一群微生物在动物呼吸道内形成非常复杂的相互作用。所述动物可以是乳牛、饲养 牛、猪及如鸡和火鸡的禽类等。尽管在不同的动物群之间，微生物群落不同，但它们基 本上是细菌，例如巴氏杆菌(Pasteurellae)、曼氏杆菌(Mannhiemae)及嗜血杆菌 (Haemophilus)群种、支原体(Mycoplasma)细菌，及呼吸道病毒群种，例如牛呼吸 道融合病毒(bovine respiratory syncytial virus，BRSV)、牛病毒性腹泻(bovine viral diarrhea，BVD)病毒、副流行性感冒病毒(PI3)、牛传染性鼻气管炎(infectious bovine rhinotrocheitus，IBR)病毒、猪流行性感冒病毒(H1N1，H3N2)，真菌和寄生虫及其组 合。这些微生物群落形成呼吸道条件致病病原体，可存活于健康动物的上呼吸道中。巴 氏杆菌和少部分的嗜血杆菌和支原体物种可因鼻咽部内皮注射之后侵入下呼吸道而引 起牛呼吸道疾病综合症(BRDC)。在奶牛和饲养场牛群中，例如运输、断奶、病毒感染、 恶劣天气、天气变化、饲养场中迁移、营养不良和过度拥挤等的各种存在压力的情况可 削弱动物的免疫系统和身体免疫防御的能力。这使大多数微生物从鼻咽部向肺内部的下 呼吸道转移。这导致肺炎呼吸道疾病综合症，包括牛的船运热综合症。动物间的传播一 般是通过空中小液滴或食物或水污染物进行。一旦微生物定居于鼻咽部，那么在吸气期 间悬浮微粒可导致细菌向下送入下呼吸道。这使微生物群落与支气管和肺泡细胞接触并 繁殖从而引起肺炎。肺部感染可导致无临床征象的病变但导致平均日增重降低。动物可 能停止进食，迅速病的很重并在数小时内死亡。发病率会非常高，并且一旦一个动物生 病那么畜群其它动物也容易感染。这是饲养场主要关注的。类似的蔓延方式发生在猪群 和如鸡和火鸡的禽类群体中。当前的活疫苗在保护动物使其免受所述综合症的方面成就 有限。这可能部分上起因于鼻咽部缺乏免疫保护。尽管所述呼吸道病毒群种可使动物虚 弱并降低宿主的免疫反应，但是侵入下呼吸道的菌株(一般为溶血性曼氏杆菌 (Mannhiema hemolytica)或多杀性巴氏杆菌(Pasteurella multocida)导致引起动物生病 和死亡的支气管肺炎(BRD)。牛的船运热肺炎和地方性肺炎中，两种类型的最终共同 特性是细菌媒介。牛呼吸道疾病(BRD)是现今饲养场疾病相关损失的主要起因。由 BRD引起的财务损失包括处理死亡率、药物、兽医和人工成本。一次治疗的平均成本为 平均每头$8.80。BRD小母牛发病率较低，为37.9％。从未治疗过的动物每头纯收益平 均为$11.48以上。经治疗和未治疗过的动物的平均日增重不同。经治疗动物每头纯利润 平均为$57.48以下。已列出BRD引起饲养场全部食用牛死亡的20.6％。
猪呼吸道疾病综合症是影响高达90％养猪人员的主要的及类似类型疾病。猪肺炎支 原体(Mycoplasma hypopneumonia)是与例如A型和D型多杀性巴氏杆菌(Pasteurella multocida)的复合二级病原体有关的初发病原体，并可引起高热或生长减缓的临床征象。 所述微生物体的组合可导致猪肺炎的严重性和持续时间增加。猪繁殖与呼吸综合症 (PRRS)可能是猪肺炎的另一主要因素。这可仅以最小剂量病毒性PRRS菌株导致严重 的繁殖疾病。猪呼吸道疾病的通常致病动因可包括PRRS病毒、猪流行性感冒病毒(H1N1， H3N2)和猪肺炎支原体(Mycoplasma hypopneumoniae)以及副猪嗜血杆菌(Haemophilus parasuis)、猪嗜血杆菌(Haemophilus suis)、猪嗜血杆菌胸膜肺炎(Haemophilus planopneumonia)、溶血性巴氏(曼氏)杆菌(Pasteurella(Mannhiema)haemolytica) 和多杀性巴氏杆菌(Pasteurella multocida)(A型和D型)。很难估计所述疾病对所述动 物健康的总的经济影响。肺炎性肺损伤可引起畜群呼吸道健康不良并可影响畜群中高达 70％的猪。需要联合病毒疫苗接种与细菌药物治疗来帮助控制所述问题一接种疫苗的时 间安排始终很重要。必须在适当的时间施用药物从而使成本和对动物的伤害最小。
如猪肺炎支原体(Mycoplasma hypopneumoniae)等的微生物体可引起称作“猪地方 性肺炎”(swine enzootic pneumonia，SEP)的重要慢性呼吸道疾病。所述微生物体可单 独地使猪中产生严重肺炎并且仍然是养猪产业的重大威胁。
胸膜肺炎放线杆菌(Actinobacillus pleuropneumoniae)引起“猪胸膜肺炎(porcine pleuropneumoniae)”，导致严重的经济损失和死亡。尽管已经研制出疫苗，但仍未证明 相应的保护作用。过去的几年中，全世界已鉴定出14种血清型和2种生物型。为了保 护畜群必须给生长猪和肥育猪都接种。
呼吸道疾病对养猪人员的主要影响在于减少采食量，从而导致生长减缓。这导致猪 的均匀性变差、死亡率更高、平均日增重减少并且每窝猪减少。生产者公布几乎畜群的 14.4％发生呼吸道疾病。注射疫苗和药物的成本增加而总效能降低。据估计每日增重的 减少和用于治疗疾病的抗生素每年花费养猪行业(Swine industry)46.7亿美元。超过39 ％成长-肥育猪的死亡归因于猪的呼吸道疾病。
现有技术
用于诊断或治疗特定病状的禽蛋抗体的制备方法是已知的。尚未提出制备用于抑制微生 物体、尤其是微生物体在动物呼吸道内群集和引起疾病的免疫原在动物呼吸道内粘附及群集 的禽蛋抗体的方法。
代表性现有技术专利包括：
Polson，美国专利第4,555,019号
Stolle等人，美国专利第4,748,019号
Tokoro，美国专利第5,080,895号
Carroll，美国专利第5,196,193号
Lee，美国专利第5,367,054号
Coleman，美国专利第5,585,098号
Stolle等人，美国专利第5,753,268号
Raun，美国专利第3,794,732号论述了在反刍动物日粮中使用聚酯抗生素来提高反刍动 物的饲料利用率。这具体地说明了抗生素在反刍动物体内作为生长促进剂的用途。
Raun，美国专利第3,947,836号论述了特定抗生素化合物在口服投与反刍动物时提高动 物饲料利用率的用途。具体地说，所述动物发展了产生相对于乙酸盐的更多丙酸盐的瘤胃功 能，因此提高饲料利用率。
lvy等人，美国专利第4,933,364号论述了促进产食哺乳动物生长和提高饲料效率的可选 方法。他们建议使用锌抗生素，将其以不溶形式加入形成提高产食哺乳动物饲料效率的锌抗 生素复合物。他们参考了美国专利第3,501,568号和第3,794,732号两个专利，该两个专利极 其详细地论及莫能菌素(monensin)的。
其它关于使用例如莫能菌素的添加剂的参考文献已提及需要谨慎应用所述材料，因为它 们对一些动物(如，马)具有毒性。必须小心投用所述未批准用于奶牛的抗生素。此外，由 于莫能菌素不能加入到牛饲料传统添加剂的糖浆基添加物中，因此采食量最初减少。(Pate， E.，″Ionophores Do Not Appear To Work In Molasses Supplements″，ONA Reports，1966年11月， 第2页，Florida Cattleman and Livestock Journal；Lona，R.P.等人，J.Anim.Sci.75(1)：2571-2579， 1979)。
Poison，美国专利第4,550,019号涉及用于动物(包括人类)被动免疫法的免疫学制剂的 禽蛋黄抗体的制造和使用，所述抗体用作免疫吸附法的免疫试剂，特别是用于定量分析测试， 尤其是用于诊断学、病理学、法医学和药动学研究的微量分析。
Stolle等人，美国专利第4,748,018号，涉及哺乳动物被动免疫的方法，其中在哺乳动物 体内首次发展禽蛋黄抗体耐受性之后，通过在不同条件下采用不同的投药方法并采用合并有 所述抗体的不同组合物来使用针对各种抗原中的任一种抗原的抗体。
Tokoro，美国专利第5,080,895号涉及含有来自蛋的物质的特异性抗体，及其制备方法和 用于治疗传染性疾病或其它疾病的用途，及作为家畜和家禽食物、化妆品和药物的添加剂和 在血清诊断领域中的用途。尽管未明确说明，但很显然，在饲料中使用蛋抗体是通过口服投 用抗体治疗家畜和家禽肠感染的简易方法。
Carroll，美国专利第5,196,193号和分案美国专利第5,443,976号涉及用于中和蛇、蜘蛛、 蝎子或水母毒液的含有马抗体或禽蛋黄抗体的抗毒液组合物。
Lee，美国专利第5,367,054号涉及大范围净化蛋免疫球蛋白来降低哺乳期反刍动物乳液 中的体细胞数目的方法。
Stolle等人，美国专利第5,753,268号涉及抗胆固醇蛋疫苗及其制备方法和用作饮食添加 物治疗人类和其它动物血管疾病的用途。

概括而言，本发明涉及一种制备微生物粘附抑制剂的方法，所述抑制剂投与例如宿 主食用动物、高价值非食用动物、动物学动物、伴侣动物或人类来抑制或充分预防呼吸 道中菌落形成免疫原的粘附，所述方法中首先用特异性目标免疫原接种处于或将达到产 蛋年龄的雌性禽类。接着在足够使禽类产生针对目标免疫原的抗体的一段时间后收获所 述禽类产生的蛋。将蛋黄和蛋清含抗体内容物从壳中分离。蛋的含抗体内容物可直接、 置于增量剂上或与载体材料混合使用。可将抗体并入一种液体，混合于舔食盆中，喷洒 或喷射到有动物的环境中。蛋抗体粘附抑制物质可根据需要储存或运输。
可将合并有特异于目标免疫原的抗体的蛋内容物通过使抗体物质直接分配或使抗 体物质夹带在空气中而投与动物或人类。可通过用注射器直接注射或喷洒将物质引入动 物鼻咽部。所述物质可经喷射器直接投用或经鼻内接种投用。可制成气溶胶混合物并在 动物的头和鼻孔上部投药。另一选择是将所述物质与载体混合并作为饲料的“顶肥”投 药。可通过将所述物质加入水中并让动物或人类饮用所得溶液来满足特定需要。可将活 性物质加入松散的舔食或饲料篮来输送。可使用通常的动物饲料混合物制成凝胶状混合 物并将它倒入“舔食盆”(饲料添加剂散装盆)。可采用其它输送系统将活性物质输送到 呼吸道。

本发明是基于一种抑制菌落形成微生物粘附到动物呼吸道的黏膜和支气管及肺泡 细胞上进而预防微生物发生菌落现象的能力的方法，所述微生物诸如溶血性巴氏(曼氏) 杆菌(Pasteurella(Mannhiema)haemolytica)、多杀性巴氏杆菌(P.multocida)和睡眠嗜血 杆菌(Haemophilus somnus)、猪流行性感冒病毒(Swine influenza)、牛分枝杆菌(Mycoplasma bovis)或猪肺炎支原体(M hypopneumoniae)。微生物无法形成菌落能使动物在遭受压力 诱发环境时仍能进行免疫防御。其结果为这些动物发生更少的肺呼吸道疾病，包括导致 受感染动物高死亡率的船运热(图1)
所有哺乳动物和禽类都提供相似类型的保护作用，这为它们非常幼小的后代提供即 时的免疫反应，直到它们获得产生自身抗体的能力。更明确地称为被动抗体保护，这种 防御机制通过胎盘、母乳或通过二者共同传递给幼小哺乳动物。但是，幼禽通过在蛋中 储存的抗体接收它们的被动抗体保护，幼禽在这些蛋中从胚胎阶段发展而来。特别地， 禽类在它们的蛋形成时具有用非常大量的存在于母体血清中的富集的抗体“负载”蛋的 能力。另外，禽类抗体比哺乳动物抗体稳定得多，而且通过消化更能抵抗失活，在不利 的条件下尤其如此。一旦受到免疫，母鸡产下在蛋黄中具有独特IgY类型的免疫球蛋白 的蛋，同时在清蛋白中沉积普通的鸡IgM和IgA免疫球蛋白。清蛋白有助于抵抗全蛋制 品，而且有助于保护所述禽类抗体。蛋黄中的禽类IgY免疫球蛋白紧密连结、涂敷、覆 盖并清除掉将它们本身附着到其宿主的细胞粘附因子。清蛋白、IgM和IgA免疫球蛋白 增加了含抗体物质在呼吸道粘液组织中的连结，这为含抗体物质提供更长的持续效应。 IgM和IgA免疫球蛋白具有使分子保持在一起并提供较大含抗体分子的二硫键。这些较 大的含抗体分子可更为有效地预防动物或人类呼吸道中的目标免疫原的粘附。清蛋白是 一种保护IgY免疫球蛋白活性从而增加其在呼吸道中的活性寿命的蛋白质。此外，置于 蛋中的大量抗体更专门针对那些母体最近所暴露的并使母体受到激发的抗原。所有这些 导致禽蛋是大量经济生产高特异性和稳定性抗体的最理想来源。虽然本发明利用小鸡来 说明生产禽抗体，但也可使用其它禽类，包括火鸡、鸭、鹅、鸵鸟、鸸鹋、野鸡、鸽子、 鹌鹑等，或其组合。
具体来说，在根据最终理想产物的量和时间安排所预定的日程上，获得幼小母鸡的 群组，通常为洛岛红鸡(Rhode Island Reds)、白来航鸡(White Leghorns)、伴性杂交 (sex-linked hybrid crosses)或其它适合于大的蛋尺寸、高产量蛋的生产和易于操作的经 过约16-19个周将达到产蛋年龄的品种，从而产生一个稳定连续的生产流程。隔离和气 候适应约两周到四周的适当时期之后，各群组进入使用特异性抗原(免疫原)的再水化 专有制剂的接种程序，来得到一种抗体。微生物的培养物可从市场购得，诸如美国典型 培养物保藏中心(American Type Culture Collection，ATCC)。所述培养物可用于分离抗 原。所述抗原可如所制备的免疫原来制备，并可通过肌肉内注射，但优选是皮下注射。 在大约四周到五周内，所收集的普通蛋将含有大量的易于使用和稳定形式的理想特异性 抗体。在整个产蛋期间，可用目标免疫原再接种所述小鸡以保持抗体的高含量。
将从预定小鸡群组中的成批蛋破裂，将内容物从壳中分离并混合，并优选用巴氏杀 菌以消除小鸡中潜在的病原微生物，并因此减少了潜在污染。使用标准测试程序，诸如 ELISA、凝集作用或类似程序用于监控抗体活性。然后将典型的一批与其它通常生产水 平的小鸡群组的批次掺和，得到大量标准活性成份。蛋抗体微生物抑制剂物质可储存， 并在诸如大豆油、大丸药和/或药片的载体材料上运输。根据配方设计师和最终消费者的 需要和说明，最终抗体产物可包含一些类型的无害添加剂，诸如干燥的乳清或大豆外壳、 酒糟、糖浆、大豆或米糠或其类似物来与喂料调配。由上述程序生产和加工的一个蛋将 产生足够活性和稳定的产物，以提供至少多达140至160剂量的抵抗特异性微生物形成 菌落的受控保护。所述方法首次提供了一种经济、安全和有效的方式来控制导致肉用牛 和乳畜群、猪、小鸡、火鸡、伴侣动物、高价值非食用动物、动物学动物和人类中的呼 吸道疾病的微生物群落。
免疫原粘附抑制剂及其制备和使用方法产生对于所列微生物物种的特异性免疫原。 所述免疫原用于免疫产蛋禽类动物。经过免疫的母鸡将产出在蛋白中含有IgM和IgA型 特异性抗体且在蛋黄中含有IgY型特异性抗体的蛋。收集所述蛋，并将自整个破裂蛋中 的物质以合适的浓度与载体材料(诸如糖浆、大豆油、DMSO、PBS缓冲剂和维他命E 溶液)混合。将所述溶液最优化以使其可喷洒、喷射、经鼻内注射、成为凝胶体或用于 顶部加料和舔食槽中。可在喂食期间，将保护性物质喷洒到围栏或饲养场中的动物上， 通常是早上一次和晚上一次。喷洒的次数通过测试确定。由于所述物质是非毒性的，可 以根据需要，并与所给定围栏所需要的一样多来给出。优选方法是通过使用每鼻孔1/2 剂量的喷雾直接鼻内注射，或通过直接鼻喷雾加上顶部加料、舔食槽、喷射涂药器的组 合。
所述产物是一种全天然制剂，其含有对于目标免疫原的特异禽类抗体。当抗体附着 到微生物外表面细胞壁、细胞粘附因子受体、菌毛或基柱结构和被膜或病毒衣壳时，这 些抗体将不允许微生物体附着到黏膜。所述微生物将不能够繁殖或形成菌落。这将阻止 微生物自呼吸道向下移动，并消除其导致下呼吸道疾病的能力。通过喷洒所述物质，薄 雾将覆盖鼻咽部，并防止细菌、病毒或其它微生物在水滴中传播。薄雾也将覆盖在所述 区域中的饲料和水，进而阻断微生物体在动物之间传播的能力。本发明的方法在不使用 抗生素的情况下使饲养场和围栏中动物疾病和死亡大大下降。
通过减少呼吸道微生物体，可以减少肺损害，减少二次感染，提高日增重，提高性 能，提高喂食效率并减少成本。控制动物中的肺炎将提高生长性能和生命质量，并降低 呼吸道微生物体的潜在传播。相似的实例可在伴侣动物或人类中获得。很显然，前文所 阐明的本发明的许多修改和变化可不背离其主旨和范畴的前提下进行。仅通过实例给出 所述的具体实施例，而且本发明仅由所附加的权利要求书所限制。
最成功的形成菌落的微生物、细菌、病毒和寄生物等在其表面上都包含大量不同类 型的分子，称为“细胞粘附因子(adherin或intimin)”，所述表面可非常紧密地粘附一 种或多种类型的特异性分子，这些分子是宿主各表面的一部分。粘附抑制剂是一种具有 极高特异活性的禽类抗体，其可非常紧密地结合、涂敷、覆盖，并清除这些细胞粘附因 子，所述细胞粘附因子以适于非常独特的化学结构的锁和钥匙类型将自身附着到它们的 宿主。蛋黄中的禽类IgY免疫球蛋白紧密结合、涂敷、覆盖，并消除将其自身附着到宿 主的细胞粘附因子。清蛋白、IgM和IgA免疫球蛋白增加了含抗体物质在呼吸道粘液组 织中的结合，这为含抗体物质提供了更长的持续效应。IgM和IgA免疫球蛋白具有使分 子保持在一起并提供较大含抗体分子的二硫键。这些较大的含抗体分子可更为有效地预 防动物或人类呼吸道中的目标免疫原的粘附。清蛋白是一种保护IgY免疫球蛋白活性从 而增加其在呼吸道中的活性寿命的蛋白质。除了所述直接攻击以外，大部分生物流体中 (诸如血液、淋巴液、唾液、眼泪和在某种程度上的肠分泌物)所包含的补体系统的组 份将抗体附着视为是许多类型防御活性的触发因素。因此，特异性抗体附着和涂敷与许 多其它细胞防御系统的极有可能的运作结合，快速达到化学失活，并最终破坏目标微生 物。
通过以下实例进一步说明本发明：
                     实例1：产蛋禽类母鸡的选择
产蛋母鸡的品种随需要和用途而变化。任何产蛋禽类母鸡都可被免疫，包括小鸡、 火鸡、鸭、鹅、鸽子、鹌鹑、鸵鸟、鸸鹋或任何其它禽类。普通品种的产蛋鸡是首选， 而且通常根据每年产蛋的数目、蛋的大小和舍饲的舒适度选择。洛岛红鸡、白来航鸡和 红伴性混种(RedSexLinkedhybrids)是基于蛋的大小(大到超大，50-65gm)选择的动 物，并且用于免疫流程。观察处理所述动物的难易度及蛋的大小和一致性，以及，每只 母鸡每年的产蛋数目。尽管可使用任何禽类产蛋母鸡，但考虑到成本和易于使用情况， 证明这些鸡是最好的。白来航鸡、W98混种具有最好的一致性，且每只动物产生更大数 目的蛋。这些动物产生大到超大等级的蛋(50-65gm)且每只母鸡年产蛋高达300个。
                 实例2：用于免疫原的PM抗原的制备
将多杀性巴氏杆菌(Pasteurella Multicoda)(ATCC 15743)用作模型细菌。从牛身上 分离该微生物体。用于再水化备料的ATCC方法如下。将细菌在1.0ml的TSB中再水 化。脑心浸液(Brain Heart Infusion)(BHI，Acumedia)用于刺激细菌上的PM抗原。 将备料TSB接种进BHI肉汤中，并在37℃下培养18-24小时。这会刺激细菌上的体细 胞和附着抗原的发育。用BHI肉汤培养液接种含有BHI肉汤的烧瓶。缓慢搅拌的同时， 在37℃下培养烧瓶。将血液琼脂平板划线来分离菌落确定形态。在22小时之后看到良 好的生长。将烧瓶组合，并使用离心分离和无菌盐水(0.9％)在大约3000rpm下30分 钟来收获所得物质。将收获产物收集在试管中。使用分光光度计计数和McFarland浑浊 度标准检查密度。将物质稀释到大约1×109/ml。添加与0.9％的无菌盐水(Herzberg， 1972)中的培养液成1∶1比例的百分之四(4％)脱氧胆酸钠(sodium deoxycholate)(Difco) 溶液，并在室温(22℃到24℃)下搅拌大约18小时。将物质离心分离来除去完整细胞。 上清液可用作PM抗原的备料。测定干重量大约14.9mg/ml。将产物在无菌PBS(pH 7.4) 中稀释到1mg/ml以用于PM免疫原。
                   实例3：用于免疫原的PH抗原的制备
将备料溶血性巴氏杆菌(P.Haemolytica)(ATCC 14000)用作PH抗原的备料。从牛 身上分离微生物体。按照用于再水化备料的ATCC方法。将细菌在1.0ml的TSB中再 水化。脑心浸液(BHI，Acumedia)用于刺激细菌上的PM抗原。将备料TSB接种在 BHI肉汤中，并在37℃下培养18-24小时。这会刺激细菌上的体细胞和附着抗原的发育。 用BHI肉汤培养液接种含有BHI肉汤的烧瓶。缓慢搅拌的同时，在37℃下培养烧瓶。 在22小时之后看到良好的生长。将血液琼脂平板划线来分离菌落从而确定形态。将烧 瓶组合，并在大约3000rpm下使用离心分离和无菌盐水(0.9％)30分钟来收获物质。 将收获产物收集在试管中。使用分光光度计计数和McFarland浑浊度标准检查密度。将 物质稀释到大约1×109/ml。添加与0.9％的无菌盐水(Herzberg，1972)中的培养液 成1∶1比例的百分之四(4％)脱氧胆酸钠(Difco)溶液，并在室温(22℃到24℃)下 搅拌大约18小时。将所得物质离心分离来除去完整细胞。上清液可用作PH抗原的备料。 测定干重量。将产物在无菌PBS(pH 7.4)中稀释到1mg/ml以用于PH免疫原。
                 实例4：用于免疫原的HS抗原的制备
将备料睡眠嗜血杆菌(Haemophilus sommus)(ATCC 43626)用作HS抗原的备料细 菌培养液。从牛身上分离微生物体。按照用于再水化备料的ATCC方法。将细菌在1.0ml 的TSB中再水化。ATCC介质(ATCC medium)：814GC介质用于刺激细菌上的HS抗 原。将备料TSB接种在814GC介质中，并在37℃和5％CO2下培养18-24小时。这会 刺激细菌上的体细胞和附着抗原的发育。在22-48小时之后看到良好的生长。将血液琼 脂平板划线用于分离菌落从而确定表面形态。将烧瓶组合，并在大约3000rpm下使用离 心分离和无菌盐水(0.9％)30分钟来收获物质。将收获产物收集在试管中。使用分光 光度计计数和McFarland浑浊度标准检查密度。将物质稀释到大约1×109/ml。添加与 0.9％的无菌盐水(Herzberg，1972)中的培养液成1∶1比例的百分之四(4％)脱氧胆酸 钠(Difco)溶液，并在室温(22℃到24℃)下搅拌大约18小时。将所得物质离心分离 来除去完整细胞。上清液可用作HS抗原的备料。测定干重量。将产物在无菌PBS(pH 7.4)中稀释到1mg/ml以用于HS免疫原。
                 实例5：用于免疫原的HSa抗原的制备
将备料猪嗜血杆菌(Haemophilus suis)(ATCC 19417，副猪嗜血杆菌(H.parasuis)) 用作HSa抗原的备料。从猪身上分离微生物体。按照用于再水化备料的ATCC方法。将 细菌在1.0ml的TSB中再水化。ATCC介质5129：嗜血杆菌测试介质用于刺激细菌上 的HSa抗原。将备料TSB接种在#5129肉汤中，并在37℃下培养24-48小时。这会刺 激细菌上的体细胞和附着抗原的发育。将含有#5129肉汤的烧瓶或含有#814介质的平 板用备料肉汤培养液接种。在37℃和5％CO2下培育烧瓶。在48小时之后看到良好的生 长。将血液琼脂平板划线用于分离菌落从而确定表面形态。将烧瓶组合，并在大约3000 rpm下使用离心分离和无菌盐水(0.9％)30分钟来收获物质。将收获产物收集在试管中。 使用分光光度计计数和McFarland浑浊度标准检查密度。将物质稀释到大约1× 109/ml。添加与0.9％的无菌盐水(Herzberg，1972)中的培养液成1∶1比例的百分之四 (4％)脱氧胆酸钠(Difco)溶液，并在室温(22℃到24℃)下搅拌大约18小时。将 所得物质离心分离来除去完整细胞。上清液可用作HSa抗原的备料。测定干重量。将产 物在无菌PBS(pH 7.4)中稀释到1mg/ml以用于HSa免疫原。
            实例6：使用PH、PM、HS和HSa抗原制备ELISA平板
                     用来监控蛋鸡和饲料中的抗体
PH、PM、HS和HSa ELISA：使用100μl/ml在碳酸盐缓冲液(pH 9.6)中的各种 浓度的抗原(10μg-200μg/ml)涂敷96孔分析板(平底Costar)。将板在22℃到37 ℃之间培养长达18小时。将所述孔抽气来预防交叉污染。将板由每孔390μl的0.5％ BSA阻断，并在37℃下培养1小时。使用阳性或阴性参照列涂敷板以供对照。将板用 含有吐温TM20(TweenTM 20)的洗涤缓冲液冲洗一次。向重复孔中添加每孔100微升的 稀释样品，并在37℃下培养1小时。添加具有辣根过氧化物酶的山羊抗-鸡IgG结合物 (Kirkegard and Perry Laboratories；1∶1000到1∶3000)。培养1小时之后，根据厂商说明 书添加基质(TMB、KPL)，并在10分钟之后，由0.1M磷酸终止反应。在450nm下 用Dynatech ELISAReader测定孔的光学密度，并记录信息以供进一步数据分析。
                    实例7：随时间分析个别蛋和血清
在免疫期间的各个时期选择蛋以监控对特异性抗原的抗体反应。在第0天监控所选 择的鸡，并在第四个月之后以月为基础继续监控。从蛋壳中收集完整的蛋，然后取出1ml 样品。然后将该样品用缓冲液萃取来分析抗体内容物。使用PH、PM、HS和HSa免疫 原的标准ELISA进行分析。将负读数从OD读数中减去。
                    实例8：用PH免疫原免疫鸡
对所选择的大约19周大的产蛋母鸡一白来航鸡注射备料PH免疫原。一周分四次注 射(500μg、100μg、200μg和250μg)。最后一次开始注射两周后，收集血清样 品。如果需要追加剂量，则每次追加100μg(每6个月)。在四周内，所有母鸡的蛋中 都产生极好的抗体。EILSA PH平均读取值为1.00OD(对于1∶10,000稀释)和0.265OD (对于1∶50,000)。
                     实例9：用PM免疫原免疫鸡
对所选择的大约19周大的产蛋母鸡一白来航鸡注射备料PM免疫原。一周分四次 注射(500μg、100μg、200μg和250μg)。最后一次开始注射两周后，收集血清 样品。如果需要追加剂量，则每次追加100μg(每6个月)。在四周内，所有母鸡的蛋 中都产生极好的抗体。EILSA PM平均读取值为1.42OD(对于1∶10,000稀释)和0.68OD (对于1∶50,000)。
                     实例10：用HS免疫原免疫鸡
对所选择的大约19周大的产蛋母鸡一白来航鸡注射备料HS免疫原。一周分四次注 射(500μg、100μg、200μg和250μg)。最后一次开始注射两周后，收集血清样 品。如果需要追加剂量，则每次追加100μg(每6个月)。在四周内，所有母鸡的蛋中 都产生极好的抗体。EILSAHS平均读取值为0.95OD(对于1∶10,000稀释)和0.250OD (对于1∶50,000)。
                     实例11：用HSa免疫原免疫鸡
对所选择的大约19周大的产蛋母鸡一白来航鸡注射备料HS免疫原。一周分四次注 射(500μg、100μg、200μg和250μg)。最后一次开始注射两周后，收集血清样 品。如果需要追加剂量，则每次追加100μg(每6个月)。在四周内，所有母鸡的蛋中 都产生极好的抗体。EILSA HSa平均读取值为1.40OD(对于1∶10,000稀释)和0.576OD (对于1∶50,000)。
                   实例12：备料产品全蛋试剂的制备
将所选择的母鸡从所有四种免疫原的群组中组合，用于生产全蛋试剂的批量产品。 Sterling(美国专利第5,753,228号)就蛋的选择和其储存方面进行了精彩评述。将所述 蛋随机排列，并除去蛋壳。将整个蛋充分混合，并使用标准条件(60℃(140°F)，3.5 分钟)进行巴氏杀菌(Charley，H.和C.Weaver，第3版，Foods：a scientific approach， Merril-Prentice Hall，第350页，1998年)。经过巴氏杀菌之后，测试样品活性，并在4 ℃下储存直到干燥，或喷洒到载体上。分析250μl样品。
ELISA的结果实例如下：
经过巴氏杀菌的全蛋：PM、PH、HS、HSa混合物
  免疫原   稀释   O.D   PM   500   0.532   PM   2500   0.113   PH   500   0.466   PH   2500   0.115   HS   500   0.338   HS   2500   0.128   HSa   500   0.588   HSa   2500   0.155
                     实例13：饲料添加剂抗体活性分析
收集三批量所述物质样品。使用ELISA系统分析样品的PH、PM、HS、HSa免疫 原以监控经过巴氏杀菌和储存后的活性。在全蛋批料加工之后，记录良好的抗体反应。 来自实例20生产方法的三次批料的数据见下表：
  批料：液体   巴氏免疫原   信噪比   嗜血杆菌免疫原   信噪比   第1批   0.347   5.32   0.111   2.68   第2批   0.188   2.92   0.175   2.93   第3批   0.272   2.98   0.138   1.91
                  实例14：测试饲养场牛
将来自2种不同来源的一群222只小牛运送到爱达荷州(Idaho)。将109只小牛在 第0天处理，而113只在第2天处理。所有小牛接受正常接种疫苗和包括抗生素的处理， 抗生素是设计用于减少疾病压力，并提高平均日增重和饲料效率。群组的一半通过鼻内 投药接受所述物质。将剂量直接注射到鼻孔中(1.5cc/鼻孔：总共3ml)。给所述动物贴 上标签并监控35天。将所有牛饲养在同一个围栏中。测试组中N＝111，对照组中N＝ 111。观察到以下结果：
  对照组(n＝111)   测试组(n＝111)   数目   百分比   数目   百分比   送往医院者   20   18   7   6   因呼吸道疾病   治疗者   19     17     7     6     死亡者   3   3   0   0   因呼吸道疾病   死亡者   2     2     0     0       再治疗者   5   3
                      实例15：测试饲养场牛
在中夏(in the middle of summer)运送一群组165只出售谷仓小牛。在第0天和第2 天处理这些小牛。所有小牛接受正常接种疫苗和包括抗生素的处理，抗生素是设计用于 减少疾病压力，并提高平均日增重和饲料效率。群组的一半通过鼻内投药接受物质。将 剂量直接注射到鼻孔中(1.5cc/鼻孔：总共3ml)。给所述动物贴上标签并监控35天。 测试组中N＝82，而对照组中N＝83。观察到以下结果：
  对照组(n＝83)   测试组(n＝82)   数目   百分比   数目   百分比   送往医院者   36   47   24   28   因呼吸道疾病   治疗者   36     43     22     25     死亡者   9   5   因呼吸道疾病   死亡者   8     4  
  再治疗1X   14   12   治疗2X   10   4   治疗3X   4   3   治疗4X   3   2   治疗5X   6   1   治疗成本   $1,291.44   $796.51   每个接受治疗   的动物的平均   成本   $35.87       $30.64    
                    实例16：测试饲养场牛
将2群组小牛运送到爱达荷州(Idaho)。将第一组中的77只小牛在第0天处理。组 中的一半作为测试组处理(n＝39)，而另一半作为对照(n＝38)。第二组的78只在第2 天进行相同处理。所有小牛接受正常接种疫苗、驱虫剂、移植物和包括抗生素的处理， 抗生素是设计用于减少疾病压力，并提高平均日增重和饲料效率。测试群组通过鼻内投 药接受物质。将剂量直接注射到鼻孔中(1.5cc/鼻孔：总共3ml)。给所述动物贴上标签 并监控35天。送往医院的测试组动物每次经过料槽时都接受追加剂量物质和正常治疗。 对照组牛只接受正常治疗。测试组中N＝77，而对照组中N＝78。观察到以下结果：
  对照组(n＝78)   测试组(n＝77)   数目   百分比   数目   百分比   送往医院者   18   23   13   17   因呼吸道疾病   治疗者   18     23     13     17     死亡者   1   1   因呼吸道疾病   死亡者   1     1     再治疗1X   6   5   治疗2X   7   5   治疗3X   3   3   治疗4X   2   0
  RES实现者   1   2   RES死亡者   1   1   死亡率   1.28   1.30   治疗成本   $691.49   $478.59   运送每头的平   均成本   $38.42     $36.81     围栏中每头的   治疗成本   $8.87     $6.22  
                          实例17：测试断奶小牛
将四组小牛以每周大约1000到2000只小牛的速度断奶。将所述小牛以小群组处理。 所有小牛接受正常接种疫苗、驱虫剂、移植物和包括抗生素的处理，抗生素是设计用于 减少疾病压力，并提高平均日增重和饲料效率。所述群组都通过鼻内投药接受物质。将 剂量直接注射到鼻孔中(1.5cc/鼻孔：总共3ml)。给所述动物贴上标签并监控22天。 送往医院的群组动物每次经过料槽时都接受追加剂量物质和正常治疗。测试组中N＝ 5000。22天以后，只有50只动物因呼吸道问题而被排除。
                          实例18：测试舔食盆
舔食盆的制造工艺极为简单和直接。本制造实例是通过向标准盆中添加所制备的湿 物质和蒸馏浓缩浆液来上调水分含量。我们替代用干燥物质和液体物质来达到与标准盆 中相同的湿含量，这些标准盆通常用于完成具有类似特性的成品盆。
所制造的总批次舔食盆实例包含以下成份：
具有可溶物的干燥蒸馏谷物(Dried Distillers Grains with Solubles，DDGS)1170磅
玉米面筋粉(Corn Gluten Meal)                    1365磅
湿蒸馏谷物(湿块)                                465磅
维他命和矿物质预混合料                          750磅
氧化镁                                          600磅
混合抗体                                        540公升
食品级糖浆                                      10加仑
防霉剂                                          6磅
将DDGS、玉米面筋粉、湿块、防霉剂、预混合料和氧化镁置于5吨混合器卡车中， 并混合5分钟。然后添加所述物质和糖浆。将其混合30分钟。所得物质称重为大约5,630 磅。将这种混合物通过一侧面卸料槽卸载到28个200磅塑胶盆中，并接着压缩成固体 物质。然后将所述盆硬化48小时使之成为具有稍微发酵的甜味的非常坚硬的树皮棕色 产物(图4)。
在一次试验中，将一个盆放置在有197只600磅阉牛的围栏中的牛附近。测试饲养 场中的牛对这种物质非常感兴趣。它们一天光临所述盆若干次。消耗量为约7.7克/头/ 天。预测如果在围栏中放置更多盆，每头的消耗量会再高一些。
                  实例19：顶肥的发展
主要制剂中的一种可用于顶肥。以相同量(总共7-9L)，从PH、PM、HS和HAs 抗原免疫的母鸡处收集特定的全蛋。将全蛋物质添加到2L PBS(pH 7.4)、4.5L糖浆 和4L蒸馏水中。将其充分混合并添加诸如食品级维他命E、香草、苯甲酸钠、山梨酸 钾和柠檬酸钠等的防腐剂来预防微生物生长和延长保存期限。总量为18L。搅拌混合物 得到均质溶液。然后将混合物在Schlueter公司的食物巴氏杀菌器中经受巴氏杀菌。将所 得物质冷却并在4℃下保存直到使用。
根据需要可将这种物质倾倒到饲料的顶部。通常每7天分布一次，总共应用三次。
               实例20：用于气溶胶或喷雾的物质的发展
主要制剂中的一种可用于气溶胶或喷雾。以相同量(总共10L)，从PH、PM、HS 和HAs抗原免疫的母鸡处收获特定的全蛋。将全蛋物质添加到6L的PBS(pH 7.4)和 2L糖浆中。将其充分混合并添加诸如食品级维他命E、香草、苯甲酸钠、山梨酸钾和 柠檬酸钠等的防腐剂来预防微生物生长和延长保存期限。总量为18L。搅拌混合物得到 均质溶液。然后将混合物巴氏杀菌。将所述物质冷却并在4℃下保存直到使用。
将这种物质直接喷射到动物的头上以形成气溶胶。也可将物质倾倒到压力枪中，例 如水枪。牧场工人可将这些加载枪携带出此范围，或在饲养场围栏内，并根据需要直接 送到牛所在处。可视需要将物质直接喷射到个别动物的鼻子上。这成为一种在所述范围 之外极为常用的应用方式。通常每7天分布一次，总共应用三次，或根据需要应用。
                    实例21：猪的动物测试
用实例20制备的用于顶肥的物质测试各为大约60lbs的77只饲料猪群组。在第0、 7、14和21天给所述动物作为顶肥的物质。由于呼吸道综合症，造成在最后5年这个农 场的平均损失为7.5％，而且30％以上在放入围栏的前21天都用药物治疗过。在62天 的测试期间，所有动物状态良好，测试提前完成，而且损失0％，药物治疗0％。
                    实例22：猪的动物测试
用实例20制备的用于顶肥的物质测试大约50lbs的80只饲料猪的群组并考虑到群 组中发育不全者。在第0、7、14和21天给所述动物作为顶肥的物质。由于呼吸道综合 症，造成在最初的21天期间，这个农场的平均损失为5％，而且30％以上都用药物治 疗过。这些都是过去没有很好处理的动物。这是在过去5年农场的平均损失。在55天 的测试期间，所有动物状态良好，测试提前完成，并且比过去更好，损失1.25％，药物 治疗0％。
任何群聚于宿主呼吸道鼻咽部的微生物为了繁殖必定具有粘着或粘附于粘膜表面 的能力。例如多杀性巴氏杆菌、溶血性曼氏杆菌、睡眠嗜血杆菌、猪流行性感冒病毒和 支原体细菌的呼吸道肺炎复合有机体也不例外。可引起动物或人类呼吸道问题的微生物 体还包括其它来自真菌和寄生物种群的微生物。本发明的粘附抑制剂有力妨碍粘附并影 响累积基础，因此预防特异性目标微生物群聚、繁殖和沿呼吸道向下移动并感染包括肺 的下呼吸道。所述产物通过简单的鼻部注射和喷洒媒剂、顶部饲料或舔食盆实质上为宿 主提供特异性抗体制剂，所述制剂经过设计并不是治疗动物的任何疾病而仅仅是驱逐任 何存在的微生物并预防任何新引入的微生物接触上呼吸道。所述粘附抑制剂对宿主本身 不具有直接影响，它是纯天然的，完全不将任何不良残余物遗留在动物体内，并因此不 会对最终食物产品产生任何影响。此外，由于微生物的繁殖得到预防，因此它将随时间 (例如21-30天)通过自然退化从动物粘液中消失，这消除了饲养场中的重大污染源。 经过适当管理，交叉污染整个饲养场的其它动物的风险降低并基本上被消除。类似应用 可发展于伴侣动物、动物学动物或非食用动物或人类。他们也存在呼吸道问题。
很显然，可在不背离本发明精神和范畴的前提下对本发明上文所述内容作出许多修 改和变化。所描述的具体实施方式仅作为实例给出并且本发明仅由所附加的权利要求书 所限制。主张本发明专有特性或特权的实施方式如上所述。