一种人外周血单个核细胞的分离方法
阅读：291发布：2020-05-11
专利汇可以提供一种人外周血单个核细胞的分离方法专利检索，专利查询，专利分析的服务。并且本 发明 公开了一种人 外周血单个核细胞 的分离方法，结合了羟乙基 淀粉 沉淀法和Ficoll 密度 梯度离心法两种方法的优点，针对大容量 血液样本 的分离特点，先用羟乙基淀粉沉淀法去除大部分的红细胞，然后在空气中自然沉降，再用Ficoll密度梯度离心法对单个核细胞进行进一步纯化，从而得到纯度超过95％，活 力 超过85％的PBMC。相比没有在空气中自然沉降的方法，获得的细胞活力和纯度更高。，下面是一种人外周血单个核细胞的分离方法专利的具体信息内容。
1.一种人外周血单个核细胞的分离方法，其特征在于，包括以下步骤：
(1)将外周血离心后，上层为血浆，下层为血细胞沉淀；
(2)在下层血细胞沉淀中加入等体积的羟乙基淀粉溶液，羟乙基淀粉溶液的浓度为
4％-10％g/mL，混合均匀后在空气中自然沉降15～35min；
(3)将上清液缓慢转移至Ficoll淋巴细胞分离液表面，离心力为600g～800g,离心
20～30min；
(4)离心后从下到上分为4层，依次为红细胞和粒细胞层、淋巴细胞分离液层、白膜层和血浆层；吸取白膜层，重悬，离心；
5
(5)离心后弃上清液，用1640培养基重悬细胞，调整细胞密度为5×10～
5
10×10cells/mL,得到人外周血单个核细胞。
2.根据权利要求1所述的分离方法，其特征在于，所述羟乙基淀粉溶液的浓度为6％g/mL。
3.根据权利要求1所述的分离方法，其特征在于，步骤(4)所述重悬是加入生理盐水。
4.根据权利要求1所述的分离方法，其特征在于，步骤(4)和(5)所述离心的转速为
1000～2000rpm/min，离心5～10min。
5.根据权利要求1所述的分离方法，其特征在于，步骤(1)所述离心的转速为1500～
3000rpm，离心时间为8～12min。
一种人外周血单个核细胞的分离方法
技术领域
[0001] 本发明涉及一种细胞分离方法，具体地涉及一种人外周血单个核细胞的分离方法。
背景技术
[0002] 细胞治疗是近几年兴起的疾病治疗新技术，是指利用某些具有特定功能的细胞的特性，采用生物工程方法获取和/或通过体外扩增、特殊培养等处理后，使这些细胞具有增强免疫、杀死病原体和肿瘤细胞、促进组织器官再生和机体康复等治疗功效，从而达到治疗疾病的目的。
[0003] 细胞治疗以其良好的疗效，副作用小，更个体化、个性化等独特的优势，为一些难治性疾病的治疗，提供了一种选择，有时甚至是最后的选择。在当前和今后很长的历史阶段，细胞治疗都将在临床治疗中担当重要的角色，二十一世纪将是细胞治疗发挥重要作用的时代。
[0004] 在免疫细胞治疗中，一般采用羟乙基淀粉(hydroxyethyl starch，HES)离心沉淀法或Ficoll密度梯度离心法分离外周血单个核细胞(PBMC)。采用羟乙基淀粉离心沉淀法虽然在操作上比较简便，但是细胞分离的效果不佳，得到的细胞纯度难以满足要求，有较多的血小板、红细胞及粒细胞等。而采用Ficoll密度梯度离心法，红细胞、粒细胞比重大，离心后沉于管底；淋巴细胞和单核细胞的比重小于或等于分层液比重，离心后漂浮于分层液的液面上，也可有少部分细胞悬浮在分层液中。吸取分层液液面的白膜层细胞，就可从外周血中分离得到单个核细胞。这个方法所得到的细胞纯度较好，但是对操作上的要求比较高，如果操作不够谨慎，分离得到的细胞在数量和纯度上都会有较大影响。
发明内容
[0005] 现有技术中采用羟乙基淀粉离心沉淀法虽然在操作上比较简便，但是细胞分离的效果不佳，得到的细胞纯度难以满足要求，有较多的血小板、粒细胞及红细胞等。而Ficoll密度梯度离心法所得到的细胞纯度较好，但是对样本体积上的要求有一定的限制，如果样本体积超过50ml，分离的效果会大大降低。此外，不同的离心力与离心时间对细胞分离的效果也有较大影响，采用不同的离心参数分离出来的细胞，纯度和活力都有很大的差异。
[0006] 本发明的目的是结合羟乙基淀粉沉淀以及Ficoll密度梯度离心法，对PBMC的分离方法进行改进，尤其对于大体积(>50ml)的血液样本分离更具优势。
[0007] 本发明目的通过以下技术方案来实现：
[0008] 本发明的发明人通过研究发现：提高PBMC分离效果的关键之一是在保证分离得到的PBMC细胞的活力及数量的前提下，减少血小板、红细胞及粒细胞等杂细胞的比例，提高PBMC细胞的纯度。本发明通过不断地摸索及验证，首先使用羟乙基淀粉沉淀，在空气中自然沉降后，再采用Ficoll密度梯度离心的分离方法，得到纯度和活力都较高的PBMC。
[0009] 现有技术中一般采用羟乙基淀粉沉淀法或者Ficoll密度梯度离心法。本发明结合了羟乙基淀粉沉淀法和Ficoll密度梯度离心法两种方法的优点，针对大容量血液样本的分离特点，先用羟乙基淀粉沉淀法去除大部分的红细胞，然后在空气中自然沉降，再用Ficoll密度梯度离心法对单个核细胞进行进一步纯化，从而得到纯度超过95％，活力超过85％的PBMC。相比没有在空气中自然沉降的方法，获得的细胞活力和纯度更高。
[0010] 本发明目的通过以下技术方案来实现：
[0011] 一种人外周血单个核细胞的分离方法，包括以下步骤：
[0012] (1)将外周血离心后，上层为血浆，下层为血细胞沉淀；
[0013] (2)在下层血细胞沉淀中加入等体积的羟乙基淀粉溶液，羟乙基淀粉溶液的浓度为4％-10％g/mL，混合均匀后在空气中自然沉降15～35min；
[0014] (3)将上清液缓慢转移至Ficoll淋巴细胞分离液表面，离心力为600g～800g,离心20～30min；
[0015] (4)离心后从下到上分为4层，依次为红细胞和粒细胞层、淋巴细胞分离液层、白膜层和血浆层；吸取白膜层，重悬，离心；
[0016] (5)离心后弃上清液，用1640培养基重悬细胞，调整细胞密度为5×105～5
10×10cells/mL,得到人外周血单个核细胞。
10×10cells/mL,得到人外周血单个核细胞。
[0017] 优选，所述羟乙基淀粉溶液的浓度为6％g/mL。
[0018] 步骤(4)所述重悬是加入生理盐水。
[0019] 步骤(4)和(5)所述离心的转速为1000～2000rpm/min，离心5～10min。
[0020] 步骤(1)所述离心的转速为1500～3000rpm，离心时间为8～12min。
[0021] 与现有技术相比，本发明具有的优点及有益效果：
[0022] (1)本发明技术结合了羟乙基淀粉沉淀法和Ficoll密度梯度离心法两种方法的优点，克服了目前技术在大容量血液样本中的缺点，得到高纯度的PBMC；
[0023] (2)分离得到的PBMC细胞的分化能力好，体外扩增倍数高，能更快的达到临床应用所需的细胞数量。
[0024] (3)先用羟乙基淀粉沉淀法去除大部分的红细胞，然后在空气中自然沉降，再用Ficoll密度梯度离心法对单个核细胞进行进一步纯化，从而得到纯度超过95％，活力超过85％的PBMC。相比没有在空气中自然沉降的方法，获得的细胞活力和纯度更高。
附图说明
附图说明
[0025] 图1为PBMC的分离纯度对比；
[0026] 图2为PBMC的分离活力对比；
[0027] 图3为NK细胞的生长曲线；
[0028] 图4为NK细胞的流式鉴定结果；
[0029] 图5为NKT细胞的生长曲线；
[0030] 图6为NKT细胞的流式鉴定结果；
[0031] 图7为CIK细胞的生长曲线；
[0032] 图8为CIK细胞的流式鉴定。
具体实施方式
[0033] 实施例1
[0036] 3、将下层血细胞转移到50mL离心管中，加入等体积的6％g/mL羟乙基淀粉溶液，混合均匀后使其自然沉降20min。
[0037] 4、另取一支新的50mL离心管，每管加入Ficoll淋巴细胞分离液(品牌：Axis-shield；供货商：深圳市达科为生物技术有限公司；货号：AS1114546)，将自然沉降后的上清液缓慢转移至淋巴细胞分离液的表面，使二者之间形成清晰的界面。
[0038] 5、用封口膜将离心管封口后转移至离心机，700g离心30min，离心升降速率改为0；
[0039] 6、离心后从管底到液面分为4层，依次为红细胞和粒细胞层、淋巴细胞分离液层、白膜层(即PBMC层)、血浆层。用巴氏吸管将中间的白膜层PBMC直接吸取出来，转移至另一支50mL离心管中。
[0040] 7、加生理盐水至40mL，重悬PBMC，1500rpm/min离心5min。
[0041] 8、离心结束后弃上清，加入40mL生理盐水充分重悬细胞后，取20μL细胞悬液于EP管中，用细胞计数仪进行细胞计数及活力检测，其余细胞悬液1500rpm/min离心5min。
[0042] 9、离心结束后弃上清，用1640培养基(含10％FBS)重悬细胞，调整细胞密度为5
5×10cells/mL后置于37℃、5％CO2培养箱中扩增培养。定期进行细胞计数并绘制细胞生长曲线。生长曲线图见实例中NK，NKT，CIK诱导分化结果。
5×10cells/mL后置于37℃、5％CO2培养箱中扩增培养。定期进行细胞计数并绘制细胞生长曲线。生长曲线图见实例中NK，NKT，CIK诱导分化结果。
[0043] 实施例2
[0044] 1、用75％乙醇擦试生物安全柜工作台面消毒，将装有外周血的抗凝管放入超净台中。
[0045] 2、将抗凝管中的外周血转移到离心管中，1500rpm离心8min，离心结束后共分为两层，上层为血浆，下层为血细胞沉淀。将上层血浆收集于另一支离心管中，标记后置于4℃冰箱，备用。
[0046] 3、将下层血细胞转移到50mL离心管中，加入等体积的4％g/mL羟乙基淀粉溶液，混合均匀后使其自然沉降15min。
[0047] 4、另取一支新的50mL离心管，每管加入Ficoll淋巴细胞分离液(品牌：Axis-shield；供货商：深圳市达科为生物技术有限公司；货号：AS1114546)，将自然沉降后的上清液缓慢转移至淋巴细胞分离液的表面，使二者之间形成清晰的界面。
[0048] 5、用封口膜将离心管封口后转移至离心机，600g离心20min，离心升降速率改为0；
[0049] 6、离心后从管底到液面分为4层，依次为红细胞和粒细胞层、淋巴细胞分离液层、白膜层(即PBMC层)、血浆层。用巴氏吸管将中间的白膜层PBMC直接吸取出来，转移至另一支50mL离心管中。
[0050] 7、加生理盐水至40mL，重悬PBMC，1000rpm/min离心5min。
[0051] 8、离心结束后弃上清，加入40mL生理盐水充分重悬细胞后，取20μL细胞悬液于EP管中，用细胞计数仪进行细胞计数及活力检测，其余细胞悬液1000rpm/min离心5min。
[0052] 9、离心结束后弃上清，用1640培养基(含10％FBS)重悬细胞，调整细胞密度为5
10×10后置于37℃、5％CO2培养箱中扩增培养。
10×10后置于37℃、5％CO2培养箱中扩增培养。
[0053] 实施例3
[0054] 1、用75％乙醇擦试生物安全柜工作台面消毒，将装有外周血的抗凝管放入超净台中。
[0055] 2、将抗凝管中的外周血转移到离心管中，3000rpm离心12min，离心结束后共分为两层，上层为血浆，下层为血细胞沉淀。将上层血浆收集于另一支离心管中，标记后置于4℃冰箱，备用。
[0056] 3、将下层血细胞转移到50mL离心管中，加入等体积的10％g/mL羟乙基淀粉溶液，混合均匀后使其自然沉降35min。
[0057] 4、另取一支新的50mL离心管，每管加入Ficoll淋巴细胞分离液(品牌：Axis-shield；供货商：深圳市达科为生物技术有限公司；货号：AS1114546)，将自然沉降后的上清液缓慢转移至淋巴细胞分离液的表面，使二者之间形成清晰的界面。
[0058] 5、用封口膜将离心管封口后转移至离心机，800g离心30min，离心升降速率改为0；
[0059] 6、离心后从管底到液面分为4层，依次为红细胞和粒细胞层、淋巴细胞分离液层、白膜层(即PBMC层)、血浆层。用巴氏吸管将中间的白膜层PBMC直接吸取出来，转移至另一支50mL离心管中。
[0060] 7、加生理盐水至40mL，重悬PBMC，2000rpm/min离心10min。
[0061] 8、离心结束后弃上清，加入40mL生理盐水充分重悬细胞后，取20μL细胞悬液于EP管中，用细胞计数仪进行细胞计数及活力检测，其余细胞悬液2000rpm/min离心10min。
[0062] 9、离心结束后弃上清，用1640培养基(含10％FBS)重悬细胞，调整细胞密度为5
8×10后置于37℃、5％CO2培养箱中扩增培养。
8×10后置于37℃、5％CO2培养箱中扩增培养。
[0063] 分离大容量血液样本PBMC的纯度对比试验：
[0064] 根据现有技术中的Ficoll密度梯度离心法跟本发明技术的方法进行PBMC分离后的纯度对比实验。如图1所示，采用单一的羟乙基淀粉沉淀法得到的PBMC存在大量的红细胞，纯度仅为43％；采用单一的Ficoll密度梯度离心法有少量的红细胞及血小板，纯度为87％；而采用本发明方法得到的PBMC的纯度高达96％。结果显示，采用本发明实施例1方法，即结合羟乙基淀粉沉淀法跟Ficoll密度梯度离心法两种方法分离所得到的PBMC，在纯度上明显优于其他两种单一的处理方法。
[0065] 对比例2：PBMC的活力鉴定
[0066] 将采用三种方法分离所得到的PBMC进行台盼蓝染色，并用细胞计数仪进行细胞的计数及活力鉴定。鉴定结果如图2所示，1为羟乙基淀粉沉淀法；2为Ficoll密度梯度离心法；3为本发明实施例1的方法，本发明技术分离的PBMC的活力为95％。而采用羟乙基淀粉沉淀法PBMC活力为85％，Ficoll密度梯度离心法则为83％。可见，本发明得到的PBMC活力均高于其他两种方法。
[0067] 对比例3：PBMC的NK分化扩增试验
[0068] 利用本发明实施例1分离得到了纯度及活力都较高的PBMC后，利用NK细胞分选试剂盒将其进行NK细胞的分选及诱导培养，培养两周后绘制NK细胞的生长曲线，并取一部- +分细胞进行流式检测(主要检测CD3CD56亚群，即NK细胞)。其生长曲线及流式检测结果分别见下图3和图4。
[0069] 由图3可见，利用本技术分离得到的PBMC进一步分选NK细胞，细胞的增殖能力很强，在第6天之后进入对数生长期，第13天增殖速度开始变慢，到第15天收集细胞时，细胞增殖倍数高达825倍。
[0070] 由图4可见，CD3-CD56+亚群细胞，即右图第四象限中的细胞，流式检测结果显示NK细胞的比例为95.4％，细胞纯度较高。
[0071] 对比例4：PBMC的NKT分化扩增试验
[0072] 利用本发明实施例2分离得到了纯度及活力都较高的PBMC后，将其进行NKT细胞的诱导培养，培养两周后绘制NKT细胞的生长曲线，并取一部分细胞进行流式细胞检测(主+ + +要检测CD3CD56及CD161 两个亚群的细胞，即NKT细胞)。其生长曲线及流式检测结果分别见下图5和图6。
[0073] 由图5可见，利用本技术分离得到的PBMC进一步诱导培养NKT细胞，细胞的增殖能力较好，在第5天之后细胞开始出现明显增殖，第14天增殖速度开始变慢，收集细胞时，细胞增殖倍数高达200倍以上。
[0074] 由图6可见，CD3+CD56+及CD161+两个亚群的细胞，即NKT细胞，流式检测结果显示NKT细胞两个亚群的比例合计为61.9％，细胞诱导分化培养效果很好。
[0075] 对比例5：PBMC的CIK分化扩增试验
[0076] 利用本发明实施例3方法分离得到了纯度及活力都较高的PBMC后，将其进行CIK细胞的诱导培养，培养两周后绘制CIK细胞的生长曲线，并取一部分细胞进行流式细胞检+ +测(主要检测CD3CD56效应细胞，即CIK细胞)。其生长曲线及流式检测结果分别见下图
7和图8。
7和图8。
[0077] 由图7可见，利用本技术分离得到的PBMC进一步诱导培养CIK细胞，细胞的增殖能力较好，在第5天之后细胞开始出现明显增殖，第12天增殖速度开始变慢，第14天收集细胞时，细胞增殖倍数高达200倍以上。
[0078] 由图8可见，CD3+CD56+亚群的细胞，即CIK细胞，流式检测结果显示CIK细胞比例为24.9％，细胞诱导分化培养效果较好。
| 标题 | 发布/更新时间 | 阅读量 |
|---|---|---|
| 一种外周血单个核细胞改良冻存液 | 2020-05-11 | 961 |
| 将外周血单个核细胞诱导为CIK的试剂及其所用组合物 | 2020-05-16 | 460 |
| 呼吸衰竭外周血单个核细胞蛋白质图谱模型的构建方法 | 2020-05-16 | 327 |
| 一种用于分离外周血单个核细胞的装置 | 2020-05-13 | 190 |
| 一种从外周血单个核细胞中大量扩增NK细胞的方法 | 2020-05-14 | 874 |
| 一种MERRF患者的外周血单个核细胞的非整合性重编程方法 | 2020-05-16 | 452 |
| 用于诱导和扩增源自外周血单个核细胞的自然杀伤细胞的方法 | 2020-05-14 | 685 |
| 一种外周血单个核细胞无血清冻存液及冻存方法 | 2020-05-15 | 710 |
| 一种人外周血单个核细胞的分离方法 | 2020-05-11 | 291 |
| 一种用于外周血单个核细胞分离的真空采血管 | 2020-05-14 | 442 |
高效检索全球专利专利汇是专利免费检索,专利查询,专利分析-国家发明专利查询检索分析平台，是提供专利分析，专利查询，专利检索等数据服务功能的知识产权数据服务商。
我们的产品包含105个国家的1.26亿组数据，免费查、免费专利分析。
分析报告
专利汇分析报告产品可以对行业情报数据进行梳理分析，涉及维度包括行业专利基本状况分析、地域分析、技术分析、发明人分析、申请人分析、专利权人分析、失效分析、核心专利分析、法律分析、研发重点分析、企业专利处境分析、技术处境分析、专利寿命分析、企业定位分析、引证分析等超过60个分析角度，系统通过AI智能系统对图表进行解读，只需1分钟，一键生成行业专利分析报告。
QQ群二维码
意见反馈
意见反馈