肺吸虫病(Paragonimiasis)是一种常见和重要的人兽共患寄生虫病，主 要流行于亚洲、非洲和拉丁美洲，尤以亚洲地区多见，在我国流行于22个省、 市、自治区，估计每年感染者约200万之多，严重危害人类健康，尤其是青少 年、儿童的健康。
肺吸虫病主要是肺吸虫虫体(幼虫或成虫)在人体组织与器官内移行、寄 居造成的机械性损伤，及其代谢物等引起的免疫病理反应。在我国，致病虫种 主要为卫氏肺吸虫和斯氏肺吸虫，其成虫寄生于人、犬、果子狸等肉食动物的 肌肉和器官如肝、肺中；尤其斯氏肺吸虫作为仅在我国流行的一种吸虫，其在 人体内不能发育成熟，而以幼虫在人体内移行、窜扰，常常引起游走性皮下包 块或结节，脑占位性病变和内脏损伤等肺外型寄生虫表现，造成多器官、组织 的损害。肺吸虫病根据肺吸虫寄生部位不同，出现复杂的病理变化和多种多样 的临床表现，临床症状不典型，易与其他疾病混淆，误诊率极高。对于感染早 期、低度感染及肺外型肺吸虫病患者，以发现虫卵或虫体的病原学检测方法往 往难以获得检测结果，因此，肺吸虫病的检测和鉴别检测在很大程度上需依赖 于免疫学检测。
目前，用于肺吸虫病的免疫学检测方法种类较多，包括抗体检测方法如皮 内试验(IT)、补体结合试验(CFT)、间接血凝试验(IHA)、对照免疫电泳试验 (CIEP)、免疫荧光试验(IFAT)、酶联免疫吸附试验(ELISA)等；以及抗原检 测方法如多克隆或单克隆抗体ELISA法等。抗体检测方法敏感性高，但因治愈后 抗体在体内仍可维持较长时间，致使疗效考核效果不理想，尤其在疫区反复感 染人群中无法区别是现行感染还是既往感染；抗体检测中使用的抗原，如虫体 抗原、排泄分泌抗原等，均为粗抗原，易出现同源吸虫间交叉反应，并严重依 赖于虫体来源的成分；各实验室的检测抗原不一致，导致无法对检测结果进行 比较等问题。此外，循环抗原(CAg)检测，即对虫体的代谢产物及腺体分泌液、 子宫液、脱落的虫体皮层表膜等抗原性物质的检测，方法特异性高，能反映感 染虫荷；因CAg出现较抗体产生为早，有早期检测价值；而且经有效治疗使虫体 死亡后抗原消失快，可用于确诊和(或)疗效考核，但其不足之处在于敏感性 较低，并受多种因素干扰。这一现状严重影响了临床上肺吸虫感染的早检测、 早预防、早治疗，限制了人肺吸虫感染的流行病学调查研究。因此，筛选一种 高度特异、敏感的用于肺吸虫病的单一检测抗原成分，并制成肺吸虫病检测试 剂盒，准确、快速、简便地进行肺吸虫病的诊断与鉴别诊断、以及疗效考核具 有重要意义及广阔的应用前景。

有鉴于此，为了解决现有肺吸虫病免疫学检测方法中抗体检测法存在的疗 效考核效果不理想、有交叉反应干扰、以及无法对各实验室的检测结果进行比 较等技术问题，发明人采用十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)、 双向凝胶电泳(2-DE)、蛋白免疫印迹(Western Blotting)、质谱等技术对 肺吸虫的成虫、幼虫及囊蚴期的虫体蛋白进行分析，识别出虫体排泄分泌物中 能用于免疫检测的特异性抗原，通过逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR)获得其 编码基因片段(Genbank登录号为AY083923)，根据所得序列推导的多肽由165 个氨基酸组成，命名为肺吸虫排泄分泌蛋白(Excretory-secretory protein， ESP)，制备该蛋白并经动物免疫制备出特异性抗体，再进一步制得肺吸虫病检 测试剂盒。
本发明的目的在于，提供一种肺吸虫病检测试剂盒，包括检测条、样品稀 释液，检测抗原为肺吸虫ESP蛋白，其氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示；
进一步，所述检测抗原为胶体金标记的肺吸虫ESP蛋白；
进一步，所述检测条由样品垫1和吸收垫5顺序贴附于带背衬6的检测层 2上构成；检测层2上包被由抗人IgG抗体形成的检测线3和抗肺吸虫ESP蛋 白的多克隆抗体形成的质控线4；
进一步，所述样品稀释液为浓度为0.01-0.05mol/L、pH值为7.0-7.2的 磷酸盐缓冲液即PBS缓冲液，内含浓度为5-8μg/ml的胶体金标记的肺吸虫ESP 蛋白、质量百分浓度为1％的牛血清白蛋白即BSA；
进一步，所述试剂盒内还有样品稀释孔。
本发明的另一目的在于，提供所述肺吸虫病检测试剂盒的制备方法，包括 以下步骤：
a.肺吸虫ESP蛋白的制备：肺吸虫ESP蛋白的氨基酸序列如SEQ ID No.2 所示，其编码基因序列如SEQ ID No.1所示，根据氨基酸或核苷酸序列制备， 即得肺吸虫ESP蛋白；
b.抗肺吸虫ESP蛋白的多克隆抗体的制备：用肺吸虫ESP蛋白于哺乳动物 的肌肉或皮下注射进行多次免疫，收集被免疫动物的血液，分离血清，即得抗 肺吸虫ESP蛋白的多克隆抗体；
c.标记的肺吸虫ESP蛋白的制备：用标记物对肺吸虫ESP蛋白进行标记， 即得经标记的肺吸虫ESP蛋白；
d.检测层的制备：将硝酸纤维素即NC膜置浓度为0.01-0.05mol/L、pH 值为8.0-8.2、含有质量百分浓度为1％的BSA、质量百分浓度为1％的吐温-20 的PBS缓冲液中浸泡30分钟，于温度为37℃的条件下烘干；用抗体稀释液即 浓度为0.01mol/L、pH值为8.0-8.2、含有质量百分浓度为1％的BSA的PBS 缓冲液，对浓度为1mg/ml的抗人IgG抗体溶液、浓度为1mg/ml的抗肺吸虫 ESP蛋白的多克隆抗体溶液分别进行1∶500-1∶1000稀释；将稀释后的抗人IgG 抗体溶液、抗肺吸虫ESP蛋白的多克隆抗体溶液，用点膜仪以每厘米2-3μl 体积分别喷到NC膜上，形成检测线和质控线；包被有检测线和质控线的NC膜 经真空干燥后，用浓度为0.01mol/L、pH值为8.8-9.0、含有质量百分浓度为 1％的BSA的PBS缓冲液封闭2小时，再用浓度为0.01mol/L、pH值为8.8-9.0 的PBS缓冲液洗涤，真空干燥，即得检测层；
e.样品垫的制备：将吸水滤纸置浓度为0.01mol/L、pH值为7.2的PBS 缓冲液中浸泡30分钟，于温度为37℃条件下烘干，即得样品垫；
f.吸收垫的制备：取吸水滤纸，即得吸收垫；
g.检测条的制备：将样品垫1和吸收垫5顺序贴附于带背衬6的检测层2 上，即得检测条；
h.试剂盒的制备：将检测条、样品稀释液、样品稀释孔装盒，即得试剂盒； 其中，样品稀释液为浓度为0.01-0.05mol/L、pH值为7.0-7.2、含有浓度为 5-8μg/ml的标记的肺吸虫ESP蛋白、质量百分浓度为1％的BSA的PBS缓冲液；
进一步，所述步骤a中肺吸虫ESP蛋白的制备采用以下方法：
以斯氏狸殖吸虫成虫总RNA为模板，采用如下简并引物：上游引物5’-TCA (AG)GG(AGCT)CA(AG)TG(CT)GG(AGCT)TC(AGCT)TG(CT)TGG-3’、 下游引物5’-CCA(AG)CT(AG)TT(CT)TT(AGCT)AC(AG)ATCCA(AG)TA-3’， 进行逆转录聚合酶链式反应，得到肺吸虫ESP蛋白的编码基因片段，再将所得 编码基因片段与pQE-80L表达载体进行TA连接，转化入BL21大肠杆菌感受态 细胞，用含氨苄青霉素的LB平板进行筛选培养，将阳性宿主菌接种于含氨苄青 霉素的液体LB培养基中培养，用异丙基硫代半乳糖苷即IPTG诱导表达后，超 声破碎，离心收集上清液，以Ni2+-NTA树脂亲和层析法进行纯化，即得肺吸虫 ESP蛋白；
进一步，所述步骤b中抗肺吸虫ESP蛋白的多克隆抗体的制备采用以下方 法：
将1mg/ml肺吸虫ESP蛋白溶液与弗氏完全佐剂(Freund’s complete adjuvant，FCA)或弗氏不完全佐剂(Freund’s incomplete adjuvant，FIA) 等体积混合，充分乳化，制备肺吸虫ESP蛋白免疫抗原，免疫雄性新西兰白兔； 免疫步骤如下：初次免疫，以弗氏完全佐剂免疫抗原于家兔后腿、腹部皮下多 点注射，每只1ml；间隔1-2周，第二次免疫，以弗氏不完全佐剂免疫抗原于 家兔后腿肌肉或背部皮下多点加强免疫，每只1ml；之后连续免疫2次，每次 间隔2周，免疫成分、剂量、途径同第二次免疫；第四次免疫后5-7天，对经 琼脂双扩散试验测定抗体效价达1∶32以上的家兔，颈动脉放血，离心分离血 清，血清经饱和硫酸铵溶液沉淀、透析，即得抗肺吸虫ESP蛋白的多克隆抗体；
进一步，所述步骤c中标记的肺吸虫ESP蛋白的制备采用以下方法：
用三蒸水溶解氯金酸，制成0.1g/L溶液，置沸水浴中煮沸，按4∶1的比 例加入质量百分浓度为1％的柠檬酸三钠溶液，于沸水浴中快速搅拌，直至溶液 呈稳定的红色，继续于沸水浴中加热10分钟，冷却至室温后补足失水，检测 颗粒均匀度及粒度；取均匀的粒度为15-20nm的胶体金100ml，用碳酸钾溶 液调pH值至8.8-9.0，于室温、快速搅拌条件下缓慢加入浓度为1.5-2.0mg/ml 的肺吸虫ESP蛋白溶液3-5ml，继续搅拌10-15分钟，加入BSA至最终质量百 分浓度为1-2％，再搅拌10-15分钟；所得溶液于4000r/min离心20分钟，弃 沉淀，上清液以10000r/min离心60分钟，弃去上清液，沉淀用浓度为0.01 mol/L、pH值为8.0-8.2、含有质量百分浓度为1-2％的BSA的PBS缓冲液洗涤， 再用浓度为0.01mol/L、pH值为8.2、含有质量百分浓度为1％的BSA、质量百 分浓度为0.02％的叠氮化钠的PBS缓冲液5-10ml重悬，即得胶体金标记的肺 吸虫ESP蛋白溶液。
本发明所述肺吸虫病检测试剂盒，与肺吸虫病免疫检测常用的ELISA法 比较，主要具有以下优点：(1)具有高度特异、敏感性，肝吸虫病、血吸 虫病的交叉反应干扰小，假阳性率低于ELISA法，可用于肺吸虫病的诊断与 鉴别诊断；(2)具有疗效考核的作用，在肺吸虫病患者经有效药物治疗后3-6 月，检测结果将转阴，转阴率高于ELISA法，可用于肺吸虫病的疗效考核；(3) 使用经过纯化的单一抗原蛋白，不依赖于虫体来源的成分，可对各实验室的检 测结果进行比较；(4)无需任何特殊仪器，可用于现场操作；(5)方法简便， 不需由专业人员操作；(6)检测快速，10分钟以内可获结果；(7)检测成本低； (8)检测过程对人体无危害，对环境无污染；(9)贮存方便，对温度要求不高， 置4℃下有效保存期可达6个月，在室温下可保存3个月。
本发明的其他优点、目标，和特征在某种程度上将在随后的说明书中进 行阐述，并且在某种程度上，基于对下文的考察研究对本领域技术人员而言 将是显而易见的，或者可以从本发明的实践中得到教导。本发明的目标和其 他优点可以通过下面的说明书和权利要求书来实现和获得。
附图说明
为了使本发明的目的、技术方案和优点更加清楚，下面将结合附图和优 选实施例对本发明作进一步的详细描述，其中：
图1为肺吸虫ESP蛋白编码基因RT-PCR扩增产物的1％琼脂糖凝胶电泳图；
图2为双酶切阳性克隆质粒的1％琼脂糖凝胶电泳图；
图3为重组表达载体pQE-80L/ESP的定向构建流程图；
图4为大肠杆菌诱导表达产物的SDS-PAGE图；
图5为肺吸虫病检测条的剖面图；
图6为肺吸虫病检测试剂盒检测原理图；
图7为检测线阳性结果原理图；
图8为质控线原理图；
图9为肺吸虫病检测试剂盒检测结果图。

下面参照优选实施例对本发明进行详细的描述。应当理解，下面的优选 实施例仅为了说明本发明，而不是为了限制本发明的保护范围。
一、肺吸虫病检测试剂盒的制备
1、肺吸虫ESP蛋白的制备
a.引物的设计与合成
根据吸虫半胱氨酸蛋白酶氨基酸保守序列，设计并合成如下简并引物：
上游引物：5′-TCA(AG)GG(AGCT)CA(AG)TG(CT)GG(AGCT)TC(AGCT) TG(CT)TGG-3′；
下游引物：5′-CCA(AG)CT(AG)TT(CT)TT(AGCT)AC(AG)ATCCA(AG) TA-3′；
b.肺吸虫ESP蛋白编码基因的RT-PCR扩增
取2条斯氏狸殖吸虫成虫(共60mg)，用Tripure试剂(美国Roche公 司)于冰浴下匀浆，按照Tripure试剂说明提取虫体总RNA；
以提取的虫体总RNA为模板，利用RT-PCR试剂盒(北京博大泰克生物基因技 术有限责任公司)进行逆转录及cDNA扩增：以Oligo(dT)16为引物进行逆转录为 cDNA时，37℃水浴2小时，95℃热变性5分钟；以步骤a所述简并引物进行PCR 扩增双链cDNA时，94℃预变性5分钟，然后94℃1分钟、43℃2分钟、72℃2 分钟，共45个循环，最后72℃5分钟；PCR结束后，采用质量百分浓度为1％的琼 脂糖凝胶电泳检测PCR产物，结果如图1所示，其中1泳道为PCR分子量标准，2 泳道为PCR产物，从图可知，在约500bp的位置出现一条特异性DNA条带，与理 论预测值相符；
利用Silver Beads DNA胶纯化回收试剂盒(上海生物工程技术服务有限 公司)对PCR产物进行纯化，按照试剂盒说明操作，选择约500bp的目的片段 进行切胶回收纯化；
c.肺吸虫ESP蛋白编码基因的克隆
将步骤b所得纯化的目的片段与pMD18T载体(宝生物工程(大连)有限公司) 进行TA连接，转化入CaCl2法制备的DH5α大肠杆菌感受态细胞，并涂布在蓝 白斑筛选培养基平板上，挑取白色菌落，接种到含氨苄青霉素的液体LB培养基 中，于温度为37℃、150r/min振摇过夜，碱裂解法小量提取质粒，用PCR方 法(以质粒为模板，采用步骤b所述PCR反应条件进行PCR扩增)和EcoR I、 Hind III双酶切鉴定阳性克隆质粒；
d.阳性克隆质粒序列测定
取步骤c所得阳性克隆质粒，委托上海生物工程技术服务有限公司测定插 入片段的序列，获得495bp的cDNA序列(如SEQ ID No.1所示)，在Genbank 中进行注册，登录号为AY083923；根据所得序列，用DNASIS程序推导出其编 码的氨基酸序列(如SEQ ID No.2所示)；
e.肺吸虫ESP蛋白编码基因的PCR扩增
依据肺吸虫ESP蛋白的基因序列，结合pQE-80L表达载体上的内切酶位点， 设计表达引物，并在上游引物引入BamH I酶切位点(下划线部分)，在下游引物 引入Hind III酶切位点(下划线部分)，同时在5’末端添加相应的酶切保护碱基：
上游引物，5’-CGGGATCCCAAGGTCAATGTGGCTC-3’；
下游引物，5’-CCAAGCTTGATTGTTAAAAATAGTTGG-3’；
利用上述表达引物，以步骤c所得阳性克隆质粒为模板，采用步骤b所述 PCR反应条件进行PCR扩增，切胶回收，纯化PCR产物，按照步骤c所述再次 进行TA克隆，并经测序鉴定；
f.肺吸虫ESP蛋白重组表达载体的构建及阳性克隆的筛选
将步骤e测序鉴定后的阳性克隆质粒用BamH I和Hind III进行双酶切，双 酶切产物用琼脂糖凝胶电泳进行鉴定，结果如图2所示，其中1泳道为双酶切 产物，2泳道为DNA分子量标准，从图可知，酶切后得到两条带，其中一条约 500bp，与目的片段大小一致；切胶回收纯化该片段，并在T4DNA连接酶的作 用下，与经BamH I和Hind III双酶切消化后的pQE-80L载体(德国Qiagen公 司)相连接，将连接产物转化入CaCl2法制备的BL21大肠杆菌感受态细胞，用 含氨苄青霉素的LB平板进行筛选培养，从LB平板上随机挑取3个白色菌落， 接种于液体LB培养基中，于温度为37℃、150r/min振摇过夜，碱裂解法小量 提取质粒，以质粒为模板，采用步骤b所述PCR反应条件进行PCR扩增，琼脂 糖凝胶电泳鉴定有无插入片段后，再通过序列测定确保插入方向正确；测序结 果表明实验获得的质粒为含有肺吸虫ESP蛋白编码基因的重组质粒；重组表达 载体pQE-80L/ESP的定向构建流程如图3所示；
g.肺吸虫ESP蛋白的诱导表达
挑取步骤f经测序鉴定的阳性克隆菌落，同时设pQE-80L空载体转化菌落 和BL21空菌株菌落为对照，接种于含氨苄青霉素的液体LB培养基中，于温度 为37℃、150r/min振摇过夜，取3ml过夜培养菌液接种于300ml含氨苄青 霉素的液体LB培养基中，于温度为37℃、200r/min振摇培养1小时，加入 浓度为200mmol/L的IPTG诱导剂300μl，继续培养5小时，收集全部菌液， 9000g离心5分钟，去除上清液，沉淀用等体积的浓度为0.01mol/L、pH 值为7.2的PBS缓冲液洗涤3次后，用5倍体积的细菌裂解液重悬，冰浴超声， 条件为超声5秒间隔5秒，重复50次，功率200W；取超声后的匀浆物，离心， 分别收集沉淀和上清液，用SDS-PAGE凝胶电泳检测目的蛋白的表达情况，结果 如图4所示，其中1泳道为诱导表达菌株，2泳道为未诱导菌株，3泳道为空载 体菌株，4泳道为蛋白质分子量标准，从图可知，肺吸虫ESP蛋白被BL21大肠 杆菌在IPTG诱导下高效表达，表达产物分子量大小为22kDa，与预计大小相 一致；
h.肺吸虫ESP蛋白大肠杆菌表达产物的纯化
将超声匀浆后的离心上清液，利用载体C末端引入的6个His tag标签， 以Ni2+-NTA树脂(德国Qiagen公司)亲和层析法纯化目的蛋白，按照说明书中 所述步骤进行纯化，即制得肺吸虫ESP蛋白，置4℃保存；
2、抗肺吸虫ESP蛋白的多克隆抗体的制备
将1mg/ml肺吸虫ESP蛋白溶液与弗氏完全佐剂或弗氏不完全佐剂等体积混 合，充分乳化，制备肺吸虫ESP蛋白免疫抗原，免疫雄性新西兰白兔；免疫步 骤如下：初次免疫，以弗氏完全佐剂免疫抗原于家兔后腿、腹部皮下多点注射， 每只1ml；间隔2周，第二次免疫，以弗氏不完全佐剂免疫抗原于家兔后腿肌 肉或背部皮下多点加强免疫，每只1ml；之后连续免疫2次，每次间隔2周， 免疫成分、剂量、途径同第二次免疫；第四次免疫后7天，对经琼脂双扩散试 验测定抗体效价达1∶32以上的家兔，颈动脉放血，离心分离血清，血清经饱 和硫酸铵溶液沉淀、透析，即制得抗肺吸虫ESP蛋白的多克隆抗体，置-20℃冷 冻保存；
3、胶体金标记的肺吸虫ESP蛋白的制备
用三蒸水溶解氯金酸，制成0.1g/L溶液，置沸水浴中煮沸，按4∶1的比 例加入质量百分浓度为1％的柠檬酸三钠溶液，于沸水浴中快速搅拌，直至溶液 呈稳定的红色，继续于沸水浴中加热10分钟，冷却至室温后补足失水，检测 颗粒均匀度及粒度；取均匀的粒度为20nm的胶体金100ml，用浓度为0.2mol/L 的碳酸钾溶液调pH值至9.0，于室温、快速搅拌条件下缓慢加入浓度为2.0 mg/ml的肺吸虫ESP蛋白溶液5ml，继续搅拌10分钟，加入BSA至最终质量 百分浓度为1％，再搅拌10分钟；所得溶液于4000r/min离心20分钟，弃沉 淀，上清液以10000r/min离心60分钟，弃去上清液，沉淀用浓度为0.01mol/L、 pH值为8.2、含有质量百分浓度为1％的BSA的PBS缓冲液洗涤2次，再用浓度 为0.01mol/L、pH值为8.2、含有质量百分浓度为1％的BSA、质量百分浓度为 0.02％的叠氮化钠的PBS缓冲液10ml重悬，制得浓度为5μg/ml的胶体金标记 的肺吸虫ESP蛋白溶液，置4℃保存备用；
4、检测层的制备
将NC膜置浓度为0.01mol/L、pH值为8.2、含有质量百分浓度为1％的BSA、 质量百分浓度为1％的吐温-20的PBS缓冲液中浸泡30分钟，于温度为37℃的 条件下烘干；用抗体稀释液即浓度为0.01mol/L、pH值为8.2、含有质量百分 浓度为1％的BSA的PBS缓冲液，对浓度为1mg/ml的兔抗人IgG抗体溶液、浓 度为1mg/ml的兔抗肺吸虫ESP蛋白的多克隆抗体溶液分别进行1∶1000稀释； 将稀释后的兔抗人IgG抗体溶液、兔抗肺吸虫ESP蛋白的多克隆抗体溶液，用 Bio-dot ZX1000点膜仪(BioDot公司)的气动喷头(AIR-JET)以每厘米3μl 体积分别喷到NC膜上，形成检测线和质控线，检测线距样品垫13mm，质控线 距吸收垫13mm，两线距离8mm；包被有检测线和质控线的NC膜经真空干燥后， 用浓度为0.01mol/L、pH值为9.0、含有质量百分浓度为1％的BSA的PBS缓冲 液封闭2小时，再用浓度为0.01mol/L、pH值为9.0的PBS缓冲液洗涤，真 空干燥，置4℃保存备用；
5、样品垫的制备
将吸水滤纸置浓度为0.01mol/L、pH值为7.2的PBS缓冲液中浸泡30分 钟，于温度为37℃条件下烘干，置4℃保存备用；
6、吸收垫的制备
取吸水滤纸，备用；
7、检测条的制备
如图5所示，将宽为5mm，长分别为25mm、30mm的样品垫1及吸收垫5 顺序贴附于长80mm的带背衬6的检测层2上，即制得检测条；
8、试剂盒的制备
将检测条每10条一包，加入干燥剂，真空封装；样品稀释液一瓶(5ml)； 样品稀释孔一条(10孔)装入聚氯乙烯袋内，即制得肺吸虫病检测试剂盒；其 中，样品稀释液为浓度为0.01mol/L，pH值为7.2，含有浓度为5μg/ml的胶 体金标记的肺吸虫ESP蛋白、质量百分浓度为1％的BSA的PBS缓冲液；样品 稀释孔大小、为0.6×1.0cm。
二、肺吸虫病检测试剂盒的检测方法
1、检测原理
检测原理如图6所示，以胶体金标记的肺吸虫ESP蛋白作为检测抗原，以 抗人IgG抗体为检测线，抗肺吸虫ESP蛋白的多克隆抗体为质控线，利用免疫 渗滤技术来检测样品中是否含有抗肺吸虫IgG抗体。检测时，若样品中含有抗 肺吸虫IgG抗体，其先和胶体金标记的肺吸虫ESP蛋白结合，形成抗原-抗体复 合物；由于毛细管作用，反应复合物沿NC膜向前泳动，到达检测线时，遇到包 被在NC膜上的抗人IgG抗体，就会形成如图7所示的，胶体金标记的肺吸虫 ESP蛋白-抗肺吸虫IgG抗体-抗人IgG抗体复合物，从而富集在检测线上，形 成紫红色沉淀线；未结合抗肺吸虫IgG抗体的胶体金标记的肺吸虫ESP蛋白则 通过检测线，形成如图8所示的，抗原-抗体复合物，富集在质控线上，形成紫 红色沉淀线，判为阳性结果；若样品中不含有抗肺吸虫IgG抗体，不能与胶体 金标记的肺吸虫ESP蛋白结合，到达检测线时，就不会形成如图7所示的复合 物，而未结合抗肺吸虫IgG抗体的胶体金标记的肺吸虫ESP蛋白通过检测线， 富集在质控线上，形成紫红色沉淀线，判为阴性结果。
2、检测方法
取待测血清15-20μl置样品稀释孔内，用样品稀释液稀释至50μl；取出 检测条，将检测条的样品垫端浸入制备好的样品中，放置约5-10分钟，观察 结果。
3、结果判定
结果判定见图9，A为阳性结果；B为阴性结果。当检测条出现肉眼可见的 紫红色质控线，同时出现肉眼可见的紫红色检测线，结果判为阳性，记为“+”； 检测线颜色越深，说明被检测样品的抗体水平越高；当检测条出现肉眼可见的 紫红色质控线，没有出现肉眼可见的紫红色检测线，结果判为阴性，记为“-”； 当检测条没有出现肉眼可见的紫红色质控线，不管是否出现肉眼可见的紫红色 检测线，结果都判为检测条失效，应废弃。
三、肺吸虫病检测试剂盒的鉴定
1、特异性
方法：采用本发明所述试剂盒对肺吸虫病患者、肝吸虫病患者、血吸虫 病患者和健康者血清进行检测，并与ELISA法进行比较；ELISA法为常规方 法，即将抗原包被于PVC条板，取待测血清10μl，加PBS缓冲液90μl， 于温度为37℃条件下孵育30分钟，洗涤3次，加入辣根过氧化物酶(HRP) 标记的第二抗体，于温度为37℃条件下作用30分钟，洗涤3-5次，3，3，5，5- 四甲基联苯胺(TMB)显色，用酶标仪测OD值，待检孔OD值大于阴性对照 2.1倍者为阳性。
结果：见表1。本发明所述试剂盒和ELISA法检测肺吸虫病患者血清抗 体的阳性率分别为96.5％(55/57)和100.0％(57/57)，两法间差异无显著 性(P＞0.05)；采用本发明所述试剂盒检测肝吸虫病患者血清、血吸虫病 患者血清和健康者血清，除血吸虫病患者血清的交叉反应率为5.0％外，其 余两者均为阴性，假阳性率低于ELISA法。
结论：本发明所述试剂盒具有高度特异性，可以用于肺吸虫病的诊断， 以及肺吸虫病与其它吸虫病的鉴别诊断。
表1、本发明所述试剂盒与ELI SA法检测不同血清的结果

2、敏感性
方法：采用本发明所述试剂盒对28例疑似肺吸虫病患者血清进行检测，并 与ELISA法进行比较；ELISA法为常规方法。
结果：见表2。两种方法检测结果的总符合率为100％(21/28)。经x2检 验，两法间差异无显著性(P＞0.05)。检测结果呈阳性的21例病人最终确诊为 肺吸虫病患者，因此，两种方法的敏感性均为100％。
结论：本发明所述试剂盒具有高度敏感性。
表2、本发明所述试剂盒与ELISA法检测敏感性比较

3、疗效考核作用
方法：在肺吸虫病患者经有效药物治疗后3个月与6个月，采用本发明所 述试剂盒对7例肺吸虫病患者血清进行检测，并与ELISA法进行比较；ELISA 法为常规方法。
结果：采用本发明所述试剂盒检测，7例肺吸虫病患者经有效药物治疗后3 个月，有4例转阴，转阴率57.1％；治疗后6个月，7例全部转阴，转阴率100.0％； 而采用ELI SA法分别于治疗后3个月、6个月检测，无1例转阴。
结论：采用本发明所述试剂盒检测，转阴率明显高于ELISA法，可用于肺 吸虫病的疗效考核。
4、稳定性
将本发明所述试剂盒分别置4℃和室温保存，每隔一个月检测一次。结果 表明，4℃保存的试剂盒6个月内，室温保存的试剂盒3个月内，都能够对肺吸 虫病患者进行快速(10分钟以内)、灵敏的诊断与鉴别诊断。
5、重复性
取肺吸虫病患者血清和健康者血清各20例，采用本发明所述试剂盒分别连 续进行5次测定，结果阳性和阴性结果不变，显示本发明所述试剂盒的检测重 复性良好。
尽管通过参照本发明的某些优选实施例，已经对本发明进行了描述，但 本领域的普通技术人员应当理解，可以在形式上和细节上对其作出各种各样 的改变，而不偏离所附权利要求书所限定的本发明的精神和范围。
序列表
<110>中国人民解放军第三军医大学
<120>肺吸虫病检测试剂盒及其制备方法
<160>2
<210>1
<211>495
<212>RNA
<213>斯氏狸殖吸虫(Pagumogonimus skrjabini)
<220>
<221>CDS
<222>(1)...(495)
<400>1
caa ggt caa tgt ggc tcc tgc tgg gcg ttt tcg gta gta gga aat 45
Gln Gly Gln Cys Gly Ser Cys Trp Ala Phe Ser Val Val Gly Asn
1               5                   10                  15
att gaa ggt caa tgg ttt ctc aag acc ggt cag ctt atc agt ctg 90
Ile Glu Gly Gln Trp Phe Leu Lys Thr Gly Gln Leu Ile Ser Leu
                20                  25                  30
agc aaa cag caa ttg gtc gat tgt gac aag gtg gac cac gga tgc 135
Ser Lys Gln Gln Leu Val Asp Cys Asp Lys Val Asp His Gly Cys
                35                  40                  45
aat ggt gga tgg cca cca tac aca tac ggc gag atc aaa cgg ttg 180
Asn Gly Gly Trp Pro Pro Tyr Thr Tyr Gly Glu Ile Lys Arg Leu
                50                  55                  60
ggt ggc tta gag acg caa caa gac tat ccc tat att gga aga cag 225
Gly Gly Leu Glu Thr Gln Gln Asp Tyr Pro Tyr Ile Gly Arg Gln
                65                  70                  75
caa acg tgt aga atg gat aag tcg aag ttg ttg acg aaa atc gac 270
Gln Thr Cys Arg Met Asp Lys Ser Lys Leu Leu Thr Lys Ile Asp
                80                  85                  90
ggg tca att gtt ctg gag aga gat gag tat aaa cag gca gct tgg 315
Gly Ser Ile Val Leu Glu Arg Asp Glu Tyr Lys Gln Ala Ala Trp
                95                  100                 105
ctc gca gaa cac gga cca atg gct tca act ctc aat gcc aat tat 360
Leu Ala Glu His Gly Pro Met Ala Ser Thr Leu Asn Ala Asn Tyr
                110                 115                 120
ctt cag tac tac cga tcc gga atc agt cat ccg tcc agg tat gag 405
Leu Gln Tyr Tyr Arg Ser Gly Ile Ser His Pro Ser Arg Tyr Glu
                125                 130                 135
tgt aat cct gct aga ctg aac cac ggc gta ctg act gtg ggc tat 450
Cys Asn Pro Ala Arg Leu Asn His Gly Val Leu Thr Val Gly Tyr
                140                 145                 150
ggc acg gaa aat ggt att ccc tac tgg att gtt aaa aat agt tgg 495
Gly Thr Glu Asn Gly Ile Pro Tyr Trp Ile Val Lys Asn Ser Trp
                155                 160                 165
<210>2
<211>165
<212>PRT
<213>斯氏狸殖吸虫(Pagumogonimus skrjabini)
<400>2
Gln Gly Gln Cys Gly Ser Cys Trp Ala Phe Ser Val Val Gly Asn
1               5                   10                  15
Ile Glu Gly Gln Trp Phe Leu Lys Thr Gly Gln Leu Ile Ser Leu
                20                  25                  30
Ser Lys Gln Gln Leu Val Asp Cys Asp Lys Val Asp His Gly Cys
                35                  40                  45
Asn Gly Gly Trp Pro Pro Tyr Thr Tyr Gly Glu Ile Lys Arg Leu
                50                  55                  60
Gly Gly Leu Glu Thr Gln Gln Asp Tyr Pro Tyr Ile Gly Arg Gln
                65                  70                  75
Gln Thr Cys Arg Met Asp Lys Ser Lys Leu Leu Thr Lys Ile Asp
                80                  85                  90
Gly Ser Ile Val Leu Glu Arg Asp Glu Tyr Lys Gln Ala Ala Trp
                95                  100                 105
Leu Ala Glu His Gly Pro Met Ala Ser Thr Leu Asn Ala Asn Tyr
                110                 115                 120
Leu Gln Tyr Tyr Arg Ser Gly Ile Ser His Pro Ser Arg Tyr Glu
                125                 130                 135
Cys Asn Pro Ala Arg Leu Asn His Gly Val Leu Thr Val Gly Tyr
                140                 145                 150
Gly Thr Glu Asn Gly Ile Pro Tyr Trp Ile Val Lys Asn Ser Trp
                155                 160                 165