部或部分序列，并且可选地包含例如 一个或多个可替替换的连接子和/或可替替换的分泌(前导)肽。此 外，可将额外序列(例如，编码TBD的C末端的氨基酸的载体衍 生序列)从本发明的多核苷酸中缺失掉。这样的额外序列可以为那 些编码1-15(例如2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、或 14)个氨基酸的序列。
本发明还提供了包含嵌合抗原多核苷酸、其类似物或同源物的 重组DNA或转录的RNA分子，包括但不限于噬菌体、质粒、噬菌 粒、粘粒、YAC(酵母人工染色体)、BAC(细菌人工染色体)、 以及各种本领域中众所周知的病毒和非病毒载体，以及用这样的重 组DNA或RNA分子转化或转染的细胞。用于生成这样的分子的方 法是众所周知的[参见，例如上文Sambrook et al.，1989]。
本发明进一步提供了一种在适合的原核或真核宿主细胞内包 括重组DNA分子的宿主-载体系统，该重组DNA分子包含嵌合抗 原多核苷酸、其类似物或同源物。适合的真核宿主细胞的实例包括 酵母细胞、植物细胞、或动物细胞如哺乳动物细胞或昆虫细胞(例 如，杆状病毒可感染的细胞如Sf9、Sf21、expressSF+ 、果蝇S2或 High FiveTM细胞)。适合的哺乳动物细胞的实例包括各种前列腺癌 细胞系如DU145和TsuPr1、其他可转染或可转导的前列腺癌细胞 系、原代细胞(PrEC)以及多种常规用于表达重组蛋白的哺乳动物 细胞(例如，COS、CHO、293、293T细胞)。更具体地说，利用 本领域中常规采用且广为人知的任何数量的宿主-载体系统，包含嵌 合抗原或其片段、类似物或同系物的编码序列的多核苷酸可以用来 生成其嵌合抗原。
各种各样的适合于表达其嵌合抗原的宿主-载体系统是可获得 的，参见例如上文Sambrook et al.，1989；上文Ausubel，Current Protocols in Molecular Biology，1995。优选的用于昆虫细胞表达的载 体包括但不限于转移载体质粒pFastBac HTa(Invitrogen)。利用这 样的转移载体质粒，可在昆虫细胞内生成重组杆状病毒，并可以使 用其来感染几种包括例如Sf9、Sf21、express SF+ 、果蝇S2以及 High FiveTM的昆虫细胞系，以表达嵌合抗原。一个实例是Bac-to-Bac 杆状病毒表达系统(Invitrogen)。可替换地，优选的酵母表达系统 包括酿酒酵母、粟酒裂殖酵母(schizosaccharomyces pombe)、巴斯 德毕赤酵母(pichia pastoris)、以及八月毕赤酵母(pichia august)。 本发明的宿主-载体系统可以用于生产嵌合抗原。
嵌合抗原或者其类似物或同系物还可以通过用含有适当的启 动子(例如，昆虫细胞启动子)并编码嵌合抗原的质粒构建体稳定 转染细胞(例如，昆虫细胞)而生成。例如，编码嵌合抗原或者其 类似物或同系物的重组质粒pMIB-V5(Invitrogen)可用于稳定转染 Sf9昆虫细胞。在Sf9细胞中表达嵌合抗原或相关蛋白，并利用标 准的纯化方法分离该嵌合抗原。还可以采用各种本领域中众所周知 的其他表达系统。编码在框架内连接于所述嵌合抗原编码序列的前 导肽的表达构建体可以用于生成分泌形式的嵌合抗原。
如本文中讨论的，遗传密码的冗余度允许嵌合抗原基因序列中 的变异。特别地，本领域已知，特异性宿主种属经常具有特异性密 码子偏好，因此技术人员可将所披露的序列改造为优选用于期望宿 主。例如，优选的类似物密码子序列通常具有用较高频率的密码子 取代的稀有密码子(即，其在期望宿主的已知序列中的使用频率低 于约20％)。特异种属的密码子偏好例如通过利用互联网例如环球 网URL www.kazusa.or.jp/codon上可获得的密码子使用表来计算。
已知另外的序列修饰可增强细胞宿主内的蛋白表达。这些修饰 包括去除编码假性多腺苷酸化信号、外显子/内含子剪接位点信号、 转座子样重复序列，和/或其他这样的已确定对基因表达有害的序 列。将序列的GC含量调整为给定细胞宿主的平均水平，如通过参 照在宿主细胞中表达的已知基因所计算的。在可能的情况下，修饰 序列以避免预测的发夹二级mRNA结构。其他有用的修饰包括在开 放阅读框架起始位置插入翻译起始共有序列，如在Kozak[(1989) Mol.Cell Biol.9：5073-5080]中所描述的。本领域技术人员应当理解， 真核生物核糖体仅在5’附近AUG密码子启动翻译的一般规则仅 在极少数条件下会失效[参见，例如Kozak(1995)Proc.Natl.Acad. Sci USA 92：2662-2666；Kozak(1987)Nucl. Acids Res. 15：8125-8148]。
大肠杆菌(大肠埃希杆菌，Escherichia coli)克隆(每一种均 用下面列出的质粒中的一种转化)于2006年10月11日在布达佩 斯条约下保藏于加拿大国际保藏机构(IDAC)，1015 Arlington Street Winnipeg，Manitoba，R3E 3R2 Canada(电话号码：(204)789-6030； 传真号：(204)789-2018)。通过指定的IDAC登录号很容易地鉴别 每一克隆。
质粒 IDAC登录号
pFastBacHTa-gp64 HCV NS3mutS-TBD 111006-01
pFastBacHTa-gp64 HCV NS3mut-TBD 111006-02
pFastBacHTa-gp64 NS3-NS5A-TBD 111006-03
pFastBacHTa-gp64 HCV NS5A-TBD 111006-04
pFastBacHTa HCV NS3mut-TBD 111006-05
pFastBacHTa HCV NS3-NS4B-NS5A-TBD 111006-06
从提交本申请之前，通过IDAC保藏的样品取自与由ViRexx Medical Corporation保存的相同的保藏物。所述保藏物将在IDAC 保藏处无限制的保存30年或最后一次索取(要求)后5年或该专 利的有效年限，哪个更长则将选用哪个，并且如果在该期限内所述 保藏物变得无法存活，则其将被取代。
E.本发明的药物组合物
本发明的一个方面涉及包含药用赋形剂和嵌合抗原的药物组 合物，该嵌合抗原包括免疫应答结构域和靶结合结构域，其中所述 靶结合结构域包括抗体片段。在治疗性应用中，可将药物组合物以 一定量给予患者，其中所述量足以引起有效的针对抗原的B细胞、 细胞毒性T淋巴细胞(CTL)和/或辅助T淋巴细胞(Th)应答并 预防感染或者治愈或至少部分地阻止或减缓感染的症状和/或并发 症。对该用途有效的用量将根据例如所给予的特定组合物、给药方 式、待治疗疾病的分期(阶段)和严重性、受治疗者的体重和总体 健康状态、以及开药医生的判断。
对于初始治疗性免疫(用嵌合抗原)的剂量通常存在于单位剂 量范围中，其中较低值为约1、5、50、500或1,000ng，而较高值 为约10,000、20,000、30,000或50,000μg。对于人类的剂量值通常 在约500ng至约50,000μg/70kg受治疗者体重。可根据受治疗者的 反应和病症(情况)给予按照几天至几个月的加强方案的约1.0ng 至约50,000μg之间的嵌合抗原的加强剂量。给药应持续直到至少 临床症状或实验室检测表明该病症已被防止、阻止、减缓或消除并 持续一段时间。根据本领域中已知的方法学来调整剂量、给药途径， 以及给药方案。
人嵌合抗原的单位剂型通常包括在药物组合物中，该药物组合 物包括可接受的载体(在一个具体实施方式中为含水载体)的人类 单位剂量并且以本领域普通技术人员已知的体积/用量给予以便用 于将这类多肽给予人类(参见例如，Remington：The Science and Practice of Pharmacy.20th Edition，A.Gennaro，Editor，Lippincott Williams & Wilkins，Baltimore，Md.，2000)。如本领域普通技术人员 所理解的，多种因素可影响特定病例的理想剂量。这样的因素包括 例如嵌合抗原的半衰期、嵌合抗原的亲合力、组合物的免疫原性、 期望的稳态浓度水平、给药途径、治疗频率、和与本发明的治疗方 法联合使用的其他药剂的影响、以及特定受治疗者的健康状态。
通常，给予受治疗者可引起针对嵌合抗原的免疫应答的足够的 嵌合抗原。TBD使该嵌合抗原靶向于APC如DC上的特异性受体。 该嵌合抗原经抗原呈递途径被内化、加工以引起体液以及细胞免疫 应答两者。
在某些具体实施方式中，将本发明的组合物应用于严重疾病状 态，即威胁生命或潜在威胁生命的情形。在这样的情况中，由于本 发明优选的组合物的嵌合抗原的相对无毒性质，给予比这些所述的 剂量超过很多的嵌合抗原是可能的并且被治疗医师认为是理想的。
本发明的嵌合抗原在药物制剂中的浓度可很大的变化，即重量 从低于约0.1％，通常为或至少约2％至高达20％至50％或更高，并 且将按照所选择的特定给药模式主要通过液体体积、粘度等进行选 择。
该药物组合物可以通过本领域中已知的任何途径来递送，例如 胃肠外、鞘内、血管内、静脉内、肌内、经皮、皮内、皮下、鼻内、 局部、口服、直肠、阴道、肺或腹膜内。优选地，该组合物通过胃 肠外途径递送，例如皮下或皮内给药。
该药物组合物可以通过将期望的嵌合抗原与适当的适合于预 期给药途径的载体混合来制备。在制备本发明的药物组合物时，通 常将该嵌合抗原与赋形剂混合、用赋形剂稀释或包装在载体内，该 载体可以是胶囊、囊剂、纸或其他外壳(容器，container)形式。 当药用赋形剂用作稀释剂时，其可以为固态、半固态或液态材料， 该材料用作用于治疗剂的赋形物、载体或介质。因此，该组合物可 以是片剂、丸剂、粉剂(散剂)、锭剂、囊剂、扁胶囊(扁囊剂)、 酏剂、悬浮液、乳剂、溶液、糖浆、气溶胶(固态或在液体介质中)、 软膏(例如，含按重量计达10％的嵌合抗原)、软和硬明胶胶囊、 栓剂、无菌可注射溶液、以及无菌包装粉末。
适合的赋形剂的某些实例包括但不限于葡萄糖、蔗糖、丙三醇、 山梨醇、甘露醇、淀粉、阿拉伯胶、磷酸钙、藻(朊)酸盐、西黄蓍 胶、明胶、硅酸钙、微晶纤维素、聚乙烯吡咯烷酮、纤维素、无菌 水、糖浆、以及甲基纤维素。所述制剂还可以包括：润滑剂如滑石、 硬脂酸镁和矿物油；湿润剂；乳化和悬浮剂；防腐剂如羟基苯甲酸 甲酯和羟基苯甲酸丙酯；甜味剂；以及调味剂(增香剂)。可以通 过采用本领域已知的程序来配制本发明的组合物以使在给予受治 疗者后提供嵌合抗原的快速、持续或缓释。参见，例如上文 Remington第903-92页和1015-1050页。
为了制备固态组合物如片剂，可将嵌合抗原与药用赋形剂混 合，以形成包含本发明嵌合抗原的同源混合物的固态预制剂组合 物。当将这些预制组合物称为同源的时，是指使该嵌合抗原在整个 组合物中均匀分散，以使该组合物可以容易地再分为同等有效的单 位剂型如片剂、丸剂和胶囊。
可对本发明的片剂或丸剂进行包衣(涂敷)或以其他方式混合 以提供一种能提供延长作用的优势的剂型。例如，该片剂或丸剂可 以包括内部剂量和外部剂量组分，后者为前者上的包膜形式。该两 个组分可以由肠层分开，该肠层用来抵抗胃内分解并允许内部组分 完整通过十二指肠或延缓释放。各种物质可以用于这样的肠层或涂 层，这样的物质包括大量聚合物酸(高分子酸，polymerci acid)以 及聚合物酸与这样的物质诸如虫胶、鲸蜡醇和醋酸纤维素的混合 物。
其中可结合本发明的新型组合物并用于口服或通过注射的液 态形式包括含水溶液、适合地调味的糖浆、含水或油悬浮液以及调 味乳浊液(具有食用油如玉米油、棉籽油、芝麻油、椰子油、或花 生油)、以及酏剂及类似药用载体。
在制备用于胃肠外给药的组合物时，必须严格注意进行紧张性 调整以降低刺激。可重组性组合物(reconstitutable composition)是 以干燥形式包装的无菌固体。优选可重组性组合物，因为当其以干 燥固体而非即时给予的溶液储存时会更稳定。干燥固体通常包装于 具有丁基橡胶塞的无菌容器中，以确保该固体以最佳湿度范围保 存。可重组性干燥固体通过干式充填法、喷雾干燥法、或冻干法形 成。这些方法的描述可在例如上文Remington，第681-685页和 802-803页中找到。
用于胃肠外注射的组合物通常是稀释的，且其中以较高比例存 在的组分是载体。该载体通常不具有治疗活性且是无毒的，但能以 适于吸收的形式将嵌合抗原呈递给身体组织。当嵌合抗原以含水溶 液呈递时，吸收通常将最迅速且完全地发生。然而，用水溶性液体 对载体进行修饰或者用水不溶性液体对载体进行置换(取代)可以 影响吸收速率。优选地，用于该组合物的最有价值的载体是等张盐 水。在制备适合于注射的组合物时，可以使用含水载体、水溶性载 体、以及非水性载体。
在本发明的可注射性组合物中还可以包括其他物质以改善或 保障组合物的质量。因此，加入的物质可以影响溶解性，适于受治 疗者舒适度、增强化学稳定性或保护该制备物免于微生物生长。因 此，该组合物可以包括适当的增溶剂、作为抗氧化剂的物质、以及 用作防腐剂以防止微生物生长的物质。这些物质将以适合于其功能 但并不不利地影响该组合物的作用的量存在。适当的抗微生物药剂 的实例包括硫柳汞、氯化苄乙氧铵、氯化苯甲烃铵、酚、对羟基苯 甲酸甲酯、对羟基苯甲酸丙酯。适当的抗氧化剂可以在上文 Remington，第1015-1017页中找到。
在某些具体实施方式中，脂质体、毫微型胶囊、微粒、脂质颗 粒、小囊泡等用于本发明的嵌合抗原的给药。特别地，本发明的组 合物可被配制成用于包封在脂质颗粒、脂质体、小囊泡、毫微球或 毫微型颗粒等的递送。可替换地，本发明的组合物可共价或非共价 结合于这样的载体赋形剂的表面。
通过脂质体给予的组合物还可以用来：1)使嵌合抗原靶向于 特定组织如淋巴组织；2)选择性靶向于APC；3)携带另外的刺激 性或调节性分子；或4)增加嵌合抗原组合物的半衰期。脂质体包 括乳液、泡沫、微团、不溶性单层、液晶、磷脂分散体、薄片状层 (lamellar layer)等。在这些制备物中，将待递送的嵌合抗原单独 合并为脂质体的一部分，或者与结合于淋巴细胞中常见受体的分子 如结合于CD45抗原的单克隆抗体或与其他治疗性或免疫原性组合 物一起合并。因此，用本发明期望的嵌合抗原填充或装饰的的脂质 体可以直接定向于淋巴细胞的位置，随后脂质体在该位置递送所述 嵌合抗原。根据本发明使用的脂质体由标准的成泡脂质形成，所述 脂质通常包括中性和带负电荷的磷脂和固醇如胆固醇。通常，通过 考虑例如脂质体大小、用于期望给药途径的脂质体如在血流中的酸 不稳定性和稳定性而指导脂质的选择。多种方法可用于制备脂质体 [如在例如Szoka et al.(1980)Ann.Rev.Biophys.Bioeng.9：467-508； 以及美国专利第4,235,871号、第4,501,728号、第4,837,028号和 第5,019,369号中所描述的]。包含嵌合抗原的脂质体悬浮液可经静 脉、附近或局部等途径以一定剂量给予，所述剂量根据特别是给药 方式、待递送的嵌合抗原、以及待治疗疾病的阶段而变化。
用于吸入法或吹入法的组合物包括药用、含水或有机溶剂中的 溶液和悬浮液，或其混合物以及粉末。该液态或固态组合物可以包 含如本文所描述的适合的药用赋形剂。该组合物可以通过口服或鼻 呼吸途径给予，以用于局部或全身效应。药用溶剂中的组合物可以 通过使用惰性气体来雾化。喷化溶液可以直接从喷化装置吸入或者 该雾化装置可以连接到面罩支管上或间歇正压呼吸机上。溶液、悬 浮液或粉末组合物可以优选口服或经鼻从以适合方式递送制剂的 装置来给予。
本发明的方法中所采用的另一种制剂采用经皮递送装置(“贴 片”)。这样的经皮贴片可以用来以可控量提供连续或间断输注本 发明的嵌合抗原。用于递送药物试剂的经皮贴片的构建和用途在本 领域是众所周知的。参见，例如美国专利第5,023,252号，将其结 合于此作为参考。这样的贴片可构建用于连续、脉冲或按要求递送 药物试剂。
此外，除了嵌合抗原和药用赋形剂外，包括至少一种抗病毒性 治疗剂或化疗剂可能是有利的。这些药剂包括但不限于干扰素-α 2a/b以及抗病毒剂如利巴韦林。
在某些具体实施方式中，可能期望在本发明的药物组合物中包 括至少一种初始化B淋巴细胞或T淋巴细胞的组分。脂质已鉴定为 能在体内初始化CTL的药剂。例如，可将棕榈酸残基连接于赖氨酸 残基的ε-和α-氨基，然后例如通过一种或多种连接残基如Gly、 Gly-Gly-、Ser、Ser-Ser等连接于免疫原肽。随后可以将该脂质肽 以微团或颗粒直接给予、合并入脂质体或在佐剂如不完全福氏 (Freund)佐剂中乳化。在优选的具体实施方式中，一种特别有效 的免疫原性组合物包括连接于赖氨酸的ε-和α-氨基的棕榈酸，其 通过键例如Ser-Ser连接于所述免疫原肽的氨基末端。
作为初始化CTL应答的脂质的另一个实例，当共价连接于适 合的肽时，E.coli脂蛋白如三棕榈酰-S-甘油基半胱氨酰丝氨酰-丝氨 酸(P3CSS)可以用来初始化病毒特异性CTL[参见，例如Deres et al. (1989)Nature 342：561]。例如，本发明的嵌合抗原可偶联于P3CSS， 并将所述脂质肽给予个体以特异性初始化针对靶抗原的免疫应答。
虽然本发明的组合物并不必须使用佐剂，但可以使用佐剂。根 据宿主种属，可使用不同佐剂来增强免疫应答，并且包括但不限于 福氏佐剂(完全和不完全)、矿物凝胶如氢氧化铝、表面活性物质如 溶血卵磷脂、去垢剂、复合多元醇、聚阴离子、肽、油乳胶、匙孔 血蓝蛋白、二硝基酚、免疫刺激性多核苷酸序列，以及可能有用的 人类佐剂如BCG(卡介苗)和短小棒状杆菌。另外的佐剂在本领域 中也是众所周知的。
F.利用嵌合抗原的方法
本发明的另一方面提供了增强通过APC的抗原呈递，所述方 法包括将包含免疫应答结构域和靶结合结构域的嵌合抗原给予该 APC，其中，所述靶结合结构域包括抗体片段(例如，异源抗体片 段)。在优选的具体实施方式中，该APC是树突细胞。
本发明的一个方面涉及活化APC的方法，包括使该APC与包 含免疫应答结构域和靶结合结构域的嵌合抗原接触，其中，所述靶 结合结构域包括抗体片段(例如，异源抗体片段)。在优选的具体 实施方式中，所述APC在体内与该嵌合抗原接触。在另一个优选 的具体实施方式中，所述接触在人体内进行。
本发明的又一方面提供了引起免疫应答的方法，所述方法包括 将包含免疫应答结构域和靶结合结构域的嵌合抗原给予动物，其 中，所述靶结合结构域包括抗体片段(例如，异源抗体片段)。该 免疫应答可以为体液和/或细胞免疫应答。在优选的具体实施方式 中，所述细胞免疫应答是Th1、Th2、和/或CTL应答。
本发明的另一方面提供了治疗免疫-可治疗性病症的方法，包括 将包含免疫应答结构域和靶结合结构域的嵌合抗原给予需要该抗 原的动物，其中，所述靶结合结构域包括异源抗体片段。优选地， 该免疫-可治疗的病症是慢性丙型肝炎病毒感染。对于HCV的治疗， 优选地所述免疫应答结构域包括一种蛋白，所述蛋白选自由HCV 核心(1-191)蛋白、HCV核心(1-177)蛋白、HCV E1蛋白、HCV E2蛋白、HCV E1-E2蛋白、HCV NS2蛋白、HCV NS3蛋白、HCV NS4A蛋白、HCV NS4B蛋白、HCV NS5A蛋白、HCV NS5B蛋白、 HCV p7蛋白、以及其组合组成的组。
本发明的另一方面提供了接种动物抵抗病毒感染的方法，包括 将包含免疫应答结构域和靶结合结构域的嵌合抗原给予动物，其 中，所述靶结合结构域包括抗体片段。本发明的方法可预防性地或 治疗性地接种该动物以抵抗病毒感染。
本发明还包括使用本发明的组合物来结合并活化APC如DC 的方法。本发明还包括使用本发明的组合物来活化T细胞的方法。 本发明还包括将抗原递送至免疫系统细胞如APC的方法。本发明 还包括用于活化动物或人体内的体液和/或细胞免疫应答的组合物 或方法，所述方法包括给予本发明的一种或多种嵌合抗原。
克隆并表达后，对嵌合抗原在产生免疫应答中的效力进行评 价。评价涉及将嵌合抗原离体或在体内呈递给DC。该DC评价结 合并内化该嵌合抗原。将用嵌合抗原负载的幼稚DC呈递给T淋巴 细胞并评价干扰素-γ(作为T细胞应答的标记物)的产生。具体地， 在离体情形下，单核细胞从外周血中分离并分化为DC。DC将抗原 结合、内化、加工并呈递至幼稚自体T淋巴细胞。识别由DC呈递 的加工过的抗原的T细胞被活化为效应细胞例如辅助T细胞或细胞 毒性T淋巴细胞。随后，通过树突细胞的T细胞活化通过已知步骤 测定标记物如干扰素-γ水平来评价[例如Berlyn，et al.(2001)Clin. Immunol.101(3)：276-283]。相对于背景，产生干扰素-γ的T细胞百 分比增加至少50％，则预测体内效力。在优选的具体实施方式中， 所述百分比增加为至少55％、60％、65％、70％、75％、80％、90％ 或100％。在体内情形的情况下，将嵌合抗原经胃肠外直接导入宿 主体内，其中可获得的树突和其他抗原呈递细胞具有与所有抗原相 互作用并从而处理该抗原的能力。
G.联合治疗
本发明的另一方面提供了用于治疗病毒感染的组合物，其包含 嵌合抗原和抗病毒剂。本发明还提供了治疗病毒感染的方法，包括 同时或依次给予嵌合抗原和抗病毒剂。
在治疗患有慢性丙型肝炎的受治疗者的过程中，可表明将嵌合 抗原与抗病毒剂如核苷类似物联合应用，在诱导持续应答方面高度 有效。这两种药剂联合应用的作用机制在治疗丙型肝炎受治疗者中 可以产生协同效应。例如，HCV抗病毒剂如利巴韦林与本文中所描 述的HCV嵌合抗原的组合将产生抗原特异性细胞以及体液免疫应 答，从而清除慢性感染受治疗者体内的HCV感染。
H.制备嵌合抗原的方法
本发明的一个方面提供了用于生产嵌合抗原的方法，包括(a) 提供微生物或细胞系(或细胞)，优选地真核，更优选地非哺乳动 物微生物或细胞系(或细胞)，其包含编码嵌合抗原的多核苷酸； 以及(b)在表达所述嵌合抗原的条件下，培养所述微生物或细胞 系(或细胞)。优选地，所述微生物或细胞系(或细胞)是酵母、 植物细胞系(或细胞)或昆虫细胞系(或细胞)。更优选地，所述 细胞系(或细胞)是选自由Sf9、Sf21、expressSF+ 、果蝇S2、以 及High FiveTM细胞系(或细胞)组成的组的昆虫细胞系(或细胞)。
本发明利用已建立的重组DNA技术，以生产给定抗原与TBD 的融合蛋白，所述TBD对于实施本发明是必需的。融合蛋白构建 体在结合特异性限制性酶切位点的DNA水平产生，所述酶切位点 在将期望的DNA片段结合到表达载体的过程中采用，并用来在异 源表达系统中表达期望的融合蛋白。如在本文中使用的，术语“载 体”表示能够携带编码期望蛋白的DNA的质粒。本发明中所使用 的质粒载体包括但不限于pFastBac HTa以及在DH10BacTM E.coli(Invitrogen)中产生的相应重组“杆粒”(细菌人工染色体)。可 以动员(mobilize)期望蛋白的ORF，并产生用于在本发明中采用 的除Bac-to-Bac杆状病毒表达系统(Invitrogen)之外的其他系统 (细菌或哺乳动物)中表达该蛋白的其他重组质粒。术语“表达” 用来表示将DNA序列转录成mRNA，并将该mRNA转录体翻译成 融合蛋白。
这可通过将感兴趣基因转座入杆粒中，转染到Sf9昆虫细胞中 且产生重组杆状病毒而实现。这些重组杆状病毒可用来感染Sf9或 High FiveTM昆虫细胞，其产生感兴趣的蛋白。所产生的重组蛋白可 以具有N末端6xHis标签，其可用于通过采用Ni-NTA琼脂糖 (Qiagen，Hilden，Germany)纯化蛋白的过程中。所述蛋白还可以具 有N末端rTEV蛋白酶或其他已克隆入的切割位点。将Ni纯化的 蛋白用例如rTEV蛋白酶(Invitrogen)进行消化，该蛋白也具有N末 端6xHis标签。蛋白酶消化后，将混合物加载到Ni-NTA琼脂糖柱 上，并可以将纯蛋白洗出，同时6xHis标记的片段将结合于该柱上。 这种纯化方法是标准步骤，并且本领域的普通技术人员能够理解该 方法而无需进一步解释。
DNA序列的克隆和表达可以通过两种途径实现，该DNA序列 编码病毒抗原和鼠单克隆抗体的Fc片段以生成嵌合抗原。第一种 途径涉及将所述两种蛋白克隆为融合蛋白，而第二种途径涉及将特 异性“生物连接子”如生物素或抗生蛋白链菌素整合入两种分子之 一中、将其单独纯化并生成嵌合抗原。
在示例性的具体实施方式中，杂交瘤2C12(其产生抗乙肝病 毒表面抗原的单克隆抗体)用作鼠免疫球蛋白G的总RNA的来源。 分离总RNA并用来克隆鼠Fc片段。具体地，利用Trizol试剂 (Invitrogen/Gibco BRL，产品目录号10551-018，10298-016；酚和 异硫氰酸胍的单相溶液，如在美国专利第5,346,994中所描述的) 从表达鼠IgG的杂交瘤中分离所述总RNA。通过亲和层析在寡dT 柱(Invitrogen/Gibco BRL，产品目录号15939-010)上将mRNA从 总RNA中纯化出来。利用逆转录酶在聚合酶链反应中生成互补 DNA(cDNA)。设计寡核苷酸引物以添加独特的限制性酶识别位 点，以利于克隆。该cDNA利用Bac-to-Bac杆状病毒表达系统 (Invitrogen/Gibco BRL，产品目录号15939-010)克隆。
优先使用杆状病毒系统，这是因为不仅其生成大量异源性蛋 白，而且在受感染昆虫细胞内发生了蛋白的翻译后修饰如磷酸化和 糖基化。在该表达系统中，可以将所述DNA克隆入称为pFastBacTM (Invitrogen/Gibco BRL，产品目录号15939-010)的载体中。在 Bac-to-Bac系统中，重组物的生成基于通过细菌转座子Tn7的位点 特异性转座。将感兴趣基因克隆入pFastBac中，其在克隆位点侧 翼具有微型Tn7元件。将该质粒转化入大肠杆菌菌株DH10BacTM (Invitrogen/Gibco BRL，产品目录号10361-012)中，其具有杆状 病毒穿梭质粒(杆粒)，该质粒在LacZ基因内含有Tn7附着位点。 转座破坏LacZ基因，使得仅重组体产生白色克隆并易于选择。在 E.coli中使用转座的优势在于单个克隆仅包含重组体，以致无需空 斑纯化和筛选。将重组杆粒转染入昆虫细胞中以产生表达重组蛋白 的杆状病毒。
所述Bac-to-Bac杆状病毒表达系统可从Invitrogen商业上购 得，并且所采用的方案(程序)如在公司协议(如 www.Invitrogen.com)中所描述的。将感兴趣的基因克隆入例如 pFastBac HTa供体质粒中，而重组蛋白的生产基于Bac-to-BacTM杆 状病毒表达系统(Invitrogen)。
在接着的步骤中，为了将所克隆的基因转移入杆状病毒穿梭载 体(杆粒)中，将包含感兴趣基因的pFastBac HTa供体质粒用于位 点特异性转座中。这是在E.coli菌株DH10BacTM中完成的。将具有 感兴趣基因的重组pFastBac HTa质粒转化入DH10BacTM细胞中用 于转座，以生成重组杆粒。
通过标准方案(Sambrook，上文)来分离重组杆粒；所述DNA 样品用于转染。
为了生产杆状病毒，将该杆粒转染入Sf9昆虫细胞中。转染后， 将该细胞在适当条件下孵育，收集并储存包含杆状病毒的培养基。
一旦已经确认了杆状病毒的生成和蛋白的表达，则扩增病毒原 种(virus stock)，以生产携带感兴趣基因的浓缩杆状病毒原种。将 杆状病毒扩增至少两次是本领域中的标准操作，并且在本文所描述 的所有方案中均遵循该标准操作。在第二轮扩增后，可根据由制造 商描述的试剂盒(Invitrogen)方案，利用空斑测定(噬菌斑测定) 来定量所生成的杆状病毒的浓度。还建立了感染昆虫细胞的最适合 的病毒浓度以及用于生成期望蛋白的最佳时间点。
编码感兴趣蛋白的DNA可利用寡核苷酸引物通过PCR而生 成，所述引物含有来自质粒的独特限制性酶切位点，而该质粒含有 一个拷贝的全病毒基因组并与Fc DNA一起克隆为融合蛋白。该嵌 合蛋白通过Ni-NTA、凝集素、蛋白A或蛋白G亲和层析或本领域 中普通技术人员已知的其他标准纯化方法而纯化。
用于连接IRD和TBD的第二种途径涉及将特异性“生物连接 子”如生物素或抗生物素蛋白(例如抗生蛋白链菌素)整合入两种 分子之一中、将其单独纯化并生成所述嵌合抗原。将感兴趣的病毒 抗原克隆入质粒中，该质粒通过噬菌体T7启动子控制蛋白表达。 随后将该重组质粒转化入E.coli菌株如BL21(DE3)Codon PlusTM RIL细胞(Stratagene，产品目录号230245)中，该细胞中T7 RNA 聚合酶的产生通过lac抑制子调节。T7 RNA聚合酶对T7启动子高 度特异，并且比E.coli宿主的RNA聚合酶显著快得多(快约8倍)。 当T7 RNA聚合酶的生成由异丙基硫代-β-D-半乳糖苷(IPTG)诱导 时，T7 RNA聚合酶的特异性和持续合成能力(processivity)引起 在T7启动子控制下的高水平基因转录。为了将两种蛋白偶联在一 起，利用生物素与抗生物素蛋白(例如抗生蛋白链菌素)之间的紧 密结合。在E.coli中，BirA酶将特异性识别序列内的生物素共价键 催化为确定的赖氨酸残基。如上所述，将鼠Fc片段在杆状病毒系 统内表达为具有抗生物素蛋白的融合蛋白。通过生物素-抗生蛋白链 菌素结合，可以混合这两种蛋白以形成二聚蛋白复合物。
除非另有指明，本发明的实施采用分子生物学、微生物学、重 组DNA和免疫学的常规技术，其为本领域技术人员所掌握。这样 的技术在文献中有充分解释。参见，例如上文Sambrook；及上文 Ausubel。
I.制品和试剂盒
本发明的另一方面提供了一款产品，其包括容纳包含嵌合抗原 的组合物的容器，所述组合物适合于注射或适合于重建用于注射； 与印刷的标签说明书结合，提供如何在胃肠外，例如皮下、肌内、 皮内、经鼻或血管内给予该组合物的论述。该组合物可以包含在任 何适合的容器中，该容器不会与所述组合物发生显著的相互作用， 并且可以标记有适当的标记表明其适于胃肠外使用。所述标记说明 书可与容器结合在一起，且该说明书与上文所述的治疗方法一致。 容纳本发明组合物的容器可以是具有适合于注射的液态组合物的 容器。该容器可以被改造适于注射器针头进入。该款产品可以包括 用于注射的适当的针头和注射器，使得受治疗者、医生、护士或其 他执业者均可给予所述嵌合抗原。可替换地，组合物可以为包含可 溶性形式的嵌合抗原的干燥或浓缩组合物，可与含水或不含水载体 结合或用其稀释，以溶解或悬浮该组合物。可替换地，所述容器可 以含有以液体的悬浮液，或可以为与载体结合的不溶性形式的盐， 其中所述不溶性形式将被悬浮。适当的容器在上文Remington第 788-789、805、850-851和1005-1014页中加以讨论。
本发明的试剂盒通常将包括上文所述的容器以及一种或多种 其他容器，所述一种或多种其他容器容纳有从商业和使用者立场所 需的物质，所述材料包括缓冲液、稀释剂、滤器、针头、注射器、 以及带有使用说明书的药品说明书。该容器上可存在标签，以指示 所述组合物用于特殊疗法或非治疗性应用，并且还可以指示用于体 内或离体应用的说明，如上文所述的那些。说明和/或其他信息还可 以包括在试剂盒内的说明书上。
V.实施例
下面的非限制性实施例提供对本发明的进一步说明。
实施例1.材料和方法
材料
用于在这些实施例中描述的Chimigen3分子中的TBD(并且， 为了方便，在这些实施例中称为“TBD”)来自杂交瘤2C12，其产 出鼠HBsAg特异性mAb，并且其来自Tyrrell实验室，通过Alberta 大学，Edmonton，Alberta，Canada批准。包含编码HCV抗原的DNA 的质粒pCV-H77C从Alberta大学的Tyrrell实验室获得。
pFastBac HTa克隆载体、昆虫细胞系Sf9、Cellfectin试剂、磷 酸缓冲盐(PBS)、铂Pfx DNA聚合酶、TRizol试剂、Superscript First-Strand Synthesis逆转录酶、X-gal、异丙基-β-D-硫代半乳吡喃 糖苷(thiogalactopyranoside)(IPTG)和胎牛血清(FBS)从Invitrogen (Carlsbad，CA，USA)购买。
昆虫细胞生长和表达培养基ESF 921从表达系统(Expression Systems)(Woodland，CA，USA)购买。限制性内切酶EcoR I、Spe I、 Hind III、RsrII、AvaII和Not I从新英格兰Biolabs(Ipswich，MA， USA)购买。
病毒原种利用Expression Systems杆状病毒滴定分析来进行浓 度测定。将IgG2A-PE(BD Biosciences，San Diego，USA)1∶10稀释并用 作同种型对照。杆状病毒滴度利用FACS采集和分析而确定。Becton Dickinson Biosciences FACSCalibur3(四色、双激光)采集细胞，并 采用CELLQuest Pro3软件(BD Biosciences)分析数据。由Expression Systems提供微软Excel电子表格，以输入数据并根据标准曲线确定 病毒滴度。纯化利用Ni-NTA Superflow3(Qiagen，Hilden，Germany) 和Toyopearl Super Q3 650C(Tosoh Biosciences，Grove City，OH， USA)来实施。
用于制备十二烷基硫酸钠聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS PAGE) 的30％丙烯酰胺溶液从Bio-Rad(Hercules，CA，USA)购买。页蓝 3染料、5x加样缓冲液、页蓝3预染的蛋白梯和20X还原剂从 Fermentas(Burlington，ON，Canada)购买。
Hybond3 ECL硝基纤维素和ECL Western检测试剂盒(GE Healthcare)用于蛋白质印迹。
吐温20、溴化十六烷基三甲基铵(CTAB)、抗小鼠IgG(Fc 特异)辣根过氧化物酶轭合的抗体、抗小鼠(Fab特异)辣根过氧化物 酶轭合的第二抗体、羊抗兔辣根过氧化物酶轭合的第二抗体以及抗 生素卡那霉素、氨苄西林和庆大霉素从Sigma(St.Louis，MO，USA) 购买。
兔抗NS5A、羊抗NS3和羊抗NS4多克隆抗体以及鼠抗NS5A 单克隆抗体从Abcam(Cambridge，MA，USA)获得。6xHis辣根过氧 化物酶轭合的单克隆抗体从Clontech(Palo Alto，CA，USA)购买。
Slide-a-lyzer3盒式录像带(cassette)和Micro BCA3分析试剂 盒从Pierce(Rockford，IL，USA)购买。
Pro-QEmerald 300糖蛋白凝胶和Blot Stain试剂盒从 Molecular Probes(Carlsbad，CA，USA)购买。
来自健康供者的白细胞分离法样品从SeraCare Life Sciences (Oceanside，CA，USA)购买。用于T细胞阴性分离的Dynal Dynabeads3从Invitrogen(Carlsbad，CA，USA)购买。含L-谷氨酰 胺、硫酸链霉素(50μg/mL)和硫酸庆大霉素(10μg/mL)的AIM V培养基从Invitrogen获得。匹配的供者血清从Ficoll-Hypaque血 液制备物离心后的血清馏分获得。将血清(浓度为50％/AIM V培 养基)热灭活、等分并储存于-20℃。Dulbecco磷酸缓冲盐(PBS) 从Invitrogen获得。
具有下列特异性的轭合单克隆抗体(mAbs)从BD Biosciences(San Diego，CA)获得：CD64-异硫氰酸荧光素(FITC)、 CD32-R-藻红蛋白(PE)、CD 16-PE、CD206-PE-Cy5、CD80-PE、 CD86-FITC、CD83-PE、CD40-FITC、CD11c-PE、CD14-FITC、 CD19-FITC、CD3-FITC、CD3-PE、CD3-别藻蓝蛋白(APC)、 CD8-PE-Cy5、CD4-APC、CD69-FITC、CD69-APC、HLA-ABC-FITC、 HLA-DR-PE、IFN-γ-PE、TNF-α-PE、grB-FITC、pfn-FITC和小鼠 IgG1-生物素。生物素化抗6xHis从Qiagen(Mississauga，Ontario， Canada)获得。羊抗兔IgG-生物素抗体来自Jackson ImmunoResearch Laboratories(West Grove，PA)。鼠同种型mAbs和SA-PE-Cy5从 BD Biosciences获得。混合的同分异构体5-(和6-)二醋酸羧基荧光 素、琥珀酰亚胺酯(succinimidyl ester)(5(6)-CFDA，SE；CFDA) 从Invitrogen获得。
通过使用特异性PE轭合的四聚体(Beckman Coulter， Mississauga，Ontario，Canada)或五聚体(Prolmmune，Springfield， VA)测定T细胞对抗原的特异性。所使用的五聚体包括HCV NS5A 肽VLSDFKTWL(SEQ ID NO：3)/HLA-A2和HCV NS3肽 CINGVCWTV(SEQ ID NO：4)/HLA-A2。所使用的四聚体包括EBV 肽GLCTLVAML(SEQ ID NO：5)/HLA-A2、HCV NS3肽 KLVALGINAV(SEQ ID NO：6)/HLA-A2和阴性对照四聚体(多等位 基因的)。
下列细胞因子从R&D Systems(Minneapolis，MN)：白介素-1β (IL-1β)、白介素-4(IL-4)、白介素-6(IL-6)、粒细胞-巨噬细 胞集落刺激因子(GM-CSF)、肿瘤坏死因子I(TNF-α)、干扰 素-K(IFN-γ)和干扰素-I(IFN-α)购买。根据制造商的说明重 建细胞因子、等分并储存于-70℃。聚IC从Sigma获得。
Wave Bioreactor System23/1 0EH和Cellbag 10L/O从Wave Biotech(Somerset，NJ.，USA)购买。
方法
表达质粒构建
pFastBac HTa-TBD，亲代质粒构建体
编码CH1-铰链-CH2-CH3区氨基酸的小鼠IgG1 DNA序列由从 杂交瘤2C12分离的mRNA生成，所述杂交瘤2C12产生抗HBV表 面抗原(sAg)的mAb。总mRNA利用TRizol试剂分离，而TBD 的cDNA通过利用Superscript First-Strand Synthesis的RT-PCR而生 成。PCR引物包含连接子序列，该连接子序列编码5’末端的连接 肽-SRPQGGGS-(SEQ ID NO：1)、5’末端独特的Not I位点和3’末端 独特的HindIII限制性位点。得到的cDNA包含(5’-Not I)-连接 子序列-部分CH1(VDKKI；SEQ ID NO：2)-CH2-CH3(3’HindIII)。用 各个酶消化后，利用相同的限制性酶切位点将片段与pFastBac-HTa 表达载体质粒相连接。用于PCR扩增的5’引物是(正义)5’-TGT CATTCTGCGGCCGCAAGGCGGCGGGATCCGTGGACAAGAAA ATTGTGCCAGG-3’(SEQ ID NO：7)，并且3’引物是(反义)5’ -ACGAATCAAGCTTTGCAGCCCAGGAGAGTGGGAGAG-3′(SEQ ID NO：8)，其分别含有Not I和Hind III位点。将扩增的DNA用 Not I和Hind III消化，所述片段通过琼脂糖凝胶纯化并与用相同限 制性酶消化的pFastBac-HTa表达载体质粒相连接，以生产表达载体 质粒pFastBacHTa-TBD。该产物用于表达所述融合蛋白6xHis标签 -rTEV蛋白酶切割位点-TBD。通过标准测序法来验证DNA序列及 开放阅读框架(ORF)的准确性。pFastBacHTa-TBD中ORF的核苷 酸序列(SEQ ID NO：9)及由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：10)在图2中示出。
pFastBacHTa-gp64的构建
为了分泌，将来自苜蓿银纹夜蛾(Autographa californica)核 型多角体病毒(AcNPV)gp64蛋白的信号序列克隆入pFastBac-HTa 中。合成两种寡核苷酸并将其复性(对合，anneal)在一起。所述 寡核苷酸序列是5’-GCATGGTCCATGGTAAGCGCTATTGTTTTA TATGTGCTTTTGGCGGCGGCGGCGCATTCTGCCTTTGCGGATC TGCAGGTACGGTCCGATGC-3’(SEQ ID NO：11)和5’- GCATCGGACCGTACCTGCAGATCCGCAAAGGCAGAATGCGC CGCCGCCGCCAAAAGCACATATAAAACAATAGCGCTTACCAT GGACCATGC-3’(SEQ ID NO：12)。所述寡核苷酸包含5’Ava II 位点和3’Rsr II位点。在用Ava II和Rsr II消化以后，将该片段克隆 入Rsr II消化的pFastBac-HTa中，该消化的pFastBac-HTa将所述 gp64信号序列置于6xHis标签的紧邻上游，以生成 pFastBacHTa-gp64。
pFastBacHTa HCV NS5A Chimigen TM 疫苗融合蛋白表达载体质 粒的构建
利用PCR法从质粒pCV-H77C模板得到编码HCV NS5A片段 的DNA。用于PCR的5’引物是含有限制性酶EcoR I位点的(正 义)5’-CCGGAATTCTCCGGTTCCTGGCTMGG-3’(SEQ ID NO：13)。 用于3’末端的PCR引物是含有限制性酶Spe I位点的(反义)5’ -GGACTAGTCCGCACACGACATCTTCCGT-3’(SEQ ID NO：14)。扩增的 DNA用各个酶消化并连接于pFastBac HTa-TBD，以生成表达质粒 pFastBacHTa HCV NS5A ChimigenTM疫苗(或pFastBacHTa -NS5A-TBD)。核苷酸序列(SEQ ID NO：39)和由 pFastBacHTa-NS5A-TBD中ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：40) 在图3中示出。对于仅NS5A，将该NS5A片段连接入EcoR I/Spe I消化的pFastBac-HTa，以生成pFastBacHTa-NS5A。
用于分泌的pFastBacHTa-gp64 NS5A Chimigen TM 疫苗表达质粒 的构建
为了将NS5A ChimigenTM疫苗克隆入pFastBacHTa-gp64中，用 Rsr II和Hind III消化质粒pFastBacHTa HCV NS5A ChimigenTM疫苗 (如上所述)，并且所述NS5A ChimigenTM疫苗片段通过琼脂糖凝 胶电泳纯化。将NS5A ChimigenTM疫苗片段连接于Rsr II和Hind III 消化的pFastBacHTa-gp64质粒，以得到pFastBacHTa-gp64 HCV NS5A ChimigenTM疫苗(pFastBacHTa-gp64-NS5A-TBD)表达质粒 (IDAC登录号111006-04)。pFastBacHTa-gp64-NS5A-TBD中ORF 的核苷酸序列(SEQ ID NO：41)和由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：52)在图4中示出。
用于分泌的pPSC12-NS5A-TBD Chimigen TM 疫苗表达质粒的构 建
为了促进NS5A ChimigenTM疫苗分子的分泌，将其克隆入质粒 pPSC12(Protein Sciences Corporation)中。该质粒具有来自杆状病 毒苜蓿银纹夜蛾核型多角体病毒(AcNPV)的甲壳酶基因信号肽。 将感兴趣基因克隆入转移载体需要四种PCR引物。感兴趣基因利用 两种独特引物扩增(引物1 GTTTCTAACGCGTCGTACTACCATCACCATCAC (SEQ ID NO：15)和2 CCGGGGTACCTTACAGCCCAGGAGAGTGGGAGAG (SEQ ID NO：16))。扩增多面体上游区域需要两种不同的引物，所 述区域包括上游多面体启动子和信号肽序列(引物3 CTGGTAGTTCTTCGGAGTGTG(SEQ ID NO：17)和4 GGTAGTACGACGCGTTAGAAACGGCGACCAAC(SEQ ID NO：18))。 最终，将两种外部引物(引物3和2，上述序列)用于关键的重叠 延伸PCR中。NS5A-TBD利用引物1和引物2通过PCR从 pFastBacHTa-NS5A-TBD扩增而来，其中引物1包含将与引物4的 5’末端退火的序列，而引物2则添加了3’Kpn I位点，用于克隆 入载体中。pPSC12的上游多面体区域通过引物3和引物4扩增， 所述引物允许其在重叠延伸PCR过程中退火于引物1的3’末端。 该上游区域还包含独特的NgoM IV位点，该位点用于克隆入载体 中。所述上游多面体启动子、信号肽序列、以及期望基因通过利用 引物2和3的重叠延伸PCR而严密地融合。全长融合产物用NgoM IV和Kpn I消化，并将得到的片段连接入同样消化的pPSC12，以 生成pPSC12-NS5A-TBD。pPSC12-NS5A-TBD中ORF的核苷酸序 列(SEQ ID NO：42)和由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：53) 在图5中示出。
pFastBacHTa HCV NS3 Chimigen TM 疫苗质粒的构建
编码NS3的DNA利用下列引物通过PCR从质粒pCV-H77C 模板(HCV多蛋白的氨基酸1027至1652(nt3420至5294))生成。 NS3 C末端最后6个氨基酸未包括在该构建体中，这是因为该序列 是NS3丝氨酸蛋白酶活性的靶序列。所使用的5’末端引物是含有 Eco RI限制性位点的5’- CCGGAATTCGCGCCCATCACGGCGTA-3’(SEQ ID NO：19)，而3’末端引 物是含有Spe I限制性位点的5’-CCGGACTAGTCC GGCCGACATGCATGTCATGAT-3’(SEQ ID NO：20)。用EcoR I和 Spe I进行双消化，得到的产物与质粒pFastBacHTa-TBD连接，以 生成pFastBacHTa NS3-TBD。
pFastBacHTa HCV NS3 Chimigen TM 疫苗质粒载体的诱变
Shoji et al.[(1999)Virology 254：315-323]已经报道了当在昆虫细 胞中表达时，NS3蛋白的内部切割发生于1488位的精氨酸残基， 可能由细胞蛋白酶介导。重叠延伸(OE)PCR用来产生氨基酸精 氨酸至丙氨酸的突变，从而避免这样的NS3 ChimigenTM蛋白中NS3 部分的切割。从亲代pFastBacHTa NS3-TBD质粒生成两个NS3 DNA 片段。5’NS3片段通过含Eco RI限制性位点的引物 5’-CCGGAATTCGCGCCCATCACGGCGTA-3’(SEQ ID NO：19)和突 变引物(含精氨酸至丙氨酸的突变) 5’-CTGCCAGTCCTGCCCGCGCGTTGAGTCCTGGAG-3’(SEQ ID NO：21)。3’NS3片段通过5’引物5’- GGCAGGACTGGCAGGGGGAAGCCAGGCAT-3’(SEQ ID NO：22)和含 SpeI限制性位点的3’引物 5’-CCGGACTAGTCCGGCCGACATGCATGTCATGAT-3’(SEQ ID NO：20) 而生成。OE PCR通过5’和3’NS3片段以及所述两个外部引物 而实现。用Eco RI和Spe I进行双消化，得到的产物可与质粒 pFastBacHTa-TBD连接，以生成pFastBacHTa NS3mut-TBD(IDAC 登录号111006-05)。pFastBacHTa NS3mut-TBD中ORF的核苷酸序 列(SEQ ID NO：44)和由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：55) 在图7中示出。预测该蛋白的分子量是98.3 kDa。对于仅NS3mut， 通过EcoR I和Spe I消化而分离NS3mut片段，并克隆入 pFastBac-HTa中，以生成pFastBacHTa-NS3mut。
pFastBacHTa-gp64 HCV NS3mut Chimigen TM 疫苗载体质粒的 构建
将pFastBacHTa HCV NS3mut-TBD质粒用Rsr II和Hind III限 制酶消化，并将该NS3mut-TBD片段克隆入Rsr II和Hind III消化 的pFastBacHTa-gp64中，以生成pFastBacHTa-gp64-NS3mut-TBD (IDAC登录号111006-02)。pFastBacHTa-gp64-NS3mut-TBD中 ORF的核苷酸序列(SEQ ID NO：45)和由该ORF编码的氨基酸序列 (SEQ ID NO：56)在图8中示出。预测该蛋白的分子量是101.5 kDa。 将类似于用来制备pFastBacHTa-gp64-NS3mut-TBD(但缺乏自发突 变并包含另一个)的片段的突变NS3mut-TBD片段克隆也连接入 pFastBacHTa-gp64中，以生成第二克隆 pFastBacHTa-gp64-NS3mut-TBD。第二克隆 pFastBacHTa-gp64-NS3mut-TBD中ORF的核苷酸序列(SEQ ID NO：43)和由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：54)在图6中示 出。
pFastBacHTa HCV多抗原Chimigen TM 融合蛋白表达载体质粒 的构建
为了制备HCV多抗原载体质粒，首先克隆NS4B-NS5A序列。 编码NS4B-NS5A的DNA序列通过PCR从质粒pCV-H77C中生成， 其中利用用于5’末端的引物5’- GCGCACTAGTGTCTCAGCACTTACCGTACATC-3’(SEQ ID NO：23)和用于3’ 末端的5’-CGGCGCGGCCGCCCGCAGCACACGACATCTTCCG-3’(SEQ ID NO：24)。利用这些引物的PCR得到的产物具有独特的限制性酶切 位点：5’末端Spe I位点和3’末端Not I位点。用Spe I和Not I消化该PCR产物，并连接入Spe I和Not I消化的 pFastBacHTa-gp64中，以生成pFastBacHTa-gp64 NS4B-NS5A。接 着，将TBD部分添至构建体中。用Spe I和Hind III消化质粒 pFastBacHTa-TBD和pFastBacHTa-gp64 NS4B-NS5A。分离Spe I /Hind III消化的TBD并连接至所述消化的pFastBacHTa-gp64 NS4B-NS5A，以生成pFastBacHTa-gp64 NS4B-NS5A-TBD。
NS3活性位点丝氨酸残基的诱变
在NS3中，将活性位点丝氨酸(ser1165)突变为丙氨酸，以 使蛋白酶活性失效。利用四种不同引物(两种巢式引物，两种互补 于5’和3’末端的引物)，以pFastBacHTa-gp64 NS3mut-TBD作为 模板，通过OE PCR生成两种NS3片段。5’NS3片段利用含限制 性酶Eco RI位点的5’末端引物(正义) 5’CCGGAATTCGCGCCCATCACGGCGTA-3’(SEQ ID NO：19)和突 变引物(含ser-ala突变)(反义)5’- CAACAGCGGACCCCCCGCGGAGCCTTFCAAGTAG-3’(SEQ ID NO：25) 来生成。3’NS3片段利用5’末端引物(正义) 5’GTCCGCTGTTGTGCCCCGCGGGACACG-3’(SEQ ID NO：26)和含 限制性酶Spe I位点的3’末端引物(反义) 5’-CCGGACTAGTCCGGCCGACATGCATGTCA-3’(SEQ ID NO：27)来生成。全长NS3(ser1165→ala)通过OE-PCR从5’和3’ 片段和两种外部引物生成。得到的具有在Arg1488突变为Ala以及 在Ser1165突变为Ala的产物称为NS3mutS。将该片段克隆入 pFastBacHTa-gp64中，以生成FastBacHTa-gp64-NS3mutS-TBD (IDAC登录号111006-001)。
pFastBacHTa-gp64HCV NS3-NS4B-NS5A多抗原融合蛋白载 体质粒的构建
为了制备可用于表达融合蛋白HCV NS3mutS-NS4B-NS5A的 构建体，用限制性酶Eco RI和Spe I消化所述NS3mutS OE-PCR产 物。将消化的NS3mutS连接入Eco RI和Spe I消化的质粒 pFastBacHTa-gp64NS4B-NS5A-TBD中，以制备pFastBacHTa-gp64 NS3-NS4B-NS5A-TBD(IDAC 登录号111006-06)，其是 pFastB acHTa-gp64HCV多抗原质粒。pFastBacHTa-gp64 NS3-NS4B-NS5A-TBD中ORF的核苷酸序列(SEQ ID NO：46)和由该 ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：57)在图9中示出。
pFastBacHTa-gp64HCV NS3-NS5A多抗原融合蛋白载体质粒 的构建
通过PCR 从模板pFastBacHTa-gp64HCV NS3-NS4B-NS5A-TBD ChimigenTM疫苗融合蛋白表达载体质粒生 成用于HCV NS5A和TBD的DNA。用于PCR的5’引物是含有限 制性酶Spe I的识别位点的(正义)5’- GAGGGACTAGTGTCCGGTTCCTGGCTAAGGGAC-3’(SEQ ID NO：28)。 用于3’末端的PCR引物是(反义) 5’-CCGGTCTAGATTATGATCCTCTAGTACTTCTCGAC-3’(SEQ ID NO：29)。将PCR产物(NS5A-TBD)用凝胶纯化，随后用Spe I和 Hind III限制性酶消化。用限制性酶Spe I和Hind III消化质粒 pFastBacHTa-gp64NS3-NS4B-NS5A-TBD，释放由编码HCV NS4B-NS5A和所述TBD的序列组成的片段。将得到的 pFastBacHTa-gp64HCV NS3载体骨架经凝胶纯化并连接至所述 NS5A-TBD片段，以生成表达质粒pFastBacHTa-gp64HCV NS3-NS5A ChimigenTM疫苗(pFastBacHTa-gp64NS3-NS5A-TBD) (IDAC登录号111006-03)。pFastBacHTa-gp64-NS3-NS5A-TBD中 ORF的核苷酸序列(SEQ ID NO：47)和由该ORF编码的氨基酸序列 (SEQ ID NO：58)在图10中示出。
pFastBacHTa HCV核心(1-177)-TBD融合蛋白质粒和 pFastBacHTa HCV核心(1-177)的构建
编码HCV多蛋白的氨基酸1-177(nt342-872)的HCV核心 DNA序列通过PCR利用5’引物 CGGAATTCATGAGCACGAATCCTAAAC(SEQ ID NO：30)和3’引 物GGACTAGTCCGAAGATAGAGAAAGAGC(SEQ ID NO：31)从 pCV-H77C来扩增。所采用的引物添加了独特的5’EcoR I和3’ Spe I位点。将PCR产物用EcoR I和Spe I消化并连接入 pFastBacHTa-TBD和pFastBac-HTa中，以分别生成ChimigenTM疫 苗构建体pFastBacHTa HCV核心(1-177)-TBD和pFastBacHTa HCV 核心(1-177)。pFastBacHTa HCV核心(1-177)-TBD中ORF的核 苷酸序列(SEQ ID NO：48)和由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：59)在图11中示出。
为了生成分泌形式的蛋白，将HCV核心(1-177)克隆入 pFastBacHTa-gp64和pPSC12中。为了克隆入pFastBacHTa-gp64中， 将HCV核心(1-177)-TBD片段通过Rsr II和Hind III消化而从 pFastBacHTa HCV核心(1-177)-TBD中分离出来，并克隆入同样 消化的pFastBacHTa-gp64中，以生成pFastBacHTa HCV核心(1-177) -TBD。
为了克隆入pPSC 12中，采用与如NS5A-TBD所述类似的方案， 只是引物2编码独特的3’Bg1 II位点 (AGTAAGATCTTTACAGCCCAGGAGAGTGGGAGAG；SEQ ID NO：32)。得 到的构建体是pPSC12-HCV核心(1-177)-TBD。
pFastBacHTa HCV E1-TBD融合蛋白质粒和pFastBacHTa-E1的 构建
编码HCV多蛋白的氨基酸192-369(914-1452)的DNA序列 通过5’引物CCGGAATTCTACCAAGTGCGCAATTCCT(SEQ ID NO：33) 和3’引物GCGCACTAGTCCCTTCGCCCAGTTCCCCACC(SEQ ID NO：34) 从pCV-H77C而扩增，所述引物添加独特的5’EcoR I位点和独特 的3’Spe I位点。整个E1开放阅读框架终止于氨基酸383，但氨 基酸370至383之间的区域是E2的信号序列，因此不被扩增。用 EcoR I和Spe I消化PCR产物，并连接入同样消化的 pFastBacHTa-TBD中，以生成HCV E1ChimigenTM构建体 pFastBacHTa-E1-TBD。为了仅表达E1，将消化的PCR产物克隆入 EcoR I和Spe I消化的pFastBac-HTa中，以生成pFastBacHTa-E1。 pFastBacHTa-E1-TBD中ORF的核苷酸序列(SEQ ID NO：49)和由该 ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：60)在图12中示出。
pFastBacHTa E2-TBD融合蛋白质粒和pFastBacHTa-E2的构建
从氨基酸384至718(HCV多蛋白的nt 1494-2495)的E2序列 利用PCR通过5’引物 GCGCACTAGTCACCCACGTCACCGGGGGAAATG(SEQ ID NO：35)和3’ 引物GCGCGCGGCCGCCCGTACTCCCACTTAATGGC(SEQ ID NO：36)从 pCV-H77C而扩增，所述引物添加独特的5’Spe I位点和独特的3’ Not I位点。氨基酸719至746是p7的信号序列，因此不包括在构 建体中。用Spe I和Not I消化PCR产物，并连接于同样消化的 pFastBacHTa-TBD，以生成HCV E2ChimigenTM构建体pFastBacHTa E2-TBD。为了仅表达E2蛋白，将消化的E2也克隆入pFastBac-HTa 中，以生成pFastBacHTa-E2。pFastBacHTa E2-TBD中ORF的核苷 酸序列(SEQ ID NO：50)和由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：61)在图13中示出。
pFastBacHTa-E1-E2-TBD融合蛋白质粒和pFastBacHTa-E1-E2 的构建
E1和E2的融合蛋白通过将pFastBacHTa-E1中的E1序列亚克 隆入pFastBacHTa-E2中而生成。将该pFastBacHTa-E1质粒用Eco RI 和Spe I消化，并将片段克隆入Eco RI和Spe I消化的 pFastBacHTa-E2中，以生成pFastBacHTa-E1-E2。为了制备E1-E2 ChimigenTM构建体，将pFastBacHTa-E1-E2用Eco RI和Not I消化， 并克隆入同样消化的pFastBacHTa-TBD中，以生成 pFastBacHTa-E1-E2-TBD。pFastBacHTa-E1-E2-TBD中ORF的核苷 酸序列(SEQ ID NO：51)和由该ORF编码的氨基酸序列(SEQ ID NO：62)在图14中示出。
在Bac-to-Bac 表达系统中生成重组杆状病毒
E.coli的转化
已连接的质粒用来转化E.coli DH5α，并通过标准方案来分离 质粒。序列和开放阅读框架通过测序验证，并用于生成重组杆状病 毒。
转座(转位)
重组体的生成基于Bac-to-Bac克隆系统(Invitrogen)，该系 统利用具有细菌转座子Tn7的位点特异性转座。这可在E.coli菌株 DH10Bac内实现。所述DH10Bac细胞包含杆粒pMON14272和辅 助质粒(pMON7124)，其中杆粒pMON14272赋予对卡那霉素的耐 药性，而辅助质粒编码转座酶并赋予四环素抗性。
将感兴趣基因克隆入pFastBac质粒中，该质粒具有位于克隆位 点侧翼的mini-Tn7元件。将质粒转化入具有杆状病毒穿梭质粒(杆 粒)的E.coli菌株DH10Bac，其中所述杆状病毒穿梭质粒(在LacZ α基因内含有Tn7的附着位点。转座破坏LacZα基因，以致仅重 组体产生白色克隆，因此易于选择。
在E.coli中使用转座的优势在于单个克隆仅包含重组体。该重 组杆粒利用标准质粒分离步骤而分离，并用于转染入昆虫细胞中， 以生成表达重组蛋白的杆状病毒。
Donor(供体)质粒和pFastBacHTa-gp64ChimigenTM疫苗载体 用于将克隆的基因位点特异性地转座入杆状病毒穿梭载体(杆粒) 中。将含有感兴趣基因的重组pFastBacHTa-gp64质粒转化入 DH10Bac细胞中用于转座以生成重组杆粒。将40μL等份的感受态 DH10Bac细胞在冰上解冻，加入基于pFastBacHTa-gp64的质粒， 并通过电穿孔进行转化。将转化混合物加入到1mL的SOC培养基 (介质)中，并在37℃下孵育4小时。所述转化的细胞(变异细胞) 用LB连续地稀释至10-1和10-2，并将100μL的每种稀释物涂于LB 琼脂平板上，该琼脂平板中补充了卡那霉素(50μg/mL)、庆大霉 素(7μg/mL)、四环素(10μg/mL)、X-gal(200μg/mL)和IPTG (40μg/mL)，并在37℃下孵育至少36小时。
庆大霉素抗性由所述pFastBacHTa-gp64质粒赋予，而X-gal和 IPTG用来将白色克隆(重组杆粒)与蓝色克隆(非重组)区分开。 挑选白色克隆并接种入2mL的LB中，该LB中补充了卡那霉素(50 μg/mL)、庆大霉素(7μg/mL)和四环素(10μg/mL)，并在37℃下 振荡孵育过夜。用无菌环来取少量过夜培养物，并将该样品划线在 新鲜LB琼脂平板上，该琼脂平板中补充了卡那霉素(50μg/mL)、 庆大霉素(7μg/mL)、四环素(10μg/mL)、X-gal(100μg/mL)和 IPTG(40μg/mL)，并在37℃下孵育至少36小时以确定白色表型。
通过标准方案来分离重组杆粒[Sambrook et al.(2001)In Molecular Cloning，A Laboratory Manual.Cold Spring Harbor Press]， 将DNA样品溶解于40μL的TE(10mM Tris-HCl pH8，1mM EDTA) 中并用于转染。
转染：重组杆状病毒的产生
为了产生重组杆状病毒，将相关杆粒转染入Sf9昆虫细胞中。 将Sf9细胞(9×105)接种于6孔细胞培养皿(35mm孔)的每一 个孔的2mL ESF 921内，并允许其在27℃下贴附至少1小时。通 过Sf9细胞供应商提供的方案，利用Cellfectin试剂进行转染。转 染后，将所述细胞在27℃下孵育72小时。收集含杆状病毒的培养 基并在4℃下储存于暗处。
通过检查杆状病毒DNA的产生，确定转染效率。对分离的杆 状病毒DNA进行PCR，以筛选感兴趣的插入基因。利用6xHis标 签-HRP轭合的单克隆抗体或抗小鼠IgG(Fc特异)辣根过氧化物 酶轭合的抗体作为探针，细胞内异种蛋白的表达可通过SDS-PAGE 和蛋白质印迹而验证。
重组杆状病毒原种的扩增
一旦已经确认了杆状病毒的生成和期望蛋白的表达，则增大病 毒浓度，以生成携带感兴趣基因的浓缩杆状病毒原种。在本文所描 述的所有方案中，均遵循将杆状病毒扩增至少两次的标准操作。第 二轮扩增后，利用杆状病毒滴定分析(Expression Systems)定量所 生成的杆状病毒的浓度。还建立了感染Sf9细胞的最适合病毒浓度 以及用于生成期望蛋白的最佳时间。根据标准步骤，开发用于单层 以及悬浮培养的Sf9细胞表达的方案。
杆状病毒滴定分析
所有的病毒原种均利用Expression Systems杆状病毒滴定分析 来测定浓度。将病毒原种从10-1至10-4连续进行稀释。将100μL等 份的每种稀释样品加入到Costar Low Attachment396孔板的孔内， 随后，将100μL的Sf9细胞以2×106细胞/mL的浓度加入到每个 孔内，并在27℃下将该板在振荡摇床孵箱中以200-250rpm孵育18 小时。
孵育后，将gp64-PE轭合的抗体1∶200稀释，并将同种型对照 (IgG2A-PE)1∶10稀释。将该板以1800rpm离心3分钟。通过翻转 板来去除培养基，并往孔内加入50μL的gp64-PE轭合的抗体或50 μL的同种型对照。随后将该板在4℃下在暗处孵育20分钟。
通过向每个孔内加入150μL冷PBS并如上文所述离心板而洗 涤细胞。接着，向每个孔内加入200μL的冷PBS，随后另一旋转， 最后向每个孔内加入200μL的PBS/0.1％BSA以重悬细胞并转移至 FACS管中用于分析。所述同种型对照用来在荧光流式细胞仪上设 定门(gate)。通过将表达阳性细胞群的百分比插入到所提供的Excel 电子表格中并生成一条基于对照病毒的标准曲线而确定病毒浓度。
蛋白表达的优化
将ChimigenTM蛋白表达在一定的MOI和时间范围内优化。将 ESF 921中的4份50mL的Sf9细胞培养物以2×106细胞/mL接种 并以0.5、1.5和10的MOI感染，在感染后的不同时间点收集1mL 的培养物。将取样的培养物以12,000x g离心1分钟，并分离上清 液和细胞。立即制备细胞和上清液用于SDS-PAGE分析。将细胞重 悬于500μL的PBS中，并将150μL的悬浮液加入到40μL5×加 样缓冲液和10μL20×还原剂中。此外，将150μL上清液与40μL5 ×加样缓冲液和10μL20×还原剂混合。将样品煮沸5分钟，并加 样到12％SDS-PAGE凝胶上用于蛋白质印迹分析。经评估，对于 NS5A ChimigenTM蛋白，蛋白生成以36小时和0.5MOI为最适；对 于NS3ChimigenTM蛋白，以48小时和2MOI为最适；而对于多抗 原ChimigenTM蛋白，则以36小时和1.5MOI为最适。
细胞内Chimigen TM 疫苗的纯化
NS5A Chimigen TM 蛋白的大量表达以及细胞裂解物(溶解产物) 的制备
在ESF 921培养基中的5升Sf9细胞培养物(密度约2×106细 胞/mL)用杆状病毒以0.5MOI感染。当细胞存活达约95％时，在 感染开始后约36小时收获细胞。较长的表达时间导致细胞生存力 丧失增加以及NS5A ChimigenTM蛋白强烈降解。通过离心收集感染 细胞并储存在-80℃下直到使用。
通过在冰上在200ml含高浓度吐温20的裂解缓冲液(6M GuHCl，50mM NaH2PO4，0.5M NaCl，1％吐温20，10mM β-巯 基乙醇，pH8.0)中漩涡，将来自1L感染细胞培养物的冰冻沉淀迅 速重悬。高浓度的吐温20对于NS5A ChimigenTM蛋白与Ni-NTA树 脂的有效结合是必需的。将重悬的悬浮液在冰上超声处理3次，每 次1分钟，其中每次超声脉冲之间的间隔为2分钟。随后将超声处 理的裂解物在室温下搅拌2小时。搅拌的裂解物通过离心(约27,000 xg，15分钟，10℃)而澄清，并将上清液用于在Ni-NTA superflow 上亲和层析。
NS3Chimigen TM 蛋白的表达以及细胞裂解物的制备
使用标准化的感染多重性(MOI)的编码HCV NS3 Chimigen TM 蛋白的重组杆状病毒来感染Sf9昆虫细胞用于表达。将Sf9细胞以 6×105细胞/mL的密度接种于2L Erlenmeyer瓶中的500mL的ESF 921培养基中。将该细胞培养物在27.5℃下以120rpm振荡孵育， 直到细胞密度达到2-3×106细胞/mL。对于HCV NS3 ChimigenTM 蛋白，将细胞以MOI 2感染48小时。对细胞裂解物进行蛋白质印 迹分析，用于监测感兴趣蛋白的表达。通过在4℃下以3000rpm (1593xg，JA10，Beckman Coulter AvantiTMJ 25)离心10分钟来 收获细胞，并将新鲜细胞沉淀用于纯化重组蛋白。可替换地，用条 件培养基重悬细胞沉淀，分散于50mL锥形管(每管250mL细胞 培养物)中，在4℃下在Beckman GS-6R离心机中以2,200rpm旋 转8分钟。将细胞沉淀快速冰冻于液氮中，并储存于-80℃。
通过78W(设置为(setting)6.5)超声处理1分钟，将冰冻细 胞沉淀(相当于2×500mL细胞培养基)重悬于200mL冰冻裂解 缓冲液(6M GuHCl，150mM NaCl，20mM Tris-HCl，pH 8.00中的冰上。将 该混合物转移至250mL玻璃烧杯中，并超声处理4次以上，每次1 分钟，78W，且具有5分钟的冷却间歇期。将混合物移至室温，并 加入CTAB至终浓度为1％(w/v)。检查pH并调至pH 8.00，并将 裂解物孵育2小时。利用JA 25.50转头在BeckmanAvanti J-25离心 机内将所述裂解物在10℃下以15,000rpm(27,000xg)离心30分 钟，然后对上清液进行Ni-NTA亲和层析。
多抗原Chimigen TM 蛋白的大量表达以及细胞裂解物的制备
将4升ESF921培养基转移入Cellbag中，并在Wave Bioreactor System 2/10EH上加热至27.5℃。将1升Sf9细胞培养物以6×106 细胞/mL加入该Cellbag中。随后将该袋在27.5℃与注射空气(0.3 L/min)一起孵育，并以130rpm振荡。当细胞密度达到2×106细 胞/mL时，将重组杆状病毒以MOI 1.5接种。注射后36小时，在冰 上冷冻该袋，并通过在4℃下以4500xg离心10分钟而收获细胞。 将细胞沉淀悬浮于冰冻PBS中然后转移至50mL锥形管(来自300 mL培养物沉淀/管的沉淀)中。所述细胞沉淀通过在4℃下以2800 xg离心15分钟而回收。该沉淀立即在液氮中冷冻，并储存于-80 ℃冰箱中直至使用。
将来自250mL培养物的冰冻Sf9细胞沉淀悬浮于20ml 1X PBS、1％吐温20、50mM DTT、5mM EDTA，pH8.0中，并于冰 上孵育30分钟。用NaOH将该裂解物的pH调至pH 12.0，并在室 温下搅拌30分钟。用HCl将pH降至8.0，并以39191xg离心30 分钟。去除上清液，并将沉淀悬浮于20ml 1X PBS、1％吐温20、 10mM DTT、1mM EDTA，pH8.0中。如上所述，将pH升至12.0 然后降至8.0。收集上清液并对20mM Tris、0.05％吐温20、0.1mM EDTA、10mM β巯基乙醇，pH8.0(用于体积排阻(大小排阻)和 疏水作用层析)透析。
对于Ni-NTA亲和层析，将来自500ml培养物的冰冻Sf9细胞 沉淀悬浮于50mL冰冻裂解缓冲液(6M盐酸胍、50mM碳酸钠、 20％乙醇，pH10)中。通过超声仪3000(Misonic Inc.)将该细胞裂 解物冰上以80W超声5次(1分钟)。将吐温20加入裂解物中(终 浓度1％)，并在室温下搅拌该裂解物2小时。通过在4℃下以39191 x g离心30分钟而去除裂解物中的不溶性颗粒，并进行Ni-NTA亲 和层析。
HCV核心Chimigen TM 蛋白的表达以及细胞裂解物的制备
HCV核心ChimigenTM在两种系统中表达。重组病毒通过在Sf9 细胞内共转染pPSC12-HCV核心(1-177)-TBD和线性化杆状病毒 基因组而生成、经空斑纯化并扩增。优化后，Sf9培养物以MOI 5 感染，并在27.5℃下孵育50小时后收获。重组病毒还可利用 Bac-to-Bac系统，通过用pFastBacHTa-gp64HCV核心(1-177)-TBD 转染E.coli DH10Bac细胞而生成。分离重组杆粒并用来转染Sf9细 胞以产生重组杆状病毒。将Sf9培养物以MOI 5在27.5℃感染49 小时，随后通过离心而收获。裂解物以与如上所述用于其他 ChimigenTM蛋白基本相同的方式而制备，并进行Ni-NTA亲和层析。
Ni-NTA亲和层析
将细胞裂解物加样到Ni-NTA superflow柱(10ml树脂床体积 /2.5L细胞培养物沉淀)，该柱已经用10倍床体积的裂解缓冲液加 以平衡。用含有百分比降低的吐温20的洗涤缓冲液(6M GuHCl， 50mM NaH2PO4，0.5M NaCl，0.1％吐温20，10mM β巯基乙醇， pH 8.0)的洗涤缓冲液洗涤该柱，直至A280＜0.01，随后用含15mM咪 唑的相同洗涤缓冲液进行洗涤。随后用10ml床体积的洗脱缓冲液 (6M GuHCl，50mM NaH2PO4，250M咪唑，0.1％吐温20，10mM β巯基乙醇，pH 8.0)/床体积馏分来洗脱靶蛋白。收集包含洗脱蛋 白的馏分并对透析缓冲液3×4L(8M尿素、20mM Tris、0.1％吐 温20、25mM氨茶碱、10mM β-巯基乙醇，pH8.5)透析。所有含 尿素的缓冲液均用去离子尿素制备，以防止蛋白氨甲酰化。尿素通 过AmberliteMB-1(Supelco，PA，USA)(10g/L/hr)去离子，并向缓冲液中加 入氰酸盐清除剂乙二胺(终浓度25mM)。
离子交换层析
接下来，使通过Ni-NTA亲和层析获得的含已透析的NS5A Chimigen3蛋白的样品通过已在透析缓冲液中平衡过的Toyopearl Super Q3树脂柱(2.5ml床体积/2.5L细胞培养物沉淀)。所述离子 交换柱用离子交换洗涤缓冲液(8M尿素、20mM Tris、0.05％吐 温20、25mM乙二胺、10mM β-巯基乙醇，pH8.5)洗涤直至 A280＜0.01。随后用10倍床体积含盐浓度递增(75mM、150mM和 500mM NaCl)的洗涤缓冲液将蛋白从柱上洗脱。收集1倍床体积 的馏分。该NS5A ChimigenTM蛋白主要在150mM NaCl馏分中洗脱 下来。轻微较低MW的污染蛋白则以75mM NaCl洗脱下来。收集 洗脱的蛋白馏分，并在4℃下立即对最终透析缓冲液(150mM NaCl、 10mM NaH2PO4、0.05％吐温20，pH8.5)进行透析。每次透析2L， 并更换5次透析缓冲液。将透析的蛋白通过已预湿的0.2μm滤器过 滤，以防止蛋白黏连于此。纯化的NS5A ChimigenTM蛋白储存于4 ℃。
为了进一步提纯NS3Chimigen3蛋白，将CM-Sepharose3 Fast Flow基质用8M尿素(去离子)、25mM NaH2PO4、5mM乙二胺、0.05％ (v/v)吐温20、10mM DTT，pH8.5加以平衡。利用线性梯度(0- 至0.6M)氯化钠在相同缓冲液中以1mL/min的流速洗脱蛋白。收 集含该蛋白的馏分(25-50mM NaCl)。
将通过Ni-NTA柱捕获的含多抗原Chimigen3蛋白的样品进一 步通过HiTrap3Q XL 1ml柱利用AKTAexplorer3100FPLC系统而 纯化。来自Ni-NTA亲和层析洗脱缓冲液中的蛋白通过Amicon Ultra-15(MWCO 30,000Da)浓缩，随后将该缓冲液换成缓冲液A (8M尿素、50mM碳酸钠、25mM乙二胺、1％吐温20，pH10)。 将蛋白加样到HiTrap QTM XL柱上，用50ml的缓冲液A平衡，流速60 mL/小时。用缓冲液A洗涤该柱直至洗脱A280＜0.01。蛋白通过线性 梯度洗脱(100％缓冲液A至100％缓冲液B)在20倍柱体积中洗 脱。HCV多抗原ChimigenTM蛋白在无逆流馏分(flow-through fraction)和在40％至50％缓冲液B之间洗脱的馏分中洗脱。
尺寸排阻层析
在3MPa压力下，利用AKTAexplorer 100FPLC系统(GE healthcare)将制备级Superdex3200填充于Tricon3柱10/300(1× 30cm，Pharmacia Biotech)中。用100ml 6M胍、50mM碳酸钠， pH10洗涤该柱。将0.5mL含Chimigen3多抗原蛋白的裂解物加样 到Superdex 200柱上。以30ml/小时的流速洗脱蛋白，并收集0.5mL 馏分。通过在280nm处的吸收监测蛋白洗脱。
疏水作用层析
将Phenyl-650C Toyopearl(0.5mL，TOSOH Corp.)装载到 Poly-prep柱(Bio-Rad)中。该柱用20mL HIC结合缓冲液(0.1M Tris、 2M氯化钠，pH8)进行平衡。将终浓度为2M的氯化钠加入到0.5mL 含Chimigen3多抗原蛋白的裂解物中，并用3.5mL HIC结合缓冲液 稀释该提取物。通过以18,000rpm(39,191xg，利用JA25.50转子， Beckman Coluter AvantiTM J-25离心机)离心20分钟而除去不溶性颗 粒。将上清液以30mL/小时的流速通过重力流加样到柱上。随后， 用10mL HIC结合缓冲液洗涤该柱，并用5mL HIC洗脱缓冲液(8M 尿素、50mM乙二胺、0.5％吐温20，pH10.5)洗脱结合于柱上的蛋 白。
纯化的Chimigen TM 蛋白的生化评估
按照制造商提供的方案，利用Micro BCA3蛋白分析试剂盒以 微板步骤评估蛋白浓度。
对于SDS-PAGE分析，等份的纯化的蛋白通过加入5X蛋白加 样缓冲液和20X还原剂而变性并煮沸5分钟。变性蛋白在12％SDS 聚丙烯酰胺凝胶上分离，并在由生产商提供的条件下用页蓝3对该 凝胶染色。
对于蛋白质印迹分析，通过12％SDS-PAGE分离蛋白并利用含 48mM Tris碱、39mM甘氨酸、20％甲醇和0.0375％SDS的缓冲液 将其电转染到Hybond3ECL3硝基纤维素膜上。该膜首先在室温下 在封闭缓冲液(1％脱脂乳、在PBS中的0.1％吐温20)中孵育1小 时。将用于检测的抗体在封闭缓冲液稀释至期望浓度。在室温下， 通过持续混合使该膜与稀释抗体一起孵育1小时。在与每种抗体孵 育后，在室温下用封闭缓冲液冲洗该膜3次，每次冲洗10min。通 过利用ECL3蛋白质印迹检测试剂盒的化学发光并暴露于Kodak Biomax XAR X射线膜而进行蛋白检测。
为了定性检测蛋白糖基化，使用由Molecular Probes开发的 Pro-QEmerald 300糖蛋白凝胶和Blot Stain试剂盒。该试剂盒可 以用于检测在凝胶或印迹上已通过SDS-PAGE分离的蛋白上的糖 类。该染料(stain)与大多数全蛋白染色兼容，并且如果需要，可 利用质谱进行分析。当染料与高碘酸氧化的糖基相互作用时，产生 亮绿色萤光信号，每条带均检测低至0.5ng的糖蛋白。该染料是高 碘酸和Schiff法的一种改良，并且制造商宣称可达50倍高的敏感 度水平。试剂盒中还包括CandyCaneTM分子量标准。该标准由改变 糖基化和非糖基化蛋白(分别用作阳性和阴性对照)而构成。蛋白 样品SDS-PAGE后，将凝胶在50％MeOH和5％醋酸中固定过夜。 在3％冰醋酸中洗涤凝胶2次(20分钟)，随后在氧化溶液高碘酸中 聚糖氧化30分钟。用3％冰醋酸洗涤凝胶3次(20分钟)，随后在 新鲜Pro-Q3 Emerald300染色液中暗处染色最长120分钟。成像前， 还需要在3％冰醋酸中暗处再洗涤两个20分钟。染料的刺激/发射最 大值是280/530nm，其中最佳可视度在约300nm。利用GeneGenius (Syngene)透照器和相应软件可视化并扫描凝胶。
Chimigen TM 疫苗的免疫学鉴定
人PBMC(外周血单核细胞)
PBMC通过白细胞分离制备物的Ficoll-Hypaque梯度离心而获 得，所述制备物来自具有HLA-A2单元型(Biological Specialty Corporation)的非HCV感染个体。在液氮中，PBMC以3×107细 胞/冷冻管储存于冻存培养基(50％Human AB serum，40％AIM V， 和10％DMSO)中。
单核细胞的分离并分化为未成熟DC(树突细胞)
在100mm组织培养板(BD Biosciences)上，将PBMC在37 ℃下在AIMV培养基(含2.5％配型血清)中培养1小时。培养后， 去除非贴壁细胞(非粘附细胞)，并用AIM V培养基洗涤该板。随 后用含IL-4和GM-CSF(每种1000IU/mL)的2mL AIM V/2.5％ 配型血清培养贴壁细胞。
HCV Chimigen TM 蛋白与未成熟DC的结合
未生熟DC是由在IL-4和GM-CSF存在的情况下培养单核细 胞24-72小时而获得的。培养后，收获细胞，用含2.5％配型血清的 AIMV培养基洗涤一次，随后用含0.1％(w/v)BSA的Dulbecco磷 酸缓冲盐(Invitrogen)(PBSB)洗涤2次。所述细胞用来评估 ChimigenTM蛋白的结合和内化。未成熟DC的表型通过标记多种细 胞表面标记物而评估，该细胞表面标记物包括CD64、CD32、CD16、 CD206、HLA-ABC、HLA-DR、CD14、CD11c、CD86、CD80、CD40、 CD83、CD19、CD3、和CD4。
对于结合分析，所有步骤均在4℃下进行，孵育后进行洗涤。 将细胞与不同浓度的ChimigenTM蛋白或相应的透析缓冲液一起在 PBSB中孵育60min(96孔V-底板，2×105细胞/孔，体积25微升)。 蛋白结合通过将细胞与生物素化抗小鼠IgG1或抗6xHis抗体在 PBSB中一起孵育20min，随后SA-PE-Cy520分钟而检测。将细胞 重悬于含2％低聚甲醛(PF)的PBSB中。在采用NS5A ChimigenTM 蛋白的实验中，通过联用兔抗NS5A多克隆抗体、羊抗兔IgG-生物 素、SA-PE-Cy5来检测结合。将细胞重悬于含2％低聚甲醛(PF)的 PBSB中，并通过荧光流式细胞仪(FFC)评估细胞结合。
利用结合抑制剂鉴定用于Chimigen TM 疫苗的DC受体
将未成熟DC与抗CD32mAb(IgG2b同种型)、抗CD206(IgG1 同种型)、或同种型对照小鼠IgG2b或IgG1mAbs一起在4℃下孵 育60分钟。随后，将所述细胞与ChimigenTM疫苗一起在PBSB中 4℃孵育60分钟。洗涤后，通过FFC分析，利用生物素化抗小鼠IgG1 mAb或生物素化抗-6xHis mAb以及随后的SA-PE-Cy5来检测与该 细胞的结合。
荧光流式细胞仪(FFC)分析
细胞通过装配有CellQuest Pro采集和分析软件(BD Biosciences)的FACSCalibur而获得。对活细胞群设定门，如通过 FFC和SSC散射谱确定的，并采集了≥20,000个事件。特异性阳性 细胞的百分比计算如下：(阳性细胞检测样品％-阳性细胞对照％)/ (100-对照阳性细胞％)×100。相对平均荧光强度(MFI)如下确 定：检测样品的MFI-对照样品的MFI。
抗原呈递分析(APA)
APA用来测定T细胞对由APC所呈递的抗原的免疫应答。所 述分析将功能性T细胞免疫应答以及抗原负载的成熟DC对诱导抗 原特异性T细胞增殖的能力加以量化。步骤包括将PBMC衍生的单 核细胞分化为未成熟DC、用抗原(ChimigenTM蛋白或TT)负载该 未成熟DC、将该未成熟DC分化为成熟DC以及随后将成熟的抗 原负载的DC与自体幼稚T细胞一起培养。对于活化和增殖分析， 培养7天后对T细胞进行分析。为了分析T细胞功能和特异性，将 T细胞用抗原负载的成熟DC再刺激两次，并评估IFN-γ、TNF-α、 粒酶B(grB)和穿孔素(pfn)的生成。T细胞对抗原的特异性用 特异性MHC I类四聚体或五聚体进行评估。
抗原负载的成熟DC的生成
如上所述生成未成熟DC并与抗原或缓冲液(对照)一起孵育 8小时。随后将该细胞与催熟剂poly IC(20μg/mL)、重组人(rh) IL-1β(10ng/mL)、rh TNF-α(10ng/mL)、rhIL-6(10ng/mL)、rh IFN- αA(1000U/mL)和rh IFN-γ(1000U/mL)一起培养16小时。 所述DC的成熟程度通过表型分析而评估。将细胞标记多种细胞表 面标记物，包括CD64、CD32、CD16、CD205、CD206、CD209、 HLA-ABC、HLA-DR、CD14、CD11c、CD86、CD80、CD83、CD40、 CD19、CD3、CD8和CD4。洗涤该成熟的抗原负载DC并将其与T 细胞一起培养。
人PBMC(外周血单核细胞)衍生的T细胞的分离
按照制造商的步骤，利用Dynal Biotech T细胞阴性选择试剂盒 (Invitrogen)通过阴性选择而从PBMC中分离T细胞。使用匹配 血清来代替BSA和FBS。通过多种细胞标记物的表型标记而评估 分离细胞的表型。T细胞(CD3+细胞)构成所分离细胞群的98％ 以上。该T细胞用CFSE标记(见下文)，或直接加入到含有DC 的细胞培养物中。
T细胞的CFSE标记
将新鲜分离的T细胞(1-5×107细胞)悬浮于500μl的PBSB 中并与500μl新鲜制备的10μg/ml的CFSE工作贮存液混合。在37 ℃下孵育10min后，用含血清培养基(AIM V/10％匹配血清)充 分洗涤细胞，以除去未结合的CFSE。T细胞的CFSE标记通过FFC 而确定。
人PBMC衍生的T细胞的培养
将T细胞与抗原负载的成熟DC以AIM V/2.5％匹配血清中的 1-20×104T细胞至1-5×104DC/孔的比例一起孵育。为了进行T细 胞活化和增殖APA实验，培养4天和7天后收获T细胞(见下文)。 对于T细胞功能和特异性APA实验，将T细胞培养7天，随后用 抗原负载的成熟DC再次刺激并再培养7天。随后将培养14天的T 细胞分为两组(细胞内细胞因子(ICC)板和四聚体板)，并用抗原 负载的DC进行第三次刺激。将1μg/mL布雷菲德菌素A(BD Biosciences)加入到ICC IFN-γ板的孔内，并将该细胞培养6小时。 IFN-γ、TNF-α、grB和pfn的表达如下文所列出的进行评估。刺激 后5-6天进行四聚体分析，如下文所述。
T细胞活化和增殖分析
为了活化/增殖APA，与抗原负载的DC一起培养4或7天后， 收获T细胞。评估该T细胞的CD69(早期活化标记物)表达和CFSE 强度(增殖程度)。用抗CD3-PE、抗CD3-PE-Cy5和抗CD69-APC 标记收获的细胞。利用缓冲液对照样品可鉴定未经过任何倍增的T 细胞群。在FL1通道中检测到标记有高度荧光的细胞群，并命名为 CFSEhi。经过一次分裂的细胞群具有CFSEhi细胞群的MFI的一半。 类似地，经过两次分裂的细胞群具有CFSEhi细胞群的MFI的约25％ (小于4倍)。所具有的CFSE荧光低于CFSEhi荧光的细胞命名为 CFSElo。某些细胞群具有接近背景FL1通道荧光，并且可以称为 CFSE-(CFSE阴性)。然而，为了此处所列出实验的目的，可认为 T细胞是CFSEhi(无细胞分裂)或CFSElo(至少一次细胞分裂)。
T细胞活化通过评估CD69的表达而定量。在某些实验中，通 过圈定高FSC和SSC强度CD3+T细胞而定量T母细胞。因此，与 细胞群中小(G0)的静息细胞相比，细胞群中母细胞的相对数量表 示为具有较大直径(FSChi)和较高细胞复杂度(SSChi)的细胞的 比例。
细胞内IFN-γ、TNF-α、grB和pfn的检测
利用标准ICC(细胞内细胞因子)方案(BD Biosciences)，定 量IFN-γ和TNF-α的生成和丝氨酸蛋白酶粒酶B(grB)[Lobe et al. (1986)Science 232：858-861]以及成孔蛋白穿孔素(pfn)[Hameed et al. (1992)Am.J.Pathol.140：1025-1030]的表达。简单的说，该过程包括 用特异性荧光染料轭合的mAbs标记所述细胞，用于检测CD3(抗 CD3-APC)和CD8(抗CD8-PE-Cy5)，然后进行固定和渗透。随 后将细胞样品分为两份，一份与抗IFN-γ-PE抗体和抗-grB-FITC抗 体一起孵育，而另一份与抗TNF-α-PE和抗穿孔素-FITC一起孵育。 利用BD FACSCalibur，平均每份样品可采集到20,000-100,000个细 胞。
四聚体和五聚体分析
将T细胞用抗CD8-PE-Cy5、抗CD4-APC和抗CD69-FITC抗 体以及下列PE轭合的iTagTM四聚体(Beckman Coulter)或五聚 体(ProImmune)中的一种进行标记： HCV NS5A(VLSDFKTWL；SEQ ID NO：3)HLA-A*0201， EBV(GLCTLVAML；SEQ ID NO：5)HLA-A*0201，HCV NS3peptide(CTNGVCWTV； SEQ ID NO：4)HLA-A*0201，HCV.NS3peptide(KLVALGINAV；SEQ ID NO：6)HLA- A*0201，以及一种阴性对照四聚体(多等位基因的)。利用 FACSCalibur可采集到约100,000个细胞。
通过共聚焦显微镜分析Chimigen TM 蛋白结合、内化和加工
利用共聚焦显微镜研究ChimigenTM蛋白被未成熟DC结合、内 化和加工的过程。这些研究中所使用的未成熟DC通过在GM-CSF 和IL-4存在的情况下，使贴壁的PBMC起源单核细胞在含2.5％供 体匹配血清的AIM V培养基中分化2天而得到。第2天，将未成 熟DC转移至腔室玻片，使用前再孵育一天。第3天，则选择为具 有适当细胞表面受体和形态的细胞之间的中间物。
为了研究ChimigenTM蛋白与DC表面的结合，将细胞用5Tg/mL ChimigenTM蛋白或缓冲液(仅作为阴性对照)在4℃下在PBSB中 孵育1小时。1小时后，用PBSB洗涤细胞并用生物素化的抗小鼠 IgG1抗体标记，随后用抗生蛋白链菌素AlexaFluor546标记。每一个 步骤之间均进行PBSB洗涤。标记并洗涤后，用4％低聚甲醛(在 PBSB中制备)将细胞在4℃下固定10min。随后用含4′，6-二脒基-2- 苯基吲哚、二氢氯化物(DAPI；Invitrogen)的SlowFadeGold抗淬 灭剂封片，并将盖玻片用指甲油密封于所述玻片上。
通过DC内化ChimigenTM蛋白(5Tg/mL)的研究可通过直接 将该细胞在37℃(7％CO2)含ChimigenTM蛋白的培养基中孵育， 或通过首先在PBSB中在4℃下标记表面受体、洗去未结合蛋白， 随后研究该受体结合的蛋白在37℃(7％CO2)AIM V/2.5％匹配血 清的培养基中随时间(0min、15min、60min和240min)的吸收。 用PBSB洗涤在37℃下孵育的细胞，随后用BD Biosciences Cytofix/CytopermTM溶液固定并渗透10分钟。随后用在BD BiosciencesPerm/WashTM溶液中的生物素抗小鼠IgG1对细胞洗涤并 标记(1小时)，接着用抗生蛋白链菌素AlexaFluor546标记。如有需 要，可用其他抗体共同标记。最后一次洗涤该细胞后，如上所述安 装玻片。
为了确定ChimigenTM蛋白被内吞，实施了脉冲追踪试验，用 ChimigenTM蛋白(5Tg/mL)在冰上冲击未成熟DC 30分钟。用PBSB 洗涤细胞，并在不含ChimigenTM蛋白的AIM V/2.5％匹配血清的培 养基中追踪，然后在37℃下(7％CO2)孵育15分钟。脉冲追踪的 细胞用PBSB洗涤、用4％低聚甲醛固定并用MHC II类抗体标记， 以仅标记质膜。为了确定如果ChimigenTM蛋白存在于内涵体中，则 随后用BD BiosciencesCytofix/CytopermTM溶液将质膜标记的细胞 固定并渗透10分钟。如上所述，在用BD Perm/WashTM洗涤后，利 用抗小鼠IgG1生物素/抗生蛋白链菌素检测ChimigenTM蛋白。
为了研究微胞饮作用，5mg/ml的FITC葡聚糖(MW 70,000， 阴离子，赖氨酸可固定的，Invitrogen)在含或不含ChimigenTM蛋 白(5Tg/mL)的AIMV/2.5％匹配血清的培养基中用作液相标记 物。
为了研究受体介导的胞吞作用，将20Tg/mL的Alexa Fluor488转铁蛋白轭合物(Invitrogen)用于含ChimigenTM蛋白(5 Tg/mL)的PBSB中。乳胞素(Sigma)既用作半胱氨酸蛋白酶抑制剂 又用作蛋白酶体抑制剂(终浓度5Tg/mL)。
在体内动物模型中免疫应答的评估
这些研究利用两种近亲实验室动物(小鼠和大鼠)和一种远亲 大动物(小猪)种属。特别地，采用BALB/c小鼠(6-8周大，来 自Charles River实验室)、Wistar大鼠(4-6周大，来自Charles River 实验室)和杂交小猪(4-6周大，来自 Prairie Swine Center，University of Saskatchewan)。所述研究确定 ChimigenTM蛋白的免疫应答和保护效力。
安全性评估
HCV ChimigenTM蛋白经皮下(s.c.)或皮内(i.d.)给予。下列 方案和剂量用于注射。动物经s.c.或i.d.接种4次，分别是第0天、 第14天、第28天和第42天，每两周一次。对于小鼠s.c.和i.d.注 射，采用0.1Tg、1ug或10Tg/小鼠。用于大鼠接种的剂量将为0.15 Tg、1.5Tg或15Tg/大鼠，而对于小猪则为0.2Tg、2Tg或20Tg/ 小猪。
接种前(第1天)以及每次注射后7天(第7、21、35、49天) 收集血液样品，通过ELISA技术用于分析特异抗体的量以及 IgG1/IgG2a比率。
最后一次接种后两周处死动物。通过接种后每周至少三次对动 物进行体检，而评估HCV ChimigenTM蛋白的安全谱。这包括体重 和不良事件观测。对于全身毒性，采用以固定间隔收集的血液样品 来监测血清化学物质的变化，包括天冬氨酸氨基转移酶(AST)和 丙氨酸氨基转移酶(ALT)水平。此外，实验结束时，将尸体剖检 时从脾、肝、肾、心、肺、肌肉和脑收集的组织在10％缓冲福尔马 林中固定并在石蜡中包埋，用于将来分析可能的病理学变化。周龄 匹配的动物用作对照。
对Chimigen TM 蛋白的免疫应答
预测ChimigenTM蛋白可诱导强烈的细胞和体液免疫应答。实施 动物实验以确定小猪体内的宿主对HCV ChimigenTM疫苗的免疫应 答。核心、NS5A、NS3和多抗原ChimigenTM蛋白用于这些研究。 在第一轮中，评估对HCV ChimigenTM蛋白的免疫应答。如上所述， 该蛋白经s.c.或i.d.给予。
小鼠或大鼠的脾细胞以及小猪的外周血单核细胞(PBMC)用 来确定在s.c.和i.d.途径给药后对HCV ChimigenTM蛋白的免疫应答 的质和量，如下文所述。这些实验允许我们确定哪种ChimigenTM 疫苗以及哪种给药途径将能够诱导最强烈的免疫应答。除了强烈的 体液应答之外，靶向性递送所述HCV ChimigenTM蛋白还能引起潜 在的Th1偏离的免疫应答。来自VIDO对HCV疫苗的研究已经证 明用DNA疫苗初始化并随后用蛋白加强可诱导强烈的和Th1/Th2 平衡的免疫应答[Yu et al.(2004)J.Gen.Virol.85：533-1543。
免疫应答的评估
i)抗体应答。通过ELISA来确定HCV抗原特异性抗体的存 在，以检测总IgG以及IgG1和IgG2a抗体水平。所述IgG水平表 明免疫应答的数量，而IgG1和IgG2a的相对水平则表明免疫应答 的性质(Th1或Th2)。这些实验利用已建立的方案而实施。
ii)淋巴细胞增殖测定。用HCV抗原在体外刺激小鼠或大鼠 的脾细胞、小猪的外周血单核细胞(PBMC)。增殖反应通过将[甲 基-3H]胸腺嘧啶整合入分裂细胞的DNA而测定。
iii)细胞因子ELISPOT测定。为了进一步确定免疫应答的性 质，按照我们已建立的方案用HCV抗原刺激后，在ELISPOT测定 中确定脾细胞(小鼠和大鼠)或PBMC(小猪)中分泌干扰素-γ和 白介素-4的细胞数量。
由HCV Chimigen TM 蛋白诱导的保护性抗病毒免疫
HCV具有非常窄的宿主范围，仅在人和黑猩猩体内复制。用 活HCV激发接种动物是不实际的，因为黑猩猩费用昂贵且供应受 限。然而，用编码HCV抗原的重组牛痘病毒接种后激发是一种替 代性模型，用于评估由HCV预防性疫苗在动物模型中诱导的保护 性能力。ChimigenTM蛋白，单独或作为组合物，用来免疫接种动物。 为了评估接种后诱导的保护性免疫，完成利用预定策略的计划免疫 接种后2周，通过编码相同HCV抗原的重组牛痘病毒作为相关 Chimigen3蛋白而腹膜内激发动物。激发剂量将为：小鼠1×107空 斑形成单位(PFU)、大鼠2×107PFU以及小猪1×109PFU。5天 后，处死动物并通过空斑测定按照已建立的方案确定病毒滴度。
鉴定最适合的用于HCV治疗性和预防性疫苗的候选物
治疗性疫苗基于HCV病毒的非结构蛋白(例如NS5A、NS3)， 而预防性疫苗则基于结构蛋白(例如E1、E2)以及非结构蛋白。 所述ChimigenTM疫苗中的一种或多种的组合物用于离体DC/T细胞 抗原呈递分析以及动物模型中，并评估免疫学结局。
目前正在研究用于治疗性和预防性用途的ChimigenTM疫苗的 免疫接种方案以及给药途径。通过测定抗体水平、淋巴细胞增殖以 及细胞因子生成而评估免疫应答。由预防性HCV ChimigenTM疫苗 候选物诱导的保护性抗病毒免疫还可在激发试验中被评估，如上文 所述。
实施例2.NS5A Chimigen3蛋白的结果
NS5A Chimigen TM 蛋白已被提纯并鉴定
纯化的NS5A ChimigenTM蛋白通过SDS-8％PAGE迁移为一条 约105kDA的带，尽管该蛋白的预测分子量是约81kDA。观察到 的分子量与预测的分子量之间的差异可能部分由于该蛋白中的高 脯氨酸含量(～11％)、糖基化以及其他可能的翻译后修饰而引起。 该纯化蛋白用抗小鼠IgG1Fc、6xHis和NS5A的抗体进行检测。对 该纯化蛋白(从凝胶上切下的条带)进行MS/MS ID(质谱)分析， 得到明显的NS5A、小鼠IgG1重链以及HCV多蛋白点，表明其的 确是NS5A ChimigenTM蛋白。将纯化的NS5A ChimigenTM蛋白在8％ SDS凝胶上分离，并利用Pro-QEmerald 300糖蛋白凝胶以及Blot Stain试剂盒染色糖基化，并用UV光照进行检测。该操作表明所 述纯化的NS5A ChimigenTM蛋白的糖基化。
NS5A Chimigen TM 蛋白结合于未成熟DC
对NS5A ChimigenTM蛋白结合于未成熟DC的能力加以检测。 在不同浓度的NS5A ChimigenTM蛋白存在或缺失的情况下，将该细 胞在4℃下孵育1小时。通过生物素化的抗小鼠IgG1mAb和 SA-PE-Cy5检测结合的疫苗。结合该疫苗的细胞百分比(阳性细胞 ％)以及结合蛋白的相对量(MFI)通过流式细胞仪确定(图15)。 当NS5A ChimigenTM蛋白为4-50μg/mL时，大多数DC结合均为阳 性，且结合蛋白的量存在剂量依赖性递增(图15和16)。相比于 50μg/mL，20μg/mL时蛋白的结合并不是更大，表明与未成熟DC 的结合是可饱和的。观察到的高结合MFI提示NS5A ChimigenTM 蛋白与未成熟DC的结合非常有效且处于高水平。4℃时的结合是可 饱和的，表明该过程是受体介导的。该结合也非常迅速，因为结合 的蛋白在4℃孵育5分钟后即可检测到，其中结合MFI约为孵育1 小时后观察到该值的一半(数据未示出)。
NS5A Chimigen TM 蛋白结合于未成熟DC上的特异性受体
通过其所包含的Fc片段，推测所述NS5A ChimigenTM蛋白通 过其TBD区结合于未成熟DC上的CD32(FcγR II)。此外，由于 其甘露糖糖基化，推测该NS5A ChimigenTM蛋白还结合于C型凝 集素受体如CD206(MMR)。为了确定所述疫苗候选物的结合特异 性，在阻断性抗CD32和/或抗CD206mAbs存在的情况下，将未成 熟DC与NS5A ChimigenTM蛋白一起孵育。
将未成熟DC与缓冲液对照、或5μg/ml同种型对照mAb、抗 CD32mAb、抗CD206mAb、或者抗CD32mAb和抗CD206mAb 在4℃下一起孵育1小时，随后在4℃下与NS5A ChimigenTM蛋白 一起孵育1小时。结合的NS5A ChimigenTM蛋白用生物素化的抗 6xHis mAb随后是SA-PE-Cy5进行检测。相比于缓冲液对照，同种 型对照mAb(鼠IgG1和IgG2b)并未抑制结合。然而，相比于缓 冲液对照，抗CD32和抗CD206分别抑制结合达约60％和40％。
加入两种mAb进一步抑制NS5A ChimigenTM蛋白结合，导致 80％抑制。这些数据表明CD32和CD206两者在结合NS5A ChimigenTM蛋白过程中的作用。通过共聚焦显微镜，相比于仅用缓 冲液，在4℃下与NS5A ChimigenTM蛋白一起孵育的细胞表面上表 现出强烈的标记，表明ChimigenTM蛋白结合于细胞表面。
通过未成熟DC的NS5A ChimigenTM蛋白内化在37℃下加以评 估。与ChimigenTM蛋白一起于37℃孵育1小时的未成熟DC表现 为点状标记模式，常位于核附近，提示ChimigenTM蛋白被内化且(即 使有)几乎非常小的表面标记。
DC能够通过几种途径吸收抗原，包括吞噬、巨胞饮、网格蛋 白介导的胞吞作用以及非网格蛋白/细胞膜穴样凹陷胞吞作用。已报 道巨胞饮是未成熟DC内的一个组成性过程(Trombetta and Mellman 2005)。未成熟DC通过巨胞饮在37℃下对内化NS5A ChimigenTM 蛋白的能力，利用巨胞饮标记物FITC葡聚糖加以评估 [Hewlett et al.(1994)J.Cell Biology 124：689-703]。将未成熟DC与 ChimigenTM蛋白和FITC葡聚糖一起孵育15分钟和60分钟后，观 察到囊泡样结构，其包含蛋白和FITC葡聚糖，表明在37℃所述 ChimigenTM蛋白可通过巨胞饮吸收。还应注意到，FITC葡聚糖可 结合于巨噬细胞甘露糖受体(CD206)，因此通过受体介导的胞吞作 用，可以出现一些包含ChimigenTM蛋白和FITC葡聚糖的内涵体
受体介导的胞吞作用在ChimigenTM蛋白吸收中的作通过脉冲- 追踪实验而研究。未成熟DC用荧光标记的ChimigenTM蛋白于4℃ 下进行冲击、洗涤并在37℃下孵育15分钟。将该细胞固定、渗透 并用抗体标记，以检测ChimigenTM蛋白以及转铁蛋白受体。所述转 铁蛋白受体通过受体介导的胞吞作用而吸收，随后从早期内涵体循 环回质膜。在4℃下，所述NS5A ChimigenTM蛋白结合于该细胞表 面，而转铁蛋白受体则主要存在于细胞内部。变至37℃后，观察到 形成内涵体，其中一部分内涵体包含ChimigenTM蛋白和转铁蛋白受 体两者。在实验开始时(4℃)，大量细胞内已存在的转铁蛋白受体 很可能对多个包含转铁蛋白的内涵体(与ChimigenTM蛋白并非共定 位)负责。
利用共聚焦显微镜，通过与抗转铁蛋白受体的抗体共同标记， 还可评估NS5A ChimigenTM蛋白通过DC的吸收及其与转铁蛋白的 共定位。转铁蛋白结合于转铁蛋白受体，并已知通过受体介导的过 程而内化。该分析表明两种分子的共定位，从而表明NS5A ChimigenTM蛋白通过受体介导的胞吞作用而被吸收。
在尝试增加ChimigenTM蛋白与转铁蛋白受体信号之间的重叠 时，将细胞与轭合于人转铁蛋白的Alexa Fluor 488一起孵育，以便 间接检测仅最近内吞的转铁蛋白受体而非细胞内全部转铁蛋白受 体。在4℃下，将未成熟DC用ChimigenTM蛋白与轭合于转铁蛋白 的Alexa Fluor 488混合物一起进行表面标记。几乎未观察到Alexa Fluor 488转铁蛋白阳性内涵体，但当存在时，则其包含NS5A ChimigenTM蛋白，表明ChimigenTM蛋白确实是通过受体介导的胞吞 作用而吸收的。这些结果表明Chimigen3蛋白主要通过受体介导的 胞吞作用而被内化。
研究了NS5A ChimigenTM蛋白通过未成熟DC的加工过程。因 为疫苗(特别是)被设计成治疗慢性感染，需要通过MHC I类受 体CD8+细胞的活化以及抗原交叉呈递。已经提出了两种不同的加 工途径用于抗原交叉呈递[Lizée et al.(2005)Trends Immunol.26(3)： 141-149]。第一种途径涉及通过吞噬吸收的抗原的加工，而第二种 途径则涉及由其他胞吞作用途径(如受体介导的胞吞作用)吸收的 抗原的加工。在第二种途径中，蛋白吸收入早期内涵体并靶向于晚 期内涵体，其中它们通过组织蛋白酶降解并装载到MHC I类受体 上。因此，进行实验，以确定NS5A ChimigenTM蛋白能否在晚期内 涵体中检测到，并确定其是否与这样的结构中的MHC I类受体共 定位。对已经在4℃下用NS5A ChimigenTM蛋白冲击并随后在37℃ 下追踪的细胞进行共标记，以检测ChimigenTM蛋白和LAMP1(晚 期内涵体/溶酶体的标记物)两者。第4小时和24小时，观察到NS5A Chimigen蛋白与LAMP1之间的重叠，表明该NS5A Chimigen蛋白 处于晚期内涵体/溶酶体内。在另一个共标记实验中，发现所述NS5A ChimigenTM蛋白存在于与MHC I类分子相似的结构中，从而表明 该ChimigenTM蛋白通过MHC I类分子加工而用于呈递。
相信蛋白酶体与抗原破坏有关，用于通过吞噬溶酶体途径的交 叉呈递。用细胞可透过的蛋白酶体抑制剂乳胞素(以5μg/mL的浓 度)处理细胞。最近已表明乳胞素在抑制溶酶体蛋白酶CathepsinA 方面不如之前所认为的特异[Kozlowski et al.(2001)Tumour Biol. 22(4)：211-215]。如果NS5A ChimigenTM蛋白的加工如在吞噬溶酶体 途径中一样涉及到蛋白酶体，则将能预料到不完全降解的肽在胞质 溶胶中部分累积，且这样的累积预期不再晚期内涵体中加工[上文， Lizée et al.(2005)]。4小时追踪后，用5μg/mL的乳胞素处理的脉冲 细胞(脉冲和追踪)表现为较大数量含有NS5A ChimigenTM蛋白的 内涵体。此外，与那些对照细胞的内涵体相比，所述内涵体似乎包 含更多的该蛋白。用抗鼠IgG1的单克隆抗体未检测到细胞质NS5A ChimigenTM蛋白的增加。这些数据再次表明受体介导的胞吞作用而 非吞噬溶酶体途径是Chimigen3蛋白内化于DC内的机制。
通过DC的NS5A Chimigen TM 蛋白呈递导致CD8+和CD4+T细 胞活化和增殖两者
对NS5A ChimigenTM蛋白的功能性免疫应答通过离体APA加 以评估。该分析可用来在用抗原负载的DC刺激T细胞后测定功能 性T细胞免疫应答的多个参数。该分析包括首先通过加入IL-4和 GM-CSF由PBMC起源的单核细胞生成未成熟DC。随后将该未成 熟DC与疫苗候选物、载体缓冲液(阴性对照)或破伤风类毒素(TT) (阳性对照)一起孵育。随后用细胞因子处理所述DC以促进成熟、 洗涤并与自体幼稚T细胞一起孵育。为了测定细胞因子的生成、细 胞毒性颗粒组分的存在、以及NS5A特异性T细胞的生成，再刺激 所述T细胞两次以允许ChimigenTM蛋白特异性T细胞的扩增。活 化通过测定早期T细胞活化标记物CD69而评估，而增殖则通过追 踪CFSE标记的T细胞荧光而测定。与抗原负载的DC一起培养4 天和7天后，评估CD69表达和CFSE荧光两者。
初步分析已经表明培养液中DC和T细胞的浓度是确定T细胞 免疫应答的重要参数。因此，设计APA，以便评估6种不同的T细 胞：DC的比率。采用两组DC浓度，高浓度为5×104DC/孔，而低 浓度为1×104DC/孔。培养48小时后，将所述未成熟DC与缓冲液 (阴性对照)、NS5A ChimigenTM蛋白(5AC，5μg/mL)的两种不 同制备物、TT(阳性对照)或PBS一起孵育。随后将该DC培养8 小时，并通过加入polyIC、IL-1、IL-6、TNF-α、IFN-α和IFN-γ 而催熟。过夜(16小时)培养后，洗涤来自PBS对照组的DC并 检测多种成熟DC标记物的表达。高浓度和低浓度DC均表达高水 平HLA-ABC(MHC I类)、HLA-DR(MHC II类)、CD86、CD80、 CD83(图17)。通常，所述高浓度DC表达轻微较高水平的DC成 熟标记物。
通过阴性选择步骤分离自体T细胞，并利用CFSE标记来确定 细胞分裂。向96孔板中100μl/孔的DC中，加入100μl/孔的T细 胞，每孔浓度为：20×104、5×104或2×104。对于高DC浓度孔(5 ×104DC/孔)，每孔中T细胞/DC 的比例组合为： 20×104∶5×104(4∶1)，5×104∶5×104(1∶1)，以及2×104∶5×104(0.4∶1)。 对于低DC浓度孔(1×104DC/孔)，每孔中T细胞/DC的比例组合 为：20×104∶1×104(20∶1)，5×104∶1×104(5∶1)，以及2×104∶1×104(2∶ 1)。在无任何外源性细胞因子的情况下，将T细胞加入到DC中。 作为对照，培养第3天时，将PHA(1μg/mL)加入到T细胞中， 其中所述T细胞加载到PBS处理的DC组上。
培养4天后，收获一半细胞培养物(100μl)，用于活化和增殖 分析。将100μl新鲜AIM V/2.5％匹配的血清加入到剩余的一半细 胞培养物中，再培养细胞3天。培养4天后T细胞上CD69的表达 示于图18A-C中。图18A示出了对于不同T细胞∶DC的比率的表 达CD69的CD3+细胞的百分比。无论T细胞∶DC的比率如何，大 多数PHA处理的细胞均表达CD69。与高DC浓度一起培养时，也 在T细胞中检测到了CD69；但与低DC浓度一起培养时，则在T 细胞中几乎未检测到CD69。相比于缓冲液对照，抗原刺激的T细 胞表达较高水平的CD69。第4天时，NS5A ChimigenTM蛋白负载 的DC诱导的表达CD69的CD8+T细胞百分比高于CD4+T细胞(图 18B和C)。相比于回忆抗原TT，CD8+T细胞中表达CD69的百分 比等于或大于Chimigen3蛋白的百分比。这表明NS5A ChimigenTM 蛋白是幼稚CD8+T细胞的强活化剂。
培养4天后，经过至少一次分裂的细胞(CFSElo)的百分比示 于图19A-C中。用PHA处理24小时的T细胞较早开始分裂(图 19A)。用TT负载的DC处理的CD8+和CD4+T细胞在培养4天后 出现可检测性增殖，但仅在高DC浓度比较明显(图19B和C)。 第4天时，在ChimigenTM蛋白处理组几乎检测不到T细胞增殖。 因此，第4天时，幼稚T细胞通过NS5A ChimigenTM蛋白负载的 DC活化(如通过CD69表达而证明的)，但这些T细胞尚未分裂或 其分裂尚不能通过所采用的分析检测到。
培养7天后，收获细胞用于活化和增殖的分析。培养7天后， T细胞上CD69的表达示于图20A-C中。图20A示出了对于不同T 细胞∶DC的比率的表达CD69的CD3+细胞的百分比。用PHA处理 的T细胞中CD69表达出现了显著增加。然而，表达CD69的细胞 百分比相比第4天时观察到的值已经有所下降，与预期的PHA反 应一致：CD69快速诱导其后随时间出现表达降低。对于Chimigen3 蛋白刺激的T细胞，在与高浓度DC一起培养的T细胞中，以高于 5％的水平检测到CD69，但在与低浓度DC一起培养的T细胞中， 则几乎检测不到。因此，低DC浓度(1×104DC/孔)不足以用于抗 原特异性T细胞活化。相比于缓冲液对照，对于5×104T细胞和2 ×104T细胞∶5×104DC的比率，较高数量的Chimigen3蛋白刺激的 T细胞表达CD69。第7天时，回忆TT应答的CD69表达有所降低。 第7天时，与d4T细胞相反，NS5A ChimigenTM蛋白负载的DC诱 导的表达CD69的CD4+T细胞百分比高于CD8+T细胞(图20B和 C)。相比于缓冲液或回忆抗原TT，对于高DC浓度(5×104/孔)， CD8+和CD4+T细胞中表达CD69的百分比等于或大于表达 ChimigenTM蛋白百分比。因此，NS5A ChimigenTM首先活化幼稚 CD8+T细胞，随后活化CD4+T细胞。
培养7天后，经过至少一次分裂的细胞(CFSElo)的百分比示 于图21A-C中。结果表明基本上每个用PHA处理的T细胞均已经 分裂(图21A)。在培养7天后，用Chimigen3蛋白或TT负载的 DC导致显著的T细胞增殖，但这在高DC浓度时最明显。由于抗 原负载，仅高DC浓度孔诱导显著的CD8+T细胞增殖(图21B)。 然而，用抗原负载的低浓度DC足以诱导CD4+T细胞增殖(图21C)。 特别地，在高DC浓度下，Chimigen3蛋白负载的DC诱导T细胞 增殖至可与TT负载的DC相比的水平。
T细胞增殖的另一个衡量标准(测量)是T细胞群中T母细胞 的相对比例。T母细胞定义为那些具有较高FSC(前光散射，forward light scatter)和SSC(侧光散射)的细胞，而且淋巴细胞门中的休 止淋巴细胞定义为通过流式细胞仪所评估的。培养物中T母细胞的 百分比示于图22中。这些结果与如图21A中示出的经历分裂的细 胞百分比非常好地相关联。因此，评估细胞群中T母细胞可作为 CFSE分析的替代方案。总体来说，这些结果表明NS5A ChimigenTM 蛋白对于诱导初始T细胞应答非常有效，如通过T细胞活化和增殖 所测定的。
通过DC的NS5A Chimigen TM 蛋白呈递引起产生IFN-γ和TNF- α的CD8+和CD4+T细胞的生成
通过三次刺激离体APA来评估针对NS5A ChimigenTM疫苗的 功能性免疫应答。将4×104DC/孔(高浓度)或2×104DC/孔(低 浓度)的未成熟DC用对照载体缓冲液、PBS、TT(阳性对照)、或 NS5A ChimigenTM蛋白负载。随后催熟DC并评估其表型。DC的成 熟利用MHC I类、MHC II类、CD86、CD80和CD83的高水平表 达而确认(图23)。将自体T细胞与成熟的抗原负载DC以20×104T 细胞/孔∶4×104DC/孔或者4×104T细胞/孔∶2×104DC/孔的比例 一起孵育。刺激该T细胞三次，并在第三次刺激后6小时通过检测 Th1细胞因子IFN-γ和TNF-α的细胞内水平来评估T细胞功能。此 外，还评估了T母细胞的含量。
图24示出了高和低DC浓度下的T母细胞百分比。相比于5∶1 的比率，2∶1的T细胞∶DC的比率导致较低的背景(缓冲液)T细 胞增殖反应。由于使用2∶1的比率，在缓冲液与抗原负载的T细胞 增殖反应之间存在较显著的差异。
以5∶1和2∶1的T细胞∶DC的比率来测定IFN-γ应答。数据以 该组每一个孔的应答以及三个孔的平均值和标准差来表示(图25)。 T细胞IFN-γ应答的比较在5∶1和2∶1的T细胞∶DC的比率之间显示 出显著差异。在较高DC浓度的情况下，相比于对照缓冲液，并无 Chimigen3诱导的IFN-γ应答的证据。然而，在较低DC浓度的情 况下，与对照缓冲液负载的DC一起培养的T细胞极少生成IFN-γ， 而与Chimigen3蛋白负载的DC一起培养的T细胞则有较高百分比 生成IFN-γ。相比于2.5μg/mL的NS5A ChimigenTM蛋白，在已用 由5μg/mL NS5A ChimigenTM蛋白负载的DC刺激的T细胞中，存 在较多产生IFN-γ的细胞。还测定了CD8+和CD4+细胞群中表达 IFN-γ的T细胞百分比(图26和27)。由于Chimigen3-DC的刺激， 低DC浓度组表现出高百分比的表达IFN-γ的CD8+T细胞。相比于 TT负载的DC，对于用Chimigen3蛋白负载的DC刺激的T细胞， 表达IFN-γ的CD8+T细胞的百分比较高(图26)。类似地，相比于 用对照缓冲液刺激，一旦用NS5A ChimigenTM蛋白刺激，还存在高 百分比表达IFN-γ的CD4+T细胞(图27)。相比于用TT负载的DC 刺激，对于用Chimigen3蛋白负载的DC刺激的T细胞表达IFN-K 的CD4+T细胞的百分比是可比较的(图27)。这些结果表明NS5A ChimigenTM蛋白在CD8+和CD4+T细胞群两者中诱导显著的IFN-γ 应答并暗示该分子在MHC I类和II类通路两者中均由所述DC加 工。
图28示出了用抗原负载的成熟DC刺激6小时而得到的产生 TNF-α的T细胞百分比。这些结果类似于IFN-γ的结果。尽管由于 通过高DC浓度(5∶1的比率)的T细胞抗原刺激导致产生TNF-α 的细胞百分比增加，但用低DC浓度(2∶1的比率)刺激存在更大 的差异。相比于2.5μg/mL蛋白，当用5μg/mL的Chimigen3蛋白 负载的DC刺激时，较高百分比的T细胞产生TNF-α。相比于TT， 对于NS5A ChimigenTM蛋白，TNF-α应答较高。利用TT负载的 DC的刺激导致表达TNF-α的CD4+T细胞的百分比高于CD8+T细 胞(图29)。然而，NS5A ChimigenTM蛋白负载的DC在CD8+和 CD4+T细胞群两者中诱导类似程度的TNF-α生成(图29)。
通过DC的NS5A Chimigen TM 抗原呈递在第三次刺激后6小时 导致表达grB和pfn+的CD8+T细胞和CD4+T细胞的生成
还通过离体抗原呈递分析评估了T细胞产生细胞毒性颗粒蛋 白grB和pfn的能力。将未成熟DC用对照缓冲液、TT(阳性对照) 或不同浓度的NS5A ChimigenTM蛋白负载，并且一旦成熟即与自体 T细胞一起孵育。grB表达可以以不同方式进行检测，包括酶分析 和利用特异性抗体[Ewen et al.(2003)J.Immunol.Meth.276：89-101； Spaeny-Dekking et al(1998)J.Immunol.160：3610；Hamann et al. (1997)J.Exp.Med.186：1407]。通过细胞内染色，分别利用抗grB和 抗pfn mAb来检测GrB和pfn表达。图30示出了用抗原负载的成 熟DC刺激三次后，表达grB和pfn的CD8+T细胞的百分比。相比 于无抗原对照，NS5A ChimigenTM蛋白负载的DC诱导CD8+T细胞 中grB和pfn表达增加。这些结果表明NS5A ChimigenTM蛋白诱导 grB和pfn在CD8+T细胞中表达，且这暗示该蛋白在I类通路中由 DC加工，以有效的呈递至T细胞，这引起其从幼稚CD8+T细胞分 化为细胞毒性T淋巴细胞(CTL)。
通过成熟DC的NS5A Chimigen TM 抗原呈递导致CD8+和 CD4+T细胞的产生和持续活化
在APA中，用抗原负载的DC刺激T细胞三次。第三次刺激 后培养6天，收获T细胞并通过FFC研究母细胞的百分比，其作为 增殖和活化标记物CD69表达的一个量度。此外，作为一种估计从 培养物中回收的T细胞绝对数量的方法(means)，还根据FSC和 SSC流式细胞仪分析确定落在淋巴细胞门(R1门)内的被圈定细胞的 数量。
相比于缓冲液对照，在从TT和ChimigenTM蛋白刺激的细胞中 回收T细胞方面存在显著差异(图31)。相比于Chimigen3蛋白刺 激的细胞，TT刺激的细胞获得较高的T细胞回收率。然而，所述 TT应答是一种回忆应答，因此预计与TT发生特异性反应的初始T 细胞群将高于特异于NS5A的初始幼稚T细胞群的该值。特别地， 根据对母细胞群的评估，实际上NS5A Chimigen3蛋白培养物中的 母细胞/增殖细胞的百分比高于所述TT培养物。在缓冲液对照培养 物中几乎不存在母细胞/增殖细胞。如通过CD69表达而评估的，活 化的CD8+和CD4+T细胞群的百分比示于图32中。相比于缓冲液 对照，用Chimigen3蛋白负载的DC刺激的T细胞中存在较高百分 比的表达CD69的CD4+和CD8+T细胞两者。这些结果表明用 Chimigen3蛋白刺激引起显著的T细胞活化和增殖，即在第三次刺 激后6天(T细胞培养的第20天)依然很明显。因此，该Chimigen3 蛋白在CD8+和CD4+T细胞的活化和扩增中是非常有效的。
通过成熟DC的NS5A Chimigen TM 蛋白呈递引起NS5A特异性 CD8+T细胞的产生
为了评估免疫应答对NS5A ChimigenTM蛋白的抗原特异性，对 HLA-A2情形中特异于免疫显性NS5A表位的T细胞百分比进行定 量。该百分比通过用轭合于PE的NS5A肽/HLA-A2五聚体标记T 细胞而确定。在APA中，幼稚T细胞通过用不同浓度的NS5A ChimigenTM蛋白负载的DC刺激三次，并与无抗原(缓冲液)负载 的各个对照DC进行比较。第三次刺激后6天，收获T细胞，并通 过四聚体标记和FFC检测NS5A特异性T细胞或EBV特异性T细 胞(对照)。
阴性四聚体标记(阴性对照)和EBV四聚体标记(阳性对照) 的CD8+和CD4+T细胞的百分比示于图33中。在CD8+T细胞群中， 三个检测孔之一是EBV四聚体标记(阳性四聚体)阳性。由于评 估的T细胞来自缓冲液对照处理孔，将预料到EBV四聚体标记的T 细胞的数目会相对低。APA后，标记有NS5A五聚体的CD8+T细 胞的百分比示于图34中。用NS5A ChimigenTM蛋白负载DC导致 生成具有对NS5A表位VLSDFKTWL(SEQ ID NO：3)特异性的T细胞。 在两个高DC浓度孔和三个低DC浓度孔中，具有该特异性的 CD8+T细胞的显著扩增比较明显。因此，该NS5A Chimigen3蛋白 能够诱导生成对这种NS5A免疫显性表位特异的T细胞，并且可能 存在对其他NS5A表位具有特异性的T细胞。
实施例3.NS3Chimigen3蛋白的结果
NS3Chimigen TM 蛋白已被提纯并鉴定
Sf9细胞中表达的NS3ChimigenTM蛋白通过Ni-NTA亲和层析 以及随后的阴离子交换层析而纯化。纯化的样品利用 10％SDS-PAGE凝胶进行分析，电泳后，将凝胶转移至硝基纤维素 用于蛋白质印迹。该SDS-PAGE凝胶用页蓝染色，并用特异于NS3 ChimigenTM蛋白不同组分的抗体进行蛋白质印迹。纯化的蛋白显示 为约110KDa和120KDa的双联体。两种组分(species)均通过抗 N末端(抗6xHis)、TBD(抗Fc)和NS3(多克隆抗NS3)的抗 体进行检测，结果表明该纯化的蛋白是完整的。
利用Pro-QR Emerald 300糖蛋白凝胶以及Blot Stain试剂盒， 对纯化的NS3ChimigenTM蛋白的糖基化进行定量估计。将纯化的蛋 白在8％SDS聚丙烯酰胺凝胶上电泳后，利用制造商的方案对凝胶 进行染色并在紫外光照下扫描。由于纯化的蛋白是双联体，推测分 子量差异是由于糖基化的不同水平。
NS3Chimigen TM 蛋白结合于未成熟DC
对NS3ChimigenTM蛋白结合于未成熟DC的能力加以检测。在 不同浓度NS3ChimigenTM蛋白存在或缺失的情况下，将该细胞在4 ℃下孵育1小时。通过生物素化的抗小鼠IgG1mAb和SA-PE-Cy5 检测结合的蛋白。结合该Chimigen3蛋白的细胞百分比(阳性细胞 ％)以及结合蛋白的相对量(MFI)通过FFC来确定。在NS3 ChimigenTM蛋白为4-55μg/mL的情况下，大多数DC结合均为阳性， 且结合蛋白的量存在剂量依赖性递增(图35和36)。相比于55 μg/mL，22μg/mL时蛋白的结合并未表现出更大，表明与未成熟DC 的结合是可饱和的。观察到的高结合MFI表明NS3ChimigenTM蛋 白与未成熟DC的结合非常有效且处于高水平。4℃下的结合是可饱 和的，表明该过程是受体介导的。该结合也非常迅速，因为结合的 蛋白在4℃下孵育5分钟后即可检测到，其中结合MFI约为孵育60 min后观察到的值的一半(数据未示出)。
NS3Chimigen TM 蛋白结合于未成熟DC上的特异性受体
由于存在Fc片段，推测NS3ChimigenTM蛋白通过其TBD区而 结合于未成熟DC上的CD32(FcγR II)。此外，由于其甘露糖糖基 化，推测NS3ChimigenTM蛋白结合于C型凝集素受体如CD206 (MMR)。为了确定所述蛋白的结合特异性，在阻断性抗CD32和/ 或抗CD206mAb存在的情况下，将未成熟DC与NS3ChimigenTM 蛋白一起孵育。
将未成熟DC与缓冲液对照或5μg/mL的同种型对照mAb、抗 CD32mAb、抗CD206mAb或者抗CD32mAb和抗CD206mAb两 者在4℃下一起孵育1小时，随后与NS3ChimigenTM蛋白在4℃下 一起孵育1小时。结合的NS3ChimigenTM蛋白用生物素化的抗 6xHis mAb随后是SA-PE-Cy5进行检测。相比于缓冲液对照，同种 型对照mAb(鼠IgG1和IgG2b)并未抑制结合。然而，相比于缓 冲液对照，抗CD32和抗CD206分别抑制结合约70％和60％(图 36)。加入两种阻断性mAb则进一步抑制NS3ChimigenTM蛋白结合， 产生90％抑制(图36)。因此，这些数据表明CD32和CD206两者 在NS3ChimigenTM蛋白结合于未成熟DC过程中的作用。
通过共聚焦显微镜使NS3ChimigenTM蛋白的结合可视化。将未 成熟DC与NS3ChimigenTM蛋白在4℃下一起孵育。相比于仅用缓 冲液对照，该细胞表面上的强烈标记表明ChimigenTM蛋白结合于细 胞表面，可能结合于受体。
为了研究内化作用，将未成熟DC与NS3ChimigenTM蛋白在 37℃下一起孵育1小时。所述细胞几乎未表现出任何表面标记(质 膜轮廓)，但反而表现为点状标记模式，常位于核附近，表明 ChimigenTM蛋白被内化。
通过DC的NS3Chimigen TM 蛋白呈递导致CD8+和CD4+T细 胞两者活化和增殖
对NS3ChimigenTM蛋白的功能性免疫应答通过离体抗原呈递 分析(APA)加以评估。该分析可用来在用抗原负载的DC刺激T 细胞后测定功能性T细胞免疫应答的多个参数。该分析包括首先通 过加入IL-4和GM-CSF从PBMC起源的单核细胞生成未成熟DC。 随后将该未成熟DC与疫苗候选物、载体缓冲液(阴性对照)或TT (阳性对照)一起孵育。随后用细胞因子处理DC以促进成熟、洗 涤并与自体幼稚T细胞一起孵育。为了测定细胞因子的生成、细胞 毒性颗粒组分的存在、以及NS3特异性T细胞的生成，再刺激所述 T细胞两次，以允许ChimigenTM蛋白特异性T细胞的扩增。然而， 预计单次刺激也能启动从幼稚T细胞群的扩增。活化通过测定早期 T细胞活化标记物CD69而评估，而增殖则通过追踪CFSE标记的T 细胞荧光而测定。与抗原负载的DC一起培养4天和7天后，评估 CD69表达和CFSE荧光两者。
初步分析已经表明培养液中DC和T细胞的浓度是确定T细胞 免疫应答的重要参数。因此，设计APA使得评估6种不同的T细 胞∶DC浓度。采用两组DC浓度，高浓度为5×104DC/孔，而低浓 度为1×104DC/孔。培养48小时后，将未成熟DC与缓冲液(阴性 对照)、NS3ChimigenTM蛋白(3C，5μg/mL)、TT(阳性对照)、 或PBS一起孵育。随后将该DC培养8小时，并通过加入polyIC、 IL-1、IL-6、TNF-α、IFN-a和IFN-γ而催熟。过夜(16小时)培 养后，洗涤来自PBS对照组的DC并检测多种成熟DC标记物的表 达。高浓度和低浓度DC均表达高水平HLA-ABC(MHC I类)、 HLA-DR(MHC II类)、CD86、CD80和CD83。
通过阴性选择步骤来分离自体T细胞，并利用CFSE标记用于 确定细胞分裂。向96孔板中100μl/孔的DC中，加入100μl/孔的T 细胞，每孔浓度为：20×104、5×104或2×104。对于高DC浓度孔 (5×104DC/孔)，每孔中T细胞/DC的比例组合为： 20×104∶5×104(4∶1)，5×104∶5×104(1∶1)，以及2×104∶5×104(0.4∶1)。 对于低DC浓度孔(5×104DC/孔)，每孔中T细胞/DC的比例组合 为：20×104∶1×104(20∶1)，5×104∶1×104(5∶1)，以及2×104∶1×104 (2∶1)。在无任何外源性细胞因子的情况下，将T细胞加入到DC 中。作为对照，培养第3天时，将PHA(1μg/mL)加入到T细胞 中，其中该T细胞被加载到PBS处理的DC组上。
培养4天后，收获一半细胞培养物(100μl)，用于活化和增殖 分析。将100μl的新鲜AIM V/2.5％匹配的血清加入到剩余的一半 细胞培养物中，并对细胞再培养3天。以5×104T细胞/孔∶5×104DC/ 孔的比率(1∶1)培养4天和7天后，T细胞上CD69的表达示于图 37中。无论T细胞∶DC的比率如何，大多数PHA处理的细胞均表 达CD69。与高DC浓度一起培养的T细胞中检测到了CD69；但与 低DC浓度一起培养的T细胞中几乎未检测到CD69(数据未示出)。 相比于缓冲液对照，抗原刺激的T细胞表达较高水平的CD69。第 4天时，NS3ChimigenTM蛋白负载的DC诱导的表达CD69的CD8+T 细胞百分比高于CD4+T细胞。培养4天后，经过至少一次分裂的 细胞(CFSElo)百分比示于图38中。结果表明用PHA处理24小时 的T细胞较早开始分裂。用TT负载的DC处理的CD8+和CD4+T 细胞在培养4天后出现可检测性增殖，但这仅在高DC浓度时比较 明显(数据未示出)。第4天时，在疫苗候选物处理组中几乎检测 不到T细胞增殖。因此，第4天时，幼稚T细胞通过NS3ChimigenTM 蛋白负载的DC活化(如通过CD69表达而证明的)，但这些T细胞 尚未分裂。
培养7天后，收获细胞用于活化和增殖分析。培养7天后，T 细胞上CD69的表达示于图37中。对于Chimigen3蛋白刺激的T 细胞，在与高DC浓度一起培养的T细胞中，以高于5％的水平检 测到CD69，但在与低DC浓度一起培养的T细胞中，则几乎检测 不到CD69(数据未示出)。因此，低DC浓度(1×104DC/孔)不 足以用于抗原特异性T细胞的活化。第7天时，回忆TT应答的CD69 表达有所降低。第7天时，与d4T细胞相反，NS3ChimigenTM蛋 白负载的DC诱导的表达CD69的CD4+T细胞百分比高于CD8+T 细胞。相比于回忆抗原TT，第7天时CD8+和CD4+T细胞中表达 CD69的百分比等于或大于表达Chimigen3蛋白的百分比。因此， Chimigen3蛋白首先活化幼稚CD8+T细胞，随后活化CD4+T细胞。 培养7天后，经过至少一次分裂的细胞(CFSElo)的百分比示于图 38中。用Chimigen3蛋白或TT负载的DC引起显著的CD8+和 CD4+T细胞增殖，并且这在高DC浓度时最明显(结果未示出)。
通过DC的NS3Chimigen TM 蛋白呈递导致产生IFN-γ和TNF- α的CD8+和CD4+T细胞的生成
通过三次刺激离体APA，评估针对NS3ChimigenTM蛋白的功 能性免疫应答。将4×104DC/孔(高浓度)或2×104DC/孔(低浓 度)的未成熟DC用对照载体缓冲液、PBS、TT(阳性对照)、或 NS3ChimigenTM蛋白负载。随后催熟DC并评估其表型。如果其表 达高水平的MHC I类、MHC II类、CD86、CD80和CD83，则该 DC可评价为成熟。将自体T细胞与成熟的抗原负载的DC以20× 104T细胞/孔∶4×104DC/孔或者4×104T细胞/孔∶2×104DC/孔的 比例一起孵育。刺激该T细胞三次，并在第三次刺激后6小时通过 检测Th1细胞因子IFN-γ和TNF-α的细胞内水平来评估T细胞功 能。此外，还评估了T母细胞的程度。
T细胞群中T母细胞的百分比测量可用作T细胞增殖程度的量 度。T母细胞定义为那些具有较高FSC和SSC散射的细胞，而且 淋巴细胞门中的休止淋巴细胞定义为通过流式细胞仪所评估的。培 养14天后，培养物中T母细胞的百分比示于图39中。NS3 ChimigenTM蛋白在诱导T细胞增殖(母细胞产生)方面非常有效， 其中相比于5∶1的比率，2∶1的T细胞∶DC比率导致较低的背景(缓 冲液)T细胞增殖反应。因此，在T细胞∶DC比率为2∶1时，相比 于缓冲液，NS3ChimigenTM蛋白刺激的T细胞增殖存在显著差异。
以5∶1和2∶1的T细胞∶DC比率来测定IFN-γ应答。数据以该 组每一个孔的应答以及三个孔的平均值和标准差表示(图40)。T 细胞IFN-γ应答的比较在5∶1和2∶1的T细胞∶DC比率之间显示出 显著差异。在较高DC浓度的情况下，相比于对照缓冲液，几乎不 存在疫苗候选物诱导的IFN-γ应答的证据。然而，在较低DC浓度 的情况下，与对照缓冲液负载的DC一起培养的T细胞极少生成 IFN-γ，而与疫苗候选物负载的DC一起培养的T细胞则有较高百分 比生成IFN-γ。相比于5Tg/mL的NS3ChimigenTM蛋白，在已用由 2.5μg/mL NS3ChimigenTM蛋白负载的DC刺激的T细胞中，产生 IFN-γ的细胞并未减少。对CD8+和CD4+细胞群中表达IFN-γ的T 细胞百分比进行了定量，并示于图41中。相比于TT负载的DC， 在用2.5μg/mL疫苗候选物负载的DC刺激的T细胞中，表达IFN-γ 的CD8+T细胞百分比是可比较的。同样，相比于用对照缓冲液刺 激，一旦用NS3ChimigenTM蛋白刺激，还出现高百分比表达IFN-γ 的CD4+T细胞。相比于用TT负载的DC刺激，用疫苗候选物负载 的DC刺激的T细胞中表达IFN-γ的CD4+T细胞的百分比是可比 较的。这些结果表明NS3ChimigenTM蛋白在CD8+和CD4+T细胞 群两者中诱导显著的IFN-γ应答并暗示该分子在MHC I类和II类 通路中均由DC加工。
图42示出了用抗原负载的成熟DC刺激6小时而得到的产生 TNF-α的T细胞百分比。这些结果类似于IFN-γ的结果。相比于 TT，NS3ChimigenTM蛋白的TNF-α应答大约相同或较高。利用TT 或NS3ChimigenTM蛋白负载的DC的刺激导致表达TNF-α的 CD4+T细胞的百分比高于CD8+T细胞。
通过DC的NS3Chimigen TM 蛋白呈递导致表达grB和pfn的 CD8+T细胞的生成
还通过离体APA评估T细胞产生细胞毒性颗粒蛋白grB和pfn 的能力。将未成熟DC用对照缓冲液、TT(阳性对照)或不同浓度 的NS3ChimigenTM蛋白负载，并且一旦成熟即与自体T细胞一起 孵育。通过细胞内染色，分别利用抗grB和抗pfn mAb检测GrB和 pfn表达。图43示出了用抗原负载的成熟DC刺激三次后，表达grB 和pfn的CD8+T细胞百分比。相比于缓冲液对照处理的DC，NS3 ChimigenTM蛋白负载的DC诱导CD8+T细胞中grB和pfn表达增加。 这些结果表明NS3ChimigenTM疫苗诱导grB和pfn在CD8+T细胞 中表达。该发现表明该疫苗候选物在MHC I类通路中由DC加工， 用于有效的呈递至T细胞，以引起其从幼稚CD8+T细胞分化为细 胞毒性T淋巴细胞(CTL)。
通过成熟DC的NS3Chimigen TM 蛋白呈递导致CD8+和CD4+T 细胞的产生和持续活化
在APA中，用抗原负载的DC刺激T细胞三次。第三次刺激 后培养6天，收获T细胞并通过流式细胞仪研究母细胞的百分比， 其作为增殖和活化标记物CD69表达的量度。此外，作为一种估计 从培养物中回收的T细胞绝对数量的方法，还根据FSC和SSC FFC 分析确定落在淋巴细胞门(R1门)内的被圈定细胞的数量。
如通过CD69表达而评估的，活化的CD8+和CD4+T细胞的百 分比示于图44中。相比于缓冲液对照，在用Chimigen3蛋白负载 DC刺激的T细胞中，表达CD69的CD4+和CD8+T细胞的百分比 均有所增加。相比于缓冲液对照，在从TT和ChimigenTM蛋白刺激 的细胞中回收T细胞方面存在显著差异(图45)。相比疫苗候选物 刺激的细胞，TT刺激的细胞获得较高的T细胞回收率。然而，TT 应答是一种回忆应答，因此预计与TT发生特异性反应的初始T细 胞群将高于特异于NS3的初始幼稚T细胞群的该值。特别地，根据 对培养物中存在的T母细胞的评估，含有NS3Chimigen3蛋白的培 养物中的母细胞/增殖细胞的百分比高于所述TT培养物。在缓冲液 对照的培养物中，几乎不存在母细胞/增殖细胞。因此，用Chimigen3 蛋白刺激引起显著的T细胞活化和增殖，即在第三次刺激后6天(T 细胞培养的第20天)依然很明显。因此，NS3ChimigenTM蛋白在 CD8+和CD4+T细胞两者的活化和扩增中非常有效。
通过成熟DC的NS3Chimigen TM 蛋白呈递引起NS3特异性 CD8+T细胞的产生
为了评估免疫应答对NS3ChimigenTM蛋白的特异性，对 HLA-A2情形中特异于两种免疫显性NS3表位的T细胞百分比进行 定量。该百分比通过用轭合于PE的NS3肽/HLA-A2五聚体标记T 细胞而确定。在APA中，幼稚T细胞通过用不同浓度NS3 ChimigenTM蛋白负载的DC刺激三次，并与无抗原(缓冲液)负载 的各个对照DC进行比较。第三次刺激后6天，收获T细胞，NS3 特异性T细胞或EBV特异性T细胞(对照)通过四聚体标记来检 测并利用流式细胞仪分析。CD8+T细胞群中，所述缓冲液对照组的 三个孔中有一个是EBV四聚体标记(阳性四聚体)阳性，且不存 在对阴性四聚体标记为阳性的孔(数据未示出)。由于被评估的T 细胞来自缓冲液对照处理孔，预计EBV四聚体标记的T细胞数量 将相对较低。APA后，标记有NS3五聚体的CD8+T细胞的百分比 示于图46中。用NS3ChimigenTM蛋白负载DC导致生成对NS3表 位具有特异性的T细胞。在6个低DC浓度孔中，其中4个孔内具 有该特异性的CD8+T细胞的显著扩增比较明显。因此，该NS3 ChimigenTM蛋白能够诱导生成对NS3免疫显性表位特异的T细胞， 且可能存在对其他NS3表位具有特异性的T细胞。
实施例4.NS3-NS4B-NS5A多抗原Chimigen3蛋白的结果
HCV NS3-NS4B-NS5A Chimigen TM 蛋白的表达
SDS-PAGE后，通过蛋白质印迹分析HCV多抗原ChimigenTM 蛋白在Sf9细胞内表达的时间进程。通过考虑HCV多抗原 ChimigenTM蛋白表达和降解两方面因素，确定蛋白表达的最佳条件 为注射后MOI 1.5达36个小时。
从Sf9细胞沉淀的清亮裂解物中纯化HCV NS3-NS4B-NS5A Chimigen TM 蛋白
Ni-NTA亲和层析
作为纯化的第一步，将HCV NS3-NS4B-NS5A ChimigenTM蛋白 捕获于Ni-NTA Superflow3柱上。结合于Ni-NTA Superflow3柱上的 蛋白通过SDS-PAGE并利用蛋白质印迹进行分析。该蛋白质印迹表 现出该ChimigenTM蛋白的优势条带(显性条带)，然而硝基纤维素 膜银染色则示出另外的非免疫反应性蛋白条带。
HiTRap Q-XL离子交换层析
通过Ni-NTA Superflow柱捕获的蛋白进一步通过HiTrap Q-XL 1mL柱层析加以分离。将蛋白在无逆流馏分中洗脱，且所述馏分在 0.4至0.5M NaCl之间的盐浓度下进行洗脱。与无逆流馏分中的蛋 白相比，结合于柱上的HCV NS3-NS4B-NS5A多抗原ChimigenTM 蛋白含有较少污染物。通过银染色，观察到至少6条非免疫反应性 蛋白条带。
Superdex 200层析
裂解物中的蛋白通过Superdex 200柱分馏。该HCV NS3-NS4B-NS5A多抗原ChimigenTM蛋白在第一个峰内洗脱。对该 馏分进行蛋白质印迹和银染色。该蛋白显示为银染色上的一条优势 条带；然而，还可见多个污染物条带。蛋白质印迹的结果表明纯化 过程中蛋白聚集。
Phenyl-650C Toyopearl上的疏水作用层析
将含有所述HCV NS3-NS4B-NS5A多抗原ChimigenTM蛋白的 细胞裂解物加样于Phenyl-650C Toyopearl上并在未吸收和吸收的 馏分两者中洗脱。对该馏分进行蛋白质印迹和银染色。在两种馏分 中，在蛋白质印迹和硝基纤维素膜的银染色上，HCV多抗原 ChimigenTM蛋白可视为一条优势条带。
实施例5.HCV核心Chimigen3蛋白的结果
HCV核心Chimigen TM 蛋白已被提纯并鉴定
HCV核心Chimigen3蛋白通过在变性条件下的Ni鳌合层析 (Ni-NTA superflow)以及随后的阴离子交换层析(CM琼脂糖) 进行纯化。纯化的蛋白在12％SDS-PAGE凝胶上进行分析，主要条 带为融合蛋白(约55KDa)，在28kDa观察到的次要条带很可能是 降解产物。在12％SDS-PAGE凝胶上分离后，将纯化的蛋白电转至 硝基纤维素膜上。蛋白质印迹通过抗6xHis-HRP轭合抗体、抗Fc 特异性HRP轭合的抗体以及抗HCV核心抗体并以抗Fab特异性 HRP轭合的抗体作为第二抗体而实施。结合的抗体通过化学发光检 测。所述抗体与印迹的结合表明纯化的HCV核心TBD具有完整的 N末端、核心和TBD部分。此外，所有3种抗体均检测到较低分 子量条带，表明其为来自全长HCV核心ChimigenTM分子的蛋白， 且可能是降解的结果。
HCV核心Chimigen TM 蛋白结合于未成熟DC
对HCV核心ChimigenTM疫苗结合于未成熟DC的能力加以检 测。在不同浓度HCV核心ChimigenTM蛋白存在或缺失的情况下， 将该细胞在4℃下孵育1小时，并通过FFC或通过共聚焦显微镜检 测结合。对于FFC分析，通过生物素化的抗小鼠IgG1mAb和 SA-PE-Cy5检测结合的HCV核心ChimigenTM蛋白。
结合HCV核心ChimigenTM蛋白的细胞百分比(阳性细胞％) 以及结合的蛋白的相对量(MFI)通过FFC确定。在HCV核心 ChimigenTM蛋白为5-40μg/mL的情况下，所述细胞几乎100％结合 均为阳性，且结合的HCV核心ChimigenTM蛋白的量存在剂量依赖 性递增(图47)。观察到的高结合MFI表明HCV核心ChimigenTM 蛋白与未成熟DC的结合非常有效且处于高水平。
还使用共聚焦显微镜研究了HCV核心ChimigenTM蛋白的结 合。所述结合通过FITC轭合的羊抗鼠IgG进行检测。蓝色荧光染 料DAPI用来成像核。共聚焦图像和相应的光图像表明所述蛋白在 4℃下脉冲1小时后结合于未成熟DC膜。
HCV核心Chimigen TM 蛋白结合于未成熟DC上的特异性受体
由于存在Fc片段，推测所述HCV核心ChimigenTM蛋白通过 其TBD区能结合于未成熟DC上的CD32(FcγR II)。此外，由于 其甘露糖糖基化，推测HCV核心ChimigenTM蛋白还结合于C型凝 集素受体如CD206(MMR)。为了确定HCV核心ChimigenTM蛋白 的结合特异性，在对CD32或CD206特异性的阻断mAb存在的情 况下，将未成熟DC与HCV核心ChimigenTM蛋白一起孵育。所述 结合还在竞争性配体、用于Fcγ受体的鼠IgG Fc片段以及用于C 型凝集素受体的甘露糖化BSA(mBSA)存在的情况下进行检测。
将未成熟DC与PBS(缓冲液对照)、鼠IgG Fc片段(500 μg/mL)、CD32mAb(200μg/mL)、甘露糖化BSA(500μg/mL)、 或抗CD206(200μg/mL)在4℃下一起孵育1小时，随后与HCV 核心ChimigenTM蛋白(30μg/mL)在4℃下一起孵育1小时。结合 的蛋白用生物素化的抗小鼠IgG 1mAb或生物素化的抗HCV核心 mAb随后是SA-PE-Cy5进行检测。结合的HCV核心ChimigenTM 蛋白的相对量(MFI)通过FFC而确定。来自所述结合和抑制研究 的结果表明HCV核心ChimigenTM蛋白结合于Fcγ受体如CD32和 C型凝集素受体如CD206(图48)。
通过DC的HCV核心Chimigen TM 蛋白呈递导致CD8+和 CD4+T细胞中的细胞内IFN-γ水平升高
对HCV核心ChimigenTM蛋白的功能性免疫应答通过离体抗原 呈递分析加以评估。将未成熟DC用PBS(缓冲液对照)、破伤风 类毒素(阳性对照)、或不同浓度的HCV核心ChimigenTM蛋白负 载。一旦DC成熟，将其与自体T细胞一起孵育。T细胞功能通过 检测Th1细胞因子IFN-γ的细胞内水平而评估。还通过FFC确定该 细胞的CD3和CD8表型。图49A和B分别示出了用抗原负载的成 熟DC第三次刺激后12小时表达IFN-γ的CD8+和CD4+T细胞的 百分比。破伤风类毒素被用作有效抗原呈递的阳性对照。相比于无 抗原对照，HCV核心ChimigenTM蛋白负载的DC诱导IFN-γ在 CD8+T细胞中的表达显著增加。用HCV核心ChimigenTM蛋白负载 的DC刺激后，CD4+T细胞群中也存在IFN-γ表达的增加。这些结 果表明HCV核心ChimigenTM蛋白诱导IFN-γ在CD8+和CD4+T细 胞群中的应答，并暗示在MHC I类和MHC II类通路中该分子均由 DC加工。
通过成熟DC的HCV核心Chimigen TM 蛋白呈递引起HCV核 心特异性CD8+T细胞的产生
为了评估免疫应答对HCV核心的特异性，对HLA-B7情形中 特异于免疫显性HCV核心表位的T细胞百分比进行定量。这是通 过用轭合于PE的HCV核心肽/HLA-B7四聚体标记T细胞而实现 的。此外，将T细胞用CD4和CD8特异性mAb标记。
HCV核心幼稚T细胞通过用由不同浓度HCV核心ChimigenTM 蛋白负载的DC刺激三次，并与无抗原、破伤风类毒素或TBD负载 的各个对照DC进行比较。第三次刺激后5天，收获T细胞，并通 过二维FFC检测HCV核心特异性T细胞。图50中，所述二维FFC 点图表明与用HCV核心ChimigenTM蛋白负载的DC一起孵育的T 细胞表现出在核心四聚体阳性T细胞中仅有少量增加。
美国临时申请第60/726,701号所披露的内容(包括全部附录) 均结合于此作为参考。
在上述说明书中提及的所有出版物、专利申请以及专利以引用 方式结合于此作为参考。对于本领域的技术人员来说，在不偏离本 发明的精神和范围的情况下，本发明的方法和系统的各种更改和变 化都是显而易见的。虽然结合特定的优选具体实施方式描述了本发 明，但是应该明了，本发明的保护范围不应当不恰当地局限于这些 特定的具体实施方式。实际上，所述用于实施本发明的方式的各种 更改，对于本领域的技术人员来说是显而易见的，而这些都在本发 明的权利要求的范围内。
PCT/RO/134表
申请人或代理机构 卷号19923-PCT 国际申请号PCT/CA2006/001685
涉及微生物或其他生物材料保藏的证明 (PCT条约13bis)
PCT/RO/134表(1998年7月；2004年1月重新打印)
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