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具有抗补体活性的杜仲叶多糖及其提取与分离纯化方法

阅读:631发布:2023-01-24

专利汇可以提供具有抗补体活性的杜仲叶多糖及其提取与分离纯化方法专利检索,专利查询,专利分析的服务。并且本 发明 公开了具有抗补体活性的杜仲叶多糖及其提取与分离纯化方法,具有抗补体活性的杜仲叶多糖是酸性多糖。提取方法是将干杜仲碎片加入石油醚,回流并磁 力 搅拌处理,抽滤;滤渣 风 干后用热 水 沸腾 回流提取,纱布挤滤除渣;并提取液,减压浓缩;将多糖浓缩液与无水 乙醇 混合,静止沉淀,离心得醇沉多糖。分离纯化方法是将粗多糖组分配置成多糖溶液,抽滤,用大孔 树脂 脱色;用Sevag法脱蛋白,用Sevag 试剂 与多糖样品混匀,离心分离,收集上清液并浓缩,紫外扫描,直至无吸收峰为止;分别将粗多糖溶液 透析 ;然后称取多糖溶于蒸馏水中,上 纤维 素柱洗脱,得到精多糖的 单体 组分。本法实现了杜仲叶资源的开发,为将其应用于制药工业打下 基础 ,为人类的健康服务。,下面是具有抗补体活性的杜仲叶多糖及其提取与分离纯化方法专利的具体信息内容。

1.具有抗补体活性的杜仲叶多糖,其特征在于该多糖是酸性多糖,其中活性最高的组成为:L-鼠李糖、D-岩藻糖、D-阿拉伯糖、D-木糖、D-葡糖糖、D-半乳糖和糖酸,它们的质量分数分别是:11.8%,1.6%,37.7%,4.2%,10.7%,12.8%,21.2%。
2.如权利要求1所述的杜仲叶多糖的提取方法,其特征在于该方法是将干杜仲叶粉碎成<5mm左右的碎团以破坏杜仲胶丝,加入石油醚,80℃下回流并磁搅拌处理2h,以去除表面脂肪及杜仲胶;重复一次,取滤渣,抽滤;干后,用热提取,加水没过原料,沸腾回流提取2h,提取3次,三层纱布挤滤除渣;并提取液,减压浓缩到比重为1.1~1.2;将多糖浓缩液与等量无水乙醇混合,静止沉淀,离心得1倍体积醇沉多糖PsEUL1;分离上清液,并再加入一倍体积乙醇,混匀静止,得到2倍体积醇沉多糖PsEUL2;离心分离沉淀后,再于上清液中加入一倍体积乙醇,得到3倍体积醇沉多糖PsEUL3。
3.如权利要求2所述的方法,其特征在于所述杜仲叶多糖在测定质量后,用硫酸苯酚法分别测其纯度;用考斯亮蓝法分别测其蛋白质含量。
4.如权利要求1所述的杜仲叶多糖的分离纯化方法,其特征在于该方法是:分别将粗多糖组分PsEUL1、PsEUL2、PsEUL3配置成2%的多糖溶液,抽滤除去不溶沉淀,用S-8大孔树脂脱色;采用Sevag法脱蛋白,将氯仿∶正丁醇=5∶1的Sevag试剂与多糖样品1∶1混匀,以4000r/min转速离心10min,收集上清液并浓缩,重复除蛋白操作8~10次至中间层无沉淀,于190~400nm进行紫外扫描,直至无吸收峰为止;分别将粗多糖溶液采用截留分子量为14000的透析袋透析,直到用电导仪测得的多糖电导率趋于零,且没有变化为止;
然后称取0.2g杜仲叶多糖PsEUL1,溶于3mL蒸馏水中,上2.5cm×25cm的DEAE-52(OH)纤维素柱,分别用清水→1mol/L NaCl溶液洗脱,控制流速1mL/min,自动部分收集器收集,每
10mL一管,以硫酸-苯酚法隔管跟踪监测,收集同一峰含多糖各管样品,以管号为横坐标,多糖溶液吸光度为纵坐标,作洗脱曲线;得到精多糖的单体组分。
5.如权利要求4所述的方法,其特征在于所述精多糖单体组分通过经典途径或替代途径进行抗补体活性测定。
6.如权利要求4所述的方法,其特征在于所述经典途径测定抗补体活性的方法是:取
100μL用磷酸盐缓冲生理盐水配制的pH7.0~7.5样品液加入试管;再加入100μL以葡
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萄糖明胶巴比妥缓冲盐水按1∶100稀释的正常豚鼠血清和100μL致敏即5×10 个/mL的绵羊红细胞,轻轻混匀;37℃水浴孵育30min,不时轻轻振摇,孵育后即加入1ml冷生理盐水终止反应;于2000r/min转速下离心10min,取上清液在波长405nm处测定光吸收值;样品对补体溶血活性的抑制率按下式计:
7.如权利要求4所述的方法,其特征在于所述替代途径测定抗补体活性的方法是:取
100μL用磷酸盐缓冲生理盐水配制的pH7.0~7.5的样品液加入试管;再加入等体积用GVB-Mg-EGTA的2倍缓冲液,按1∶2稀释的正常豚鼠血清和100μL即1.5×108个/mL的兔红细胞悬液,轻轻混匀;37℃水浴孵育30min,不时轻轻振摇,孵育后即加入1mL冷生理盐水终止反应;于2000r/min转速下离心10min,取上清液在波长405nm处测定光吸收值;样品对补体溶血活性的抑制率按下式计:
所述缓冲液含5m MC巴比妥钠,0.14mol/LNaCl,0.1%明胶,4mmol/L氯化镁,16mmol/L EGTA,pH7.4。

说明书全文

具有抗补体活性的杜仲叶多糖及其提取与分离纯化方法

技术领域

[0001] 本发明涉及有机高分子化合物的多糖类物质,尤其涉及杜仲叶多糖,还涉及其提取与分离纯化方法。

背景技术

[0002] 20世纪60年代以后,人们逐渐发现多糖类物质有着特殊的生物活性功能,发现不少多糖物质及其衍生物具有药用价值,尤其在抗凝血、抗血栓、调血脂、调节免疫功能和抗肿瘤、抗放射方面都有显著的药理作用与疗效。在抗补体活性上,许多高等植物的多糖均有激活补体作用,对于炎症引起的补体系统过度活化有一定的平衡抑制作用。杜仲叶多糖(polysaccharide from Eucommia ulmoides leaves,PsEUL)就是上述多糖物质中的一种。然而,目前有关的研究还很少,而且研究仅限于含量测定,关于单一多糖的单糖组成及药理试验未见报道。经过检索,涉及杜仲叶多糖的专利申请仅有1件,即西北农林科技大学申请的ZL01128743.8号《一种从杜仲叶中连续提取活性物质的方法》,该专利技术主要是提取杜仲总甙和杜仲总黄,然后,从提取过其它活性成份后的杜仲叶渣中提取杜仲酸性多糖。
该专利技术并没有将杜仲叶多糖进行分离和纯化的内容。而对杜仲叶这种珍贵的药材资源开发研究,尤其是对杜仲叶多糖的化学和药理研究具有更重大的意义,势必引起学术界的重视。

发明内容

[0003] 本发明的目的是通过体外活性筛选,寻求具有抗补体活性、具有潜在免疫活性的杜仲叶多糖,明确其化学结构。
[0004] 本发明的又一目的是提供杜仲叶多糖的提取方法,同时提供杜仲叶多糖的分离纯化方法,并为将其应用于制药工业打下基础
[0005] 发明人筛选出来的具有抗补体活性的杜仲叶多糖是酸性多糖,其中活 性最高的组成为:L-鼠李糖、D-岩藻糖、D-阿拉伯糖、D-木糖、D-葡糖糖、D-半乳糖和糖酸,它们的质量分数分别是:11.8%,1.6%,37.7%,4.2%,10.7%,12.8%,21.2%。 [0006] 本发明提供的杜仲叶多糖的提取方法是将干杜仲叶粉碎成<5mm左右的碎团,加入石油醚,80℃下回流并磁搅拌处理2h,以去除表面脂肪及杜仲胶;重复一次,取滤渣,抽滤;干后,用热提取,加水没过原料,沸腾回流提取2h,提取3次,三层纱布挤滤除渣;并提取液,减压浓缩到比重为1.1~1.2;将多糖浓缩液与等量无水乙醇混合,静止沉淀,离心得1倍体积醇沉多糖PsEUL1;分离上清液,并再加入一倍体积乙醇,混匀静止,得到2倍体积醇沉多糖PsEUL2;离心分离沉淀后,再于上清液中加入一倍体积乙醇,得到3倍体积醇沉多糖PsEUL3。
[0007] 得到的粗多糖成分再经过S-8大孔树脂脱色,采用Sevag法脱蛋白,以及DEAE纤维素分离。
[0008] 上述杜仲叶多糖经硫酸苯酚法、斐林试剂、碘-碘化、三氯化等反应测定其纯度,表明它们不含还原糖、淀粉、酚类物质;用考斯亮蓝法和紫外分光光度计检测其蛋白质杂质含量。
[0009] 本发明的杜仲叶多糖分离纯化方法是:分别将粗多糖组分PsEUL1、PsEUL2、PsEUL3配置成2%的多糖溶液,抽滤除去不溶沉淀,用S-8大孔树脂脱色;采用Sevag法脱蛋白,将氯仿∶正丁醇=5∶1的Sevag试剂与多糖样品1∶1混匀,以4000r/min转速离心10min,收集上清液并浓缩,重复除蛋白操作8~10次至中间层无沉淀,于190~400nm进行紫外扫描,直至无吸收峰为止;分别将粗多糖溶液采用截留分子量为14000的透析袋透析,直到用电导仪测得的多糖电导率趋于零,且没有变化为止;然后称取0.2g杜仲叶多糖PsEUL1,溶于3mL蒸馏水中,上2.5cm×25cm的DEAE-52(OH)纤维素柱,分别用0.0→1mol/L NaCl溶液洗脱,控制流速1mL/min,自动部分收集器收集,每10mL一管,以硫酸-苯酚法隔管跟踪监测,收集同一峰 含多糖各管样品,以管号为横坐标,多糖溶液吸光度为纵坐标,作洗脱曲线。得到精多糖的单体组分。
[0010] 上述PsEUL11、PsEUL12、PsEUL13三个精多糖单体组分通过经典途径或替代途径进行抗补体活性测定。
[0011] 上述经典途径测定抗补体活性的方法是:取100μL用磷酸盐缓冲生理盐水配制的pH7.0~7.5样品液加入试管;再加入100μL以葡萄糖明胶巴比妥缓冲盐水按1∶1008
稀释的正常豚鼠血清和100μL致敏的绵羊红细胞(5×10 个/mL),轻轻混匀;37℃水浴孵育30min,不时轻轻振摇,孵育后即加入1ml冷生理盐水终止反应;于2000r/min转速下离心10min,取上清液在波长405nm处测定光吸收值;样品对补体溶血活性的抑制率按下式计算:
[0012]
[0013] 上述替代途径测定抗补体活性的方法是:取100μL用磷酸盐缓冲生理盐水配制的pH7.0~7.5的样品液加入试管;再加入等体积用GVB-Mg-EGTA(2×)缓冲液(含5mMC巴比妥钠,0.14mol/LNaCl,0.1%明胶,4mmol/L氯化镁,16mmol/L EGTA,pH7.4),按1∶2稀释的正常豚鼠血清和100μL兔红细胞悬液(1.5×108个/mL),轻轻混匀;37℃水浴孵育30min,不时轻轻振摇,孵育后即加入1mL冷生理盐水终止反应;于2000r/min转速下离心
10min,取上清液在波长405nm处测定光吸收值;按前述计算式计算样品对补体溶血活性的抑制率。
[0014] 采用上述方法对杜仲叶多糖进行抗补体活性测定,得到以下结果: [0015] 三组精多糖的抗补体活性
[0016]
[0017]
[0018] 可看出精多糖组PsEUL1和PsEUL3有较高的抗补体活性,而PsEUL2精多糖组抗补体活性较弱。
[0019] 发明人采用硫酸-咔唑法测定了多糖中的糖醛酸含量,并用气相色谱法对PsEUL13多糖单体的组成单糖基进行了测定。结果表明,PsEUL13是由L-鼠李糖、D-岩藻糖、D-阿拉伯糖、D-木糖、D-葡糖糖、D-半乳糖六种单糖基组成;并含有21.2%的糖醛酸。 [0020] 发明人从杜仲叶中提取杜仲叶多糖,分离纯化获得单体组分,并对杜仲叶中多糖的抗补体活性进行了研究,首次发现杜仲叶多糖的结构及其抗补体活性,提供的具有免疫活性的杜仲叶多糖提取与分离纯化方法,实现了杜仲叶资源的开发,使之作为制药工业的原料成为可能,为人类的健康服务。

具体实施方式

[0021] 下面结合实施例对本发明作进一步详细的描述。
[0022] 实施例
[0023] 1杜仲叶多糖的提取及含量测定
[0024] 将干杜仲叶用手揉碎成<5mm左右的碎团(因含有大量杜仲胶丝),加入一定体积的石油醚,80℃回流并磁力搅拌处理2h,以去除表面脂肪及杜仲胶,重复一次,取滤渣,抽滤,风干后,用热水提取,加水没过原料,沸腾回流提取2h,提取三次,三层纱布挤滤除渣,合并提取液,减压浓缩到比重为1.1~1.2。将多糖浓缩液与等量无水乙醇混合,静止沉淀,离心得1倍体积醇沉多糖PsEUL1;分离上清液,并再加入一倍体积乙醇,混匀静止,得到2倍体积醇沉多糖PsEUL2,离心分离沉淀后,再于上清液中加入一倍体积乙醇,得到3倍体积醇沉多糖PsEUL3。分别测其质量;用硫酸苯酚法 分别测其纯度;用考马斯亮蓝法分别测其蛋白质含量。
[0025] 2杜仲叶多糖分离纯化
[0026] 分别将粗多糖组分PsEUL1、PsEUL2、PsEUL3配置成2%的多糖溶液,抽滤除去不溶沉淀,用S-8大孔树脂脱色;采用Sevag法脱蛋白,将Sevag试剂(氯仿∶正丁醇=5∶1)与多糖样品1∶1混匀,离心10min(4000r/min),收集上清液并浓缩,重复除蛋白操作8~10次至中间层无沉淀,于190-400nm进行紫外扫描,直至无吸收峰为止。分别将粗多糖溶液采用截留分子量为14000的透析袋透析,直到用电导仪测得的多糖电导率趋于零,且没有变化为止。称取0.2g杜仲叶多糖PsEUL1,溶于3mL蒸馏水中,上DEAE-52(OH)纤维素柱(2.5cm×25cm),分别用0.0→1mol/L NaCl溶液洗脱,控制流速1mL/min,自动部分收集器收集,每10mL一管,以硫酸-苯酚法隔管跟踪监测,收集同一峰含多糖各管样品,以管号为横坐标,多糖溶液吸光度为纵坐标,作洗脱曲线。得到PsEUL11、PsEUL12、PsEUL13三个单体组分。
[0027] 3经典途径抗补体活性测定
[0028] 取100μL用磷酸盐缓冲生理盐水配制的样品液(pH7.0~7.5)加入试管;再加入100μL以葡萄糖明胶巴比妥缓冲盐水)1:100稀释的正常豚鼠血清和100μL致敏的绵羊红细胞(5×108个/mL),轻轻混匀;37℃水浴孵育30min,不时轻轻振摇,孵育后即加入1mL冷生理盐水终止反应;于2000r/min离心10min,取上清液在波长405nm处测定光吸收值;
样品对补体溶血活性的抑制率计算方法:
[0029]
[0030] 4替代途径抗补体活性测定
[0031] 取100μL用磷酸盐缓冲生理盐水配制的样品液(pH7.0~7.5)加入试管;再加入等体积用GVB-Mg-EGTA(2×)缓冲液(含5mMC巴比妥钠,0.14mol/L NaCl,0.1%明胶,4mmol/L氯化镁,16mmol/L EGTA,pH7.4)按1∶2稀释的正常豚鼠血清和100μL兔红细胞悬液(1.5×108个/ml),轻轻混匀; 37℃水浴孵育30min,不时轻轻振摇,孵育后即加入
1ml冷生理盐水终止反应;于2000r/min离心10min,取上清液在波长405nm处测定光吸收值;按上述方法计算样品对补体溶血活性的抑制率。
[0032] 5杜仲叶活性多糖理化性质及化学结构
[0033] 对PsEUL1组分进行了溶解性测定;斐林试剂反应;碘-碘化钾反应;Molish反应;三氯化铁反应;蛋白等杂质的检测。
[0034] 对单体多糖PsEUL12和PsEUL13进行糖醛酸测定。分别精密称取多糖PsEUL12、PsEUL13各10mg,加入蒸馏水溶解,配制成浓度为100ug/mL溶液。取供试品溶液各1mL,分别在530nm处测定其吸光度值,同时做平行重复样按标准曲线方法进行测定,并计算样品中糖醛酸的含量。根据已知半乳糖醛酸含量及其在530nm处吸光度值,作得半乳糖醛酸标准2
曲线为:Y=0.0076X-0.0005,r =0.992,相关系数r=09959[X:半乳糖醛酸含量(μg/mL);Y:测定的吸光度值],
[0035] 多糖PsEUL13的单糖组成及含量测定。采用毛细管气相色谱(GC)分析。气相色谱仪为GC-2014型气相色谱仪(日本岛津),氢火焰(FID)检测器,SFAT弹性石英毛细管柱。水解多糖样品;制备内标物;制备单糖对照品糖腈乙酰化衍生物;制备样品糖腈乙酰化衍生物。程序升温:180℃到250℃,升温速率5℃/min,180℃维持1min,250℃保持30min。色谱条件:载气N2流速为1.5ml/min,加尾气吹20ml/min,H2流速为40ml/min,空气流速为
450ml/min;柱温:180-250℃。FID温度:270℃,汽化室温度:250℃;分流比5∶1,进样量
0.2μL。
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