一种泡菜的微生物安全性评价方法
阅读：1发布：2021-07-22
专利汇可以提供一种泡菜的微生物安全性评价方法专利检索，专利查询，专利分析的服务。并且本 发明 公开了一种泡菜的 微 生物 安全性评价方法，属于微生物安全性评价领域。所述泡菜的微生物安全性评价方法包括取样、接种致病菌、检测、绘制致病菌的消长规律曲线和安全性评价。本发明根据对照样品泡菜卤 水 致病菌的消长规律曲线，可以得到5‑log RT时间T0，根据待检测泡菜致病菌的的消长规律曲线，可以得到5‑log RT时间T1，由T0和T1的大小评价该待检测泡菜微生物的安全性。若T1＞T0则待测样品安全性低，反之则待测样品安全性高，本发明的方法操作简单，易于控制，准确，便于推广。，下面是一种泡菜的微生物安全性评价方法专利的具体信息内容。
1.一种泡菜的微生物安全性评价方法，其特征在于：它包括以下步骤：
S1.取样：在不同位置处取待检测泡菜的卤水，装入无菌取样瓶中混和均匀；
S2.接种：向无菌取样瓶中接种量为样品重量2%的致病菌，所述致病菌的浓度为1×106～1×108CFU/ml，在22～28℃的温度下进行培养，所述致病菌为大肠埃希氏菌、金黄色葡萄球菌、单增李斯特氏菌或沙门氏菌中的任意一种；
S3.测定：在不同位置处取无菌取样瓶的卤水，测定泡菜卤水分别培养0h、8h、16h、24h、
32h、40h六个时间点的致病菌的数量，所述致病菌为大肠埃希氏菌、金黄色葡萄球菌、单增李斯特氏菌或沙门氏菌中的任意一种；
S4. 绘制曲线：根据步骤S3测得的致病菌的数量以及Logistic模型制作待测液中致病菌的消长规律曲线，由致病菌的消长规律曲线得到5-log RT时间T1，
所述致病菌的数量与Logistic模型为：
N(T)=5-log RT
RT=N0/NT
式中：N0为待检测泡菜卤水中致病菌的初始数量；NT为待检测泡菜在各个培养时间点的致病菌数量；5-log RT为致病菌数下降5个数量级的培养时间；
S5.绘制对照样品的消长规律曲线：它包括以下子步骤：
S51.对照样品泡菜卤水：取与待测样品相同盐度且发酵完成无生花优质泡菜卤水，接种量为样品重量2%的致病菌，所述致病菌的浓度为1×106～1×108CFU/ml，在22～28℃的温度下进行培养；所述致病菌为大肠埃希氏菌、金黄色葡萄球菌、单增李斯特氏菌或沙门氏菌中的任意一种；
S52.测定：在不同位置处取对照样品泡菜的卤水，测定对照样品泡菜分别培养0h、8h、
16h、24h、32h、40h六个时间点的致病菌的数量，所述致病菌为大肠埃希氏菌、金黄色葡萄球菌、单增李斯特氏菌或沙门氏菌中的任意一种；
S53.绘制曲线：根据步骤S52测得的致病菌的数量以及Logistic模型制作致病菌的消长规律曲线，由致病菌的消长规律曲线得到5-log RT时间T0，
所述致病菌的数量与Logistic模型为：
N(T)=5-log RT
RT=N0/NT
式中：N0为对照样品泡菜卤水中致病菌的初始数量；NT为对照样品泡菜在各个培养时间点的致病菌数量；5-log RT为致病菌数下降5个数量级的培养时间；
S6.安全性评价：
（1）待检测的泡菜卤水5-log RT时间T1大于对照样品泡菜卤水的T0，则待检测泡菜的微生物安全性低；
（2）待检测的泡菜卤水5-log RT时间T1小于对照样品泡菜卤水的T0，则待检测泡菜的微生物安全性高。
2.根据权利要求1所述的一种泡菜的微生物安全性评价方法，其特征在于：所述待检测泡菜卤水的盐度为1%～3%。
一种泡菜的微生物安全性评价方法
技术领域
[0001] 本发明涉及微生物安全性评价领域，具体涉及一种泡菜的微生物安全性评价方法。
背景技术
[0003] 泡菜古称葅，是指为了利于长时间存放而经过发酵的蔬菜。泡菜以微生物乳酸菌主导厌氧发酵而生产加工的传统生物食物，富含以乳酸菌为主的优势益生菌群，具有“清香、嫩脆、味美”的特点，制作生产不限时令，取食方便，制作简单，利于贮存，既可满足不同口味，又可增进食欲，帮助消化，促进健康，深受人们喜爱。一般来说，只要是纤维丰富的蔬菜或水果，都可以被制成泡菜，像是卷心菜、大白菜、红萝卜、白萝卜、大蒜、青葱、小黄瓜、洋葱、高丽菜等。科学研究证明泡菜在发酵过程中会产生大量有机酸，细菌素，益生菌等，可以调节动物和人体肠道微生态平衡，并有助于消化；防止便秘；防止细胞老化；防止动脉硬化；降低胆固醇；抗肿瘤；调节人体生理机能以及减肥等保健和医疗作用。
[0004] 但是，泡菜在发酵过程中也存在着一些食用安全性问题。比如泡菜在发酵过程中大肠埃希氏菌、金黄色葡萄球菌、单增李斯特氏菌和沙门氏菌等有害微生物会大量繁殖，既可以影响产品的风味，还可以积累亚硝基化合物和产生毒素(如肠毒素、真菌毒素等)，严重影响产品的安全性。因此，对泡菜进行微生物的安全性评价显得非常重要。
[0005] 在微生物领域对大肠埃希氏菌、金黄色葡萄球菌、单增李斯特氏菌和沙门氏菌有较多的研究，如公开号为CN101412978A的中国专利公开了用于沙门氏菌、单增李斯特氏菌和金黄色葡萄球菌复合增菌的培养基及制备方法，该培养基在使得三种目标致病菌增菌的同时，抑制其他的致病微生物的生长，可直接做目标菌的分离培养及生物鉴定实验，也可以直接用于多重PCR登基于一个检测平台的多个致病菌的检测技术中，作出诊断报告；公开号为CN101880711A的中国专利公开了金黄色葡萄球菌、沙门氏菌、志贺氏菌及单核细胞增生李斯特菌核算筛查方法，该方法具有简便、经济、快速、灵敏和特异的特点，具有广阔的应用前景；如公开号为CN104087652A的中国专利公开了一种检测水中大肠埃希氏菌的方法和检测培养液，该发明基于酶底物法的原理，以吸光度和荧光强度为标准，采用适合于大肠埃希氏菌的检测培养液，能够快速、准确的检测出水中大肠埃希氏菌的浓度，可实时监测水中微生物污染情况；但是，目前还未见大肠埃希氏菌、金黄色葡萄球菌、单增李斯特氏菌和沙门氏菌可用于微生物的安全性评价领域。
发明内容
[0006] 本发明的目的在于克服现有技术的缺点，提供一种泡菜的微生物安全性评价方法，该泡菜的微生物安全性评价方法操作简单、易于控制、准确，便于推广。
[0007] 本发明的目的通过以下技术方案来实现：一种泡菜的微生物安全性评价方法，它包括以下步骤：
[0008] S1.取样：在不同位置处取待检测泡菜的卤水，装入无菌取样瓶中混和均匀；
[0009] S2.接种：向无菌取样瓶中接种量为样品重量2％的致病菌，所述致病菌的浓度为1×106～1×108CFU/ml，在22～28℃的温度下进行培养，所述致病菌为大肠埃希氏菌、金黄色葡萄球菌、单增李斯特氏菌或沙门氏菌中的任意一种；
[0010] S3.测定：在不同位置处取无菌取样瓶的卤水，测定泡菜卤水分别培养0h、8h、16h、24h、32h、40h六个时间点的致病菌的数量，所述致病菌为大肠埃希氏菌、金黄色葡萄球菌、单增李斯特氏菌或沙门氏菌中的任意一种；
[0011] S4.绘制曲线：根据步骤S3测得的致病菌的数量以及Logistic模型制作待测液中致病菌的消长规律曲线，由致病菌的消长规律曲线得到5-log RT时间T1，
[0012] 所述致病菌的数量与Logistic模型为：
[0013] N(T)＝5-log RT
[0014] RT＝N0/NT
[0015] 式中：N0为待检测泡菜卤水中致病菌的初始数量；NT为待检测泡菜在各个培养时间点的致病菌数量；5-log RT为致病菌数下降5个数量级的培养时间；
[0016] S5.绘制对照样品的消长规律曲线：它包括以下子步骤：
[0017] S51.对照样品泡菜卤水：取与待测样品相同盐度且发酵完成无生花优质泡菜卤水，接种量为样品重量2％的致病菌，所述致病菌的浓度为1×106～1×108CFU/ml，在22～28℃的温度下进行培养；所述致病菌为大肠埃希氏菌、金黄色葡萄球菌、单增李斯特氏菌或沙门氏菌中的任意一种；
[0018] S52.测定：在不同位置处取对照样品泡菜的卤水，测定对照样品泡菜分别培养0h、8h、16h、24h、32h、40h六个时间点的致病菌的数量，所述致病菌为大肠埃希氏菌、金黄色葡萄球菌、单增李斯特氏菌或沙门氏菌中的任意一种；
[0019] S53.绘制曲线：根据步骤S52测得的致病菌的数量以及Logistic模型制作致病菌的消长规律曲线，由致病菌的消长规律曲线得到5-log RT时间T0，
[0020] 所述致病菌的数量与Logistic模型为：
[0021] N(T)＝5-log RT
[0022] RT＝N0/NT
[0023] 式中：N0为对照样品泡菜卤水中致病菌的初始数量；NT为对照样品泡菜在各个培养时间点的致病菌数量；5-log RT为致病菌数下降5个数量级的培养时间；
[0024] S6.安全性评价：
[0025] (1)待检测的泡菜卤水5-log RT时间T1大于对照样品泡菜卤水的T0，则待检测泡菜的微生物安全性低；
[0026] (2)待检测的泡菜卤水5-log RT时间T1小于对照样品泡菜卤水的T0，则待检测泡菜的微生物安全性高。
[0027] 进一步地，所述待检测泡菜卤水的盐度为1％～3％。
[0028] 本发明具有以下优点：
[0029] 1.本发明将大肠埃希氏菌、金黄色葡萄球菌、单增李斯特氏菌和沙门氏菌应用在泡菜微生物安全性评价领域，填补了市场空白；
[0030] 2.本发明根据对照样品泡菜卤水致病菌的消长规律曲线，可以得到5-log RT时间T0，根据待检测泡菜卤水致病菌的的消长规律曲线，可以得到5-log RT时间T1，由T0和T1的大小评价该待检测泡菜微生物的安全性。若T1＞T0则待测样品安全性低，反之则待测样品安全性高，本发明的方法操作简单，易于控制，准确，推广方便。附图说明
[0031] 图1为实施例1中样品1大肠埃希氏菌的消长规律图；
[0032] 图2为实施例2中样品2大肠埃希氏菌的消长规律图；
[0033] 图3为实施例1、2中对照样品大肠埃希氏菌的消长规律图；
[0034] 图4为实施例3中样品3沙门氏菌的消长规律图；
[0035] 图5为实施例4中样品4沙门氏菌的消长规律图；
[0036] 图6为实施例3、4中对照样品沙门氏菌的消长规律图。
具体实施方式
[0037] 下面结合附图及实施例对本发明做进一步的描述，本发明的保护范围不局限于以下所述：实施例1：一种泡菜的微生物安全性评价方法，它包括以下步骤：
[0038] S1.取样：在不同位置处取卷心菜泡菜的卤水样品(简称样品1)，装入无菌取样瓶中混和均匀，所述卷心菜泡菜的卤水盐度为1％；
[0039] S2.接种：向无菌取样瓶中接种量为样品重量2％的致病菌，所述致病菌的浓度为1×106CFU/ml，在22℃的温度下进行培养，所述致病菌为大肠埃希氏菌；
[0040] S3.测定：在不同位置处取无菌取样瓶的卤水，测定泡菜卤水分别培养0h、8h、16h、24h、32h、40h六个时间点的致病菌的数量，如表1所示，所述致病菌为大肠埃希氏菌；
[0041] S4.绘制曲线：根据步骤S3测得的致病菌的数量以及Logistic模型制作待测液中致病菌的消长规律曲线，如图1所示，由致病菌的消长规律曲线得到5-log RT时间T1，[0042] 所述致病菌的数量与Logistic模型为：
[0043] N(T)＝5-log RT
[0044] RT＝N0/NT
[0045] 式中：N0为待检测泡菜卤水中致病菌的初始数量；NT为待检测泡菜在各个培养时间点的致病菌数量；5-log RT为致病菌数下降5个数量级的培养时间；
[0046] S5.绘制对照样品的消长规律曲线：它包括以下子步骤：
[0047] S51.对照样品泡菜卤水：取与待测样品相同盐度且发酵完成无生花优质卷心菜卤6
水，接种量为样品重量2％的致病菌，所述致病菌的浓度为1×10CFU/ml，在22℃的温度下进行培养；所述致病菌为大肠埃希氏菌；
水，接种量为样品重量2％的致病菌，所述致病菌的浓度为1×10CFU/ml，在22℃的温度下进行培养；所述致病菌为大肠埃希氏菌；
[0048] S52.测定：在不同位置处取对照样品泡菜的卤水，测定对照样品泡菜分别培养0h、8h、16h、24h、32h、40h六个时间点的致病菌的数量，如表1所示，所述致病菌为大肠埃希氏菌；
[0049] S53.绘制曲线：根据步骤S52测得的致病菌的数量以及Logistic模型制作致病菌的消长规律曲线，如图3所示，由致病菌的消长规律曲线得到5-log RT时间T0，[0050] 所述致病菌的数量与Logistic模型为：
[0051] N(T)＝5-log RT
[0052] RT＝N0/NT
[0053] 式中：N0为对照样品泡菜卤水中致病菌的初始数量；NT为对照样品泡菜在各个培养时间点的致病菌数量；5-log RT为致病菌数下降5个数量级的培养时间；
[0054] 由待测样品和对照样品的大肠埃希氏菌的消长规律曲线可得：T1为25.2h，T0为22.5h；S6.安全性评价：
[0055] 卷心菜的泡菜卤水5-log RT时间25.2h＞对照样品泡菜卤水T022.5h，则盐度1％卷心菜样品1对大肠埃希氏菌安全性低。
[0056] 表1：实施例1中大肠埃希氏菌数量
[0057]
[0058] 实施例2：一种泡菜的微生物安全性评价方法，它包括以下步骤：
[0059] S1.取样：在不同位置处取卷心菜泡菜的卤水样品(简称样品2)，装入无菌取样瓶中混和均匀，所述卷心菜泡菜的卤水盐度为1％；
[0060] S2.接种：向无菌取样瓶中接种量为样品重量2％的致病菌，所述致病菌的浓度为1×108CFU/ml，在28℃的温度下进行培养，所述致病菌为大肠埃希氏菌；
[0061] S3.测定：在不同位置处取无菌取样瓶的卤水，测定泡菜卤水分别培养0h、8h、16h、24h、32h、40h六个时间点的致病菌的数量，如表2所示，所述致病菌为大肠埃希氏菌；
[0062] S4.绘制曲线：根据步骤S3测得的致病菌的数量以及Logistic模型制作待测液中致病菌的消长规律曲线，如图2所示，由致病菌的消长规律曲线得到5-log RT时间T1，[0063] 所述致病菌的数量与Logistic模型为：
[0064] N(T)＝5-log RT
[0065] RT＝N0/NT
[0066] 式中：N0为待检测泡菜卤水中致病菌的初始数量；NT为待检测泡菜在各个培养时间点的致病菌数量；5-log RT为致病菌数下降5个数量级的培养时间；
[0067] S5.绘制对照样品的消长规律曲线：它包括以下子步骤：
[0068] S51.对照样品泡菜卤水：取与待测样品相同盐度且发酵完成无生花优质卷心菜卤水，接种量为样品重量2％的致病菌，所述致病菌的浓度为1×108CFU/ml，在28℃的温度下进行培养；所述致病菌为大肠埃希氏菌；
[0069] S52.测定：在不同位置处取对照样品泡菜的卤水，测定对照样品泡菜分别培养0h、8h、16h、24h、32h、40h六个时间点的致病菌的数量，如表2所示，所述致病菌为大肠埃希氏菌；
[0070] S53.绘制曲线：根据步骤S52测得的致病菌的数量以及Logistic模型制作致病菌的消长规律曲线，如图3所示，由致病菌的消长规律曲线得到5-log RT时间T0，[0071] 所述致病菌的数量与Logistic模型为：
[0072] N(T)＝5-log RT
[0073] RT＝N0/NT
[0074] 式中：N0为对照样品泡菜卤水中致病菌的初始数量；NT为对照样品泡菜在各个培养时间点的致病菌数量；5-log RT为致病菌数下降5个数量级的培养时间；
[0075] 由待测样品和对照样品的大肠埃希氏菌的消长规律曲线可得：T1为19.0h，T0为22.5h；S6.安全性评价：
[0076] 卷心菜的泡菜卤水5-log RT时间19.0h＜对照样品泡菜卤水T022.5h，则盐度1％卷心菜样品对大肠埃希氏菌安全性高。
[0077] 表2：实施例2中大肠埃希氏菌数量
[0078]
[0079] 实施例3：一种泡菜的微生物安全性评价方法，它包括以下步骤：
[0080] S1.取样：在不同位置处取萝卜泡菜的卤水(简称样品3)，装入无菌取样瓶中混和均匀，所述萝卜泡菜的卤水盐度为3％；
[0081] S2.接种：向无菌取样瓶中接种量为样品重量2％的致病菌，所述致病菌的浓度为1×107CFU/ml，在25℃的温度下进行培养，所述致病菌为沙门氏菌；
[0082] S3.测定：在不同位置处取无菌取样瓶的卤水，测定泡菜卤水分别培养0h、8h、16h、24h、32h、40h六个时间点的致病菌的数量，如表3所示，所述致病菌为沙门氏菌；
[0083] S4.绘制曲线：根据步骤S3测得的致病菌的数量以及Logistic模型制作待测液中致病菌的消长规律曲线，如图4所示，由致病菌的消长规律曲线得到5-log RT时间T1，[0084] 所述致病菌的数量与Logistic模型为：
[0085] N(T)＝5-log RT
[0086] RT＝N0/NT
[0087] 式中：N0为待检测泡菜卤水中致病菌的初始数量；NT为待检测泡菜在各个培养时间点的致病菌数量；5-log RT为致病菌数下降5个数量级的培养时间；
[0088] S5.绘制对照样品的消长规律曲线：它包括以下子步骤：
[0089] S51.对照样品泡菜卤水：取与待测样品相同盐度且发酵完成无生花优质萝卜卤水，接种量为样品重量2％的致病菌，所述致病菌的浓度为1×107CFU/ml，在25℃的温度下进行培养；所述致病菌为沙门氏菌；
[0090] S52.测定：在不同位置处取对照样品泡菜的卤水，测定对照样品泡菜分别培养0h、8h、16h、24h、32h、40h六个时间点的致病菌的数量，所述致病菌为沙门氏菌；
[0091] S53.绘制曲线：根据步骤S52测得的致病菌的数量以及Logistic模型制作致病菌的消长规律曲线，如表3所示，如图6所示，由致病菌的消长规律曲线得到5-log RT时间T0，[0092] 所述致病菌的数量与Logistic模型为：
[0093] N(T)＝5-log RT
[0094] RT＝N0/NT
[0095] 式中：N0为对照样品泡菜卤水中致病菌的初始数量；NT为对照样品泡菜在各个培养时间点的致病菌数量；5-log RT为致病菌数下降5个数量级的培养时间；
[0096] 由待测样品和对照样品的沙门氏菌的消长规律曲线可得：T1为28.5h，T0为26.0h；
[0097] S6.安全性评价：
[0098] 萝卜泡菜卤水5-log RT时间28.5h＞对照样品泡菜卤水T026.0h，则盐度3％萝卜泡菜样品3对沙门氏菌安全性低。
[0099] 表3：实施例3中大肠埃希氏菌数量
[0100]
[0101] 实施例4：一种泡菜的微生物安全性评价方法，它包括以下步骤：
[0102] S1.取样：在不同位置处取萝卜泡菜的卤水(简称样品4)，装入无菌取样瓶中混和均匀，所述萝卜泡菜的卤水盐度为3％；
[0103] S2.接种：向无菌取样瓶中接种量为样品重量2％的致病菌，所述致病菌的浓度为17
×10CFU/ml，在25℃的温度下进行培养，所述致病菌为沙门氏菌；
×10CFU/ml，在25℃的温度下进行培养，所述致病菌为沙门氏菌；
[0104] S3.测定：在不同位置处取无菌取样瓶的卤水，测定泡菜卤水分别培养0h、8h、16h、24h、32h、40h六个时间点的致病菌的数量，如表4所示，所述致病菌为沙门氏菌；
[0105] S4.绘制曲线：根据步骤S3测得的致病菌的数量以及Logistic模型制作待测液中致病菌的消长规律曲线，如图5所示，由致病菌的消长规律曲线得到5-log RT时间T1，[0106] 所述致病菌的数量与Logistic模型为：
[0107] N(T)＝5-log RT
[0108] RT＝N0/NT
[0109] 式中：N0为待检测泡菜卤水中致病菌的初始数量；NT为待检测泡菜在各个培养时间点的致病菌数量；5-log RT为致病菌数下降5个数量级的培养时间；
[0110] S5.绘制对照样品的消长规律曲线：它包括以下子步骤：
[0111] S51.对照样品泡菜卤水：取与待测样品相同盐度且发酵完成无生花优质萝卜卤水，接种量为样品重量2％的致病菌，所述致病菌的浓度为1×107CFU/ml，在25℃的温度下进行培养；所述致病菌为沙门氏菌；
[0112] S52.测定：在不同位置处取对照样品泡菜的卤水，测定对照样品泡菜分别培养0h、8h、16h、24h、32h、40h六个时间点的致病菌的数量，如表4所示，所述致病菌为沙门氏菌；
[0113] S53.绘制曲线：根据步骤S52测得的致病菌的数量以及Logistic模型制作致病菌的消长规律曲线，如图6所示，由致病菌的消长规律曲线得到5-log RT时间T0，[0114] 所述致病菌的数量与Logistic模型为：
[0115] N(T)＝5-log RT
[0116] RT＝N0/NT
[0117] 式中：N0为对照样品泡菜卤水中致病菌的初始数量；NT为对照样品泡菜在各个培养时间点的致病菌数量；5-log RT为致病菌数下降5个数量级的培养时间；
[0118] 由待测样品和对照样品的沙门氏菌的消长规律曲线可得：T1为24.2h，T0为26.0h；
[0119] S6.安全性评价：
[0120] 萝卜泡菜卤水5-log RT时间24.2h＜对照样品泡菜卤水T026.0h，则盐度3％萝卜泡菜样品4对沙门氏菌安全性高。
[0121] 表4：实施例4中大肠埃希氏菌数量
[0122]
[0123] 实施例5：一种泡菜的微生物安全性评价方法，它包括以下步骤：
[0124] S1.取样：在不同位置处取豇豆泡菜的卤水，装入无菌取样瓶中混和均匀，所述豇豆泡菜的卤水盐度为2％；
[0125] S2.接种：向无菌取样瓶中接种量为样品重量2％的致病菌，所述致病菌的浓度为1×108CFU/ml，在27℃的温度下进行培养，所述致病菌为金黄色葡萄球菌；
[0126] S3.测定：在不同位置处取无菌取样瓶的卤水，测定泡菜卤水分别培养0h、8h、16h、24h、32h、40h六个时间点的致病菌的数量，所述致病菌为金黄色葡萄球菌；
[0127] S4.绘制曲线：根据步骤S3测得的致病菌的数量以及Logistic模型制作待测液中致病菌的消长规律曲线，由致病菌的消长规律曲线得到5-log RT时间T1，
[0128] 所述致病菌的数量与Logistic模型为：
[0129] N(T)＝5-log RT
[0130] RT＝N0/NT
[0131] 式中：N0为待检测泡菜卤水中致病菌的初始数量；NT为待检测泡菜在各个培养时间点的致病菌数量；5-log RT为致病菌数下降5个数量级的培养时间；
[0132] S5.绘制对照样品的消长规律曲线：它包括以下子步骤：
[0133] S51.对照样品泡菜卤水：取与待测样品相同盐度且发酵完成无生花优质豇豆卤水，接种量为样品重量2％的致病菌，所述致病菌的浓度为1×108CFU/ml，在27℃的温度下进行培养，所述致病菌为金黄色葡萄球菌；
[0134] S52.测定：在不同位置处取对照样品泡菜的卤水，测定对照样品泡菜分别培养0h、8h、16h、24h、32h、40h六个时间点的致病菌的数量，所述致病菌的浓度为1×108CFU/ml，在
27℃的温度下进行培养，所述致病菌为金黄色葡萄球菌；
27℃的温度下进行培养，所述致病菌为金黄色葡萄球菌；
[0135] S53.绘制曲线：根据步骤S52测得的致病菌的数量以及Logistic模型制作致病菌的消长规律曲线，由致病菌的消长规律曲线得到5-log RT时间T0，
[0136] 所述致病菌的数量与Logistic模型为：
[0137] N(T)＝5-log RT
[0138] RT＝N0/NT
[0139] 式中：N0为对照样品泡菜卤水中致病菌的初始数量；NT为对照样品泡菜在各个培养时间点的致病菌数量；5-log RT为致病菌数下降5个数量级的培养时间；
[0140] 由待测样品和对照样品的金黄色葡萄球菌的消长规律曲线可得：T1为17.0h，T0为19.5h；S6.安全性评价：
[0141] 豇豆泡菜卤水5-log RT时间17.0h＜对照样品泡菜卤水T019.5h，则盐度2％豇豆泡菜样品对金黄色葡萄球菌安全性高。
[0142] 实施例6：一种泡菜的微生物安全性评价方法，它包括以下步骤：
[0143] S1.取样：在不同位置处取大白菜泡菜的卤水，装入无菌取样瓶中混和均匀，所述大白菜泡菜的卤水盐度为2％；
[0144] S2.接种：向无菌取样瓶中接种量为样品重量2％的致病菌，所述致病菌的浓度为1×108CFU/ml，在27℃的温度下进行培养，所述致病菌为单增李斯特氏菌；
[0145] S3.测定：在不同位置处取无菌取样瓶的卤水，测定泡菜卤水分别培养0h、8h、16h、24h、32h、40h六个时间点的致病菌的数量，所述致病菌为单增李斯特氏菌；
[0146] S4.绘制曲线：根据步骤S3测得的致病菌的数量以及Logistic模型制作待测液中致病菌的消长规律曲线，由致病菌的消长规律曲线得到5-log RT时间T1，
[0147] 所述致病菌的数量与Logistic模型为：
[0148] N(T)＝5-log RT
[0149] RT＝N0/NT
[0150] 式中：N0为待检测泡菜卤水中致病菌的初始数量；NT为待检测泡菜在各个培养时间点的致病菌数量；5-log RT为致病菌数下降5个数量级的培养时间；
[0151] S5.绘制对照样品的消长规律曲线：它包括以下子步骤：
[0152] S51.对照样品泡菜卤水：取与待测样品相同盐度且发酵完成无生花优质大白菜卤水，接种量为样品重量2％的致病菌，所述致病菌的浓度为1×108CFU/ml，在27℃的温度下进行培养，所述致病菌为单增李斯特氏菌；
[0153] S52.测定：在不同位置处取对照样品泡菜的卤水，测定对照样品泡菜分别培养0h、8h、16h、24h、32h、40h六个时间点的致病菌的数量，所述致病菌为单增李斯特氏菌；
[0154] S53.绘制曲线：根据步骤S52测得的致病菌的数量以及Logistic模型制作致病菌的消长规律曲线，由致病菌的消长规律曲线得到5-log RT时间T0，
[0155] 所述致病菌的数量与Logistic模型为：
[0156] N(T)＝5-log RT
[0157] RT＝N0/NT
[0158] 式中：N0为对照样品泡菜卤水中致病菌的初始数量；NT为对照样品泡菜在各个培养时间点的致病菌数量；5-log RT为致病菌数下降5个数量级的培养时间；
[0159] 由待测样品和对照样品的单增李斯特氏菌的消长规律曲线可得：T1为27.5h，T0为23.3h；S6.安全性评价：
[0160] 大白菜泡菜卤水5-log RT时间27.5h＞对照样品泡菜卤水T023.3h，则盐度2％大白菜泡菜样品对单增李斯特氏菌安全性低。
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