poly(I)·poly(C)是由聚肌苷酸聚胞苷酸组成的双链RNA，是一种周知的 具有干扰素诱导活性和免疫增强作用的药物。
现有报道，干扰素自身对治疗丙型肝炎有效(例如，肝胆膵，9(4)，p611(1984)、 13(1)，p123(1986)、12(5)，p809(1986)、23(5)，p1065(1991))。但将可诱导干扰素的 上述poly(I)·poly(C)用通常的方法给予以期治疗肝炎，则从其诱导量的程度 和毒性等考虑，被认为是困难的。
另一方面，已知有Lipofectin等通常称作阳离子性脂质体的药物载体和以下述 结构式〔I〕的2-O-(2-二乙基氨基乙基)氨基甲酰基-1，3-O-二油酰基甘 油等甘油衍生物和磷脂质为必需构成成分而形成的药物载体等(例如参见 WO91／17424和WO94／19314)。
上述阳离子性脂质体被认为是由脂质双分子膜组成的、在水溶液中带正电 荷的小囊泡。由于阳离子性脂质体在水溶液中带正电荷，而poly(I)·poly (C)等双链RNA在水溶液中带负电荷，因此，可用通常的方法进行分散处理， 使阳离子性脂质体和poly(I)·poly(C)等容易地形成复合体。
上述药物载体与poly(I)·poly(C)等双链RNA的复合体对治疗肝炎等 有效是迄今未知的。
发明的公开
本发明的目的是提供新的可有效治疗或预防肝炎的药剂。
本发明者首先发现阳离子性脂质体之类的药物载体与poly(I)·poly(C) 等双链RNA的复合体在肝脏和脾脏特异性地集聚，可长时间地诱导对治疗肝 炎等有效的干扰素，并由此完成了本发明。
本发明的一个内容是提供以含有阳离子性脂质体与poly(I)·poly(C)等 双链RNA的复合体(以下称“本复合体”)为特征的肝炎治疗剂或预防剂(以 下称“本发明制剂”)。
下面对本发明作详细说明。
可用于本发明的“阳离子性脂质体”的例子有Lipofectin、Lipofectamine、 Lipofectace、DMRIE-C和WO94／19314中公开的药物载体(如以上述化学式 〔I〕的2-O-(2-二乙基氨基乙基)氨基甲酰基-1，3-O-二油酰基甘油 (以下称“化合物A”)和磷脂质为必需构成成分而形成的药物载体等)。
 在本发明中，较佳的阳离子性脂质体的例子有以化合物A和磷脂质为必需 构成成分而形成的药物载体(以下称该药物载体为“本载体”)。
可用于本发明的双链RNA的例子有poly(I)poly(C)、错配的poly(I)poly (C)、poly(A)·poly(U)、错配的poly(A)·poly(U)。其中，以poly (I)·poly(C)为宜。
对上述双链RNA的链长无特别限定，但宜为50-2，000bp(bp：碱基对)， 较好地为100-500碱基对，更好地为200-400bp。若小于50bp，则有效性可 能不足，而若大于2，000bp，则可能会有安全性问题。在本发明中，链长100 -500bp被认为能取得有效性和安全性的平衡。对于poly(I)·poly(C)， 也是较好地为100-500bp，更好地为200-400bp。由于poly(I)·poly(C) 等双链RNA通常是以由各种链长组成的一定的分布存在的，因此，上述各链 长表示最大分布的碱基对数，在此是指“平均链长”。
对本载体中的磷脂质无特别限定，只要是药用磷脂质即可，其具体例子有 磷脂酰胆碱、磷脂酰乙醇胺、磷脂酰肌醇、磷脂酰丝氨酸、鞘磷脂和卵磷脂等。 此外，还可使用氢化的磷脂质。较佳的磷脂质的例子有卵黄磷脂酰胆碱、卵黄 卵磷脂、大豆卵磷脂和卵黄磷脂。可将二种以上的磷脂质合用。作为与化合物 A合用的磷脂质，磷脂酰胆碱或卵磷脂优于通常用于阳离子性磷脂质的磷脂酰 乙醇胺。
在本发明的较佳实例中，本发明提供包含磷脂质为卵磷脂的本载体与平均 链长为100-500bp(尤其是200-400bp)的poly(I)·poly(C)的复合体的 本发明药剂。
阳离子性脂质体与双链RNA的构成比率根据阳离子性脂质体和双链RNA 的种类和链长、肝炎的种类和程度等而异，但对于阳离子性脂质体10重量份， 双链RNA宜为0．05-10重量份，较好地为0．1-4重量份，更好地为0．5-2 重量份。本载体与poly(I)·poly(C)的构成比率也同样是，对于本载体10 重量份，poly(I)·poly(C)宜为0．05-10重量份，较好地为0．1-4重量份， 更好地为0．5-2重量份。
在本载体中，化合物A与磷脂质的构成比率根据双链RNA的种类和链长、 用量及磷脂质而异，但对于化合物A1重量份，磷脂质宜为0．1-10重量份， 较好地为0．5-5重量份，更好地为1-2重量份。
本发明制剂例如可以是本复合体分散在水溶液中的液剂(注射剂、滴注剂 等)或冻干制剂的形式。当为液剂时，本复合体的浓度宜为0．001-25％(w／v)， 较好地为0．01-5％(w／v)，更好地为0．1-1％(w／v)。
本发明制剂可适量地含有任意的药用添加剂，如乳化助剂、稳定剂、等渗 剂、pH调节剂。具体地说，可含有6-22个碳原子的脂肪酸(如辛酸、癸酸、 月桂酸、肉豆蔻酸、棕榈酸、硬脂酸、油酸、亚油酸、花生四烯酸、二十二碳 六烯酸)或其药用盐(如钠盐、钾盐、钙盐)、白蛋白、葡聚糖等乳化助剂； 胆甾醇、磷脂酸等稳定剂；氯化钠、甘油、麦芽糖、乳糖、蔗糖、海藻糖等等 渗剂；盐酸、硫酸、磷酸、乙酸、氢氧化钠、氢氧化钾、三乙醇胺等pH调节 剂等。
本发明制剂例如可用与脂质体的通常制法相同的方法制造。例如，可通过 将阳离子性脂质体或其原料(例如，化合物A和磷脂质)和poly(I)·poly (C)等双链RNA在水溶液中分散处理而加以制造。水溶液可以是例如注射用 水、注射用蒸馏水、生理盐水等电解质液、萄萄糖液等。分散处理使用适当的 分散器(如均相混合器、匀浆器、超声波分散器、超声波匀浆器、高压乳化分 散器、Microfluidizer、Nanomizer、Ultimizer或Manton-Gaulin型高压匀浆 器)进行。此外，该分散处理也可分成包括例如粗分散在内的数阶段进行。
在本发明中可直接使用市售的阳离子性脂质体或者适当加工后使用。
用阳离子性脂质体的原料制造本发明的制剂时，除可在该原料中加入poly (I)·poly(C)等双链RNA、一起分散处理之外，也可先将该原料分散处理， 形成阳离子性脂质体，然后加入poly(I)·poly(C)等双链RNA，再分散处 理，制造本发明的制剂。
任意的药用添加剂可以在分散前、也可以在分散后以适当的步骤添加。
然后，将经过上述分散处理而得到的本发明制剂冻干处理，即可得到本发 明的冻干制剂。冻干处理可用常法进行。例如，将经过上述分散处理而得到的 本发明制剂灭菌后以规定量分注至管瓶中。在约-40℃至-20℃的条件下预冷 冻约2小时，减压下在约0-10℃一次干燥，然后减压下在约15-25℃二次干 燥，进行冻干。并且，一般地用氮气置换管瓶内部，加塞，由此得到本发明的 冻干制剂。
本发明的冻干制剂一般可通过加入任意的适当溶液(再溶解液)进行再溶 解后使用。所述再溶解液可以是注射用水、生理盐水等电解质液、葡萄糖液和 其他一般输液。对再溶解液的量无特别限定，根据用途等而异，但宜为冻干前 的液量的0．5-2倍，或者在500mL以下。
由于与单独给予poly(I)·poly(C)等双链RNA的情况相比，本发明制 剂可在肝脏和脾脏中特异性地集聚，并长时间地大量诱导β-干扰素，因此， 可有效地用于包括人在内的动物的肝炎的治疗或预防。此外，包含磷脂质为卵 磷脂的本载体与平均链长为100-500bp(尤其是200-400bp)的poly(I)·poly (C)的复合体的本发明制剂由于在保持有效性的同时毒性极低，因此，特别 优异。
本发明制剂例如可静脉内注射、经粘膜给予或肝动脉内注射。
本发明制剂的肝炎治疗量根据双链RNA和磷脂质的种类、肝炎的种类和阶 段、患者年龄、动物种差、给药途径、给药方法等而异，但双链RNA的给予 量通常一次宜为1μg-50mg／人，较好地为10μg-10mg／人。poly(I)·poly (C)的给予量通常也一次宜为1μg-50mg／人，较好地为10μg-10mg／人。本 发明制剂可每日1-3次，每日、隔日、每周、隔周进行注射或滴注。
本发明的最佳实施方式
下面结合实施例和试验例对本发明作更详细的说明。在各实施例和试验例 中，本发明制剂的浓度均以制剂中的poly(I)·poly(C)的浓度表示。 实施例1
将化合物A 2g和精制卵黄卵磷脂2g加入到溶解在100mL注射用水中的麦 芽糖40g中，搅拌、混合，用匀浆器分散处理5分钟，得到本载体的粗分散液。 将该分散液再用实验用小型乳化分散器分散处理1小时，加入注射用水，使其 达到250mL，回收本载体分散液。搅拌下往本载体分散液250mL中加入含有 500mg poly(I)·poly(C)(平均链长约200bp)的150mL水溶液，再用实 验用小型乳化分散器分散处理1小时，得到本发明制剂。然后，将本发明制剂 分注至管瓶中(每瓶1mL)，按常法制成冻干制剂。
实施例2
将化合物A 50g和卵黄磷脂30g加入到溶解在10L注射用水中的蔗糖4kg 中，用Manton-Gaulin型高压匀浆器分散处理10分钟，加入注射用水，使其达 到25L，回收本载体分散液。搅拌下往本载体分散液20L中加入含有10g poly (I)·poly(C)(平均链长约200bp)的12L水溶液，用盐酸将pH调整至 5．5，再用Manton-Gaulin型高压匀浆器分散处理30分钟，得到本发明制剂。 然后，将本发明制剂分注至管瓶中(每瓶20mL)，按常法制成冻干制剂。将 市售的5％葡萄糖输液(500ml)加入到该冻干制剂中，使其溶解。
实施例3
将化合物A 2g和大豆卵磷脂2g加入到溶解在100mL注射用水中的葡萄糖 20g中，搅拌、混合，用匀浆器分散处理5分钟，得到本载体的粗分散液。将 该分散液再用实验用小型高压乳化分散器分散处理1小时，加入注射用水，使 其达到250mL，回收本载体分散液。搅拌下往本载体分散液250mL中加入含 有50mg poly(I)·poly(C)(平均链长约200bp)的150mL水溶液，再用 实验用小型高压乳化分散器分散处理1小时，得到本发明制剂。
实施例4
将化合物A 1．2g和精制卵黄卵磷脂2．0g加入到溶解在100mL注射用水中的 麦芽糖40g中，搅拌、混合，用实验用小型乳化分散器分散处理30分钟，加 入注射用水，使其达到250mL，回收本载体分散液。搅拌下往本载体分散液 250mL中加入含有200mg poly(I)·poly(C)(平均链长约200bp)的150mL 水溶液，再用实验用小型乳化分散器分散处理2小时，得到本发明制剂。 实施例5
将化合物A 1．2g和精制卵黄卵磷脂2．0g加入到溶解在100mL注射用水中的 麦芽糖40g中，搅拌、混合，用实验用小型乳化分散器分散处理30分钟，加 入注射用水，使其达到250mL，回收本载体分散液。搅拌下往本载体分散液 250mL中加入含有平均链长360碱基的poly(I)100mg和平均链长318碱基 的poly(C)100mg的150mL水溶液，再用实验用小型乳化分散器分散处理2 小时，得到本发明制剂。
实施例6
将化合物A 2g和精制卵黄卵磷脂2g加入到溶解在100mL注射用水中的麦 芽糖40g中，搅拌、混合，用匀浆器分散处理5分钟，得到本载体的粗分散液。 将该粗分散液再用实验用小型乳化分散器分散处理1小时，加入注射用水，使 其达到250mL，回收本载体分散液。搅拌下往本载体分散液250mL中加入含 有平均链长1419碱基的poly(I)250mg和平均链长1491碱基的poly(C)250mg 的150mL水溶液，再用实验用小型乳化分散器分散处理1小时，得到本发明 制剂。然后，将本发明制剂分注至管瓶中(每瓶1mL)，按常法制成冻干制剂。
实施例7
将化合物A 1．2g和精制卵黄卵磷脂2．0g加入到溶解在100mL注射用水中的 麦芽糖40g中，搅拌、混合，用实验用小型乳化分散器分散处理30分钟，加 入注射用水，使其达到250mL，回收本载体分散液。搅拌下往本载体分散液 250mL中加入含有平均链长84碱基的poly(I)100mg和平均链长76碱基的 poly(C)100mg的150mL水溶液，再用实验用小型乳化分散器分散处理2小 时，得到本发明制剂。
实施例8
按与实施例4相同的方法，得到含有平均链长约350bp的poly(I)·poly (C)的本发明制剂。
实施例9
按与实施例4相同的方法，得到含有平均链长约1450bp的poly(I)·poly (C)的本发明制剂。 实施例10
按与实施例4相同的方法，得到含有平均链长约80bp的poly(I)·poly(C) 的本发明制剂。 试验例1  小鼠肝脏中的β-干扰素的诱导效果(in vivo)
以雄性Balb／c小鼠(5周龄)为试验动物，一组3只，在小鼠的静脉内注 射本发明实施例4的制剂或注射仅poly(I)·poly(C)的制剂作为对照。3 小时后摘取肝脏。用AGPC法(The acid-guanidine-phenol-chloroform法)提取 全RNA，用RT-PCR法测定β-干扰素的mRNA表达量。结果见图1。
图1表明，备试样均浓度依存性地表达β-干扰素mRNA并诱导β-干扰 素，但与仅poly(I)·poly(C)的制剂相比，本发明制剂的诱导效果更强。 试验例2  肝脏以外的脏器中的β-干扰素的诱导效果(in vivo)
按与试验例1相同的方法测定肝脏以外的脏器中的β-干扰素的mRNA表 达量。结果见图2。
图2表明，本发明制剂在肾脏、肺和脑中不表达β-干扰素mRNA，对β- 干扰素无明显的诱导效果。
上述试验例1和2的结果显示，单独给予poly(I)·poly(C)，没有脏器 特异性，而本发明制剂在肝脏和脾脏中对β-干扰素有明显的诱导效果。 试验例3小鼠血清中的干扰素量(in vivo)
以雄性Balb／c小鼠(5周龄)为试验动物，一组3只，在小鼠的静脉内注 射本发明实施例4的制剂或注射仅poly(I)·poly(C)的制剂作为对照。3 小时后采血得血清。根据病毒(VSV)感染所致L929细胞变性的抑制效果测 定血清中的干扰素量。结果见表1。
表1  小鼠血清中的干扰素量 给予量(μg／kg) 干扰素量(IU／ml)     对照     ＜3     实施例4     10     30    100     13±2     41±1     63±18 仅poly(I)·poly(C)     10     30    100     ＜3     5±2     18±6
表1表明，在各试验组中，均剂量依存性地检测出血清中的干扰素，但在 本发明制剂组中，检测出更多干扰素。
本发明制剂的100μg／kg组在注射3小时后的干扰素量为63IU／ml，即使在 注射24小时后，也达到30IU／ml。而根据报道，临床上给人注射3×106IU的β -干扰素时，刚注射后的血中浓度为67IU／ml，45分钟后就检测不出了。因此， 本试验的结果提示，本发明制剂在临床上也能持续诱导足够量的干扰素。 试验例4毒性试验 (1)单次给予后大鼠肝毒性的出现(急性毒性试验)
在8只6周龄的SD雄性大鼠的静脉内单次注射实施例4的本发明制剂，20 小时后测定血清氨酰转移酶浓度。结果，即使剂量达到5mg／kg，也未观察到 死亡例。剂量为5mg／kg时仅观察到血清氨酰转移酶浓度的略有上升。剂量为 1mg／kg时，血清氨酰转移酶浓度基本上未上升。 (2)限于2周的大鼠亚急性毒性试验
在6只SD雄性大鼠(6周龄)的静脉内连续14日注射本发明实施例4的 制剂。结果，在1mg／kg以下剂量，未发现明显的毒性症状。 (3)抗原性试验
用雄性豚鼠(hartley，5周龄)进行本发明实施例4的制剂的抗原性试验。 结果，在50μg／豚鼠的剂量，未发现抗原性。 (4)简易诱变性试验
对本发明实施例4的制剂进行了简易回复突变试验和简易染色体畸变试 验。结果，在10μg／ml，未发现诱变性。
图面的简单说明
图1表示小鼠肝脏中的β-干扰素mRNA的表达量。左端的1栏表示对照 组。中央的3栏表示本发明实施例4的制剂的给予结果，从左依次是10μg／kg、 30μg／kg和100μg／kg给予组。右端的3栏表示仅给予poly(I)·poly(C)的结 果，从左依次是10μg／kg、30μg／kg和100μg／kg给予组。纵轴表示药物给予组 与对照组的β-干扰素mRNA表达量之比。
图2表示小鼠各脏器(从上依次是脾脏、肾脏、肺、脑)中的β-干扰素 mRNA的表达量。各左端的1栏表示对照组。各中央的3栏表示本发明实施例 4的制剂的给予结果，从左依次是10μg／kg、30μg／kg和100μg／kg给予组。各 右端的3栏表示仅给予poly(I)·poly(C)的结果，从左依次是10μg／kg、30μg/kg 和100μg/kg给予组。纵轴表示药物给予组与对照组的β-干扰素mRNA表达量 之比。