在再生医学发展蓬勃的今日，各种关于寻找器官特异干细胞或可自我更生 (self-renewing)细胞的研究不断。所述可自我更生细胞中最常被研究的是造血 干细胞，因为从癌症、新陈代谢疾病到免疫不全，造血干细胞皆是较好的治疗 选择。
“造血”是指血液细胞生成的过程，可通过位于骨髓中的造血干细胞的分 裂而取代红血球及白血球。造血干细胞(HSCs)是一群具有自我更新能力与分 化为所有血球或免疫细胞能力的细胞。然而，控制造血干细胞自我更新与分化 的基因机转多半仍属未知。
目前，自成人骨髓、动员后周边血液以及脐带血移植的人类造血干细胞， 已在临床上用于治疗血癌(白血病与淋巴瘤)，以及用于帮助免疫系统由非血癌 的高剂量化疗复原。然而有效的移植需要大量的不同来源的造血干细胞，并且 可能需要进行干细胞增生(expansion)。
造血干细胞可来自骨髓、周边血液以及脐带血。取出骨髓细胞需要进行手 术以及相当痛苦的步骤，因而成为较差的手段。使用周边血液细胞也有缺陷， 因为很难由造血机能受损的罹病或化疗患者取得合适与足量的造血干细胞。脐 带血相对容易取得并且造血干细胞的质量也较好，然而此法所能取得的造血干 细胞数量仍有限。每次取得的细胞数量足够用于小孩，但要用于成人就可能不 足。为解决上述问题，就必须干扰干细胞自我更生过程来加速造血干细胞体外 增生。
新近的证据指出转录调控因子在调控干细胞的基因表现、与干细胞的发育 过程扮演重要角色(Orkin、S.H.Nat.Rev.Genet 1，57-64、2000)。转录调 控因子可通过与目标基因的结合与否或是本身浓度来构成复杂的细胞生理调控 机制。一群称为DNA binding homebox(HOX)的转录因子被发现在胚胎发育扮演 重要角色，并且在近年来发现HOX转录因子家族在造血干细胞发育也扮演了重要 角色(Buske、C.et.al.J.Hematol.71，301-308、2000)。蒙特娄大学 (University of Montreal)的盖·萨瓦格(Guy Sauvageau)博士曾经探讨骨髓中 造血干细胞的HOX转录因子调控造血干细胞更新的现象，它的研究显示同位序列 基因(homeobox gene)HOXB4对于造血干细胞自我更新的调控十分重要，可维持 造血干细胞在骨髓中的群集大小。最早证明HOX基因会在血球细胞表现，是利用 人类及老鼠的细胞株(cell line)而证实的。有些HOX基因在不同的细胞形态有 明显广泛的表现，有些HOX基因则只活化表现于特定细胞中。例如：人类的HOXB 串群中的八个成员会在红血球细胞发育之初表现，有些HOXB基因包括HOXB4及 HOXB7也会在T细胞及B细胞表现。Sauvageau等人证实有九个HOXA基因、八个HOXB 基因及四个HOXC基因会在CD34+骨髓细胞内表现，其中又以HOXB2、HOXB9及HOXA10 在CD34+的细胞族群内的红血球原始细胞表现最多。另外，实验结果也检测出在 CD34-的细胞群中，没有HOX基因表现。因此，“HOXB4”蛋白已最常被用于做为 活体外造血干细胞(HSC)增生之有效刺激剂。近来已证实人类，“HOXB4”基因可 以病毒或重组蛋白质形式来有效增生造血干细胞。TAT-HOXB4H重组蛋白质，在 实验室等级，已被用于增生干细胞而不会有反转录病毒插入之风险或与骨髓基 质细胞共培养之风险(参见Krosl、J.et al.、Nature Medicine 9、1428-1432、 2003)。因此，“HOXB4”蛋白已常用于做为促进活体外造血干细胞增生的刺激剂。
最近已有证据指出在HOXB4的N端加上一TAT蛋白质序列后，外源的HOXB4即 可被运送至细胞内。此TAT序列系可导引HOXB4由细胞外至细胞内的运输。一旦 进入细胞质，HOXB4可藉由护卫蛋白(Chaperon)HSP90而重新折迭成其原始的 构形。TAT-HOXB4能够促进造血干细胞增生达2-6倍(Amsellem、S.等人，Nature Medicine 9、1423-1427，2003；及Krosl、J.等人，Nature Medicine 9、1428-1432， 2003)。然而，该TAT-HOXB4重组蛋白质自大肠杆菌宿主的纯化回收产率偏低， 且多为不可溶形式。
为了增加该TAT-HOXB4重组蛋白质的产率，已发展出C-端另具有一段6个组 胺酸残基(His-6)标记的TAT-HOXB4H重组蛋白质制造方法，其产率较原始蛋白质 的纯化效率高出3-5倍。此制造方法已详细描述于PCT/CN2006/000646。
上述TAT-HOXB4H重组蛋白质可用于人类周边血液或脐带血干细胞增生，并 且所增生的干细胞仍保有其多能性(pluripot ency)。此外，将上述TAT-HOXB4H 重组蛋白质处理过的干细胞加入在非肥胖型糖尿病合并重度联合免疫缺陷小鼠 (NOD/SCID)的骨髓内之后，可以在其周边白血球中发现人类白血球，由此可知 小鼠免疫与造血机能已成功重建。
然而，TAT-HOXB4H重组蛋白质从未被用于做为体内造血的刺激剂，特别是， 从未被用于增进造血机能重建、扩增、骨髓重生(re-population)以及增加周边 循环干细胞的数目，特别是在化疗或放射线治疗之后。Krosl等人(2003)以及 Amsellem等人(2003)无法获得扩增造血干细胞临床研究所需的大量高纯度且高 度安定的HOXB4蛋白质。
使用现有技术由一公升培养液纯化而得的TAT-HOXB4H重组蛋白质总量约为 1-2毫克，产率较低。使用现有技术方法表现TAT-HOXB4H蛋白质的pTAT-HA-HOXB4 质体，是加拿大蒙特娄大学(University of Montreal)的盖·萨瓦格(Guy Sauvageau)博士所赠，Krosl等人(2003)曾报告说，在血清培养4小时后，其纯 化的TAT-HOXB4H蛋白质会丧失大部分。

本发明基于后述研究结果：当TAT-HOXB4H重组蛋白质给予一有需要的使用 者之后，其可增加骨髓内以及周边血液内的造血干细胞的数目。
本发明一方面提供了一种TAT-HOXB4H蛋白质制造方法。该方法包含：
(a)提供一宿主细胞，其包含一具有上述蛋白质编码的载体；
(b)在该宿主细胞内表现该蛋白质；
(c)收取该表现蛋白质的一不纯溶液；
(d)以下列步骤由该溶液纯化该蛋白质：(i)将该溶液通入一HisTrap管柱； (ii)冲洗该HisTrap管柱；(iii)将该部分纯化的蛋白质由该HisTrap管柱溶离 出，而形成一部分纯化的蛋白质溶液；(iv)将该部分纯化的蛋白质溶液通入一 MonoSP管柱；(v)冲洗该MonoSP管柱；(vi)将纯化的蛋白质，呈变性形式，由该 MonoSP管柱溶离出；
(e)利用疏水性化合物将溶离出的变性蛋白质以下列步骤再折迭：(i)将该 溶离出的变性蛋白质与一疏水性化合物溶液混合形成一蛋白质与疏水性化合物 溶液；(ii)将该蛋白质与疏水性化合物溶液去盐而得一蛋白质与疏水性化合物 去盐溶液；(iii)利用超过滤制程将该疏水性化合物由该蛋白质与疏水性化合物 去盐溶液中移除。
本发明另一方面提供了一种促进造血干细胞由骨髓动员至周边血液的方 法。该方法包含：
a)给予一有需要的使用者一有效量的以上述方法制造的TAT-HOXB4H重组蛋 白质；
b)允许该TAT-HOXB4H重组蛋白质增加该使用者骨髓内造血干细胞的绝对数 目，由此促进造血干细胞动员至该使用者的周边血液。
本发明再一方面向提供了一种用以改善造血干细胞移植患者、放射线治疗 患者或化疗患者的恢复时间的方法。该方法包含：
a)给予一有需要的使用者一有效量的以上述方法制造的TAT-HOXB4H重组蛋 白质；
b)允许该TAT-HOXB4H重组蛋白质增加该使用者骨髓内造血干细胞的绝对数 目。
本发明再一方面提供了一种用以促进造血干细胞由一有需要的使用者的骨 髓动员至周边血液的医疗组成物。本发明的医疗组成物包含一有效量的以上述 方法制造的TAT-HOXB4H重组蛋白质，其足以增加该使用者骨髓内造血干细胞的 绝对数目，由此促进造血干细胞动员至该使用者的周边血液。
本发明所述医疗组成物可给予进行自体造血干细胞移植的患者，用以改善 其造血干细胞移植后的恢复时间。
本发明所述医疗组成物，可作为颗粒球细胞生长因子(G-CSF)的替代物，给 予G-CSF不敏感患者，用以动员造血干细胞至周边血液。
本发明所述医疗组成物可给予造血干细胞捐赠者，由此可以由捐赠者之外 围血液以较不具侵略性的方式取得足量的造血干细胞以供移植，而不须由其骨 髓取得。
本发明再一方面提供了治疗先天性造血干细胞缺乏而造成的疾病，其通过 全身性给药方式，给予上述疾病患者一有效量的以上述方法制造的TAT-HOXB4H 重组蛋白质或其医疗组成物。所给予的TAT-HOXB4H重组蛋白质会增加该使用者 骨髓内造血干细胞的绝对数目。
本发明再一方面提供了一种用以改善造血干细胞移植患者的恢复时间的方 法，其通过全身性给药方式，给予一有需要的使用者一有效量的以上述方法制 造的TAT-HOXB4H重组蛋白质或其医疗组成物。
本发明再一方面提供了一种用以改善放射线治疗患者或化疗患者的造血干 细胞回复的方法，其通过全身性给药方式，给予一有需要的使用者一有效量的 以上述方法制造的TAT-HOXB4H重组蛋白质或其医疗组成物。
附图说明
图1为本发明中造血干细胞(HSC)从体内扩增动员至外围血液(PB)的示意 图；
图2为本发明中pTAT-HOXB4H的选殖与构筑在修改过的pET21b质体内的示意 图；
图3为本发明中pTAT-HOXB4H的DNA序列图；(pTAT-HOXB4HN-端及C-端额外的 六个组胺酸残基加底线标示，并且标上TAT)
图4为本发明中pTAT-HOXB4H的蛋白质序列图；
图5为本发明中以10％SDS-polyacrylamide凝胶(1.5mm)证明TAT-HOXB4H 蛋白质的纯化，其以coomassie blue染色分析图示pTAT-HOXB4H的蛋白质序列；
其中：M：分子量标记(M)，0.3μg；
lane 1：来自未诱导BL21(DE 3)pLysS TAT-HOXB4H蛋白质表现细胞的细胞 溶解产物，1μg蛋白质；
lane 2：来自诱导后BL21(DE3)pLysS TAT-HOXB4H蛋白质表现细胞的细胞 溶解产物，1μg蛋白质；
lane 3：纯化的TAT-HOXB4H，0.7μg蛋白质；
lane 4：纯化的TAT-HOXB4(0.2μg蛋白质)；用以表现TAT-HOXB4蛋白质 (laane 5)的pTAT-HA-HOXB4质体，是加拿大蒙特娄大学(University of Montreal) 的盖·萨瓦格(Guy Sauvageau)博士所赠。
lane 3及lane 4是加入相同体积的由MonoSP管柱收集的流份(fraction)。
图6为本发明中以SDS-polyacrylamide凝胶分析纯化后TAT-HOXB4H蛋白质 的安定性图；(其储存在PBS，4℃，0小时(A)与16小时(B)，其中：M代表分子 量标记，0代表在4℃0小时，16代表在4℃16小时)
图7为本发明中以SDS-polyacrylamide凝胶以及coomassie染色分析 TAT-HOXB4H蛋白质储存在-4℃以及-20℃，PBS以及IMDM缓冲液的安定性图； (箭头指示TAT-HOXB4H蛋白质band)
图8A为本发明中以流式细胞仪分析G-CSF对于小鼠骨髓中CD34+干细胞数目 的刺激效果图；
图8B为本发明中以流式细胞仪分析PBS对于小鼠骨髓中CD34+干细胞数目的 刺激效果图；
图8C为本发明中以流式细胞仪分析TAT-HOXB4H蛋白质对于小鼠骨髓中CD34+ 干细胞数目的刺激效果图；
图9A为本发明中以流式细胞仪分析G-CSF对于恒河猴骨髓中CD34+干细胞数 目的刺激效果图；。
图9B为本发明中以流式细胞仪分析TAT-HOXB4H蛋白质加上G-CSF对于恒河 猴骨髓中CD34+干细胞数目的刺激效果图；
图9C为本发明中以流式细胞仪分析TAT-HOXB4H蛋白质对于恒河猴骨髓中 CD34+干细胞数目的刺激效果图；
图9D为本发明中以流式细胞仪分析PBS对于恒河猴骨髓中CD34+干细胞数目 的刺激效果图；
图10为本发明中TAT-HOXB4H蛋白质对于NOD-SCID小鼠的造血回复影响图；
图11为本发明中TAT-HOXB4H蛋白质对于接受Cisplatin化疗后Balb/c小鼠 的造血回复影响图。

下面结合附图和具体实施例对本发明的实施例作进一步的详细说明。
I.TAT-HOXB4H蛋白质
本发明由一公升培养液纯化而得的TAT-HOXB4H重组蛋白质总量约为6-10毫 克，而本发明的TAT-HOXB4H蛋白质纯化方法具有体内给予蛋白质所需提升的产 率。本发明的TAT-HOXB4H蛋白质，即使在血清培养4星期后，仍显出明显较佳的 安定性，此处将TAT-HOXB4H蛋白质用于临床研究的关键。
本发明所提供的TAT-HOXB4H蛋白质的制造方法，具有能够提高产率以及安 定性的优点，使得上述蛋白质可用于体内给药。此TAT-HOXB4H蛋白质为包含三 个基因片段(element)(TAT、HOXB4以及组胺酸标记)的构体(construct)。HOXB4 是转录调控因子HOX家族的一员，其可促进造血干细胞增生。TAT使得HOXB4部分 得以被输送至细胞核内。组胺酸标记可使重组表现源的初始纯化产率增加，本 发明的制造方法可进一步增加蛋白质产率。pTAT-HOXB4H的构筑如图2所示，DNA 序列系如图3所示。TAT-HOXB4H重组蛋白质系指C端含有六个组胺酸残基 (residue)标记(参见图4)的TAT-HOXB4融合蛋白质。
除非另外指明，蛋白质的氨基酸序列(或称“初级结构”或“初级序列”) 是由氨基端至羧基端。在非生物系统(例如使用固态合成者)，蛋白质(包含双 硫(半胱氨酸)键位置)的初级结构可由使用者自订。
“删除(deletion)”是指氨基酸(或核苷酸)序列由于缺失一个或一个以 上的氨基酸残基(或核苷酸)所造成的改变。“插入(insertion)或增加”是 指氨基酸(或核苷酸)序列的改变造成在一分子或其表现物，相较于一参照序 列(例如自然存在分子所发现的序列)，增加一个或一个以上的氨基酸残基(或 核苷酸)。“取代”是指一个或一个以上的氨基酸(或核苷酸)被不同的氨基酸 (或核苷酸)取代。
与本发明序列相似或同源(例如序列有70％相同)的序列也是本发明的一部 分。在某些实施例中，序列相同度可以是90％、、91％、92％、93％、94％、95％、96％、 97％、98％、99％或更高。此外，实质相同也存在于当核酸片段可以与其互补股 杂交(例如在高度严格的条件下)时。核酸可出现在全细胞、细胞溶解物或呈 半纯化或纯化形式。
两序列间“同源性”或“序列相同性”(两者在此处可交换使用)的计算 方法如下所示。先将序列以最适合比较的方式对齐(例如可在第一或第二氨基 酸(或核酸)序列加上缺口(gap)以最适合比较，并且比较时可去掉不同源的 片段)。在本发明的一个优选实施例中，参照序列用于对齐比较的长度可以是参 照序列长度的至少30％、较佳至少40％、更佳至少50％、更佳至少60％、更佳至少 70％、80％、90％、100％。然后比较对应位置上的氨基酸残基(或核苷酸)。当第 一序列以及第二序列相对应位置相同的氨基酸残基(或核苷酸)时，则在该位 置相同(在此氨基酸(或核酸)“相同”指等同于氨基酸(或核酸)“同源”)。 两序列之间的相同度百分比指两序列间共同拥有相同位置的数目的函数，其需 考虑为了最佳化对齐所加入的缺口的数目与每一缺口的长度。
两序列之间的序列比较与相同百分比可以利用一数学算法达成。在本发明 的一个优选实施利中，两氨基酸序列之间的相同百分比可以利用已并入GCG软件 包(http://www.gcg.com)GAP程序的Needleman and Wunsch(1970)(J.Mol.Biol. 48：444-453)算法决定，使用Blossum 62 matrix或PAM250 matrix以及16、14、 12、10、8、6或4的缺口加权与1、2、3、4、5或6的长度加权。在本发明的另一 个优选实施利中，两氨基酸序列之间的相同百分比可以利用GCG软件包 (http://www.gcg.com)决定，使用NWSgapdna.CMP matrix以及40、50、60、 70或80的缺口加权与1、2、3、4、5或6的长度加权。一组优选的参数组(当不 确定哪些参数可用以决定一分子是否为本发明相同或同源的序列时，可使用此 组参数)为，使用Blossum 62 scoring matrix以及12的缺口罚分(penalty)、 4的缺口延伸罚分与5的框架位移(frame shift)缺口罚分。两氨基酸(或核苷 酸)序列之间的相同百分比也可以利用已并入ALIGN程序(2.0版)的E.Meyers and W.Miller((1989)CABIOS、4：11-17)算法决定，使用PAM120 weight residue table以及12的缺口长度罚分与4的缺口罚分。
II.TAT-HOXB4H重组蛋白质制造方法
A.选殖与表现
用于在各种宿主细胞中选殖与表现蛋白质的系统，在本领域中已经广为人 知。适用于制造蛋白质的细胞，例如：Fernandez et al.(1999)Gene Expression Systems。简而言之，适合的宿主细胞包含哺乳动物细胞、昆虫细胞、植物细胞、 酵母细胞或原核细胞(例如E.coli)。本领域中用于异源蛋白质表现的哺乳动 物细胞，包含淋巴细胞株(例如NSO)、HEK293 cells、中国仓鼠卵巢细胞 (CHO)、COS cells、HeLa cells、幼仓鼠肾细胞、卵母细胞以及来自基因转殖 动物的细胞，例如：乳腺上皮细胞。合适的载体可以构筑成含有适当的调节序 列，包含启动子序列、基因终止序列、多聚腺苷化序列、增强子序列、标记基 因以及其它序列。载体可含有质体或病毒骨架。细节参见Sambrook et al.： Molecular Cloning：A Laboratory Manual、2nd ed.，Cold Spring Harbor Laboratory Press(1989)。许多载体相关技术，包含操作、制备、形成突变、 序列解读以及DNA转染(transfection)描述于Current Protocols in Molecular Biology，Second Edition，Ausubel et al.eds.，John Wiley & Sons(1992)。
本发明还提供了一种将核苷酸送入宿主细胞的方法。对于原核细胞，适合 的转染技术包含磷酸钙、DEAE-Dextran、电穿孔、脂小体中介转染以及利用反 转录病毒或其它病毒，例如：牛痘病毒(vaccinia)或杆状病毒(baculovirus)。 对于细菌细胞，适合的技术包含氯化钙转化(transformation)、电穿孔以及利 用脂小体中介转染以及利用噬菌体转染。DNA送入之后，可以接着以选择方法(例 如药物抵抗)来选择含有核苷酸的细胞。
B.纯化与在再折迭
TAT-HOXB4H蛋白质可以利用本领域任何已知的适当手段由重组宿主细胞单 离。例如：当蛋白质可被分泌时，其可以由细胞上清液中分离；或者蛋白质可 由细胞溶解产物中分离。
TAT-HOXB4H蛋白质可以利用层析法纯化，其包含：(a)将细胞溶解产物或细 胞上清液(假如蛋白质可被分泌)通入一HisTrap管柱；(b)以一缓冲溶液冲洗 该HisTrap管柱；(c)将该部分纯化的蛋白质由该HisTrap管柱溶离出；(d)将由 HisTrap管柱收到的部分纯化的蛋白质通入一MonoSP管柱；(e)以一缓冲溶液冲 洗该MonoSP管柱；(f)将纯化的蛋白质由MonoSP管柱溶离出。
细胞溶解产物或细胞上清液(假如蛋白质可被分泌)可以在4℃下以20,000 xg离心30分钟使其澄清。将上清液调整至10mM咪唑并加入HisTrap螯合管柱 (Amersham Pharmacia)。以8M尿素，20mM HEPES，0.5mM DTT，100mM NaCl pH8.0 缓冲溶液以及10mM咪唑冲洗管柱，以移除未结合蛋白质。部分纯化的蛋白质可 利用高浓度的咪唑以及盐由该HisTrap管柱溶离。
进一步纯化指将由HisTrap管柱收到的部分纯化的蛋白质通入MonoSP管柱 (Amersham Pharmacia)。以4M尿素，20mM HEPES，50mM NaCl pH6.5缓冲溶液一 缓冲溶液冲洗管柱，以移除未结合蛋白质。结合的TAT-HOXB4H可利用高浓度的 盐溶离。此纯化步骤所得的TAT-HOXB4H蛋白质系呈变性形式。
接着，利用疏水性化合物将由HisTrap管柱溶离的呈变性的TAT-HOXB4H蛋白 质以下列步骤再折迭：(i)将该溶离出的变性蛋白质与一疏水性化合物溶液混合 形成一蛋白质与疏水性化合物溶液；(ii)将该蛋白质与疏水性化合物溶液去盐 而得一蛋白质与疏水性化合物去盐溶液；(iii)利用超过滤制程将该疏水性化合 物由该蛋白质与疏水性化合物去盐溶液中移除。
本发明中，“疏水性化合物”是指任何可以在变性去盐步骤中，保护蛋白质 使其不产生不溶性沈积的疏水性化合物。适用于本发明的疏水性化合物系描述 于Oganesyan et al.、Pharmagenomics(2004)71、22-26。合适的疏水性化合 物包括Triton X-100、tween-20或多苯环化合物。该超过滤制程或缓冲溶液转 换可藉由蛋白浓缩管柱(centricon tube)或蛋白超滤膜(stir cell)进行。 该超过滤制程或缓冲溶液转换的条件视蛋白质的种类而定。
在本发明的一个实施例中，在含有HOXB4H蛋白质的去盐溶液中的疏水性化 合物系藉由5-10次的缓冲溶液转换(每次以1000-2500xg离心10分钟)来移 除，该缓冲溶液转换系以由低至高浓度的大分子疏水性物质(例如环糊精 (cyclodextrin))溶液进行，藉此使变性的HOXB4H蛋白质再折迭恢复成天然形 式(native form)。
在本发明又一实施例中，纯化的TAT-HOXB4H蛋白质可储存在IMDM(HyClone) 培养基(储存缓冲溶液1)中，4℃或-20℃。
在本发明又一实施例中，纯化的TAT-HOXB4H蛋白质可储存在DMEM(HyClone) 培养基(储存缓冲溶液2)中，4℃或-20℃。
在本发明又一实施例中，TAT-HOXB4H蛋白质C端的组胺酸标记可以在进行体 内给药的前移除。
在本发明又一实施例中，TAT-HOXB4H蛋白质N端的组胺酸标记可以在进行体 内给药的前移除。
在本发明又一实施例中，TAT-HOXB4H蛋白质N端的及C端的组胺酸标记可以 在进行体内给药的前移除。
C.制备医疗组成物
当与药学上可接受的载剂结合时，TAT-HOXB4H可作为医疗组成物使用。除 了TAT-HOXB4H蛋白质与载剂之外，此医疗组成物可包含各式各样的稀释剂、填 充剂、盐类、缓冲剂、安定剂、助溶剂以及本领域中其它已知的材料。“药学上 可接受”是指不会干扰活性剂生物活性的有效性的无毒材料。载剂的特性视给 药途径而定。
由于剂量均一以及服用方便，将组成物配方成剂量单元形式系较有利的。 剂量单元形式在此处指，用于被治疗对象单元剂量的物理上可分开的单元。每 一单元含有一预先设定量的活性剂，用以结合所要的医药载体，产生所要的治 疗效果。本发明剂量单元形式的规格系视活性剂的独特性质、所要达成的特定 治疗效果而定。
典型的给药路径，包含口服、外用、非肠道(例如舌下或口含)、舌下、直 肠、阴道以及鼻内。“非肠道(parenteral)”在此处包含皮下的(subcutaneous)、 皮内的(intracutaneous)、静脉内的(intravenous)、肌肉注射 (intramuscular)、胸骨内的(intrasternal)、阴茎海绵体内注射、鞘内的 (intrathecal)、耳道内(intrameata)、尿道内(intraurethral)注射以及任何 适当的注入技术。医疗组成物指配方成容许其所含有的活性剂在给予患者时具 有生物可利用性。医疗组成物可以一个或一个以上的剂量单元给予患者，例如 一个锭剂可以是单一剂量单元，而以喷雾剂形式的容器可含有复数个剂量单元。
当以口服给予治疗有效量的TAT-HOXB4H蛋白质时，结合剂可以是以锭剂、 胶囊、药粉、溶液或酏剂(elixir)的形式。当以锭剂形式给药时，本发明的医 疗组成物可另包含固体载剂例如明胶，或佐剂。锭剂、胶囊、药粉可含有5％至 95％的结合剂(binding agent)，优选为含有25％至90％的结合剂。也可加入显色 剂或调味剂。可使用膜衣层。当以液体形式给药时，可加入液体载剂例如水、 石油(petroleum)、动物油或植物油(例如花生油、矿物油、大豆油、芝麻油) 或合成油。以液体形式的医疗组成物可另包含生理食盐水、葡萄糖或其它醣类 溶液或二醇例如乙二醇、丙二醇或聚乙二醇。当以液体形式给药，医疗组成物 可含有0.5％至90％的结合剂，优选为含有1％至50％的结合剂。
当以静脉、皮肤或皮下注射给予一治疗有效量的TAT-HOXB4H蛋白质时，可 以是无致热原的非肠道(parenterally)可接受的水溶液的形式。制备具有应有 的pH值、等张性、安定性的非肠道可接受蛋白质溶液，属于该技术领域的公知 技术。在某些实施例中，用于静脉、皮肤或皮下注射的医疗组成物可包含等张 载体，例如：氯化钠注射液、林格氏液、葡萄糖注射液、葡萄糖及氯化钠注射 液、乳酸林格注射液或其它本领域公知的载体。本发明的医疗组成物还可包含 安定剂、防腐剂、缓冲剂、抗氧化剂或其它本领域公知的添加剂。
在进行本发明治疗方法或使用本发明时，先将治疗有效量的TAT-HOXB4H蛋 白质给予使用者，例如一哺乳类动物，当然，也可以是人类。“治疗有效量”在 此处指该医疗组成物中活性剂的总量足以产生积极的效果，例如症状减轻、治 愈或增加治愈率。当用在单一活性剂且单独给药时，“治疗有效量”单指该活性 剂。当用于一组合时，“治疗有效量”指所有活性剂足以产生治疗效果的总合量， 不论该些活性剂指系列性组合给药或同时组合给药。
TAT-HOXB4H蛋白质在本发明医疗组成物中的含量视欲治疗症状的严重性与 本质、患者先前接受的治疗本质以及患者的年龄及性别而定。最后，主治医师 可以决定个别患者活性剂给药量。刚开始，主治医师可以给予低剂量的活性剂， 并观察患者的反应。可给予较大剂量的活性剂直到患者得到适当的治疗效果， 此时一般不会再增加剂量。用以实施本发明方法的医疗组成物可含有每公斤体 重约1g至约1mg的TAT-HOXB4H蛋白质。给予使用者的剂量范围可选自1μg/kg至 1mg/kg、1μg/kg至0.5mg/kg、1μg/kg至0.1mg/kg、10μg/kg至0.5 mg/kg、10μg/kg至0.1mg/kg、100μg至0.5mg/kg、250μg/kg至0.5mg/kg。 此外，剂量范围可选自50μg至100mg、100μg至50mg、500μg至50 mg、1mg至50mg。使用本发明医疗组成物的静脉注射时间视欲治疗的疾病严 重性以及个别患者的特异反应而定。在本发明又一实施例中，施以本发明 TAT-HOXB4H蛋白质的时间可以是12至24小时的连续静脉注射。在本发明又一实 施例中，本发明TAT-HOXB4H蛋白质可持续使用，只要患者继续在进行化疗或放 射线治疗。TAT-HOXB4H蛋白质可以静脉注射10-100μg/kg，一天两次，4.5至5天。 一次治疗循环可能就足以在体内扩增造血干细胞。最后，主治医师可以决定使 用本发明医疗组成物的适当静脉注射时间。
化合物毒性以及治疗效价可以标准的药剂学程序以细胞培养或实验动物决 定，例如LD50(总数50％致死剂量)以及ED50(总数50％有效治疗剂量)。毒性以 及治疗间的剂量比例即为治疗指数，其可以LD50/ED50表示。细胞培养与实验动 物的数据可以用来评估用于人类的剂量范围。化合物剂量可以在包含ED50且毒性 小或无毒的循环浓度范围内。视所使用的剂型与给药途径，剂量可在上述范围 内变化。TAT-HOXB4H的有效治疗剂量可以由细胞培养试验初步估计。在动物模 型中，剂量可以是达到包含IC50(也即测试蛋白质达到最大症状抑制一半的浓度) 的循环血浆浓度范围，就如同细胞培养决定的方式。血浆浓度可以利用高效液 相层析测定。任何特定剂量的效果可以藉由适当的生物检定法(Bioassay)监测。 适合的生物检定法包含，但不限于，利用标记有荧光探针(例如FITC)的CD34+ 干细胞抗体来量测在单核细胞内的CD34+干细胞，以及利用流式细胞仪量测在外 围血液或骨髓造血干细胞中的LY5细胞比例。本发明的多核苷酸与蛋白质系预期 可展现下述的一个或一个以上的用途或生物活性。本发明蛋白质的用途或活性 可以由给药或使用此蛋白质的方式提供，也可由给药或使用编码此蛋白质的多 核苷酸的方式(例如基因疗法或适用于送入DNA的载体)提供。
III.体内造血刺激方法
A.需要治疗的患者
本发明的医疗组成物可用于治疗自体免疫疾病、免疫不全症以及血液疾病。 此外，本发明的医疗组成物可用于改善造血干细胞移植后的恢复时间。本发明 的医疗组成物可用于治疗罹患淋巴瘤、白血病、霍奇金氏症以及骨髓增生性疾 病的患者。此外，造血干细胞缺乏而造成的先天性疾病以及再生不良贫血也可 以本发明的医疗组成物治疗。
此外，本发明的医疗组成物可用于造血干细胞捐赠者以及颗粒球细胞生长 因子(G-CSF)不敏感患者。
在本发明又一实施例中，TAT-HOXB4H是被用来动员造血干细胞的唯一活性 剂，并且氟脲嘧啶(5-FU)并未给予捐赠者，不论是作为预处理或综合治疗计划。
可以用本发明医疗组成物治疗的额外的疾病或与增加细胞生存相关的症状 包括恶性肿瘤及相关疾病的进行及/或转移，例如早幼粒细胞白血病(包括急性 白血病(例如：急性淋巴细胞性白血病，急性髓细胞性白血病(包括髓细胞、 早幼粒细胞、粒细胞、单核细胞、红白血病))和慢性白血病(例如：慢性粒 细胞(颗粒细胞)白血病和慢性淋巴细胞白血病)，骨髓形成异常症 (myelodysplastic syndrome)，真性红血球增多症(polycythemia vera)，淋 巴瘤(例如：霍奇金氏症和非霍奇金氏症)，多发性骨髓瘤，巨球 蛋白血症以及实体瘤，包括肉瘤和癌瘤，例如：纤维肉瘤，黏液肉瘤，脂肪肉 瘤，软骨肉瘤，骨肉瘤，脊索瘤，血管肉瘤，内皮细胞肉瘤，淋巴管肉瘤， 淋巴管内皮瘤，滑膜瘤，间皮瘤，尤文氏瘤，平滑肌肉瘤，横纹肌肉瘤，结肠 癌，胰脏癌，乳腺癌，卵巢癌，前列腺癌，鳞状细胞癌，基底细胞癌，腺癌， 汗腺癌，皮脂腺癌，乳头状癌，乳头状腺癌，囊腺癌，髓样癌，支气管癌，肾 细胞癌，肝癌，胆道癌，绒癌，精母细胞瘤，胚胎瘤，威姆氏瘤，子宫颈癌癌， 睾丸肿瘤，肺癌，小细胞肺癌，膀胱癌，上皮癌，胶质瘤，星形细胞瘤，髓母 细胞瘤，颅咽管瘤，室管膜瘤，松果腺瘤，血管母细胞瘤，听神经瘤，胶质瘤， 黑色素瘤，神经母细胞瘤以及视网膜母细胞瘤。
本发明并不限于特定的方法、实验计划、细胞株、动物物种或属或下述的 试剂。所用来描述特定实施例的术语不能用以限定本发明的范围，本发明的范 围应以权利要求书的范围为准。此处使用的，单数形式的“一”与“该”，除非 文意另有所指外，也包含复数个。因此，举例来说，“一个细胞”是指一个或多 个细胞，并且包括本技术领域中已知的均等物。
除非另外定义，否则所有的技术和科学所用词汇具有与本发明所属技术领 域中熟悉此技术者相同涵义的理解。虽然任何方法，组件和材料相似或均等于 在此描述的，都可用于实践或试验本发明，优选的方法，组件和材料于现在描 述。所有此处提及的刊物和专利在此并入用以描述和公开，举例来说，描述于 刊物内的构造和方法，可与目前所描述的发明结合。先前以及本文中讨论的刊 物仅提供作为本案有效日期前的公开。所有皆不可解释为承认发明人无法凭借 先前发明来预见此公开。
定义：
“干细胞”是一种多能或多潜能细胞，其有能力自我更新，以保持未分化， 以及成为已分化。干细胞，至少在动物自然存在的一生中，可以无限分裂。干 细胞并非末期分化，即它们不是在分化途径末端。当干细胞分裂，每个子细胞， 可仍然是一个干细胞或可以走向出一条导致末期分化的路。“嵌合体”干细胞是 指干细胞的一部分DNA属于一个异种生物体。
“造血”细胞是指涉及造血过程(也即前体细胞形成成熟血液细胞的过程) 的一种细胞。在成人，造血发生在骨髓。在发育早期，在不同发育阶段，造血 发生在不同的地点；原始血液细胞出现于卵黄囊，后来，血液细胞形成在肝、 脾和骨髓。造血有复杂的调控，包括激素(例如红血球生成素，生长因子(例 如集落刺激因子和细胞因子(例如介白素)))。
此处使用的“载体”是指能够运送另一种核酸的核酸分子，该另一种核酸 连接于该核酸分子上。一种类型的载体是一个“质体”，这指的是一个圆形双 股DNA环，额外的DNA片段可接合在其中。另一种类型的载体是病毒载体，其中 额外的DNA片段可接合在病毒基因体中。某些载体有能力在所送入的宿主细胞中 自主复制(例如具有一个细菌复制来源的细菌载体和附加体质粒(episomal)哺 乳动物载体)。其它载体(例如非附加体质粒(episomal)哺乳动物载体)可 以在送入宿主细胞时整合到宿主细胞的基因体中，从而随着宿主基因体复制。 此外，某些载体，是有能力指挥其所连接的基因表现。这种载体在此是称为“重 组表现载体”(或简单地说“表现载体”)。一般来说，用于DNA重组技术的表 现载体通常是以质体的形式。在本发明中，“质体”与“载体”可以互换使用， 因为质体是最常用的载体形式。然而，本发明包括具有等同功能的其它形式的 表现载体，例如病毒载体(例如复制缺陷的反转录病毒、腺病毒和腺相关病毒)。
此处使用的“转化”是指将一个外源多核苷酸送入宿主细胞，不论用什么 方法送入：举例来说，直接吸收转化、转染以及感染等。特定的转染方法见于 下文。外源多核苷酸可能是以未插入载体的形式(例如：质粒)，或者可能被 整合到宿主基因体中。
一般来说，“蛋白质”是指任何两个或两个以上的个别氨基酸由胜肽键 (peptide bond)接合的聚合物(不论是否自然发生)，该胜肽键指当键结在一个 氨基酸(或氨基酸残基)的α碳的羧酸基的羧基碳原子，与键结在相邻氨基酸 (或氨基酸残基)的α碳的胺基的氨基氮原子，所形成的共价键结。该胜肽键 连接及其所包含的原子(也即α碳原子、羧基碳原子(以及其氧原子取代基) 以及氨基氮原子(以及其氢原子取代基))形成蛋白质的“多胜肽骨架”。此外， 此处使用的“蛋白质”可以理解为包括“多胜肽”以及“胜肽”(其有时可以交 互使用)。同样，蛋白质片段，类似物，衍生物以及突变物可在此称为“proteins”， 除非另有说明，也应被视为是一“蛋白质”。蛋白质“片段”是指包含少于一个 蛋白质所有氨基酸残基的多胜肽。可以理解的是，蛋白质“片段”可能是一个 在N端、C端或内部(例如受天然的剪接(splicing)所致)截短的蛋白质，可以 是突变物及/或衍生物。蛋白质“功能区块(domain)”也是一个片段，其包含赋 予蛋白质生化活性所需的氨基酸残基，对应于自然存在的蛋白质。
“重组”在此处指一个核酸分子，基因组，基因，病毒，半合成，或合成 的，其一部分或全部的多核苷酸并非天然。“重组”相对于一蛋白质或多胜肽而 言，指以重组多核苷酸表现产生的多胜肽。
一个“单离的”、“纯化的”、“实质上单离的”或“实质上纯化的”分子 (如一个多胜肽或核苷酸)指被人为操作使相较于自然有较高的浓度。举例来 说，当标的蛋白质被单离、纯化、实质上单离或实质上纯化，指至少有50％， 70％，75％，80％，85％，90％，91％，92％，93％， 94％，95％，96％，97％，98％，99％或以上的天然存在的 非标的蛋白质物质被移除。此处使用的“单离的”、“纯化的”、“实质上单离的” 或“实质上纯化的”分子包括重组分子。
SCID“小鼠”指重度联合免疫缺陷(SCID)小鼠模型，SCID会造成免疫系统 发育的严重缺陷。无论是T或B淋巴球，这些小鼠皆不足或完全缺乏。该SCID突 变似乎损害抗原受体基因的重组，导致缺乏功能性的T与B淋巴球。其它造血细 胞类型可正常发展和运作。SCID小鼠随时支持正常淋巴球分化，并且可与来自 同基因或异基因小鼠的正常淋巴球重组或与人类淋巴球重组。这些小鼠还支持 异基因和异种基因肿瘤的生长。因此，SCID小鼠允许一些人类肿瘤的扩散增长， 特别是血液系统疾病以及恶性黑色素瘤，因此可用于研究恶性肿瘤。
“使用者”、“个人”、“宿主”以及“病人”在此处可互换使用，用以指活 的动物，包括人类和非人类的动物。使用者可能是，举例来说，一个拥有免疫 细胞的有机体，该免疫细胞能对抗源刺激产生反应，并且能对经由细胞表面的 受体结合传递的刺激和抑制信号产生反应。使用者可以是一个哺乳类动物，例 如人或非人类的哺乳动物，例如狗，猫，猪，牛，绵羊，山羊，马，大鼠以及 小鼠。“使用者”并不排除，相对于疾病或各方面，完全正常的个人。
“治疗”指的是一个治疗性或预防性的措施。治疗可施加于具有医疗疾病 的使用者或最终会得到疾病者，用以预防、治疗、延误、减少严重性或改善一 个或一个以上疾病或反复发生的疾病的症状，或用以延长使用者生存期间使其 超过没有治疗所预期的生存期间。
“治疗有效量”是指主化合物可引起预期反应(例如经由研究员、兽医、 医生或其它的临床医师所认定的组织、制度、动物、动物或人类的生物或医学 反应)的量。
以下具体的例子是，以被视为仅仅是说明性的，无论在任何情况皆不是用 以限定本发明的其它部分。本技术领域中普通技术人员可基于本申请文件的叙 述而实施本发明。
实例例1：pET21b-His-TAT-HOXB4-His质体的构筑
(a)N-端及C-端含有组胺酸标记及TAT讯号胜肽的pET21b质体的修改
N-端含有组胺酸标记及TAT讯号胜肽的pET21b表现载体由在pET21b质体插 入下列寡核苷酸而得：
5’-TATGCACCACCACCACCACCACTACGGCCGCAAGAAACGCCGCCAGCGCCGCCGGCG-3’ (正股(sense))及
5’-CTAGCGGCGCTGGCGGCGTTTCTTGCGGCC GTAGTGGTGGTGGTGGTGGTGCA-3’(反 股(antisense))。C-端组胺酸标记原本就存在于pET21b质体中。
(b)将HOXB4选殖入修改后的pET21b表现质体
含有HOXB4开放读框(ORF)以及额外六组胺酸编码序列的DNA片段，以 MGC54130质体(GeneDiscovery，Taipei，Taiwan.Cat.No.5533346)为模板， 利用聚合酵素链锁反应(PCR)放大而得，将PCR所得的HOXB4cDNA片段次选殖 (subclone)到修改后的pET21b表现质体。构筑的质体以及核酸序列系如图2及 图3所示。
实例例2：在大肠杆菌表现TAT-HOXB4H重组蛋白质
将pET21b-His-TAT-HOXB4-His表现质体转化至BL21(DE3)pLysS(Novagen) 大肠杆菌株。令经转化的细胞于37℃下生长过夜。将过夜培养物稀释成起始OD600 值为0.05，并置于37℃下生长至OD600值为0.5，接着以1mM异丙基硫代-β-D-半 乳糖(IPTG)于37℃下进行诱导表现3小时，期间伴随剧烈摇晃。
实例例3：TAT-HOXB4H重组蛋白质的纯化
在诱导作用后，将细胞以离心收集并再悬浮于缓冲液A(8M尿素，20mM HEPES， 0.5mM DTT及100mM NaCl pH8.0)中。将细胞悬浮液通过French press三次， 并将细胞溶解产物以20,000×g于4℃下离心30分钟使其澄清。将上清液调整至 10mM咪唑并加样至HisTrap螯合管柱(Amersham Pharmacia)。将结合的蛋白以 50、100及250mM配制于缓冲液A中的咪唑进行溶离。将含有TAT-HOXB4H的流份 (fraction)加样至存在缓冲液B(4M尿素，20mM HEPES及50mM NaCl pH6.5)的 MonoSP管柱，以1.5M NaCl及20mM HEPES(pH8.0)溶离。
实例例4：TAT-HOXB4H重组蛋白质的复性(renaturation)
将溶离流份中的TAT-HOXB4H蛋白质溶解并变性于一含有变性盐类(例如胍 盐酸盐(guanidine hydrochloride))的溶液，然后将其与D-PBS-T缓冲溶液(含 有0.1％Triton X-100的两倍磷酸盐缓冲溶液)混合。TAT-HOXB4H蛋白质溶液与 D-PBS-T缓冲溶液的比例为1∶4。将所成的混合液加入以水(10ml or 3ml)前 处理的10K蛋白浓缩管柱(centricon tube)(50ml or 15ml)，离心3000rpm， 10分钟。在此步骤中，变性盐类系被D-PBS-T缓冲液置换，D-PBS-T缓冲液中的 Triton X-100系可与HOXB4H蛋白质的疏水性(Hydrophobic)区域结合
接着以10K蛋白浓缩管柱(centricon tube)进行超过滤或缓冲溶液置换步 骤10次，以1000-2500g/min离心速度，依序将缓冲液置换为含1mm、2mm、 3mm、4mm及5mm β-环糊精(beta-cyclodextrin)的IMDM储存缓冲液，其中于 各离心速度下以每种浓度置换离心两次。收集浓缩管柱中留存的样品，并保存 于-20℃冰箱。
纯化后TAT-HOXB4H蛋白质的均一性系以SDS-polyacrylamide凝胶以及 coomassie染色分析。如图5所示，经HisTrap and MonoSP纯化的TAT-HOXB4H较 原始TAT-HOXB4蛋白质的产率增加大约3-5倍。pTAT-HA-HOXB4质体，系加拿大蒙 特娄大学(University of Montreal)的盖·萨瓦格(Guy Sauvageau)博士所赠。 pTAT-HA-HOXB4质体系转化至BL21(DE3)pLysS(Novagen)，TAT-HOXB4蛋白质 的纯化系如Krosl等人(2003)所述。
实例例5：TAT-HOXB4H重组蛋白质的安定性
TAT-HOXB4H的安定性系以SDS-polyacrylamide凝胶分析。储存时，全长的 TAT-HOXB4H可能会降解为30kD与10kD片段。如图6所示，本发明的TAT-HOXB4H 蛋白质即使在PBS，-4℃中储存16小时依然安定。
此外，储存在-4℃以及-20℃，PBS以及IMDM缓冲液的TAT-HOXB4H，以10％ SDS-polyacrylamide凝胶电泳以及coomassie染色分析。如图7所示，当储存在 IMDM储存缓冲液中，本发明的TAT-HOXB4H蛋白质可维持4星期。
实例例6：TAT-HOXB4H重组蛋白质对于Balb/c小鼠的造血影响
TAT-HOXB4H重组蛋白质对于造血干细胞由骨髓动员至外围血液的可能影响 系利用Ba lb/c小鼠研究。每天四次皮下注射4天给予小鼠TAT-HOXB4H重组蛋白质 (在PBS中)。为了解剂量反应性，试验组(n＝21)的剂量为1μg、5μg、10μg、 15μg…to 100μg/kg体重。一组对照组只施打PBS，另一组对照组则每天两 次皮下注射4天5μg/kg体重的G-CSF。
取各组周边血液进行流式细胞仪分析，可得到CD34+干细胞在单核细胞(MNC) 中的比例。结果以平均值±标准差的形式列于表一。
表一
  组别   TAT-HOXB4H(g/kg)   CD34+/MNC(％)   1   1   0±0.03   2   5   0.3±0.05   3   10   0.45±0.03   4   15   0.42±0.01   5   20   0.38±0.05   6   25   0.41±0.02   7   30   0.35±0.21   8   35   0.33±0.11   9   40   0.29±0.16   10   45   0.46±0.01   11   50   0.45±0.02   12   55   0.42±0.06   13   60   0.44±0.02   14   65   0.41±0.04   15   70   0.41±0.03   16   75   0.49±0.01   17   80   0.45±0.04   18   85   0.46±0.07   19   90   0.44±0.02   20   95   0.41±0.01   21   100   0.42±0.05   对照组(PBS)   0   0.002   对照组(G-CSF)   0   0.5±0.03
周边血液内CD34+/MNC的比例系列于表一。接受TAT-HOXB4H的第3-21实验组 (剂量至少为10μg/kg体重以上)显示类似于注射G-CSF对照组的动员效果。
取实验组3(TAT-HOXB4H剂量为10μg/kg体重)小鼠的骨髓以及注射G-CSF与 PBS的对照组小鼠的骨髓，以CD34+FITC-conjugated抗体(Becton Dickinson) 表型，并以流式细胞仪分析。注射TAT-HOXB4H的小鼠骨髓(图8C)，其CD34+干细 胞比注射G-CSF与PBS的小鼠骨髓多。这些结果显示注射TAT-HOXB4H重组蛋白质 可以同时增加小鼠骨髓中以及外围血液中的造血干细胞。
实例例7：TAT-HOXB4H重组蛋白质对于恒河猴的造血影响
TAT-HOXB4H重组蛋白质在猴类的效力系利用成年的公恒河猴研究。试验组I (n＝5)系每天四次静脉注射4天给予TAT-HOXB4H重组蛋白质(剂量10μg/kg体 重)。试验组II(n＝5)系每天四次静脉注射4天给予TAT-HOXB4H重组蛋白质(剂 量10μg/kg体重)以及皮下注射G-CSF(剂量5μg/kg体重)。对照组I只施打 PBS，对照组II则每天两次皮下注射4天G-CSF(剂量5μg/kg体重)。取所有猴 子的周边血液进行流式细胞仪分析，可得到CD34+干细胞在单核细胞(MNC)中的 比例。结果列于表二。
表二
  组别   (实验/对照)   CD34+/MNC   (％)   I.TAT-HOXB4H(10g/kg)   0.62   II.TAT-HOXB4H(10g/kg)+G-CSF(5g/kg)   0.38   对照组I(PBS)   0.07   对照组II(G-CSF、5g/kg)   0.28
如表二所示，只接受TAT-HOXB4H的猴子(实验组I)显示出比注射G-CSF的 猴子(对照组II)更好的动员效果。同时注射TAT-HOXB4H以及G-CSF的猴子(实 验组II)显示出比注射G-CSF的猴子(对照组II)的动员效果好一点。
取注射TAT-HOXB4H、G-CSF以及PBS的猴子骨髓样本，以CD34+ FITC-conjugated抗体(Becton Dickinson)表型，并以流式细胞仪分析。注射 TAT-HOXB4H的猴子骨髓(图9C)，其CD34+干细胞系远多于注射G-CSF的猴子骨髓 (图9A)、注射TAT-HOXB4H+G-CSF的猴子骨髓(图9B)及注射PBS的猴子骨髓(图 9D)中的CD34+干细胞。
实例例8：TAT-HOXB4H重组蛋白质对于NOD-SCID小鼠的造血回复影响
将104 Lin-/CD34+细胞以及经放射线照射的105CD34-辅助细胞注射至 NOD-LtSz-scid/scid(NOD-SCID)小鼠(经放射线照射(2.5Gy))中。将上述小 鼠随机分为两组，一组(n＝28)每日静脉注射两次TAT-HOXB4H蛋白质(剂量10μg /kg体重)，另一组(n＝28)每日注射两次PBS。植入后，以人类CD45+细胞存在 鼠类周边血液中的比例达0.1％以上的小鼠数目来评估造血回复。如图10所示， 注射TAT-HOXB4H重组蛋白质的小鼠可观察到较佳的造血回复。
实例例9：TAT-HOXB4H重组蛋白质对于接受Cisplatin化疗后Balb/c小鼠 的造血回复影响
重复以cisplatin静脉注射五周大Balb/c小鼠，直到其外围血液中Ly5 (murine CD45)细胞数目降为原始数目的10％。将注射过cisplatin的小鼠随机分 为两组，一组(n＝28)每日静脉注射两次TAT-HOXB4H蛋白质(剂量10μg/kg体 重)，另一组(n＝28)每日注射两次PBS。以流式细胞仪周期性量测分析所有小 鼠外围血液中存在的Ly5细胞。造血回复比例系以外围血液中的Ly5细胞数目相 对于原始数目的比例来评估。如图11所示，注射TAT-HOXB4H重组蛋白质的小鼠 可观察到较佳的造血回复。
这些实验中使用的动物模型已在本技术领域中被确认为可用以预测人类患 者的结果，例如：Broxmeyer等人(2005)The Journal of Experimental Medicine，201，1307-1318；Larochelle等人(2006)Blood 107，3772-3778。
以上所述，仅为本发明的具体实施方式，但本发明的保护范围不局限于此， 任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明的技术范围内，可轻易想到变化或替 换，都应涵盖在本发明的保护范围之内。因此，本发明的保护范围应该以权利 要求的保护范围为准。