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一种红掌的快速培养方法

阅读:1030发布:2020-06-10

专利汇可以提供一种红掌的快速培养方法专利检索,专利查询,专利分析的服务。并且本 发明 涉及一种红掌的快速培养方法,包括无菌苗培养、原生质体分离、原生质体培养、原生质体植株再生,其通过在原生质体植株再生阶段,加入等量的第二MS培养基,并通过培养基的组分选择及配比,降低了渗透压和细胞 密度 ,而且,培养板与第三MS培养基的结合使用,确保了 植物 来自单个细胞,提高了萌芽率及再生速度。,下面是一种红掌的快速培养方法专利的具体信息内容。

1.一种红掌的快速培养方法,其特征在于,包括如下步骤:
(1)无菌苗培养:以无激素MS培养基体外培养的红掌幼苗为材料,进行20小时光照;
(2)原生质体分离:选择幼叶切成长条,置于装有酶溶液的烧瓶中,酶溶液含有5%(w/v)纤维素酶R-10、0.5%(w/v)果胶酶Y-23以及10%(w/v)甘露醇,搅拌并使酶溶液通过真空渗透,然后将酶溶物和幼叶长条倒入培养皿中,在25°C下培养30分钟,搅拌10s,在25°C下再培养30分钟;分离的原生质体通过筛网过滤,并在100 x g下离心10分钟,使原生质体在20%(w/v)蔗糖溶液中悬浮,将10%(w/v)甘露醇溶液轻轻地滴于悬浮液的顶部,在50×g下离心
10分钟后,将界面处的完整原生质体通过吸管吸出,在10%(w/v)甘露醇中洗涤两次;
(3)原生质体培养:原生质体在培养皿中以第一MS培养基培养,第一MS培养基中含有MS盐、0.3 mg/L的盐酸硫胺、0.5mg/L的NAA、0.1 mg/L的BAP、10%(w/v)葡萄糖和6%(w/v)蔗糖,第一MS培养基的pH为5.5;
(4)原生质体植株再生:每5天向步骤(3)的培养皿中加入等量的第二MS培养基,该第二MS培养基含有MS盐、0.3 mg/L的盐酸硫胺、0.5mg/L的NAA、0.1 mg/L的BAP、5%(w/v)葡萄糖和3%(w/v)蔗糖,直到群落长到0.2-0.3mm,然后将群落转移到培养板,该培养板包括滤纸基板和转移板,该培养板被放置在第三MS培养基上10-20天,然后将单个愈伤组织放置在第三MS培养基上14-20天,以产生2-6 mm的愈伤组织,再将愈伤组织转移到HSM培养基中再生,萌芽后,转移到无激素MS培养基,然后在7-10天后移栽入土壤
2.如权利要求1所述的红掌的快速培养方法,其特征在于,所述第三MS培养基含有MS盐、维生素、0.5 mg/L BAP、1 mg/L NAA、3%(w/v)蔗糖和0.6%(w/v)琼脂,第三MS培养基的pH为5.8。
3.如权利要求1所述的红掌的快速培养方法,其特征在于,所述HSM培养基含有MS盐、维生素B5、1 mg/L BAP、0.1 mg/L NAA和3%(w/v)蔗糖,HSM培养基的pH为5.8。

说明书全文

一种红掌的快速培养方法

技术领域

[0001] 本申请属于植物培养技术领域,具体涉及一种红掌的培养方法。

背景技术

[0002] 红掌是单子叶植物纲天南星科花烛属多年生常绿草本植物。茎节短;叶自基部生出,绿色,革质,全缘,长圆状心形或卵心形。叶柄细长,佛焰苞平出,革质并有蜡质光泽,橙红色或猩红色;肉穗花序黄色,可常年开花不断。花烛原产于哥斯达黎加、哥伦比亚等热带雨林区。常附生在树上,有时附生在岩石上或直接生长在地上,性喜温暖、潮湿、半阴的环境,忌阳光直射。花烛花姿奇特美妍。花期持久,适合盆栽、切花或庭园荫蔽处丛植美化。
[0003] 原生质体是指用特殊方法脱去了植物细胞壁的、裸露的、 有生活的原生质团。没有细胞壁,但具有活细胞的一切特征。其无细胞壁障碍,可以方便地进行有关遗传操作,并可以对膜,细胞器等进行基础研究;具有全能性,并能进行人工培养发育成完整植株;原生质体适合进行诱导融合形成杂种细胞。
[0004] MS培养基是目前使用最普遍的培养基。其具有较高的无机盐浓度,能够保证组织生长所需的矿质营养还能加速愈伤组织的生长。由于配方中的离子浓度高,在配制、贮存和消毒等过程中,即使有些成分略有出入,也不会影响离子间的平衡。MS固体培养基可用于诱导愈伤组织,也可用于胚、茎段、茎尖及花药的培养,其液体培养基用于细胞悬浮培养时能获得明显的成功。MS培养基的无机养分的数量和比例比较合适,足以满足植物细胞在营养上和生理上的需要。因此,一般情况下,不用再添加基酸、酪蛋白HYPERLINK "https://baike.baidu.com/item/%E6%B0%B4%E8%A7%A3"解物、酵母提取物及椰子汁等有机附加成分。和其它培养基的基本成分相比,MS培养基中的硝酸盐、和铵的含量高,这是它的显著特点。
[0005] 现有技术中采用原生质体分离的方法培养红掌,采用的是单一种类的培养基,这种方法再生速度慢、萌芽率低,且芽体生长不稳定,因此,如何提供一种快速培养红掌的方法是本领域亟待解决的问题。发明内容
[0006] 本发明的目的在于提供一种再生速度快、萌芽率高、芽体生长稳定的快速培养红掌的方法。具体地,本发明的红掌培养方法依次包括如下步骤:(1)无菌苗培养:以无激素MS培养基体外培养的红掌幼苗为材料,进行20小时光照;(2)原生质体分离:选择幼叶切成长条,置于装有酶溶液的烧瓶中,酶溶液含有5%(w/v)纤维素酶R-10、0.5%(w/v)果胶酶Y-23以及10%(w/v)甘露醇,搅拌并使酶溶液通过真空渗透,然后将酶溶物和幼叶长条倒入培养皿中,在25°C下培养30分钟,搅拌10s,在25°C下再培养30分钟;分离的原生质体通过筛网过滤,并在100 x g下离心10分钟,使原生质体在20%(w/v)蔗糖溶液中悬浮,将10%(w/v)甘露醇溶液轻轻地滴于悬浮液的顶部,在50×g下离心10分钟后,将界面处的完整原生质体通过吸管吸出,在10%(w/v)甘露醇中洗涤两次;(3)原生质体培养:原生质体在培养皿中以第一MS培养基培养,第一MS培养基中含有MS盐、0.3 mg/L的盐酸硫胺、0.5mg/L的NAA、0.1 mg/L的BAP、10%(w/v)葡萄糖和6%(w/v)蔗糖,第一MS培养基的pH为5.5;(4)原生质体植株再生:每5天向步骤(3)的培养皿中加入等量的第二MS培养基,该第二MS培养基含有MS盐、0.3 mg/L的盐酸硫胺、0.5mg/L的NAA、0.1 mg/L的BAP、5%(w/v)葡萄糖和3%(w/v)蔗糖,直到群落长到0.2-0.3mm,然后将群落转移到培养板,该培养板包括滤纸基板和转移板,该培养板被放置在第三MS培养基上10-20天,然后将单个愈伤组织放置在第三MS培养基上14-20天,以产生2-6 mm的愈伤组织,再将愈伤组织转移到HSM培养基中再生,萌芽后,转移到无激素MS培养基,然后在7-10天后移栽入土壤。优选地,所述第三MS培养基含有MS盐、维生素、0.5 mg/L BAP、1 mg/L NAA、3%(w/v)蔗糖和0.6%(w/v)琼脂,第三MS培养基的pH为5.8。优选地,所述HSM培养基含有MS盐、维生素B5、1 mg/L BAP、0.1 mg/L NAA和
3%(w/v)蔗糖,HSM培养基的pH为5.8。
[0007] 本发明所取得的有益效果是通过在原生质体植株再生阶段,加入等量的第二MS培养基,并通过培养基的组分选择及配比,降低了渗透压和细胞密度,而且,培养板与第三MS培养基的结合使用,确保了植物来自单个细胞,提高了萌芽率及再生速度。

具体实施方式

[0008] 实施例1作为一较佳实施例,通过以下步骤进行红掌的培养:(1)无菌苗培养:以无激素MS培养基体外培养的红掌幼苗为材料,进行20小时光照;(2)原生质体分离:选择幼叶切成长条,置于装有酶溶液的烧瓶中,酶溶液含有5%(w/v)纤维素酶R-10、0.5%(w/v)果胶酶Y-23以及10%(w/v)甘露醇,搅拌并使酶溶液通过真空泵渗透,然后将酶溶物和幼叶长条倒入培养皿中,在25°C下培养30分钟,搅拌10s,在25°C下再培养30分钟;分离的原生质体通过筛网过滤,并在100 x g下离心10分钟,使原生质体在20%(w/v)蔗糖溶液中悬浮,将10%(w/v)甘露醇溶液轻轻地滴于悬浮液的顶部,在50×g下离心10分钟后,将界面处的完整原生质体通过吸管吸出,在10%(w/v)甘露醇中洗涤两次;(3)原生质体培养:原生质体在培养皿中以第一MS培养基培养,第一MS培养基中含有MS盐、0.3 mg/L的盐酸硫胺、0.5mg/L的NAA、0.1 mg/L的BAP、
10%(w/v)葡萄糖和6%(w/v)蔗糖,第一MS培养基的pH为5.5;(4)原生质体植株再生:每5天向步骤(3)的培养皿中加入等量的第二MS培养基,该第二MS培养基含有MS盐、0.3 mg/L的盐酸硫胺、0.5mg/L的NAA、0.1 mg/L的BAP、5%(w/v)葡萄糖和3%(w/v)蔗糖,直到群落长到0.2-
0.3mm,然后将群落转移到培养板,该培养板包括滤纸基板和转移板,该培养板被放置在第三MS培养基上10-20天,然后将单个愈伤组织放置在第三MS培养基上14-20天,以产生2-6 mm的愈伤组织,再将愈伤组织转移到HSM培养基中再生,萌芽后,转移到无激素MS培养基,然后在7-10天后移栽入土壤。其中,第三MS培养基含有MS盐、维生素、0.5 mg/L BAP、1 mg/L NAA、3%(w/v)蔗糖和0.6%(w/v)琼脂,第三MS培养基的pH为5.8;HSM培养基含有MS盐、维生素B5、1 mg/L BAP、0.1 mg/L NAA和3%(w/v)蔗糖,HSM培养基的pH为5.8。
[0009] 对比例1作为一对比例,通过以下步骤进行红掌的培养:(1)无菌苗培养:以无激素MS培养基体外培养的红掌幼苗为材料,进行20小时光照;(2)原生质体分离:选择幼叶切成长条,置于装有酶溶液的烧瓶中,酶溶液含有5%(w/v)纤维素酶R-10、0.5%(w/v)果胶酶Y-23以及10%(w/v)甘露醇,搅拌并使酶溶液通过真空泵渗透,然后将酶溶物和幼叶长条倒入培养皿中,在
25°C下培养30分钟,搅拌10s,在25°C下再培养30分钟;分离的原生质体通过筛网过滤,并在
100 x g下离心10分钟,使原生质体在20%(w/v)蔗糖溶液中悬浮,将10%(w/v)甘露醇溶液轻轻地滴于悬浮液的顶部,在50×g下离心10分钟后,将界面处的完整原生质体通过吸管吸出,在10%(w/v)甘露醇中洗涤两次;(3)原生质体培养:原生质体在培养皿中以第一MS培养基培养,第一MS培养基中含有MS盐、0.3 mg/L的盐酸硫胺、0.5mg/L的NAA、0.1 mg/L的BAP、
10%(w/v)葡萄糖和6%(w/v)蔗糖,第一MS培养基的pH为5.5;(4)原生质体植株再生:每5天向步骤(3)的培养皿中加入等量的第一MS培养基,直到群落长到0.2-0.3mm,然后将群落转移到培养板,该培养板包括滤纸基板和转移板,该培养板被放置在第三MS培养基上10-20天,然后将单个愈伤组织放置在第三MS培养基上14-20天,以产生2-6 mm的愈伤组织,再将愈伤组织转移到HSM培养基中再生,萌芽后,转移到无激素MS培养基,然后在7-10天后移栽入土壤。其中,第三MS培养基含有MS盐、维生素、0.5 mg/L BAP、1 mg/L NAA、3%(w/v)蔗糖和0.6%(w/v)琼脂,第三MS培养基的pH为5.8;HSM培养基含有MS盐、维生素B5、1 mg/L BAP、0.1 mg/L NAA和3%(w/v)蔗糖,HSM培养基的pH为5.8。
[0010] 对比例2作为另一对比例,通过以下步骤进行红掌的培养:(1)无菌苗培养:以无激素MS培养基体外培养的红掌幼苗为材料,进行20小时光照;(2)原生质体分离:选择幼叶切成长条,置于装有酶溶液的烧瓶中,酶溶液含有5%(w/v)纤维素酶R-10、0.5%(w/v)果胶酶Y-23以及10%(w/v)甘露醇,搅拌并使酶溶液通过真空泵渗透,然后将酶溶物和幼叶长条倒入培养皿中,在25°C下培养30分钟,搅拌10s,在25°C下再培养30分钟;分离的原生质体通过筛网过滤,并在100 x g下离心10分钟,使原生质体在20%(w/v)蔗糖溶液中悬浮,将10%(w/v)甘露醇溶液轻轻地滴于悬浮液的顶部,在50×g下离心10分钟后,将界面处的完整原生质体通过吸管吸出,在10%(w/v)甘露醇中洗涤两次;(3)原生质体培养:原生质体在培养皿中以第一MS培养基培养,第一MS培养基中含有MS盐、0.3 mg/L的盐酸硫胺、0.5mg/L的NAA、0.1 mg/L的BAP、
10%(w/v)葡萄糖和6%(w/v)蔗糖,第一MS培养基的pH为5.5;(4)原生质体植株再生:每5天向步骤(3)的培养皿中加入等量的第二MS培养基,该第二MS培养基含有MS盐、0.3 mg/L的盐酸硫胺、0.5mg/L的NAA、0.1 mg/L的BAP、5%(w/v)葡萄糖和3%(w/v)蔗糖,直到群落长到0.2-
0.3mm,然后将群落转移到第三MS培养基上10-20天,然后将单个愈伤组织放置在第三MS培养基上14-20天,以产生2-6 mm的愈伤组织,再将愈伤组织转移到HSM培养基中再生,萌芽后,转移到无激素MS培养基,然后在7-10天后移栽入土壤。其中,第三MS培养基含有MS盐、维生素、0.5 mg/L BAP、1 mg/L NAA、3%(w/v)蔗糖和0.6%(w/v)琼脂,第三MS培养基的pH为
5.8;HSM培养基含有MS盐、维生素B5、1 mg/L BAP、0.1 mg/L NAA和3%(w/v)蔗糖,HSM培养基的pH为5.8。
[0011] 对实施例1、对比例1及对比例2中的萌芽比例、萌发时间和芽体生长情况进行对比,结果见于下表:  原生质体再生时间 萌芽比例
实施例1 35-40天 78%
对比例1 60-80天 55%
对比例2 45-70天 65%
从上表可以看出,本发明通过在原生质体植株再生阶段,加入等量的第二MS培养基,并通过培养基的组分选择及配比,降低了渗透压和细胞密度,而且,培养板与第三MS培养基的结合使用,确保了植物来自单个细胞,提高了萌芽率及再生速度。
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