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一种磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法

阅读:216发布:2023-01-18

专利汇可以提供一种磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法专利检索,专利查询,专利分析的服务。并且本 发明 属于 生物 医疗技术领域,公开了一种 牛 磺酸对IUGR胎鼠神经干 细胞增殖 的应用方法。选择成年SD大鼠,采用全程低蛋白和限制饮食方法建立IUGR他胎鼠模型;IUGR胎鼠IGF2/H19印迹控制区组蛋白修饰测试;利用原位杂交检测脑缺血 再灌注 后脑组织神经干细胞因子mRNA的表达。本发明提供的牛磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法表明IUGR胎鼠SCF mRNA在皮质、纹状体和室旁区有微弱的表达;印记控制区组蛋白修饰 水 平发生改变是宫内发育迟缓仔鼠出现成年期代谢综合征的机制之一。,下面是一种磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法专利的具体信息内容。

1.一种磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法,其特征在于,所述的牛磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法,包括以下步骤:
步骤一,采用全程低蛋白和限制饮食结合方法建立IUGR模型;
步骤二,IUGR胎鼠IGF2/H19印迹控制区组蛋白修饰测试;
步骤三,利用原位杂交检测IUGR胎鼠脑组织神经干细胞因子mRNA的表达。
2.如权利要求1所述的牛磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法,其特征在于,所述步骤一中低蛋白和限制饮食结合方法建立IUGR模型,具体包括以下步骤:
(1)准备大鼠低蛋白饲料、牛磺酸饲料、标准饲料;
(2)暗室条件下将雌雄大鼠以5:2合笼,第二天早晨取阴道分泌物镜检,以发现精子确定为妊娠第1天即;
(3)将孕鼠随机分为对照组、IUGR组及IUGR+孕鼠补充牛磺酸组(牛磺酸组),每组10只;
(4)IUGR组孕鼠自受孕之日到分娩当天正常组给予大鼠标准饲料,IUGR组和牛磺酸组给予低蛋白饲料且仅给予对照组饮食的25~35%的量喂养,牛磺酸组自妊娠第10天起饲料中添加牛磺酸饲料直至自然分娩。
3.如权利要求1所述的牛磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法,其特征在于,所述步骤一中整个饲养过程中采用灌胃饲养,自由饮,室内温度25℃±2℃,湿度65%~
85%,12h明暗交替光照。
4.如权利要求1所述的牛磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法,其特征在于,所述步骤一中低蛋白饲料,按照能量比例由蛋白质6%、水化合物75%、脂肪19%组成。
5.如权利要求1所述的牛磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法,其特征在于,所述步骤二中IUGR大鼠IGF2/H19印迹控制区组蛋白修饰测试方法如下:
(1)采用妊娠期持续低蛋白和限制饮食的方法模拟宫内营养不良环境,至出生后减少限制饮食组每窝仔鼠数量为8只,正常对照组每组为8只,以构建宫内发育迟缓及生后追赶生长的大鼠模型;
(2)提取RNA,采用Real time PCR检测目的基因IGF2基因mRNA的相对表达水平;
(3)利用组织进行染色质免疫共沉淀处理后,采用Real time PCR进行基因表达的定量分析,检测0d、8w对照组及IUGR组IGF2/H19印迹控制区CTCF1、CTCF2、CTCF3和CTCF4组蛋白修饰的变化。
6.如权利要求1所述的牛磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法,其特征在于,所述步骤二中提取RNA为:
(1)获取取0周龄新生鼠和8周龄仔鼠肝脏组织,加入混合液进行肝脏组织研磨制得组织匀浆,均浆组织完全开裂后,冰水浴条件下静止6~8min;
(2)10000r离心10~12min,取上清液,加入250ul氯仿,震荡20s,室温静止6~8min;
(3)10000r离心10~12min,取上层水相,加入异丙醇,震荡20s,室温静止16~18min,
10000r离心10~12min,获得RNA。

说明书全文

一种磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法

技术领域

[0001] 本发明属于生物医疗技术领域,尤其涉及一种牛磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法。

背景技术

[0002] 牛磺酸(Taurine)又称β-基乙磺酸,最早由牛黄中分离出来,故得名。纯品为无色或白色斜状晶体,无臭,牛磺酸化学性质稳定,不溶于乙醚等有机溶剂,是一种含硫的非蛋白氨基酸,在体内以游离状态存在,不参与体内蛋白的生物合成。牛磺酸虽然不参与蛋白质合成,但它却与胱氨酸、半胱氨酸的代谢密切相关。人体合成牛磺酸的半胱氨酸亚硫酸羧酶(CSAD)活性较低,主要依靠摄取食物中的牛磺酸来满足机体需要。胎儿生长受限(FGR)又称宫内生长受限(IUGR),是指胎儿大小异常,在宫内未达到其遗传的生长潜能。胎儿出生体重低于同孕龄平均体重的两个标准差,或低于同龄正常体重的第10百分位数。鉴于并非所有低于第10百分位数的胎儿均为病理性生长受限,也有人提出以低于第3百分位数为准。我国发生率为6.39%,是围生儿死亡的第二大原因。死亡率为正常发育儿的6~10倍。在死亡中约占围生儿的30%,产时宫内缺围生儿中50%为FGR。然而,牛磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞作用尚不明。
[0003] 综上所述,现有技术存在的问题是:牛磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞作用尚不明。

发明内容

[0004] 针对现有技术存在的问题,本发明提供了一种牛磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法。
[0005] 本发明是这样实现的,一种牛磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法,所述的牛磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法,包括以下步骤:
[0006] 步骤一,采用全程低蛋白和限制饮食结合方法建立IUGR模型;
[0007] 步骤二,IUGR胎鼠IGF2/H19印迹控制区组蛋白修饰测试;
[0008] 步骤三,利用原位杂交检测IUGR胎鼠脑组织神经干细胞因子mRNA的表达。
[0009] 进一步,所述步骤一中低蛋白和限制饮食结合方法建立IUGR模型,具体包括以下步骤:
[0010] (1)准备大鼠低蛋白饲料、牛磺酸饲料、标准饲料;
[0011] (2)暗室条件下将雌雄大鼠以5:2合笼,第二天早晨取阴道分泌物镜检,以发现精子确定为妊娠第1天即。
[0012] (3)将孕鼠随机分为对照组、IUGR组及IUGR+孕鼠补充牛磺酸组(牛磺酸组),每组10只;
[0013] (4)IUGR组孕鼠自受孕之日到分娩当天正常组给予大鼠标准饲料,IUGR组和牛磺酸组给予低蛋白饲料且仅给予对照组饮食的25~35%的量喂养,牛磺酸组自妊娠第10天起饲料中添加牛磺酸饲料直至自然分娩。
[0014] 进一步,所述步骤一中整个饲养过程中采用灌胃饲养,自由饮,室内温度25℃±2℃,湿度65%~85%,12h明暗交替光照。
[0015] 进一步,所述步骤二中低蛋白饲料,按照能量比例由蛋白质6%、水化合物75%、脂肪19%组成。
[0016] 进一步,所述步骤二中IUGR大鼠IGF2/H19印迹控制区组蛋白修饰测试方法如下:
[0017] (1)采用妊娠期持续低蛋白和限制饮食的方法模拟宫内营养不良环境,至出生后减少限制饮食组每窝仔鼠数量为8只,正常对照组每组为8只,以构建宫内发育迟缓及生后追赶生长的大鼠模型;
[0018] (2)提取RNA,采用Real time PCR检测目的基因IGF2基因mRNA的相对表达水平;
[0019] (3)利用组织进行染色质免疫共沉淀处理后,采用Real time PCR进行基因表达的定量分析,检测0d、8w对照组及IUGR组IGF2/H19印迹控制区CTCF1、CTCF2、CTCF3和CTCF4组蛋白修饰的变化。
[0020] 进一步,所述步骤二中提取RNA为:
[0021] (1)获取取0周龄新生鼠和8周龄仔鼠肝脏组织,加入混合液进行肝脏组织研磨制得组织匀浆,均浆组织完全开裂后,冰水浴条件下静止6~8min;
[0022] (2)10000r离心10~12min,取上清液,加入250ul氯仿,震荡20s,室温静止6~8min;
[0023] (3)10000r离心10~12min,取上层水相,加入异丙醇,震荡20s,室温静止16~18min,10000r离心10~12min,获得RNA。
[0024] 本发明的优点及积极效果为:
[0025] 本发明提供的牛磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法表明假手术组SCF mRNA在皮质、纹状体和室旁区有微弱的表达;
[0026] 对照组缺血侧SCF mRNA的表达,皮质除2h以外、纹状体除2h以外、室旁区除2h、14d以外各时间点均明显高于假手术组(t=2.16~25.19,P<0.05),治疗组SCF mRNA表达较对照组在皮质、纹状体及室旁区均显著升高(t=5.19~26.17,P<0.05),牛磺酸可以促进IUGR胎鼠神经干细胞SCF mRNA的表达;
[0027] 通过IUGR大鼠IGF2/H19印迹控制区组蛋白修饰测试方法表明出现生长追赶的宫内发育迟缓仔鼠肝脏组织IGF2/H19基因印迹控制区4个CTCF结合因子区域的组蛋白修饰水平发生了改变,宫内不良的营养环境所致的宫内发育迟缓及生后的的良好营养环境使IUGR个体出现生长追赶共同导致了这种改变,而印记控制区组蛋白修饰水平发生改变是宫内发育迟缓仔鼠出现成年期代谢综合征的机制之一。附图说明
[0028] 图1是本发明实施提供的牛磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法流程图

具体实施方式

[0029] 为了使本发明的目的、技术方案及优点更加清楚明白,以下结合实施例,对本发明进行进一步详细说明。应当理解,此处所描述的具体实施例仅仅用以解释本发明,并不用于限定本发明。
[0030] 下面结合附图对本发明的应用原理作进一步描述。
[0031] 如图1所示,本发明提供一种牛磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法,包括以下步骤:
[0032] S101,采用全程低蛋白和限制饮食结合方法建立IUGR模型;
[0033] S102,IUGR胎鼠IGF2/H19印迹控制区组蛋白修饰测试;
[0034] S103,利用原位杂交检测IUGR胎鼠脑组织神经干细胞因子mRNA的表达。
[0035] 步骤S101,本发明实施例提供的低蛋白和限制饮食结合方法建立IUGR模型,具体包括以下步骤:
[0036] (1)准备大鼠低蛋白饲料、牛磺酸饲料、标准饲料;
[0037] (2)暗室条件下将雌雄大鼠以5:2合笼,第二天早晨取阴道分泌物镜检,以发现精子确定为妊娠第1天即。
[0038] (3)将孕鼠随机分为对照组、IUGR组及IUGR+孕鼠补充牛磺酸组(牛磺酸组),每组10只;
[0039] (4)IUGR组孕鼠自受孕之日到分娩当天正常组给予大鼠标准饲料,IUGR组和牛磺酸组给予低蛋白饲料且仅给予对照组饮食的25~35%的量喂养,牛磺酸组自妊娠第10天起饲料中添加牛磺酸饲料直至自然分娩。
[0040] 步骤S101,本发明实施例提供的整个饲养过程中采用灌胃饲养,自由饮水,室内温度25℃±2℃,湿度65%~85%,12h明暗交替光照。
[0041] 步骤S101,本发明实施例提供的低蛋白饲料,按照能量比例由蛋白质6%、碳水化合物75%、脂肪19%组成。
[0042] 步骤S102,本发明实施例提供的IUGR大鼠IGF2/H19印迹控制区组蛋白修饰测试方法如下:
[0043] (1)采用妊娠期持续限制饮食的方法模拟宫内营养不良环境,至出生后减少限制饮食组每窝仔鼠数量为8只,正常对照组每组为8只,以构建宫内发育迟缓及生后追赶生长的大鼠模型;
[0044] (2)取新生鼠(0周龄)和8周龄仔鼠肝脏组织,提取RNA,采用Real time PCR检测目的基因IGF2基因mRNA的相对表达水平;
[0045] (3)利用组织进行染色质免疫共沉淀(ChIP)处理后,采用Real time PCR进行基因表达的定量分析,检测0d、8w对照组及IUGR组IGF2/H19印迹控制区CTCF1、CTCF2、CTCF3和CTCF4组蛋白修饰的变化。
[0046] 步骤S102,本发明实施例提供的提取RNA为:
[0047] (1)获取取0周龄新生鼠和8周龄仔鼠肝脏组织,加入冰水混合液进行肝脏组织研磨制得组织匀浆,均浆组织完全开裂后,冰水浴条件下静止6~8min;
[0048] (2)10000r离心10~12min,取上清液,加入250ul氯仿,震荡20s,室温静止6~8min;
[0049] (3)10000r离心10~12min,取上层水相,加入异丙醇,震荡20s,室温静止16~18min,10000r离心10~12min,获得RNA。
[0050] 下面结合具体实施例对本发明的应用原理进行进一步说明;
[0051] 本发明提供的牛磺酸对IUGR胎鼠神经干细胞增殖的应用方法表明假手术组SCF mRNA在皮质、纹状体和室旁区有微弱的表达,
[0052] 对照组缺血侧SCF mRNA的表达,皮质除2h以外、纹状体除2h以外、室旁区除2h、14d以外各时间点均明显高于假手术组(t=2.16~25.19,P<0.05),治疗组SCF mRNA表达较对照组在皮质、纹状体及室旁区均显著升高(t=5.19~26.17,P<0.05),牛磺酸可以促进IUGR胎鼠神经干细胞SCF mRNA的表达;
[0053] 通过IUGR大鼠IGF2/H19印迹控制区组蛋白修饰测试方法表明出现生长追赶的宫内发育迟缓仔鼠肝脏组织IGF2/H19基因印迹控制区4个CTCF结合因子区域的组蛋白修饰水平发生了改变,宫内不良的营养环境所致的宫内发育迟缓及生后的的良好营养环境使IUGR个体出现生长追赶共同导致了这种改变,而印记控制区组蛋白修饰水平发生改变是宫内发育迟缓仔鼠出现成年期代谢综合征的机制之一。
[0054] 以上所述仅为本发明的较佳实施例而已,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内所作的任何修改、等同替换和改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
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