技术领域
[0001] 本
发明属于基因工程领域,更具体地说涉及CRISPR-Cas9靶向敲除人细胞SANIL1基因及其特异性的sgRNA。
背景技术
[0002] SANIL1(snail family transcriptional repressor 1):是锌指转录抑制子,下调中胚层中的外胚层基因。由该基因编码的核蛋白在结构上和果蝇snail蛋白类似,而且同样也被认为在发育中的胚胎的中胚层形成是至关重要的。在2号
染色体上,人们已经发现了至少2种类似的加工过的假基因的突变体。
[0003] Snail1蛋白是锌指蛋白Snail超家族的成员,具有强大的EMT诱导能
力。借由其羧基末端的锌指结构与CDH1核心启动子区的E-box基序结合,Snail1蛋白能有效遏制后者的转录表达,造成E-cadherin表达缺失,诱导EMT发生。
[0004] CRISPR-Cas系统是最近几年兴起用于靶向基因特定DNA修饰的重要工具,具有快速、高效及特异性靶向等优势,已被应用于多种模式
生物,包括人、小鼠、大鼠、斑
马鱼、秀丽隐杆
线虫、
植物及细菌。CRISPR RNA(crRNA)与转录激活crRNA
退火形成的复合物能特异识别基因组序列,引导Cas9核酸内切酶在目的
片段生成DNA双链断裂。这个识别
复合体可以通过融合crRNA与tracrRNA序列形成sgRNA进行简化。基因组的靶序列中有长约20bp的片段与crRNA或sgRNA互补
配对;靶序列末端的三核苷酸区域PAM(5’-NGG-3’)为spCas9识别位点,是实现剪切功能的关键。sgRNA能否做到特异性、精确靶向目标基因是CRISPR/Cas9特异性敲除目标基因的先决条件,脱靶和错误靶向都会影响CRISPR/Cas9对目标基因的特异性敲除,因此,能够设计、制备出精确性和特异性靶向目标基因的sgRNA成为CRISPR/Cas9基因敲除的关键技术。
[0005] 本发明利用CRISPR/Cas9慢病毒系统,获得敲除SANIL1基因的人细胞,为研究肠癌细胞中SANIL1的作用机制提供有力工具。
[0006] 参考文献:
[0007] 1.Doudna,J.A.;Charpentier,E.,Genome editing.The new frontier of genome engineering with CRISPR-Cas9.Science,2014,346,(6213),1258096.[0008] 2.Fang,R.;Chang,F.;Sun,Z.-L.;Li,N.;Meng,Q.-Y.,New Method of Genome Editing Derived From CRISPR/Cas9.Acta Agronomica Sinica,2013,40,(8),691.发明内容
[0009] 本发明的首要目的在于克服
现有技术的缺点与不足,提供一种靶向敲除SANIL1基因的sgRNA序列;本发明的另一目的在于提供所述一种靶向敲除SANIL1基因的CRISPR/Cas9慢病毒系统的应用;本发明的再一目的在于提供靶向敲除SANIL1基因的人细胞的应用。
[0010] 本发明的目的通过下述技术方案实现:一种靶向敲除SANIL1基因的sgRNA序列,选自DNA序列如下的SANIL1sgRNA:
[0011] SANIL1sgRNA的序列如下:
[0012] SANIL1sgRNA oligo1:5’-ACCGACGCCGCTGCGGAAACCTTC-3’;
[0013] SANIL1sgRNA oligo2:5’-AAACGAAGGTTTCCGCAGCGGCGT-3’;
[0014] SANIL1sgRNA oligo3:5’-ACCGCAACCTCTCCCCTGGCCCTG-3’;
[0015] SANIL1sgRNA oligo4:5’-AAACCAGGGCCAGGGGAGAGGTTG-3’;
[0016] SANIL1sgRNA oligo5:5’-ACCGTGCAGGCCCAAGCTGCCCGCC-3’;
[0017] SANIL1sgRNA oligo6:5’-AAACAAACGGCGGGCAGCTTGGGCCTGCA-3’;
[0018] 一种靶向敲除SANIL1基因的CRISPR/Cas9慢病毒系统,含有上述靶向敲除SANIL1基因的sgRNA的DNA序列。
[0019] 所述的靶向敲除SANIL1基因的CRISPR/Cas9慢病毒系统的构建,包括如下步骤:
[0020] (1)使用BsmBI酶切CRISPR/Cas9慢病毒载体Lenti-CRISPRv2,得到酶切后的CRISPR/Cas9慢病毒载体;
[0021] (2)将上述靶向敲除SANIL1基因的sgRNA的DNA序列磷
酸化后与酶切后的CRISPR/Cas9慢病毒载体连接,得到靶向敲除SANIL1基因的CRISPR/Cas9慢病毒系统。
[0022] 步骤(2)中所述的DNA序列是将寡核苷酸链1(oligo1)和寡核苷酸链2(oligo2)退火得到双链序列。
[0023] 所述的靶向敲除SANIL1基因的CRISPR/Cas9慢病毒系统在制备敲除SANIL1基因的细胞株中的应用。
[0024] 一种敲除SANIL1基因的细胞株,是将所述的靶向敲除SANIL1基因的CRISPR/Cas9慢病毒系统
转染目的细胞株得到的。
[0025] 所述的敲除SANIL1基因的细胞株,具体是通过如下步骤构建得到:
[0026] 1)将所述的靶向敲除SANIL1基因的CRISPR/Cas9慢病毒系统通过
包装细胞进行包装,得到慢病毒颗粒;
[0027] 2)将慢病毒颗粒感染目的细胞株;
[0028] 3)将感染后的细胞铺单克隆,得到敲除SANIL1基因的细胞株。
[0029] 所述的目的细胞株优选为人细胞株。
[0031] 本发明相对于现有技术具有如下的优点及效果:
[0032] 本发明提供SANIL1基因的sgRNA能特异靶向SANIL1基因,将其构建入CRISPR/Cas9慢病毒系统,该系统能特异靶向敲除SANIL1基因,得到敲除SANIL1基因的细胞株,从而有利于研究细胞株中的SANIL1的作用机制。
附图说明
[0033] 附图1:pLenti-U6-gRNA v2.0-CMV-Puro-P2A-3Flag-spCas9质粒图谱;
[0034] 附图2:pLenti-U6-SANIL1 gRNA 1-CMV-Puro-P2A-3Flag-spCas9质粒图谱;
[0035] 附图3:pLenti-U6-SANIL1gRNA 2-CMV-Puro-P2A-3Flag-spCas9质粒图谱;
[0036] 附图4:pLenti-U6-SANIL1 gRNA 3-CMV-Puro-P2A-3Flag-spCas9质粒图谱;
[0037] 附图5:293T
细胞转染含有SANIL1gRNA1的活性鉴定测序图;
[0038] 附图6:293T细胞转染含有SANIL1gRNA2的活性鉴定测序图;
[0039] 附图7:293T细胞转染含有SANIL1gRNA3的活性鉴定测序图。
具体实施方式
[0040] 下面结合
实施例及附图对本发明作进一步详细的描述,但本发明的实施方式不限于此。
[0041] 实施例1
[0042] 1.使用CRISPR/Cas9技术构建敲除SANIL1质粒
[0043] 1.1sgRNA寡核苷酸链合成
[0044] 使用CRISPR在线设计工具(http://crispr.mit.edu/)根据评分系统,在SANIL1的外显子2上设计1个20bp的sgRNA,并通过BLAST验证无非特异性基因。编码链模板5′端添加ACCG,非编码链模板3′端添加AAAC,与BsmBI酶切后形成的粘性末端互补,设计1对CRISPR寡核苷酸链,见表1。
[0045] 表1SANIL1靶向位点及sgRNA寡核苷酸序列
[0046]sgRNA名称 sgRNA寡核苷酸序列
SANIL1sgRNAoligo1 5’-ACCGACGCCGCTGCGGAAACCTTC-3’
SANIL1sgRNA oligo2 5’-AAACGAAGGTTTCCGCAGCGGCGT-3’
SANIL1sgRNAoligo3 5’-ACCGCAACCTCTCCCCTGGCCCTG-3’
SANIL1sgRNA oligo4 5’-AAACCAGGGCCAGGGGAGAGGTTG-3’
SANIL1sgRNAoligo5 5’-ACCGTGCAGGCCCAAGCTGCCCGCC-3’
SANIL1sgRNA oligo6 5’-AAACAAACGGCGGGCAGCTTGGGCCTGCA-3’
[0047] 1.2载体构建
[0048] 1.2.1使用BsmBI酶切2μg Lenti-CRISPRv2质粒(购于Addgene公司),2h,37℃,[0049] 酶切体系为:
[0050]2μg(2μl) Lenti-CRISPRv2
1μl BsmBI(NEB)
5μl 10X Cutsmart
42μl ddH2O
50μl 合计
[0051] 1.2.2使用捷瑞基因胶回收
试剂盒纯化酶切质粒产物,按
说明书进行操作。
[0052] 1.2.3
磷酸化并退火sgRNA oligos:
[0053] 酶连体系为:
[0054]1μl Oligo1(100μM)
1μl Oligo2(100μM)
1μl 10X T4链接缓冲液(NEB)
6.5μl ddH2O
0.5μl T4PNK(NEB)
10μl 合计
[0055] PCR仪器退火程序:
[0056] 37℃30min,95℃维持5min,每分钟降低5℃至25℃,4℃维持
[0057] 1.2.4将退火形成的Oligo双链和酶切后的Lenti-CRISPRv2载体直接连接,室温下,10min。
[0058] 1.2.5将连接后的质粒转化至感受态细胞DH5α中,均匀涂至LB固体培养基平板中,置于37℃
培养箱中培养12-16小时,单个菌落即可出现。
[0059] 1.3挑取单个菌落扩大培养并质粒小提。
[0060] 1.4测序鉴定质粒构建成功,并命名为Lenti-CRISPRv2-hSANIL1sg。
[0061] 1.5敲除效率验证。
[0062] 用含10%胎
牛血清的高糖DMEM培养基于5%CO2,37℃恒温培养293T细胞(购于美5
国ATCC细胞库)。取对数期细胞以1×10/孔接种到24孔板培养。待细胞融合度达到70%~8
0%时更换成Opti-MEM培养基,1小时后将相应的CRISPR/Cas9敲除质粒0.8μg经Lipo2000试剂,转染到293T细胞中,转染48小时候,
荧光显微镜下观察转染效果,消化收集细胞,采用基因组DNA提取试剂盒提取细胞基因组DNA。
[0063] 以各组细胞基因组DNA为模板,利用表2的引物(Seq No.8~11)PCR扩增靶向序列。用SANIL1-4-1和SANIL1-4-2进行PCR,得到751bp的片段a,以a为模板,用SANIL1-4-3和SANIL1-4-4进行PCR,得到388bp的片段b,该片段
电泳后胶回收用于测序,测序引物为SANIL1-4-3。
[0064] 表2引物情况表
[0065]引物名称 引物序列
SANIL1-4-1 GCTCAGAGAAGCCAGACAAC
SANIL1-4-2 CAGTGAGTCTGTCAGCCTTTG
SANIL1-4-3 TTGTCCCACGGCTCACTC
SANIL1-4-4 AATGGTCTTCATCAAAGTCC
[0066] 2.包装慢病毒
[0067] 100mm皿种入4×106个293TN细胞,培养24h(37℃,5%CO2)后,更换新鲜培养基,转染包装细胞:
[0068] a.混匀以下3个质粒:1)包装质粒psPAX2 12μg;辅助质粒pLP-VSVG 10μg;表达质粒Lenti-CRISPRv2-hSANIL1sg 22μg;加入CaCl2 250μl;加入ddH2O至总体积为500μl,37℃放置20min;
[0069] b. 2X BES 500μl,37℃放置20min;
[0070] c.把a中500μl三质粒
混合液逐滴加入b中,并轻轻混匀;
[0071] d.小心的将c中混合液加入种有293TN的100mm皿中;培养12h后移除感染液,更换10ml新鲜培养基生产病毒液;培养48h后,
收获病毒液至50ml离心管中,并重新向100mm皿中补加10ml培养基再次生产病毒;培养24h后,再次收获病毒液,室温离心,1000rpm,10min;使用0.22μm的滤器过滤病毒上清液;将病毒上清液装入超离管中,4℃,100000g,2h;弃去上清液后用Opti-MEM重悬过夜;再次使用0.22μm的滤器过滤重悬的病毒;分装后,-80℃保存。
[0073] 1)将要感染的HT-29细胞(购于美国ATCC细胞库)接种到六孔板中,过夜,待细胞融合度约为50%时,移去培养基,更换2ml新鲜培养基;
[0074] 2)每孔加入20μl病毒液,再加入12μl聚凝胺polybrene,至终浓度为6μg/ml;
[0075] 3)37℃培养12h后,移除培养液,更换新鲜培养液后继续培养48h;
[0076] 4.筛选稳定细胞株
[0077] 感染结束48h后,向每孔加入嘌呤霉素(2.0μg/ml),隔天换液,并保持培养基的嘌呤霉素浓度恒定,筛选阳性克隆细胞。所得细胞株命名为“胞名-SANIL1”。并使用有限稀释法挑选HT-29-SANIL1单克隆敲除细胞株。
[0078] 5.稳定细胞株鉴定及基因打靶方式鉴定
[0079] 以各组敲除SANIL1的单克隆细胞株基因组DNA为模板,分别设计针对SANIL1第二外显子的引物,序列如Seq No.8~11进行两轮巢式PCR扩增,对获得的第二轮PCR产物进行测序,如测序结果打靶位点附近出现双峰的情况,则可能为打靶成功。选择双峰的样品再次PCR,产物胶回收后TA克隆至T载体中,转化后挑取阳性克隆再次进行测序,如测序结果SANIL1基因靶位点附近发生非三倍数的
碱基插入或碱基缺失,导致阅读框移码突变,则可判断为SANIL1基因敲除。鉴定出sgRNA是有活性的(图5),并且找到2种类型的具有SANIL1基因缺失或插入突变的稳定细胞株(图6和图7)。
[0080] 上述实施例为本发明较佳的实施方式,但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制,其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化,均应为等效的置换方式,都包含在本发明的保护范围之内。