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神经元细胞培养液及培养方法

阅读:1023发布:2020-08-07

专利汇可以提供神经元细胞培养液及培养方法专利检索,专利查询,专利分析的服务。并且本 发明 公开了一种基于外周血单核细胞培养神经元细胞的培养液,所述培养液包括:体积比为1:0.8~1.2的DMEM/F12 基础 培养基和神经细胞培养基,以及神经生长因子、腺苷酸环化酶激活剂、血清替代物、L‑ 抗坏血酸 、L‑谷 氨 酰胺衍 生物 、ALK 抑制剂 、GSK‑3β抑制剂、GSK3α抑制剂、ALK‑2,3,6,AMPK抑制剂和TGF‑βR抑制剂。本发明还公开了一种由外周血单核细胞培养神经元细胞的方法,使用所述培养液,可以外周血单核细胞为原料定向分化培养得到神经元细胞,取材方便,且无数量限制,可避免道德争议。,下面是神经元细胞培养液及培养方法专利的具体信息内容。

1.一种基于外周血单核细胞的神经元细胞培养液,其特征在于,所述培养液由:体积比为1:0.8~1.2的DMEM/F12基础培养基和神经细胞培养基Neurobasal,以及神经生长因子、腺苷酸环化酶激活剂、血清替代物、L-抗坏血酸、L-谷酰胺衍生物、ALK抑制剂、GSK-3β抑制剂、GSK3α抑制剂、ALK-2,3,6,AMPK抑制剂、TGF-βR抑制剂和视黄酸组成,所述神经生长因子为Beta人类神经生长因子;所述腺苷酸环化酶激活剂为毛喉素;所述L-谷氨酰胺衍生物为GlutaMAX-I二肽;所述血清替代物为N2和/或B27;所述ALK抑制剂为LDK378和/或AZD3463;所述GSK-3β抑制剂为TWS119、CHIR-98014和/或CHIR-99021HCl;所述GSK3α抑制剂为SB415286;所述ALK-2,3,6,AMPK抑制剂为BML-275、BML-2752HCl和/或LDN-193189;所述TGF-βR抑制剂为EW-7197和/或SB-505124;
所述神经生长因子浓度为6~12μg/mL,所述腺苷酸环化酶激活剂浓度为2~4μmol/L,所述血清替代物浓度为2~4mmol/L,所述L-抗坏血酸浓度为0.08~0.12mmol/L,所述L-谷氨酰胺衍生物浓度为6~12mmol/L,所述ALK抑制剂浓度为0.16~0.22mmol/L,所述GSK-3β抑制剂浓度为0.58~0.63mmol/L,所述GSK-3α抑制剂浓度为0.48~0.60mmol/L,所述ALK-
2,3,6,AMPK抑制剂浓度为0.15~0.23mmol/L,所述TGF-βR抑制剂浓度为0.18~0.25mmol/L,所述视黄酸浓度范围为0.01~0.28mmol/L。
2.如权利要求1所述的培养液,其特征在于,所述DMEM/F12基础培养基和所述神经细胞培养基的体积比为1:1,所述神经生长因子浓度为10μg/mL,所述腺苷酸环化酶激活剂浓度为3μmol/L,所述血清替代物浓度为3mmol/L,所述L-抗坏血酸浓度为0.10mmol/L,所述L-谷氨酰胺衍生物浓度为10mmol/L,所述ALK抑制剂浓度为0.18mmol/L,所述GSK-3β抑制剂浓度为0.60mmol/L,所述GSK-3α抑制剂浓度为0.50mmol/L,所述ALK-2,3,6,AMPK抑制剂浓度为
0.20mmol/L,所述TGF-βR抑制剂浓度为0.22mmol/L。
3.如权利要求2所述的培养液,其特征在于,其还包括青霉素和/或链霉素,青霉素的浓度为30~200μg/mL,链霉素的浓度为50~300μg/mL。
4.如权利要求3所述的培养液,其特征在于,青霉素的浓度为80~120μg/mL,链霉素的浓度为100~250μg/mL。
5.如权利要求4所述的培养液,其特征在于,青霉素的浓度为110μg/mL,链霉素的浓度为150μg/mL。
6.如权利要求1所述的培养液,其特征在于,视黄酸浓度范围为0.08~0.15mmol/L。
7.如权利要求6所述的培养液,其特征在于,视黄酸浓度范围为0.12mmol/L。
8.如权利要求1~7任一项所述的培养液,其特征在于,其还包括5-氟-2’-脱尿苷、尿苷和阿糖胞苷,5-氟-2’-脱氧尿苷的浓度范围为5~20μg/mL,尿苷浓度范围为20~50μg/mL,阿糖胞苷浓度范围为1~8μg/mL。
9.如权利要求8所述的培养液,其特征在于,5-氟-2’-脱氧尿苷的浓度范围为10~18μg/mL,尿苷浓度范围为30~40μg/mL,阿糖胞苷浓度范围为2~6μg/mL。
10.如权利要求9所述的培养液,其特征在于,5-氟-2’-脱氧尿苷的浓度范围为15μg/mL,尿苷浓度范围为35μg/mL,阿糖胞苷浓度范围为3μg/mL。
11.一种由外周血单核细胞培养神经元细胞的方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)用权利要求1~7任一项所述的培养液对外周血单核细胞进行培养5~8天,然后用权利要求8所述的培养液培养36~60小时,移除未贴壁的细胞,再用权利要求1~7任一项所述的培养液培养2~6天得到原代培养物;
2)原代培养物用权利要求1~7任一项所述的培养液进行传代培养,培养15~28天即可得到神经元细胞。
12.如权利要求11所述的方法,其特征在于:
步骤1)具体为在35~39℃、2~8%条件下,用权利要求1~7任一项所述的培养液对外周血单核细胞进行培养5~8天,培养期间每2~4天更换一次培养液,每次只换一半,留一半原液;然后用权利要求8所述的培养液培养48小时,移除未贴壁的细胞;再用权利要求1~7任一项所述的培养液继续培养2~6天得到原代培养物,继续培养期间每1~3天更换一次培养液;
步骤2)具体为,将步骤1)得到的原代培养物消化下来,于35~39℃、2~8%CO2条件下用权利要求1~7任一项所述的培养液进行传代培养,培养15~28天得到神经元细胞,传代培养期间每1~3天更换一次培养液。
13.如权利要求12所述的方法,其特征在于:
步骤1)具体为在37℃、5%CO2条件下,用权利要求1~7任一项所述的培养液对外周血单核细胞进行培养5~8天,培养期间每3天更换一次培养液,每次只换一半,留一半原液;然后用权利要求8所述的培养液培养48小时,移除未贴壁的细胞;再用权利要求1~7任一项所述的培养液继续培养2~6天得到原代培养物,继续培养期间每2天更换一次培养液;
步骤2)具体为,将步骤1)得到的原代培养物消化下来,于37℃、5%CO2条件下用权利要求1~7任一项所述的培养液进行传代培养,培养15~28天得到神经元细胞,传代培养期间每2天更换一次培养液。
14.如权利要求11所述的培养方法,其特征在于,所述外周血单核细胞用Ficoll-Paque密度梯度离心法分离患者血样得到。

说明书全文

神经元细胞培养液及培养方法

技术领域

[0001] 本发明属于神经元细胞培养技术领域,具体涉及一种神经元细胞的培养液及培养方法。

背景技术

[0002] 神经系统疾病,特别是中枢神经系统退行性疾病是临床中的常见病和多发病,严重危害着人类的健康。世界卫生组织2007年2月发布的报告指出,全球超过10亿人承受着神经退行性疾病的痛苦,2005年全球有2400多万人患有阿尔茨海默病;其它中枢神经系统退行性疾病,如多发性硬化、亨廷顿氏症和帕金森氏综合症,也给患者带来极大的痛苦。
[0003] 已有研究表明,利用人神经元细胞可研究神经损伤的机理以及筛选干预神经功能的新药,还可以通过移植来修复受损神经。现有技术中,人神经元细胞的获得方法主要包括以下两种:
[0004] 一、由胚胎干细胞诱导分化。胚胎干细胞是取自人体胚胎,具有分化成各组织器官细胞能的一类细胞。胚胎干细胞经诱导分化可得到具有相应功能的神经元细胞,可用于药物筛选,疾病机制研究。但是由于受到伦理道德的限制,目前可应用的胚胎干细胞系有限,无法获得各种疾病表型的神经元细胞,限制了其在药物筛选和疾病机制研究方面的应用,而且由于这类神经元细胞来源于异体,往往具有免疫排斥反应,进一步限制了在临床细胞治疗中的应用。
[0005] 二、由诱导多功能干细胞诱导分化。诱导多功能干细胞技术是干细胞应用领域的一项新技术,于2007年诞生,该技术通过向体细胞(如皮肤细胞)中导入转录因子,将体细胞诱导成具有胚胎干细胞类似功能的诱导多功能干细胞,诱导多功能干细胞具有无限增殖能力,能够分化为各组织器官细胞。由于它来源于人体自身的体细胞,避免了伦理道德的限制和免疫排斥反应,而且具有无限增殖能力,在药物筛选、疾病机制研究和未来临床细胞治疗领域有较大的应用前景。但是诱导多功能干细胞制备周期长,一般需要4~8个月,而且得到诱导多功能干细胞后还需要1~2个月的时间进行分化才能得到神经元细胞,这使得神经元细胞的获得周期最短需要半年左右,周期过长必然使得制备成本较高。另外这种方法得到的细胞稳定性相对欠缺,具有致癌险。
[0006] 综上,由胚胎干细胞诱导分化受到伦理道德约束、获得的神经元细胞数量有限且具有免疫排斥反应,而由诱导多功能干细胞诱导分化的制备周期长成本较高,这些使得神经元细胞在疾病机制研究、药物筛选及临床细胞治疗中的应用受到较大限制。

发明内容

[0007] 因此,本发明针对现有技术中神经元细胞的来源以及在应用中受到限制的技术问题,目的在于提供一种无来源限制,可避免道德争议的基于外周血单核细胞(PBMC)培养神经元细胞的培养液。
[0008] 本发明的基于外周血单核细胞的神经元细胞培养液包括:体积比为1:0.8~1.2的DMEM/F12基础培养基和神经细胞培养基(Neurobasal),以及神经生长因子、腺苷酸环化酶激活剂、血清替代物、L-抗坏血酸、所述L-谷酰胺衍生物、ALK抑制剂、GSK-3β抑制剂、GSK3α抑制剂、ALK-2,3,6,AMPK抑制剂和TGF-βR抑制剂。
[0009] 所述培养液的各组分可协同诱导外周血单核细胞定向分化为神经元细胞。其中,DMEM/F12基础培养基即含有体积比为1:1的DMEM培养基和F12培养基。DMEM/F12基础培养基和神经细胞培养基均为市售产品。所述神经生长因子为Beta人类神经生长因子(英文名Beta-NGF human,氨基酸序列为SSSHPIFHRG EFSVCDSVSV WVGDKTTATD IKGKEVMVLG EVNINNSVFK QYFFETKCRD PNPVDSGCRG IDSKHWNSYC TTTHTFVKAL TMDGKQAAWR FIRIDTACVC VLSRKAVR,购自Sigma-Aldrich,货号SRP3018)是一些神经元存活、生长和分化所必需的营养因子。所述腺苷酸环化酶激活剂为毛喉素(英文名Forskolin,CAS号为66575-29-9),用于通透细胞,激活腺苷酸环化酶,从而升高细胞内的cAMP平。所述血清替代物可选用N2和/或B27,用于神经元细胞的原代细胞培养中有丝分裂后期神经元的生长和表达。L-抗坏血酸作为培养基中的生长因子。所述L-谷氨酰胺衍生物选用GlutaMAX-I二肽,作为培养细胞的能量来源、参与蛋白质的合成和核酸代谢。所述ALK抑制剂可选用LDK378(5-氯-N2-(2-异丙基-5-甲基-4-(哌啶-4-基)苯基)-N4-(2-(异丙基磺酰基)苯基)嘧啶-2,4-二胺,又称色瑞替尼,英文名Ceritinib,CAS号为1032900-25-6)和/或AZD3463(N-[4-(4-氨基-1-哌啶基)-2-甲氧基苯基]-5-氯-4-(1H-吲哚-3-基)-2-嘧啶胺,CAS号为1356962-20-3);所述GSK-3β抑制剂可选用TWS119(3-[[6-(3-氨基苯基)-7H-吡咯并[2,3-D]嘧啶-4-基]氧基]苯酚,CAS号为601514-19-6)、CHIR-98014(N6-[2-[[4-(2,4-二氯苯基)-5-(1H-咪唑-2-基)-2-嘧啶基]氨基]乙基]-3-硝基-2,6-二氨基吡啶,CAS号为556813-39-9)和/或CHIR-
99021HCl(6-[2-[4-(2,4-二氯苯基)-5-(4-甲基-1H-咪唑-2-基)嘧啶-2-基氨基]乙基氨基]吡啶-3-甲腈盐酸盐,CAS号为252917-06-9);所述GSK3α抑制剂可选用SB415286(3-[(3-氯-4-羟苯基)氨基]-4-(2-硝苯基)-1H-吡咯-2,5-二,CAS号为264218-23-7);所述ALK-
2,3,6,AMPK抑制剂可选用BML-275(6-[4-[2-(1-哌啶基)乙氧基]苯基]-3-(4-吡啶基)吡唑并[1,5-a]嘧啶,英文名为Dorsomorphin,CAS号为866405-64-3)、BML-275 2HCl和/或LDN-
193189(6-(4-(2-(哌啶-1-基)乙氧基)苯基)-3-(吡啶-4-基)吡唑并[1,5-a]嘧啶,CAS号为
1062368-24-4);所述TGF-βR抑制剂可选用EW-7197(N-(2-氟苯基)-5-(6-甲基-2-吡啶基)-
4-[1,2,4]三唑并[1,5-a]吡啶-6-基-1H-咪唑-2-甲胺,CAS号为1352608-82-2)和/或SB-
505124(2-[4-(1,3-苯并二氧杂环戊烷-5-基)-2-(1,1-二甲基乙基)-1H-咪唑-5-基]-6-甲基-吡啶,CAS号为694433-59-5)。
[0010] 所述神经生长因子浓度为5~15μg/mL,所述腺苷酸环化酶激活剂浓度为1~5μmol/L,所述血清替代物浓度为2~5mmol/L,所述L-抗坏血酸浓度为0.06~0.15mmol/L,所述L-谷氨酰胺衍生物浓度为5~15mmol/L,所述ALK抑制剂浓度为0.1~0.3mmol/L,所述GSK-3β抑制剂浓度为0.55~0.65mmol/L,所述GSK3α抑制剂浓度为0.45~0.64mmol/L,所述ALK-2,3,6,AMPK抑制剂浓度为0.11~0.25mmol/L,所述TGF-βR抑制剂浓度为0.16~0.28mmol/L。
[0011] 进一步的,DMEM/F12基础培养基和神经细胞培养基的体积比优选1:1,所述神经生长因子浓度优选6~12μg/mL更优选10μg/mL,所述腺苷酸环化酶激活剂浓度优选2~4μmol/L更优选3μmol/L,所述血清替代物浓度优选2~4mmol/L更优选3mmol/L,所述L-抗坏血酸浓度优选0.08~0.12mmol/L更优选0.10mmol/L,所述L-谷氨酰胺衍生物浓度优选6~12mmol/L更优选10mmol/L,所述ALK抑制剂浓度优选0.16~0.22mmol/L更优选0.18mmol/L,所述GSK-3β抑制剂浓度优选0.58~0.63mmol/L更优选0.60mmol/L,所述GSK-3α抑制剂浓度优选0.48~0.60mmol/L更优选0.50mmol/L,所述ALK-2,3,6,AMPK抑制剂浓度优选0.15~
0.23mmol/L更优选0.20mmol/L,所述TGF-βR抑制剂浓度优选0.18~0.25mmol/L更优选
0.22mmol/L。
[0012] 本发明的一较佳实施例中,其还包括青霉素和/或链霉素,青霉素的浓度为30~200μg/mL优选为80~120μg/mL更优选110μg/mL,链霉素的浓度为50~300μg/mL优选为100~250μg/mL更优选150μg/mL。
[0013] 本发明的一较佳实施例中,其还包括视黄酸,用于调控基因表达,进一步促进定向分化作用,视黄酸浓度范围为0.01~0.28mmol/L优选0.08~0.15mmol/L更优选0.12mmol/L。
[0014] 本发明的一较佳实施例中,为加速神经元的分化,所述培养液还包括5-氟-2’-脱氧尿苷、尿苷和阿糖胞苷,5-氟-2’-脱氧尿苷的浓度范围为5~20μg/mL优选10~18μg/mL更优选15μg/mL,尿苷浓度范围为20~50μg/mL优选30~40μg/mL更优选35μg/mL,阿糖胞苷浓度范围为1~8μg/mL优选2~6μg/mL更优选3μg/mL。
[0015] 本发明的另一目的在于提供一种由外周血单核细胞培养神经元细胞的方法,所述方法包括以下步骤:
[0016] 1)用权利要求1~6任一项所述的培养液对外周血单核细胞进行培养5~8天,然后用权利要求7所述的培养液培养36~60小时,移除未贴壁的细胞,再用权利要求1~6任一项所述的培养液培养2~6天得到原代培养物;
[0017] 2)原代培养物用权利要求1~6任一项所述的培养液进行传代培养,培养15~28天即可得到神经元细胞。
[0018] 本发明的一较佳实施例的所述方法中,步骤1)具体为,在35~39℃优选37℃、2~8%优选5%CO2条件下,用权利要求1~6任一项所述的培养液对外周血单核细胞进行培养5~8天,培养期间每2~4天优选3天更换一次培养液,每次只换一半,留一半原液;然后用权利要求7所述的培养液培养48小时,移除未贴壁的细胞;再用权利要求1~6任一项所述的培养液继续培养2~6天得到原代培养物,继续培养期间每1~3天优选2天更换一次培养液(全部更换);
[0019] 步骤2)具体为,将步骤1)得到的原代培养物消化下来,于35~39℃优选37℃、2~8%优选5%CO2条件下用权利要求1~6任一项所述的培养液进行传代培养,培养15~28天得到神经元细胞,传代培养期间每2天更换一次培养液(全部更换)。
[0020] 所述外周血单核细胞用Ficoll-Paque密度梯度离心法分离患者血样得到。
[0021] 本发明的积极进步效果在于:使用所述培养液,经所述培养方法,可将外周血单核细胞培养得到神经元细胞。一方面取材方便,所述外周血单核细胞可取自患者或健康人血液,且无数量限制,可避免道德争议;另一方面,与现有的动物模型相比,本发明培养得到的神经元细胞提供了最接近人体的体外细胞模型,降低了或无免疫排斥反应,更有利于疾病机制研究、药物筛选及临床细胞治疗。附图说明
[0022] 图1为外周血单核细胞的显微镜照片;
[0023] 图2为实施例1培养得到的神经元细胞的显微镜照片;
[0024] 图3为实施例1培养得到的神经元细胞的免疫荧光的显微镜照片;
[0025] 图4为实施例2培养得到的神经元细胞的免疫荧光的显微镜照片;
[0026] 图5为实施例3培养得到的神经元细胞的免疫荧光的显微镜照片;
[0027] 图6为实施例4培养得到的神经元细胞的免疫荧光的显微镜照片。

具体实施方式

[0028] 下面将结合具体实施例对本发明作进一步的说明。
[0029] 实施例1~4利用外周血单核细胞培养成神经元细胞
[0030] 一、培养液A和培养液B。
[0031] 实施例1~4的培养液A包括由DMEM/F12基础培养基和神经细胞培养基(Neurobasal)混合而成的混合培养基,以及添加在混合培养基中的添加组分。各实施例的DMEM/F12基础培养基和神经细胞培养基混合的体积比例、添加组分及其含量如表1所示。
[0032] 表1培养液A的组分及含量
[0033]
[0034]
[0035] 实施例1~4的培养液B分别在对应的培养液A的基础上另外添加有表2所示的用于加快神经元分化的组分。
[0036] 表2培养液B的加速分化的组分及含量
[0037]
[0038] 备注:表1和表2所述各物质均为市场上购得
[0039] 二、培养过程
[0040] 实施例1~4分别使用表1所示的对应的培养液A和表2所示的对应的培养液B按照以下步骤培养神经元细胞。
[0041] 1、外周血单核细胞的分离(Ficoll-Paque密度梯度离心法)
[0042] 通过SepMateTM管中间小孔向管内加入3.5mL Ficoll-Paque(相对密度1.077),液面超过管子内置管,保持SepMateTM管直立放置于离心管架子上。
[0043] 取5mL DPBS+2%FBS至于15mL离心管中,然后加入5mL外周血血样,盖好后轻轻地来回颠倒4次混匀,混匀后用移液管取10mL沿着SepMateTM管侧壁缓慢地加在Ficoll-Paque上,1200×g离心10分钟。
[0044] 外周血单核细胞位于SepMateTM管最上层,将最上层细胞悬液缓慢倒入新的15mL离心管,向离心管中加入5mL DPBS+2%FBS,300×g离心8分钟。弃去上清,轻弹离心管底部,再加入5mL DPBS+2%FBS,300×g离心5分钟。弃去上清液,轻弹离心管底部用剩余未吸走的DPBS+2%FBS重悬细胞得到外周血单核细胞,外周血单核细胞的显微镜照片如图1所示。
[0045] 2、神经元细胞的培养
[0046] 将得到的外周血单核细胞平均分到一12孔板中,并加入培养液A(1mL/孔)(若培养液存放于4℃箱中,需提前取出室温预热20分钟),于37℃,5%CO2的孵箱里培养n1天,期间每3天更换一次培养液,每孔每次只更换一般,留一半原液。
[0047] 使用培养液B替换培养液A培养48小时,加快神经元的分化。
[0048] 然后将12孔板置于无菌操作台中,轻轻晃动12孔板,使用吸引吸去培养液,用2mL移液管将死细胞以及未贴壁的细胞移除。
[0049] 用5mL移液管沿着孔壁缓慢加入新鲜的培养液A(1mL/孔),继续放入孵箱中培养n2天,培养液每2天更换一次。
[0050] 3、神经元细胞的传代培养
[0051] 铺好4块传代用的新的4孔板,加入基质胶(BD MatrigelTM hESC-qualified Matrix)(0.25mL/孔),置于37℃孵箱中孵育1个小时备用。
[0052] 取出孵箱中原代培养用的12孔板,轻轻摇晃板,吸去培养液后,每孔加入1mL的DPBS(pH7.4)洗一次,然后每孔加入0.5mL的EDTA,37℃孵箱内消化n3分钟后在倒置显微镜下观察,细胞群中间出现小孔即可停止消化。轻轻晃动12孔板,吸去消化液。然后加入新鲜的培养液A(1mL/孔),用1mL的移液枪尽可能的将细胞从板上吹下来(不用反复吹打,避免传代后细胞团过小,影响细胞贴壁生长)。
[0053] 吸取孔中培养液分配于铺好加有基质胶的4孔板,每孔的培养液分别平均分配至4个含有基质胶的孔中,即传代比例为1:4。分配好后左右摇板各6下使板中细胞分布均匀,然后置于37℃,5%CO2的孵箱里培养,培养n4天得到神经元细胞。
[0054] 其中实施例1~4的培养过程中的时间参数n1~n4如表2所示
[0055] 表2各实施例的时间参数
[0056]
[0057] 效果实施例
[0058] 神经元细胞特征性蛋白的免疫荧光鉴定
[0059] 分别对实施例1~4所得的细胞按照以下步骤进行鉴定。
[0060] 1)固定细胞
[0061] 取培养完成的4孔板,吸去培养液后,沿4孔板板壁缓缓加入1×PBS(pH7.4,下同,0.5mL/孔),洗2次;然后沿板壁缓慢加入4%的多聚甲(4%PFA)(0.5mL/孔),室温放置15分钟固定细胞,轻柔地吸去4%PFA,加入1×PBS洗3次(0.5mL/孔/次)。
[0062] 2)一抗孵育
[0063] 加入0.3%Triton×100(0.25mL/孔),于37℃孵育30分钟;然后加入5%的BSA(0.25mL/孔)封闭,于37℃孵育30分钟;然后直接在封闭液中加入一抗,于37℃孵育1小时,加入1×PBS洗3次(0.5mL/孔/次)。
[0064] 其中,一抗包括胆乙酰转移酶(CHAT)抗体、微管蛋白(TUJ)抗体、双皮质素(DCX)抗体、少突胶质细胞转录因子-2(OLIG2)抗体、酪氨酸羟化酶(TH)抗体和微管相关蛋白2(MAP2)抗体,使用上述每种一抗分别进行孵育,加入后稀释比例分别为1:100、1:1000、1:100、1:100、1:100和1:500。
[0065] 3)二抗孵育
[0066] 向一抗孵育后的4孔板中加入对应的用1%BSA稀释(稀释比例1:200)后的二抗(0.25mL/孔),37℃避光孵育30分钟后吸去二抗,加入1×PBS洗3次(0.5mL/孔/次),每次5分钟;然后加入用1×PBS配好的终浓度为1μg/mL的DAPI(0.25mL/孔),染色30s,吸去DAPI,加入1×PBS洗2次(0.5mL/孔/次);最后加入1×PBS(0.5mL/孔),显微镜下观察并拍照处理。
[0067] 其中的二抗包括驴抗绵羊二抗、驴抗兔子二抗和驴抗老鼠二抗,其中TH、OLIG2、DCX和MAP2使用驴抗兔子二抗,TUJ使用驴抗老鼠二抗,CHAT使用驴抗绵羊二抗(二抗均购自life technologies)。
[0068] 鉴定结果如图3~6所示,图3~6中A~F分别显示实施例1~4培养得到的神经元细胞的神经特征性蛋白TUJ、CHAT、TH、OLIG2、DCX和MAP2的免疫荧光染色情况,其中CHAT是胆碱能神经元细胞的特征蛋白,OLIG2为少突胶质细胞的特征蛋白,TH是多巴胺能神经元细胞的特征蛋白,DCX是各类神经元中广泛存在的特征蛋白,MAP2和TUJ是各类神经元中都存在的微管、微丝等骨架蛋白。由此可知以外周血血样为原料分离外周血单核细胞,再使用本发明的培养液和培养方法培养可得到多种神经元细胞。
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