| 序号 | 专利名 | 申请号 | 申请日 | 公开（公告）号 | 公开（公告）日 | 发明人 |
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| 561 | 一种高效核酸提取试剂盒及其使用方法 | CN202111396534.7 | 2021-11-23 | CN114621948A | 2022-06-14 | 王稀莹; 李杨霞; 汪亮 |
| 本发明涉及核酸提取领域，公开了一种高效核酸提取试剂盒及其使用方法，试剂盒包括：裂解液，以重量份计，裂解液的组分包括：变性剂50~100份、表面活性剂10~30份、甘油5份、三羟甲基氨基甲烷2~5份、异丙醇200份、无机盐8~10份、水75~100份；磁珠分散液；洗涤液，以重量份计，洗涤液的组分包括：表面活性剂10~30份、缓冲液10份、水100份、无水乙醇300~400份；洗脱液，以重量份计，洗脱液的组分包括：三羟甲基氨基甲烷250~500份、硫柳汞钠1~2份、水500000份。本发明通过对裂解液、洗涤液和洗脱液组分的优化，提高了核酸提取效率，并提高了对含杂质较多样本的抗干扰能力。 | ||||||
| 562 | 一种采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒及其使用方法 | CN201310105457.4 | 2013-03-29 | CN103215253A | 2013-07-24 | 李旭新; 杨玉芬 |
| 本发明属于分子生物学技术领域，尤其涉及一种采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒及其使用方法。试剂盒包括裂解液、清洗液1、清洗液2、清洗液3、洗脱液和磁珠悬浮液。本发明试剂盒的缓冲液体系配合特制的纳米级磁珠，可最大限度地去除样本的蛋白质、色素、脂类及其他抑制性杂质污染，从而使提取的DNA或RNA片段完整、产量高、纯度高、稳定可靠、成本低。 | ||||||
| 563 | 用于纯化纤维蛋白原的方法 | CN201780006426.X | 2017-01-12 | CN109071596B | 2022-03-11 | 金俊植; 金孝珍; 朴芝允; 李柱浩; 孙载云; 辛庸源 |
| 本发明涉及一种用于纯化纤维蛋白原的方法，并且更具体地，涉及一种包括以下步骤的用于纯化纤维蛋白原的方法：(a)(第一甘氨酸沉淀)通过向其中添加甘氨酸直到甘氨酸浓度变为1.5‑2.5M，使在含有纤维蛋白原的溶液中含有的所述纤维蛋白原沉淀，去除上清液，然后获得沉淀物；(b)(第二甘氨酸沉淀)，通过在裂解缓冲液中裂解由步骤(a)中的第一甘氨酸沉淀获得的沉淀物而获得裂解溶液，通过向其中添加甘氨酸直到甘氨酸浓度变为0.2‑1.2M使所述裂解溶液沉淀，并且回收上清液；(c)(第三甘氨酸沉淀)通过向其中添加甘氨酸直到甘氨酸浓度变为1.5‑2.5M使步骤(b)的上清液沉淀，并且获得沉淀物；和(d)，通过在裂解缓冲液中裂解步骤(c)的沉淀物获得裂解溶液，和通过纳米过滤器在其上进行纳米过滤(NF)。根据本发明，用于纯化纤维蛋白原蛋白的新的方法，因为病原性的动物来源的组分(病毒)的流入基本被拦截而是一种非常安全的方法，因为可通过简单的方法纯化具有高产率的高纯度纤维蛋白原蛋白而是非常经济和有效的，并且因为与常规方法纯化的纤维蛋白原相比具有通过具有高纯度而增加局部作用的优点，而可以用于预防和治疗血液相关疾病，特别是血液凝固病症。 | ||||||
| 564 | 用于纯化纤维蛋白原的方法 | CN201780006426.X | 2017-01-12 | CN109071596A | 2018-12-21 | 金俊植; 金孝珍; 朴芝允; 李柱浩; 孙载云; 辛庸源 |
| 本发明涉及一种用于纯化纤维蛋白原的方法，并且更具体地，涉及一种包括以下步骤的用于纯化纤维蛋白原的方法：(a)(第一甘氨酸沉淀)通过向其中添加甘氨酸直到甘氨酸浓度变为1.5-2.5M，使在含有纤维蛋白原的溶液中含有的所述纤维蛋白原沉淀，去除上清液，然后获得沉淀物；(b)(第二甘氨酸沉淀)，通过在裂解缓冲液中裂解由步骤(a)中的第一甘氨酸沉淀获得的沉淀物而获得裂解溶液，通过向其中添加甘氨酸直到甘氨酸浓度变为0.2-1.2M使所述裂解溶液沉淀，并且回收上清液；(c)(第三甘氨酸沉淀)通过向其中添加甘氨酸直到甘氨酸浓度变为1.5-2.5M使步骤(b)的上清液沉淀，并且获得沉淀物；和(d)，通过在裂解缓冲液中裂解步骤(c)的沉淀物获得裂解溶液，和通过纳米过滤器在其上进行纳米过滤(NF)。根据本发明，用于纯化纤维蛋白原蛋白的新的方法，因为病原性的动物来源的组分(病毒)的流入基本被拦截而是一种非常安全的方法，因为可通过简单的方法纯化具有高产率的高纯度纤维蛋白原蛋白而是非常经济和有效的，并且因为与常规方法纯化的纤维蛋白原相比具有通过具有高纯度而增加局部作用的优点，而可以用于预防和治疗血液相关疾病，特别是血液凝固病症。 | ||||||
| 565 | 一种通用的SARS-COV-2的RBD纳米颗粒疫苗及其制备方法和应用 | CN202310266841.6 | 2023-03-20 | CN116121286A | 2023-05-16 | 马雁冰; 郑鹏; 龙琼; 白红妹; 杨旭 |
| 本发明提供了一种通用的SARS‑COV‑2的RBD纳米颗粒疫苗及其制备方法和应用，制备时利用基因工程技术将不同SARS‑CoV‑2毒株的RBD基因构建到诺如病毒的S结构域的C端，得到表达单元，将所述表达单元克隆进入大肠杆菌质粒中得到重组质粒；将获得的重组质粒转化到大肠杆菌感受态细胞中，并在培养基中培养、诱导重组蛋白表达，蛋白诱导结束后离心收集细菌，细菌沉淀重悬于裂解缓冲液中，进行超声裂解，得到细菌裂解液；离心处理细菌裂解液并收集上清，过滤后利用柱层析纯化得到均一的蛋白纳米颗粒，即为通用的SARS‑COV‑2的RBD纳米颗粒疫苗。所述RBD纳米颗粒疫苗能够将RBD高密度的呈递在Nov的S结构域表面，自由的迁移到引流淋巴结中从而增强疫苗的效力。 | ||||||
| 566 | 一种蚕豆根尖细胞彗星实验样品制备方法和用于实施该方法的试剂盒 | CN201010120751.9 | 2010-03-10 | CN101907532A | 2010-12-08 | 刘爱林 |
| 本发明公开了一种蚕豆根尖细胞彗星实验样品制备方法，包括铺片步骤、细胞裂解步骤、解旋电泳步骤、中和步骤以及染色步骤，其中，所述铺片步骤包括：第一铺胶步骤：在一个载玻片上铺一个第一琼脂糖凝胶层；加缓冲液步骤：在所述第一琼脂糖凝胶层上加Honda buffer缓冲液；点样步骤：将一个蚕豆根尖的切面反复多次进入所述Honda buffer缓冲液液面；第二铺胶步骤：在所述Honda buffer缓冲液上铺一层琼脂糖胶体液，盖上盖玻片，固化后形成一个细胞胶体混合凝胶层。本发明方法获得的可分析细胞核较多、所获得的图像背景较佳。 | ||||||
| 567 | 一种利用废塑料连续化油装置进行废塑料连续化油的生产方法 | CN201310014596.6 | 2013-01-16 | CN103059897B | 2016-06-15 | 欧卓木; 欧鹏; 秦汉盈; 欧增才 |
| 本发明是一种废塑料连续化油装置，包括裂化反应釜和出渣缓冲釜，所述裂化反应釜的进料口设置第一液压密封阀，所述裂化反应釜的出渣口设置第二液压密封阀，并且裂化反应釜的出渣口与出渣缓冲釜通过管道连通，所述裂化反应釜上方设置出气口，所述裂化反应釜和出渣缓冲釜的外壁设置环形加热风道，所述环形加热风道的外围设置保温外层，所述裂化反应釜和出渣缓冲釜内设置搅龙，所述出渣缓冲釜的出渣口设置第三液压密封阀。本发明能够在裂解高温、易燃易爆状态下能够安全地连续进料、连续出油、连续排渣，并且达到一定生产规模。 | ||||||
| 568 | 磁珠法血液基因组DNA提取试剂盒的使用方法 | CN201810946624.0 | 2018-08-20 | CN110846307A | 2020-02-28 | 包文静; 金安娜; 高伙妮; 龚伟 |
| 本发明公开了磁珠法血液基因组DNA提取试剂盒的使用方法，包括以下步骤：取100μL血液样品，加入300μL细胞裂解液，混匀后室温孵育5min，12000rpm离心1min，去除上清液；加200μL裂解液和10μL蛋白酶K，混匀后在56℃、800rpm的条件下孵育15min；放置5min后离心，转移上清并在其中加入100μL磁珠混匀孵育5min，离心，放置磁力架上至溶液澄清；移除上清后加入乙醇溶液混匀，放在磁力架上离心去除乙醇溶液后静置至磁珠不反光；加入30μL的无核酸酶水低盐缓冲液，静置后置于磁力架上2min，将上清转移至新的样品管中备用。本方法提取过程不涉及有毒有害试剂，操作安全。 | ||||||
| 569 | 废塑料连续化油装置及生产方法 | CN201310014596.6 | 2013-01-16 | CN103059897A | 2013-04-24 | 欧卓木; 欧鹏; 秦汉盈; 欧增才 |
| 本发明是一种废塑料连续化油装置，包括裂化反应釜和出渣缓冲釜，所述裂化反应釜的进料口设置第一液压密封阀，所述裂化反应釜的出渣口设置第二液压密封阀，并且裂化反应釜的出渣口与出渣缓冲釜通过管道连通，所述裂化反应釜上方设置出气口，所述裂化反应釜和出渣缓冲釜的外壁设置环形加热风道，所述环形加热风道的外围设置保温外层，所述裂化反应釜和出渣缓冲釜内设置搅龙，所述出渣缓冲釜的出渣口设置第三液压密封阀。本发明能够在裂解高温、易燃易爆状态下能够安全地连续进料、连续出油、连续排渣，并且达到一定生产规模。 | ||||||
| 570 | 一种核酸提取试剂盒及核酸提取方法 | CN202310273784.4 | 2023-03-16 | CN116769767A | 2023-09-19 | 寇增强; 刘珂珂; 李林林; 董雯 |
| 本发明公开了一种核酸提取试剂盒及核酸提取方法，包括裂解液、磁珠和洗脱液，其中，裂解液的组成成分有：Tris缓冲液20～100mmol/L，pH值5.5～7.5；NaCl 5～10g/L；十二烷基硫酸钠2～10g/L；异硫氰酸胍5～10g/L；EDTA 5～10g/L；BSA 1～5g/L；极美115 2～5g/L；NP‑40 2～5g/L；吐温20 5～10g/L；磁珠为超顺磁性海藻酸钠纳米磁珠；洗涤液的组成成分有：PBS缓冲液50～100mmol/L，pH值为7.0～7.5；乙醇60％～80％；洗脱液的组分成分有：Tris缓冲液50～100mmol/L，pH值7.5；EGTA 5g/L；叠氮钠0.5g/L；溶剂为纯化水。该试剂盒具有简单有效、快速方便、耗时短、核酸提取效率高等优势，可满足大批量样本的提取要求。 | ||||||
| 571 | 蛋白质组样本处理试剂盒、处理方法及应用 | CN201910350963.7 | 2019-04-28 | CN110208448A | 2019-09-06 | 秦钧; 汪宜; 丁琛; 宋雷; 刘明伟; 杨星 |
| 本发明公开了一种蛋白质组样本处理试剂盒、处理方法及应用。该试剂盒包括：三(2-羰基乙基)磷盐酸盐、2,2-二氯乙酰胺、脱氧胆酸钠以及缓冲液。应用本发明的技术方案，蛋白质组样本处理前，将本发明试剂盒中的三(2-羰基乙基)磷盐酸盐、2,2-二氯乙酰胺、脱氧胆酸钠以及缓冲液配成处理液，其中，通过脱氧胆酸钠来对细胞/组织样本进行裂解和细胞内全蛋白变性，三(2-羰基乙基)磷盐酸盐作为还原剂，2,2-二氯乙酰胺作为烷基化试剂，蛋白质组样本在处理液中数分钟即可完成裂解与还原烷基化。也就是说，在本发明中裂解与还原、烷基化一步完成，这样使得蛋白质组样本处理流程简单，而且节约了时间。 | ||||||
| 572 | 一种荧光素酶报告基因系统检测转录因子表达活性的方法 | CN201610825203.3 | 2016-09-14 | CN106399461A | 2017-02-15 | 张金保; 陈燕 |
| 本发明提供了一种荧光素酶报告基因系统检测转录因子表达活性的方法，利用荧光素酶自身持久稳定并且易于检测的特性，将包含靶基因启动子的荧光素酶报告基因载体与转录因子表达质粒共同转染至细胞，细胞培养后，将一定数量的细胞用细胞裂解缓冲液裂解，收集含有荧光素酶的裂解液，离心取上清液，然后在荧光素酶活性检测缓冲液内实时检测出荧光素酶表达强度数据，并同时测得荧光素酶浓度，校正后，即可计算得到所述转录因子的表达量，即所需要检测的转录因子的表达活性；该方法的整个操作过程更加简单易行，耗时更短，通量更高，且具有较高的可重复性与准确度、以及更低的操作成本，因此，具有广阔的应用前景，并且具有优异的市场潜力。 | ||||||
| 573 | 一种免抽提的核酸检测方法及试剂盒 | CN202011236028.7 | 2020-11-09 | CN112280832B | 2022-06-24 | 徐根明; 鞠巍; 秦闯华; 潘艺; 赵谦 |
| 本发明公开了一种免抽提的核酸检测方法及试剂盒。检测方法包括以下步骤：(1)将含有待检测核酸的生物样本放在多功能缓冲液中进行裂解，释放出待检测核酸；(2)将含有释放的待检测核酸的多功能缓冲液加入检测试剂进行待检测核酸的复制反应；(3)反应完成后根据检测结果判断样本中是否含有待检测核酸。所述的多功能缓冲液具有裂解失活生物样本，促进待检测核酸释放，以及作为待检测核酸复制和检测过程所需缓冲液的作用；所述的检测试剂包含待检测核酸复制扩增和检测核酸复制扩增产物所需要的各种酶、引物、以及辅助因子。该方法可以实现快速简便、高特异性、高灵敏度的检测病毒、细菌、细胞、生物组织等原始样本是否存在特定的核酸序列。 | ||||||
| 574 | 一种用于制备样品的盒 | CN201310061818.X | 2006-10-18 | CN103289988B | 2016-04-27 | J·程; D·H·胡; S·J·C·俞; P·Y·F·李 |
| 一种从样品中分离核酸的方法，包括如下步骤：接收位于一盒的混合室中的样品，盒包括：混合室；第一清洗室；第一阀，其包括阀壳，阀壳界定了与混合室流体连通的第一阀孔和与第一清洗室流体连通的第二阀孔；第一反应室，其经配置以容纳裂解缓冲液；第二反应室，其经配置经容纳磁性颗粒；和第三反应室，其经配置以容纳结合缓冲液；其中第一、第二和第三反应室中的每一者包含可刺破部分，可刺破部分界定位于混合室和第一、第二和第三反应室之间的边界的至少一部分；通过刺破第一、第二、第三反应室的可刺破部分分别将裂解缓冲液、磁性颗粒输送和结合缓冲液输送至混合室；将样品的核酸结合至磁性颗粒；等等。 | ||||||
| 575 | 一种用于制备样品的盒 | CN201310061818.X | 2006-10-18 | CN103289988A | 2013-09-11 | J·程; D·H·胡; S·J·C·俞; P·Y·F·李 |
| 一种从样品中分离核酸的方法，包括如下步骤：接收位于一盒的混合室中的样品，盒包括：混合室；第一清洗室；第一阀，其包括阀壳，阀壳界定了与混合室流体连通的第一阀孔和与第一清洗室流体连通的第二阀孔；第一反应室，其经配置以容纳裂解缓冲液；第二反应室，其经配置经容纳磁性颗粒；和第三反应室，其经配置以容纳结合缓冲液；其中第一、第二和第三反应室中的每一者包含可刺破部分，可刺破部分界定位于混合室和第一、第二和第三反应室之间的边界的至少一部分；通过刺破第一、第二、第三反应室的可刺破部分分别将裂解缓冲液、磁性颗粒输送和结合缓冲液输送至混合室；将样品的核酸结合至磁性颗粒；等等。 | ||||||
| 576 | 带有熔盐储能系统的甲醇水蒸气裂解制氢装置 | CN202322899966.0 | 2023-10-27 | CN220976588U | 2024-05-17 | 宋士雄; 陈煜达; 陈昊; 沈平; 谢文韬 |
| 本实用新型公开了一种带有熔盐储能系统的甲醇水蒸气裂解制氢装置，包括冷熔盐储罐，冷熔盐储罐内的冷熔盐泵与熔盐电加热器和混盐罐连接，熔盐电加热器连接热熔盐储罐；热熔盐储罐内的热熔盐泵与混盐罐连接；冷熔盐储罐、混盐罐、导热油泵、汽化过热器分别连接油盐换热器；汽化过热器连接转化反应器；甲醇储罐、除盐水罐、预热器分别与原料液储罐连接；所述预热器分别连接汽化过热器、转化反应器、冷凝器；所述冷凝器连接裂解气水洗塔，裂解气水洗塔分别连接裂解气缓冲罐、原料液储罐；裂解气缓冲罐分别与原料液储罐、吸收塔连接；所述吸收塔分别与解析塔、氢气储罐连接。该装置可利用谷电、风电、光伏弃电储能，运行稳定、制氢效率高、经济性高。 | ||||||
| 577 | 一种适合富含多糖类植物的干燥叶片DNA提取方法 | CN201310091005.5 | 2013-03-21 | CN103756994A | 2014-04-30 | 王小蓉; 陈涛; 汤浩茹; 刘泽静; 陈清; 张勇; 罗娅; 黄晓姣; 陈娇 |
| 本发明公开了一种适合多糖类植物干燥叶片的DNA提取方法，包括干燥叶片研磨、去糖、裂解、抽提、沉淀、洗涤和检测等步骤。其中，去糖是本发明的关键，在核膜没有裂解释放出基因组DNA之前，加入预热的去糖缓冲液，在65℃水浴条件下悬浮叶片组织溶液，可以使多糖及其他次生代谢物质溶解于缓冲液中，再通过低速离心去除多糖等杂质，使最后沉淀得到的DNA具有较高的浓度和纯度。本发明适用于所有樱属植物及其它富含多糖类植物的干燥成熟叶片，如果是幼嫩叶片则会增加所得DNA的浓度，在成熟叶片中一样能够得到较多较高质量的DNA。 | ||||||
| 578 | 一种精子质量评估的方法 | CN201610147267.2 | 2016-03-16 | CN105671126A | 2016-06-15 | 马芳; 马学; 李福平 |
| 本发明提供了一种精子质量评估的方法。具体步骤如下：A、收集新鲜液化精液标本，用磷酸缓冲液或者BWW培养液洗涤精子，充分除去残留的精浆成分，再离心分离出精子；B、向A步骤分离出的精子中加入细胞裂解液和蛋白酶抑制剂cocktail，混匀，待无明显的细胞沉淀即充分裂解，在4℃下高速离心，上清液即蛋白提取物；C、测定精子蛋白提取物的蛋白浓度；D、测定精子唾液酸酶活性，最后得出唾液酸酶活性/蛋白浓度的值即可。通过精子中唾液酸酶活性的检测，为临床原因不明的男性不育患者提供诊断依据及临床咨询。 | ||||||
| 579 | 一种磁珠法微生物基因组DNA的提取试剂盒及提取方法 | CN201910609512.0 | 2019-07-08 | CN110283816A | 2019-09-27 | 黄学文; 赵琪; 安仙园; 沈兰凤; 胡仁静 |
| 本发明涉及一种磁珠法微生物基因组DNA的提取试剂盒及提取方法，包括微生物保存缓冲液、溶菌液Ⅰ、蛋白酶K、硅胶磁珠、异丙醇、乙醇水溶液，还包括溶菌剂Ⅱ、裂解吸附液和加强洗涤液，溶菌剂Ⅱ包括MES、EDTA、Triton X-100、溶壁酶以及溶壁酶增强剂，裂解吸附液包括Tris-HCl、氯化钠、EDTA、TrionX-100以及核酸分离吸收促进剂；加强洗涤液包括Tris-HCl、氯化锂和乙醇。采用本发明的试剂盒能够彻底破坏革兰氏阳性细菌和各种真菌的细胞壁，形成原生质体，在裂解吸附液的作用下迅速释放原生质体细胞DNA，并高效地吸附在硅胶磁珠上，经洗涤液洗涤并用洗脱液洗脱后，得到高浓度和纯度的微生物DNA。 | ||||||
| 580 | 仿刺参体壁总RNA提取方法 | CN201010223407.2 | 2010-07-12 | CN101864414A | 2010-10-20 | 李霞; 秦艳杰; 王雪; 陈秋实; 郑柯 |
| 本发明公开一种提取纯度高、完整性好、得率高的仿刺参体壁总RNA的方法，具体方法是取仿刺参体壁组织至液氮中速冻；将速冻的组织研磨后置入裂解液中匀浆、离心，取上清；向上清中加入氯仿，再离心取上清至另一离心管中；再加入高盐溶液及异丙醇，所得沉淀用乙醇洗涤；用DEPC处理水溶解沉淀并定容；向所得溶解液中依次加入无RNA酶的DNA酶缓冲液、无RNA酶的DNA酶及RNA酶抑制剂混匀，37℃水浴得DNA裂解液；向DNA裂解液中加入酚∶氯仿(5∶1)混匀，离心取上清；向上清液中加入糖原溶液、醋酸钾溶液及预冷的无水乙醇，混匀过夜后离心弃上清，沉淀用乙醇洗涤、干燥；用DEPC处理水溶解最终沉淀物并定容至20μL，-80℃保存。 | ||||||
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