Mcam inhibitor

悪性腫瘍は細胞を飛散させ、それら細胞は新しい組織に移動して二次腫瘍を作り出す。 二次腫瘍の発生過程は転移と呼ばれ、原発腫瘍から離れた部位に腫瘍細胞がコロニを形成する複雑な過程である。 転移は腫瘍細胞が一次腫瘍から離脱し、細胞基質を侵襲し、血管に侵入し、循環系に入り（脈管内侵入）、離れた場所で留まり、血流から出て（血管外遊出）増殖する多重ステッププロセスである。 （ニコルソン（Ｇ．Ｌ．Ｎｉｃｏｌｓｏｎ）ビオヒミカ・エト・ビオフィジカ・アクタ（Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ．）６９５巻、ｐ．１１３−１７６）；ニコルソンおよびポステ（Ｇ．Ｐｏｓｔｅ）（１９８３）（インターナショナル・レビュー・オブ・イクスペリメンタル・パソロジ（Ｉｎ．Ｒｅｖ．Ｅｘｐ．Ｐａｔｈｏｌ．）２５巻、ｐ．７７−１８１；ポステおよびフィドラー（Ｉ．Ｊ．Ｆｉｄｌｅｒ）ネイチャー（Ｎａｔｕｒｅ）２８３巻、１３９−１４５；ルース（Ｅ．Ｒｏｏｓ）（１９８４）Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ．７３８巻、ｐ．２６３などを参照されたい）。 腫瘍転移の過程には細胞−細胞または細胞−基質の相互作用を媒介する細胞接着分子（ＣＡＭ'ｓ）が関与することが知られている。

種々の腫瘍においてアップレギュレートされる細胞接着分子がＭＣＡＭである。 ＭＣＡＭはＭＵＣ１８、Ｍｅｌ−ＣＡＭまたはＣＤ１４６としても知られている。 ＭＣＡＭは見かけ分子量Ｍ １１３，０００Ｄａを有する一体的膜糖蛋白質である。 それは５個の免疫グロブリン様ドメインを含み、その細胞質ドメインは数個の蛋白質キナーゼ認識モチーフを含む。 このことは細胞シグナリングにＭＣＡＭが関与していることを示唆する（サース（Ｃ．Ｓｅｒｓ）ら（１９９３）プロシーディング・オブ・ザ・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンス・オブ・ザ・ザ・ユナイテッド・ステイツ・オブ・アメリカ（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ）９０巻、ｐ．８５１４−８５１８を参照されたい）。

キシー（Ｘｉｅ）ら（１９９７）キャンサー・リサーチ（Ｃａｎｃ Ｒｅｓ．）５７巻、ｐ． ２２９５−２３０３、は、非侵襲性ＳＢ−２細胞がＭＣＡＭ ｃＤＮＡによるトランスフェクションを受けた後に侵襲性に変わることを示した。 彼らは、この人工的に誘導された侵襲性がＭＣＡＭに対するモノクローナル抗体で抑制されることも示した。 しかし、過剰発現研究に基づいてある生理的役割をある蛋白質に帰することは危険であり、疑問である。 そして過剰発現研究の結果は非常に注意深く解釈することが科学の一般的スタンダードである。 一例を挙げれば、過剰発現の研究に基づいて、ペルオキシソーマル蛋白質ＰＥＸ１１は脂肪酸の酸化にある役割を果たすことが提唱されていた。 リ（Ｌｉ）およびゴウルド（Ｇｏｕｌｄ）（２００２）ザ・ジャーナル・オブ・セル・バイオロジ（Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．）１５６巻（４号）ｐ． ６４３−６５１が注意深く研究した結果、ＰＥＸ１１はそのような役割をもたず、その代わりにペルオキシソームの分割に対して作用することがわかった。

ある蛋白質の生理的役割を確認することは、この蛋白質の機能の阻害が疾患の処置に通ずる道になり得るか否かを判断するのに必要な条件である。 忘れてはならないのが、生理学的環境において、すなわち患者の自然発生性腫瘍細胞において、ＭＣＡＭが、ＭＣＡＭ機能を変調し変化させ得るその他の蛋白質と共に過剰発現するという点である。 ＭＣＡＭｓの生理的役割を決めるのは、ＭＣＡＭと、ＭＣＡＭに影響する蛋白質類との間の機能的相互作用である。 シー（Ｓｈｉｈ）、（１９９９）ザ・ジャーナル・オブ・パソロジ（Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．）１８９巻、ｐ． ４−１１は、ＭＣＡＭの生理的役割がその未同定のリガンドとの相互作用に関係することを示すことによって証明した。 重要なのは、ＭＣＡＭと相互作用する蛋白質の発現が組織によって変動することであり（シーら（１９９７）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．５７巻（１７号）、ｐ．３８３５−３８４０）、このためＭＣＡＭ過剰発現の効果はこの観点から判断しなければならない。 このことは別の型の腫瘍、すなわち乳癌で得られた結果によっても証明されている。 シーら（１９９７）ザ・アメリカン・ジャーナル・オブ・パソロジ（Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．）１５１巻（３号）、ｐ． ７４５−７５１、は、これに関連してＭＣＡＭの発現レベルが高いときには侵襲性は抑制されることを明らかにした。 この研究ではＭＣＡＭはむしろ腫瘍抑制物質として作用した。 このように、侵襲性および転移におけるＭＣＡＭの生理的役割はいまだに不明である。

転移形成の過程は腫瘍細胞の侵襲性に依存する。 侵襲性を阻害できる分子を同定し、続いて薬剤を開発し、それによって原発腫瘍の転移を防ぐのが有用である。

発明の概要
先入観のない評価によって、自然発生性腫瘍細胞ポリペプチドの侵襲性を阻害できる分子類、特にＭＣＡＭの細胞外ドメインに結合する抗体類および抗体フラグメント類を上記のようなインヒビタとして同定することに発明者らは成功した。

本発明は、ＭＣＡＭの細胞外ドメインに特異的に結合し、ＭＣＡＭ機能を阻害するポリペプチドに関する。 好ましい実施形態において、これらのポリペプチドは抗体フラグメントまたは抗体である。 さらに、本発明のポリペプチドは所望ならば検出可能な基によって標識化することができ、またはバイオコンジュゲートの一部でもよい。

本発明はさらに、本発明のポリペプチドおよび任意に薬物学的に容認される添加物および希釈剤を含む組成物に関する。

また別の実施形態において、本発明は本発明のポリペプチドをコードする核酸分子、並びにそのような核酸を含むベクタおよびそのようなベクタを含むホスト細胞に関する。

また別の実施形態において、本発明は自然発生性癌細胞の侵襲および／または転移の治療または予防のための薬剤を製造するためのＭＣＡＭ機能阻害分子の使用であり、前記癌細胞の侵襲性および／または転移能力はＭＣＡＭ機能に依存している使用にも関する。 また別の実施形態において、このような分子は既に発現したＭＣＡＭに特異的に結合し、侵襲性および／または転移におけるＭＣＡＭ機能を阻害する。 このような分子は小さい化合物、すなわちＭＣＡＭの細胞外領域に結合しているある種のポリペプチド、特に本発明のポリペプチドまたはバイオコンジュゲートである。

さらに別の実施形態において、本発明は患者の侵襲および／または転移を治療または予防する方法であって、前記癌細胞の侵襲および／または転移能力がＭＣＡＭ機能に依存するという方法にも関する。

また別の実施形態において、本発明は自然発生性癌細胞の侵襲性のＭＣＡＭ機能への依存性を決定する方法に関する。

また別の実施形態において、本発明は肉腫細胞の侵襲性を阻害するために有用な抗体フラグメント類の同定方法、特にＭＣＡＭの細胞外ドメインに結合するその種の抗体フラグメントの同定方法にも関する。

発明の詳細な説明
本明細書に記載される本発明をより完全に理解するために、以下に詳細な説明を提供する。 本明細書に使用する用語は、別途記載がない限り下記の定義があてはまる。

本明細書に使用する“ポリペプチド”は１０より多く、より好ましくは２０より多く、最も好ましくは３０より多く、１００００未満の、より好ましくは２５００未満、最も好ましくは１０００未満のアミノ酸を含む分子である。 アミノ酸配列が実質的に同一であるポリペプチド、および修飾アミノ酸または非天然アミノ酸を低い割合で含むポリペプチドも含まれる。

本明細書に使用する用語“抗体”および“免疫グロブリン”はポリクローナルおよびモノクローナル抗体を含むあらゆる免疫学的結合物質を言う。 重鎖中の定常部ドメインの種類によって、抗体は次の主要な五つのクラスの一つに割り当てられる：ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧ、およびＩｇＭ。 これらの幾つかはさらにＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４などのサブクラスまたはアイソタイプに分けられる。 異なるクラスの免疫グロブリンに対応する重鎖定常部ドメインはそれぞれアルファ、デルタ、イプシロン、ガンマおよびミューと呼ばれる。 異なるクラスの免疫グロブリンのサブユニット構造および三次元構造はよく知られている。

抗体類は修飾免疫グロブリン、例えば化学的にまたは組換えで生成した抗体類、ＣＤＲ移植抗体またはヒト化抗体、部位特異的突然変異抗体などから選択することができる。 なおこれらはＣＤＲ領域、特にＣＤＲ３領域に本発明の対応抗体フラグメントと実質的に同一のアミノ酸配列を有し、対応抗体フラグメントと実質的に同じＭＣＡＭ親和性を保有する。

ある抗体のＣＤＲ（相補性決定領域）は、これら分子の特異性を決定する部分であり、特異的リガンドと接触する部分である。 ＣＤＲは分子の最も変動する部分であり、これら分子類の多様性に寄与している。 それらは構造的に、ヒトＩｇＧでは軽鎖のアミノ酸２４ないし４１（ＣＤＲ−Ｌ１）、５０ないし５７（ＣＤＲ−Ｌ２）および９０ないし１０１（ＣＤＲ−Ｌ３）として、重鎖のアミノ酸２６ないし３８（ＣＤＲ−Ｈ１）、５１ないし７０（ＣＤＲ−Ｌ２）および１００ないし１２５（ＣＤＲ−Ｈ３）として定義されている（カバト（Ｋａｂａｔ）ら（１９８７）第４版、ＵＳデパートメント・オブ・ヘルス・アンド・ヒューマン・サービス、パブリック・ヘルス・サービス（ＵＳ Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ ａｎｄ Ｈｕｍａｎ Ｓｅｒｖｉｃｅｓ，Ｐｕｂｌｉｃ Ｈｅａｌｔｈ Ｓｅｒｖｉｃｅｓ）、ＮＩＨ、ベセスダ）を参照されたい）。 抗体フラグメントのＣＤＲ領域は、抗体フラグメントと前記ヒトＩｇＧとを整列させるやり方、例えば“ブラスト”検索が可能なＮＣＢＩのプログラムを使用し、それによって２つの配列を互いに整列させ、ヒトＩｇＧのＣＤＲに対応する抗体フラグメントのアミノ酸を同定するというやり方によって当業者は容易に決定できる。

本明細書に使用する“アミノ酸配列の実質的同一性”とは、２つの整列したアミノ酸配列、特に整列したＣＤＲの少なくとも７０％、好ましくは少なくとも８５％、より好ましくは５つ以外の全て、さらにより好ましくは３つ以外の全て、さらにより好ましくは１つを除く全てのアミノ酸が同一であることを意味する。

用語“抗体フラグメント”は抗原結合領域を有する抗体様分子のあらゆるフラグメントを指すのに使用され、この用語はｓｃＦｖ、ｄｓＦｖ、Ｆａｂ'、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ'） _２ 、Ｆｖ、単一ドメイン抗体（ＤＡＢｓ）、二重特異性抗体、などの抗体フラグメントを含む。 種々の抗体ベースの構成物およびフラグメント類の製法および使用法は当業者には公知であり（カバトら（１９９１）、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４７巻、ｐ．１７０９−１９）、参考として特に本明細書に組み込まれる。

“ｓｃＦｖ”抗体フラグメントは抗体のＶＨおよびＶＬドメインを含み、これらのドメインは単一ポリペプチド鎖に存在する。 一般にｓｃＦｖポリペプチドは、ＶＨおよびＶＬドメイン間にポリペプチドリンカを更に含み、これによってｓｃＦｖは抗原と結合するための望ましい構造を形成できる。

“Ｆｖ”フラグメントは完全な抗原結合部位を保有する最小の抗体フラグメントである。 “ｄｓＦｖ”はジスルフィド安定化Ｆｖである。 “Ｆａｂ”フラグメントは重鎖のＶＨおよびＣＨ１ドメインと対になった完全軽鎖を含む抗原結合フラグメントである。 Ｆａｂフラグメントは還元Ｆ（ａｂ'） _２フラグメントである。 “Ｆ（ａｂ'） _２ ”フラグメントはヒンジ領域でジスルフィド架橋によって結合した２個のＦａｂフラグメントを含む２価フラグメントである。

“単一ドメイン抗体（ＤＡＢ）”は抗体構造のドメイン類の１つだけから誘導される唯一本の（２本ではなく）蛋白質鎖を有する抗体である。 ＤＡＢｓは、幾つかの抗体において抗体分子を半分にしても、抗体分子全体と同じように、その標的抗原に結合するという研究結果を活用したものである（デイビス（Ｄａｖｉｅｓ）ら（１９９６）Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇ．９巻：ｐ．５３１−５３７）。

“二重特異性抗体”はＶＨおよびＶＬドメインが単一ポリペプチド鎖上にあらわれる二価抗体、または二重特異性抗体であるが、同じ鎖上の２つのドメインを対にするには短すぎるリンカを使用しているので、別の鎖の相補的ドメインで無理にこれらのドメインを対にし、２つの抗原結合部位を作り出している（ホリガー（Ｈｏｌｌｉｇｅｒ）ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、９０巻：ｐ．６４４４−６４４８）。

用語“標識”または“標識化”はそれぞれ検出可能マーカーまたはその挿入を言い、例えばフルオロフォア標識、発色団標識または放射性標識をしたアミノ酸の挿入、あるいはフルオロフォア標識、発色団標識または放射性標識のポリペプチドへの結合、あるいは光学的方法または比色法によって検出できる蛍光マーカーまたは酵素活性を含む標識化第二分子によって検出できる部分の結合などがある。 このような二段階検出系の例は公知のビオチン−アビジン系である。 ポリペプチドおよび糖蛋白質を標識化する種々の方法が当業者には公知であり、使用できる（ロブル（Ｌｏｂｌ）ら（１９８８）アナリティカル・バイオケミストリ（Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．）１７０巻：ｐ．５０２−５１１などを参照されたい）。

“エピトープ”は免疫グロブリンまたは抗体フラグメントに特異的に結合できるあらゆる蛋白質決定基を含む。 エピトープ決定基は、露出アミノ酸、アミノ糖またはその他の炭水化物側鎖などの分子の化学的活性表面グループからなり、特異的三次元構造特性並びに特異的電荷特性を有するのが普通である。

本明細書に使用する“自然発生性癌細胞”は研究室でトランスフェクション、形質導入またはその他の遺伝子操作をされなかった細胞である。 そのような細胞には、人工的ＤＮＡ配列（例えばベクタ類の）、または他の種には見いだされるが自然発生性癌細胞が誘導された種には普通は見いだされないＤＮＡ配列は含まれない。 しかし自然発生性癌細胞は、次のような場合にはこれら癌細胞が誘導された種に普通は見られない配列を含むことがある：すなわち自然発生性癌細胞が誘導される個体内にあらわれるか、および／または自然発生性癌細胞の連続培養中にあらわれる、ウィルス感染または突然変異の過程および選択によってこれらの配列が出現する場合である。

本発明の範囲で好適に使用および／または処置される選択された癌細胞型はメラノーマ、乳癌、前立腺癌、星状細胞腫、線維肉腫、粘液肉腫、脂肪肉腫、乏突起細胞腫、上衣細胞腫、髄芽細胞腫、初期神経性外胚葉性腫瘍（ＰＮＥＴ）、軟骨肉腫、骨原性肉腫、膵管腺癌、小および大細胞性肺腺癌、脊索腫、血管肉腫、内皮肉腫、扁平上皮癌、気管支肺胞癌、上皮腺癌およびその肝転移、リンパ管肉腫、リンパ管内皮腫、肝細胞癌、胆細管癌、滑膜腫、中皮腫、ユーイング腫瘍、横紋筋肉腫、結腸癌、基底細胞癌、汗腺癌、乳頭癌、脂腺癌、乳頭腺癌、嚢胞腺癌、髄様癌、気管支原性癌、腎細胞癌、胆管癌、絨毛癌、セミノーマ、胎児性癌、ウィルムス腫瘍、精巣腫瘍、髄芽細胞腫、頭蓋咽頭腫、上衣細胞腫、松果体腫、血管骨芽細胞腫、聴神経鞘腫、乏突起細胞腫、髄膜腫、神経芽細胞腫、網膜芽細胞腫、白血病、多発性骨髄腫、ワルデンシュトレーム・マクログロブリン血症、および重鎖および軽鎖病、および子宮頸部腺癌、子宮および卵巣上皮癌、膀胱の移行上皮癌、ＢおよびＴ細胞リンパ腫（結節性および、び慢性）プラスマサイトーマ、急性および慢性白血病、軟組織肉腫および／または平滑筋肉腫を含む。

本明細書に使用する“転移性腫瘍を処置する”とは、腫瘍の転移を予防し、遅らせまたは阻害することを意味する。

本明細書に使用する“転移性腫瘍”とは、転移可能の原発部位の腫瘍および二次的部位に転移した腫瘍の両方を含む。 このような転移性腫瘍は肺、肝臓、腎臓、胃、小腸、骨、脾臓、脳、末梢神経系、甲状腺、膵臓、子宮内膜、卵巣、子宮頸部、皮膚、結腸またはリンパ様組織の組織起源のものでよい。

本明細書に使用する“侵襲性”とはその他の細胞の層を通過して移動し、または細胞外基質を通過して移動できる細胞の能力である。 侵襲性は実施例５に記載されているマトリゲル・アッセイによって評価できる。 侵襲性はあるインキュベーション期間中にフィルタの下表面に達する細胞として測定される。 実施例５にあるような侵襲アッセイにおいて、６ないし１２時間内に細胞の４０％以上がそのフィルタの他の側に達し、コロニを形成する場合、その自然発生性癌細胞は侵襲性であるとされる。 対照細胞は同じ時間枠内で５％がコロニを形成するに過ぎず、非侵襲性であるとされる。

本明細書に使用される“接着性”とは、細胞が、それが増殖した基質から取り出され、単一細胞の溶液として（溶液のその他の細胞と直接接触しない）再懸濁され、接着が可能な基質上に置かれた後、再接着する能力を言う。 実施例７に記載されるアッセイにおいて、４０％より多くの細胞が３０〜１２０分以内に接着する場合に、細胞は接着性であるとされる。 これに対して対照細胞は同じ時間内に５％だけが接着する。

本明細書に使用する“増殖”とは、真核細胞、したがって哺乳動物細胞が増殖し、分裂して娘細胞になる能力を言う。 例えば細胞培養において、増殖は時間と共に全体的細胞数の増加を導く。

本明細書に使用する“転移能力（転移ポテンシャル）”とは、腫瘍細胞が、それが誘導された原発腫瘍から離れた部位に新しい腫瘍を形成する（転移）能力である。 転移能力は例えば１×１０ ^６の細胞を無胸腺ヌードマウスの外側尾静脈に注入し、例えば注入後２カ月目に肺の腫瘍結節数を確認することによって測定される。 この方法はフアング（Ｈｕａｎｇ）らの（１９９６）オンコジーン（Ｏｎｃｏｇｅｎ）１３巻：ｐ． ２３３９−２３４７の２３４６ページの章“腫瘍細胞の注入（Ｔｕｍｏｒ ｃｅｌｌ ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ）”、またはラディンスキ（Ｒａｄｉｎｓｋｙ）ら（１９９４）Ｏｎｃｏｇｅｎ ９巻：ｐ． １８７７−１８８３の１８８２ページの章“動物および腫瘍形成（Ａｎｉｍａｌｓ ａｎｄ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ｔｕｍｏｒｓ）”および“石灰化基質の組織化学的分析（Ｈｉｓｔｏｃｈｅｍｉｃａｌ ａｎａｌｙｓｉｓ ｆｏｒ ｃａｌｃｉｆｉｅｄ ｍａｔｒｉｘ）”に記載されている。 このアッセイにおいて肺に３つ以上、好ましくは８つ以上、より好ましくは２０以上の腫瘍結節を生成する細胞系が転移性と考えられる。

処置有効量とは、患者の腫瘍の苦しみを排除または軽減する量、または転移を防止または軽減する量である。 用量は腫瘍の性質、患者の病歴、患者の状態、細胞傷害性物質の同時使用の可能性、および投与法など多数のパラメータに依存する。 投与法には、無毒性の薬物学的に容認される担体中にＭＣＡＭ機能阻害分子を提供する注入（例えば非経口、皮下、静脈内、腹腔内など）などがある。 一般に水、食塩液、リンゲル溶液、デキストロース溶液、５％ヒト血清アルブミン、固定油、エチルオレエート、またはリポソーム類などの適切な担体および希釈剤は、結合物質の生物学的活性（結合特異性、親和性または安定性）を阻害しないように選択される。 容認される担体としては、生体適合性、不活性または生体内吸収性塩類、緩衝剤、オリゴ糖または多糖、ポリマ類、粘弾性化合物、例えばヒアルロン酸などの粘弾性化合物、粘度改善剤、保存料などを含むことができる。 更に、この医薬組成物または処方はその他の担体、補助剤、または無毒性、非処置性、非免疫原性安定剤なども含んでいてもよい。 典型的用量は約０．０１ないし約２０ｍｇ／ｋｇ、またはより好ましくは約１ないし約１０ｍｇ／ｋｇの範囲である。

ＭＣＡＭ機能を阻害する分子を用いる処置法は、腫瘍の種類、患者の状態、その他の健康問題および種々の要因によって、化学療法、手術および放射線治療と組み合わせることができる。

“ＭＣＡＭ機能を阻害する分子”とはＭＣＡＭの生物学的活性を阻害する分子である。 このＭＣＡＭの生物学的活性の阻害は、例えばＭＣＡＭ依存性侵襲性またはＭＣＡＭ依存性接着などのＭＣＡＭの生物学的活性の一つ以上の指標を測ることによって、評価できる。 ＭＣＡＭのうちのひとつ又はいくつか生物学的活性のこれらの指標は数種のインビトロまたは インビボアッセイによって評価することができる（実施例５、７および６．２を参照されたい）。 ある分子の、ＭＣＡＭ活性阻害能力は、侵襲性ヒト肉腫細胞、特に実施例５、７および６．２において使用される細胞類のＭＣＡＭ誘起性の侵襲性、接着または増殖の阻害によって評価される。

本発明の“ＭＣＡＭ機能を阻害する分子”は、プロテアーゼのような、尿素またはグアニジニウム塩酸などの変性剤のような、重金属原子のような、または生物分子（脂質、蛋白質、糖）と共有結合によって非特異的に反応する低分子（例えばアルデヒドまたはイソチオシアネート類）のような、蛋白質機能の一般的インヒビタである分子ではない。 ＭＣＡＭ機能を阻止する分子は、それがインスリン受容体（例えば抗ホスホチロシン・ウェスタン・ブロット・アッセイで測定される；キャリオ（Ｂ．Ｃａｒｉｏｕ）ら（２００２）ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリ（Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ．）２７７、ｐ．４８４５−５２などを参照）およびアセチルコリン受容体（例えばＣａ流入の測定によって決定される；モンティール（Ｍ．Ｍｏｍｔｉｅｌ）ら（２００１）バイオケミカル・ファーマコロジ（Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．）６３巻、ｐ．３３７−４２参照）およびＢ−ＣＡＭ細胞表面糖蛋白質（例えばウダニ（Ｕｄａｎｉ）ら（１９９８）ザ・ジャーナル・オブ・クリニカル・インベスティゲーション（Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．）１０１巻（１０号）ｐ．２５５０−２５５８の２５５１ページの章“フロー・チェンバ・アッセイ”に記載されているようなヘモグロビンＡ赤血球（ＡＡ ＲＢＣｓ）の固定ラミニンへの結合の測定によって；）の機能を阻害しない濃度でＭＣＡＭ機能を阻害する能力によって特徴づけられる。 上記の３受容体の機能に有意な影響を与えない濃度でＭＣＡＭ機能を阻害する分子が、この特許に用いられるＭＣＡＭ機能阻害分子である。 阻害とは、上記の侵襲アッセイにおけるＭＣＡＭ機能によって定義されるように、同じ実験条件下で本発明の分子を使用しない陰性対照と比較した場合、機能の少なくとも３０％、好ましくは４０％、より好ましくは５０％、さらにより好ましくは６０％の減少と理解される。 本発明の分子によって起こる上記３受容体の機能の減少が２０％未満、より好ましくは１５％未満、さらにより好ましくは１０％未満であるならば、分子は上記のその他の３受容体の機能には有意な影響を与えないと定義する。

さらに、ＭＣＡＭの遺伝子発現を阻害する本発明の分子の場合、一方のサンプルにおいて本発明の分子はＭＣＡＭの発現が阻害できるというサンプルと、阻害できない点を除けば全く同一のサンプルとの二つの間でＭＣＡＭの量を比較する実験で、１０ｎＭないし１００μＭの濃度、好ましくは約１μＭの濃度で存在するベータチュブリンの濃度に標準化した定量的ウェスタンブロット法を用いて測定すると、前記本発明の分子はＭＣＡＭ発現を５０％以上、より好ましくは８０％以上、さらにより好ましくは９０％以上、最も好ましくは９５％以上減少させる。 同じ実験において本発明の分子による１細胞あたり存在するベータチュブリン量の減少は２０％を超えず、前記分子によるインスリン受容体およびＢ−ＣＡＭ細胞表面糖蛋白質の相対的濃度の減少は２０％を超えない。

さらに本発明のポリペプチドの場合、特に本発明の抗体または抗体フラグメントの場合、本発明のポリペプチドが実施例５に記載したような実験で本来侵襲性である癌細胞の侵襲性を３０％以上、好ましくは６０％以上減少させるならば（このとき前記抗体フラグメントは１ｎＭないし５０μＭ濃度、より好ましくは約２０μＭ濃度で存在する）、本発明のポリペプチドはＭＣＡＭの生物学的機能を阻害すると考えることができる。

さらに、本発明の小さい化合物の場合、前記化合物が１０ｎＭないし１００μＭの濃度、より好ましくは約１μＭ濃度で存在する場合、前記化合物が実施例５または７に記載するような実験において本来侵襲性である癌細胞の侵襲性を３０％以上、好ましくは６０％以上減少させ、細胞形態、細胞周期進行に影響を与えず（細胞集団のＤＮＡ含有量をヨウ化プロピジウム染色およびＦＡＣＳ分析によって分析して確認した）、アポトーシスの兆候を示す培養細胞のパーセンテージを高めない（例えばいわゆるトンネルアッセイによって、ＤＮＡ断片化を示す細胞のパーセンテージの測定によって確認した）ならば、前記化合物はＭＣＡＭの生物学的機能を阻害すると考えることができる。 この発明に使用される小さい化合物は５０Ｄａないし１００００Ｄａ、好ましくは１００Ｄａないし４０００Ｄａ、より好ましくは１５０Ｄａないし２０００Ｄａの分子量を有する分子、またはその生理学的に容認される塩である。

本明細書に記載される“ＭＣＡＭに特異的に結合する”または“ＭＣＡＭに特異的な”分子とは、実施例１および２に与えられる条件下で、ＭＣＡＭを発現するＨＴ１０８０細胞には結合するが、Ｈｓ細胞またはＭＣＡＭ陰性のＳＢｃｌ−２細胞には結合しない分子である（シーら（１９９７）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．５７巻（１７号）ｐ．３８３５−３８４０）。 すなわち、前記細胞を０．１ｎＭないし１０μＭ、より好ましくは１ｎＭないし１μＭ、さらにより好ましくは１０ｎＭないし５００ｎＭおよび最も好ましくは約１００ｎＭの濃度で試験した場合、ＨＴ１０８０細胞への結合は、Ｈｓ−２７細胞またはＳＢｃｌ−２細胞への結合に比べて少なくとも２倍高く、より好ましくは５倍高く、最も好ましくは２０倍高い。

このような分子はこの他、ＭＣＡＭに対して１０μＭより小さい、好ましくは１μＭより小さい、より好ましくは１００ｎＭより小さい、最も好ましくは０．１ｎＭないし２０ｎＭの結合定数を有する。 結合定数は例えば製造者のマニュアルのインストラクションによるＢＩＡＣＯＲＥシステムのような標準的方法によって測定できる。

本明細書に使用する用語“少なくとも１つ”とは“１つ以上”、特に１つ、２つ、３つ、４つおよび５つを意味する。

本発明は先ず最初に、特定の自然発生的腫瘍細胞について、接着、侵襲および／または転移の過程にＭＣＡＭの発現および機能が関係していることを証明する。 本発明は先入観なしにふるい分けを行ってＭＣＡＭ機能を阻害する分子を同定する。

よって本発明は、ＭＣＡＭの細胞外領域に特異的に結合し、侵襲、増殖、接着および／または転移におけるＭＣＡＭ機能を阻害することができる分子またはポリペプチドに関する。 本発明によるポリペプチドは以下に示す群から選択される少なくとも１つの配列を含む：
−配列番号３９ないし配列番号５７、これは例えばＭＣＡＭのような腫瘍特異的細胞表面分子の結合に特に関するＣＤＲである；または−配列番号１ないし配列番号９、配列番号１９ないし配列番号２３および配列番号２９ないし配列番号３３、これは例えばＭＣＡＭのような腫瘍特異的細胞表面分子の結合に特に関係するｓｃＦｖ'ｓである。

一実施形態において、本発明のポリペプチドは抗体フラグメント、特にｓｃＦｖ、ｄｓＦｖ、Ｆａｂ'、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ'）２、Ｆｖ、単一ドメイン抗体または二重特異性抗体、より好ましくはｓｃＦｖ、ｄｓＦｖ、Ｆｖ単一ドメイン抗体または二重特異性抗体、さらにより好ましくはｓｃＦｖ、単一ドメイン抗体又は二重特異性抗体、より好ましくはｓｖＦＶである。

また別の実施形態において、本発明のポリペプチドは抗体であり、好ましい一実施形態ではｓｃＦｖ抗体フラグメントから誘導される抗体、また別の好ましい実施形態ではポリクローナルまたはモノクローナル抗体、特にヒトモノクローナル抗体である。

また別の実施形態において、抗体または抗体フラグメントのＣＲＤ３領域は、表１のｓｃＦｖ'ｓの配列中の関連ヌクレオチド類に下線を引いて示したＣＤＲ３類の１つに一致する。

抗ヒトＭＣＡＭ結合抗体は、ＣＤＲ領域、特にＣＤＲ３領域において本発明の対応抗体フラグメントと実質的に同一なアミノ酸配列を示し、ＭＣＡＭ結合に対して対応抗体フラグメントと実質的に同じ親和性を保有する修飾免疫グロブリン類、例えば化学的にまたは組換えによって生成する抗体類またはヒト化抗体、部位特異的突然変異抗体類などから選択される。

また別の実施形態において、本発明のポリペプチドはＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧおよびＩｇＭからなる群から選択されるヒト抗体、特にＩｇＧおよびＩｇＭ、より好ましくはＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４から選択されるヒト抗体である。

本発明のまた別の好ましい実施形態において、本発明のポリペプチド、特に本発明の抗体フラグメントまたは抗体を、検出可能標識で標識化する。 詳細に述べれば、検出可能標識の例は放射性同位体、発色団、フルオロフォル、酵素または放射性同位体である。 検出可能標識は例えばこの群から選択することができる。

また別の実施形態において、本発明のポリペプチドは、自体と、別の蛋白質、固体基質（ビーズなど）とそれぞれに、互いに共有結合または非共有結合し、マルチマー、標的細胞に対する毒性をさらに高める細胞傷害性物質、細胞増殖抑制物質、プロドラッグ、または、エフェクタ分子を形成することができる。 それはＭＣＡＭを発現する細胞を改変し、または免疫細胞を補強することができる。 これら全ての結合物は本発明の“バイオコンジュゲート”である。

細胞傷害性物質のリストには、非制限的に、ダウノルビシン、タキソール、アドリアマイシン、メトトレキセート、５ＦＵ、ビンブラスチン、アクチノマイシンＤ、エトポシド、シスプラチン、ドキソルビシン、ゲニステイン、アンドリボソーム・インヒビタ類（トリコサンチンなど）、または種々の細菌毒素（シュードモナス内毒素；黄色ブドウ球菌蛋白質Ａなど）が含まれる。

本発明のポリペプチド、特に、本発明の抗体フラグメントまたは抗体を前記細胞傷害性部分と共に含むバイオコンジュゲートは種々の二官能性蛋白質カップリング剤を使用して作られる。 このような試薬の幾つかの例はＮ−スクシンイミジル３−（２−ピリジルジチオ）プロピオネート（ＳＰＤＰ）、ジメチルアジピミデートＨＣｌのようなイミドエステルの二官能性誘導体類、ジスクシンイミジル・スベレートのような活性エステル類、グルタールアルデヒドのようなアルデヒド類、ビス（Ｒ−アチドベンゾイル）ヘキサンジアミンのようなビスアチド化合物類、ビス（Ｒ−アチドニウムベンゾイル）エチレンジアミンのようなビスジアゾニウム誘導体類、トリレン２，６−ジイソシアネートのようなジイソシアネート類、１，５−ジフルオロ−２，４−ジニトロベンゼンのようなビス活性化フッ素化合物類である。 バイオコンジュゲートの有用な製法はマーチの最新有機化学：反応、作用機序および構造（Ｍａｒｃｈ'ｓ Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ：Ｒｅａｃｔｉｏｎｓ，Ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ ａｎｄ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ）第５版、ウィリー・インターサイエンス；またはバイオコンジュゲート技術（Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ）、グレッグ・ハーマンソン（Ｇｒｅｇ Ｈｅｒｍａｎｓｏｎ）編集、アカデミック・プレス、に詳細に記載されている。

転移関連性ＭＣＡＭ抗原の発現は本発明のバイオコンジュゲートまたはポリペプチド、特に抗体または抗体フラグメントを使用して検出できる。 サンプルは対象から採取され、例えば転移性腫瘍が存在することが疑われる組織から採取した生検標本などである。 アッセイを行う前に前記サンプルを処理するのが普通である。 使用できるアッセイはＥＬＩＳＡ、ＲＩＡ、ＥＩＡ、ウエスタン・ブロット分析、免疫組織学的染色などである。 使用するアッセイにより、抗原または抗体を酵素、フルオロフォアまたは放射性同位体によって標識化することができる。 （コリガン（Ｃｏｌｉｇａｎ）ら、（１９９４）免疫学における最新のプロトコル（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ）、ジョン ウィリー＆ソンズ社、ニューヨーク、ニューヨーク；およびフリエ（Ｆｒｙｅ）ら（１９８７）癌遺伝子（Ｏｎｃｏｇｅｎｅ）４巻：ｐ．１１５３−１１５７などを参照されたい）。

したがって本発明の一実施形態は本発明の少なくとも１種類のポリペプチドおよび／または本発明の少なくとも１種類の標識ポリペプチドおよび／または本発明の少なくとも１種類のバイオコンジュゲートを使用してＭＣＡＭを検出することに関する。 例えば本発明の１種類のポリペプチドまたは本発明の１種類の標識ポリペプチドまたは本発明の１種類のバイオコンジュゲートを使用してＭＣＡＭを検出でき、または１種類のポリペプチドと１種類のバイオコンジュゲートと共に、または２または３種類のポリペプチド、または２種類の標識ポリペプチドを使用することができる。 このような検出のためにポリペプチドはＭＣＡＭの細胞外領域に結合する。 ＭＣＡＭの細胞外領域は、細胞膜の外側のＭＣＡＭ蛋白質部分、特にアミノ酸２４ないしアミノ酸５５３間の細胞外アミノ酸ループと定義される。 ＭＣＡＭは糖蛋白質であり、上記のアミノ酸だけでなく、それらアミノ酸の糖修飾もＭＣＡＭの細胞外領域の部分と考えられると理解されるべきである。

また別の実施形態において、本発明は診断キットを含む。 このようなキットは少なくとも１種類のバイオコンジュゲートおよび／または本発明の少なくとも１種類の標識ポリペプチドおよび／または本発明の少なくとも１種類のポリペプチド、特に本発明の抗体フラグメントまたは抗体、またはこれらの標識化変異体を含み、追加的に標準的競合またはサンドイッチアッセイの実施のために必要な試薬および材料を含む。 前記診断キットを使用して、生物学的サンプル、特にある種の癌細胞型の生物学的サンプルの侵襲能力を測定することができる。 キットはさらに容器を含むのが普通である。

本発明のポリペプチド、特に本発明の抗体フラグメントまたは抗体を使用することによってさらに抗イディオタイプ抗体を生成することができる。 この抗体は、抗体類をスクリーニングし、その抗体が本発明のヒトモノクローナル抗体と同じ結合特異性を有するかどうかを確認することができ、活性免疫用に使用することもできる（ハーリン（Ｈｅｒｌｙｎ）ら、（１９８６）サイエンス（Ｓｃｉｅｎｃｅ）、２３２巻、ｐ．１００）。 このような抗イディオタイプ抗体類は公知のハイブリドーマ技術を用いて生成することができる（コーラー（Ｋｏｈｌｅｒ）ら（１９７５）Ｎａｔｕｒｅ、２５６巻、ｐ．４９５）。 抗イディオタイプ抗体は、対象とする抗体上に存在する特異的決定基を認識する抗体である。 これらの決定基は抗体の高可変部に位置する。 所定のエピトープに結合するのは、したがって抗体の特異性を生ずるのはこの領域である。 抗イディオタイプ抗体は、動物を上記ポリペプチド、特に対象とする抗体フラグメントまたは抗体で免疫することによって作られる。 免疫された動物は免疫抗体のイディオタイプ決定基を認識し、反応し、これらのイディオタイプ決定基に対する抗体を産生する。 抗イディオタイプ抗体を使用することにより、同じエピトープ特異性を有するモノクローナル抗体を発現するその他のハイブリドーマを同定することができる。

抗イディオタイプ技術を用いて、エピトープを模するモノクローナル抗体を産生することもできる。 例えば第一のモノクローナル抗体に対して作られた抗イディオタイプモノクローナル抗体は高可変部に結合ドメインを有する。 それは第一の抗体が結合したエピトープの“イメージ”である。 抗イディオタイプモノクローナル抗体結合ドメインは抗原として効果的に作用するから、抗イディオタイプモノクローナル抗体を免疫のために使用することができる。

もう一つの実施形態において、本発明のポリペプチド、特に本発明の抗体フラグメントまたは抗体は、侵襲アッセイで試験すると、侵襲性腫瘍の侵襲性を３０〜６０％、または好ましくは３０〜５５％、４０〜５０％または少なくとも６０％も軽減する（実施例５）。 好ましいことにＭＣＡＭの細胞外ドメインにポリペプチドが特異的に結合することによって侵襲性は軽減するが、その一方でその他の実施形態において、前記侵襲性はインテグリンまたはエフリンなどその他の表面分子に結合するポリペプチドによっても減少する。

また別の実施形態において、本発明のポリペプチド、特に抗体または抗体フラグメントは、接着性アッセイで試験すると、侵襲性腫瘍細胞の接着性を３０〜６０％、または好ましくは３０〜５５％、４０〜５０％または少なくとも６０％も減少させる（実施例７を参照されたい）。

また別の実施形態において、本発明のポリペプチド、特に抗体または抗体フラグメントは、増殖アッセイで試験すると、侵襲性腫瘍細胞の増殖を３０〜６０％、または好ましくは３０〜５５％、４０〜５０％または少なくとも６０％も減少させる（実施例６．２を参照されたい）。

また別の実施形態において、本発明の抗体フラグメントは１つ以上のＭＣＡＭのエピトープまたはＭＣＡＭの保存変種のエピトープ、またはＭＣＡＭのペプチドフラグメントを特異的に識別する。

また別の実施形態において、本発明は、特に本発明の小さい化合物、ＭＣＡＭの遺伝子発現を抑制する分子、本発明のバイオコンジュゲートまたはポリペプチド、より特別には本発明の抗体フラグメントまたは抗体からなる群から選択される本発明の分子を薬剤として使用することに関する。

また別の実施形態において、本発明は、少なくとも１種類、特に１種類の本発明の分子の有効量、特に本発明の任意のポリペプチドまたはヌクレオチド配列の少なくとも１種類の有効量、またはＭＣＡＭの遺伝子発現を阻害する少なくとも１種類の分子の有効量と、薬物学的に容認される担体および／または希釈剤とを含む組成物に関する。 この医薬組成物を使用して、ヒトＭＣＡＭの過剰発現または異所性発現に関係する病気、特に上記のような癌細胞型の選択された群から誘導される転移性腫瘍を治療することができる。

本発明のまた別の実施形態において、薬物学的に容認される担体およびＭＣＡＭ機能を阻害する少なくとも１種類の分子、特にＭＣＡＭの細胞外領域に結合することによってＭＣＡＭ機能を阻害する分子の治療的有効量を含む医薬組成物であって、より好ましくは前記分子が本発明の小さい化合物、核酸配列、ポリペプチドまたはバイオコンジュゲートであり、さらにより好ましくは前記分子が本発明のｓｃＦｖ、または本発明のこのようなｓｃＦｖから誘導される抗体である前記医薬組成物が提供される。

また別の実施形態において、本発明は薬物学的に容認される組成物中のＭＣＡＭ機能阻害分子を投与することに関し、特に前記分子は受容体媒介性経路を介してＭＣＡＭの遺伝子発現を阻害する。

或いは、ＭＣＡＭ機能阻害分子は特に、ＭＣＡＭの細胞外領域に結合できる分子であり、より特別にはその際前記分子は本発明の小さい化合物または抗体または抗体フラグメントまたはポリペプチド、または本発明のバイオコンジュゲート、より好ましくは前記分子が本発明の抗体フラグメントであり、さらにより好ましくは前記分子が本発明のｓｃＦｖまたは本発明のこのようなｓｃＦｖから誘導される抗体である。

本発明はさらに、組換え技術によって本発明のポリペプチドを生成する方法に関する。 これらの技術は当業者には公知である（スケラ（Ｓｋｅｒｒａ）ら（１９９３）、カレント・オピニオン・イン・イムノロジ（Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．ｉｍｍｕｎｏｌ．）５巻：ｐ．２５６−６２；チャド（Ｃｈａｄｄ）ら（２００１）、カレント・オピニオン・バイオテクノロジ（Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．）１２巻、ｐ．１８８−９４）。

例えば、本発明のポリペプチド、特に抗体フラグメントまたは抗体をコードする核酸配列（例えば表１または表２の抗体フラグメントまたはその抗体をコードする遺伝子）を単離し、１つ以上のポリヌクレオチド発現ベクタにクローン化することができ、そのベクタを適切なホスト細胞系に形質転換し、本発明の組換えポリヌクレオチドを発現することができる。 本発明のポリペプチドをコードする遺伝子の発現はそのポリペプチド収量増加をもたらし、本発明の抗体の抗体フラグメントの可変部および定常部の両方においてアミノ酸の置換、欠失、付加およびその他の修飾、例えばヒト化修飾（ラプリ（Ｒａｐｌｅｙ）（１９９５）モレキュラー・バイオテクノロジ（Ｍｏｌ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．）３巻；ｐ．１３９−１５４）などを、結合特異性またはＭＣＡＭ阻止機能の重大な損失を起こすことなく導入することによって、ポリペプチドの日常的修飾も可能にする（スケラら（１９９３）Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．５巻；ｐ．２５６−２６２）。

そのため本発明は、本発明の任意のポリペプチド、特に本発明の抗体フラグメント、より特別には本発明のｓｃＦｖ、Ｆｖ、単一ドメイン抗体、二重特異性抗体、または本発明のこのようなｓｃＦｖから誘導される抗体、およびさらにより好ましくは本発明のｓｃＦｖまたは本発明のこのようなｓｃＦｖから誘導される抗体をコードする上記の単離核酸分子に関する。

好ましい実施形態において、本発明は下記からなる群から選択される配列を含むポリペプチドをコードする核酸分子に関係する：
−配列番号３９ないし配列番号５７、これは例えばＭＣＡＭのような腫瘍特異的細胞表面分子の結合に特異的に関係するＣＤＲである；または−配列番号１ないし配列番号９、配列番号１９ないし配列番号２３および配列番号２９ないし配列番号３３、これは例えばＭＣＡＭのような腫瘍特異的細胞表面分子の結合に特異的に関与するｓｃＦｖ'ｓである。

さらに、本発明の単離された核酸配列は配列番号１０ないし配列番号１８、配列番号２４ないし配列番号２８、および配列番号３４ないし配列番号３８からなる群から選択されるいずれか１つの核酸配列を含む。

本発明はさらに、配列番号１０ないし配列番号１８、配列番号２４ないし配列番号２８、および配列番号３４ないし配列番号３８のいずれかの配列に厳密な条件下でハイブリダイズする核酸配列にも関する。 ここで使用する“厳密な条件下”という用語は、高い相同性（好ましくは７０％以上）によってのみ核酸配列が凝集できるハイブリダイゼーション条件および温度を言う。 典型的ハイブリダイゼーション条件は当業者には公知である。 つまり、高選択性を必要とする用途では、比較的低い塩条件および／または高い温度条件、例えば５０℃ないし７０℃で０．０２Ｍ〜０．１５Ｍ ＮａＣｌによってもたらされるような条件を使用するのが一般に好ましい。

本発明は本発明の核酸を含むベクタにも関する。 特にこのベクタはプラスミド、ファージミドまたはコスミドである。

例えば本発明の核酸分子は適切な様態で原核生物または真核生物発現ベクタにクローン化することができる（サムブルック（Ｓａｍｂｒｏｏｋ）ら、“分子クローニング：実験室的マニュアル（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｃｌｏｎｉｎｇ：ａ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｍａｎｕａｌ）”第二版、コールドスプリング・ハーバー・ラボラトリ・プレス（１９８９））。 このような発現ベクタは、少なくとも１つのプロモータ、翻訳開始のための少なくとも１つのシグナル、本発明の少なくとも１つの核酸配列、および（原核生物発現ベクタの場合）翻訳終止のためのシグナル、一方真核生物発現ベクタの場合は、好ましくは転写終止およびポリアデニル化のための追加的シグナルを含む。

原核生物発現ベクタの例としては、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）における発現の場合、例えば米国特許第４，９５２，４９６号に記載されているようなＴ７ＲＮＡポリメラーゼによって認識されるプロモータに基づく発現ベクタがあり、サッカロミセス・セレビシア（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｓｅｒｅｖｉｓｉａｅ）に発現させるための真核生物発現ベクタの例としては、例えばベクタｐ４２６Ｍｅｔ２５または５２６ＧＡＬ１（ムンバーグ（Ｍｕｍｍｂｅｒｇ）ら（１９９４）ニュークレイック・アシッズ・リサーチ（Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．）２２巻：ｐ．５７６７−５７６８）などがあり、昆虫細胞に発現するためには例えばＥＰ−Ｂ１−０１２７８３９またはＥＰ−Ｂ１−０５４９７２１に記載されるようなバキュロウィルス−ベクタ類があり、哺乳動物細胞における発現では例えばベクタＲｃ／ＣＭＶおよびＲｃ／ＲＳＶまたはＳＶ４０−ベクタ類（これらは一般に知られており、市販されている）がある。

これらの発現ベクタの分子生物学的生産方法、並びにホスト細胞にトランスフェクトし、そのようなトランスフェクトされたホスト細胞を培養する方法、並びに前記形質転換されたホスト細胞から本発明のポリペプチドを生産し、得るための条件は当業者には公知である。

本発明はさらに本発明の核酸および／または本発明のベクタを含むホスト細胞にも関係する；ここでは特に、ホスト細胞は酵母のような微生物またはその他の菌類、例えば大腸菌、バチラス・サブチリス（枯草菌）またはその他の細菌である。 ホスト細胞は、昆虫細胞のような比較的高級な真核生物起源の細胞でもよく、好ましくはウィルスに感染した昆虫細胞、より好ましくはバキュロウィルスに感染した昆虫細胞、またはＣＯＳ、ＭＤＣＫ２９３−ＥＢＮＡ１、ＮＳ０またはハイブリドーマ細胞のような哺乳動物細胞でもよい。

本発明は、本発明のポリペプチド特に本発明の抗体フラグメントの製法であって、本発明のポリペプチド、特に本発明の抗体フラグメントをコードするＤＮＡを含む組換えベクタで形質転換した微生物を培養し、前記本発明のポリペプチド、特に本発明の抗体フラグメントまたはこれを含む融合蛋白質を培地から回収することを含む製法に関する。

本発明は、ＭＣＡＭ機能のブロックがこの明細書に既に列挙された癌細胞型の選択された群から誘導されるある種の癌細胞の侵襲性を阻害し、特に例えばヒト肉腫細胞、上皮腫瘍、間葉腫瘍、細網内皮腫、神経系腫瘍、奇形腫から、より好ましくはヒト肉腫細胞から誘導される選択された癌細胞の侵襲性を阻害することを示す。

本発明の一実施形態は、自然発生性癌細胞の侵襲および／または転移を治療または予防するための薬剤の製造に、ＭＣＡＭ機能を阻害する少なくとも１種類、特に１種類の分子を使用することであり、ここで際前記癌細胞の増殖、接着性、侵襲性および／または転移能力はＭＣＡＭ機能に依存する。

また別の好ましい実施形態において、ＭＣＡＭ阻害分子は発現したＭＣＡＭの機能を阻害する。 発現したＭＣＡＭとは本発明の範囲では、ある種の処置が開始される前に自然発生性癌細胞上にすでに存在するＭＣＡＭ蛋白質であると理解される。 これらの分子は特に、受容体の細胞外領域に結合し、内部経路を介してＭＣＡＭ発現を阻止する分子である。

より詳細に述べれば、このような分子は小さい化合物、ＭＣＡＭに対する抗体、ＭＣＡＭに対する抗体フラグメント、本発明のポリペプチド、本発明の抗イディオタイプ抗体および／または本発明のバイオコンジュゲートからなる群から選択され、ここでその分子は特に本発明のポリペプチドおよび／またはバイオコンジュゲートである。

また別の好ましい実施形態において、増殖、接着、侵襲および／または転移能力をＭＣＡＭ機能に依存している自然発生性癌細胞は、前に述べた組織または癌細胞型からなる群から選択されるどの癌細胞でもよく、特にそれらは肺、肝臓、腎臓、胃、小腸、骨、脾臓、脳、末梢神経系、甲状腺、膵臓、子宮内膜、子宮、子宮頸、皮膚、結腸またはリンパ様組織からなる群から選択される組織由来のものでよく、より好ましくはその癌細胞は肉腫細胞である。

本発明は更に薬剤で処置できる標的としてのＭＣＡＭ抗原に関する。 本発明のその他の局面は高い中和能力をもってヒトＭＣＡＭに結合する抗体フラグメントに関する。

本発明の更なる実施形態において、本発明の少なくとも１つのポリペプチドおよび／または本発明のバイオコンジュゲートを使用して、特にスクリーニングアッセイにおいてヒトＭＣＡＭに特異的に結合するその他の分子類を同定する。 これらの方法は、推定的競合物テスト結合剤の存在下で標準抗−ＭＣＡＭ抗体フラグメントとＭＣＡＭドメインを含む標的種とを接触させることを含む。 この接触工程は、テスト結合剤を含まずに、標準抗体フラグメントと標的種との間の複合体形成に適した条件下で行われる。 テスト結合剤の存在下における標準抗体フラグメントと標的種との間の複合体形成は、テスト結合剤のＭＣＡＭとの特異的結合活性のインディケータとして検出される。 このスクリーニング法は、例えばその他の抗体ライブラリまたは抗体フラグメントライブラリ、アンチセンスオリゴヌクレオチドライブラリまたはペプチドおよび低分子ライブラリなどのハイスループットスクリーニングを行って、追加的“ＭＣＡＭに特異的に結合する分子”を同定し、特徴づけるために有用である。 競合は、前記抗体フラグメントまたはその他の被験結合物質が、ＭＣＡＭドメインを含む標的種への基準抗体フラグメントの特異的結合を実質的に阻止するアッセイによって決定される。 これは例えば、推定的コンペティタ、すなわち“ＭＣＡＭに特異的に結合する分子”の存在下または不在下で、複合体形成に適した条件下で、ＭＣＡＭドメインを含む標的種への基準抗体フラグメントの結合を測定することによって決めることができる。 米国特許第４，３７６，１１０号などに記載されているように、多くの種類の競合的結合アッセイが知られており、本発明の範囲内で日常的に使用できる。 一般的にこのようなアッセイはＭＣＡＭドメインを含む標的種（例えば精製ＭＣＡＭ、またはＭＣＡＭ抗原を発現する細胞系）、未標識の“ＭＣＡＭに特異的に結合する分子”、および標識基準抗体フラグメントまたはその他の結合物質の使用を含む。 競合的阻止は“ＭＣＡＭに特異的に結合する分子”の存在下で標的種に結合した標識の量を決定することによって測定される。 “ＭＣＡＭに特異的に結合する分子”は過剰に存在するのが普通である。 これらの競合的アッセイ（“競合的結合物質”）によって同定される“ＭＣＡＭに特異的に結合する分子”には、抗体、抗体フラグメント、ペプチド、アンチセンス オリゴヌクレオチド、低分子および、エピトープに結合するあるいは、基準抗体フラグメントが結合しているその他の結合物質、並びに基準抗体フラグメントが結合しているエピトープに十分近いエピトープまたは結合部位に結合する“ＭＣＡＭに特異的に結合する分子”がある。 本発明の競合的結合物質は、過剰に存在する場合、基準抗体フラグメントの選択された標的種への特異的結合を少なくとも１０％、好ましくは少なくとも２５％、より好ましくは少なくとも５０％、およびさらにより好ましくは少なくとも７５％〜９０％以上阻害するのが好ましい。

本発明のポリペプチドに加えて、特に本発明の抗体フラグメントまたは抗体、天然または人工的リガンド、ペプチド、アンチセンス、またはヒトＭＣＡＭを特異的に標的とすることができるその他の低分子を使用できる。 本発明に基づいて、ヒトＭＣＡＭに結合またはその他相互作用し、阻害するような薬剤を設計することができる。 これに関連して、Ｘ線結晶学、コンピュータによる分子模型化（ＣＡＭＭ）、定量的または定性的構造−活性関係（ＱＳＡＲ）およびこれらに類似の方法を使用して薬剤の開発研究の焦点を合わせることができる。 合理的設計により、蛋白質またはそれらの特異的部分と相互作用できる分子を予測することができる。 そのような分子構造を化学的に合成し、および／または生物学的系において発現させることができる。 低分子は当業者には公知の方法で有機化合物を合成することによって生成することができる。 複数のペプチド類、半ペプチド化合物、または非ペプチド有機化合物を合成し、スクリーニングし、高い中和能力をもってＭＣＡＭに結合する化合物、特に、ＭＣＡＭ関連性侵襲を阻害する化合物を見いだすことができる。 スコット（Ｓｃｏｔｔ）およびスミス（Ｓｍｉｔｈ）、“エピトープライブラリによるペプチドリガンドの検索（Ｓｅａｒｃｈｉｎｇ ｆｏｒ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｌｉｇａｎｄｓ ｗｉｔｈ ａｎ Ｅｐｉｔｏｐｅ Ｌｉｂｒａｒｙ）”Ｓｃｉｅｎｃｅ（１９９０）、２４９巻ｐ． ３８６−９０、およびデブリン（Ｄｅｖｌｉｎ）ら“ランダム・ペプチド・ライブラリ：特異的蛋白質結合分子のソース（Ｒａｎｄｏｍ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｌｉｂｒａｒｉｅｓ：Ａ ｓｏｕｒｃｅ ｏｆ Ｓｐｅｃｉｆｉｃ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｂｉｎｄｉｎｇ Ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ）”Ｓｃｉｅｎｃｅ、（１９９０）、２４９巻、ｐ． ４０４０７、を参照されたい。

本発明はインビトロまたはインビボにおいて、抗体または抗体フラグメントを使用してヒトＭＣＡＭ活性を阻止し、または肉腫細胞中のヒトＭＣＡＭを検出する方法も提供する。 好ましい実施形態において、その抗原を発現する細胞を１種類以上の抗体フラグメントで処理すると、ヒト肉腫細胞の増殖または接着の軽減および／または侵襲能力の阻害が起きる。

腫瘍細胞の組織への移動は転移の重要な一過程である。 接着および侵襲のプロセスはトランスエンドテリアル・モデルで研究できる（ウッドワルド（Ｗｏｏｄｗａｒｄ）ら（２００２）Ｉｎｖｅｓｔ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．Ｖｉｓ．Ｓｃｉ．４３巻、ｐ．１７０８−１４およびヴァクラ（Ｖａｃｈｕｌａ）ら（１９９２）Ｉｎｖａｓｉｏｎ Ｍｅｔａｓｔａｓｉｓ １２巻、ｐ．６６−８１）。 トランスエンドテリアル・モデルは侵襲プロセス中の細胞相互作用を研究するための有用なインビトロ系を提供する。 本発明はさらに自然発生性侵襲性癌細胞の侵襲性とＭＣＡＭ機能との依存関係を調べるためのインビトロ法も提供する。

この方法は次の諸工程を含む：
・前記細胞を、ＭＣＡＭ機能を阻害する分子と接触させる；
・癌細胞を、前記癌細胞の増殖に適した条件下でゲル状基質と接触させる ・前記ゲル状基質を通過する前記癌細胞の移動を調べる

本明細書に使用する用語“ゲル状基質”は、少なくとも９０％の水分量を有する半固体物質で、癌細胞をこの基質と接触させて培養することができ、侵襲性癌細胞は０．１ｍｍないし１ｍｍ、好ましくは０．３ｍｍの厚さの前記“ゲル状基質”のスラブを移動できるが、非侵襲性細胞は移動できないという半固体物質であると理解される。 このような“ゲル状基質”の例は、蛋白質および炭水化物組成物における細胞外基質類似物質であり、特に市販の“マトリゲル”である。 特に、この“ゲル状基質”はＩＶ型蛋白質コラーゲン、フィブロネクチンおよびラミニンからなる群から選択される蛋白質の一つを含む。 このゲル状基質はＩＶ型蛋白質コラーゲン、フィブロネクチンおよびラミニンを含むのがより好ましい。 このゲル状基質はＩＶ型蛋白質コラーゲン、ラミニン、エンタクチン、ニドゲンおよびヘパラン硫酸プロテオグリカンを含むのがより好ましい。

好ましい実施形態において、工程ａ）の妨害分子はＭＣＡＭの細胞外エピトープに特異的に結合するポリペプチド、特に本発明のポリペプチド、より好ましくは本発明の抗体または抗体フラグメント、さらにより好ましくは抗体フラグメント、さらにより好ましくはｓｃＦｖ、ｄｓＦｖ、Ｆｖ、単一ドメイン抗体または二重特異的抗体、特にｓｃＦｖ、単一ドメイン抗体または二重特異性抗体であり、さらにより好ましくはｓｃＦｖである。

本発明はさらに、ナイーブ抗体フラグメント・ファージ・ディスプレイ・ライブラリをスクリーニングすることによって、ＭＣＡＭの細胞外領域に特異的に結合する抗体または抗体フラグメントを同定する方法も提供する。 ここではこれらの抗体フラグメントまたは抗体（ＷＯ９１／１７２７１の抗体のファージ・ディスプレイを参照されたい）は肉腫細胞の侵襲性を阻止することができ、実際阻止する。 前記の方法は次の諸工程を含む：
・抗体フラグメントのファージ・ディスプレイと侵襲性肉腫細胞とを接触させる；
・前記細胞を単離する；
・前記細胞に非特異的に結合したファージを、例えば前記細胞が溶解しない条件下で前記細胞を緩衝洗浄溶液で洗うことによって除去する；
・前記細胞に結合したファージを溶出する；
・前記溶出したファージによってあらわされる抗体または抗体フラグメントの同一性を決定する。

工程ｄ）で得られた抗体または抗体フラグメントをあらわすファージの同一性は、例えばその抗体または抗体フラグメントをコードするＤＮＡの配列決定によって、またはグリッドを付けたまたは番号をつけたファージを有する市販のライブラリの場合は、そのファージのグリッド位置または番号を確認することによって決定することができる。 グリッド位置または番号はそのファージによってあらわされる抗体または抗体フラグメントの同一性をあらわすことができる。

工程ｄ）の後、ファージのプールにはＭＣＡＭに結合しているファージが豊富になる。 ＭＣＡＭに結合しているファージは最後には業界で公知の多数の方法によって同定できる。 ファージを単離し、個々のクローンを生成することができ、そのファージのクローンは標識ＭＣＡＭ蛋白質またはＭＣＡＭ蛋白質の標識部分、例えばＭＣＡＭの細胞外領域の最低７個のアミノ酸長さのペプチドで厳密に調べることができる。 このようなプローブに結合するクローンが、ＭＣＡＭ結合物として同定される。 ファージは精製ＭＣＡＭ蛋白質または組換えＭＣＡＭ上でアフィニティ精製することもできる。

或いは、抗体または抗体フラグメントをコードするオープン・リーディング・フレームを全富化プールから発現ベクタに再クローン化することができ、抗体または抗体フラグメントを別のホスト細胞のクローンに発現することができ、ＭＣＡＭに特異的に結合する抗体または抗体フラグメントをコードする核酸を含む発現ベクタを担持するホスト細胞のクローンは、例えば関連ファージクローンを同定するための上記の方法、または実施例２または実施例９の方法、または組換えＭＣＡＭ上のアフィニティ精製によって同定することができる。

この方法の特別な利点は、ＭＣＡＭの細胞外領域の接近しやすい部分に特異的な抗体または抗体フラグメントが得られることである；なぜならばＭＣＡＭの細胞外領域の接近しやすい部分（そこにファージが結合する）を表す完全細胞上で最初の選択ステップが行われるからである。

本発明の好ましい実施形態において、上記の方法は工程ｅ）の代わりに、次の諸工程をさらに含む：
・単離したファージを組換えＭＣＡＭと接触させる：
・前記ＭＣＡＭを緩衝洗浄剤、および／または高塩溶液で洗い；
・ＭＣＡＭに結合したファージを溶出し；
・前記溶出ファージによってあらわされる抗体または抗体フラグメントの同一性を確認する。

幾つかの実施形態において、ファージ上に発現する抗体フラグメントはｓｃＦｖ、ｄｓＦｖ、Ｆａｂ'、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ'） _２ 、Ｆｖ、単一ドメイン抗体（ＤＡＢｓ）および二重特異性抗体からなる群から選択される抗体または抗体フラグメント、より好ましくはｓｃＦｖ、ｄｓＦｖ、Ｆｖ、単一ドメイン抗体または二重特異性抗体からなる群から選択される抗体または抗体フラグメント、さらにより好ましくはｓｃＦｖ、単一ドメイン抗体または二重特異性抗体から選択される抗体または抗体フラグメントを含み、さらにより好ましくはｓｃＦｖである。

工程ｃ）およびｆ）に使用される用語“洗浄剤”は洗剤溶液、好ましくは緩衝洗剤溶液であり、０．００１〜０．５％、特に０．０１〜０．１％濃度のツイーン（Ｔｗｅｅｎ）でよい。 工程ｆ）の“高塩”は高塩溶液であり、好ましくは緩衝高塩溶液で、イオン強度１０ｍＭ〜１Ｍ、特に２０〜５００ｍＭ、より好ましくは５０〜３５０ｍＭ、さらにより好ましくは８０〜２５０ｍＭである。 一般的に有用な陰イオンは塩化物、クエン酸塩、燐酸塩、水素化燐酸または水素化硼酸などである。 一般的に有用な陽イオンはナトリウム、カリウム、リチウム、カルシウムまたはマグネシウムなどである。

上節に記載の緩衝溶液は典型的にはｐＨ７〜８を有する。 例えばＤＭＥＭまたはＰＢＳ、特に１〜２０％、好ましくは５〜１５％、さらにより好ましくは約１０％のＦＣＳを緩衝剤として使用できる。

細胞を、それらと結合したファージと共に単離するには、２００ないし３００ｇ値で３ないし２０分間、特に５ないし１０分間おだやかに遠心分離する。 細胞および固定ＭＣＡＭの両方に結合したファージの溶出は、２〜１００ｍＭ、特に４〜５０ｍＭ、より好ましくは５〜２０ｍＭ、さらにより好ましくは約１０ｍＭのグリシンで、０ないし２．５のｐＨ、特に１ないし２．５、より好ましくは１．５ないし２．５のｐＨで洗うことによって行われる。

これらの抗体フラグメント、特にこれらのｓｃＦｖｓのＭＣＡＭ阻止活性を上記のようにインビボで、または細胞培養実験で分析測定した。 細胞培養アッセイには、本発明の抗体フラグメントの阻害効果を実施例５および７に記載される侵襲または接着アッセイで測定するアッセイがある。 例えば侵襲アッセイの結果が図２に示される。

下記の実施例（行われた実験および得られた結果を含む）は説明の目的のために提供されるものであり、本発明を制限するためのものではない。

実施例１
ｓｃＦｖの選択およびスクリーニング（懸濁液中の細胞上における選択）
一本鎖Ｆｖをケンブリッジ・アンチボディ・テクノロジ社（ケンブリッジ、英国）から提供される１０１１の独立クローンを含む、ヒト由来の、大きい非免疫ファージ・ディスプレイド・レパートリから選択した。

選択のために、ＨＴ１０８０細胞（ヒト線維肉腫細胞系；ＡＴＣＣ、ＣＣＬ−１２１）を０．０５％ＥＤＴＡで採取し、ＤＭＥＭ＋１０％ＦＣＳで１×１０７細胞／ｍｌに希釈した。 ２×１０１２ｃｆｕファージライブラリ／１０７細胞をＤＭＥＭ＋１０％ＦＣＳで２５℃で１時間プレブロックし、その後ＤＭＥＭ＋１０％ＦＣＳでプレブロックしたエッペンドルフ管中の細胞と共に２５℃で１．５時間、上下回転でインキュベートした。 選択の第一ラウンドでは３×１０７細胞を、選択の第二ラウンドでは１×１０７細胞をそれぞれ用いた。 細胞を２２０×ｇで５分間遠心分離することによって洗い、その後上澄液を除去し、緩衝水溶液に再懸濁した。 洗浄緩衝液としてＤＭＥＭ＋１０％ＦＣＳ＋０．０５％ツイーン２０を用いて５回洗浄し、洗浄緩衝液としてＤＭＥＭ＋１０％ＦＣＳを用いて５回洗浄した。 結合ファージを１０ｍＭグリシンｐＨ２．２の添加によって溶出し、１Ｍトリス／ＨＣｌｐＨ７．４で中和した。 典型的に、選択の第一ラウンドで１０３ないし１０６ｃｆｕが溶出した。 この富化レパートリの多様性は最初のレパートリに比較して減少している。 富化レパートリを含む溶出液を、指数的に増殖する大腸菌ＴＧ１に感染させることによって増幅した。 大腸菌を含むファージミドを選択し、１００μｇ／ｍｌアンピシリンおよび１％グルコースを補充したＬＢ寒天プレート上で３０℃で一晩増殖させた。 この段階後、富化レパートリをポリクローナルプールとして増幅させ、更なる選択ラウンドでこの富化レパートリは所望の特性に収束するまで繰り返し使用することができ、または前記富化レパートリを空間的に単離し、単クローンレベルで所望の機能についてスクリーニングしてもよい。 次の選択ラウンドのためのファージ粒子は、これまでの選択ラウンドの指数的に増殖する培養物にヘルパーファージＶＣＳ−Ｍ１３（ストラタジーン、ラジョラ、カリフォルニア州）をスーパーインフェクトさせ、その培養物を１００μｇ／ｍｌアンピシリンおよび５０μｇ／ｍｌカナマイシンを補充した２×ＴＹ中で２０℃で一晩増殖させることによって生成した。 選択の用意のできたファージを澄明な細菌性上澄液から０．５Ｍ ＮａＣｌ／４％ ＰＥＧ−６０００で沈殿させ、ＰＢＳに再懸濁した。 この実施例では２ラウンドの選択を行い、その後単クローンレベルでスクリーニングした。

実施例２
ｓｃＦｖの選択およびスクリーニング（接着細胞上におけるスクリーニング）
スクリーニングのために、ファージ・ディスプレイ・ベクタに含まれている、選択したｓｃＦｖをコードする遺伝子を発現ベクタｐＸＰ１４に再クローン化した。 このベクタはＳｔｒｅｐｔａｇおよびＥ−ｔａｇと融合したｓｃＦｖを発現させ、フィラメント状ファージ遺伝子−３を含まない。 単一コロニから得た大腸菌ＴＧ１を含む発現ベクタをミクロタイタープレートの個々のウェルで、各ウェルがｓｃＦｖクローン一つだけを含むようにして増殖させた。 その細菌を９６ウェル・ミクロタイタープレート（＃９２９７、ＴＰＰ）で、１００μｇ／ｍｌアンピシリンおよび０．１％グルコースを補充した２×ＴＹ中で３０℃で、ＯＤ６００が０．７になるまで増殖させた。 最終濃度０．５ｍＭのＩＰＴＧで発現を誘発し、２５℃で一晩、発現を続けた。 めんどり卵のリゾチーム（＃Ｌ−６８７６、シグマ社）を最終濃度５０μｇ／ｍｌになるように２５℃で１時間加え、３０００×ｇで１５分間遠心分離することによって、一本鎖Ｆｖを含む澄明溶解物（ｌｙｓａｔｅｓ）を調製した。 スクリーニングＥＬＩＳＡの前に、前記澄明溶解物を、等量のＤＭＥＭ＋１０％ＦＣＳを１時間添加することによってブロックした。 スクリーニングＥＬＩＳＡのために、ＨＴ１０８０細胞を９６ウェル・ミクロタイタープレート（＃９２９６、ＴＴＰ）に、ＤＭＥＭ＋１０％ＦＣＳ中３×１０４細胞／ウェルの密度で３７℃で一晩植え付けた。 それらのウェルをＤＭＥＭ＋１０％ＦＣＳで１時間、３７℃でブロックし、ｓｃＦｖを含む、ブロックした澄明溶解物を２５℃で１時間加えた。 プレートをＰＢＳ＋０．１％ツイーン２０で２回、ＰＢＳで１回洗い、ＨＲＰ結合α−Ｅ−ｔａｇ（＃２７−９４１３−０１、ファルマシア・ビオテク（Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｂｉｏｔｅｃｈ）；０．１％ツイーン２０を含むＰＢＳに５％スキムミルクパウダ（＃７０１６６、フルカ（Ｆｌｕｋａ））を溶解した液で１：５０００に希釈）と共に１時間インキュベートし、ＰＢＳ＋０．１％ツイーン２０で３回、ＰＢＳで３回洗い、ＰＯＤ（＃１４８４２８１、ロッシュ）で展開し、シグナルを３７０ｎｍで読んだ。 陽性クローンをＨＴ１０８０細胞および対照ヒト線維芽細胞Ｈｓ−２７（ＡＴＣＣ ＣＲＬ−１６３４）に対して、上記のＥＬＩＳＡスクリーニング法を用いて再試験した。

典型的選別では、１４７２（１６×９２）クローンをＨＴ１０８０細胞への結合に関してスクリーニングし、バックグラウンドを引いたシグナル＞０．１を与えるクローンを陽性とし、１６％陽性を得た。 ２３８の陽性クローンについてＨＴ１０８０に対する特異的結合をＨｓ−２７対照細胞に比較して再試験し、ＨＴ１０８０におけるバックグラウンドを引いたシグナルがＨｓ−２７対照細胞におけるシグナル値の２倍であるクローンを陽性とし、２８％陽性を得た。

実施例３ａ
シーケンシングおよび大規模発現 ｓｃＦｖ遺伝子のシーケンシングはセクィサーブ社（Ｓｅｑｕｉｓｅｒｖｅ ＧｍｂＨ）（ファテルステッテン、ドイツ）によって、プライマｐＸＰ２ Ｓｅｑ２（５'−ＣＣＣＣＡＣＧＣＧＧＴＴＣＣＡＧＣ−３'；配列番号：４１）およびｐＸＰ２ Ｓｅｑ１（５'ＴＡＣＣＴＡＴＴＧＣＣＴＡＣＧＧＣ−３'：配列番号４２）を用いて行われた。 アミノ酸配列は表１に示され、ヌクレオチド配列は表２に示される。

シーケンシングによって同定された特殊なクローンをグリセロール・ストックからＬＢ／Ａｍｐ（１００μｇ／ｍｌ）／１％グルコース寒天プレート上にすじ状に出し、３０℃でｏ／ｎ インキュベートした。 １０ｍｌ ＬＢ／Ａｍｐ／Ｇｌｕ（１％）培地に単一コロニを接種し、３０℃、２００ｒｐｍで振とうしながら増殖させた。 翌朝、その一晩培養物を、２Ｌエルレンマイヤ−フラスコ中の１００μｇ／ｍｌアンピシリンおよび０．１％グルコースを補充した１Ｌの１００μｇ／ｍｌを２×ＴＹ培地に接種するまで、氷上に置いた。 培養物をＯＤ _６００ ０．５〜０．６になるまで２５℃で振とうしながら増殖させ、その後最終濃度０．１ｍＭのＩＰＴＧで発現を誘発した。 新鮮アンピシリンを５０μｇ／ｍｌになるまで加え、２２℃で一晩振とうしながらインキュベーションを行った。 翌朝、培養物を４℃で５０００×ｇで１５分間遠心分離し、上澄液を棄て、ペレットを氷上で、プロテアーゼインヒビタ・コンプリート（＃１６９７４９８、ロッシュ）を含むあらかじめ冷やしたＰＢＳ−０．５Ｍ Ｎａ緩衝液１０ｍｌ中にピペットで注意深く再懸濁した。 再懸濁が完了した後、細菌懸濁液を２０ｍｌオークリッジ遠沈管に移し、めんどり卵リゾチーム（＃Ｌ−６８７６、シグマ）を氷上で１時間、最終濃度５０μｇ／ｍｌになるまで加えた。 溶解した細菌を２００００×ｇで４℃で１５分間遠沈し、上澄液（溶解物）を１５ｍｌプラスチック管に移した。 アフィニテイ精製のために、溶解物を、１０カラム量（ＣＶ）のＰＢＳ−０．５Ｍ Ｎａ緩衝液で平衡化した１ｍｌストレプタクチン（ＳｔｒｅｐＴａｃｔｉｎ）（＃２−１５０５−０１０）カラム上に、平行蛋白質精製装置（自己製作品）を介して１ｍｌ／ｍｉｎの速度で担持させた。 ＰＢＳで１０ＣＶ−洗浄後、５ＣＶ ＰＢＳ／５ｍＭデスチオビオチン（＃Ｄ−１４１１、シグマ）で溶出し、１ｍｌづつフラクションを集めた。 それらのフラクションをＵＶ２８０で測定し、蛋白質含有フラクションをプールし、アミコン・ウルトラ・セントリヒューガル・フィルタ装置１０．０００ＭＷＣＯ（＃ＵＦＣ８０１０２４、ミリポア）で４７００×ｇで濃縮した。 濃縮されたｓｃＦｖについてクーマシーブルーで染色した１２％Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル上で純度を調べ、一部分づつ２０％グリセロールと共に−８０℃で凍結した。

実施例３ｂ
ｓｃＦｖのＩｇＧフォーマットへのクローニングおよび発現 ｓｃＦｖはリンカ配列によって結合した種々の可変部軽鎖および重鎖からなる。 可変部軽鎖および可変部重鎖をＰＣＲによってプライマを使用して個々に増幅する。 プライマは制限部位を含む。 これらの制限部位は、重鎖および軽鎖のための適切な定常部ドメインを含むベクタ類にも存在する。 増幅した可変部ドメインを制限酵素で切断し、前記カットベクタにクローン化した。 正しい配列をシーケンシングによって同定した。

４つのベクタを使用した。 １つはＩｇＧ１フォーマットのための重鎖の定常部ドメインを含んでいた。 第二のベクタはＩｇＧ４フォーマットのための重鎖の定常部ドメインを含んでおり、２つはそれぞれラムダおよびカッパ軽鎖の定常部ドメインを含んでいた。 異なる制限部位はベクタを切断し、それらベクタの可変部ドメインを結合することができる。

哺乳動物細胞系におけるＩｇＧｓの発現のために、ベクタはエプスタイン・バール・ウィルス複製開始点（ｏｒｉＰ配列）を含んでいた。 ＥＢＮＡ蛋白質はエピソーマルベクタの複製に導くので、ｏｒｉＰ配列は２９３−ＥＢＮＡ−ＨＥＫ細胞の転写レベルを高める。

重鎖のためのベクタと、軽鎖のためのベクタの同時トランスフェクションを行い、細胞中の両方の鎖の発現および小胞体におけるＩｇＧの組み立てに導いた。 組み立てられたＩｇＧはその後培地に分泌された。 トランスフェクション法として燐酸カルシウム・トランスフェクションを使用した。 この方法では燐酸カルシウムおよびＤＮＡの沈殿が形成され、細胞に組み込まれる。 トランスフェクション後、培地を無血清培地に代えた。 ３日目ごとにＩｇＧにつき３回採取した。 上澄液（培地）を滅菌濾過し、４℃で保存した。

ＩｇＧｓを精製するために、蛋白質Ａセファロースを用い、容量により重力流またはＨＰＬＣどちらかのやり方で上澄液を精製した。 ２００ｍｌまでの場合は重力流法を用いた。 両方の精製法共に、上澄液を蛋白質Ａカラムに担持させ、５０ｍＭトリスｐＨ緩衝液で洗い、０．１Ｍクエン酸ｐＨ〜２で溶出した。 溶出フラクションに０．２５ＭトリスｐＨ９を加え、ｐＨ５．５〜６．０にした。 その後ＩｇＧｓを使用して、それらをＰＢＳ緩衝液に対して透析し、−２０℃で保存した。

実施例４
腫瘍細胞特異的結合のＦＡＣＳ分析 一本鎖ＦｖまたはＩｇＧが標的細胞に特異的に結合する能力を試験するために、我々はＨＴ１０８０細胞、ＫＨＯＳ細胞、ＰＣ−３細胞、ＢＴ ４７４細胞、ＭＣＦ細胞、Ｈｅｌａ細胞、ジャルカット（Ｊｕｒｋａｔ）細胞、ＨＬ６０細胞、ＬＳ１７４Ｔ細胞およびＳＷ４８０細胞（１０ ^６細胞／ｍｌ）および、対照細胞としてＨＳ−２７細胞（１０ ^６細胞／ｍｌ）を使用し、細胞自動解析分離装置（ＦＡＣＳ）による分析を行った。 細胞をセルウォッシュ（ＣｅｌｌＷａｓｈ）（ＢＤ（ベクトン・ディッキンソン・アンド・カンパニー）＃３４９５２４）中で純粋なｓｃＦｖ１０μｇ／ｍｌと共に４℃で２０分間インキュベートし、洗い、結合したｓｃＦｖを二次ＦＩＴＣ標識抗Ｅ−ｔａｇ ｍａｂ（アマーシャム＃２７−９４１２−０１）で検出した。 サンプルを洗い、ベクトン・ディッキンソン・ＦＡＣＳｓｃａｎで分析した。 選択されたｓｃＦｖの結果を図３、表３ａに示す。 ＩｇＧ'ｓで得られた結果を表３ｂで示す。

実施例５
侵襲アッセイ ＣｈｅｍｏＴｘシステム（登録商標）（ニューロプローブ社（Ｎｅｕｒｏ Ｐｒｏｂｅ Ｉｎｃ．）＃１０６−８、ガイサースバーグ）を９６ウェル・フォーマットの使い捨て化学走性／細胞移動チェンバとして使用した。 これは大きさ５．７ｍｍ直径／サイトのポアをトラックエッチングしたポリカーボネートの８μｍフィルタでおおわれていた。

１３．３μｌの０．３ｍｇ／ｍｌマトリゲル（マトリゲルは、エンゲルブレス−ホルム−スワーム（ＥＨＳ）マウス肉腫［細胞外基質蛋白質に富む腫瘍］から抽出した可溶化基底膜標本である。その主要構成成分はラミニンで、それに次ぐ構成成分はコラーゲンＩＶ、ヘパラン硫酸プロテオグリカン、エンタクチンおよびニドゲンである。それはＴＧＦ−α線維芽細胞増殖因子、組織プラスミノーゲン・アクチベータ、およびＥＨＳ腫瘍に自然に生ずるその他の増殖因子も含む）（ベクトン・ディッキンソン、ＢＤ＃３５６２３４）をダルベッコＰＢＳ（ギプコ＃１４０４０−０９１）に希釈したものを９６ウェルプレートのメンブレンフィルタ上の列Ｂ−Ｈに塗布し、列Ａには０．０５ＭＨＣｌ（シグマ＃９４５−５０）で希釈したコラーゲンＳタイプＩ（ロッシュ＃１０９８２９２９）１．２μｇ／サイトを塗布し、デシケータ中で２０℃で一晩インキュベートし、ゲル化させた。 ＨＴ１０８０細胞を、１０％ＦＣＳ（ギプコ＃１０２７０１０６）と共にグルタマックスＩ（８６２ｍｇ／ｌ（ギプコ＃３１９６６−０２１））を補充したＤＭＥＭ中で７０〜８０％融合するまで増殖させた。 それらの細胞を、ＤＭＥＭ／グルタマックスＩ／０．１％ＢＳＡ（シグマ＃Ａ−７０３０）で１：１００に希釈したビスベンズイミドＨ３３３４２（シグマ＃Ｂ−２２６１）でインサイチュウで３７℃、７．５％ＣＯ _２中で１５分間標識化した。 細胞をＤＭＥＭ／グルタマックスＩ／０．１％ＢＳＡで２回洗い、ＤＭＥＭ／グルタマックスＩ／０．１％ＢＳＡを３７℃、７．５％ＣＯ _２中で１５分間担持させ、回収した。 ＰＢＳ ｗ／ｏ Ｃａ ^＋＋ 、Ｍｇ ^＋＋ （ギプコ、１００１０−０１５）で２回洗った後、細胞を０．５ｍＭ ＥＤＴＡ（シグマ＃Ｅ８００８）で脱着し、ダルベッコＰＢＳ／０．１％ＢＳＡ／１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ（ギプコ＃１５６３０−０５６）で集め、ダルベッコＰＢＳ／０．１％ＢＳＡ／１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓで２回洗い、ダルベッコＰＢＳ／０．１％ＢＳＡ／１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓに懸濁し、ダルベッコＰＢＳ／０．１％ＢＳＡ／１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓで６．７×１０ ^６細胞／ｍｌに希釈した。 ６．７×１０ ^６細胞／ｍｌと侵襲性阻害の対照としての４０μｇ／ｍｌ ＨＴ１０８０特異的ｓｃＦｖ１と共に、およびＨＴ１０８０特異的ｓｃＦｖ（ｓｃＦｖ２−ｓｃＦｖ１０）と共に１：１で氷上で１時間インキュベートした。 ＤＭＥＭ／グルタマックスＩ／０．１％ＢＳＡで６．７×１０ ^５細胞／ｍｌに希釈した後、ＨＴ１０８０細胞およびＨＴ１０８０細胞／ｓｃＦｖ希釈物をピペットで三重に化学走性チェンバ（列Ｂ−Ｈ）上に３．４×１０ ^４細胞／ウェルの密度でとり、３７℃で７．５％ＣＯ _２中で６時間インキュベートした。 ５％ＦＣＳを含むＤＭＥＭ／グルタマックスＩを下部チェンバの化学誘因物質として使用した。 化学走化性チェンバのコラーゲンＳタイプＩで被覆した列Ａで１×１０ ^４から４×１０ ^４細胞／ウェルまでの標準曲線を作成した。 ＤＭＥＭ／グルタマックスＩ／０．１％ＢＳＡを下部チェンバ（細胞は移動しない）に使用した。 移動しなかった細胞を膜の頂部から剥離した後（列Ａの標準曲線を除く）、膜を通過して移動した細胞（標準曲線の場合は移動しない）の蛍光をフルオスタ・ギャラクシ（Ｆｌｕｏｒｏｓｔａｒ Ｇａｌａｘｙ）（ｂＭＧ）ミクロ・プレートリーダ上で、３７０／４６０ｎｍの励起／発光波長を使用して測定した。 我々の実験では４５０００の数値が１００％移動した細胞に相当した。 三重のサンプルの平均阻害結果を図２に示す。 各実験を３回繰り返し、実質的に同様な結果が得られた。 腫瘍細胞類の侵襲表現型を、それらの腫瘍細胞外基質（マトリゲル）を侵襲する相対的能力を上記のトランスウェル培養システムを使用して比較するというやり方で評価した。

実施例６．１
ＭＴＳ生育性アッセイ 生育可能細胞は、テトラゾリウム色素ＭＴＳ（ＭＴＳ、セルタイター・アケアス・ワン、プロメガ＃Ｇ４０００）のホルマザンへの変換を測定することによって検出した。 ＨＴ１０８０細胞およびＨＴ１０８０細胞／ｓｃＦｖ希釈物（侵襲性アッセイにおいて調製された希釈液から得た）をピペットで３．４×１０ ^４細胞／ウェルの密度で三重にとり、９６ウェルプレート（ブラック、超薄透明平底、スペシャル・オプティックス、コスター（Ｃｏｓｔａｒ）＃３６１５）に培養し、１０μｌＭＴＳを各ウェルに加え、３７℃、７．５％ＣＯ _２中で１時間インキュベートした。 フルオスタ・ギャラクシ（ｂＭＧ）ミクロ・プレートリーダで４９２ｎｍで吸光度を測定した。 試験した全てのｓｃＦｖで細胞の生育性に対する影響は見られなかった。

実施例６．２
増殖アッセイ ＳＷ−４８０およびＰＣ−３細胞をＬ−グルタミンおよび１０％ＦＣＳを含むＰＲＭＩに培養した（インビトロゲン＃２１８７５−０３４、カールスバド、カリホルニア）

ＳＷ−４８０およびＰＣ−３細胞を９６ウェルプレート（コーニング・コスタ＃３９０４、アクトン、マサチュセッツ）に、１００μｌ／ウェル量の培養培地に植え付けた。 細胞を３７℃、５％ＣＯ _２中で２４時間インキュベートした。 培地を吸引し、１５μｇ／ｍｌ抗体または５０ｍＭ ＮａＮ _３を加え、培養培地で希釈した。 対照細胞は培地だけでインキュベートした。 第一の添加の４８時間後に、抗体を同じ濃度で再度加えた。 ＭＴＳ吸光度を最初の処理の前、２４時間後、４８時間後および７２時間後に測定した。 このために、１０μｌセルタイター９６アクエアス・ワン溶液（プロメガ＃３５８１、マジソン、ウィスコンシン）を細胞懸濁液１００μｌに加え、混合物を３７℃、５％ＣＯ _２中で３時間インキュベートした。 吸光度をフルオスタ・プレート−リーダー（ＢＭＧラボ・テクノロジーズ、オフェンベルグ、ドイツ）で４９２ｎｍで測定した。 結果は図１２に示す。

実施例７
細胞−基質接着アッセイ ９６ウェルプレート（ＴＰＰ＃９２９６）（処理細胞培養物）に、ダルベッコＰＢＳ（ギプコ＃１４０４０−０９１）中コラーゲンＳタイプＩ１μｇ／ウェル（ロッシュ＃１０９８２９２９）を４℃で一晩塗布した。 ダルベッコＰＢＳで洗浄し、２％ＢＳＡ（シグマ＃Ａ−７０３０）／ダルベッコＰＢＳで３７℃で１時間ブロックし、ダルベッコＰＢＳで洗浄した後、ＨＴ１０８０細胞およびＨＴ１０８０細胞／ｓｃＦｖ希釈物（侵襲アッセイで調製した希釈物から得た）をピペットで３．４×１０ ^４細胞／ウェルの密度で三重にとり、３７℃、７．５％ＣＯ _２中で１時間インキュベートした。 ダルベッコＰＢＳによる２回の追加的洗浄工程後（この工程で非接着性細胞は洗い流される）、ダルベッコＰＢＳ／０．１％ＢＳＡ／１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓで希釈した１×１０ ^４ないし４×１０ ^４染色細胞／ウェル（侵襲アッセイで調製された希釈物から得た）から標準曲線を列Ａで作成した。 洗浄したウェルを５０μｌダルベッコＰＢＳで満たし、付着した細胞の吸光度および標準曲線の吸光度をフルオスタ・ギャラクシ（ｂＭＧ）ミクロ・プレートリーダ上で励起／発光波長３７０／４６０ｎｍを使用して測定した。 我々の実験では、２５０００の数値は１００％接着細胞に相当した。 接着アッセイも数種の基質蛋白質、例えばＣＩＶ（コラーゲンＩＶ）、ＦＮ（フィブロネクチン）およびＬＮ（ラミニン）などを用い、種々の細胞型、例えばＨＴ１０８０（ヒト線維肉腫）、ＰＣ−３（ヒト腺癌、前立腺）、ＨｅＬａ（ヒト子宮頸癌）およびＨＴ−２９（ヒト結腸癌）細胞などで行われた。 ｓｃＦｖの他に、実施例３．２により一本鎖からクローン化されたＩｇＧについても、腫瘍細胞の接着を阻害するそれらの能力を試験した。 結果は図８に示される。

実施例８
ＦＡＣＳ法による競合アッセイ ある種の阻害性ｓｃＦｖの、標的細胞上の一般的抗原エピトープをブロックする能力を試験するために、ＨＴ１０８０の単細胞懸濁液を０．５ｍＭ ＥＤＴＡ／ＰＢＳで採取した。 約１×１０ ^６細胞をセルウォッシュ（ＢＤ、＃３４９５２４）中で１０μｇ／ｍｌ ｓｃＦｖと共に４℃で１時間インキュベートした。 セルウォッシュで洗った後、１０μｇ／ｍｌ ＦＩＴＣ標識化ｓｃＦｖを加え、４℃で２０分間インキュベートした。 結合ＦＩＴＣ標識ｓｃＦｖのシグナルを、その他の結合物質のプレインキュベーションを伴う場合と伴わない場合とで、ベクトン・ディッキンソンＦＡＣＳｓｃａｎで分析した。

実施例９
免疫沈降法 ＨＴ１０８０およびＨｓ−２７細胞（１０ ^８ ）を、３ｍｌの５０ｍＭ トリス−ＨＣｌ、ｐＨ８．０、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、プロテアーゼインヒビタカクテル（１ｐｉｌｌ／５０ｍｌ緩衝液）（ベーリンガーマンハイム、カタログ番号１６９７４９８）を含む１％トリトンＸ−１００、および１００μＭペファブロック（Ｐｅｆａｂｌｏｃｋ）（ロス（Ｒｏｔｈ）、カタログ番号Ａ１５４．１）に溶解した。 溶解物をストレプタクチン・セファロース（ＩＢＡ、＃２−１２０１−０１０）と共に４℃で２時間プレ−インキュベートし、上澄液を免疫沈降反応に使用した。 ＨＴ１０８０特異的一本鎖Ｆｖ（５０μｇ／１ ｍｇ細胞抽出物）を澄明な溶解物に加え、サンプルを４℃で２時間撹拌し、７００×ｇでおだやかに遠心分離し、ストレプタクチンセファロースをペレット化し、そのペレットを１回の洗浄ごとに１ｍｌ容量のＰＢＳ＋０．１％ツイーン緩衝液で４回洗い、その後ＰＢＳ０．１％ツイーン２０中１０ｍＭ Ｄ−デスチオビオチン５０μｌでストレプタクチン・セファロース・ペレットから溶出することによって複合体を単離した。 この免疫複合体をＳＤＳ−ＰＡＧＥによって分離し、ＭＳ分析のために銀染色した。

ｓｃＦｖ２は、銀染色によってＳＤＳ−ＰＡＧＥ上で約１２０ｋＤａの分子量のバンドとして検出される蛋白質を引きつけた。 このバンドはＨｓ−２７細胞を使用した対照サンプルには見られなかった。

一本鎖Ｆｖ１、３、５、６、７、９、１５および１９は銀染色によってＳＤＳ−ＰＡＧＥ上で約１１０ｋＤａの分子量のバンドとして検出される蛋白質を引きつけた。 免疫沈降法はＨＴ１０８０および対照細胞としてのＨｓ−２７細胞からの細胞抽出物を使用して行われた。 この特殊なバンドは対照サンプルにも存在するのが認められたが、どの場合にも、はるかに弱い程度で存在し、この蛋白質がＨＴ１０８０細胞系に過剰発現するらしいことが示唆される。 ｓｃＦｖ３の場合には、このバンドはＨＴ１０８０細胞抽出物を使用した場合にだけ認められ、Ｈｓ−２７細胞では認められなかった。

ｓｃＦｖ８および１０は約１３０ｋＤａの分子量で銀染色によってＳＤＳ−ＰＡＧＥ上のバンドとして検出される蛋白質を引き付けた。 このバンドはＨｓ−２７細胞を使用した対照サンプルにはなかった

一本鎖Ｆｖ４、１１および１４は２つの蛋白質を沈降し、これらは、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ上に銀染色によってそれぞれ約１５０ｋＤａおよび約１３０ｋＤａの分子量に２つのバンドとして検出される。 大きいほうのバンドは対照サンプルにも存在するが、程度ははるかに弱く、小さい方のバンドは対照にはないかまたは極めて薄いものであった。 これは２つの蛋白質がＨＴ１０８０細胞系に過剰発現されているものと考えられる。

実施例１０
質量分析による蛋白質の同定 免疫沈降法とその後のＳＤＳ−ＰＡＧＥによって得られたゲルバンドを、３７℃で一晩、トリプシンによるゲル内消化にかけた。 ペプチドを５％蟻酸を用いて抽出し、生成したペプチド混合物をＺｉｐＴｉｐ μＣ１８（ミリポア）を使用して脱塩し、最初に２μｌの３０％ＡＣＮ／０．１％ＴＦＡで溶出し、それから２μｌの７０％ＡＣＮ／０．１％ＴＦＡで溶出した。 ２フラクションを一緒にし、得られたペプチド混合物の１マイクロリットルをα−シアノ−４−ヒドロキシ桂皮酸溶液（３ｍｇ／ｍｌ）と１：１の比で混合し、テフロン被覆ステンレス鋼標的上で共晶化し、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ機器で分析すると、質量範囲ｍ／ｚ８００〜３０００のペプチド・マス・フィンガープリント（ＰＭＦ）が得られた。 ＮＣＢＩおよびスイスプロット・データベースにおいてホモサピエンス種について登録されているものすべてを得られたＰＭＦを用いて検索した。 いずれの場合も、質量偏差１３ｐｐｍ未満で所定蛋白質に合うペプチドだけを考慮して同定した。

ｓｃＦｖ２を用いて得られたサイズ約１２０ｋＤａを有するバンドからは９ないし１０のペプチドピークが得られた。 それはエフリンＡ型（Ｅｐｈｒｉｎ ｔｙｐｅＡ）受容体２と一致し、蛋白質のカバー率は最大で１４％（１３４／９７６残基）であった。

サイズ約１１０ｋＤａを有するバンドについて異なるＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ実験を実施したところ、６ないし１５のペプチドが得られた。 それは細胞表面糖蛋白質ＭＵＣ１８前駆体に一致し、蛋白質カバー率は最大で２３％（１５１／６４６残基）であった。 アミノ酸配列にわずかな偏差が含まれるものの同じ蛋白質が上記データベースに複数登録され、利用することができる。 ＭＣＡＭが同定されたＭＡＬＤＩスペクトルを図１１ａに示す。 ペプチド・カバー率は図１１ｂに示す。

メラノーマ接着蛋白質の分子量はいずれも約７２ｋＤａであるが、その蛋白質はグリコシル化されていると考えられるので、約１１０ｋＤａのゲル上にバンドが見いだされても驚くにはあたらない。

ｓｃＦｖ１０を使用して得られる約１３０ｋＤａサイズを有するバンドからは、７個のペプチドが得られた。 これはインテグリン−アルファ３と一致し、蛋白質カバー率は６パーセント（７１／１０１９残基）であった。

この蛋白質の分子量は約１１９ｋＤであるが、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ上ではこれよりも高い分子量が観察された。 このことは、この蛋白質がグリコシル化されていたと考えれば、説明がつく。

約１５０ｋＤａのサイズを有するバンドｓｃＦｖ１−ｓｃＦｖ１４の使用によって得られる２つのバンドのうち高い方のバンドである約１５０ｋＤａのサイズを有するバンドからは１７ないし２１ペプチドが得られた。 これはインテグリン−アルファ２と一致し、蛋白質カバー率は最大で１９％（２２５／１１８１残基）であった。

２つのバンドのうち約１３０ｋＤａサイズを有する低い方のバンドからは９ないし１３のペプチドが得られた。 これはインテグリン−ベータ１と一致し、蛋白質カバー率は最大で１３％（１０６／７９８残基）であった。

インテグリン−アルファ２の分子量は約１２９ｋＤａで、インテグリン−ベータ１の分子量は約８８ｋＤａである。 ＳＤＳ−ＰＡＧＥ上ではこれらよりも高い見かけ上の分子量が観察されたが、このことは両蛋白質とも高度にグリコシル化されていると考えれば、説明できる。

実施例１１
エピトープ・マッピングの方法

実施例１１．１
“伝統的”エピトープ・マッピング 対象とする抗原用のｃＤＮＡの所定のフラグメントを組換え（融合）蛋白質として発現させ、ウェスタン・ブロットまたはＥＬＩＳＡのような種々のアッセイで試験される。

実施例１１．２
ファージ・ディスプレイ技術 ランダム・ペプチド・ファージ・ディスプレイ・ライブラリを用いるエピトープ・マッピング技術は、対象とする抗原用のｃＤＮＡの小さいランダムなフラグメント類を線維性ファージのファージ蛋白質ｐＩＩＩにクローン化し、それらをそのファージの表面に提示させるために開発された（ファック（Ｆａｃｋ）ら、（１９９７）、Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ ７巻、ｐ．４３−５２）。 エピトープを提示するファージ類は“バイオパニング”と呼ばれる工程において抗体によって捕獲することができる。 対応するファージ類に挿入された物をシーケンシングすると、エピトープに関し何らかの情報が得られる。 この操作法は主に立体エピトープ類を同定することができる。

実施例１１．３
ペプチドスキャン法 これはＦｍｏｃ化学を使用して活性化膜上での固定ペプチドを合成することに基づく方法である。 アミノ酸溶液を活性化膜に塗布し、膜上のアミノ基（この膜はＰＥＧで活性化されている）と、塗布したアミノ酸の活性化カルボキシ基との間にペプチド結合を形成させる。 各サイクル後に特殊な洗浄処理、アセチル化、脱保護および遊離アミノ基のモニタを実施する。 インビボ蛋白質合成とは異なり、膜結合オリゴペプチド鎖はＣ−末端からＮ−末端に段階的に合成される。 天然アミノ酸並びに修飾アミノ酸を含むオリゴペプチドは２０アミノ酸の長さまで合成できる。 合成後、その膜を平衡化し、非特異的結合部位をブロックする。 対象とする抗体と共にインキュベーションし、何回か洗浄した後、ＨＲＰ−コンジュゲート二次抗体をＥＣＬ−システムと組み合わせて検出を行う。 膜を剥がして、再生し、コンジュゲート抗体に応じて１０回まで再使用することができる。 対象とする抗原の完全なアミノ酸配列を理想的にカバーする小さいオーバーラッピング・オリゴペプチドを固体支持体上で合成する。 この方法により線状エピトープをアミノ酸レベルで同定することができる。 迅速な突然変異の研究も可能となる。

実施例１２
免疫組織化学による組織プロファイリング １１２個の腫瘍試料と２個の対照とを含む組織マイクロアレイを用い、ＭＣＡＭに対する２種類の抗体（ｓｃＦｖ７ ^＊およびｓｃＦｖ９ ^＊ −ＩｇＧ１型にクローン化されたｓｃＦｖ７およびｓｃＦｖ９）の各標的への結合について試験した。 それらの試料はヌードマウスで増殖させたヒト異種移植片から誘導され、ビオチン−ストレプトアビジン／ペルオキシダーゼ／ジアミノベンジシンで染色したパラフィン切片とした。 種々の腫瘍組織への結合結果を図１０に示す。

実施例１３
皮下で成長するヒト腫瘍異種移植片における化合物類の抗腫瘍効果肺腺癌（気管支腺癌）をキセノグラフとして使用した。
平均体重３５ｇの、処置開始時に約７週齢であるＮＭＲＩバックグラウンドのヌードマウスを使用した。 動物の健康を研究開始前に検査し、確実に健康な動物だけを試験に使用した。 マウスは個々の耳のタグ番号と、実験番号、ランダム化の日時、マウス系統、性別、個々のマウス番号、試験化合物、用量、スケジュールおよび投与経路を示す記録カードを付けた各ケージとによって識別した。 動物は２４±１℃および相対湿度６０±１０％に空気調節した室内でフィルターフードのついたマクロロン^Ｍ （Ｍａｃｒｏｌｏｎ ^Ｍ ）ＩＩＩ型ケージで飼育し、アルトロミン・エクストゥルデート（Ａｌｔｒｏｍｉｎ Ｅｘｔｒｕｄａｔ）１４３９ラット／マウス食、および１Ｎ ＨＣｌでｐＨ２に調節された０．９ｇ／ｌソルビン酸カリウムを含む脱塩滅菌水を与えた。 水の消費量を視覚により毎日モニターし、食物および水は適宜与えられた。 アルトロミン社（Ａｌｔｒｏｍｉｎ ＧｍｂＨ）製の動物の床敷ＳＡＷＩはジェル・ウェルク（Ｊｅｌｕ Ｗｅｒｋ）が分析、認定し、チャールス・リバーがオートクレーブ処理して流通させたもので、１週間に２回新しく代えた。 抗体類は１回分の量を多くして投与した（５０ｍｇ／ｋｇ、１週間に２回、４週間）。 一群には賦形剤だけを投与し、第二群はｓｃＦｖ７ ^＊ （ＩｇＧ１型にクローン化されたｓｃＦｖ７配列）を与えられ、第三群は陽性対照であり、ドセタキセル（２０ｍｇ／ｋｇ）を参照として投与され、第四群にはｓｃＦｖ７ ^＊とドセタキセル（５０／２０ｍｇ／ｋｇ）の組み合わせを投与した。

群の規模は６匹マウスであり、３２匹のマウスに合計６４の腫瘍断片を移植し（両側性移植）、同じ大きさの腫瘍をもつ２４匹のマウスを得た。 移植用の腫瘍断片はヌードマウスで連続継代培養した異種移植型から得た。 ドナーマウスから腫瘍を取り出した後、その腫瘍を断片（直径２〜３ｍｍ）に切り、マウスに皮下移植するまでＲＰＭＩ１６４０培養培地中に置いた（最長３０〜４５分間）。 マウスに気化イソフルレンを吸入させて麻酔し、背中の皮膚に２つの小さい切り目をつけ（左と右に）、２つの腫瘍断片を各マウスに移植した。 腫瘍が平均直径６ないし８ｍｍに成長させてから処理を開始した。 ランダム化するために、動物を腫瘍の直径によって３カテゴリに分けた：大；＞８ｍｍ；中：６ないし８ｍｍ；小；５ｍｍ。 ランダム化の結果、腫瘍カテゴリは各群に等しく割り当てられた。

腫瘍サイズおよびマウス体重を週に２回測定し、死亡数および臨床的兆候を毎日記録した。 個々の腫瘍の相対的大きさをｘ日の腫瘍量と０日の腫瘍量との比として計算した（Ｔｘ／Ｔ０、０日はランダム化の日であり、処置第１日目である）。 これに相応して個々のマウスの相対的体重を計算した。 経過時間に対する相対的腫瘍量および相対的体重のプロットを作成した。 抗腫瘍活性を評価するために、特定の日の抗体処理群および賦形剤処理群の平均相対的腫瘍量の比を計算した（Ｔ／Ｃ％値）。 抗体が活性であると評価するための最低条件を最低Ｔ／Ｃ％値＜５０％とした。 腫瘍担持マウスを１週に２回、４週間処置した。 研究の終わりに腫瘍を集め、その後の分析に使用した。 ７日目の種々の処理後の腫瘍サイズの比較を図１３に示す。 ＮＭＲＩｎｕ／ｎｕマウスの血中抗体レベルを評価するために、インビボ処置の研究中、異なる時間に６回、抗体処理群のマウスの舌下出血によって血液サンプル３００μｌを採取した。 曲線の谷は４日目、ちょうど第二回目の投与の直前と、２２日目、第７回目の投与の前であった。 血液サンプル（各回３血液サンプルを採取）を２６、２７、２８および２９日目に得た。 ４、２６および２８日目のサンプルはマウス１〜３から得た。 ２２、２７および２９日目のサンプルはマウス４〜６から得た。 血液サンプルの規模は最低１００μｌの血漿を調製するのに十分であった。 血漿サンプルはＥＤＴＡを使用して調製し、分析まで−８０℃で保存した。

ＨＴ１０８０着色細胞が８μｍフィルタを通過して侵襲したことを示す図である。 ３７℃で６時間インキュベーション後の蛍光を定量した。 示されるデータはｎ＝３ウェルの平均値±ＳＤである。

ＨＴ１０８０（ヒト線維肉腫）細胞で行われた侵襲アッセイの結果を表として示す。 被験ｓｃＦｖの各番号は図６に示すものと同一である。 記号“

^＊ ”は図６に示す番号と同じ各ｓｃＦｖを侵襲アッセイの実施前にＩｇＧ４型にクローン化したことを示すものである。 基質を通過した細胞の侵襲を測定し、侵襲阻害％として示す。

ＨＴ１０８０（ヒト線維肉腫）、ＫＨＯＳ−ＮＰ（ヒト骨肉腫）、ＭＣＦ−７（ヒト乳腺腫）、ＢＴ−４７４（ヒト乳癌、乳腺）、ＰＣ−３（ヒト前立腺癌）、Ｊｕｒｋａｔ（ヒトＴ細胞白血病）、ＨＬ−６０（ヒト急性骨髄性白血病）、ＨｅＬａ（ヒト子宮頸癌）、ＳＷ４８０（ヒト結腸癌）、ＬＳ１７４Ｔ（ヒト結腸癌）、ＨＴ−２９（ヒト結腸癌）など種々の細胞型で行ったＦＡＣＳ分析の結果を対照細胞（Ｈｓ２７（ヒト皮膚線維芽細胞））の結果と比較して表に示したものである。 これらの結果は平均蛍光強度によって示される；その際平均蛍光強度０〜１２は（＋）によって示され、平均蛍光強度１３〜４０は（＋＋）によって示され、４０より強い平均蛍光強度は（＋＋＋）によって示される。 表３ａは図６に示す番号と同じｓｃＦｖについて示す。 表３ｂはＩｇＧのＦＡＣＳ分析の結果を示す。 記号“

^＊ ”は図６に示す番号と同じ各ｓｃＦｖをＦＡＣＳ実験の前にＩｇＧ４型にクローン化したことを意味する。

免疫沈降実験の結果を示す図である。 免疫複合体をＳＤＳ−ＰＡＧＥによって分離し、銀染色した。

ｐＸＰ１４（配列番号３９）のベクタマップ並びにｓｃＦｖ発現ベクタの配列を示す図である。

同定された一本鎖：ｓｃＦｖ１からｓｃＦｖ１９までのペプチド配列を表１に示す。 ＣＤＲ３領域は記載されたペプチド配列中で下線を引いて示す。 相当する配列番号は横に記載する。

ポリペプチドｓｃＦｖ１からｓｃＦｖ１９までをコードするヌクレオチド配列を表２に示す。 相当する配列番号を記載する。

ＣＩ（コラーゲンＳタイプＩ）、ＣＩＶ（コラーゲンＩＶ）、ＦＮ（フィブロネクチン）およびＬＮ（ラミニン）などの種々の基質上で、ＨＴ１０８０（ヒト線維肉腫）、ＰＣ−３（ヒト腺癌、前立腺）、ＨｅＬａ（ヒト子宮頸癌）およびＨＴ−２９（ヒト結腸癌）などの種々の細胞型で行われた接着アッセイの結果（表として示されている）を示す図である。 被験ｓｃＦｖの各番号は図６に示すものと同一である。 記号“

^＊ ”は図６に示す番号と同じ各ｓｃＦｖを接着アッセイの実施前にＩｇＧ４型にクローン化したことを意味する。 接着は接着阻害％として測定され、示される。 阻害値“＋”は１〜１０％の阻害をあらわし、“＋＋”は＞１０〜４０％の阻害をあらわし、“＋＋＋”は＞４０〜１００％の阻害値をあらわす。 “ｎ．ｄ．”は確認されなかったことを示す。

ｓｃＦｖ発現ベクタｐＸＰ１０（配列番号４０）のベクタマップおよびｐＸＰ１０の配列を示す図である。

ＭＣＡＭ特異的抗体（ｓｃＦｖ７

^＊およびｓｃＦｖ９

^＊ ）（ｓｃＦｖ７およびｓｃＦｖ９はＩｇＧ１型にクローン化された）を使用した免疫組織化学上の結果を示す図である。

サイズ約１１０ｋＤａのバンドから得られるペプチド混合物のＭＡＬＤＩ−ＭＳスペクトル（ａ）を示す図である。 ２つのトリプシン自己消化ピーク（Ｔとして示される）を内部較正のために使用した。 星印のついた合計１５のピークは質量偏差１３ｐｐｍ未満で典型的ＭＣＡＭアミノ酸配列（スイスプロット（ＳｗｉｓｓＰｒｏｔ、Ｐ４３１２１））に一致した。 一致したペプチドはアミノ酸配列番号５８（ｂ）の２３％（１５１／６４６残基）をカバーする。

増殖アッセイの結果を、ＩｇＧ'ｓによるＳＷ−４８０およびＰＣ−３増殖の減少として示す図である。 （増殖アッセイの実施前にｓｃＦｖ７、ｓｃＦｖ９およびｓｃＦｖ１８をＩｇＧ４型にクローン化した）。 ＳＷ−４８０結腸癌細胞（図１２ｂ）およびＰＣ−３前立腺癌細胞（図１２ａ）の増殖を最初の抗体添加後の指示された時点でＭＴＳ細胞生育性アッセイを実施し測定した。 データは、３回の独立的実験からプールした、％対照培地の平均値として示される。 エラーバー：テューキーＨＳＤによる９５％信頼区間。

無胸腺マウスの皮下で成長させヒト腫瘍異種移植片における化合物類の抗腫瘍効果を表として示したものである。 肺腺癌（ＬＸＦＡ）を異種移植片として用いた。 表は化合物注射後０日目および７日目の腫瘍サイズを示す。 ｓｃＦｖ７

^＊ （ＩｇＧ１型にクローン化したｓｃＦｖ７）をドセタキセルと比較して使用した。 ｓｃＦｖ

^＊とドセタクセルとの組み合わせ処置の結果も示す。 ｓｃＦｖ７

^＊注射後７日目に腫瘍サイズは１２％減少している。