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精子制动液及其制备方法

阅读:312发布:2024-01-12

专利汇可以提供精子制动液及其制备方法专利检索,专利查询,专利分析的服务。并且本 发明 公开了一种精子 制动 液 及其制备方法,该精子制动液包含对精子进行处理的组合物、 杀菌剂 及指示剂。本发明的精子制动液各项指标达到体外培养液的标准使用安全且易于判断培养液是否变质,为 辅助生殖技术 提供有 力 保证。,下面是精子制动液及其制备方法专利的具体信息内容。

1.一种精子制动液,其特征在于,包含对精子进行处理培养的组合物、杀菌剂及指示剂。
2.根据权利要求1所述的精子制动液,其特征在于,所述杀菌剂为庆大霉素
9.5-10.5mg/L。
3.根据权利要求1所述的精子制动液,其特征在于,所述指示剂为酚红,浓度
9.5-10.5mg/L。
4.根据权利要求1所述的精子制动液,其特征在于,所述组合物中包含氯化钠 92.815-102.585mmol/L, 氯 化 4.465-4.935mmol/L,硫 酸 镁 0.19-0.21mmol/L,氯化1.9-2.1 mmol/L,酸氢钠3.8-4.2mmol/L,4-羟乙基哌嗪乙磺酸HEPES
19.95-22.05mmol/L,葡萄糖2.66-2.94mmol/L,丙酸钠0.314-0.347mmol/L,乳酸钠
2.2743-2.5137g/L,丙酰谷氨酰胺0.95-1.05mmol/L,磺酸0.095-0.105mmol/L,非必需氨基酸0.95%-1.05%,v/v,磷酸二氢钾0.352-0.389mmol/L,庆大霉素9.5-10.5 mg/L,酚红9.5-10.5mg/L,人血清白蛋白4.75%-5.25%,v/v,聚乙烯吡咯烷酮PVP 66.5-73.5g/L。
5.根据权利要求4所述的精子制动液,其特征在于,所述非必需氨基酸为L-丙氨酸、 L-天冬酰胺、 L-天冬氨酸 、 L-谷氨酸、甘氨酸、 L-脯氨酸、 L-丝氨酸中的一种或者几种。
6.根据权利要求1所述的精子制动液,其特征在于,精子制动液的溶剂采用超纯
7.制备如权利要求1-6任一项所述的精子制动液方法,其特征在于包括下面步骤:
(1)基础液的配制
a、先按照比例称量各组分,并分开放置;
b、先将除杀菌剂、指示剂、碳酸氢钠、人血清白蛋白、聚乙烯吡咯烷酮PVP外的称量好的组分溶于超纯水中,溶解过程中遵循先固体后液体,NaHCO3最后加入的原则;
c、向步骤b所得溶液中加入称量好的杀菌剂、指示剂和NaHCO3;
d、检测溶液渗透压和pH值,如果pH值不在范围内则用配制好的盐酸和氢化钠溶液调节pH值,并记录最终渗透压和pH值,得到基础液;
(2)精子制动液原液的配制
a、在基础液中加入PVP,将加了PVP的基础液在超净工作台下利用0.2μm的滤膜过滤除菌,得到滤液A;
b、在滤液A中加入人血清白蛋白,震荡或搅拌混合均匀,得到精子制动液的原液;
(3)精子制动液原液的处理
a、在无菌环境下对精子制动液原液进行分装封口,得到精子制动液,将其放置箱或冷库内保存;
b、取分装好的精子制动液进行检测,检测项目是pH值、渗透压、细胞毒性、皮内刺激、致敏、无菌、热原、细菌内毒素、体外鼠胚试验、精子活试验来判断精子制动液是否合格。

说明书全文

精子制动液及其制备方法

技术领域

[0001] 本发明涉及人工辅助生殖技术,尤其涉及一种精子制动液及其制备方法。

背景技术

[0002] 精子制动液已广泛应用于试管婴儿技术中。精子制动液的目的是降低精子活动。精子制动液的用途:在对精子进行显微操作时人为降低精子活动力的培养液。
[0003] 目前,我国辅助生殖技术中的精子制动液依赖进口成品,成本高且溶液的有效性的好坏不能很好的表现,如果在培养液变质后仍继续使用将对实验或临床操作造成不可逆转的结果。

发明内容

[0004] 本发明的目的在于提供一种各项指标达到体外培养液的标准使用安全且易于判断培养液是否变质的精子制动液,为辅助生殖技术提供有力保证。
[0005] 本发明的精子制动液,包含对精子进行处理培养的组合物、杀菌剂及指示剂。
[0006] 所述杀菌剂为庆大霉素9.5-10.5mg/L。
[0007] 所述指示剂为酚红,浓度9.5-10.5mg/L。
[0008] 所述组合物中包含氯化钠92.815-102.585mmol/L,氯化4.465-4.935mmol/L,硫酸镁0.19-0.21mmol/L,氯化1.9-2.1 mmol/L,酸氢钠3.8-4.2mmol/L,4-羟乙基哌嗪乙磺酸HEPES 19.95-22.05mmol/L,葡萄糖2.66-2.94mmol/L,丙酸钠0.314-0.347mmol/L、乳酸钠2.2743-2.5137g/L、丙酰谷氨酰胺0.95-1.05mmol/L、磺酸0.095-0.105mmol/L,非必需氨基酸0.95%-1.05%(v/v),磷酸二氢钾0.352-0.389mmol/L,庆大霉素9.5-10.5 mg/L,酚红9.5-10.5mg/L,人血清白蛋白4.75%-5.25%(v/v),聚乙烯吡咯烷酮PVP 66.5-73.5g/L。
[0009] 所述非必需氨基酸为L-丙氨酸、 L-天冬酰胺、 L-天冬氨酸 、 L-谷氨酸、甘氨酸、 L-脯氨酸、 L-丝氨酸中的一种或者几种。
[0010] 精子制动液的溶剂采用超纯
[0011] 本发明的精子制动液的pH=7.20-7.40,渗透压300-330mOsm/Kg。
[0012] 本发明精子制动液的制备方法,包括下面步骤:(1)基础液的配制
a、先按照比例称量各组分,并分开放置;
b、先将称量好的组分(除杀菌剂、指示剂、碳酸氢钠、人血清白蛋白、聚乙烯吡咯烷酮PVP)溶于超纯水中,溶解过程中遵循先固体后液体,NaHCO3最后加入的原则;
c、向步骤b所得溶液中加入称量好的杀菌剂、指示剂和NaHCO3;
d、检测溶液渗透压和pH值,如果pH值不在范围内则用配制好的盐酸和氢化钠溶液调节pH值,并记录最终渗透压和pH值,得到基础液;
(2)精子制动液原液的配制
a、在基础液中加入PVP(PVP学名是聚乙烯吡咯烷酮,一种水溶性的具有高效粘合性的合成聚合物),将加了PVP的基础液在超净工作台下利用0.2μm的滤膜过滤除菌,得到滤液A;
b、在滤液A中加入人血清白蛋白,震荡或搅拌混合均匀,得到精子制动液的原液;
(3)精子制动液原液的处理
a、在无菌环境下对精子制动液原液进行分装封口,得到市售的精子制动液,将其放置箱或冷库内保存。
[0013] b、取分装好的精子制动液进行检测,检测项目是pH值、渗透压、细胞毒性、皮内刺激、致敏、无菌、热原、细菌内毒素、体外鼠胚试验、精子活力试验来判断精子制动液是否合格。
[0014] 本发明的有益效果是,1、精子制动液中含有指示剂酚红,酚红在pH变化时颜色变化明显,pH在7.20-7.40范围内酚红溶液为粉红色到橙红色,当pH值小于6.8时为黄色,当pH值大于8.4时为红色,变色比较明显;精子制动液的pH 7.20-7.40在此范围内溶液为粉红色到橙红色,当精子制动液颜色与此不符时,说明该精子制动液变质,不能用于实验或临床,从而避免了使用变质精子制动液而产生的险。2、使用抗生素来抑制细菌的生长,如庆大霉素是一种广谱、热稳定性好的抗生素,在精子制动液中添加庆大霉素可以有效抑制细菌的生长。3、本发明精子制动液的原料均是已经证明其安全性的物质,在制备过程中其溶剂采用超纯水,超纯水的总有机碳(TOC)超低,避免了因杂质过多影响测定的结果。4、国内还没有成型的用于试管婴儿技术的培养液,此配方和制备方法为国内的试管婴儿技术提供了有力的保证,避免了国外产品因长途运输带来的不明因素,同时配制工艺操作简单合理,检测严密,能够提供新鲜的培养液供生殖中心或科研院所使用。

具体实施方式

[0015] 以下通过实施例对本发明做进一步的说明。
[0016] 一、精子制动液配方及制备方法表1精子制动液配方
本发明精子制动液的制备方法,包括下面步骤:
a、先按照比例称量各组分,并分开放置;
b、先将称量好的组分(除杀菌剂、指示剂、碳酸氢钠、人血清白蛋白、聚乙烯吡咯烷酮PVP)溶于超纯水中,溶解过程中遵循先固体后液体,NaHCO3最后加入的原则;
c、向步骤b所得溶液中加入称量好的杀菌剂、指示剂和NaHCO3,将溶液定容到所需体积;
d、检测溶液渗透压和pH值,如果pH值不在范围内则用配制好的盐酸和氢氧化钠溶液调节pH值,并记录最终渗透压和pH值,得到基础液;
(3)精子制动液原液的配制
a、在基础液中加入PVP(PVP学名是聚乙烯吡咯烷酮,一种水溶性的具有高效粘合性的合成聚合物),将加了PVP的基础液在超净工作台下利用0.2μm的滤膜过滤除菌,得到滤液A;
b、在滤液A中加入人血清白蛋白,震荡或搅拌混合均匀,得到精子制动液的原液。
[0017] (3)精子制动液原液的处理a、在无菌环境下对精子制动液原液进行分装封口,得到市售的精子制动液,将其放置冰箱或冷库内保存。
[0018] b、取分装好的精子制动液进行检测,检测项目是pH值、渗透压、细胞毒性、皮内刺激、致敏、无菌、热原、细菌内毒素、体外鼠胚试验、精子活力试验来判断精子制动液是否合格。
[0019] 二、精子制动液检测方法及结果(一)pH值检测
取一定量成品用pH计进行检测记录三次的值并取平均值为最终液体的pH值,在范围内为合格。
[0020] (二)渗透压取10μL液体滴入渗透压仪(露点渗透压仪)探头滤纸片上把探头推入仪器等待检测值稳定,读出数值,同样方法检测三遍取平均值即为该液体的渗透压,在范围内为合格。
[0021] (三)细胞毒性按GB/T 16886.5的规定进行,细胞毒性计分应不超过1分。
[0022] (四)皮内刺激按GB/T 16886.10的规定进行,无皮内刺激反应。
[0023] (五)致敏按GB/T 16886.10的规定进行,应无致敏反应。
[0024] (六)无菌检测采用中国药典的无菌检测的薄膜过滤法进行,过滤后的滤膜在细菌和真菌的培养基内培养应无菌生长为无菌合格。
[0025] (七)热原按照中华人民共和国药典2010年版二部附录Ⅺ D规定方法,体外受精液应无热原。
[0026] (八)细菌内毒素检测采用中国药典内毒素的检测方法中的鲎试剂凝胶法进行,判为定小于1.0EU/mL合格;
(九)体外鼠胚试验
1.超数排卵
选择6~8周龄雌鼠,经腹腔注射PMSG 10 IU/只;48 h后经腹腔注射hCG 10 IU/只,注射hCG当日雌鼠与同品系雄鼠合笼过夜。
[0027] 2.准备培养皿培养胚胎前在细胞培养皿中制备一定数量30~50 μL大小的液体微滴M16,表面覆盖培养用油,在CO2培养箱内预平衡4~18小时。
[0028] 3 鼠胚采集合笼第二天早上检查交配情况,选择见栓小鼠备用。
[0029] 1-细胞胚胎收集:注射hCG后18至22小时后处死见栓雌鼠,在输卵管壶腹部收集1-细胞胚胎。将收集到的絮状卵子团放置到37 ℃提前预热好的透明质酸酶中,当胚胎周围的卵丘和颗粒细胞被消化分离后立即转移到供试品精子制动液中20分钟,挑选出正常形态的受精胚胎,转移到培养微滴M16中,用于1-细胞鼠胚检测试验。
[0030] 4 体外培养采用微滴法培养,将收集到的鼠胚随机分成一个阳性对照组、一个阴性对照组和一个供试品组,置于已平衡的培养液中,于37 ℃,5% CO2 饱和湿度的培养箱中培养。每组鼠胚数不少于50个。
[0031] 5 试验结果1-细胞胚胎体外分别培养96 小时后记录囊胚数量。
[0032] 观察指标:囊胚形态观察。
[0033] 可接受准则:1)阳性对照组的囊胚形成率经统计学分析显著低于阴性对照组;
2)阴性对照组的囊胚形成率≥80 %。
[0034] (十)精子活力试验1培养皿准备
1) 准备一个试管,用一个10毫升移液管取10毫升精子洗涤液加到试管内,用于试验。
[0035] 2)取一个4孔培养皿。用1毫升移液管在两个孔内加入各1毫升的精子洗涤液。然后用另一个1毫升移液管各加0.5毫升液体石蜡油将孔内液面覆盖。将培养皿置于无二氧化碳的培养箱加热(37℃)4小时。
[0036] 2 精子准备1) 如果是新鲜精液,待到精液液化后,检查精子浓度和活力。浓度应该大于200万个/毫升,而活力应大于50%,检查方法如下:取3微升精液,放置到温热的(35-37℃) Makler计数器,盖上盖玻片,20倍物镜、10倍目镜的显微镜下检查。在Makler计数器内有100个方格,每个计数10个方格。将活动的和不活动的精子分别计数。计数器检查完后,计算精子浓度和活力。(精子浓度为计数器活动精子和不活动精子总数的平均数再乘以一百万/毫升。精子活力为活动精子除以精子总数的平均数的百分数。)
注:如第一个精子计数器10格内有20个活动精子,20个不活动精子,第二个精子计数器10格内有16个活动精子,18个不活动精子。那么,精子的浓度为:{(20+20)+ (16+18)}/2= 37 x 106/毫升。活动力为:(20/40+16/34)/2=48.5%。
[0037] 2)如果是冷冻的精液,解冻方法如下:准备35℃的热水。将约200毫升加热的无菌水(35 ℃)加到250毫升的烧杯中。从液氮储存罐中取1管精液样本(每管1毫升),放入35℃温水中10分钟。解冻后,用上述描述的相同方法检查精子浓度和活力。浓度应大于20万个/毫升,而精子活力应大于40%。
[0038] 3 试验方法1) 取一个15毫升离心管,将1毫升精液(新鲜或解冻)加到离心管内。
[0039] 2) 将1ml精子洗涤液添加到离心管内。
[0040] 3) 将离心管内的精液和精子洗涤液充分混合后,在200g 离心5分钟。
[0041] 4) 离心机停止旋转,用9英寸巴斯德吸管吸去上清液,注意不要把离心管下面的精子吸入。
[0042] 5) 用5毫升移液管在离心管内加入1毫升的精子洗涤液,用同一个加了液体的移液管上下吸入离心管下面的精子,直到精子与液体完全混匀后盖紧离心管,再放入离心机离心5分钟(200g)。
[0043] 6) 离心机停止旋转,用9英寸巴斯德吸管吸去上清液,注意不要把离心管下面的
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