| 序号 | 专利名 | 申请号 | 申请日 | 公开（公告）号 | 公开（公告）日 | 发明人 |
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| 1 | 非不透明裂解性缓冲液组合物制剂 | CN202380019264.9 | 2023-02-03 | CN118632934A | 2024-09-10 | J·派提赛; C·陈; 梅根·伊丽莎白·沃尔夫冈; 张红华; 塔尼娅·弗格森; 詹姆斯·尼利斯 |
| 本文的公开内容包括用于检测样品中的靶核酸序列的方法、组合物和试剂盒。提供的公开内容包括储存稳定的裂解缓冲液。在一些实施方案中，裂解缓冲液包含：一种或更多种表面活性剂和硫酸镁(Mg沉淀物SO4)(。例如在一，Mg些+2实与一种或更施方案中，多种表面活性剂的络合物)的形成在至少一种储存条件下一定时间段内大体上被抑制。 | ||||||
| 2 | 一种用于DNA提取的裂解缓冲液 | CN202011261621.7 | 2020-11-12 | CN112226490A | 2021-01-15 | 洪冉 |
| 本发明公开了一种用于DNA提取的裂解缓冲液，所述裂解缓冲液中包括胍盐缓冲液和2‑环己胺基乙磺酸。使用该缓冲液进行DNA提取时，样本中的蛋白类PCR抑制剂，如血红蛋白、粘蛋白等不能与DNA一同吸附在硅羟基磁珠表面，提取的DNA中PCR抑制剂含量少，能有效地提升PCR检测结果的重复性并减少检测的假阴性结果。 | ||||||
| 3 | 一种用于RNA提取的裂解缓冲液 | CN202011261586.9 | 2020-11-12 | CN112176033A | 2021-01-05 | 洪冉 |
| 本发明公开了一种用于RNA提取的裂解缓冲液，所述裂解缓冲液在常规的胍盐缓冲液的基础上添加了2‑环己胺基乙磺酸(CHES)。使用该缓冲液进行RNA提取时，样本中常见的蛋白类PCR抑制剂，如血红蛋白、粘蛋白等不能与RNA一同吸附在硅羟基磁珠表面，提取的RNA中PCR抑制剂含量少，能有效地提升PCR检测结果的重复性并减少检测的假阴性结果。 | ||||||
| 4 | 用于RT-PCR反应缓冲液中的细胞裂解的方法 | CN201180048150.4 | 2011-09-30 | CN103154270A | 2013-06-12 | I.霍夫曼; H.瓦尔克 |
| 本发明一般而言提供了用于扩增靶RNA的方法，其包括步骤（i）将包含至少一个或多个活细胞的具有第一体积的液体转移到容器内，（ii）向所述容器中加入具有第二体积的RT-PCR反应缓冲液，其中所述第二体积是所述第一体积至少2x大，（iii）通过在至少90℃温育至少20秒，裂解所述容器内的所述至少一个或多个活细胞，以及（iv）通过一步RT-PCR而不执行中间纯化步骤扩增所述靶。 | ||||||
| 5 | 用于RT-PCR反应缓冲液中的细胞裂解的方法 | CN201180048150.4 | 2011-09-30 | CN103154270B | 2018-01-09 | I.霍夫曼; H.瓦尔克 |
| 本发明一般而言提供了用于扩增靶RNA的方法，其包括步骤（i）将包含至少一个或多个活细胞的具有第一体积的液体转移到容器内，（ii）向所述容器中加入具有第二体积的RT‑PCR反应缓冲液，其中所述第二体积是所述第一体积至少2x大，（iii）通过在至少90℃温育至少20秒，裂解所述容器内的所述至少一个或多个活细胞，以及（iv）通过一步RT‑PCR而不执行中间纯化步骤扩增所述靶。 | ||||||
| 6 | 用于PCR反应缓冲液中的细胞裂解的方法 | CN201180048151.9 | 2011-09-30 | CN103124796B | 2016-08-03 | I.霍夫曼 |
| 本发明一般而言提供了用于扩增靶DNA的方法，其包括步骤（i）将包含至少一个或多个活细胞的具有第一体积的液体转移到容器内，（ii）向所述容器中加入具有第二体积的PCR反应缓冲液，其中所述第二个体积是所述第一体积至少2x大，（iii）通过在至少90℃温育至少1分钟，裂解所述容器内的所述至少一个或多个活细胞，以及（iv）通过聚合酶链反应而不执行中间纯化步骤来扩增所述靶。 | ||||||
| 7 | 用于PCR反应缓冲液中的细胞裂解的方法 | CN201180048151.9 | 2011-09-30 | CN103124796A | 2013-05-29 | I.霍夫曼 |
| 本发明一般而言提供了用于扩增靶DNA的方法，其包括步骤（i）将包含至少一个或多个活细胞的具有第一体积的液体转移到容器内，（ii）向所述容器中加入具有第二体积的PCR反应缓冲液，其中所述第二个体积是所述第一体积至少2x大，（iii）通过在至少90℃温育至少1分钟，裂解所述容器内的所述至少一个或多个活细胞，以及（iv）通过聚合酶链反应而不执行中间纯化步骤来扩增所述靶。 | ||||||
| 8 | 一种联合检测IGF-1和IGFBP-3的试剂盒及其所用裂解液、缓冲液 | CN202311590135.3 | 2023-11-27 | CN117288966B | 2024-02-27 | 杨帆; 郑雯雯; 杨金红; 朱琦琦; 杨致亭 |
| 本发明涉及一种联合检测IGF‑1和IGFBP‑3的试剂盒及其所用裂解液、缓冲液，属于免疫荧光层析检验领域，一种联合检测IGF‑1和IGFBP‑3的试剂盒，包括试纸条，试纸条包括PVC板，PVC板上从左到右依次包括吸水纸、硝酸纤维素膜、样品垫，吸水纸的一端搭接在硝酸纤维素膜的一端上，样品垫的一端搭接在硝酸纤维素膜的另一端上，本发明使用便捷，操作简单，检测灵敏度高，特异性好，可实现双向联检，既保证将IGF‑1充分裂解下来，又保证IGFBP‑3的蛋白构象完整和不变性，同时保证该方法学的检测灵敏度和特异性，解剂与缓冲液稳定性好。 | ||||||
| 9 | 一种联合检测IGF-1和IGFBP-3的试剂盒及其所用裂解液、缓冲液 | CN202311590135.3 | 2023-11-27 | CN117288966A | 2023-12-26 | 杨帆; 郑雯雯; 杨金红; 朱琦琦; 杨致亭 |
| 本发明涉及一种联合检测IGF‑1和IGFBP‑3的试剂盒及其所用裂解液、缓冲液，属于免疫荧光层析检验领域，一种联合检测IGF‑1和IGFBP‑3的试剂盒，包括试纸条，试纸条包括PVC板，PVC板上从左到右依次包括吸水纸、硝酸纤维素膜、样品垫，吸水纸的一端搭接在硝酸纤维素膜的一端上，样品垫的一端搭接在硝酸纤维素膜的另一端上，本发明使用便捷，操作简单，检测灵敏度高，特异性好，可实现双向联检，既保证将IGF‑1充分裂解下来，又保证IGFBP‑3的蛋白构象完整和不变性，同时保证该方法学的检测灵敏度和特异性，解剂与缓冲液稳定性好。 | ||||||
| 10 | 一种用于提取RNA的CTAB裂解缓冲液及提取植物RNA的方法 | CN202211291011.0 | 2022-10-21 | CN115595321A | 2023-01-13 | 陈敏敏; 何秋伶 |
| 本发明提供了一种用于提取RNA的CTAB裂解缓冲液及利用该CTAB裂解缓冲液提取植物RNA的方法，属于RNA提取技术领域。本发明提供的CTAB裂解缓冲液，毎百毫升含有如下组分：浓度为1mol/L的Tris10ml、浓度为2.8mol/L的NaCl50ml、浓度为0.25mol/L的EDTA8ml、CTAB2g、PVP2g和β‑巯基乙醇2ml。将该CTAB裂解缓冲液用于提取植物RNA的方法的方法中，对提高RNA的产率有很大的帮助，操作简单，稳定性好，选择性沉淀DNA和多糖多酚等杂质，能得到质量很好的RNA。 | ||||||
| 11 | 一种用于检测细胞类泛素修饰蛋白的新型细胞裂解缓冲液 | CN202110676904.6 | 2021-06-18 | CN113484524A | 2021-10-08 | 黄超; 李勇; 谭时锐; 赵敏 |
| 本发明公开了一种用于检测细胞类泛素修饰蛋白的新型细胞裂解缓冲液，在人和动物细胞内存在大量小分子修饰的蛋白，尤其是受到类泛素分子修饰的蛋白，为提高其检测效率，通过优化调整动物细胞裂解缓冲液各成分组成比例，并创新性的加入相关试剂成分，以及改变完善细胞裂解流程，能高度有效裂解各种动物原生代细胞和传代培养细胞，并为后期实验，包括蛋白鉴定，蛋白纯化，抗体制备等实验，提供良好的实验用前期蛋白样品。 | ||||||
| 12 | 植物叶片DNA提取裂解缓冲液、植物叶片DNA快速提取的方法及应用 | CN202110238870.2 | 2021-03-04 | CN112899267A | 2021-06-04 | 陈庆春; 黄刚; 陈永佳; 黄苹; 刘家劲; 汪杰; 侯军亮; 余慷 |
| 本发明属于生物技术领域，具体涉及植物叶片DNA提取裂解缓冲液、植物叶片DNA快速提取的方法及应用。本发明的植物叶片DNA提取裂解缓冲液，包括以下组分：65～75mM Tris‑HCl、30～40mM EDTA，提取裂解缓冲液的pH为8.0。本发明优化植物裂解液，将新鲜植物叶片直接进行裂解，整个提取过程只有1次加液、1次加热1次离心、并在1管中完成，其余步骤均省略，离心后取上清液即可进行常规的分子生物学实验操作，且提取出的DNA进行PCR扩增效果稳定。 | ||||||
| 13 | 一种适用于睡莲的流式细胞术样品的制备方法及细胞裂解缓冲液 | CN201710864866.0 | 2017-09-22 | CN107603883A | 2018-01-19 | 蒋玮; 唐雪明; 吕贝贝; 吴潇 |
| 本发明公开了一种适用于睡莲的流式细胞术样品的制备方法及细胞裂解缓冲液，涉及流式细胞术检测领域。本发明公开的适用于睡莲的流式细胞术样品的制备方法，包括裂解步骤：将睡莲组织样品进行裂解处理、过滤处理、离心处理，得到待染色的细胞核；染色步骤：对所述待染色的细胞核进行染色处理，得到染色的细胞核。该制备方法采用改进的细胞裂解缓冲液处理睡莲组织样品，其能够去除睡莲完整的细胞核中残留的细胞质碎片，保持细胞核在悬浮液中的稳定并阻止凝集，保护DNA不被降解，并提供合适的环境用来进行专一的核DNA化学染色，有效地降低胞质成分对染色的负面影响。 | ||||||
| 14 | 一种PCV2病毒样颗粒及其制备方法和裂解及VLP组装缓冲液 | CN201410145870.8 | 2014-04-11 | CN104073473B | 2016-03-23 | 杨毅; 雷昕诺; 王乃东; 邓治邦; 湛阳; 王爱兵; 薛立群; 张颜 |
| 本发明公开了一种PCV2病毒样颗粒及其制备方法和裂解及VLP组装缓冲液。基于自主优化设计，并人工合成适合在原核表达系统中高效表达的PCV2核衣壳蛋白基因，通过大肠杆菌原核表达系统表达PCV2核衣壳蛋白的全长基因序列，并利用其可溶性核衣壳蛋白在特定条件下高效自体组装成了病毒样颗粒。本发明创新点主要在于采用不同于常规的真核表达系统获取VLPs方法，而是利用原核表达系统获取PCV2VLPs，本方法成本低廉、简单高效，适合大规模产业化应用；其中还应用到独创的既可以促进菌体裂解又能适合VLPs自体组装的双功能于一体的缓冲液配方；另外发明所获得的PCV2病毒样颗粒与野生型病毒外形相似度高，并且免疫原性好，可以用于研发具有应用潜力的猪圆环病毒的亚单位疫苗及药物传递载体。 | ||||||
| 15 | 一种PCV2病毒样颗粒及其制备方法和裂解及VLP组装缓冲液 | CN201410145870.8 | 2014-04-11 | CN104073473A | 2014-10-01 | 杨毅; 雷昕诺; 王乃东; 邓治邦; 湛阳; 王爱兵; 薛立群; 张颜 |
| 本发明公开了一种PCV2病毒样颗粒及其制备方法和裂解及VLP组装缓冲液。基于自主优化设计，并人工合成适合在原核表达系统中高效表达的PCV2核衣壳蛋白基因，通过大肠杆菌原核表达系统表达PCV2核衣壳蛋白的全长基因序列，并利用其可溶性核衣壳蛋白在特定条件下高效自体组装成了病毒样颗粒。本发明创新点主要在于采用不同于常规的真核表达系统获取VLPs方法，而是利用原核表达系统获取PCV2VLPs，本方法成本低廉、简单高效，适合大规模产业化应用；其中还应用到独创的既可以促进菌体裂解又能适合VLPs自体组装的双功能于一体的缓冲液配方；另外发明所获得的PCV2病毒样颗粒与野生型病毒外形相似度高，并且免疫原性好，可以用于研发具有应用潜力的猪圆环病毒的亚单位疫苗及药物传递载体。 | ||||||
| 16 | 用于高通量定量mRNA的裂解缓冲液、裂解细胞的方法和确定白细胞特异性mRNA精确量的方法 | CN200910149382.3 | 2004-10-29 | CN101696409B | 2012-06-27 | 三桥将人 |
| 本发明公开了一种用于高通量定量mRNA的裂解缓冲液，其包括(a)充分浓度的去污剂，以裂解细胞质膜；(b)充分浓度的盐，其严格程度不超过4×SSC；(c)缓冲液，以将pH维持在7.0～8.0的范围内；(d)1.4～1.75M硫氰酸胍；以及(e)200μg/ml～20mg/ml蛋白酶K。本发明还公开了使用所述裂解缓冲液裂解细胞的方法，以及使用所述裂解缓冲液确定白细胞特异性mRNA精确量的方法。所述方法简单、可重复，并可高通量定量mRNA。 | ||||||
| 17 | 用于高通量定量mRNA的裂解缓冲液、裂解细胞的方法和确定白细胞特异性mRNA精确量的方法 | CN200910149382.3 | 2004-10-29 | CN101696409A | 2010-04-21 | 三桥将人 |
| 本发明公开了一种用于高通量定量mRNA的裂解缓冲液，其包括(a)充分浓度的去污剂，以裂解细胞质膜；(b)充分浓度的盐，其严格程度不超过4×SSC；(c)缓冲液，以将pH维持在7.0～8.0的范围内；(d)1.4～1.75M硫氰酸胍；以及(e)200μg/ml～20mg/ml蛋白酶K。本发明还公开了使用所述裂解缓冲液裂解细胞的方法，以及使用所述裂解缓冲液确定白细胞特异性mRNA精确量的方法。所述方法简单、可重复，并可高通量定量mRNA。 | ||||||
| 18 | 一种用于提取原核生物总RNA的裂解缓冲液及其应用 | CN202310352718.6 | 2023-04-04 | CN116376898A | 2023-07-04 | 李桃; 董亚晨 |
| 本发明提供了一种用于提取原核生物总RNA的裂解缓冲液及其应用，所述裂解缓冲液中包括以下组分：Tris‑HCl、EDTA、SDS、氯化钠、胍盐和TritonX‑100。所述裂解缓冲液中包含胍盐等离液剂与SDS等表面活性剂，能够促进核蛋白体的解体，使细菌核酸内切酶灭活，使释放的核酸不会被降解，达到一步裂解释放核酸的目的。所述裂解缓冲液成分简单，裂解效果好，有利于原核生物菌体中RNA的释放。本发明还提供了一种基于磁珠法提取原核生物总RNA的方法，可实现人工操作和半自动化化操作，便于集成多种自动化核酸提取仪。最大程度简化了实验操作步骤，满足核酸提取速度、通量和核酸质量要求。 | ||||||
| 19 | 一种适用于薰衣草的流式细胞术样品的制备方法及细胞裂解缓冲液 | CN201710865388.5 | 2017-09-22 | CN107389414A | 2017-11-24 | 蒋玮; 唐雪明; 吕贝贝; 吴潇 |
| 本发明公开了一种适用于薰衣草的流式细胞术样品的制备方法及细胞裂解缓冲液，涉及流式细胞术检测领域。本发明公开的适用于薰衣草的流式细胞术样品的制备方法，包括裂解步骤：将薰衣草组织样品进行裂解处理、过滤处理、离心处理，得到待染色的细胞核；染色步骤：对所述待染色的细胞核进行染色处理，得到染色的细胞核。该制备方法采用改进的细胞裂解缓冲液处理薰衣草组织样品，其能够去除薰衣草完整的细胞核中残留的细胞质碎片，保持细胞核在悬浮液中的稳定并阻止凝集，保护DNA不被降解，并提供合适的环境用来进行专一的核DNA化学染色，有效地降低胞质成分对染色的负面影响。 | ||||||
| 20 | 一种适用于虾脊兰属植物的流式细胞术样品的制备方法及细胞裂解缓冲液 | CN201910487577.2 | 2019-06-05 | CN110146431A | 2019-08-20 | 翟俊文; 黄元贞; 李珺; 曹孟霞; 李泽鑫; 吴小倩; 吴沙沙 |
| 本发明公开了一种适用于虾脊兰属植物的流式细胞术样品的制备方法及细胞裂解缓冲液，涉及流式细胞术检测领域。本发明公开的适用于虾脊兰属植物的流式细胞术样品的制备方法，包括裂解步骤将组织样品进行裂解处理、过滤处理、离心处理，得到待染色的细胞核染色步骤对所述待染色的细胞核进行染色处理，得到染色的细胞核。该制备方法采用改进的细胞裂解缓冲液处理组织样品，其能够去除虾脊兰属植物中完整的细胞核中残留的细胞质碎片，保持细胞核在悬浮液中的稳定并阻止凝集，并提供合适的环境用来进行专一的核化学染色，有效地降低胞质成分对染色的负面影响。 | ||||||
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