基于磁性分离和量子点标记的卡他莫拉菌快速检测方法和试剂盒
阅读：131发布：2023-03-13
专利汇可以提供基于磁性分离和量子点标记的卡他莫拉菌快速检测方法和试剂盒专利检索，专利查询，专利分析的服务。并且本 发明 提供了一种基于 磁性 分离和 量子点 标记的检测卡他莫拉菌 抗原 的方法，该方法包括1）制备抗卡他莫拉菌免疫纳米 磁珠 （；2）制备量子点标记的抗卡他莫拉菌 纳米探针 ；（3）将待检样品用PBST缓冲液溶解后，向溶解液中加入抗卡他莫拉菌免疫纳米磁珠，充分混合及反应后进行磁分离，以PBST缓冲液洗涤，向得到的沉淀物中加入量子点标记的抗卡他莫拉菌纳米探针，反应后磁分离，以PBST缓冲液洗涤后，使用 荧光 酶标仪检测荧光值。本发明建立了一套准确、快速、高灵敏度的检测卡他莫拉菌的方法，其在卡他莫拉菌的临床诊断、病原学 鉴别 、流行病学调查等方面具有很高的实用价值。，下面是基于磁性分离和量子点标记的卡他莫拉菌快速检测方法和试剂盒专利的具体信息内容。
1.一种用于制备基于磁性分离和量子点标记的检测卡他莫拉菌抗原的试剂盒的方法，其特征在于：所述制备方法包括以下步骤：
1)抗卡他莫拉菌免疫纳米磁珠的制备：
1.1)兔及鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG的制备
1.1.1)重组UspA1-His融合蛋白的制备、纯化：
1.1.1.1)对卡他莫拉菌表面蛋白UspA1进行生物信息学分析，获取其胞外结构域中抗原表位最为丰富的肽段；
1.1.1.2)找到步骤1.1.1.1)中所得到肽段对应的基因编码序列，并在序列的5’端及3’端引入酶切位点并化学合成全基因序列，同时标记记为UspA1；
1.1.1.3)将步骤1.1.1.2)中所得到的UspA1按分子生物学方法克隆入表达载体pET-
28a(+)后转入大肠杆菌中表达重组UspA1-His融合蛋白；所述重组UspA1-His融合蛋白以包涵体表达方式存在于菌体中；
1.1.1.4)用镍柱纯化步骤1.1.1.3)所得到的重组蛋白，SDS-PAGE检测其纯度后，以Bradford法测定蛋白质浓度，调整蛋白浓度为0.2mg/mL后备用；
1.1.2)兔及鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG的制备：
1.1.2.1)以步骤1.1.1.4)中所得到的重组UspA1-His融合蛋白为完全抗原，分别免疫新西兰大白兔及豚鼠；分别制备兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白抗血清及鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白抗血清；所述兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白抗血清及鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白抗血清的间接ELISA效价均大于1×105；
1.1.2.2)采用Protein G亲和层析柱分别纯化兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白抗血清及鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白抗血清中的多克隆抗体IgG；
1.1.2.3)用凯基Bradford蛋白含量检测试剂盒测定步骤1.1.2.2)所得到的二种多克隆抗体IgG的浓度，将其蛋白浓度均调整为1mg/mL后备用；
1.2)免疫纳米磁珠的包被：
1.2.1)取5mg磁珠，用1ml MES缓冲液洗涤三次，置于纳米磁分离器中进行磁分离后移除上清；所述磁珠是以超顺磁性Fe3O4为内核、粒径为180nm的羧基磁珠；所述MES缓冲液是质量浓度是2g/L的2-(N-吗啉代)乙磺酸；所述MES缓冲液的pH＝6.0；所述纳米磁分离器的磁性强度是0.4T；
1.2.2)依次加入用步骤1.2.1)中的MES缓冲液配制的浓度是8-12mg/ml的EDC溶液以及用步骤1.2.1)中的MES缓冲液配制的浓度是6-10mg/ml的sulfo-NHS溶液各0.5ml，以10-
40rpm于旋转混合仪中活化1hr，置于纳米磁分离器中进行磁分离后移除上清，用1ml步骤
1.2.1)中的MES缓冲液重悬，得到活化后的磁珠；
1.2.3)取5个离心管，在每个离心管中加入200μL步骤1.2.2)所得到的活化后的磁珠，置于纳米磁分离器中进行磁分离后移除上清，向各离心管中加入用PBS缓冲液稀释的浓度为50-200μg/ml的由步骤1.1)所制备的兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG溶液各
1ml，室温下以15rpm于旋转混合仪中反应2-6h，置于纳米磁分离器中进行磁分离后移除上清后，各加入1ml含1mg/ml乙醇胺的上述PBS缓冲液，室温下以15rpm于旋转混合仪中反应2h以封闭磁珠上未与抗体反应的羧基；所述PBS缓冲液中各成分含量如下：8g/L NaCl，0.2g/L KCl，0.24g/L KH2PO4，1.44g/L Na2HPO4，所述PBS缓冲液的pH＝7.4；
1.2.4)封闭反应完成后，将该5个离心管置于纳米磁分离器中进行磁分离后移除上清，各用1ml洗涤缓冲液洗涤三遍；所述洗涤缓冲液中各成分含量如下：8g/L NaCl，0.2g/L KCl，0.24g/L KH2PO4，1.44g/L Na2HPO4，0.5ml/L Tween-20，所述洗涤缓冲液的pH＝7.4；
1.2.5)向各个离心管中分别加入1ml保存缓冲液重悬磁珠，置于4℃保存备用；所述保存缓冲液中各成分含量如下：8g/L NaCl，0.2g/L KCl，0.24g/LKH2PO4，1.44g/L Na2HPO4，
0.3g/L NaN3，5g/L牛血清白蛋白，所述保存缓冲液的pH＝7.4；
2)量子点标记的抗卡他莫拉菌纳米探针的制备：
其具体制备方法包括：
2.1)向微量离心管中依次加入2nmol羧基水溶性量子点、300nmol N-羟基硫代琥珀酰亚胺sulfo-NHS以及300nmol碳二亚胺EDC，以磷酸盐缓冲液定容为2ml，混合溶液，37℃反应
30min后，透析去除过量的作为活化剂的sulfo-NHS及EDC，得到活化后的量子点；所述磷酸盐缓冲液中各成分含量如下：2.9g/L磷酸氢二钠，0.295g/L磷酸二氢钠，4g/L氯化钠；所述磷酸盐缓冲液的pH＝7.4；
2.2)在步骤2.1)所得到的活化的量子点中，加入4-12nmol的步骤1.1)中所制备的鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG，避光反应2h，加入单端氨基化聚乙二醇PEG2000-NH2至终浓度为1％，封闭未反应的活化羧基位点，继续避光反应1h；
2.3)用0.2μm PES滤器过滤除去步骤2.2)中的抗体聚集物，然后将滤液转移到50000MW超滤离心管中，以8000g离心力在4℃下离心15min，除去未发生偶联反应的抗体和反应中的副产物；
2.4)收集步骤2.3)中超滤离心管滤膜上层量子点-抗体偶联物溶液，溶于2ml磷酸盐洗涤液中，再将此溶液转移到一个新的50000MW超滤离心管中，以8000g离心力在4℃下离心
15min，收集超滤离心管滤膜上层量子点-抗体偶联物溶液，溶于1ml磷酸盐保存液中，置于4℃保存备用；所述磷酸盐洗涤液中各成分含量如下：2.9g/L磷酸氢二钠，0.295g/L磷酸二氢钠，4g/L氯化钠，5ml/L吐温-20，0.3g/L叠氮钠，所述磷酸盐洗涤液的pH＝7.4；所述磷酸盐保存液中各成分含量如下：2.9g/L磷酸氢二钠，0.295g/L磷酸二氢钠，2g/L氯化钠，10g/L牛血清白蛋白，0.3g/L叠氮钠；所述磷酸盐保存液的pH＝7.4；
3)PBST缓冲液的配制：
其具体配制方法包括：
取8g NaCl，0.2g KCl，0.24KH2PO4，1.44g Na2HPO4，0.3g NaN3，0.5ml Tween-20溶解于
800ml蒸馏水中，用5M NaOH调整pH至7.4，再定容至1000ml；
4)质控品的制备：
4.1)阳性质控品：阳性质控品由灭活的卡他莫拉菌干燥结合到拭子上而成；
4.2)阴性质控品：阴性质控品即经临床确定为卡他莫拉菌阴性的人群的咽拭子。
2.根据权利要求1所述的方法，其特征在于：所述步骤1.2.2)中，依次加入用步骤
1.2.1)中的MES缓冲液配制的浓度是10mg/ml的EDC溶液以及用步骤1.2.1)中的MES缓冲液配制的浓度是8mg/ml的sulfo-NHS溶液各0.5ml，以15rpm于旋转混合仪中活化1hr，置于纳米磁分离器中进行磁分离后移除上清，用1ml步骤1.2.1)中的MES缓冲液重悬，得到活化后的磁珠；
所述步骤1.2.3)中，向各离心管中加入用PBS缓冲液稀释的浓度为100μg/ml的由步骤
1.1)所制备的兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG溶液各1ml，室温下以15rpm于旋转混合仪中反应3h，置于纳米磁分离器中进行磁分离后移除上清后，各加入1ml含1mg/ml乙醇胺的上述PBS缓冲液；
所述步骤2.2)中，在步骤2.1)所得到的活化的量子点中，加入6nmol的步骤1.1)中所制备的鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG，避光反应2h。
3.根据权利要求1或2所述的方法，其特征在于：所述量子点是羧基化两亲聚合物修饰的水溶性CdSe/ZnS量子点。
4.根据权利要求3所述的方法，其特征在于：所述磁珠是以超顺磁性Fe3O4为内核、壳材料为聚苯乙烯、表面官能团为羧基、粒径为180nm的羧基磁珠。
基于磁性分离和量子点标记的卡他莫拉菌快速检测方法和试
剂盒
技术领域
[0001] 本发明涉及医学检测技术领域，具体为一种基于磁性分离和量子点标记的检测卡他莫拉菌(Moraxella catarrhalis，Mc)抗原的快速检测方法及检测试剂盒，以及该检测试剂盒的制备及使用方法。
背景技术
[0002] 卡他莫拉菌(Moraxella catarrhalis，Mc)首次发现于1896年，当时称之为卡他微球菌(Micrococcus catarrhalis)，尔后又称为卡他奈瑟菌(Neisseria catarrhalis)和卡他布兰汉菌(Branhamella catarrhalis)。卡他莫拉菌为革兰氏阴性球菌,通常呈肾形双球菌状，偶可呈四联状，无鞭毛，无芽胞，一般无荚膜。其营养要求不高，普通培养基上即可生长，需氧，最适生长温度为35℃。菌落直径1～3mm，光滑型，灰白色，不透明，整个菌落易从培养基上刮下。较长时间培养后，菌落可呈粗糙颗粒状，黏附在培养基表面。产氧化酶和DNA酶。对糖类均不发酵。抵抗力较强，在痰中可存活27d，65℃时可存活30min。
[0003] 过去一直认为Mc是对人体无致病性的上呼吸道正常寄居菌，但是，近20多年的研究发现，该菌不仅可以引起儿童和老年人的上呼吸道感染，而且还是引起成人下呼吸道感染的重要病原菌，是儿童上颌窦炎、中耳炎、肺炎以及成人的慢性下呼吸道感染的第3位最常见致病菌，仅次于肺炎支原体和肺炎链球菌。已有报道该菌可引起呼吸道医院感染爆发流行。因此，卡他莫拉菌及其所致感染日益受到人们关注，对该菌的生物学特性、流行病学、所致疾病、耐药性以及感染的防治有了更多的认识。
[0004] 临床上由于Mc与其他呼吸道病原体引起的感染症状类似，因此常难以根据临床表现、x-射线检查等得出结论，确诊往往依赖于实验室诊断。而儿童疾病的特点是起病急、转归快，因此敏感、快速、实用的Mc检测对及早进行有效的临床干预具有非常重要的意义。
[0005] 尽管Mc在全球范围内传播，但可用于实验室诊断的标准化商品试剂的种类极少。目前，Mc感染的诊断方法有血清学检测法，核酸检测法和病原体直接检测法。
[0006] 检测血清中Mc IgG、IgA、IgM抗体常用的方法有：微量免疫荧光抗体检测(MIF)，补体结合试验(CF)，重组酶免疫测定(rEIA)，血清补体结合一酶免疫测定试验(SeroCF—EIA)等。然而Mc抗体的检出只能说明该个体感染过Mc，却不能反映体内是否仍有Mc活菌存在，并且血清学特异性抗体检测常需要根据IgM抗体的动态结果进行判断，需要较长的时间。同时，这些技术均存在灵敏度低、操作步骤复杂、需要专业人员操作、重复性差、检测时间长、检测特异性差、成本较高等缺陷，因而难以满足临床的实际需要。
[0007] 核酸检测包括核酸杂交和聚合酶链式反应(PCR)，核酸杂交检测Mc的特异性强，但敏感性不高，主要用于PCR结果的检测、判定，尚未直接用于临床标本的检测；PCR具有较高的敏感性，但PCR实验对实验室有特殊要求，标本处理、扩增和检测要求严格，且易出现假阳性，在我国还不能作为常用的临床诊断方法。
[0008] 病原体检测方法主要为病原分离培养法，将标本接种于血平板，35～37℃，于含5％二氧化碳(CO2)孵箱中孵育16～20h，再根据菌落形态、革兰染色及生化鉴定(氧化酶阳性、葡萄糖阴性，DNA酶、硝酸盐还原酶阳性)确定为卡他莫拉菌。该法为检测卡他莫拉菌感染的“金标准”，但其存在操作步骤复杂，检测时间长等明显缺陷，并不十分适合临床应用。
[0009] 因此，目前建立具高灵敏度、高特异性的卡他莫拉菌抗原快速检测法以满足临床的检测需求就显得非常必要了。
发明内容
[0010] 针对背景技术中存在的这些技术问题，本发明提供了一种基于磁性分离和量子点标记的能简便、快速、高灵敏度的检测卡他莫拉菌抗原的检测方法和试剂盒，以及该试剂盒的制备及使用方法。
[0011] 本发明是通过以下技术方案来实现的：
[0012] 一种基于磁性分离和量子点标记的检测卡他莫拉菌抗原的方法，其特征在于：所述该方法包括以下步骤：
[0013] 1)兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体的制备；
[0014] 2)鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体的制备；
[0015] 3)将步骤1)制备得到的兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体与纳米磁珠通过共价偶联，制备抗卡他莫拉菌免疫纳米磁珠；
[0016] 4)将步骤2)制备得到的鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体与纳米量子点通过共价偶联，制备量子点标记的抗卡他莫拉菌纳米探针；
[0017] 5)取人呼吸道分泌物样本(包括但不限于咽拭子)，用PBST缓冲液溶解后，加入步骤3)制备得到的抗卡他莫拉菌免疫纳米磁珠，充分混合，反应15-45min后进行磁分离，以PBST缓冲液洗涤2遍后，向磁分离得到的沉淀物中加入步骤4)制备得到的量子点标记的抗卡他莫拉菌纳米探针，反应15-45min后进行磁分离，以PBST缓冲液洗涤2遍后，使用荧光酶标仪读取荧光值；所述PBST缓冲液中各成分含量如下：8g/L NaCl，0.2g/L KCl，0.24g/L KH2PO4，1.44g/L Na2HPO4，0.5ml/L Tween-20，所述PBST缓冲液的pH＝7.4；
[0018] 6)根据步骤1)-步骤5)的方法分别检测四份经临床确定为卡他莫拉菌阴性的人群的呼吸道分泌物样品，读取荧光值；所述卡他莫拉菌阴性的人群的呼吸道分泌物样品简称卡他莫拉菌阴性对照样品；所述四份卡他莫拉菌阴性对照样品的荧光值的平均值与3倍标准差之和即为CUT-OFF值；若步骤5)中人呼吸道分泌物样本的检测荧光值大于CUT-OFF值，则判断为人呼吸道分泌物样本中卡他莫拉菌抗原为阳性；若步骤5)中人呼吸道分泌物样本的检测荧光值小于CUT-OFF值，则判断为人呼吸道分泌物样本中卡他莫拉菌抗原为阴性。
[0019] 一种基于磁性分离和量子点标记的检测卡他莫拉菌抗原的试剂盒，其特征在于：所述基于磁性分离和量子点标记的检测卡他莫拉菌抗原的试剂盒由具有富集卡他莫拉菌抗原功能的抗卡他莫拉菌免疫纳米磁珠、量子点标记的抗卡他莫拉菌纳米探针、质控品以及PBST缓冲液所组成；所述质控品包括阳性质控品以及阴性质控品；所述阳性质控品由灭活的卡他莫拉菌干燥结合到拭子上而成；所述阴性质控品是经临床确定为卡他莫拉菌阴性的人群的咽拭子。
[0020] 一种用于制备基于磁性分离和量子点标记的检测卡他莫拉菌抗原的试剂盒的方法，其特征在于：所述制备方法包括以下步骤：
[0021] 1)抗卡他莫拉菌免疫纳米磁珠的制备：
[0022] 1.1)兔及鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG的制备
[0023] 1.1.1)重组UspA1-His融合蛋白的制备、纯化：
[0024] 1.1.1.1)对卡他莫拉菌表面蛋白UspA1进行生物信息学分析，获取其胞外结构域中抗原表位最为丰富的肽段；
[0026] 1.1.1.3)将步骤1.1.1.2)中所得到的UspA1按分子生物学方法克隆入表达载体pET-28a(+)后转入大肠杆菌中表达重组UspA1-His融合蛋白；所述重组UspA1-His融合蛋白以包涵体表达方式存在于菌体中；
[0027] 1.1.1.4)用镍柱纯化步骤1.1.1.3)所得到的重组蛋白，SDS-PAGE检测其纯度后，以Bradford法测定蛋白质浓度，调整蛋白浓度为0.2mg/mL后备用；
[0028] 1.1.2)兔及鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG的制备：
[0029] 1.1.2.1)以步骤1.1.1.4)中所得到的重组UspA1-His融合蛋白为完全抗原，分别免疫新西兰大白兔及豚鼠；分别制备兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白抗血清及鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白抗血清；所述兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白抗血清及鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白抗血清的间接ELISA效价均大于1×105；
[0030] 1.1.2.2)采用Protein G亲和层析柱分别纯化兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白抗血清及鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白抗血清中的多克隆抗体IgG；
[0031] 1.1.2.3)用凯基Bradford蛋白含量检测试剂盒测定步骤1.1.2.2)所得到的二种多克隆抗体IgG的浓度，将其蛋白浓度均调整为1mg/mL后备用；
[0032] 1.2)免疫纳米磁珠的包被：
[0033] 1.2.1)取5mg磁珠，用1ml MES缓冲液洗涤三次，置于纳米磁分离器中进行磁分离后移除上清；所述磁珠是以超顺磁性Fe3O4为内核、粒径为180nm的羧基磁珠；所述MES缓冲液是质量浓度是2g/L的2-(N-吗啉代)乙磺酸；所述MES缓冲液的pH＝6.0；所述纳米磁分离器的磁性强度是0.4T；
[0034] 1.2.2)依次加入用步骤1.2.1)中的MES缓冲液配制的浓度是8-12mg/ml的EDC溶液以及用步骤1.2.1)中的MES缓冲液配制的浓度是6-10mg/ml的sulfo-NHS溶液各0.5ml，以10-40rpm于旋转混合仪中活化1hr，置于纳米磁分离器中进行磁分离后移除上清，用1ml步骤1.2.1)中的MES缓冲液重悬，得到活化后的磁珠；
[0035] 1.2.3)取5个离心管，在每个离心管中加入200μL步骤1.2.2)所得到的活化后的磁珠，置于纳米磁分离器中进行磁分离后移除上清，向各离心管中加入用PBS缓冲液稀释的浓度为50-200μg/ml的由步骤1.1)所制备的兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG溶液各1ml，室温下以15rpm于旋转混合仪中反应2-6h，置于纳米磁分离器中进行磁分离后移除上清后，各加入1ml含1mg/ml乙醇胺的上述PBS缓冲液，室温下以15rpm于旋转混合仪中反应2h以封闭磁珠上未与抗体反应的羧基；所述PBS缓冲液中各成分含量如下：8g/L NaCl，0.2g/L KCl，0.24g/L KH2PO4，1.44g/L Na2HPO4，所述PBS缓冲液的pH＝7.4；
[0036] 1.2.4)封闭反应完成后，将该5个离心管置于纳米磁分离器中进行磁分离后移除上清，各用1ml洗涤缓冲液洗涤三遍；所述洗涤缓冲液中各成分含量如下：8g/L NaCl，0.2g/L KCl，0.24g/L KH2PO4，1.44g/L Na2HPO4，0.5ml/L Tween-20，所述洗涤缓冲液的pH＝7.4；
[0037] 1.2.5)向各个离心管中分别加入1ml保存缓冲液重悬磁珠，置于4℃保存备用；所述保存缓冲液中各成分含量如下：8g/L NaCl，0.2g/L KCl，0.24g/L KH2PO4，1.44g/L Na2HPO4，0.3g/L NaN3，5g/L牛血清白蛋白(BSA)，所述保存缓冲液的pH＝7.4；
[0038] 2)量子点标记的抗卡他莫拉菌纳米探针的制备：
[0039] 其具体制备方法包括：
[0040] 2.1)向微量离心管中依次加入2nmol羧基水溶性量子点、300nmol N-羟基硫代琥珀酰亚胺sulfo-NHS以及300nmol碳二亚胺EDC，以磷酸盐缓冲液定容为2ml，混合溶液，37℃反应30min后，透析去除过量的作为活化剂的sulfo-NHS及EDC，得到活化后的量子点；所述磷酸盐缓冲液中各成分含量如下：2.9g/L磷酸氢二钠，0.295g/L磷酸二氢钠，4g/L氯化钠；所述磷酸盐缓冲液的pH＝7.4；
[0041] 2.2)在步骤2.1)所得到的活化的量子点中，加入4-12nmol的步骤1.1)中所制备的鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG，避光反应2h，加入单端氨基化聚乙二醇PEG2000-NH2至终浓度为1％，封闭未反应的活化羧基位点，继续避光反应1h；
[0042] 2.3)用0.2μm PES滤器过滤除去步骤2.2)中的抗体聚集物，然后将滤液转移到50000MW超滤离心管中，以8000g离心力在4℃下离心15min，除去未发生偶联反应的抗体和反应中的副产物；
[0043] 2.4)收集步骤2.3)中超滤离心管滤膜上层量子点-抗体偶联物溶液，溶于2ml磷酸盐洗涤液中，再将此溶液转移到一个新的50000MW超滤离心管中，以8000g离心力在4℃下离心15min，收集超滤离心管滤膜上层量子点-抗体偶联物溶液，溶于1ml磷酸盐保存液中，置于4℃保存备用；所述磷酸盐洗涤液中各成分含量如下：2.9g/L磷酸氢二钠，0.295g/L磷酸二氢钠，4g/L氯化钠，5ml/L吐温-20，0.3g/L叠氮钠，所述磷酸盐洗涤液的pH＝7.4；所述磷酸盐保存液中各成分含量如下：2.9g/L磷酸氢二钠，0.295g/L磷酸二氢钠，2g/L氯化钠，10g/L牛血清白蛋白，0.3g/L叠氮钠；所述磷酸盐保存液的pH＝7.4；
[0044] 3)PBST缓冲液的配制：
[0045] 其具体配制方法包括：
[0046] 取8g NaCl，0.2g KCl，0.24KH2PO4，1.44g Na2HPO4，0.3g NaN3，0.5ml Tween-20溶解于800ml蒸馏水中，用5M NaOH调整pH至7.4，再定容至1000ml；
[0047] 4)质控品的制备：
[0048] 4.1阳性质控品：阳性质控品由灭活的卡他莫拉菌干燥结合到拭子上而成；
[0049] 4.2阴性质控品：阴性质控品即经临床确定为卡他莫拉菌阴性的人群的咽拭子。
[0050] 作为优选，本发明在步骤1.2.2)中，依次加入用步骤1.2.1)中的MES缓冲液配制的浓度是10mg/ml的EDC溶液以及用步骤1.2.1)中的MES缓冲液配制的浓度是8mg/ml的sulfo-NHS溶液各0.5ml，以15rpm于旋转混合仪中活化1hr，置于纳米磁分离器中进行磁分离后移除上清，用1ml步骤1.2.1)中的MES缓冲液重悬，得到活化后的磁珠；
[0051] 所述步骤1.2.3)中，向各离心管中加入用PBS缓冲液稀释的浓度为100μg/ml的由步骤1.1)所制备的兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG溶液各1ml，室温下以15rpm于旋转混合仪中反应3h，置于纳米磁分离器中进行磁分离后移除上清后，各加入1ml含1mg/ml乙醇胺的上述PBS缓冲液；
[0052] 所述步骤2.2)中，在步骤2.1)所得到的活化的量子点中，加入6nmol的步骤1.1)中所制备的鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG，避光反应2h。
[0054] 作为优选，本发明所采用的磁珠是以超顺磁性Fe3O4为内核、壳材料为聚苯乙烯、表面官能团为羧基、粒径为180nm的羧基磁珠。
[0055] 一种基于磁性分离和量子点标记的检测卡他莫拉菌抗原的试剂盒的使用方法，其特征在于：所述使用方法包括以下步骤：
[0056] 1)将待检样本用0.5ml PBST缓冲液溶解后将溶解液转入1.5ml普通离心管中；所述PBST缓冲液中各成分含量如下：8g/L NaCl，0.2g/L KCl，0.24g/L KH2PO4，1.44g/L Na2HPO4，0.3g/L NaN3，0.5ml/L Tween-20；所述PBST缓冲液的pH＝7.4；
[0057] 2)向步骤1)中的离心管中加入基于磁性分离和量子点标记的检测卡他莫拉菌抗原的试剂盒中的抗卡他莫拉菌免疫纳米磁珠50-150μl，室温下以10rpm于旋转混合仪上反应15-45min后取下，将离心管插入纳米磁分离器磁分离3min，用移液器吸出上清；
[0058] 3)添加试剂盒中的PBST缓冲液1ml洗涤两遍，采用纳米磁分离器磁分离后吸出洗涤液，最后用1ml PBS缓冲液重悬磁珠，制得免疫纳米磁珠-支原体抗原复合物；所述PBS缓冲液中各成分含量如下：8g/L NaCl，0.2g/L KCl，0.24g/L KH2PO4，1.44g/L Na2HPO4；所述PBS缓冲液的pH＝7.4；
[0059] 4)取100μl步骤3)得到的免疫纳米磁珠-支原体抗原复合物于另一离心管中，再加入100μl基于磁性分离和量子点标记的检测卡他莫拉菌抗原的试剂盒中的量子点标记的抗卡他莫拉菌纳米探针，室温下以15rpm于旋转混合仪上反应15-45min，通过量子点上的抗体与免疫纳米磁珠上的卡他莫拉菌抗原的免疫结合，量子点被标记到卡他莫拉菌表面，形成磁珠-支原体抗原-量子点“三明治”复合物；
[0060] 5)反应完成后，采用纳米磁分离器磁分离3min，除去多余的量子点标记的抗卡他莫拉菌纳米探针，用试剂盒中的PBST缓冲液液清洗2遍，复合物重新分散在100μl PBS缓冲液中，使用荧光酶标仪对其荧光值进行检测；所述PBS缓冲液中各成分含量如下：8g/L NaCl，0.2g/L KCl，0.24g/L KH2PO4，1.44g/L Na2HPO4；所述PBS缓冲液的pH＝7.4；
[0061] 6)按上述同样的方法检测试剂盒中提供的四份阴性质控品样品及一份阳性质控品样品，分别读取荧光值；四份阴性质控品样品的荧光读数的平均值与3倍标准差之和即为CUT-OFF值；若步骤5)中待检样本的检测荧光值若大于CUT-OFF值即判断为待检样本中卡他莫拉菌抗原为阳性，反之则判断为待检样本中卡他莫拉菌抗原为阴性；若阳性质控品样品的荧光值小于CUT-OFF值，则表明试剂盒失效。
[0062] 作为优选，本发明所提出的步骤2)中，向步骤1)中的离心管中加入基于磁性分离和量子点标记的检测卡他莫拉菌抗原的试剂盒中的抗卡他莫拉菌免疫纳米磁珠100μl，室温下以10rpm于旋转混合仪上反应20min后取下，将离心管插入磁力架分离3min，用移液器吸出上清；
[0063] 所述步骤4)中，取100μl步骤3)得到的免疫纳米磁珠-支原体抗原复合物于另一离心管中，再加入100μl基于磁性分离和量子点标记的检测卡他莫拉菌抗原的试剂盒中的量子点标记的抗卡他莫拉菌纳米探针，室温下以15rpm于旋转混合仪上反应20min，通过量子点上的抗体与免疫纳米磁珠上的卡他莫拉菌抗原的免疫结合，量子点被标记到卡他莫拉菌表面，形成磁珠-卡他莫拉菌抗原-量子点“三明治”复合物。
[0064] 作为优选，本发明所提供的待检样本包括但不限于咽拭子。
[0065] 本发明所需的羧基水溶性纳米量子点、180nm羧基磁珠,可到相关专业的研究单位、公司购买或定制；所需的仪器、设备、药品均有市售。
[0066] 本发明相比现有技术具有如下优点：
[0067] 1、本发明利用了免疫纳米磁珠对样品的可富集性、分离的速度快、效率高等优点，同时结合量子点光化学稳定性高、荧光强度高等特性，使得检测体系具备多重信号协同放大的效果，从而具有超高的检测灵敏度(其对卡他莫拉菌的检测底线为3×103CFU/ml，低于目前任何一种已报道的检测方法)，用其对临床样品的检测结果与目前对该病原体的检测“金标准”-培养法的相比无统计学差异。
[0068] 2、本发明所用的抗体是识别卡他莫拉菌特异性UspA1抗原胞外保守区的多克隆抗体，其特异性高，同时其较目前最广泛使用的单克隆抗体而言制备成本低廉，因此，本发明检测成本较低。
[0069] 3、本发明检测方法简单，检测快速，易于判定，检测成本低廉，克服了现有技术检测阳性率低、成本高、操作复杂繁琐、耗时长、无法进行临床应用的不足。
[0070] 4、由于检测试剂盒检测的是卡他莫拉菌抗原而非抗体(抗体的出现需要感染几周以后)，故而可进行早期诊断和防治，临床诊断符合率高。该方法在卡他莫拉菌的临床诊断、病原学鉴别、流行病学调查等方面具有很高的实用价值。
[0071] 5、由于本发明首次以卡他莫拉菌所独有的表面蛋白UspA1作为抗原标靶，而该抗原不仅存在于所有类型的卡他莫拉菌细胞表面，且保守性高，属于卡他莫拉菌特异性抗原，因此该检测卡可高度特异性的检测所有类型卡他莫拉菌的感染。而市场上目前未见任何一种与本发明一样能快速检测所有类型卡他莫拉菌的工具存在。
[0072] 6、本发明检测方法所用的临床样本为呼吸道分泌物如痰液等，而非血液，可免除婴幼儿患者抽血检查的痛苦与家长的心理负担，故较易于推广。
具体实施方式
[0073] 本发明是根据免疫学中的双抗夹心原理，利用免疫纳米磁珠对样品的可富集性、分离的速度快、效率高等优点，结合量子点光化学稳定性高、荧光强度高等特性，建立的一套具备多重信号协同放大、具有超高灵敏度及高度特异性的快速检测卡他莫拉菌的新方法，具有广阔的市场应用前景。
[0074] 本发明通过以下实施例作进一步具体描述。
[0075] 各种试剂的配制及所需材料的说明
[0076] 1.PBS缓冲液：称取1.44g磷酸氢二钠，0.24g磷酸二氢钾,8g氯化钠，0.2g氯化钾，溶解于900ml的去离子水中，用1mol/L NaOH调pH至7.4后用去离子水定容至1000ml。
[0077] 2.兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG：为本发明自制，用PBS缓冲液稀释，摇匀，使溶液中多克隆抗体重量百分比浓度为1mg/ml。
[0078] 3.鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG：为本发明自制，用PBS缓冲液稀释，摇匀，使溶液中多克隆抗体重量百分比浓度为1mg/ml。
[0079] 4.量子点：本发明中所用量子点为羧基化两亲聚合物修饰的水溶性CdSe/ZnS量子点，其发射波长为565nm，自武汉珈源量子点技术开发有限公司购买，产品名称为羧基水溶性量子点-565。
[0080] 5.磁珠：本发明中所用磁珠是以超顺磁性Fe3O4为内核、壳材料为聚苯乙烯、表面官能团为羧基、粒径为分别为50nm、180nm、350nm、1150nm、3μm的羧基磁珠，可从陕西北美基因股份有限公司、上海奥润微纳新材料科技有限公司购买。
[0081] 6.卡他莫拉菌：购自美国典型培养物保藏中心(ATCC)，编号为ATCC 25238。
[0082] 7.本发明所用到的微生物样品均购自美国典型培养物保藏中心(ATCC)。
[0083] 实施例1兔及鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG的制备
[0084] (一)重组UspA1-His融合蛋白的制备、纯化
[0085] 1.相关基因的克隆
[0086] 对卡他莫拉菌表面蛋白UspA1(其NCBI蛋白质数据库中的accession number为AAF36416)进行生物信息学分析，获取其胞外保守结构域中抗原表位最为丰富的肽段，找到其对应的DNA编码序列，同时在其5’引入酶切位点NdeI、3’端引入终止信号TAA和酶切位点XhoI后化学合成全基因序列(全序列合成交由金斯瑞生物科技有限公司完成，交货时人工合成的基因片段连于载体pUC57上)，记为UspA1。其基因全序列如序列表所示。具体的说，UspA1基因编码的蛋白质序列为天然卡他莫拉菌表面蛋白UspA1(accession number:AAF36416)的522-710aa。将含有该段人工合成的DNA片段的载体pUC57用NdeI及XhoI进行双酶切后按常规方法回收目的片段，备用。同时采用NdeI及XhoI对载体pET-28a(+)进行双酶切，并按常规方法将经双酶切后获得的UspA1基因连入pET-28a(+)载体中，并转化大肠杆菌TOP10，构建pET-UspA1表达载体。经酶切和序列测定证实表达载体构建无误。该载体表达重组UspA1-His融合蛋白。
[0087] 2.重组UspA1-His融合蛋白的表达与纯化
[0088] 将鉴定正确的阳性克隆菌培养后提取质粒，按常规技术转入感受态E.coli BL21(DE3)中，转化完成后将菌液涂布于含50μg/mL卡那霉素的LB平板上，按常规方法筛选表达菌株。挑取pET-UspA1转化的具有外源蛋白表达能力的单个菌落并接种入100mL LB培养基中，于37℃培养过夜。取出菌液后，按1：100接种于100mL含有50μg/mL卡那霉素的LB培养基中，于37℃培养至OD600＝0.6时，加入1mol/L IPTG至终浓度为1mmol/L，于37℃摇菌培养，诱导融合蛋白表达。诱导4h后分别于8000r/min下离心10min收集菌体。将菌体用20mL PBS缓冲液洗涤3次并再次重悬后进行超声破碎，操作条件为：50HZ，200W，超声3S，间歇5S，工作100次。超声完成后，12000g离心15min收集沉淀，即为包涵体。将此包涵体用洗涤缓冲液(20mM Na3PO4，0.5M NaCl；3M尿素，30mM咪唑，pH7.4)洗涤两次后，12000g离心15min收集沉淀。将沉淀用Binding buffer(20mM Na3PO4,0.5M NaCl；8M尿素，30mM咪唑，pH7.4)于室温下溶解后，12000g离心15min，上清用0.45μm的滤膜进行过滤。此溶解液中的重组蛋白用His Trap affinity columns(GE healthcare公司产品)，按照说明书的方法进行纯化。具体方法如下：
[0089] 1)用5mL注射器吸满蒸馏水，拧开柱的塞子，用提供的接头将柱和注射器连接上，以1mL/min流速洗柱。
[0090] 2)用10mL Binding buffer平衡，1mL/min流速。
[0091] 3)将融合蛋白上样，1mL/min流速。
[0092] 4)用10mL Binding buffer，以1mL/min流速洗柱。
[0093] 5)用10mL Elution buffer(20mM Na3PO4，0.5M NaCl；8M尿素，500mM咪唑，pH7.4)，以1mL/min流速洗脱，分管收集，每管1ml，12％SDS-PAGE检测，合并洗脱组分中含有目的蛋白的样品。经Bradford试剂盒进行蛋白质浓度测定后，调整浓度为0.2mg/mL。
[0094] (二)兔及鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG的制备
[0095] 1.兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG的制备
[0096] 用步骤(一)纯化的重组UspA1-His融合蛋白按照200μg(1mL)与1mL弗氏完全佐剂混匀乳化后免疫雄性新西兰大白兔(由湖北省疾病预防控制中心提供)，于背部皮下多点注射，间隔7d后再免疫一次，再过14d后用上述纯化的重组UspA1-His融合蛋白按照200μg(1mL)与1mL弗氏不完全佐剂混匀乳化后进行加强免疫，加强免疫7d后再按上述同样方法再加强免疫一次。7d后取血分析抗体滴度。若不满意，可重复进行一到两次加强免疫，至抗体滴度满意(用ELISA法测定抗体效价大于1×105)。若满意则心脏采血，分离血清，以Protein G亲和层析柱(GE healthcare公司产品)，严格按照操作说明书纯化多克隆抗体IgG，用凯基Bradford蛋白含量检测试剂盒测定抗体浓度并用磷酸盐缓冲液(8g/L NaCl，0.2g/L KCl，0.24g/L KH2PO4，1.44g/L Na2HPO4pH7.4)调整为1mg/mL，-20℃保藏备用，至此制得兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG。Westen blot试验表明，此多克隆抗体IgG能特异性识别卡他莫拉菌全长UspA1蛋白。
[0097] 2.鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG的制备
[0098] 用步骤(一)纯化的重组UspA1-His融合蛋白作为完全抗原免疫豚鼠(由湖北省疾病预防控制中心提供)，肩胛下注射抗原200μg/只。基础免疫为等体积的抗原与弗氏完全佐剂进行乳化，每隔2周进行一次加强免疫，加强免疫用等体积抗原与等体积弗氏不完全佐剂进行乳化，总共免疫4次。末次免疫10d后取血分析抗体滴度。若不满意，可重复进行一到两次加强免疫，至抗体滴度满意(用ELISA法测定抗体效价大于1×105)。若满意则处死豚鼠取血清，以Protein G亲和层析柱(GE healthcare公司产品)，严格按照操作说明书纯化多克隆抗体IgG，用凯基Bradford蛋白含量检测试剂盒测定抗体浓度并用磷酸盐缓冲液(8g/L NaCl，0.2g/L KCl，0.24g/L KH2PO4，1.44g/L Na2HPO4pH＝7.4)调整为1mg/mL，备用，至此制得鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG。Westen blot试验表明，此多克隆抗体IgG能特异性识别卡他莫拉菌全长UspA1蛋白。
[0099] 实施例2抗卡他莫拉菌免疫纳米磁珠的制备
[0100] 1.抗卡他莫拉菌多克隆抗体偶联磁珠反应条件的优化：
[0101] 以偶联了抗卡他莫拉菌多克隆抗体的磁珠作为固相载体，量子点标记的抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体作为检测抗体，通过双抗夹心法原理检测卡他莫拉菌抗原，观察磁珠与多抗的偶联情况。分别对磁珠的粒径，以及EDC/NHS活化剂浓度、偶联抗体浓度、偶联时间、封闭剂种类等偶联条件进行了一系列的优化选择。
[0102] 1.1磁珠粒径的选择
[0103] 选择粒径为50nm、180nm、350nm、1150nm、3μm的羧基磁珠，均加入含4mg/ml EDC及4mg/ml NHS的PBS缓冲液进行活化反应后，分别与实施例1所描述的兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG进行偶联反应。分别将制备好的免疫纳米磁珠检测104CFU/mL的卡他莫拉菌(ATCC编号25238)，荧光显微镜下观察结果，选择荧光强度大，背景荧光干扰少，以及在磁场作用下分离速度较快者为最适磁珠粒径。结果表明粒径180nm的磁珠最符合本发明的要求，确定最适磁性微球粒径为180nm。
[0104] 1.2EDC/NHS活化剂浓度的选择
[0105] 将反应体系中EDC和NHS浓度各自设为l～10mg/ml后进行浓度梯度组合，分别活化粒径180nm的羧基磁珠。将制备好的免疫纳米磁珠检测104CFU/mL的卡他莫拉菌(ATCC编号25238)，选择荧光最强者为EDC和NHS溶液的最适活化浓度。结果表明当EDC浓度为5mg/ml、NHS浓度为4mg/ml时偶联效果最好。
[0106] 1.3偶联抗体浓度的选择
[0107] 将20μg、40μg、60μg、80μg、100μg、120μg、140μg的兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG分别与1mg按上述最优方法活化的粒径为180nm的磁珠进行偶联。将制备好的免疫纳米磁珠检测104CFU/mL的卡他莫拉菌(ATCC编号25238)，结果发现，当抗体的投放量小于100μg/mg时，荧光强度随着抗体的浓度增加而增加，而当抗体的质量浓度大于100μg/mg时，荧光强度基本不变甚至略有减小，因此本实施例选择兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG的偶联量为100μg/mg。
[0108] 1.4偶联时间的选择
[0109] 确定磁珠的粒径、EDC/NHS活化剂浓度及抗体偶联量后，将抗体与磁珠的偶联反应时间分别设为0.5h、1h、2h、3h、4h、5h，将制备好的免疫纳米磁珠检测104CFU/ml的卡他莫拉菌(ATCC编号25238)。结果发现，当偶联时间>3h时，荧光强度趋于稳定，此后再延长偶联时间，荧光不再增强。因此，确定兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG与磁珠的最适偶联反应时间为3h。偶联时间远少于传统ELISA法的24h。
[0110] 1.5封闭剂的选择
[0111] 按照上述确定的最优条件选择磁珠的粒径、EDC/NHS活化剂浓度、抗体偶联量及偶联时间后进行偶联反应。偶联结束后，选择BSA，乙醇胺，Tris和D-氨基葡萄糖盐酸盐作为免疫纳米磁珠封闭剂，制得成品免疫纳米磁珠。将制备好的免疫纳米磁珠检测104CFU/mL的卡他莫拉菌(ATCC编号25238)。结果发现，采用乙醇胺作为封闭剂的免疫纳米磁珠的检测荧光值最高。推测由于乙醇胺的分子较小，可以较好的消耗由于空间位阻未与抗体结合的表面羧基，使封闭更为完全，并且有效减少空间位阻效应对已连接抗体的结构影响。
[0112] 2.偶联过程：
[0113] 取5mg磁珠(以超顺磁性Fe3O4为内核、粒径为180nm的羧基磁珠)于1.5ml普通离心管中，用1ml MES缓冲液(2g/L MES，pH6.0)洗涤三次，置于纳米磁分离器中进行磁分离(0.4T)后移除上清，依次加入用上述MES缓冲液配制的浓度为10mg/ml的EDC溶液及用上述MES缓冲液配制的浓度为8mg/ml的sulfo-NHS溶液各0.5ml，以15rpm于旋转混合仪中活化1hr，磁分离后移除上清，用1ml上述的MES缓冲液重悬；取5个离心管，每个离心管中加入200μL上述活化的磁珠，磁分离后吸出上清，向各管中加入用PBS缓冲液(8g/L NaCl，0.2g/L KCl，0.24g/L KH2PO4，1.44g/L Na2HPO4，pH7.4)稀释的浓度为100μg/ml的实施例1所制备的兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG溶液各1ml，室温下以15rpm于旋转混合仪中反应
3h，磁分离移除上清后，各加入1ml含1mg/ml乙醇胺的上述PBS缓冲液，室温下以15rpm于旋转混合仪中反应2h以封闭磁珠上未与抗体反应的羧基。磁分离后移除各管上清，各用1ml洗涤缓冲液(8g/L NaCl，0.2g/L KCl，0.24g/L KH2PO4，1.44g/L Na2HPO4，0.5ml/L Tween-20，pH7.4)洗涤三遍,最后各用1ml保存缓冲液(8g/L NaCl，0.2g/L KCl，0.24g/L KH2PO4，
1.44g/L Na2HPO4，0.3g/L NaN3，5g/L BSA，pH7.4)重悬磁珠，置于4℃保存备用。
3h，磁分离移除上清后，各加入1ml含1mg/ml乙醇胺的上述PBS缓冲液，室温下以15rpm于旋转混合仪中反应2h以封闭磁珠上未与抗体反应的羧基。磁分离后移除各管上清，各用1ml洗涤缓冲液(8g/L NaCl，0.2g/L KCl，0.24g/L KH2PO4，1.44g/L Na2HPO4，0.5ml/L Tween-20，pH7.4)洗涤三遍,最后各用1ml保存缓冲液(8g/L NaCl，0.2g/L KCl，0.24g/L KH2PO4，
1.44g/L Na2HPO4，0.3g/L NaN3，5g/L BSA，pH7.4)重悬磁珠，置于4℃保存备用。
[0114] 实施例3量子点标记的抗卡他莫拉菌纳米探针的制备
[0115] 1.纳米羧基量子点标记鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG反应条件的优化：
[0116] 1.1、羧基量子点标记抗体探针最佳标记pH的确定
[0117] 将标记反应中磷酸盐缓冲液pH分别设为5，6，7，8，9，对标记产物利用全光谱仪进行荧光强度测定，观察不同pH值对偶联反应的影响，确定了量子点标记多抗反应的最佳pH为7.0-8.0。本实验选择pH7.4。
[0118] 1.2、羧基量子点标记抗体探针最佳标记量的确定
[0119] 将量子点摩尔浓度与多抗浓度之比分别设置为1:1，1:2，1:3及1:4，进行标记反应后，对标记产物利用全光谱仪进行荧光强度测定，观察二者不同浓度比对偶联反应的影响，确定量子点标记鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG反应的最佳摩尔浓度比为量子点与抗体摩尔比为1:3。本实验选择该最优浓度比来确定标记量。
[0120] 1.3、羧基量子点标记抗体探针最佳封闭剂种类的确定
[0121] 以乙醇胺、Tris、PEG2000-NH2或者BSA作为封闭剂，进行标记反应后，对标记产物利用全光谱仪进行荧光强度测定，观察不同的封闭剂对于标记反应的影响，结果发现，PEG2000-NH2为最佳封闭剂，其可显著提高标记复合物的胶体稳定性及免疫活性。
[0122] 2.标记过程：
[0123] 向微量离心管中依次加入2nmol羧基水溶性量子点、300nmol N-羟基硫代琥珀酰亚胺(sulfo-NHS)和300nmol碳二亚胺(EDC)，以磷酸盐缓冲液(2.9g/L磷酸氢二钠，0.295g/L磷酸二氢钠，4g/L氯化钠，pH 7.4)定容为2ml，不停地混合溶液，37℃反应30min后，透析去除过量的作为活化剂的sulfo-NHS与EDC。在活化的量子点中，加入6nmol的实施例1所制备的鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG，避光反应2h，加入单端氨基化聚乙二醇(PEG2000-NH2)至终浓度为1％，封闭未反应的活化羧基位点，继续避光反应1h。用0.2μm PES滤器过滤除去抗体聚集物，然后将滤液转移到50000MW超滤离心管中，以8000g离心力在4℃下离心15min，除去未发生偶联反应的抗体和反应中的副产物。收集超滤管滤膜上层量子点-抗体偶联物溶液，溶于2ml磷酸盐洗涤液(2.9g/L磷酸氢二钠，0.295g/L磷酸二氢钠，
4g/L氯化钠，5ml/L吐温-20，0.3g/L叠氮钠，pH 7.4)中，再将此溶液转移到50000MW超滤离心管中，以8000g离心力在4℃下离心15min，收集超滤管滤膜上层量子点-抗体偶联物溶液，溶于1ml磷酸盐保存液(2.9g/L磷酸氢二钠，0.295g/L磷酸二氢钠，2g/L氯化钠，10g/L BSA，
0.3g/L叠氮钠，pH 7.4)中，置于4℃保存备用。
4g/L氯化钠，5ml/L吐温-20，0.3g/L叠氮钠，pH 7.4)中，再将此溶液转移到50000MW超滤离心管中，以8000g离心力在4℃下离心15min，收集超滤管滤膜上层量子点-抗体偶联物溶液，溶于1ml磷酸盐保存液(2.9g/L磷酸氢二钠，0.295g/L磷酸二氢钠，2g/L氯化钠，10g/L BSA，
0.3g/L叠氮钠，pH 7.4)中，置于4℃保存备用。
[0124] 实施例4免疫纳米磁珠对卡他莫拉菌抗原进行免疫捕获条件的优化
[0125] 以偶联了兔抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体IgG的免疫纳米磁珠作为固相载体，量子点标记的鼠抗卡他莫拉菌UspA1蛋白多克隆抗体作为检测抗体，通过双抗夹心法原理，建立卡他莫拉菌抗原的检测体系。分别对检测体系中免疫纳米磁珠的用量，捕获时间等条件进行了一系列的优化选择。
[0126] 1.免疫纳米磁珠加入量的选择
[0127] 将20μl、40μl、60μl、80μl、100μl、120μl、140μl的由实施例2所制备好的免疫纳米磁珠分别加入到0.5ml含104CFU/mL的卡他莫拉菌(ATCC编号25238)的PBS悬浮液中，进行免疫捕获，再由实施例3所描述的量子点标记探针进行检测，记录荧光值。结果发现，随着免疫纳米磁珠加入量的增加，荧光值逐渐增大，当免疫纳米磁珠加入量达到100μl时，荧光值达到最大。再继续增加免疫纳米磁珠的量，荧光值反而降低。这可能是由于免疫纳米磁珠过多，磁分离时对菌体造成损伤，从而导致捕获率下降。故本实验选择100μl作为免疫纳米磁珠的最佳加入量。
[0128] 2.免疫捕获时间的选择
[0129] 确定磁珠的加入量后，取四份实施例2所制备好的免疫纳米磁珠，在室温下以10r/min，对104CFU/mL的卡他莫拉菌(ATCC编号25238)进行15min、20min、30min、45min及60min的免疫捕获，再由实施例3所描述的量子点标记探针进行检测，记录荧光值。结果发现，荧光值在免疫捕获20min时表现出最大值，随着时间的延长，数值有所下降。故本实验选择20min作为免疫捕获的最佳时间。
[0130] 实施例5 PBST缓冲液的配制
[0131] 取8g NaCl，0.2g KCl，0.24KH2PO4，1.44g Na2HPO4，0.3g NaN3，0.5ml Tween-20溶解于800ml蒸馏水中，用5M NaOH调整pH至7.4，再定容至1000ml。
[0132] 实施例6质控品的制备
[0133] 1.阳性质控品：将用1％甲醛灭活的卡他莫拉菌(0.5μg)干燥结合到拭子上,即为阳性质控品。
[0134] 2.阴性质控品：阴性质控品即经临床确定为卡他莫拉菌阴性的人群的咽拭子样品。
[0135] 实施例7试剂盒的制备
[0136] 由实施例2所描述的抗卡他莫拉菌免疫纳米磁珠、实施例3所描述的量子点标记的抗卡他莫拉菌纳米探针、实施例5所描述的PBST缓冲液、实施例6所描述的质控品共同组成基于磁性分离和量子点标记的检测卡他莫拉菌抗原的试剂盒。
[0137] 实施例8试剂盒的使用方法
[0138] 按常规临床手段获得人咽拭子，用0.5ml试剂盒中的PBST缓冲液(8g/L NaCl，0.2g/L KCl，0.24g/L KH2PO4，1.44g/L Na2HPO4，0.5ml/L Tween-20，pH7.4)溶解咽拭子上的临床样本后，将溶解液转入1.5ml普通离心管中，向该离心管中加入试剂盒中的抗卡他莫拉菌免疫纳米磁珠100μl，室温下以10rpm于旋转混合仪上反应20min后取下，将离心管插入磁力架分离3min，用移液器吸出上清。添加试剂盒中的PBST缓冲液1ml洗涤两遍，磁分离后吸出洗涤液，最后用1mL PBS缓冲液重悬磁珠。取100μl上述的免疫纳米磁珠-卡他莫拉菌抗原复合物于另一离心管中，再加入100μl试剂盒中的量子点标记的抗卡他莫拉菌纳米探针，室温下以15rpm于旋转混合仪上反应30min，通过量子点上的抗体与免疫纳米磁珠上的卡他莫拉菌抗原的免疫结合，量子点被标记到卡他莫拉菌表面，形成磁珠-卡他莫拉菌抗原-量子点“三明治”复合物。反应完成后，磁分离3min，除去多余的量子点标记探针，并用PBST缓冲液清洗2遍，复合物重新分散在100μl PBS缓冲液中，使用荧光酶标仪(Ex＝405nm，Em＝
565nm)对其荧光值进行检测。
565nm)对其荧光值进行检测。
[0139] 按上述同样的方法检测试剂盒中提供的四份阴性质控品及一份阳性质控品样品，分别读取荧光值；四份阴性质控品样品的荧光读数的平均值与3倍标准差之和即为CUT-OFF值；若上述临床人咽拭子样本的检测荧光值若大于CUT-OFF值即判断为此份临床咽拭子中卡他莫拉菌抗原为阳性，反之则判断为此份临床人咽拭子样本中卡他莫拉菌抗原为阴性；若阳性质控品样品的荧光值小于CUT-OFF值，则表明试剂盒失效。
[0140] 实施例9试剂盒的检测敏感性和特异性试验
[0141] 通过测定卡他莫拉菌培养物稀释液来做敏感性研究，确定实施例7所描述的基于磁性分离和量子点标记的检测人卡他莫拉菌抗原的试剂盒检测卡他莫拉菌(ATCC编号25238)检测下限为3×103CFU/ml。用呼吸道常见病原体如人呼吸道合胞病毒(Long株，ATCC编号VR26)、人肺炎支原体(ATCC编号15531)、人肺炎衣原体(AR-39株，ATCC编号53592)、人腺病毒3型(GB株，ATCC编号VR-3)、人腺病毒7型(Gomen株，ATCC编号VR-7)、人甲型流感病毒(H1N1，ATCC编号VR-1743)、人乙型流感病毒(ATCC编号VR-790)、人流感嗜血杆菌(ATCC编号
53781)、人肺炎链球菌(ATCC编号49619)等代替卡他莫拉菌进行检测，试剂盒检测含这些微生物的PBST缓冲液都为阴性。
53781)、人肺炎链球菌(ATCC编号49619)等代替卡他莫拉菌进行检测，试剂盒检测含这些微生物的PBST缓冲液都为阴性。
[0142] 实施例10临床测试例
[0143] 以卡他莫拉菌检测“金标准”-培养法作为参照，取96例呼吸科呼吸道感染者的咽拭子标本用实施例7所描述的试剂盒进行检测，培养法阳性率为15.6％(15/96),本试剂盒为17.7％(17/96),2种方法的符合率为97.9％(94/96)。具体结果如表1所示。
[0144] 表1临床标本的检测结果
[0145]
[0146]
| 标题 | 发布/更新时间 | 阅读量 |
|---|---|---|
| 人神经突起生长因子（Neuritin）多克隆抗体的制备方法及其应用 | 2021-06-28 | 0 |
| 检测磺胺类药物的胶体金免疫层析试纸条及其制备方法 | 2020-07-26 | 4 |
| 快速检测大豆Bowman-Brik胰蛋白酶抑制因子的胶体金免疫层析试纸及制备方法 | 2020-08-30 | 3 |
| 苄青霉噻唑酸人工抗原及其抗体的制备方法与应用 | 2021-08-12 | 0 |
| 一种基于海胆状核壳型金@钯纳米球的免疫传感器的制备方法及应用 | 2022-07-30 | 3 |
| HCG周期检测试剂盒及其制备方法 | 2021-03-04 | 5 |
| 克拉霉素衍生物及其制备方法与应用 | 2021-07-09 | 3 |
| 青霉素结合蛋白PBP6的β-内酰胺类抗生素受体法检测试剂盒制备方法及检测方法 | 2021-09-13 | 0 |
| 猪圆环病毒2型抗体胶体金免疫层析检测试纸及制备方法 | 2020-07-14 | 4 |
| 一种被设置在免疫读取设备中的照明系统 | 2021-06-07 | 3 |
高效检索全球专利专利汇是专利免费检索,专利查询,专利分析-国家发明专利查询检索分析平台，是提供专利分析，专利查询，专利检索等数据服务功能的知识产权数据服务商。
我们的产品包含105个国家的1.26亿组数据，免费查、免费专利分析。
分析报告
专利汇分析报告产品可以对行业情报数据进行梳理分析，涉及维度包括行业专利基本状况分析、地域分析、技术分析、发明人分析、申请人分析、专利权人分析、失效分析、核心专利分析、法律分析、研发重点分析、企业专利处境分析、技术处境分析、专利寿命分析、企业定位分析、引证分析等超过60个分析角度，系统通过AI智能系统对图表进行解读，只需1分钟，一键生成行业专利分析报告。
QQ群二维码
意见反馈
意见反馈