[0367] 和/或任选地对应于通式CnH2nO其中37的化合物是二甲基丁二烯,和/或
[0368] 任选地,所述条件包括核酸的体外表达。
[0369] 发酵可以在需氧、微氧或厌氧条件下进行,,优选地在厌氧下进行,,其中化合物如丁二烯与氧是反应的。还提供了产生聚合物、树脂或制品的方法,其包括使化合物、二烯烃、任选地丁二烯反应以产生聚合物或树脂,以及还任选地使所述聚合物或树脂形成为所述制品,其中所述化合物、二烯烃、任选地丁二烯通过本发明的方法或用途产生,或者使用本发明的组合物,例如多核苷酸、酶、经改造微生物、烯烃产物组合物产生。此外,所述聚合物、树脂或制品可以包含或是含丁二烯聚合物、聚丁二烯、己二腈、共聚物、丙烯腈-丁二烯-苯乙烯(ABS)、丙烯腈-丁二烯橡胶(ABR)、苯乙烯-丁二烯橡胶(SBR)共聚物、苯乙烯-1,3-丁二烯胶乳,或者所述制品是轮胎、管、车辆部件、船部件、食品容器或地毯背衬。
[0370] 用于筛选酶活性和回收产物的方法
[0371] 在一些替代实施方案中,可以使用用于筛选酶活性(例如期望产物如丁二烯的产生)的任何方法和用于分离酶产物或最终产物的任何方法,例如如以下中所述的:2011年6月11日公开的标题为Methods and Organisms for Converting Synthesis Gas or Other Gaseous Carbon Sources and Methanol to 1,3-Butanediol的WO2011071682A1;2011年3月17日公开的标题为Microorganisms and Methods for the Co-Production of
Isopropanol with Primary Alcohols,Diols and Acids的WO2011031897A;2010年11月4日公开的标题为Organisms for the Production of 1,3-Butanediol的WO2010127319A2;
2013年5月16日公开的标题为Eukaryotic Organisms and Methods for Increasing the Availability of Cytosolic Acetyl-CoA,and for Producing 1,3-Butanediol的
WO2013071226A1;2013年2月28日公开的标题为Microorganisms and Methods for
Producing 2,4-Pentadienoate,Butadiene,Propylene,1,3-Butanediol and Related
Alcohols的WO2013028519A1;2013年3月14日公开的标题为Eukaryotic Organisms and
Methods for Producing1,3-Butanediol的WO2013036764A1;2013年1月24日公开的标题为Methods for Increasing Product Yields的WO2013012975A1;2012年12月27日公开的标题为Microorganisms for Producing 1,3-Butanediol and Methods Related Thereto的WO2012177619A2;以及2014年7月3日公开的标题为Compositions and Methods for Bio-Butadience Production Screening的WO/2014/106122。
[0372] 丁二烯中间体如1,4-丁二醇、1,3-丁二醇、巴豆醇、3-丁烯-2-醇(甲基乙烯基醇)和3-丁烯-1-醇可以通过将本文醇脱氢酶与本领域已知的产物途径共表达来制备,如本文所述的。合适的产物途径和酶、筛选方法以及分离方法见于:2011年11月10公开的标题为Microorganisms and Methods for the Biosynthesis of Butadiene的WO2011140171A2;2012年2月9日公开的标题为Microorganisms and Methods for the Biosynthesis of
Aromatics,2,4-Pentadienoate and 1,3-Butadiene的WO2012018624A2;2011年11月10日公开的标题为Microorganisms and Methods for the Biosynthesis of Butadiene的
O2011140171A2;2013年3月21日公开的标题为Microorganisms and Methods for
Producing Alkenes的WO2013040383A1;2012年12月27日公开的标题为Microorganisms
for Producing Butadiene and Methods Related thereto的WO2012177710A1;2012年8月
9日公开的标题为Microorganisms and Methods for the Biosynthesis of Butadiene的WO2012106516A1;2013年2月28日公开的标题为Microorganisms and Methods for
Producing 2,4-Pentadienoate,Butadiene,Propylene,1,3-Butanediol and Related
Alcohols的WO2013028519A1;以及提交于2013年3月15日的美国序列No.61/799255。
[0373] 使用本文所述的酶制备的丁二烯和其他二烯烃可以使用本领域公知的多种方法与培养物中的其他组分分开和/或分离。在挥发性二烯烃如丁二烯的情况下,可以在发酵尾气中获得并从其分离。这样的分离方法包括例如萃取操作以及包括以下的方法:连续液-液萃取、渗透
蒸发、
膜过滤、膜分离、
反渗透、
电渗析、蒸馏、结晶、离心、萃取性过滤、离子交换色谱、尺寸排阻色谱、吸附色谱、
超滤、气体压缩、使用
溶剂的萃取性蒸馏、通过蒸馏和最终蒸馏去除溶剂。此外,如果二烯烃如丁二烯在充足的氧存在下是危险的,可以使用厌氧发酵。所有上述方法都是本领域公知的。
[0374] 例如,标题为“Method Of Separating and Purifying a Conjugated Diolefin Produced by Fermentation under Anaerobic Conditions”的国际专利申请公开WO2014121357提供了用于在厌氧条件下从发酵罐尾气中分离和纯化发酵物的方法,其包
括:a)获得包含共轭二烯烃如丁二烯、挥发性杂质、生物副产物杂质和水蒸气的发酵罐尾气;b)在多级压缩系统中压缩发酵罐尾气以产生压缩流;c)将压缩流进料到第一蒸馏区以去除生物副产物杂质和水蒸气,第一蒸馏区具有上部回流段、中间蒸馏段和下部再沸器段;
d)使由生物副产物杂质和水去除蒸馏区产生的塔顶蒸气流与吸附剂接触以产生经干燥的
塔顶流;e)将经干燥的塔顶流进料到第二蒸馏区以通过顶部去除挥发性杂质,其中第二蒸馏区具有上部回流段、中间蒸馏段和下部再沸器段;以及f)在用于去除挥发性杂质的蒸馏区的底部收集得到的经纯化液体共轭二烯如丁二烯。
[0375] 产生的化合物可以通过使其与培养物中的其他组分分离并使用本领域公知的多种方法对其进行纯化来回收。在挥发性二烯烃如丁二烯的情况下,可以在发酵尾气中获得并从其分离。这样的分离方法包括例如萃取操作以及包括以下的方法:连续液-液萃取、渗透蒸发、膜过滤、膜分离、反渗透、电渗析、蒸馏、结晶、离心、萃取性过滤、离子交换色谱、尺寸排阻色谱、吸附色谱、超滤、气体压缩、使用溶剂的萃取性蒸馏、通过蒸馏去除溶剂和最终蒸馏。回收可以包括使化合物与培养物中的其他组分分离并纯化该化合物;分离或纯化进一步可以包括收集含有该化合物的发酵尾气,并且分离和纯化进一步可以包括尾气压缩、使用溶剂进行萃取性蒸馏、通过蒸馏去除溶剂和蒸馏中的一种或更多种。在一个实施方案中,用于产生所述化合物如丁二烯的方法还包括:a)获得包含共轭二烯烃如丁二烯、挥发性杂质、生物副产物杂质和水蒸气的发酵罐尾气;b)在多级压缩系统中压缩发酵罐尾气以产生压缩流;c)将压缩流进料到第一蒸馏区以去除生物副产物杂质和水蒸气,第一蒸馏区具有上部回流段、中间蒸馏段和下部再沸器段;d)使由生物副产物杂质和水去除蒸馏区产生的塔顶蒸气流与吸附剂接触以产生经干燥的塔顶流;e)将经干燥的塔顶流进料到第二蒸馏区以通过顶部去除挥发性杂质,其中第二蒸馏区具有上部回流段、中间蒸馏段和下部再沸器段;以及f)在用于去除挥发性杂质的蒸馏区的底部收集得到的经纯化液体共轭二烯如丁二烯。
[0376] 在一些替代实施方案中,提供了用于产生有机化合物(例如丁二烯)的微生物生物体(例如细菌),包括由可再生原料产生期望的化合物,所述可再生原料例如便宜的可再生原料例如糖蜜、甘蔗汁、源自生物质来源(包括农业和木材废弃物)的糖,以及C1(一碳化合物)原料,例如合成气和二氧化碳。在一些替代实施方案中,本文提供的多肽催化巴豆醇(丁-2-烯-1-醇)转化为丁二烯或1,3丁二烯,并且为了筛选具有该活性的多肽,可以使用用于筛选酶活性的任何方法,包括利用丁二烯高
反应性的用于丁二烯产生的大细胞群的高通量筛选(HTS)。
[0377] 在一些替代实施方案中,提供了用于检测和/或分离使用本文提供的酶作为生物合成过程的产物(例如作为微生物生物体生物合成过程的产物)在细胞中产生的丁二烯(例如,1,3-丁二烯)(包括丁二烯气体)的任何方法。在一些替代实施方案中,提供了用于制备和检测丁二烯(包括丁二烯气体)的组合物和方法。
[0378] 在一些替代实施方案中,本发明的组合物和方法包括使用任何方法或装置检测有机挥发物(例如BD或BD气体)或微生物产生的有机挥发物(例如BD气体),例如采用发酵培养基或顶部空间的侵入性取样,之后对样品进行通常与质谱偶联的气相色谱或液相色谱。在一些替代实施方案中,可以使用任何“
现有技术”装置,例如用于高通量筛选,例如可以使用具有111-小瓶容量(10mL、20mL或22mL小瓶)和三个36-小瓶架子的Agilent 7697A HEADSPACE SAMPLERTM(Agilent Technologies,Santa Clara CA,USA),所述架子在操作顶部空间
采样器或等同操作时可交换。除有限的样品配置和数量外,装置在与GC或GC/MS偶联时通常需要10至30分钟来分析每个样品。
[0379] 在一些替代实施方案中,装置被设计或配置成通过直接或间接地检测和/或测量以下形式的BDE,例如通过化学或酶促反应,对细胞,例如微生物,例如细菌的丁二烯产生进行HTS:在细胞培养基中的可溶性形式、在细胞培养物顶部空间中的气体形式、在捕获由细胞培养物产生的BDE气体的液体中的可溶性形式和/或在该液体的顶部空间中的气态形式。
[0380] 在一些替代
实施例中,方法是可自动化的并且适用于实验室
机器人系统,从而消除或减少操作者参与,同时提供高通量筛选。在一些实施方案中,装置通过其在细胞培养物顶部空间中的直接检测或通过捕获尾气BD接着在捕获状态下进行其检测而利用BDE的挥发性质。
[0381] 这些所述方法中的任一种或本领域已知用于检测本文所述提供酶的产物产生的任何方法均可用于确定多肽是否具有在本要求保护发明的范围内的必要活性。
[0382] 经改造代谢途径
[0383] 在一些替代实施方案中,使用另外的酶或编码其的核酸(作为使用本文提供的酶的补充)(例如插入在同一细胞中)以产生本文所提供酶的底物或使得产生本文所提供酶的底物的代谢途径的底物或者增加其量;例如,如图1中所述,其示出了能够由乙酰CoA(使得产生本文所提供酶的底物的代谢途径的底物)产生巴豆醇(本文提供的酶的底物)和丁二烯(本文提供的酶的产物)的示例性途径。如图1所示,巴豆醇和丁二烯的产生可以通过以下酶进行:A)乙酰CoA羧化酶;B)乙酰乙酰CoA合酶;C)乙酰-CoA:乙酰-CoA酰基转移酶;D)乙酰乙酰CoA还原酶(酮还原);J)3-羟基丁酰CoA脱水酶(HCD);K)巴豆酰CoA还原酶(醛形成)(CCR-ALD);L)巴豆酰-CoA水解酶(CCH)、转移酶)或合成酶(CCS);M)巴豆酸还原酶(CTR);N)巴豆醛还原酶(CAR);U)巴豆酰CoA还原酶(形成醇)(CCR-OH);和S)化学脱水或VD)巴豆醇脱水酶(CAD),如本文所述的。
[0384] 产生本文所述酶的底物或被改造以产生本文所述酶的底物的任何微生物都是合适的宿主,并且可用于实施本发明。例如,可以将示例性微生物改造以产生巴豆醇,例如如国际专利申请公开WO2011140171、WO2012106516和WO2013090915A1中所述的,后者也公开了使用芳樟醇脱水酶将巴豆醇酶促转化为丁二烯。图1还示出了从乙酰CoA到巴豆醇(如例如WO2011140171和WO2012106516中所述)及其通过乙烯基异构酶-脱水酶(其为本文提供的酶)(图1,步骤VD)转化为丁二烯的示例性酶促步骤。图6提供了用于产生巴豆醇的示例性替代途径,并且在一些替代实施方案中,本文提供的酶可以:酶促催化巴豆醇(丁-2-烯-1-醇)转化为3-丁烯-2-醇;酶催化3-丁烯-2-醇转化为丁二烯或1,3丁二烯;和/或酶促催化巴豆醇(丁-2-烯-1-醇)转化为丁二烯或1,3丁二烯;并且可以将产生它们的任意一种、几种或全部中间体或前体化合物和/或酶添加到经改造细胞中。以下提供了用于与本文所述的酶一起使用的用于产生巴豆醇的示例性宿主微生物和有用酶的细节。
[0385] 示例性的巴豆醇和丁二烯合成酶
[0386] 提供了可用于将乙酰CoA转化为巴豆醇并转化为丁二烯的示例性基因和酶,如图1和图6的途径中所示;例如,在一些替代实施方案中,本文提供的经改造细胞除本文所提供核酸或酶之外还包含这些示例性基因和/或酶中的一种或数种。
[0387] 图1步骤A.乙酰CoA羧化酶
[0388] 乙酰CoA羧化酶(EC 6.4.1.2)催化乙酰CoA到丙二酰CoA的ATP依赖性羧化。这种酶是生物素依赖性的,并且是数种生物体中
脂肪酸生物合成起始的第一反应。示例性酶由以下编码:大肠杆菌的accABCD(Davis等,J Biol Chem 275:28593-8(2000))、酿酒酵母的ACC1和同源物(Sumper等,Methods Enzym 71:34-7(1981))。
[0389]
[0390]
[0391] 图1:步骤B:乙酰乙酰CoA合酶
[0392] 丙二酰CoA和乙酰CoA底物向乙酰乙酰CoA的转化可以由2.3.1家族酶中的CoA合成酶催化。已经在文献中描述了几种催化CoA合成酶活性的酶并且代表合适的候选物。
[0393] 3-氧代酰基-CoA产物如乙酰乙酰CoA、3-氧代戊酰CoA、3-氧代-5-羟基戊酰CoA可以由酰基-CoA和丙二酰CoA底物通过3-氧代酰基CoA合酶而合成。由于这一类别的酶催化基本上不可逆的反应,因此其特别地可用于过量产生由3-氧代酰基-CoA中间体如乙酰乙酰CoA获得的
代谢物、燃料或化学物质的代谢改造应用。乙酰乙酰CoA合酶例如已经在生物合成丁醇(Lan等,PNAS USA(2012))和聚-(3-羟基丁酸酯)(Matsumoto等,Biosci Biotech
Biochem,75:364-366(2011))的生物体中异源表达。已经在
土壤细菌链霉菌属物种CL190
(Streptomyces sp.CL190)中表征了乙酰乙酰CoA合酶(EC 2.3.1.194)酶(FhsA),其中其参与甲羟戊酸生物合成(Okamura等,PNAS USA 107:11265-70(2010))。另一些乙酰乙酰CoA合酶基因可以通过与fhsA的序列同源性来鉴定。
[0394]
[0395] 图1:步骤C:乙酰CoA:乙酰CoA酰基转移酶(乙酰乙酰CoA硫解酶)
[0396] 乙酰乙酰CoA硫解酶(也称为乙酰CoA乙酰转移酶)将两分子的乙酰CoA转化为各一分子的乙酰乙酰CoA和CoA。示例性的乙酰乙酰CoA硫解酶包括以下的基因产物:来自大肠杆菌的atoB(Martin et al.,Nat.Biotechnol 21:796-802(2003))、来自丙酮丁醇梭菌
(C.acetobutylicum)的thlA和thlB(Hanai等,Appl Environ Microbiol 73:7814-7818
(2007);Winzer等,J.Mol.Microbiol Biotechnol 2:531-541(2000),以及来自酿酒酵母ERG10(Hiser等,J.Biol.Chem.269:31383-31389(1994))。来自生枝动胶菌(zoogloea
ramigera)的乙酰乙酰CoA硫解酶在生物合成方向上是不可逆的,并且
晶体结构是可获得的(Merilainen等,Biochem 48:11011-25(2009))。这些基因/蛋白质在下表中表示。
[0397]基因 GenBank ID GI号 生物体
AtoB NP_416728 16130161 大肠杆菌
ThlA NP_349476.1 15896127 丙酮丁醇梭菌
ThlB NP_149242.1 15004782 丙酮丁醇梭菌
ERG10 NP_015297 6325229 酿酒酵母
phbA P07097.4 135759 生枝动胶菌
[0398] 图1:步骤D:乙酰乙酰CoA还原酶
[0399] 合适的酶活性是1.1.1.a氧化还原酶(氧到醇)。参见本文。另外,乙酰乙酰CoA还原酶(EC 1.1.1.36)催化乙酰乙酰CoA还原成3-羟基丁酰CoA。该酶在梭菌纲(Clostridia)的数个物种中参与到丁酸酯的乙酰CoA发酵途径,并且已被详细研究(Jones等,Microbiol Rev.50:484-524(1986))。乙酰乙酰CoA还原酶还参与许多生物体中的聚羟基丁酸酯生物合成,并且也已经用于过量产生PHB和3-羟基异丁酸酯的代谢改造应用(Liu等,
Appl .Microbiol .Biotechnol .76:811-818(2007) ;Qui等 ,
Appl.Microbiol.Biotechnol.69:537-542(2006))。由hbd编码的来自丙酮丁醇梭菌的酶已被克隆并在大肠杆菌中功能性表达(Youngleson等,J Bacteriol.171:6800-6807(1989))。
另外的基因候选物包括来自生枝动胶菌的phbB(Ploux等,Eur.J Biochem.174:177-182
(1988))和来自类球红细菌的phaB(Alber等,Mol.Microbiol61:297-309(2006))。生枝动胶菌(Z.ramigera)基因是NADPH依赖性的,并且该基因已经在大肠杆菌中表达(Peoples等,
Mol.Microbiol 3:349-357(1989))。对基因的底物特异性研究得出以下结论:除乙酰乙酰CoA之外,其还可接受3-氧代丙酰CoA作为底物(Ploux等,Eur.J Biochem.174:177-182
(1988))。另外的基因:包括在脱氮硝副球菌(Paracoccus denitrificans)中的phaB、克氏梭菌(Clostridium kluyveri)中的Hbd1(C端结构域)和Hbd2(N端结构域)(Hillmer和
Gottschalk,Biochim.Biophys.Acta 3334:12-23(1974)),以及牛中的HSD17B10(Wakil等,J Biol.Chem.207:631-638(1954))。来自脱氮副球菌的酶已在大肠杆菌中功能性表达和表征(Yabutani等,FEMS Microbiol Lett.133:85-90(1995))。已在梭菌属的另一些物种中和勤奋金属球菌(Metallosphaera sedula)中发现了许多类似的酶(Berg等,Science.318:
1782-1786(2007))。来自热带念珠菌(Candida tropicalis)的酶是过氧化物酶体脂肪酸β-氧化多功能酶2型(MFE-2)的组分。该蛋白质的脱氢酶B结构域对乙酰乙酰CoA具有催化活
性。该结构域已经在大肠杆菌中功能性表达,晶体结构是可获得的,并且催化机理是充分已知的(Ylianttila等,Biochem Biophys Res Commun 324:25-30(2004);Ylianttila等,J Mol Biol 358:1286-1295(2006))。
[0400]
[0401]
[0402] 图1:步骤J:3-羟基丁酰CoA脱水酶
[0403] EC 4.2.1水裂解酶提供合适的酶活性,并在下文和本文中进行描述。由ech编码的来自恶臭假单胞菌的烯酰CoA水合酶催化3-羟基丁酰CoA转化为巴豆酰CoA(Roberts等,Arch.Microbiol 117:99-108(1978))。这种转化也由丙酮丁醇梭菌的crt基因产物、克氏梭菌的crt1基因产物和其他梭菌属生物催化(Atsumi等,Metab Eng 10:305-311(2008);
Boynton等,J Bacteriol.178:3015-3024(1996);Hillmer等,FEBS Lett.21:351-354
(1972)))。另外的烯酰CoA水合酶候选物是来自恶臭假单胞菌(P.putida)的phaA和phaB,以及来自荧光假单胞菌(P.fluorescens)的paaA和paaB(Olivera等,Proc.Natl.Acad.Sci
U.S.A 95:6419-6424(1998))。预测沼泽红假单胞菌中pimF的基因产物编码参与庚二酰CoA降解的烯酰CoA水合酶(Harrison等,Microbiology 151:727-736(2005))。最后,许多大肠杆菌基因已被证明显示烯酰CoA水合酶功能性,包括maoC(Park等,J Bacteriol.185:5391-
5397(2003))、paaF(Ismail等,Eur.J Biochem.270:3047-3054(2003);Park等,
Appl.Biochem.Biotechnol 113-116:335-346(2004);Park等,Biotechnol Bioeng 86:
681-686(2004))和paaG(Ismail等,Eur.J Biochem.270:3047-3054(2003);Park和Lee,
Appl.Biochem.Biotechnol 113-116:335-346(2004);Park和Yup,Biotechnol Bioeng 86:
681-686(2004))。
[0404]
[0405]
[0406] 图1:步骤K:巴豆酰CoA还原酶(醛形成)
[0407] EC 1.2.1.b氧化还原酶(酰基CoA到醛)提供合适的酶活性。1.2.1家族中的酰基CoA还原酶将酰基CoA还原成其对应的醛。在公开文献中已经描述了几种酰基CoA还原酶,并且代表用于该步骤的合适候选物。酰基CoA还原酶或酰化醛脱氢酶将酰基CoA还原成其对应的醛。示例性的酶包括下表中所示的脂肪酰CoA还原酶、琥珀酰CoA还原酶(EC 1.2.1.76)、乙酰CoA还原酶、丁酰CoA还原酶、丙酰CoA还原酶(EC1.2.1.3)等等。
[0408]
[0409] 示例性的脂肪酰CoA还原酶由乙酸钙不动杆菌(Reiser,Journal of Bacteriology 179:2969-2975(1997))和不动杆菌属物种M-1(Acinetobacter sp.M-1)
(Ishige等,Appl.Environ.Microbiol.68:1192-1195(2002))的acr1编码。具有琥珀酰CoA还原酶活性的酶由克氏梭菌的sucD(Sohling,J.Bacteriol.178:871-880(1996))和牙龈卟啉单胞菌(P.gingivalis)的sucD(Takahashi,J.Bacteriol 182:4704-4710(2000))编码。
另外的琥珀酰CoA还原酶参与嗜热古细菌的3-羟基丙酸/4-羟基丁酸循环,所述嗜热古细菌包括勤奋金属球菌(Berg等,Science 318:1782-1786(2007))和嗜中性热变形菌
(Thermoproteus neutrophilus)(Ramos-Vera等,J Bacteriol.,191:4286-4297(2009))。
由Msed_0709编码的勤奋金属球菌酶严格依赖于NADPH并且还具有丙二酰CoA还原酶活性。
嗜中性热变形菌(T.neutrophilus)酶对NADPH和NADH二者都有活性。由bphG编码的假单胞菌属中的乙酰化乙醛脱氢酶是另一种酶,因为已经证明其氧化和乙酰化乙醛、丙醛、丁醛、异丁醛和甲醛(Powlowski,J.Bacteriol.175:377-385(1993))。除将乙酰CoA还原成
乙醇之外,由肠膜明串珠菌中的adhE编码的酶已经显示还将支链化合物异丁醛氧化为异丁酰CoA(Kazahaya,J.Gen.Appl.Microbiol.18:43-55(1972);和Koo等,Biotechnol Lett.27:505-
510(2005))。丁醛脱氢酶在产溶剂生物如糖丁酸梭菌中催化类似反应:将丁酰CoA转化为丁醛(Kosaka等,Biosci Biotechnol Biochem.,71:58-68(2007))。示例性的丙酰CoA还原酶包括鼠伤寒沙门氏菌LT2的pduP(Leal,Arch.Microbiol.180:353-361(2003))和来自大肠
杆菌的eutE(Skraly,WO专利号2004/024876)。将丙酰CoA天然转化为丙醛的鼠伤寒沙门氏菌LT2的丙酰CoA还原酶也催化5-羟基戊酰CoA还原为5-羟基戊醛(WO 2010/068953A2)。
[0410]蛋白质 GenBank ID GI号 生物体
acr1 YP_047869.1 50086359 乙酸钙不动杆菌
acr1 AAC45217 1684886 贝利不动杆菌
acr1 BAB85476.1 18857901 不动杆菌属菌株M-1
MSED_0709 YP_001190808.1 146303492 勤奋金属球菌
Tneu_0421 ACB39369.1 170934108 嗜中性热变形菌
sucD P38947.1 172046062 克氏梭菌
sucD NP_904963.1 34540484 牙龈卟啉单胞菌
bphG BAA03892.1 425213 假单胞菌属
adhE AAV66076.1 55818563 肠系膜明串珠菌
bld AAP42563.1 31075383 糖丁酸梭菌
pduP NP_460996 16765381 鼠伤寒沙门氏菌LT2
eutE NP_416950 16130380 大肠杆菌
[0411] 将酰基CoA转化为其对应醛的另外酶是丙二酰CoA还原酶,其将丙二酰CoA转化为丙二酸半醛。丙二酰CoA还原酶是在嗜热嗜酸古细菌中通过3-羟基丙酸循环进行自养碳固定中的关键酶(Berg,Science318:1782-1786(2007);和Thauer,Science 318:1732-1733
(2007))。该酶利用NADPH作为辅因子,并已在金属球菌属(Metallosphaera)和硫化叶菌属(Sulfolobus sp.)中表征(Alber等,J.Bacteriol.188:8551-8559(2006);和Hugler,
J.Bacteriol.184:2404-2410(2002))。该酶由勤奋金属球菌中的Msed_0709编码(Alber等,J.Bacteriol.188:8551-8559(2006);和Berg,Science 318:1782-1786(2007))。已克隆来自Sulfolobus tokodaii的编码丙二酰CoA还原酶的基因并在大肠杆菌中异源表达(Alber
等,J.Bacteriol188:8551-8559(2006)。该酶还显示催化甲基丙二酰CoA转化为其对应醛
(WO2007141208(2007))。虽然这些酶的醛脱氢酶功能类似于来自嗜热光全绿丝菌的双功能脱氢酶,但几乎没有序列相似性。两种丙二酰CoA还原酶候选物均与天冬氨酸-半醛脱氢酶具有高序列相似性,天冬氨酸-半醛脱氢酶是催化天冬氨酰-4-磷酸还原并同时去磷
酸化为天冬氨酸半醛的酶。另外的基因候选物可以通过与其他生物体(包括硫磺矿硫化叶菌和嗜酸热硫化叶菌)中的蛋白质的序列同源性而发现,并且已经在下面列出。用于CoA-酰化醛脱氢酶的另一种候选物是来自拜氏梭菌的ald基因(Toth,Appl.Environ.Microbiol.65:
4973-4980(1999)。已经报道这种酶将乙酰CoA和丁酰CoA还原成其对应的醛。该基因与编码鼠 伤寒沙门氏 菌和大肠杆菌的乙醛脱氢酶的eutE非常 相似 (To th ,
Appl.Environ.Microbiol.65:4973-4980(1999))。
[0412]蛋白质 GenBank ID GI号 生物体
Msed_0709 YP_001190808.1 146303492 勤奋金属球菌
Mcr NP_378167.1 15922498 Sulfolobus tokodaii
asd-2 NP_343563.1 15898958 硫磺矿硫化叶菌
Saci_2370 YP_256941.1 70608071 嗜酸热硫化叶菌
Ald AAT66436 49473535 拜氏梭菌
eutE AAA80209 687645 鼠伤寒沙门氏菌
[0413] 4-羟基丁酰CoA还原酶催化4-羟基丁酰CoA还原为其对应的醛。几种酰基CoA脱氢酶能够催化这种活性。克氏梭菌和牙龈卟啉单胞菌(P.gingivalis)的琥珀酸半醛脱氢酶
(SucD)在参考文献(WO/2008/115840)中显示将4-羟基丁酰CoA转化为4-羟基丁醛作为产生
1,4-丁二醇的途径的一部分。许多丁醛脱氢酶对4-羟基丁醛也具有活性,包括糖丁酸梭菌(Clostridium saccharoperbutylacetonicum)的bld和假单胞菌属的bphG(Powlowski等,
J.Bacteriol.175:377-385(1993))。另一候选物是来自拜氏梭菌的ald基因(Toth,
Appl.Environ.Microbiol.65:4973-4980(1999)。该基因与编码鼠伤寒沙门氏菌和大肠杆菌的乙醛脱氢酶的eutE非常相似(Toth,Appl.Environ.Microbiol.65:4973-4980(1999)。
下面鉴定了具有4-羟基丁酰CoA还原酶活性的这些和另外的蛋白质。
[0414]蛋白质 GenBank ID GI号 生物体
bphG BAA03892.1 425213 假单胞菌属
ald YP_001310903.1 150018649 拜氏梭菌NCIMB 8052
Ald ZP_03778292.1 225569267 Clostridium hylemonae DSM 15053
Ald ZP_03705305.1 225016072 甲基戊糖梭菌DSM 5476
Ald ZP_03715465.1 225026273 霍氏真细菌DSM 3353
Ald ZP_01962381.1 153809713 卵瘤胃球菌ATCC 29174
Ald YP_003701164.1 297585384 砷还原芽孢杆菌MLS10
Ald AAP42563.1 31075383 糖丁酸梭菌N1-4
Ald YP_795711.1 116334184 短乳杆菌ATCC 367
Ald YP_002434126.1 218782808 Desulfatibacillum alkenivorans AK-01
Ald YP_001558295.1 160879327 Clostridium phytofermentans ISDg
Ald ZP_02089671.1 160942363 鲍氏梭菌ATCC BAA-613
Ald ZP_01222600.1 90414628 深海发光菌3TCK
Ald YP_001452373.1 157145054 柯氏柠檬酸杆菌ATCC BAA-895
Ald NP_460996.1 16765381 鼠伤寒肠道沙门氏菌
Ald YP_003307836.1 269119659 白蚁塞巴鲁德菌ATCC 33386
Ald ZP_04969437.1 254302079 具核梭杆菌多形亚种ATCC 10953
Ald YP_002892893.1 237808453 Tolumonas auensis DSM 9187
Ald YP_426002.1 83592250 深红红螺菌ATCC 11170
[0415] 图1:步骤L:巴豆酰CoA水解酶、转移酶或合成酶
[0416] EC 3.1.2.a辅酶A水解酶、EC 2.8.3.a CoA转移酶和/或EC 6.2.1.a CoA合成酶提供合适的酶活性,并且在本文和下面的部分中进行描述。
[0417] EC 3.1.2.a CoA水解酶。3.1.2家族中的酶将酰基CoA分子水解成其对应的酸。文献中已经描述了几种这样的酶并且代表用于这些步骤的合适候选物。
[0418] 例如,由来自褐鼠脑的acot12(Robinson等,Biochem.Biophys.Res.Commun.71:959-965(1976))编码的酶可以与丁酰CoA、己酰-CoA和丙二酰CoA反应。由acot8编码的人二羧酸硫酯酶对戊二酰CoA、己二酰CoA、辛二酰(suberyl)CoA、癸二酰(sebacyl)CoA和十二烷二酰CoA显示出活性(Westin等,J.Biol.Chem.280:38125-38132(2005))。与该酶最接近的大肠杆菌同源物tesB也可以水解一系列CoA硫酯(Naggert等,J Biol Chem 266:11044-
11050(1991))。在大鼠肝中也已经表征了类似的酶(Deana R.,Biochem Int 26:767-773
(1992))。在大肠杆菌中具有水解酶活性的另外酶包括ybgC、paaI和ybdB(Kuznetsova,等,FEMSMicrobiol Rev,2005,29(2):263-279;Song等,J Biol Chem,2006,281(16):11028-
38)。尽管序列尚未报道,但来自豌豆叶线粒体的酶具有广泛的底物特异性,其中对乙酰CoA、丙酰CoA、丁酰CoA、棕榈酰CoA、油酰CoA、琥珀酰CoA和巴豆酰CoA的活性已证明(Zeiher等,Plant.Physiol.94:20-27(1990))。来自酿酒酵母的乙酰CoA水解酶ACH1代表另一候选水解酶(Buu等,J.Biol.Chem.278:17203-17209(2003))。
[0419]蛋白质 GenBank登录号 GI号 生物体
acot12 NP_570103.1 18543355 褐鼠
tesB NP_414986 16128437 大肠杆菌
acot8 CAA15502 3191970 智人
acot8 NP_570112 51036669 褐鼠
tesA NP_415027 16128478 大肠杆菌
ybgC NP_415264 16128711 大肠杆菌
paaI NP_415914 16129357 大肠杆菌
ybdB NP_415129 16128580 大肠杆菌
ACH1 NP_009538 6319456 酿酒酵母
[0420] 另外的水解酶包括3-羟基异丁酰CoA水解酶,其已被描述为在缬氨酸降解期间有效地催化3-羟基异丁酰CoA转化为3-羟基异丁酸(Shimomura等,J Biol Chem.269:14248-
14253(1994))。编码该酶的基因包括褐鼠(Shimomura等,Methods Enzymol.324:229-240
(2000))和智人(Shimomura等,同上)的hibch。类似的基因候选物也可以通过序列同源性来鉴定,包括酿酒酵母的hibch和蜡状芽孢杆菌的BC_2292。
[0421]蛋白质 GenBank No. GI号 生物体
hibch Q5XIE6.2 146324906 褐鼠
hibch Q6NVY1.2 146324905 智人
hibch P28817.2 2506374 酿酒酵母
BC_2292 AP09256 29895975 蜡状芽孢杆菌
[0422] EC 2.8.3.a CoA转移酶。2.8.3家族中的酶催化CoA部分从一个分子到另一个分子的可逆转移。在公开文献中已经描述了几种CoA转移酶,并且代表用于这些步骤的合适的候选物。这些在下面描述。
[0423] 许多转移酶具有广泛的特异性,因此可以利用多样的CoA分子,如乙酸、琥珀酸、丙酸、丁酸、2-甲基乙酰乙酸、3-酮己酸、3-酮戊酸、戊酸、巴豆酸、3-巯基丙酸、丙酸、乙烯基乙酸、丁酸等。例如,来自罗氏菌属物种A2-183(Roseburia sp.A2-183)的酶显示具有丁酰CoA:乙酸:CoA转移酶和丙酰CoA:乙酸:CoA转移酶活性(Charrier等,Microbiology 152,179-185(2006))。在例如肠道罗斯氏菌L1-82(Roseburia intestinalis L1-82)、
Roseburia inulinivorans DSM 16841、直肠真细菌ATCC 33656(Eubacterium rectale
ATCC 33656)中可以发现密切同源物。具有丙酰CoA转移酶活性的另一种酶可以在丙酸梭菌(Clostridium propionicum)中发现(Selmer等,Eur J Biochem 269,372-380(2002))。该酶可以使用乙酸、(R)-乳酸、(S)-乳酸、
丙烯酸和丁酸作为CoA受体(Selmer等,Eur J
Biochem 269,372-380(2002);Schweiger和Buckel,FEBS Letters,171(1)79-84(1984))。
例如,可以在例如诺维氏梭菌NT(Clostridium novyi NT)、拜氏梭菌NCIMB 8052和肉毒梭菌C菌株Eklund中发现密切同源物。YgfH在大肠杆菌中编码丙酰CoA:琥珀酸CoA转移酶
(Haller等,Biochemistry,39(16)4622-4629)。在例如杨氏柠檬酸杆菌ATCC 29220、肠道沙门氏菌亚种arizonae血清变型(Salmonella enterica subsp.arizonae serovar)和中间
耶尔森菌ATCC 29909中发现亲近的同源物。
[0424]
[0425] 另外的候选酶是已经显示具有3-氧代己二酰CoA/琥珀酸转移酶活性由假单胞菌属中的pcaI和pcaJ编码的双单元酶(Kaschabek等,同上)。不动杆菌属物种ADP1(Kowalchuk等,Gene 146:23-30(1994))和天蓝色链霉菌中存在基于同源性的类似酶。另外的示例性琥珀酰-CoA:3:氧代酸CoA转移酶存在于幽门螺杆菌(Corthesy-Theulaz等,
J.Biol .Chem.272:25659-25667(1997))和枯草芽孢杆菌(Stols等,
Protein.Expr.Purif.53:396-403(2007))中。这些蛋白质如下所示。
[0426]蛋白质 GenBank ID GI号 生物体
pcaI AAN69545.1 24985644 恶臭假单胞菌
pcaJ NP_746082.1 26990657 恶臭假单胞菌
pcaI YP_046368.1 50084858 ADP1
pcaJ AAC37147.1 141776 不动杆菌属物种ADP1
pcaI NP_630776.1 21224997 天蓝色链霉菌
pcaJ NP_630775.1 21224996 天蓝色链霉菌
HPAG1_0676 YP_627417 108563101 幽门螺杆菌
HPAG1_0677 YP_627418 108563102 幽门螺杆菌
ScoA NP_391778 16080950 枯草芽孢杆菌
ScoB NP_391777 16080949 枯草芽孢杆菌
[0427] 可以利用乙酸作为CoA受体的CoA转移酶是由大肠杆菌atoA(α亚基)和atoD(β亚基)基因编码的乙酰乙酰CoA转移酶(Vanderwinkel等,Biochem.Biophys.Res Commun.33:
902-908(1968);Korolev等,Acta Crystallogr.D Biol Crystallogr.58:2116-2121
(2002))。该酶还显示出将CoA部分从各种支链和线性酰基-CoA底物(包括异丁酸(Matthies等,Appl Environ Microbiol 58:1435-1439(1992))、戊酸(Vanderwinkel等,同上)和丁酸(Vanderwinkel等,同上)转移到乙酸。类似的酶存在于谷氨酸棒状杆菌ATCC13032(Duncan等,Appl Environ Microbiol 68:5186-5190(2002))、丙酮丁醇梭菌(Cary等,Appl
Environ Microbiol 56:1576-1583(1990))和糖丁酸梭菌(Kosaka等,Biosci.Biotechnol Biochem.71:58-68(2007))中。这些蛋白质如下所示。
[0428]
[0429]
[0430] 另外的示例性转移酶候选物由已经显示分别展现出琥珀酰CoA、4-羟基丁酰CoA和丁酰CoA转移酶活性的克氏梭菌的cat1、cat2和cat3的基因产物催化(Seedorf等,同上;Sohling等,Eur.J Biochem.212:121-127(1993);Sohling等,J Bacteriol.178:871-880
(1996))。类似的CoA转移酶活性也存在于阴道毛滴虫(van Grinsven等,J.Biol.Chem.283:
1411-1418(2008))和布氏锥虫(van Grinsven等,J.Biol.Chem.283:1411-1418(2008))中。
这些蛋白质如下所示。
[0431]蛋白质 GenBank ID GI号 生物体
cat1 P38946.1 729048 克氏梭菌
cat2 P38942.2 172046066 克氏梭菌
cat3 EDK35586.1 146349050 克氏梭菌
TVAG_395550 XP_001330176 123975034 阴道毛滴虫G3
Tb11.02.0290 XP_828352 71754875 布氏锥虫
[0432] 来自厌氧细菌发酵氨基酸球菌(Acidaminococcus fermentans)的戊烯二酸-CoA-转移酶(EC 2.8.3.12)与二酸戊烯二酰CoA和3-丁烯酰CoA反应(Mack等,FEBS Lett.405:
209-212(1997))。编码这种酶的基因是gctA和gctB。该酶对包括戊二酰CoA、2-羟基戊二酰CoA、己二酰CoA和丙烯酰CoA的其他CoA衍生物具有降低但可检测的活性(Buckel等,
Eur.J.Biochem.118:315-321(1981))。该酶已被克隆并在大肠杆菌中表达(Mack等,
Eur.J.Biochem.226:41-51(1994))。这些蛋白质如下所示。
[0433]
[0434] EC 6.2.1.a CoA合酶(酸-硫醇连接酶)。酰基-CoA底物向其酸产物的转化可以由6.2.1家族酶中的CoA酸-硫醇连接酶或CoA合成酶催化,其中几种酶是可逆的。已经在文献中描述了催化CoA酸-硫醇连接酶或CoA合成酶活性的几种酶,并且代表用于这些步骤的合适候选物。
[0435] 例如,ADP形成乙酰CoA合成酶(ACD,EC 6.2.1.13)是一种将酰基-CoA酯转化为其对应酸并伴随ATP合成的酶。已显示由AF1211编码的来自闪烁古生球菌的ACD I对包括异丁酸、异戊酸和富马酸在内的各种线性和支链底物起作用(Musfeldt等,J Bacteriol.184:636-644(2002))。由AF1983编码的闪烁古生球菌中的第二种可逆ACD也显示出具有宽的底物范围,对环状化合物苯乙酸酯和吲哚乙酸酯具有高活性(Musfeldt和Schonheit,J
Bacteriol.184:636-644(2002))。来自死海盐盒菌的酶(注释为琥珀酰CoA合成酶)接受丙酸、丁酸和支链酸(异戊酸和异丁酸)作为底物,并且显示其在正向和反向方向上都有作用(Brasen等,Arch Microbiol182:277-287(2004))。来自超嗜热泉古菌耐超高温热棒菌由
PAE3250编码的ACD显示在所述表征ACD中显示出最宽底物范围,与乙酰CoA、异丁酰CoA(优选底物)和苯乙酰CoA反应(Brasen等,同上)。定向进化或改造可用于修饰该酶以在宿主生物体的生理温度下作用。已经将来自闪烁古生球菌(A.fulgidus)、死海盐盒菌
(H.marismortui)和耐超高温热棒菌(P.aerophilum)的酶全部克隆,在大肠杆菌中功能性表达并表征(Brasen和Schonheit,同上;Musfeldt和Schonheit,J Bacteriol.184:636-644(2002))。另外的候选物是由大肠杆菌的sucCD以及酿酒酵母的LSC1和LSC2基因编码的琥珀酰CoA合成酶。这些酶催化在体内可逆的反应中由琥珀酸形成琥珀酰CoA,同时消耗一个ATP(Buck等,Biochemistry 24:6245-6252(1985))。已经证明来自恶臭假单胞菌的酰基CoA连接酶对几种脂族底物起作用,包括乙酸、丙酸、丁酸、戊酸、己酸、庚酸和辛酸;以及对芳族化合物起作用 ,例如苯乙酸 和苯氧乙酸 (Fernand ez-Valverde等 ,
Appl.Environ.Microbiol.59:1149-1154(1993))。来自豆科植物根瘤菌(Rhizobium
leguminosarum)的相关酶丙二酰辅酶A合成酶(6.3.4.9)可以将几种二酸,即乙基-丙二酸、丙基-丙二酸、烯丙基-丙二酸、异丙基-丙二酸、二甲基-丙二酸、环丙基-丙二酸、环丙基亚甲基-丙二酸、环丁基-丙二酸、和苄基-丙二酸转化为其对应的一硫代酯(Pohl等,
J.Am.Chem.Soc.123:5822-5823(2001))。
[0436]蛋白质 GenBank ID GI号 生物体
AF1211 NP_070039.1 11498810 闪烁古生球菌
AF1983 NP_070807.1 11499565 闪烁古生球菌
Scs YP_135572.1 55377722 死海盐盒菌
PAE3250 NP_560604.1 18313937 耐超高温热棒菌菌株IM2
sucC NP_415256.1 16128703 大肠杆菌
sucD AAC73823.1 1786949 大肠杆菌
LSC1 NP_014785 6324716 酿酒酵母
LSC2 NP_011760 6321683 酿酒酵母
paaF AAC24333.2 22711873 恶臭假单胞菌
matB AAC83455.1 3982573 豆科植物根瘤菌
[0437] 用于这些步骤的另一种候选酶是6-羧基己酸-CoA连接酶,也称为庚二酰CoA连接酶(EC 6.2.1.14),其在革兰氏阳性细菌的生物素生物合成期间天然地将庚二酸酯活化为庚二酰CoA。显示克隆到大肠杆菌中的来自门多萨假单胞菌(Pseudomonas mendocina)的所述酶接受替代的底物
己二酸和
壬二酸(Binieda等,Biochem.J 340(Pt 3):793-801
(1999))。在枯草芽孢杆菌(Bower等,J Bacteriol.178:4122-4130(1996)和球形赖氨酸芽孢杆菌(原名球形芽孢杆菌(Bacillus sphaericus))(Ploux等,Biochem.J 287(Pt3):685-
690(1992))中发现另一些候选物
[0438]蛋白质 GenBank ID GI号 生物体
bioW NP_390902.2 50812281 枯草芽孢杆菌
bioW CAA10043.1 3850837 门多萨假单胞菌
bioW P22822.1 115012 球形芽孢杆菌
[0439] 另外的CoA连接酶包括序列尚未表征的大鼠二羧酸-CoA连接酶(Vamecq等,Biochem.J 230:683-693(1985))、两种表征的来自产黄青霉的苯乙酸-CoA连接酶中任一种(Lamas-Maceiras等,Biochem.J 395:147-155(2006);Wang等,360:453-458(2007))、来自恶臭假单胞菌的苯乙酸-CoA连接酶(Martinez-Blanco等,J Biol Chem 265:7084-7090
(1990))和来自枯草芽孢杆菌的6-羧基己酸-CoA连接酶(Bower等J Bacteriol178(14):
4122-4130(1996))。来自小鼠(Hasegawa等,Biochim Biophys Acta1779:414-419(2008))和智人(Ohgami等,Biochem.Pharmacol.65:989-994(2003))的乙酰乙酰CoA合成酶天然催
化乙酰乙酸向乙酰乙酰CoA的ATP依赖性转化。
[0440]蛋白质 登录号 GI号 生物体
phl CAJ15517.1 77019264 产黄青霉
phlB ABS19624.1 152002983 产黄青霉
paaF AAC24333.2 22711873 恶臭假单胞菌
bioW NP_390902.2 50812281 枯草芽孢杆菌
AACS NP_084486.1 21313520 小鼠
AACS NP_076417.2 31982927 智人
[0441] 类似于他类别的酶,EC类6.2.1中的某些酶也已经被确定具有广泛的底物特异性。已经证明来自恶臭假单胞菌的酰基CoA连接酶对几种脂族底物起作用,包括乙酸、丙酸、丁酸、戊酸、己酸、庚酸和辛酸;以及对芳族化合物起作用,例如苯乙酸和苯氧乙酸
(Fernandez-Valverde等,Applied and Environmental Microbiology 59:1149-1154
(1993))。来自三叶草根瘤菌(Rhizobium trifolii)的相关酶丙二酰CoA合成酶(6.3.4.9)可以将几种二酸,即乙基丙二酸、丙基丙二酸、烯丙基丙二酸、异丙基丙二酸、二甲基丙二酸、环丙基丙二酸、环丙基亚甲基丙二酸、环丁基丙二酸、和苄基丙二酸转化为其对应的一硫代酯(Pohl等,J.Am.Chem.Soc.123:5822-5823(2001))。
[0442] 图1:步骤M:巴豆酸还原酶:
[0443] 合适的酶活性是1.2.1.e氧化还原酶(酸到醛),其包括以下物质。
[0444] 酸向醛的转化是
热力学不利的,并且通常需要富含能量的辅因子和多个酶促步骤。通过单一酶将酸直接转化为醛是由1.2.1家族中的酸还原酶催化。示例性的酸还原酶包括羧酸还原酶、α-氨基己二酸还原酶和视黄酸还原酶。在艾阿华诺卡菌中发现的羧酸还原酶(CAR)催化羧酸向其对应醛的镁、ATP和NADPH依赖性还原(Venkitasubramanian等,J
Biol.Chem.282:478-485(2007))。该酶的天然底物是
苯甲酸,并且该酶显示广泛接受芳族底物,包括对
甲苯甲酸(Venkitasubramanian等,Biocatalysis in Pharmaceutical and Biotechnology Industries.CRC press(2006))。克隆由car编码的来自艾阿华诺卡菌的酶并在大肠杆菌中功能性表达(Venkitasubramanian等,J Biol.Chem.282:478-485(2007))。
CAR需要通过磷酸泛酰巯基乙胺转移酶(PPTase)的翻译后活化,这将无活性的脱辅基酶转化为活性全酶(Hansen等,Appl.Environ.Microbiol 75:2765-2774(2009))。编码特定
PPTase产物的npt基因的表达改善酶的活性。在灰色链霉菌中发现的另外酶候选物由griC和griD基因编码。认为该酶将3-氨基-4-羟基苯甲酸转化为3-氨基-4-羟基
苯甲醛,因为
griC或griD的缺失均导致细胞外3-乙酰基氨基-4-羟基苯甲酸(3-氨基-4-羟基苯甲酸的分路产物)累积(Suzuki,等,J.Antibiot.60(6):380-387(2007))。griC和griD与SGR_665(一种序列与艾阿华诺卡菌npt具有相似性的酶)的共表达可以是有益的。
[0445]基因 GenBank登录号 GI号 生物体
car AAR91681.1 40796035 艾阿华诺卡菌
npt ABI83656.1 114848891 艾阿华诺卡菌
griC YP_001825755.1 182438036 灰色链霉菌
griD YP_001825756.1 182438037 灰色链霉菌
[0446] 另外的car和npt基因可以基于序列同源性来鉴定。
[0447]
[0448]
[0449] 具有类似特征的酶α-氨基己二酸还原酶(AAR,EC 1.2.1.31)在一些真菌物种中参与赖氨酸生物合成途径。该酶天然地将α-氨基己二酸还原成α-氨基己二酸半醛。首先通过腺苷酸的ATP依赖性形成活化羧基,然后通过NAD(P)H还原生成醛和AMP。类似于CAR一样,这种酶利用镁,并且需要通过PPTase活化。在酿酒酵母(Morris等,Gene 98:141-145(1991))、白色念珠菌(Guo等,Mol.Genet.Genomics 269:271-279(2003))和粟酒裂殖酵母(Ford等,Curr.Genet.28:131-137(1995))中发现AAR及其相应PPTase的酶候选物。来自粟酒裂殖酵母(S.pombe)的AAR当在大肠杆菌中表达时显示出显著活性(Guo等,Yeast 21:1279-1288
(2004))。来自产黄青霉的AAR接受S-羧甲基-L-半胱氨酸作为替代底物,但不与己二酸、L-谷氨酸或二氨基庚二酸反应(Hijarrubia等,J Biol.Chem.278:8250-8256(2003))。编码产黄青霉PPTase的基因迄今为止还没有被鉴定,并且通过序列比较同源性检索未鉴定出高
置信度命中物。
[0450]基因 GenBank登录号 GI号 生物体
LYS2 AAA34747.1 171867 酿酒酵母
LYS5 P50113.1 1708896 酿酒酵母
LYS2 AAC02241.1 2853226 白色念珠菌
LYS5 AAO26020.1 28136195 白色念珠菌
Lys1p P40976.3 13124791 粟酒裂殖酵母
Lys7p Q10474.1 1723561 粟酒裂殖酵母
Lys2 CAA74300.1 3282044 产黄青霉
[0451] 图1:步骤N:巴豆醛还原酶。EC 1.1.1.a氧化还原酶(氧到醇)提供了合适的酶活性。EC 1.1.1.a氧化还原酶(氧到醇)包括以下:
[0452] 戊二酸半醛还原酶将戊二酸半醛还原为5-羟基戊酸需要将醛还原为其对应的醇。具有戊二酸半醛还原酶活性的酶包括土曲霉的ATEG_00539基因产物和由4hbd编码的拟南
芥的4-羟基丁酸脱氢酶(WO 2010/068953A2)。克隆拟南芥酶并在酵母中表征(Breitkreuz等,J.Biol.Chem.278:41552-41556(2003))。
[0453]蛋白质 GENBANK ID GI号 生物体
ATEG_00539 XP_001210625.1 115491995 土曲霉NIH2624
4hbd AAK94781.1 15375068 拟南芥
[0454] 编码催化醛还原成醇的酶(即醇脱氢酶或等同地醛还原酶)的另外基因包括编码C2-C14的中链醇脱氢酶的alrA(Tani et al.,Appl.Environ.Microbiol.66:5231-5235
(2000))、来自大肠杆菌的yqhD和fucO(Sulzenbacher等,342:489-502(2004)))以及来自丙酮丁醇梭菌的bdh I和bdh II,其将丁醛转化为丁醇(Walter等,174:7149-7158(1992))。
YqhD使用NADPH作为辅因子催化广泛范围的醛的还原,其中优选超过C(3)的链长度
(Sulzenbacher等,342:489-502(2004);Perez等,J Biol.Chem.283:7346-7353(2008))。已经证明来自运动发酵单胞菌E(Zymomonas mobilisE)的adhA基因产物对许多醛(包括甲醛、乙醛、丙醛、丁醛和丙烯醛)具有活性(Kinoshita等,Appl Microbiol Biotechnol 22:249-
254(1985))。另外的醛还原酶候选物由糖丁酸梭菌(C.saccharoperbutylacetonicum)中的bdh以及拜氏梭菌(C.Beijerinckii)中的Cbei_1722、Cbei_2181和Cbei_2421编码。酿酒酵母中的另外醛还原酶基因候选物包括醛还原酶GRE3、ALD2-6和HFD1,
乙醛酸还原酶GOR1和YPL113C,以及甘油脱氢酶GCY1(WO 2011/022651A1;Atsumi等等,Nature 451:86-89
(2008))。先前描述用于催化甲基乙二醛还原成丙酮醇或乳醛的酶候选物也是合适的乳醛还原酶候选物。
[0455]
[0456]
[0457] 显示4-羟基丁酸脱氢酶活性的酶(EC 1.1.1.61)也属于这一类别。这样的酶已经在富养罗尔斯通氏菌(Bravo等,J Forens Sci,49:379-387(2004))和克氏梭菌(Wolff等,
Protein Expr.Purif.6:206-212(1995))中表征。另一种基因是来自热葡糖苷酶地芽胞杆菌的醇脱氢酶adhI(Jeon等,J Biotechnol 135:127-133(2008))。
[0458]蛋白质 GENBANK ID GI号 生物体
4hbd YP_726053.1 113867564 富养罗尔斯通氏菌H16
4hbd L21902.1 146348486 克氏梭菌DSM 555
adhI AAR91477.1 40795502 热葡糖苷酶地芽胞杆菌
[0459] 另一种示例性醛还原酶是甲基丙二酸半醛还原酶,也称为3-羟基异丁酸脱氢酶(EC 1.1.1.31)。该酶参与缬氨酸、亮氨酸和异亮氨酸降解,并已在细菌、真核生物和哺乳动物中鉴定到。由来自嗜热栖热菌HB8(Thermus thermophilus HB8)的P84067编码的酶已在结构上表征(Lokanath等,J Mol Biol,352:905-17(2005))。使用同位素标记的底物证明人
3-羟基异丁酸脱氢酶的可逆性(Manning等,Biochem J,231:481-4(1985))。编码这种酶的另外基因包括智人(Hawes等,Methods Enzymol,324:218-228(2000))和穴兔(Hawes等,同
上;Chowdhury等,Biosci.Biotechnol Biochem.60:2043-2047(1996))的3hidh、铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa)和恶臭假单胞菌中的mmsB,以及恶臭假单胞菌中的dhat
(Aberhart等,J Chem.Soc.[Perkin 1]6:1404-1406(1979);Chowdhury等,
Biosci.Biotechnol Biochem.60:2043-2047(1996);Chowdhury等,Biosci.Biotechnol
Biochem.67:438-441(2003))。已经在还原方向表征了几种3-羟基异丁酸脱氢酶,包括来自铜绿假单胞菌的mmsB(Gokarn等,US专利739676,(2008))和来自恶臭假单胞菌的mmsB。
[0460]蛋白质 GENBANK ID GI号 生物体
P84067 P84067 75345323 嗜热栖热菌
3hidh P31937.2 12643395 智人
3hidh P32185.1 416872 穴兔
mmsB NP_746775.1 26991350 恶臭假单胞菌
mmsB P28811.1 127211 铜绿假单胞菌
dhat Q59477.1 2842618 恶臭假单胞菌
[0461] 存在几种将酮转化为羟基官能团的示例性醇脱氢酶。来自大肠杆菌的两种这样的酶由苹果酸脱氢酶(mdh)和乳酸脱氢酶(ldhA)编码。此外,来自富养罗尔斯通氏菌的乳酸脱氢酶已表明显示出对各种链长度的2-酮酸(包括乳酸、2-氧代丁酸、2-氧代戊酸、和2-氧代戊二酸)具有高活性(Steinbuchel等,Eur.J.Biochem.130:329-334(1983))。将α-酮己二酸转化为α-羟基己二酸可以由2-酮己二酸还原酶催化,所述酶被报道在大鼠和人胎盘中发现(Suda等,Arch .Biochem .Biophys .176:610-620(1976);Suda等,Biochem.Biophys.Res.Commun.77:586-591(1977))。另外的氧化还原酶是已克隆并表征的来自人心脏的线粒体3-羟基丁酸脱氢酶(bdh)(Marks等,J.Biol.Chem.267:15459-15463
(1992))。拜氏梭菌(Ismaiel等,J.Bacteriol.175:5097-5105(1993))和布氏嗜热厌氧杆菌(T.brockii)(Lamed等,Biochem.J.195:183-190(1981);Peretz等,Biochemistry.28:
6549-6555(1989))的醇脱氢酶将丙酮转化为异丙醇。甲基乙基酮还原酶催化MEK还原为2-丁醇。示例性的MEK还原酶可见于赤红球菌(Rhodococcus ruber)(Kosjek等,Biotechnol Bioeng.86:55-62(2004))和激烈火球菌(an der Oost等,Eur.J.Biochem.268:3062-3068
(2001))中。
[0462]蛋白质 Genbank ID GI号 生物体
mdh AAC76268.1 1789632 大肠杆菌
ldhA NP_415898.1 16129341 大肠杆菌
ldh YP_725182.1 113866693 富养罗尔斯通氏菌
bdh AAA58352.1 177198 智人
adh AAA23199.2 60592974 拜氏梭菌NRRL B593
adh P14941.1 113443 布氏嗜热厌氧杆菌HTD4
sadh CAD36475 21615553 赤红球菌
adhA AAC25556 3288810 激烈火球菌
[0463] 许多生物体编码催化3-氧代丁醇还原为1,3-丁二醇的基因,包括属于芽孢杆菌属(Bacillus)、短杆菌属(Brevibacterium)、念珠菌属和克雷伯菌属(Klebsiella)等的那些,如Matsuyama等J Mol Cat B Enz,11:513-521(2001)所述的。这些酶中的一种,来自近平滑念珠菌(Candida parapsilosis)的SADH已克隆并在大肠杆菌中表征。还已经显示,突变的红球菌苯乙醛还原酶(Sar268)和Leifonia醇脱氢酶以高产率催化该转化(Itoh等,Appl.Microbiol Biotechnol.75:1249-1256(2007))。
[0464]蛋白质 Genbank ID GI号 生物体
sadh BAA24528.1 2815409 近平滑念珠菌
[0465] 图1:步骤U:巴豆酰CoA还原酶(醇形成):
[0466] 巴豆酰CoA底物直接转化为其对应醇由具有酰基CoA还原酶(醛形成)活性和醛还原酶或醇脱氢酶活性的双功能酶催化。本文描述了将酰基-CoA转化为醇的示例性双功能氧化还原酶。合适的是巴豆醛还原酶(醇形成),其催化从巴豆酰CoA形成巴豆醇所需的2个还原步骤。下文提供了将酰基-CoA转化为醇的示例性的两步氧化还原酶。这样的酶可以天然地将巴豆酰CoA转化为巴豆醇,或者可以被改造成这样做。这些酶包括将底物如乙酰CoA转化为乙醇(例如,来自大肠杆菌的adhE(Kessler等,FEBS.Lett.281:59-63(1991)))和将丁酰CoA转化为丁醇(例如来自丙酮丁醇梭菌的adhE2(Fontaine等,J.Bacteriol.184:821-
830(2002)))的那些。来自丙酮丁醇梭菌的adhE2酶特别地在参考文献(Burk等,同上
(2008))中表明由4-羟基丁酰CoA生产BDO。除将乙酰-CoA还原成乙醇之外,肠系膜明串珠菌中由adhE编码的酶还已经显示出将支链化合物异丁醛氧化为异丁酰CoA(Kazahaya等,
J.Gen.Appl.Microbiol.18:43-55(1972);Koo等,Biotechnol.Lett.27:505-510(2005))。
[0467]蛋白质 GenBank ID GI号 生物体
adhE NP_415757.1 16129202 大肠杆菌
adhE2 AAK09379.1 12958626 丙酮丁醇梭菌
adhE AAV66076.1 55818563 肠系膜明串珠菌
[0468] 另一种示例性酶是将丙二酰CoA转化为3-HP的酶。具有这种活性的NADPH依赖性酶已在嗜热光全绿丝菌中表征,其中其参与3-羟基丙酸循环(Hugler等人,同上(2002);Strauss等,215:633-643(1993))。
质量为300kDa的该酶是高度底物特异性的,并且显示与其他已知氧化还原酶几乎没有序列相似性(Hugler等,同上(2002))。其他生物中没有酶显示催化这种特异性反应;然而有生物信息学证据表明其他生物体可以具有类似的途径
(Klatt等,Environ Microbiol.9:2067-2078(2007))。其他生物体(包括光合玫瑰菌、赤细菌属物种NAP1和海洋γ变形菌HTCC2080)中的候选酶可以通过序列相似性推断。
[0469]蛋白质 GenBank ID GI号 生物体
mcr AAS20429.1 42561982 嗜热光全绿丝菌
Rcus_2929 YP_001433009.1 156742880 光合玫瑰菌
NAP1_02720 ZP_01039179.1 85708113 赤细菌属物种NAP1
MGP2080_00535 ZP_01626393.1 119504313 海洋γ变形菌HTCC2080
[0470] 图1:步骤VD:巴豆醇脱水酶:
[0471] 使用巴豆醇脱水酶将巴豆醇转化为丁二烯包括本文所述的芳樟醇脱水酶的酶变体。尽管不受理论的束缚,但是芳樟醇脱水酶具有两种活性:即巴豆醇到3-丁烯-2-醇的酶促异构化和3-丁烯-2-醇到丁二烯的脱水。关于野生型芳樟醇脱水酶的克隆、表达和研究,参见Brodkorb等,J Biol Chem285:30436-42(2010)。
[0472] 周质靶向序列、信号肽
[0473] 在一些替代实施方案中,本文提供的多肽进一步包含(或由其组成)同源或异源信号序列或信号肽(术语“信号肽”和“信号序列”可互换使用并且两者均包括各种类别的靶向和信号传导肽),例如周质靶向序列(PTS)或周质信号序列(PSS)或者具有PTS或PSS活性的多肽或肽;或者真核信号序列。在一些替代实施方案中,本文提供的多肽可进一步包含(替代其天然信号序列)任何周质靶向序列(PTS)或周质信号序列(PSS),例如任何翻译后SecB靶向途径PTS或PSS;任何共翻译信号识别颗粒(SRP)-靶向途径PTS或PSS;或任何双精氨酸转位(TAT)Sec独立系统PTS或PSS。
[0474] 例如,图2举例说明了可以用于实施本发明例如在本文提供的成熟或经加工酶上(与其操作性连接)的示例性异源信号序列,例如示例性的LinD多肽SEQ ID NO:16,其为不具有其天然信号序列的(其为信号肽SEQ ID NO:20)全长多肽SEQ ID NO:12的成熟形式。例如,图2的任何信号序列或其他信号序列用于代替全长示例性LinD酶SEQ ID NO:12的天然信号序列。示例性LinD多肽SEQ ID NO:12含有本文所述的sec依赖性周质靶向序列(PTS)
(肽SEQ ID NO:20)。在一些替代实施方案中,示例性LinD多肽的PTS被所示sec依赖性和SRP依赖性PTS各自替代,如图2所示,以及被基于TAT的序列替代(未示出)。类似地,在一些替代实施方案中,本文提供了其天然信号序列(分别包括SEQ ID NO:20、20、39、45、51、57、20、
68、76、82、88、94或100)被图2的信号序列或另外信号序列替代的示例性全长LinD多肽SEQ ID NO:12、22、37、43、49、55、64、66、74、80、86、92或98。
[0475] 在一些替代实施方案中,本文提供了与另一种多肽(例如另一种LinD多肽,例如SEQ ID NO:2)操作性连接的新信号序列,包括SEQ ID NO:20、39、45、51、57、68、76、82、88、
94或100(其中本文提供的信号序列替换SEQ ID NO:2的天然信号序列或SEQ ID NO:8)。
[0476] 异源信号序列是功能性的,即当信号序列与其来源的多肽不同的多肽操作性连接时具有功能性。例如,如图3A和图3B所示,用来自大肠杆菌周质蛋白的PTS替代来自解芳烃卡斯特兰尼氏菌65Phen的野生型(WT)LinD(SEQ ID NO:2)的WT PTS(SEQ ID NO:8),在大肠杆菌中表达并测定丁二烯活性。图3A:Sec依赖性PTS和TAT-SEC PTS显示具有与野生型靶向序列相似的活性;图3B:与野生型PTS相当的信号肽以黄色突出显示(LamB ss、MalE ss、PelB ss、FhuD)并且显著降低活性的信号肽以红色突出显示(MalE和YcdO)。
[0477] 在Geneious中进行使用MUSCLE(MUSCLE:高
精度和高通量的多序列比对)比对计算的%ID;Edgar(2004)Nucleic Acids Research32(5):1792-7。
[0478] 总结示例性序列:
[0479] 来自解芳烃卡斯特兰尼氏菌65Phen的芳樟醇脱水酶(LinD)(表示为GMN2753)
[0480] SEQ ID NO:1编码野生型(WT)芳樟醇脱水酶多肽SEQ ID NO:2的天然核酸序列;包括信号肽编码序列
[0481] SEQ ID NO:2天然全长野生型芳樟醇脱水酶多肽
[0482] SEQ ID NO:3编码SEQ ID NO:2的经密码子优化核酸
[0483] SEQ ID NO:4编码SEQ ID NO:2的经密码子优化核酸
[0484] SEQ ID NO:5编码SEQ ID NO:6的经密码子优化核酸
[0485] SEQ ID NO:6SEQ ID NO:2野生型芳樟醇脱水酶的成熟(经加工)形式
[0486] SEQ ID NO:7
编码信号序列SEQ ID NO:8的天然核酸
[0487] SEQ ID NO:8来自SEQ ID NO:2的信号序列肽
[0488] SEQ ID NO:9编码SEQ ID NO:10的核酸;通过具有12个密码子替代而不同于SEQ ID NO:4。
[0489] SEQ ID NO:10SEQ ID NO:2的全长多肽变体;具有12个替代
[0490] 来自解芳烃卡斯特兰尼氏菌62Car的芳樟醇脱水酶(LinD);表示为GNM9819
[0491] SEQ ID NO:11编码SEQ ID NO:12的天然核酸;包括信号肽
[0492] SEQ ID NO:12来自解芳烃卡斯特兰尼氏菌62Car的具有信号肽的全长野生型LinD
[0493] SEQ ID NO:13(编码全长SEQ ID NO:12的第一经密码子优化核酸;表示为GNM9819A)
[0494] SEQ ID NO:14(编码全长SEQ ID NO:12的第二经密码子优化核酸;表示为GNM9819B)
[0495] SEQ ID NO:15(编码SEQ ID NO:16的天然核酸;SEQ ID NO:11核酸的经加工(成熟)形式,GNM 9819)
[0496] SEQ ID NO:16(LinD多肽SEQ ID NO:12的成熟形式(GNM 9819))
[0497] SEQ ID NO:17:(编码SEQ ID NO:16的经密码子优化核酸(由SEQ ID NO:13GNM 9819A缩短)
[0498] SEQ ID NO:18:(编码SEQ ID NO:16的经密码子优化核酸(由SEQ ID NO:14GNM 9819B缩短)
[0499] SEQ ID NO:19(编码信号序列SEQ ID NO:20的天然核酸;来自SEQ ID NO:11)
[0500] SEQ ID NO:20(来自SEQ ID NO:12的信号肽(GNM 9819))
[0501] SEQ ID NO:21(编码全长变体SEQ ID NO:22的核酸,表示为9819C;通过具有11个密码子替代而不同于野生型SEQ ID NO:13GNM9819A)
[0502] SEQ ID NO:22(具有11个氨基酸替换的V19I、Y71F、G74S、G133M、R171K、I182L、V196F、D200N、F325S、G365S、L368F的全长变体SEQ ID NO:12(GNM9819);表示为9819C)[0503] SEQ ID NO:23(变体酶:与来自解芳烃卡斯特兰尼氏菌65Phen的成熟形式野生型linD(SEQ ID NO:6)融合的SEQ ID NO:25(异源信号序列LamB ss)
[0504] SEQ ID NO:24(变体酶:与来自解芳烃卡斯特兰尼氏菌62Car的成熟形式野生型酶(SEQ ID NO:16)融合的SEQ ID NO:25(异源信号序列LamBss)
[0505] SEQ ID NO:25(肽:异源信号序列(ss)LamBss(或LamB ss))
[0506] SEQ ID NO:26(肽:异源信号序列MalE ss)
[0507] SEQ ID NO:27(肽:异源信号序列MglBss)
[0508] SEQ ID NO:28(肽:异源信号序列OmpAss)
[0509] SEQ ID NO:29(肽:异源信号序列PelBss)
[0510] SEQ ID NO:30(肽:异源信号序列PhoAss)
[0511] SEQ ID NO:31(肽:异源信号序列DsbAss)
[0512] SEQ ID NO:32(肽:异源信号序列SfmCss)
[0513] SEQ ID NO:33(肽:异源信号序列TolBss)
[0514] SEQ ID NO:34(肽:异源信号序列TorTss)
[0515] SEQ ID NO:35(肽:异源信号序列FhuD ss)
[0516] 来自富集月桂烯的Padre Dam的活化
污泥的宏基因组学的芳樟醇脱水酶(LinD),表示为GNM 9874
[0517] SEQ ID NO:36编码SEQ ID NO:37的天然核酸,SEQ ID NO:37是未经加工的且包括其信号肽
[0518] SEQ ID NO:37:天然的或未加工的LinD酶,包括信号肽
[0519] SEQ ID NO:38:编码GNM 9874信号肽的核酸
[0520] SEQ ID NO:39:GNM 9874信号肽
[0521] SEQ ID NO:40:编码经加工的GNM 9874LinD酶的核酸,无信号肽
[0522] SEQ ID NO:41:经加工的GNM 9874LinD酶,无信号肽
[0523] (全长GNM 9874多肽与全长GNM 2753具有99%的序列同一性;成熟或经加工的GNM 9874多肽与经加工的GNM 2753具有99%序列同一性)
[0524] (全长GNM 9874多肽与全长GNM 9819具有94%序列同一性;成熟或经加工的GNM 9874多肽与经加工的GNM 9819具有96%序列同一性)
[0525] 来自富集月桂烯的Camp Pendleton的活化污泥的宏基因组学的芳樟醇脱水酶(LinD)(二次富集),表示为GNM 9873
[0526] SEQ ID NO:42编码SEQ ID NO:43的天然核酸,SEQ ID NO:43是未加工的且包括其信号肽
[0527] SEQ ID NO:43:天然或未经加工的LinD酶,包括信号肽
[0528] SEQ ID NO:44:编码GNM 9873信号肽的核酸
[0529] SEQ ID NO:45:GNM 9873信号肽
[0530] SEQ ID NO:46:编码经加工的GNM 9873LinD酶的核酸,无信号肽
[0531] SEQ ID NO:47:经加工的GNM 9873LinD酶,不含信号肽
[0532] (全长GNM 9873多肽与全长GNM 2753具有75%序列同一性;成熟或经加工的GNM 9873多肽与经加工的GNM 2753具有79%序列同一性)
[0533] (全长GNM 9873多肽与全长GNM 9819具有75%序列同一性;成熟或经加工的GNM 9873多肽与经加工的GNM 9819具有79%序列同一性)
[0534] 来自富集月桂烯的Camp Pendleton的活化污泥的宏基因组学的芳樟醇脱水酶(LinD)(初级富集),表示为GNM 9875
[0535] SEQ ID NO:48:编码SEQ ID NO:49的天然核酸,SEQ ID NO:49是未经加工的且包括其信号肽
[0536] SEQ ID NO:49:天然或未经加工的LinD酶,包括信号肽
[0537] SEQ ID NO:50:编码GNM 9875信号肽的核酸
[0538] SEQ ID NO:51:GNM 9875信号肽
[0539] SEQ ID NO:52:编码经加工的GNM 9875LinD酶的核酸,无信号肽
[0540] SEQ ID NO:53:经加工的GNM 9875LinD酶,无信号肽
[0541] (全长GNM 9875多肽与全长GNM 2753具有78%序列同一性;成熟或经加工的GNM 9875多肽与经加工的GNM 2753具有82%序列同一性)
[0542] (全长GNM 9875多肽与全长GNM 9819具有78%序列同一性;成熟或经加工的GNM 9875多肽与经加工的GNM 9819具有81%序列同一性)
[0543] 来自活化污泥(Camp Pendleton)的宏基因组学的芳樟醇脱水酶(LinD),表示为GNM 9894
[0544] SEQ ID NO:54:编码SEQ ID NO:55的天然核酸,其是未经加工的且包括其信号肽[0545] SEQ ID NO:55:天然或未经加工的LinD酶,包括信号肽
[0546] SEQ ID NO:56:编码GNM 9894信号肽的核酸
[0547] SEQ ID NO:57:GNM 9894信号肽
[0548] SEQ ID NO:58:编码经加工的GNM 9894LinD酶的核酸,无信号肽
[0549] SEQ ID NO:59:经加工的GNM 9894LinD酶,无信号肽
[0550] (全长GNM 9894多肽与全长GNM 2753具有78%序列同一性;成熟或经加工的GNM 9894多肽与经加工的GNM 2753具有81%序列同一性)
[0551] (全长GNM 9894多肽与全长GNM 9819具有78%序列同一性;成熟或经加工的GNM 9894多肽与经加工的GNM 9819具有81%序列同一性)
[0552] 来自活化污泥(Camp Pendleton)的宏基因组学的芳樟醇脱水酶(LinD),表示为GNM 9895
[0553] SEQ ID NO:60:编码SEQ ID NO:61的天然核酸,SEQ ID NO:61是未经加工的且包括其未鉴定到信号肽切割位点的信号肽
[0554] SEQ ID NO:61:天然或未经加工的LinD酶,包括未鉴定到信号肽切割位点的信号肽。
[0555] SEQ ID NO:62:具有A196F修饰的LinD酶SEQ ID NO:61;表示为9895B。
[0556] (全长GNM 9895多肽与全长GNM 2753具有66%序列同一性。
[0557] (全长GNM 9895多肽与全长GNM 9819具有65%序列同一性。
[0558] 芳樟醇脱水酶(LinD)(具有7个突变(氨基酸变化)的GNM 9819的经改造变体:G74S、G133Q、R171K、I182K、V196F、D200G、G365S);表示为GNM9819T
[0559] SEQ ID NO:63:编码SEQ ID NO:64的天然核酸,SEQ ID NO:64是未经加工的且包括其信号肽
[0560] SEQ ID NO:64:天然或未经加工的改造LinD酶,包括信号肽。
[0561] 来自活化污泥(Camp Pendleton)的宏基因组学的芳樟醇脱水酶(LinD),表示为GNM 10038
[0562] SEQ ID NO:65:编码SEQ ID NO:66的天然核酸,SEQ ID NO:66是未经加工的且包括其信号肽
[0563] SEQ ID NO:66:天然或未经加工的LinD酶GNM 10038,包括信号肽
[0564] SEQ ID NO:67:编码GNM 10038信号肽的核酸
[0565] SEQ ID NO:68:GNM 10038信号肽
[0566] SEQ ID NO:69:编码经加工(成熟)GNM 10038LinD酶的核酸,无信号肽
[0567] SEQ ID NO:70:经加工(成熟)的GNM 10038 LinD酶,无信号肽
[0568] 来自活化污泥(Camp Pendleton)的宏基因组学的芳樟醇脱水酶(LinD),表示为GNM 10039
[0569] SEQ ID NO:71:编码SEQ ID NO:72的天然核酸,SEQ ID NO:72是未经加工的且包括其未鉴定到信号肽切割位点的信号肽。
[0570] SEQ ID NO:72:天然或未经加工的LinD酶GNM 10039,包括未鉴定到信号肽切割位点的信号肽。
[0571] 来自土壤样品(Cottonwood河)的宏基因组学的芳樟醇脱水酶(LinD),表示为GNM 10058
[0572] SEQ ID NO:73:编码SEQ ID NO:74的天然核酸,SEQ ID NO:74是未经加工的且包括其信号肽
[0573] SEQ ID NO:74:天然或未经加工的LinD酶GNM 10058,包括信号肽
[0574] SEQ ID NO:75:编码GNM 10058信号肽的核酸
[0575] SEQ ID NO:76:GNM 10058信号肽
[0576] SEQ ID NO:77:编码经加工(成熟)GNM 10058LinD酶的核酸,无信号肽
[0577] SEQ ID NO:78:经加工(成熟)的GNM 10058LinD酶,无信号肽
[0578] 来自土壤样品的宏基因组学的芳樟醇脱水酶(LinD),表示为GNM10092
[0579] SEQ ID NO:79:编码SEQ ID NO:80的天然核酸,SEQ ID NO:80是未经加工的且包括其信号肽
[0580] SEQ ID NO:80:天然或未经加工的LinD酶GNM 10092,包括信号肽
[0581] SEQ ID NO:81:编码GNM 10092信号肽的核酸
[0582] SEQ ID NO:82:GNM 10092信号肽
[0583] SEQ ID NO:83:编码经加工(成熟)的GNM 10092LinD酶的核酸,无信号肽
[0584] SEQ ID NO:84:经加工(成熟)的GNM 10092LinD酶,无信号肽
[0585] 来自土壤样品(Cottonwood河)的宏基因组学的芳樟醇脱水酶(LinD),表示为GNM 10093
[0586] SEQ ID NO:85:编码SEQ ID NO:86的天然核酸,SEQ ID NO:86是未经加工的且包括其信号肽
[0587] SEQ ID NO:86:天然或未经加工的LinD酶GNM 10093,包括信号肽
[0588] SEQ ID NO:87:编码GNM 10093信号肽的核酸
[0589] SEQ ID NO:88:GNM 10093信号肽
[0590] SEQ ID NO:89:编码经加工(成熟)GNM 10093LinD酶的核酸,无信号肽
[0591] SEQ ID NO:90:经加工(成熟)的GNM 10093LinD酶,无信号肽
[0592] 来自活化污泥(内华达山脉(Sierra Nevada))的宏基因组学的芳樟醇脱水酶(LinD),表示为GNM 10094
[0593] SEQ ID NO:91:编码SEQ ID NO:92的天然核酸,SEQ ID NO:92是未经加工的且包括其信号肽
[0594] SEQ ID NO:92:天然或未经加工的LinD酶GNM 10094,包括信号肽
[0595] SEQ ID NO:93:编码GNM 10094信号肽的核酸
[0596] SEQ ID NO:94:GNM 10094信号肽
[0597] SEQ ID NO:95:编码经加工(成熟)GNM 10094 LinD酶的核酸,无信号肽
[0598] SEQ ID NO:96:经加工(成熟)的GNM 10094 LinD酶,无信号肽
[0599] 来自土壤样品(Cottonwood河)的宏基因组学的芳樟醇脱水酶(LinD),表示为GNM 10097
[0600] SEQ ID NO:97:编码SEQ ID NO:98的天然核酸,SEQ ID NO:98是未经加工的且包括其信号肽
[0601] SEQ ID NO:98:天然或未经加工的LinD酶GNM 10097,包括信号肽
[0602] SEQ ID NO:99:编码GNM 10097信号肽的核酸
[0603] SEQ ID NO:100:GNM 10097信号肽
[0604] SEQ ID NO:101:编码经加工(成熟)GNM 10097 LinD酶的核酸,无信号肽
[0605] SEQ ID NO:102:经加工(成熟)的GNM 10097LinD酶,无信号肽。
[0606] 本发明的另外示例性序列:
[0607] 本发明的另外示例性序列可以见于LinD氨基酸残基的序列比较中,包括图11至16的序列比较,如下所述:
[0608] 例如,本发明的另外示例性序列可以见于图12至16的序列比较中,其将本发明的新序列GNM 9873(SEQ ID NO:43)(图12)、GNM 9874(SEQ ID NO:37)(图13)、GNM 9875(SEQ ID NO:49)(图14)、GNM 9894(SEQ ID NO:55)(图15)和GNM 9895(SEQ ID NO:61)(图16)与已知的LinD 多肽GNM 2753(SEQ ID NO:2)进行比较。本发明的另外示例性序列可以见于图11的序列比较中,其将示例性LinD酶GNM 9819(SEQ ID NO:12)与已知GNM 2753(SEQ ID
NO:2)进行比较。
[0609] 本发明的另外示例性序列由序列比较中不同的残基鉴定,其中每个氨基酸残基差异被转移或掺入本文所述LinD多肽的等同残基,包括本文所述的已知和新LinD序列。
[0610] 例如,图12的比对显示信号肽之后的第一个氨基酸(aa)残基的差异,其中全长GNM 9873(SEQ ID NO:43)的“成熟”形式中的第一个aa残基是“E”,全长GNM 2753(SEQ ID NO:2)的“成熟”形式中的第一个aa残基是“A”。因此,本发明的另外示例性序列包括其中第一个“成熟”aa残基是“A”或“E”的LinD多肽。本发明的其他另外示例性序列包括示例性LinD多肽(例如GNM 9819(SEQ ID NO:12)和已知GNM 2753(SEQ ID NO:2)的的变体,其中第一个“成熟”aa残基是“A”或“E”。
[0611] 来自图12的本发明另外示例性序列的另一个实例可以见于“成熟”LinD多肽的第四个aa残基中,其中全长GNM 9873(SEQ ID NO:43)的“成熟”形式中的第4个aa残基是“F”,全长GNM 2753(SEQ ID NO:2)的“成熟”形式中的第4个aa残基是“P”。因此,本发明的另外示例性序列包括其中第4个“成熟”aa残基(或等同残基)是“F”或“P”的LinD多肽。本发明的其他另外示例性序列包括示例性LinD多肽(例如,GNM9819(SEQ ID NO:12)和已知GNM 2753(SEQ ID NO:2)的的变体,其中第4个“成熟”aa残基是“F”或“P”。
[0612] 如图11,本发明的另外示例性序列可以见于在示例性LinD多肽GNM9819(SEQ ID NO:12)和已知GNM 2753(SEQ ID NO:2)的变体的比较中。并且将这些氨基酸(aa)残基差异并入本文提供的其他新型LinD多肽中。例如,全长GNM 9819(SEQ ID NO:12)的“成熟”形式中的第2个aa残基是“P”,全长GNM 2753(SEQ ID NO:2)“的成熟”形式中的第2个aa残基是“E”。因此,本发明的另外示例性序列包括其中第2个“成熟”aa残基(或等同残基)是“E”或“P”的LinD多肽;并且这包括将这些氨基酸(aa)残基差异并入本文提供的新型LinD多肽和其他已知LinD多肽中(由此产生新变体,即本文提供的新的新型示例性LinD序列)。
[0613] 本发明的另外示例性序列是通过序列比较发现的这些aa残基变化中2、3、4、5、6或更多个的组合,例如如本文提供的。例如,本文提供的一种示例性LinD多肽包含以下两种或更多种:其第一“成熟”aa残基改变为“A”或“E”;其第2个“成熟”aa残基(或等同残基)改变为“E”或“P”;其第4个“成熟”aa残基(或等同物)改变为“F”或“P”;等等
[0614] 在一些替代实施方案中,实施本发明包括使用本领域技术范围内的常用于分子生物学、微生物学和重组DNA的任何常规技术。这样的技术是本领域技术人员已知的,并且在许多文本和参考文献中有描述(参见例如Sambrook等,"Molecular Cloning:A Laboratory Manual,"第二版,Cold Spring Harbor,1989;和Ausubel等,"Current Protocols in Molecular Biology,"1987)。除非本文另外定义,否则本文使用的所有技术和科学术语具有与本发明所属领域的普通技术人员通常理解的相同的含义。例如,Singleton和
Sainsbury,Dictionary of Microbiology and Molecular Biology,第2版,John Wiley
and Sons,NY(1994);以及Hale和Marham,The Harper Collins Dictionary of Biology,Harper Perennial,NY(1991)为本领域技术人员提供了本发明中使用的许多术语的通用字典。尽管与本文描述的那些类似或等同的任何方法和材料可用于实施本发明,但是优选的方法和材料在本文中描述。因此,下面直接定义的术语作为整体通过参考说明书而更全面地描述。
[0615] 除非本文另外定义,否则本文使用的所有技术和科学术语具有与本发明所属领域的普通技术人员通常理解的相同的含义。尽管与本文描述的那些类似或等同的任何方法和材料可用于实施本发明中,但是优选的方法和材料在本文中描述。因此,下面直接定义的术语作为整体通过参考说明书而更全面地描述。
[0616] 除非上下文另外清楚地指出,否则本文使用的没有数量词修饰的名词包括一个/种和/或更多个/种。除非另有说明,否则分别地,核酸以5'至3'的方向从左至右书写;氨基酸序列从氨基到羧基取向从左到右书写。应理解的是,本发明不限于所描述的具体方法、方案和
试剂,因为这些可以变化,这取决于本领域技术人员使用的上下文。
[0617] 以下实施例和附图旨在阐明本发明,并且说明和进一步示出某些优选实施方案和方面,而不将本发明的主题限制于实施例和附图。
[0618] 实施例
[0619] 实施例1.证明芳樟醇脱水酶活性
[0620] 以下是在异源添加巴豆醇的大肠杆菌中表达的已知野生型芳樟醇脱水酶(由表示为2753I的核酸表达)及其12-氨基酸替换变体(表示为2753N)用于丁二烯产生(在顶部空间中)的活性的表格;48小时反应时间,如本文所述的。在酶反应中,巴豆醇被异构化为MVC,其被脱水为丁二烯。丁二烯具有足够的挥发性,使得在顶部空间收集其并对其进行测量。如文献中所报道和在此所示的,野生型和变体酶在体内对巴豆醇具有活性。
[0621]
[0622] 以下是在异源添加巴豆醇或其异构体甲基乙烯基甲醇(MVC)的大肠杆菌中表达的来自解芳烃卡斯特兰尼氏菌62Car的本文所述提供新型烯醇脱水酶(SEQ ID NO:12)用于丁二烯产生(在顶部空间中)的活性的表格;48小时反应时间,如本文所述的。在酶反应中,巴豆醇被异构化为MVC,其被脱水为丁二烯。丁二烯具有足够的挥发性,使得在顶部空间收集其并对其进行测量。如文献中所报道和在此所示的,野生型和变体酶在体内对巴豆醇具有活性。新型酶的成熟形式由经改造的大肠杆菌制备,并且如下表所示对巴豆醇和MVC二者都具有体内活性。新型酶还对3
[0623]
[0624] 体内1,3-丁二烯产生分析
[0625] 用表达质粒转化大肠杆菌(ATCC 8739C变体),并使用抗生素选择进行选择和维持。在实验前一天,将在LB-抗生素中的1mL过夜培养物接种并在37℃下在24孔板中用透气密封垫生长。将过夜培养物以OD600=0.05接种到10ml螺帽瓶中的新鲜2mL M9+4%葡萄糖+抗生素+IPTG+10mM巴豆醇中。将瓶在37℃下孵育48小时,并通过GC-MS进行顶空分析来验证
1,3-丁二烯产生。
[0626] 宏基因组测序
[0627] 活化的污水样品从加利福尼亚的当地废
水处理获得,并用作富集培养物的接种物。使用Illumina MiSeq平台对从富集培养物提取的DNA样品进行宏基因组测序。使用
SPAdes组装器进行重新组装以产生代表宏基因组的重叠群。使用WT解芳烃卡斯特兰尼氏菌
65Phen全长多肽LinD对该重叠群数据库进行TBLASTN搜索以鉴定宏基因组组装中的同源
物;使用如例如在Bankevich,等,SPAdes:A New Genome Assembly Algorithm and Its
Applications to Single-Cell Sequencing.Journal of Computational Biology19(5)
(2012),455-477.doi:10.1089/cmb.2012.0021中所述的方案。
[0628] 图18所示的表格和下表报道了本文提供的新型多肽与本文所述的已知野生型酶(全长和成熟形式)之间成对百分比同一性,其中百分比同一性(%ID)使用Geneious
软件使用MUSCLE比对算法计算(Edgar,MUSCLE:multiple sequence alignment with high
accuracy and high throughput,Nucleic acids research 32(5):1792-7(2004))。图18的表格描述了全长(未经加工)蛋白质的成对%ID(图18A)和“成熟”或经加工蛋白质的成对%ID(图18B)。这些表格表明本
发明人已经鉴定具有相似酶功能的天然酶,其共有相同或几乎相同的氨基酸长度和低至至少约75%并且甚至低至约63%(在全长蛋白质氨基酸序列之间比较)和67%(在成熟蛋白质氨基酸序列之间比较)的氨基酸(并且由此结构)同一性。
[0629]
[0630] 实施例2:证明芳樟醇脱水酶活性
[0631] 本实施例提供数据证明本文所提供的示例性酶的脱水酶酶活性和双功能异构酶-脱水酶酶活性。
[0632] 目标/假设和背景
[0633] 为了测试新LinD 9895A(SEQ ID NO:61,其为未经加工的且包括其信号肽)的RBS组对10mM CrOH、MVC和异戊烯醇的活性。实验还包括9895A(SEQ ID NO:61)和9895B(其是具有A196F修饰的SEQ ID NO:62)的原始构建体的重复测试。
[0634] (核糖体结合位点(RBS)是在启动蛋白质翻译时被核糖体结合的mRNA上的序列)
[0635] 实验设计
[0636] 宿主菌株8157
[0637] 质粒(rpt:pG_8227、pG_8228)、pG_8285,、pG_8286、pG_8287、pG_8288
[0638] 基因(rpt:9895A、9895B、典型RBS)、13k-9895A、34k-9895A、104k-9895A,290k-9895A
[0639] 可变的RBS强度
[0640] 实验方案在SMM5+10mM CrOH或10mM MVC或10mM异戊烯醇中的螺帽小瓶细胞培养物
[0641] 采样时间点BDE的72小时细胞培养物顶部空间测量
[0642] 收集的数据类型通过GCMS来自CrOH和MVC的BDE
[0643] 实验条件
[0644] 在24孔板中的2ml LB+葡萄糖+Kan预培养物,在加湿
培养箱中培养过夜。生物重复中的样品。
[0645] 用于在10ml密封玻璃小瓶中接种2ml SMM5+Trace+Kan+IPTG+10mM CrOH或10mM MVC或10mM异戊烯醇。开始OD 0.1。在35℃下生长72小时。样品接受60℃,30分钟的热杀灭,然后通过GCMS提供对BDE进行顶部空间分析。
[0646] 对于SDS-PAGE,在摇瓶,SMM5+IPTG中生长24小时
[0647] 数据
[0648] (1)证明LinD多肽9895(SEQ ID NO:61)将10mM的甲基乙烯基甲醇(MVC)转化为BDE,用13、34和104K RBS序列检测分别高达0.27、0.25和0.17ppm。MVC转化为丁二烯(BD、BDE)证明脱水酶活性。
[0649] (2)证明LinD多肽9895(SEQ ID NO:61)将10nM异戊烯醇转化为异戊二烯,用13、34和104K RBS序列检测,分别高达6、4至8和3ppm。异戊烯醇向异戊二烯的转化显示异构酶和脱水酶活性二者(其中异构酶活性将异戊烯醇转化为异构体异戊二烯醇,并且脱水酶活性将异戊二烯醇转化为异戊二烯)。
[0650] (3)将突变A196F导入LinD多肽9895中(表示为GNM 9895B,SEQ ID NO:62)可使得MVC测定增强2倍(以产生BDE)。在一个测定中,使用“典型”RBS,LinD多肽9895(SEQ ID NO:
61)以0.13ppm的产率将异戊烯醇转化为异戊二烯,而9895B突变A196F LinD(SEQ ID NO:
62)以0.17ppm的产率将异戊烯醇转化为异戊二烯。
[0651] (4)在单独运行的该测定中证明LinD多肽9819T(SEQ ID NO:64,其是未经加工的改造变体且包括其信号肽;由SEQ ID NO:63编码)将10mM的甲基乙烯基甲醇(MVC)转化为
BDE:平均值为132μM,单独运行产生7.36ppm(或136μM)、7.32ppm(135μM)和6.68ppm(123μM)。
[0652] 图17以表格形式总结了本发明的示例性酶的显示酶活性。
[0653] 已经描述了本发明的多个实施方案。然而,应理解,在不脱离本发明的精神和范围的情况下可以进行各种修改。相应地,其他实施方案也在以下权利要求书的范围内。