天然抗感染抗氧化双功能肽Pb-CATH2及其基因与应用
技术领域
[0001] 本
发明提供一种来源于缅甸蟒蛇(Python molurus bivittatus)的cathelicidin家族的具有抗感染抗氧化双功能的多肽Pb-CATH2及其编码基因,
氨基酸序列和其在
化妆品、保健品、食品、
饲料等日化添加剂及抗感染医药领域中的应用,属于
生物医学技术领域。
背景技术
[0002] Cathelicidin是一类由N端
信号肽区域、中间保守cathelin结构域和C端高度特异的成熟肽区域构成的具有多功能的宿主抗菌肽家族,结构特点是:具有N端信号肽区域(30个残基左右)、中间保守cathelin结构域(99-114个残基)和C端高度特异的成熟肽区域(12-100个残基)。Cathelicidin具有广谱的抗菌活性,能快速、广谱地杀灭多种病原
微生物,包括革兰阳性菌、革兰阴性菌、
真菌、寄生虫和病毒等,特别是对许多临床耐药细菌同样具有作用,这引起了人们的注意。除此之外,cathelicidin还具有许多其他生物学活性,如对多种免疫细胞(中性粒细胞、单核细胞、肥大细胞和T细胞)具有趋化作用、诱导肥大细胞脱粒和组织胺释放、调节巨噬细胞转录、促进
伤口愈合、诱导血管发生、诱导变异细胞系细胞凋亡和淋巴细胞活化等。这些优势使其在临床的应用有着良好的前景。
[0003] 关于抗菌肽药物,目前cathelicidin的研究热点主要集中在消炎、抗感染和抗真菌等方面,应用方式可以是局部的也可以是系统的,剂型可以是口服也可以外用。尤其由于阳离子抗菌肽的表达与皮炎、侵入性烧伤脓血症、
肿瘤病毒引起的肉赘等之间的病理联系,这些抗菌肽对这些
疾病的局部
治疗有较好的开发前景。目前有部分抗菌肽药物已进入临床试验阶段,例如Pexiganan是爪蟾抗菌肽Magainin的类似物,目前已作为治疗足部感染药物进入临床试验阶段,它也是第一个进行商业开发的抗菌肽;Hlf1-11是人乳
铁蛋白前11个氨基酸残基组成的抗菌肽,通过Ⅰ/Ⅱ期临床试验研究表明Hlf1-1通过静脉
给药时是安全的、耐受性良好的;来源于猪protegrin的IB-367用于治疗肿瘤患者
口腔溃疡,已进入临床III期试验等。Cathelicidin的应用不仅限于医药领域,在农业、
畜牧业和日化用品领域,cathelicidin也存在巨大的应用潜能。
[0004] 2002年,世界卫生组织(WHO)发表公告指出“在牲畜养殖过程中,停止以往惯用的饲料添加剂抗生素的做法,将在不危害动物和农民利益的前提下,可减少对人类健康的威胁。抗生素作为饲料添加剂应用于动物生产中,对畜牧业的发展起了重要的作用,但是其在动物体内和动物产品中的残留,以及病原菌产生的抗药性问题,对人类的健康和环境产生了负面的影响。并且完全使我国出口肉类,海产品等受到了限制,从而影响收益。寻找新型、安全的
抗菌剂代替抗生素,已成为当前国内外饲料学科的一项重要内容。抗菌肽具有广谱的抗菌作用,对畜禽具有促生长和治疗疾病的功能,是无毒、无害、无残留的绿色产品,有望成为抗生素的替代品,在畜牧生产上发挥重要的作用。
[0005]
机体氧化反应产生的自由基(free radical)是含有一不成对
电子的
原子团,如超氧阴离子、羟自由基等。自由基具有强氧化性,随着年龄增长或在病理状态下,自由基产生过多若不能被及时清除,就会在细胞内堆积,与机体内的生物大分子,如
蛋白质、核酸、脂质等相互作用,生成过多的氧化物和过氧化物,最终影响机体新陈代谢,并对机体产生不可逆的损伤。衰老及很多慢性疾病如癌症、心
血管疾病、
肺气肿、肝硬化、关节炎等都和自由基的损伤有关。尽管机体存在抗氧化防御系统,但其并不能完全有效地抵御或修复氧化作用带来的损伤。如何适当的清除自由基,使其在体内维持在一个较低的
水平,从而延缓机体衰老,是当前一个重要的研究课题。
[0006] 在漫长的进化过程中生物体形成了多种不同的自由基清除系统以抵抗
活性氧自由基对机体的损害,包括非基因编码的小分子物质,如尿酸、维生素C和辅酶Q等;基因编码的大分子抗
氧化酶类,如超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶和谷胱甘肽酶系统;基因编码的小分子抗氧化肽类等。其中小分子抗氧化肽热
稳定性强、
水溶性好、无毒无
副作用,可被人体内的酶系降解、消化,减少
热处理时间,能够最大条件保持食品的营养价值,可用于食品中的抗
氧化剂;在医药中制备抗氧化药物;在护肤品种作为添加剂,具有很好的应用前景。
[0007] 缅甸蟒蛇(Python molurus bivittatus),是蛇亚目蟒科蟒属印度蟒的亚种之一,以体型巨大著称,平均身长至高可达7米,体重可达91公斤,也是世界上最巨型的六种蛇类之一。缅甸蟒属于东南亚地区的本土品种,是一种夜行性蛇类,多居于热带森林里,在中国多见于广东、广西、福建、
云南、海南、贵州等地。目前关于缅甸蟒蛇cathelicidin家族抗感染抗氧化双功能肽的研究和应用还没有报道。
发明内容
[0008] 本发明提供一种在亚微摩尔剂量下即具有很强的抗微生物抗氧化活性的来源于缅甸蟒蛇的一种双功能肽Pb-CATH2及其基因、氨基酸序列和应用。本发明的目的是基于上述理论研究和
现有技术基础,提供一种具有抗感染抗氧化活性的缅甸蟒蛇双功能肽Pb-CATH2及其应用,着重医药制备,化妆品、保健品、食品和新型饲料添加剂等中的应用。
[0009] 为了实现本发明的目的,本发明提供了如下技术方案:
[0010] Pb-CATH2是缅甸蟒蛇cathelicidin基因编码的一种直链多肽,含有29个氨基酸残基,分子量是3389.08Da,理论等电点(pI)为12.49,一种
碱性多肽(含有11个碱性氨基酸残基)。
[0011] 缅甸蟒蛇双功能肽Pb-CATH2基因的克隆包括:
[0012] 缅甸蟒蛇肺总RNA提取,mRNA纯化,mRNA反转录及cDNA文库构建,设计引物,利用PCR方法筛选缅甸蟒蛇抗菌肽Pb-CATH2基因。5’端引物分别为
P1(5'-GATGGAGATCCACCTGGGAGAA-3')和P2(5'-GCTGGACTTCACCTTGAAGGAGAC-3'),PCR另一TM TM
扩增引物为CLONTECH公司Creator SMART cDNA Library Construction Kit中的3’PCR Primer引物,其序列为5’–ATTCTAGAGGCCGAGGCGGCCGACATG–3’。获得阳性单克隆进行基因核苷酸序列测定。基因测序结果表明编码缅甸蟒蛇抗菌肽Pb-CATH2前体cathelicidin的基因由480个核苷酸组成,自5’端至3’端序列为:
[0013]
[0014] 编码缅甸蟒蛇成熟肽Pb-CATH2的为391位到477位的核苷酸序列,其编码的氨基酸序列为:Lys1-Arg2-Asn3-Gly4-Phe5-Arg6-Lys7-Phe8-Met9-Arg10-Arg11-Leu12-Lys13-Lys14-Phe15-Phe16-Ala17-Gly18-Gly19-Gly20-Ser21-Ser22-Ile23-Ala24-His25-ILe26-Lys27-Leu28-His29。
[0015] 缅甸蟒蛇双功能肽Pb-CATH2基因作为基因工程制备缅甸蟒蛇双功能肽Pb-CATH2的应用。
[0016] Pb-CATH2的化学制备方法:
[0017] 根据编码缅甸蟒蛇cathelicidin双功能肽基因推断的成熟肽Pb-CATH2氨基酸序列,用自动多肽合成仪(433A,Applied Biosystems)合成其全序列。通过HPLC反相柱层析脱盐纯化,并确定其纯度大于95%。用基质辅助激光解析电离飞行时间质谱(MALDI-TOF)测定其分子量,等电聚焦
电泳测定等电点,用自动氨基酸测序仪测定氨基酸序列结构。合成的Pb-CATH2肽可以溶于灭菌超纯水,用于药理活性检测。
[0018] 本发明的有益效果在于:
[0019] 基因克隆得到编码缅甸蟒蛇cathelicidin抗感染抗氧化双功能肽的基因,通过化学合成方法得到成熟肽Pb-CATH2。该双功能肽富含碱性氨基酸,具有抗氧化活性及强的抗菌活性,抗菌实验显示其对多种临床耐药菌也有较好的杀灭作用。另外,其还具有很低细胞毒性,无溶血活性,结构简单,不含有二硫键及环状结构,方便化学合成及基因工程制备。
附图说明
[0020] 附图是Pb-CATH2对E.coil ATCC25922的杀菌动
力学图。
具体实施方式
[0021] 下面结合技术方案详细叙述本发明的具体
实施例,但本发明的内容并不局限于此。
[0022] 严格参照
试剂盒
说明书,采用RNeasy AxyPrepTM Multisource Total RNA Miniprep Kit(Qiagen,union city,CA,USA)提取缅甸蟒肺组织总RNA,然后利用CreatorTM SMART TM cDNA Library Construction Kit建库试剂盒构建缅甸蟒蛇肺组织cDNA文库。利用试剂盒中PowerScript Reverse Transcriptase反转录合成cDNA第一链,引物为:
[0023] 正向SMART Ⅳ Oligonucleotide引物:
[0024] 5'–AAGCAGTGGTATCAACGCAGAGTGGCCATTACGGCCGGG–3'
[0025] 反向CDSⅢ/3'PCR引物:5’–ATTCTAGAGGCCGAGGCGGCCGACATG-d(T)30N-1N–3’(N=A,C,G,or T;N-1=A,G,or C).
[0026] 利用 Advantage DNA Polymerase合成 cDNA第 二链,引 物为:正向 5'–AAGCAGTGGTATCAACGCAGAGT-3',反向引物同为CDSⅢ/3'PCR Primer。.
[0027] 设计两条特异性正向引物(P1、P2)和一条反向非特异性通用引物(3'PCR Primer),以缅甸蟒蛇肺cDNA为模板,采用半巢式PCR的方法扩增cathelicidin的cDNA。
[0028] 正向P1:5'-GATGGAGATCCACCTGGGAGAA-3';
[0029] 正向P2:5'-GCTGGACTTCACCTTGAAGGAGAC-3';
[0030] 反向非特异性通用引物为3'PCR Primer,其序列为:
[0031] 5‘-ATTCTAGAGGCCGAGGCGGCCGACATG-3’。
[0032] 所获阳性单克隆进行基因核苷酸序列测定,pMD19-T Vecter测序通用引物:
[0033] 正向M13F:5'-CGCCAGGGTTTTCCCAGTCACGAC-3';
[0034] 反向M13R:5'-GAGCGGATAACAATTTCACACAGG-3';
[0035] 具体步骤如下:
[0036] 第一步、缅甸蟒蛇肺总RNA提取(以下实验所用器具和试剂均经过DEPC
水处理,无RNase):
[0037] A.从一岁龄大小的雄性缅甸蟒蛇各种新鲜组织中取下绿豆大小个小
块,分别放于标记好的冻存管中,迅速置于液氮中保存备用;
[0038] B.将保存在液氮中的组织材料取出,放入预冷的研钵内,迅速充分
研磨,期间不断向研钵内加入少许液氮;将大约30mg的组织粉末转移至预冷的1.5ml离心管中,向其中分别加入400μl Buffer R-I(裂解液,RNA Miniprep Kit提供),用21-25号针头的
注射器反复抽吸8-10次,转入1.5ml离心管中,加入150μl Buffer R-Ⅱ,涡旋振荡15-30s,4℃,12000rpm离心5min;
[0039] C.取上清转移至新的1.5ml离心管中,加入250ul异丙醇,迅速吸打混匀;将
混合液分别转移至2ml离心管中(试剂盒内提供),4℃,6000rpm离心1min;弃废液,将制备管置回到2ml离心管中,然后加入500μl Buffer W1A,4℃,12000rpm离心1min;弃废液,加入700μl BufferW2A,4℃,12000rpm离心1min;弃废液,加入700μl Buffer W2A,4℃,12000rpm离心1min;弃废液,空管12000rpm离心1min;将离心
吸附柱转移至新的1.5ml离心管中,然后直接向吸附膜上滴加70-100μl Buffer TE,室温放置1min,4℃,12000rpm离心1min洗脱得到总RNA;
[0040] 第二步、缅甸蟒蛇肺组织cDNA文库的构建
[0041] 第一链的合成(mRNA反转录):
[0042] A.在新的0.2ml PCR管(无DNase和RNase)中配制下列混合液:
[0043]
[0044] 混合均匀,短暂离心;PCR仪中72℃保温2min后,然后
冰浴2min;短暂离心后,在上述管中配制如下反转录反应液:
[0045]
[0046] 混合均匀后,短暂离心;在PCR仪中完成以下程序:
[0047] 42℃,90min;68℃,10min;冰浴终止反应。cDNA保存于-80℃。
[0048] 第二链的合成:
[0049]
[0050]
[0051] 轻弹管壁,短暂离心,放入提前预热的PCR仪中,反应条件为:95℃,1min,21cycles(95℃,15s;65℃,30s;68℃,6min)。取5μl的产物电泳检测分析。
[0052] 第三步、半巢式PCR进行缅甸蟒蛇cathelicidin的基因克隆筛选
[0053] 引物使用前先12000rpm离心5min,然后根据标明的摩尔数加入相应体积的ddH2O溶解至20μM的浓度。合成的肺组织cDNA稀释20倍作为模板,以P1和3'PCR Primer为引物,进行第一次PCR扩增。在0.2ml PCR管中加入下列试剂:
[0054]
[0055] 混匀后,短暂离心。PCR条件为:94℃变性5min;28个循环:94℃变性30s,56℃
退火30s,72℃延伸50s;72℃延伸10min;4℃保存。反应结束后,取5μl产物于1%琼脂糖凝胶电泳检测目的条带。
[0056] 取上步PCR产物1μl用ddH2O稀释100倍作为模板,以P2和3'PCR Primer为引物,进行第二次PCR扩增。在0.2ml PCR管中先后加入下列试剂:
[0057]
[0058]
[0059] PCR条件为:94℃变性5min;28个循环:94℃变性30s,56℃退火30s,72℃延伸50s;72℃延伸10min;4℃保存。反应结束后,取5μl,1%琼脂糖凝胶电泳检测目的条带。
[0060] 扩增完成后用胶回收试剂盒(天根生物)进行目的
片段回收。将回收的目的DNA片段与测序载体pMD19-T Vecter连接,转化进CaCl2法制备好的DH5α感受态细胞。取100μl转化菌液均匀涂布在含有100μg/ml氨苄青霉素(Amp)的LB琼脂培养基平板上;表面晾干后,放在37℃恒温
培养箱中倒置培养12-16h。挑取单菌落用M13引物PCR检测插入片段大小。挑取阳性菌落,摇菌提取质粒,使用Applied Biosystems DNA sequencer,model ABI PRISM 377进行核苷酸测序。
[0061] 第四步、缅甸蟒蛇cathelicidin的基因序列测定和结果:
[0062] 编码其前体cathelicidin的基因由480个核苷酸组成,自5’端至3’端序列为:
[0063]
[0064] 缅甸蟒蛇cathelicidin编码区的cDNA核苷酸的
序列表为:序列长度为480个碱基,序列类型:核酸,链数:单链,拓扑学:直链状,序列种类:cDNA,来源:缅甸蟒蛇肺。
[0065] 编码缅甸蟒蛇cathelicidin成熟肽Pb-CATH2为391位到477位的核苷酸序列,1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
其编码的氨基酸序列为:Lys-Arg-Asn-Gly-Phe-Arg-Lys-Phe-Met-Arg -Arg -Leu
13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 2
-Lys -Lys -Phe -Phe -Ala -Gly -Gly -Gly -Ser -Ser -Ile -Ala -His -ILe -Lys
7 28 29
-Leu -His 。
[0066] Pb-CATH2的化学制备方法:
[0067] Ⅰ、根据编码缅甸蟒蛇cathelicidin基因推断的成熟肽Pb-CATH2氨基酸序列,用自动多肽合成仪(Applied Biosystems)合成其全序列,通过HPLC反相柱层析脱盐纯化,并确定其纯度大于95%。
[0068] Ⅱ、分子量测定采用基质辅助激光解析电离飞行时间质谱(MALDI-TOF),等电聚焦电泳测定等电点,用自动氨基酸测序仪测定氨基酸序列结构。合成的Pb-CATH2抗菌肽可以溶于灭菌超纯水,用于药理活性检测。
[0069] 缅甸蟒蛇双功能肽Pb-CATH2的药理实验:
[0070] 1.Pb-CATH2抗菌活性检测:
[0071] 将化学合成的Pb-CATH2以2mg/ml的浓度溶解在无菌超纯水中;用接种环挑取新活化的微生物,然后均匀涂布在新的LB琼脂板上;将直径0.5cm的圆形无菌
滤纸片放在上述琼脂板上,然后向纸片上滴加10μl Pb-CATH2样品溶液;放入37℃恒温培养箱中培养12-24h;观察抑菌圈形成与否,将对Pb-CATH2敏感的菌株记录下来。
[0072] 2.Pb-CATH2对敏感菌株最小抑菌浓度(Minimum Inhibitory Concentration,MIC)的测定。
[0073] 该实验以无菌的LB液体培养基作阴性对照,观察有细菌生长孔的浓度与无细菌生长的孔的浓度,取平均值即为最小抑菌浓度。
[0074] 挑取新活化的微生物,接种至无菌液体LB培养基,37℃恒温
振荡器中200rpm培养10-16h至对数生长期;用紫外分光光度计测菌液600nm处的吸光值,吸光值为1时,浓9 5
度大约为10cfu/ml,将菌液用无菌液体LB培养基稀释至2×10cfu/ml,冰上待用;用二倍稀释法在96微孔板上用无菌LB培养基配制浓度梯度为200μg/ml、100μg/ml、50μg/ml、
25μg/ml、12.5μg/ml、6.25μg/ml、3.13μg/ml、1.56μg/ml、0.78μg/ml、0.39μg/ml、
0.20μg/ml的Pb-CATH2样品溶液,每孔50μl;每孔加入50μl上述稀释菌液;在恒温振荡器中37℃,100rpm振荡培养10-16h;使用酶标仪测OD600nm吸光值或肉眼观察;上述实验重复3次。
[0075] 表1 Pb-CATH2的最小抑菌浓度(MIC)
[0076]
[0077]
[0078] *MIC:最小抑菌浓度;ND:抑菌圈实验检测无抑菌活性;IS:临床分离菌株。以上结果为三次独立重复实验平均值。
[0079] 由表1可见,Pb-CATH2具有广谱的抗菌活性,其MIC值大都在5.53-22.13μM之间,抗菌活性明显强于传统使用的抗生素氨苄青霉素(MIC值大都在12.62–201.9μM之+ -间)。Pb-CATH2不仅对
革兰氏阳性菌(G)和革兰氏阴性菌(G)具有抗菌活性,还对测试用的所有真菌都有强的抗菌活性,特别是对几种常见的临床分离的致病菌株如肺克杆菌,
铜绿假单胞菌,表皮葡萄球菌以及白色念珠菌等具有杀菌作用。此外由表中可以看出Pb-CATH2对痢疾杆菌最为敏感,最小抑菌浓度仅为0.69μM。
[0080] 3.Pb-CATH2的杀菌动力学检测。
[0081] 活化菌株:将大肠杆菌ATCC25922划线接种到LB固体培养基平板上,置于37℃培养箱中倒置培养至单菌落长出。用接种环挑取单菌落接种到LB液体培养基中,37℃振荡过5
夜培养至对数生长期。用新鲜的LB液体培养基将菌液稀释至1×10CFU/ml的浓度,备用。
[0082] 将Pb-CATH2或者美罗培南加入到稀释好的菌液中,使其终浓度为5倍MIC(阴性对照用相应体积的灭菌双蒸水)。加入样品的菌液迅速放入37℃振荡培养箱中培养,分别于0min、10min、20min、30min、45min、60min、90min及120min时取10μl菌液用灭菌的LB液体培养基稀释100倍,然后取100ul稀释后的菌液涂LB固体培养基,37℃过夜培养,计算菌落数。
[0083] 由附图可知,Pb-CATH2杀菌迅速,在10分钟内就能够杀死全部大肠杆菌ATCC25922细胞;而阳性对照美罗培南作用相对较慢,需要90分钟才能全部杀死大肠杆菌ATCC25922。美罗培南是人工合成的广谱
碳青霉烯类抗生素,通过抑制细菌细胞壁的合成而发挥抗菌作用。与美罗培南相比,Pb-CATH2的快速杀菌能力表明其作用机制不可能是通过抑制细菌细胞壁的合成,也不可能是通过抑制细菌细胞
内核酸、蛋白质的合成或抑制细菌某些蛋白酶的活性,因为这需要一定的作用时间才能导致细菌的死亡。可以看出Pb-CATH2具有异于传统抗生素的独特的杀菌机理,不易引起菌体耐药性的产生,暗示Pb-CATH2具有良好的抗菌药用前景。
[0084] 4.Pb-CATH2的抗氧化活性分析
[0085] 4.1 DPPH自由基清除活性(DPPH radical scavenging assay)
[0086] 称取一定量的DPPH(2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl hydrate,Sigma,美国),用-5甲醇溶解,配成6×10 M的溶液,现配现用。将48μl DPPH溶液和2μl样品混合(最终样品与DPPH的
质量比为3:1),室温下避光静置30min,于517nm处测定吸光值。空白对照组以样品溶解介质代替待测样品。实验做三个平行,紫外分光光度计调零时使用甲醇。
[0087] DPPH·清除率(%)=(AB-AA)/AB×100%(AB:空白对照组吸光值;AA:样品组吸光值)。
[0088] 表2 Pb-CATH2的DPPH自由基清除率I%
[0089]样品浓度(μg/ml) 40 80 160 320
DPPH自由基清除率I% 10.11 15.45 21.36 40.75
[0090] 由表2所示,Pb-CATH2具有一定的DPPH自由基清除活性。随着样品浓度的增加,其DPPH自由基的清除率也在升高,说明Pb-CATH2的抗氧化能力具有一定的浓度依赖性。·+
[0091] 4.2 ABTS 自由基正离子清除活性
[0092] ABTS(3-ethylbezothiazoline-6-sulfonic acid)(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)用PBS缓冲液(pH7.4)配成2mM的ABTS储存液。将ABTS储存液和70mM过
硫酸钾(K2S2O8)·+水溶液按体积比250:1混合,于室温避光放置15-16h。试验开始前,将ABTS 释至734nm波·+
长处的吸光值为0.80±0.03。将4μl不同浓度的Pb-CATH2和96μl上述校正过的ABTS溶液混合,室温放置10min后,于734nm
波长处检测反应液的吸光值。空白对照组为溶解样品所用灭菌去离子水。实验做三个平行。
·+
[0093] ABTS 清除率I(%)=(AB-AA)/AB×100%(AB:空白对照组吸光值;AA:样品组吸光值)。
[0094] 表3 Pb-CATH2对ABTS·+自由基正离子清除活性I(%)
[0095]样品浓度(μg/ml) 40 80 160 320
ABTS·+清除率I(%) 6.95 14.76 37.18 45.23
·+
[0096] 为了进一步确认Pb-CATH2的抗氧化活性,我们检测了Pb-CATH2对ABTS 自由基正离子清除活性,结果如表3所示,Pb-CATH2具有抗氧化活性,且在样品浓度为320μg/ml时,ABTS·+自由基清除率最强,达到45.23%。Pb-CATH2的抗氧化活性为其作为抗感染抗氧化双功能肽药物的开发奠定了良好的基础。
[0097] 5.Pb-CATH2的溶血活性分析
[0098]
抽取5ml健康人静脉血,加入到装有5ml阿氏液(Alsever Solution:
柠檬酸钠8g,柠檬酸0.55g,glucose 20.5g,NaCl 4.2g,加1L双蒸水,调PH至6.1,高压灭菌后4℃保存备用)的离心管中,1000rpm离心5min。用生理盐水(0.9%NaCl)洗涤至上清液不再呈红色为止。
7 8
[0099] 将洗涤好的红细胞加生理盐水稀释成10-10cells/ml浓度的细胞悬液(约将200μl的细胞细胞沉淀加入到10ml的生理盐水中),然后将稀释好的红细胞悬浮液与溶解于生理盐水中的不同浓度的样品(PCR管中,加入90μl稀释好的细胞悬液及10μl不同浓度的样品)在37℃保温30min,然后1000rpm离心5min,取50μl的上清液于96孔板中,在
540nm处测吸光值。同时该实验以1%Triton X-100作阳性对照,以生理盐水作阴性对照。
每组做3个平行试验,溶血率=(样品540nm光吸收值-阴性对照)×100%/(阳性对照-阴性对照)。
[0100] 实验结果表明,在浓度高达200μg/ml(59μM)时,Pb-CATH2对人红细胞溶血百分比仅为7.34%,在其杀菌MIC剂量范围内的12.5μg/ml(3.69μM),25μg/ml(7.39μM),50μg/ml(14.77μM)及100μg/ml(29.55μM)时,Pb-CATH2的人红细胞溶血百分比分别为
4.76%,5.52%,7.07%及7.28%。这些都表明Pb-CATH2基本上不具有溶血活性,低溶血活性也为其药物研发奠定了基础。