技术领域

本发明涉及石斑鱼垂体富含的一个生殖调控因子的基因序列，更具体涉及 一种从石斑鱼垂体的SMART cDNA文库中筛选出的一个高度富含的新基因生殖 调控因子1(reproduction regulator 1，rr1)的序列、氨基酸序列和时空表达图谱， 本发明还涉及一种用途。

                          背景技术

石斑鱼(E.coioides)为海洋珊瑚礁鱼类，属鮨科(Serranidae)，石斑鱼 属(Epinephelus)，是一种名贵的海水鱼类，销售市场稳定、价格昂贵，同时石斑 鱼也是人工繁殖与育苗技术难度最大的海产鱼类之一，至今养殖种苗的供应仍依 赖捕捞野生天然苗。近年来，日本、东南亚各国、我国台湾、华南沿海都进行了 大规模的人工养殖。随着海洋鱼类人工规模化养殖不断发展，天然苗种已不能满 足养殖生产的需要，人工育苗成为其持续发展的关键技术。尽管已进行了一些初 步的繁殖生物学研究，但对人工育苗的理论基础---生殖调控的研究才刚刚起步、 基础十分薄弱。据张其永等2000年统计，我国已成功繁殖培育出幼苗鱼苗的石 斑鱼种类有赤点石斑鱼、鲑点石斑鱼、点带石斑鱼、石斑鱼等。但实际上它们离 能够较稳定地进行种苗批量生产的目标尚有相当的差距。

石斑鱼人工繁殖与育苗的难度主要来自以下几个方面：(1)石斑鱼雌雄同体， 雌性先熟，然后性转化；(2)受精卵质量差，孵化率低；(3)仔鱼个体纤细，对 开口饵料的要求严格；以及稚、幼鱼的自相残杀习性、病害等问题。尤其是石斑 鱼个体发育中普遍存在“先雌后雄″的性转变过程，雄亲鱼均高龄化(一般6龄以 上)，长时间的性逆转过程，不仅消耗大量饵料，而且等生长到雄性精巢可以释精 时，种群数量已十分稀少而难以捕获。即使捕获到雄性亲鱼，因雌雄亲鱼性成熟 不同步配对，导致受精率较低。目前育苗的方法是用外源的性类固醇激素(17 a-甲基睾酮)给食、注射或埋植进行强制逆转培育雄性亲鱼。但在完全不了解 其性别逆转的分子机制的前提下，盲目地用过多的外源类固醇激素必然会带来很 多弊端。譬如，不仅费工费时，而且转化效果差，性转变后，雄鱼精子活力不强， 而停药后，会产生性别复原问题。埋植激素后会导致手术鱼不摄食或摄食减弱， 影响鱼正常发育。

                          发明内容

本发明的目的在于提供一种石斑鱼垂体富含的一个生殖调控因子的基因序 列、氨基酸序列和时空表达图谱，筛选方法简便，该基因为解决石斑鱼繁殖力低 和难以获得雄性亲鱼这两个石斑鱼规模化养殖的问题提供一条技术途径。

本发明还涉及一种石斑鱼垂体富含的基因序列在石斑鱼的生殖调控中的应 用。

本发明还涉及一种石斑鱼垂体富含的基因序列在石斑鱼的性腺分化中的应 用。

本发明还涉及一种石斑鱼垂体富含的基因序列在石斑鱼的性别逆转中的应 用。

本发明还涉及一种石斑鱼垂体富含的基因序列在饲料制备人工饵料中的应 用。

本发明还涉及一种石斑鱼垂体富含的基因序列在石斑鱼的繁殖和人工控制 性别中的应用。

为了实现上述目的，本发明采用了以下技术措施：本发明所述的基因rr1是 从石斑鱼垂体的SMART cDNA质粒文库中筛选到的一个高度富含的新基因，它 在垂体中表达量非常高，在随机筛选并测序的90个克隆中，共检测到该基因的 5个克隆。其特征是rr1基因的cDNA序列和rr1基因编码蛋白的氨基酸序列(如 下)。该基因的cDNA长560bp，有一个192bp(31-222)的开放阅读框，编码 63个氨基酸，5’非编码区长30bp，起始于一个包含在脊椎动物起始密码子 ANNATG基元；3’非编码区长338bp，有多聚腺苷酸加尾信号(AAUAAA)和多聚 腺苷酸尾巴。在GenBank中进行同源搜索，发现与其它基因无任何同源性，为 一新基因。rr1基因的cDNA序列为：

GACTGTCTGAAAGCTTATTGGTACCAAAACATGAAGGGACTGAGCTTGGTTCTCCTCGTGCTTCTCCTG

ATGCTCGCCGTCGGGGAGGGCAATGATCCAGAAATGCAGTATTGGACATGTGGGTATAGAGGACTCTGC

AGACGGTTCTGCCATGCCCAGGAGTACATCGTTGGTCATCACGGTTGCCCTCGGAGATACAGATGCTGT

GCTGTGCGGTCTTAGCACCTGCATGCACCAGCATGAGGACTGACATCTCCAGGTAACTGACGACGGCGC

TCTTCCGGATAACCCATTTCAACAACCTTACTCTCAATCGACACCTCTTGGACTTCTAACACGCTGTGG

GATGTGACAATGAGTGCTTTGGAAGTGGACTTCAACTAGTTAGACCTGACTTATTCACAGCTAGATGTG

CAGCAGATGTGTAACTGTTGCTTGATCCTGTATCTCACCTTTAATAACATTTATAATCACTCCTTTGTG

AACAGTCAGTTGTACTCTCTGAAATGCAGTGTTGCCAATAAATGCACGAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAA

AAAAAAAA

rr1基因编码蛋白的氨基酸序列为：

MKGLSLVLLVLLLMLAVGEGNDPEMQYWTCGYRGLCRRFCHAQEYIVGHHGCPRRYRCCAVRS

通过Signal P程序对其蛋白存在信号肽的可能性进行了分析，发现其N-端 的21个氨基酸肽段极可能为信号肽，其信号肽酶的可能切割位点位于第21位和 22位氨基酸之间，提示该蛋白为分泌型蛋白(图1)；采用DAS软件分析其跨膜 结构，显示该蛋白在对应信号肽位置存在跨膜区(图2)。

运用RT-PCR技术考察了其在石斑鱼肝脏、肾脏、脾脏、胰脏、心、肌、垂 体、下丘脑、端脑、小脑、中脑、延脑的mRNA水平，考察了其在处于卵子发 生期、卵母细胞成熟期变性期不同阶段石斑鱼个体的脑垂体、下丘脑及成熟卵巢 和处于变性期的性腺的表达图谱，考察了其在未受精卵、桑椹期、高囊胚期、原 肠中期、胚体期、视泡期、心跳期、出膜前期、出膜后、鱼苗1天的表达图谱， 结果表明：该基因在垂体中大量转录，在下丘脑中有微量转录，在其他10种组 织中没有检测到其mRNA的存在(图3)；在3种不同性腺发育阶段的垂体都具 有相同的高丰度，3种下丘脑都具有相同的低丰度，在成熟卵巢中未检测到其 mRNA的存在，但在处于变性期的性腺中具有高丰度的转录(图4)。硬骨鱼类 与其它脊椎动物相似，“垂体—下丘脑—性腺”是调节生殖活动的重要内分泌系 统。该基因的表达谱完全符合鱼类生殖的内分泌调节体系中的“垂体—下丘脑— 性腺组成的三级主干结构；同时其在成熟卵巢中无转录产物，而在处于变性期的 性腺中具有高丰度的转录，这表明该基因在调控石斑鱼的生殖和性腺分化中具有 重要功能。

鉴于rr1基因是全新基因，目前人类对此基因的认识和了解仅限于本发明人 所作的科学工作研究。由于该基因为具有跨膜区的分泌型多肽，在垂体中大量转 录，在下丘脑中有微量转录，而且在成熟卵巢中未检测到其mRNA的存在，但 在处于变性期的性腺中具有高丰度的转录。因此它可能在石斑鱼的生殖调控和性 腺分化中有着重要功能。通过制备该基因的原核表达蛋白和真核酵母表达蛋白， 用于研究该基因在石斑鱼的生殖调控、性腺分化和性别逆转中的作用。通过制备 该基因的真核酵母表达蛋白，该蛋白是其内源的分泌型多肽，通过制备酵母表达 的蛋白，可作为饲料添加剂制备人工饵料，以增强石斑鱼的繁殖力和人工控制性 别。

本发明的优点：通过制备该基因的蛋白，用于研究该基因在石斑鱼的生殖调 控、性腺分化和性别逆转中的作用，而该蛋白是其内源的分泌型多肽，通过制备 酵母表达的蛋白，可制备人工饵料，以增强石斑鱼的繁殖力和人工控制性别。

                          附图说明

图1为Signal P程序分析显示出的基因rr1的信号肽位置

图1是通过Signal P程序对RR1蛋白存在信号肽的可能性进行了分析，发 现其N-端的21个氨基酸肽段极可能为信号肽，其信号肽酶的可能切割位点位于 第21位和22位氨基酸之间，提示该蛋白为分泌型蛋白。

图2为DAS推测基因rr1的跨膜区

图2是采用DAS软件分析其跨膜结构，显示该蛋白在对应信号肽位置即第 1-21位氨基酸处存在跨膜区

图3为RT-PCR检测基因rr1在石斑鱼组织中的表达

图3表明该基因在垂体中大量转录，在下丘脑中有微量转录，在其他10种 组织中没有检测到其mRNA的存在。

图4为RT-PCR检测基因rr1在处于卵子发生期(1)、卵母细胞成熟期(2)、 变性期(3)不同阶段石斑鱼个体的脑垂体、下丘脑及成熟卵巢和处于变性期的 性腺中的表达

图4表明在3种不同性腺发育阶段的垂体都具有相同的高丰度，3种下丘脑 都具有相同的低丰度，在成熟卵巢中未检测到其mRNA的存在，但在处于变性 期的性腺中具有高丰度的转录。

                         具体实施方式

1、RNA的提取和SMART cDNA质粒文库的构建

垂体总RNA用SV Total RNA Isolation System(Promega)提取，步骤具体 如下：取约500克石斑鱼1尾，麻醉放血，开颅取出垂体，加入175μl的抽提缓冲溶 液，充分匀浆后，加入350μl RNA稀释缓冲液，混匀后70℃封阻3分钟，14 000×g 离心10min。转移上清，加入200μl 95％乙醇，吹打混匀后转移至离心柱，14 000×g 离心1min，加入600μl RNA洗涤液，14 000×g离心1min。加入50μl DNA酶I20-25 ℃消化15min后加200μl DNA酶终止溶液，14 000×g离心1min。加入600μl SV RNA 洗涤液，14 000×g离心1min后，再次加入250μl RNA洗涤液，高速离心2min。 用250μl无RNA酶水洗脱总RNA两次。取0.5-5μl电泳检测总RNA浓度和质量。其 余总RNA于-70℃冻结实，真空冻干机超低温冻干浓缩，溶解于20-30μl水中，取 0.5μl电泳检测mRNA浓度和质量。

SMART cDNA的合成用SMART cDNA library construction Kit(Clontech)试剂 盒，具体操作如下：合成所用的3个引物序列为：(1)CDS引物(10μmol/L) 5′-AAGCA GTGGTAACAACGCAGAGTACT(30)N-1N-3′；(2)Smart II寡核苷酸(10μmol/L) 5′-AAG CAGTGGTAACAACGCAGAGTACGCGGG-3′；(3)PCR引物(10μmol/L)5′-AAGCAG TGGTAACAACGCAGAGT-3′。

取垂体总RNA50ng，按文库构建方法合成第一链cDNA：加入CDS引物和Smart II寡核苷酸各1μl，72℃保温2min后，冰上速冷2min；然后在终体积为10μL 的反应体系中，加入5×第一链反应缓冲液(250mmol/L Tris-HCl，pH8.3； 375mmol/L KCl；30mmol/L MgCl2)2μl、DTT(20mmol/L)1μl、dNTP(10mmol/L)1μl 和PowerScript逆转录酶1μl，42℃保温1h合成第一链cDNA。取2μl第一链 cDNA加入dNTP 2μl、PCR引物4μl、和2μl 50×Advantage 2 cDNA Polymerase Mix， 于l00μl反应体系中进行如下PCR循环：95℃预变性1min后，以95℃5s、65 ℃5s、68℃6min反应13个循环，72℃延伸10min。反应结束后，取5μL电泳 检测。此PCR产物用于构建质粒文库。合成的SMART cDNA连接入pEGM-T载 体中(Promega)，并转化入DH5α感受态细胞中。

2、质粒文库的随机筛选及测序

铺平板(内含100μg/mL Amp以及5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷和异丙基 硫代-β-D-半乳糖苷)，37℃培养过夜。挑取白色菌斑于预先分装有100μL Amp-LB 的Eppendorf管中，37℃培养2h以上。取1μL菌液作模板，以M13+和M13-为 引物(M13+：CAGGAAACAGCTATGAC；M13-：GTAAACGACGGCCAGT)， PCR鉴定插入片段大小。将插入片段大于500bp的克隆进行测序(上海，生工)。 在随机筛选并测序的90个克隆中，共检测到该基因的5个克隆(编号分别为3 -27、3-46、3-69、3-84和3-103)。该基因cDNA长560bp，有一个192bp (31-222)的开放阅读框，编码63个氨基酸。5’非编码区长30bp，起始于一个 包含在脊椎动物起始密码子ANNATG基元；3’非编码区长338bp，有多聚腺苷 酸加尾信号(AAUAAA)和多聚腺苷酸尾巴。在GenBank中进行同源搜索，发现 与其它基因无任何同源性，为一新基因。

3、组织和胚胎总RNA的提取和RT-PCR反应

提取了石斑鱼的各种组织(包括肝脏、肾脏、脾脏、胰脏、心、肌、垂体、下丘 脑、端脑、小脑、中脑、延脑)的RNA，提取了处于卵子发生期、卵母细胞成 熟期变性期不同阶段石斑鱼个体的脑垂体、下丘脑及成熟卵巢和处于变性期的性 腺的RNA，以及提取了石斑鱼胚胎发育各个时期(包括未受精卵、桑椹期、高 囊胚期、原肠中期、胚体期、视泡期、心跳期、出膜前期、出膜后、鱼苗1天) 的总RNA。总RNA的提取用SV total RNA isolation system(Promega)提取。具体 步骤同上。各取0.2μg的总RNA，用M-MLV逆转录酶(Gibco BRL)和寡聚(dT)8-12 反转录合成第一链cDNA。取第一链cDNA稀释10倍后1μl作模板用该基因的 特异引物(3-46-F：GA ATT CAT ATG AAG GGA CTG AGC TTG GTT C和3 -46-R：GCTC GAG CTA AGA CCG CAC AGC ACA GC)进行PCR。反应体系的 总体积为20μl，内含1μl模板DNA，0.2μM引物，0.5单位Taq酶，0.1μM dNTP 和1×Taq酶反应缓冲液。PCR反应在Perkin-Elmer DNA GeneAmp PCR System 9600扩增仪上进行，反应程序为：在94℃预变性4分钟后，进行28个扩增循环， 每个循环包括94℃变性40秒，62℃复性50秒，72℃延伸50秒。最后一次循环 结束后72℃延伸7分钟。扩增产物经1％琼脂糖凝胶电泳分离。用鲫鱼的α-tubulin 基因(上游引物：5’-GTGCACTGGTCTTCA GGGGTT-3’，下游引物： 5’-GGGAAGTGGATGCGTGGGTAT-3’)作为对照。

α-tubulin引物做PCR，确证各个组织和各个胚胎发育时期逆转录的效率都符 合要求而且cDNA的量都相差不多。而该基因的表达图谱显示：该基因在垂体 中大量转录，在下丘脑中有微量转录，在其他10种组织中没有检测到其mRNA 的存在(图4)；在3种不同性腺发育阶段的垂体都具有相同的高丰度，3种下丘 脑都具有相同的低丰度，在成熟卵巢中未检测到其mRNA的存在，但在处于变 性期的性腺中具有高丰度的转录(图5)。在胚胎发育过程中尚未表达该基因。

4、rr1基因融合蛋白的制备

以基因开放阅读框的核苷酸序列与pET-15b载体制备成表达质粒，挑单克隆 培养至对数期，加入终浓度为1mmoL的IPTG在37℃诱导表达3-6h。表达的蛋白 N端融合了长20个氨基酸的组氨酸tag，可用金属离子亲和层析纯化。

5、rr1基因编码蛋白特异性多克隆抗体

将3mL纯化蛋白(约100-300μg)与3mL弗氏完全佐剂充分混匀乳化，在家兔 的背部皮下多点注射，每点注射约0.2mL。第一次注射2-3周后加强免疫3次， 各次剂量为第一次注射的四分之一，每次间隔10天，后3次以弗氏不完全佐剂 乳化样品。在第4次注射后10天自心脏抽取血液。将兔血于37℃放置1h后再 在4℃放置过夜，4,000×g离心10min，吸取上层的多抗血清，分装后于-80℃冻 存。

6 rr1基因在酵母中的表达

以基因开放阅读框的核苷酸序列与pGAPZA和pGAPZαB表达载体制备成表达 质粒，构建的表达载体转入克隆菌株DH5α中，将表达质粒用限制性内切酶BspH I消化，浓缩线性化的DNA片段后，电转化毕赤酵母，在Zeocin抗性平板上 筛选重组子，3mlYPD(100μg/ml)Zeocin)培养，48h分别取菌体和上清于 12.5％的聚丙烯按凝胶电泳。筛选出有特异蛋白表达的克隆。

                          序列表

rr1基因的cDNA序列为：

GACTGTCTGAAAGCTTATTGGTACCAAAACATGAAGGGACTGAGCTTGGTTCTCCTCGTGCTTCTCCTG

ATGCTCGCCGTCGGGGAGGGCAATGATCCAGAAATGCAGTATTGGACATGTGGGTATAGAGGACTCTGC

AGACGGTTCTGCCATGCCCAGGAGTACATCGTTGGTCATCACGGTTGCCCTCGGAGATACAGATGCTGT

GCTGTGCGGTCTTAGCACCTGCATGCACCAGCATGAGGACTGACATCTCCAGGTAACTGACGACGGCGC

TCTTCCGGATAACCCATTTCAACAACCTTACTCTCAATCGACACCTCTTGGACTTCTAACACGCTGTGG

GATGTGACAATGAGTGCTTTGGAAGTGGACTTCAACTAGTTAGACCTGACTTATTCACAGCTAGATGTG

CAGCAGATGTGTAACTGTTGCTTGATCCTGTATCTCACCTTTAATAACATTTATAATCACTCCTTTGTG

AACAGTCAGTTGTACTCTCTGAAATGCAGTGTTGCCAATAAATGCACGAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAA

AAAAAAAA

rr1基因编码蛋白的氨基酸序列为：

MKGLSLVLLVLLLMLAVGEGNDPEMQYWTCGYRGLCRRFCHAQEYIVGHHGCPRRYRCCAVRS