技术领域
[0001] 本
发明涉及一种血清中PCDH10的TRFIA法检测用试剂盒,涉及PCDH10蛋白C-端和N-端的特异性多肽
片段的两种特异
抗体的制备,并利用所制备的双抗体,采用时间分辨
荧光免疫法(TRFIA)检测血清样品中PCDH10方法。属于PCDH10蛋白的抗体制备和时间分辨荧光免疫(TRFIA)分析领域。
背景技术
[0002] PCDH10是一个新的
肿瘤抑制基因,PCDH10蛋白在血清中的显著降低对一些肿瘤2+
(如大肠癌等)有提示作用。PCDH10是属于Ca 依赖性
钙粘蛋白家族的一员,具有6个重复
串联的胞外区和1个独特的胞内区。浙江大学朱永良等人在对原代肿瘤干细胞基因表-/-
达谱时用病毒文库技术筛选时发现pcdh10 细胞易游出和穿过“Transwell”的半透膜,而+/+
pcdh10 的细胞
迁移性较弱。通过
生物信息学分析,进一步克隆了pcdh10的全长cDNA序列并构建了表达pcdh10的真核细胞表达载体,通过脂质体瞬时
转染k562细胞、SW480大肠癌细胞发现异位表达PCDH10抑制了这些细胞在体外的增殖,并增加了细胞的凋亡。进一步发现对这些细进行无血清饥饿和添加
化疗药物等处理后PCDH10表达
水平随时间和浓度的增加而增加,提示PCDH10参与了细胞凋亡,可能是一个肿瘤抑制基因。然对其参与细胞凋亡的分子机制尚不明了。
[0003] 浙江大学朱永良等人的发明
专利“针对PCDH10C-端蛋白片段分子的特异性抗体的制备方法”(专利号为ZL200810060201)中,利用了PCR技术从体外培养细胞中克隆了PCDH10蛋白的C-端DNA序列并转化入原核细胞中进行表达,获得了纯化的PCDH10C-端多肽,并免疫大白兔,收集并纯化大白兔的抗血清,纯化后获得了PCDH10蛋白C-端多肽的抗体。但尚未发现针对PCDH10蛋白N-端多肽的特异性抗体。所述针对PCDH10C端蛋白片段分子的特异性抗体的制备方法的具体步骤是:“1)采用聚合酶链式反应技术直接从体外培养细胞株中将PCDH10C 3’端
碱基序列克隆至原核细胞,构建PCDH10C端融合蛋白的原核细胞PCDH10C/pETl5b表达载体;2)将PCDH10C/pETl5b表达载体转化BL21 DE3pLysS大肠杆菌,建立PCDH10C端融合蛋白的原核细胞表达系统,用His金属螯和
树脂纯化PCDH10C端融合蛋白,用Thrombin酶
切除PCDH10C端融合蛋白N端的His-tag标签,得到PCDH10C端融合蛋白;3)用己切除标签的PCDH10C端融合蛋白作为
抗原免疫大白兔,产生抗PCDH10C端抗体,收集抗血清,用
硫酸铵沉淀、
透析、Protein A-Sepharose亲和柱纯化兔抗PCDH10C端抗体。”
[0004] 目前市面上尚未有商品试剂盒用于检测该蛋白,所以发明一种简单而高灵敏度的方法来测定血清中PCDH10蛋白含量以评价患癌症的几率,意义非常重大。
[0005] 时间分辨荧光免疫分析是自上个世纪70年代末80年代初,新发展起来的一项免疫分析方法,它克服了利用荧光素进行荧光免疫分析时背景干扰严重的影响。TRFIA原理是利用具有双功能基团结构的螯合剂,一般采用BHHCT(4,4′-二(1″,1″,1″,2″,2″,3″,3″-七氟-4″,6″-己二
酮-6″-酰基)-氯磺化邻三联苯),其一端与镧系元素结
3+
合,另一端与抗体(
蛋白质)分子中的自由
氨基结合,制成镧系元素标记的(一般用Eu 标
3+
记)抗体。它与待定抗原结合为免疫复合物。理想情况下,测定复合物中Eu 的荧光强度就能确定样品中抗原的量,但是实际上这种复合物种镧系元素的荧光强度非常弱,只有加入一种增强液,使镧系元素从复合物中解离下来,并与增强液中所含的β-
萘甲酰三氟丙酮(β-NAT)重新形成微胶囊,在紫外等光的激发下发射很强的荧光,增强效果上百万倍。
用时光分辨荧光仪测定荧光强度cps,即可确定样品抗原中的量。
[0006] 近年来以利用铕络合物为代表的时间分辨荧光免疫检测方法,因其操作方便、环保和高灵敏度的优点正逐渐替代传统的ELISA测定方法,用于临床上。游离的、形成了络合3+
物的铕离子(Eu )的放射波为615nm,不会受到激发
波长(340nm)或某种蛋白质造成的短
3+
寿命背景荧光(350nm~600nm)的影响,所以很适合。BHHCT-Eu 络合物作为标记化合物,可与蛋白质直接结合,通过时间分辨型荧光测定可以进行高灵敏度分析。BHHCT具有β-二
3+ 10 -1 3+
酮结构,与Eu 结合的稳定系数高达10 M 。文献报道,BHHCT-Eu 络合物已经用于检测人
血浆中肿瘤标志物甲胎蛋白和免疫球蛋白E(IgE)的含量。
[0007] 但是,还没有应用上述Eu3+络合物及PCDH10双抗体检测血清中PCDH10蛋白方法。
[0008] 如上所述,开发一种正确定量、操作简单、稳定而灵敏的检测血清样品中PCDH10蛋白的方法,将对临床诊断和科研研究起到极为重要的作用。
发明内容
[0009] 本发明的目的是提供一种血清中PCDH10的TRFIA法检测用试剂盒,同时提出PCDH10蛋白N-端肽链的制备及其特异性抗体的制备方法,并结合浙江大学PCDH10蛋白C-端肽链特异性抗体制备的方法,以利用这两种方法制备出来的抗体为材料,用时间分辨荧光免疫分析方法测定血清中PCDH10蛋白的含量。该血清中PCDH10的TRFIA法检测用试剂盒简便可行、灵敏度高。
[0010] 本发明的一种血清中PCDH10的TRFIA法检测用试剂盒,具有能与PCDH10C-端融3+
合蛋白结合并被Eu 络合物标记的第二抗体冻干品;该第二抗体冻干品是经1)以聚合酶链式反应将PCDH10C 3’端碱基序列克隆至原核细胞,构建PCDH10C端融合蛋白的原核细胞表达载体;2)将表达载体转化BL21DE3pLysS大肠杆菌,建立PCDH10C端融合蛋白的原核细胞表达系统,用His金属螯和树脂纯化PCDH10C端融合蛋白,用Thrombin酶切除PCDH10C端融合蛋白N端的His-tag标签,得到PCDH10C端融合蛋白;3)用己切除标签的PCDH10C端融合蛋白作为抗原免疫大白兔,产生抗PCDH10C端抗体,收集抗血清,用硫酸铵沉淀、透析、Protein A-Sepharose亲和柱纯化所得;还有包被有具有固相结合部分及能与PCDH10N-端融合蛋白结合的第一抗体的多孔型微量滴度板。
[0011] PCDH10蛋白检测试剂盒的具体制作方法包括如下步骤:
[0012] (一)PCDH10N-端片段蛋白质的制备及能与PCDH10N-端融合蛋白结合的第一抗体的制备。
[0013] a)采用聚合酶链式反应技术直接从体外培养细胞株中将PCDH10N 3’端碱基序列克隆至原核细胞,构建PCDH10N-端融合蛋白的原核细胞PCDH10N/PET32a表达载体。
[0014] 所述的采用聚合酶链式反应技术直接从体外培养细胞株中将PCDH10N3’端碱基序5 7
列克隆至原核细胞,构建PCDH10N-端融合蛋白的方法是:将表达PCDH10的1×10 ~10 人白血病K562细胞离心沉淀,加入0.5~1.5ml Trizol充分混匀,提取总RNA,再用逆转录酶转录RNA至cDNA;然后设计上游引物包含BamH I内切酶位点GGATCC和下游引物包含Hind Ⅲ内切酶位点AAGCTT,通过PCR的方法直接将PCDH10N-端DNA序列克隆至pET32aBamH I/Hind Ⅲ位点,经BamH I和Hind Ⅲ内切酶酶切鉴定合格后,进一步用DNA测序验证,合格即为PCDH10N/PET32a表达载体。
[0015] b)将PCDH10N/PET32a表达载体转化至BL21DE3pLysS大肠杆菌,建立PCDH10N-端融合蛋白的原核细胞表达系统,用His金属螯合树脂纯化PCDH10N-端融合蛋白,用Thrombin酶切除PCDH10N-端融合蛋白N-端的His-tag标签,得到PCDH10N-端融合蛋白。
[0016] 所述的将PCDH10N/PET32a表达载体转化至BL21DE3pLysS大肠杆菌,建立PCDH10N-端融合蛋白的原核细胞表达系统,用His金属螯合树脂纯化PCDH10N-端融合蛋白,用Thrombin酶切除PCDH10N-端融合蛋白N-端的His-tag标签包括如下步骤:
[0017] 1)取1~3μl鉴定合格的PCDH10N/PET32a重组质粒加至10~90μl感受态的BL21 DE3 pLysS大肠杆菌,
冰浴15~45min,42℃60s休克,加入50~350μlLB液30~44℃30~90min,涂布含50~150μg/ml的LB平板,37℃孵箱培养过夜,次日,用灭菌牙签挑取单个菌落于一管6~8ml新的LB液中,至37℃孵箱静置过夜,取OD为0.4~0.6的过夜菌液300~1000μl于一管6~8ml新的LB液中,30~44℃扩大培养2~8h,加入终浓度为1~7mM的IPTG诱导0.5~6h,离心收集细菌沉淀。
[0018] 2)将细菌沉淀以每克湿重细菌加入1~5ml pH6~8,含0.5~1.5%Trition,0.02~0.08M的
磷酸盐缓冲液,重悬细菌,冰浴下超声
粉碎细菌,高速冷冻离心区上清液,沉淀继续超声粉碎,高速冷冻离心,合并上清液,上His金属螯合树脂柱,用含5mM咪唑的pH6~8,0.02~0.08M的磷酸盐缓冲液充分洗柱,用5%的柳硫汞检测至无蛋白流出为止,改用含500mM咪唑,pH6~8,0.02~0.08M的磷酸盐缓冲液洗脱,收集流出的蛋白液,装入透析袋,2~8℃对pH6~8、0.005~0.015M的磷酸盐缓冲液透析除盐,每隔3~12h换液1次,共3~9次。在透析平衡结束后,用MW10000~30000的聚乙二醇浓缩至0.5~
1.5mg/ml,取5~10mg重组蛋白用Thrombin酶切除N-端的His-tag标签,同时通过加入Avidin-agarose的方法去除Thrombin蛋白,得到纯化的PCDH10N-端重组蛋白,该蛋白用SDS-PAGE
电泳时,5~20μg/lane应无杂蛋白区带发现。
[0019] c)用已切除标签的PCDH10N-端融合蛋白作为抗原免疫动物(这里采用大白兔),产生抗PCDH10N-端抗体,收集抗血清,用硫酸铵沉淀、透析、ProteinA-Sepharose亲和柱纯化兔抗PCDH10N-端抗体。
[0020] 所述的用已切除标签的PCDH10N-端融合蛋白作为抗原免疫动物(这里采用大白兔),产生抗PCDH10N-端抗体的包括如下步骤:
[0021] 1)分别取1mg的PCDH10N-端重组蛋白与完全福氏佐剂混匀,充分乳化,接种大白兔皮下3~20余点,每隔5~12天强化免疫1次,待第3~4周末,用0.5~1.5mg PCDH10N-端重组蛋白进行直接的兔
耳静脉内注射,5~7天后分离大白兔颈总动脉,剪短
放血至三
角烧瓶,2~8℃倾斜放置过夜,次日离心收集血清。
[0022] 2)将收集的抗血清,用硫酸铵沉淀、透析、ProteinA-Sepharose亲和柱纯化兔抗PCDH10N-端抗体的方法是:将收集的兔血清用2~6倍预冷的0.005~0.03M,pH 6~8PBS稀释,在不断搅拌的同时缓慢加入1~2倍体积的饱和(NH4)2SO4,2~8℃放置20~
30min,离心,去上清,沉淀用0.5~2倍原体积的PBS复溶后,再分别用50%和33.3%的饱和(NH4)2SO4重复沉淀各1次,最后蛋白沉淀用2~3ml PBS复溶后,装入透析袋,2~8℃对
0.005~0.03M,pH 6~8PBS透析除盐,每隔3~12h换液1次,加至预经0.01M,pH 6~
8PBS平衡的ProteinA-Sepharose柱,流速0.5ml/min,流尽后,用0.02~0.08M,pH 6~8的磷酸盐缓冲液充分洗至无蛋白流出为止,改用3M,pH 6~8硫氰酸钠洗脱结合的IgG,合并洗脱液,2~8℃对pH 6~8、0.005~0.015M的磷酸盐缓冲液透析除盐,每隔3~12h换液1次,共3~9次,用MW10000~30000的聚乙二醇浓缩至0.5~1.5mg/ml,分装,-20℃保存。
[0023] (二)PCDH10C-端片段蛋白质的制备及能与PCDH10C-端融合蛋白及Eu3+络合物结合的第二抗体的制备:
[0024] a)采用聚合酶链式反应技术直接从体外培养细胞株中将PCDH10C 3’端碱基序列克隆至原核细胞,构建PCDH10C-端融合蛋白的原核细胞PCDH10C/PET32a表达载体;
[0025] 所述的采用聚合酶链式反应技术直接从体外培养细胞株中将PCDH10C3’端碱基序5 7
列克隆至原核细胞,构建PCDH10C-端融合蛋白的方法是:将表达PCDH10的1 10 ~10 人白血病K562细胞离心沉淀,加入0.5~1.5mlTrizol充分混匀,提取总RNA,再用逆转录酶转录RNA至cDNA;然后设计上游引物包含NdeI内切酶位点CATATG和下游引物包含BamH I内切酶位点GGATCC,通过PCR的方法直接将PCDH10C-端DNA序列克隆至pET32a NdeI/BamH I位点,经Nde I和BamH I内切酶酶切鉴定合格后,进一步用DNA测序验证,合格即为PCDH10C/PET32a表达载体。
[0026] b)将PCDH10C/PET32a表达载体转化至BL21DE3pLysS大肠杆菌,建立PCDH10C-端融合蛋白的原核细胞表达系统,用His金属螯合树脂纯化PCDH10C-端融合蛋白,用Thrombin酶切除PCDH10C-端融合蛋白N-端的His-tag标签,得到PCDH10C-端融合蛋白。
[0027] 所述的将PCDH10C/PET32a表达载体转化至BL21DE3pLysS大肠杆菌,建立PCDH10C-端融合蛋白的原核细胞表达系统,用His金属螯合树脂纯化PCDH10C-端融合蛋白,用Thrombin酶切除PCDH10C-端融合蛋白N-端的His-tag标签包括如下步骤:
[0028] 1)取1~3μl鉴定合格的PCDH10C/PET32a重组质粒加至10~90μl感受态的BL21DE3pLysS大肠杆菌,冰浴15~45min,42℃60s休克,加入50~350μlLB液30~44℃30~90min,涂布含50~150μg/ml的LB平板,37℃孵箱培养过夜,次日,用灭菌牙签挑取单个菌落于一管6~8ml新的LB液中,至37℃孵箱静置过夜,取OD为0.4~0.6的过夜菌液300~1000μl于一管6~8ml新的LB液中,30~44℃扩大培养2~8h,加入终浓度为1~7mM的IPTG诱导0.5~6h,离心收集细菌沉淀。
[0029] 2)将细菌沉淀以每克湿重细菌加入1~5ml pH6~8,含0.5~1.5%Trition,0.02~0.08M的磷酸盐缓冲液,重悬细菌,冰浴下超声粉碎细菌,高速冷冻离心区上清液,沉淀继续超声粉碎,高速冷冻离心,合并上清液,上His金属螯合树脂柱,用含5mM咪唑的pH6~8,0.02~0.08M的磷酸盐缓冲液充分洗柱,用5%的柳硫汞检测至无蛋白流出为止,改用含500mM咪唑,pH6~8,0.02~0.08M的磷酸盐缓冲液洗脱,收集流出的蛋白液,装入透析袋,2~8℃对pH6~8、0.005~0.015M的磷酸盐缓冲液透析除盐,每隔3~12h换液1次,共3~9次。在透析平衡结束后,用MW10000~30000的聚乙二醇浓缩至0.5~
1.5mg/ml,取5~10mg重组蛋白用Thrombin酶切除N-端的His-tag标签,同时通过加入Avidin-agarose的方法去除Thrombin蛋白,得到纯化的PCDH10C-端重组蛋白,该蛋白用SDS-PAGE电泳时,5~20μg/lane应无杂蛋白区带发现。
[0030] c)用已切除标签的PCDH10C-端融合蛋白作为抗原免疫动物(这里采用大白兔),产生抗PCDH10C-端抗体,收集抗血清,用硫酸铵沉淀、透析、ProteinA-Sepharose亲和柱纯化兔抗PCDH10C-端抗体。
[0031] 所述的用已切除标签的PCDH10C-端融合蛋白作为抗原免疫动物(这里采用大白兔),产生兔抗PCDH10C-端抗体的包括如下步骤:
[0032] 1)分别取1mg的PCDH10C-端重组蛋白与完全福氏佐剂混匀,充分乳化,接种大白兔皮下3~20余点,每隔5~12天强化免疫1次,待第3~4周末,用0.5~1.5mg PCDH10C-端重组蛋白进行直接的兔耳静脉内注射,5~7天后分离大白兔颈总动脉,剪短放血至三角烧瓶,2~8℃倾斜放置过夜,次日离心收集血清。
[0033] 2)将收集的抗血清,用硫酸铵沉淀、透析、ProteinA-Sepharose亲和柱纯化兔抗PCDH10C-端抗体的方法是:将收集的兔血清用2~6倍预冷的0.005~0.03M,pH 6~8PBS稀释,在不断搅拌的同时缓慢加入1~2倍体积的饱和(NH4)2SO4,2~8℃放置20~
30min,离心,去上清,沉淀用0.5~2倍原体积的PBS复溶后,再分别用50%和33.3%的饱和(NH4)2SO4重复沉淀各1次,最后蛋白沉淀用2~3ml PBS复溶后,装入透析袋,2~8℃对0.005~0.03M,pH6~8PBS透析除盐,每隔3~12h换液1次,加至预经0.01M,pH 6~
8PBS平衡的ProteinA-Sepharose柱,流速0.5ml/min,流尽后,用0.02~0.08M,pH 6~8的磷酸盐缓冲液充分洗至无蛋白流出为止,改用3M,pH 6~8硫氰酸钠洗脱结合的IgG,合并洗脱液,2~8℃对pH 6~8、0.005~0.015M的磷酸盐缓冲液透析除盐,每隔3~12h换液1次,共3~9次,用MW10000~30000的聚乙二醇浓缩至0.5~1.5mg/ml,分装,-20℃保存。
[0034] d)将兔抗PCDH10C-端抗体与无水DTPA一步交联,过SephadexG-75凝胶柱层析把3+
游离的铕离子(Eu )去掉。
[0035] (三)具有固相结合部分和能与PCDH10N-端融合蛋白结合的第一抗体的固相包埋。
[0036] 作为“固相”可应用任意形状和材质的固体物质,只要能进行抗体的结合且不妨碍上述复合物形成以及后述的荧光测定即可。不管何种载体,在使用前均可进行筛选:用等量抗原包被,在同一实验条件下进行反应,观察其显色反应是否均一性,据此判明其
吸附性能是否良好。本发明中应用的为Corning公司的多孔型微量滴度板。
[0037] “第一抗体”是以与上述固相结合的状态存在,且通过抗原-抗体反应与所期望的PCDH10蛋白结合的抗体。
[0038] 把第一抗体包被于固相载体上的步骤:用0.05M,pH9.6
碳酸盐包被缓冲液将第一抗体稀释至蛋白质含量为1~10μg/ml。在每个聚苯乙烯板的反应孔中加0.1ml,4℃过夜。次日,弃去孔内溶液,用洗涤缓冲液洗3次,每次3分钟。-20℃保存,直到需要进行测定之前。
[0039] (四)加入待测样品和标记Eu3+络合物的第二抗体:
[0040] a)加入血清样本100μl,37℃,孵育1~2h,洗涤(洗涤液为Tris-Hcl,必要时可添加适量的具有蛋白质促溶能
力的非离子
表面活性剂,例如Tween,浓度代表性的为约0.005~约0.2%,优选0.01~约0.1%)。(同时做空白孔,阴性对照孔及阳性对照孔)。
[0041] b)加入Eu3+标记的第二抗体:加入用BSA适当稀释的第二抗体100μl。37℃,孵育2h,充分洗涤。这里加入浓度约为0.5%左右的优选
牛血清
白蛋白(BSA),目的是消除实验验中非特异性反应,提高灵敏度。
[0042] 此步骤中,存在于血清样品中的所期望的PCDH10蛋白或作为标准对照的PCDH10蛋白,它通过与第一抗体结合而固定到固相上。PCDH10蛋白不必以游离状态与第一抗体接3+
触,它可与标记Eu 络合物的第二抗体结合后再与第一抗体结合。这样本发明中样品和标
3+
记Eu 络合物的第二抗体的加入次序不分先后。
[0043] (五)增强液的加入以及时间分辨荧光仪(TRFIA)结果测定。
[0044] a)加增强液:100μl。增强液由伞酮、popop即1,4-双(5-苯基-2-噁唑基)苯、甲醇组成,其目的是增强荧光强度,提高检测灵敏度。
[0045] 结果测定:测定上述步骤得到的含有镧系络合物的复合物装置是由Wellac公司提供的的时间分辨型荧光检测仪。测定条件是,代表性的是延迟时间约为0.2~约0.3毫秒(ms),窗口时间为约0.2~约0.6ms,闪烁速度为约0.5~约1.5ms,激发波长为337.1nm(氮激光的波长),测定波长为615nm。测定对照组合样品组的数据,由标准曲线即可得到样品中PCDH10蛋白的含量。
具体实施方式
[0046] 以下对本发明的具体实施进行更详细的说明。
[0047] 本发明试剂盒是基于时间分辨荧光双抗体免疫检测(TRFIA)方法提出的。“时间分辨荧光免疫检测”是应用如本发明镧系金属络和物的能发射长寿命荧光的荧光化合物,通过免疫学反应标记测定对象物,在较短寿命的背景荧光消失后,对来自标记物的荧光
信号进行时间分辨型测定的测定方法。
[0048] 本发明试剂盒用来测血清PCDH10蛋白具有高灵敏度、高准确性且操作简单的优点。
[0049] 本发明试剂盒的应用,为了选择性捕捉、标记血清样品中所期望的PCDH10蛋白,在固相上形成含该蛋白的复合物。具体而言,含有该PCDH10蛋白的复合物是由以下成分在适宜的固相上形成的:
[0050] (a)具有固相结合部分和能与PCDH10N-端融合蛋白结合的第一抗体;
[0051] (b)PCDH10蛋白;
[0052] (c)具有能与PCDH10C-端融合蛋白和Eu3+络合物结合的第二抗体。
[0053] 据此,本发明试剂盒内包含PCDH10N-端融合蛋白、能与PCDH10N-端融合蛋白结合3+
的第一抗体和PCDH10C-端融合蛋白、能与PCDH10C-端融合蛋白和Eu 络合物结合的第二抗体。
[0054] 以下,对各成分进行说明。
[0055] 1、将能与固相和PCDH10N-端融合蛋白结合的第一抗体包被于固相上。作为“固相”可应用任意形状和材质的固体物质,只要能进行抗体的结合且不妨碍上述复合物形成以及后述的荧光测定即可。不管何种载体,在使用前均可进行筛选:用等量抗原包被,在同一实验条件下进行反应,观察其显色反应是否均一性,据此判明其吸附性能是否良好。本发明中应用的为Corning公司的多孔型微量滴度板。
[0056] 第一抗体是以与上述固相结合的状态存在,且通过抗原-抗体反应与所期望的PCDH10蛋白结合的抗体。
[0057] 第一抗体的制备步骤如下:
[0058] 1)采用聚合酶链式反应技术直接从体外培养细胞株中将PCDH10N 3’端碱基序列克隆至原核细胞,构建PCDH10N-端融合蛋白的原核细胞PCDH10N/PET32a表达载体;
[0059] 2)将PCDH10N/PET32a表达载体转化至BL21DE3pLysS大肠杆菌,建立PCDH10N-端融合蛋白的原核细胞表达系统,用His金属螯合树脂纯化PCDH10N-端融合蛋白,用Thrombin酶切除PCDH10N-端融合蛋白N-端的His-tag标签,得到PCDH10N-端融合蛋白;
[0060] 3)用已切除标签的PCDH10N-端融合蛋白作为抗原免疫大白兔,产生抗PCDH10N-端抗体,收集抗血清,用硫酸铵沉淀、透析、ProteinA-Sepharose亲和柱纯化兔抗PCDH10N-端抗体。
[0061] 2、存在于血清样品中的所期望的PCDH10蛋白,代表性的是通过与第一抗体结合而固定到固相上。PCDH10蛋白不必以游离状态与第一抗体
接触,它可与后述的第二抗体结合后与第一抗体结合。这样本发明中复合物的形成不限于各成分结合的次序。
[0062] 3、具有能与PCDH10C-端融合蛋白和Eu3+络合物结合的第二抗体的制备步骤如下:
[0063] 1)采用聚合酶链式反应技术直接从体外培养细胞株中将PCDH10C 3’端碱基序列克隆至原核细胞,构建PCDH10C-端融合蛋白的原核细胞PCDH10C/PET32a表达载体;
[0064] 2)将PCDH10C/PET32a表达载体转化至BL21DE3pLysS大肠杆菌,建立PCDH10C-端融合蛋白的原核细胞表达系统,用His金属螯合树脂纯化PCDH10C-端融合蛋白,用Thrombin酶切除PCDH10C-端融合蛋白N-端的His-tag标签,得到PCDH10C-端融合蛋白;
[0065] 3)用已切除标签的PCDH10C-端融合蛋白作为抗原免疫动物(这里采用大白兔),产生抗PCDH10C-端抗体,收集抗血清,用硫酸铵沉淀、透析、ProteinA-Sepharose亲和柱纯化兔抗PCDH10C-端抗体。
[0066] 4)将兔抗PCDH10C-端抗体与无水DTPA一步交联,过SephadexG-75凝胶柱层析把3+
游离的铕离子(Eu )去掉。
[0067] 第二抗体中还需加入优选牛血清白蛋白(BSA),其浓度代表性的为约0.05~约0.5%左右,优选约0.1~约0.3%。其目的是来消除试验中非特异性反应,从而提高其灵敏度。
[0068] 第二抗体工作浓度的选择:首先采取预实验进行初步效价的滴定,然后再固定其它条件或采取“方阵法”(包被物、待检样品的参考品及铕标记抗体分别为不同的稀释度)在正式实验系统里准确地滴定其工作浓度。
[0069] 本发明方法中第一抗体包埋和样品检测的步骤可以概括如下:
[0070] 1)把第一抗体包被于固相载体上:用0.05M,pH9.6碳酸盐包被缓冲液将第一抗体稀释至蛋白质含量为1~10μg/ml。在每个聚苯乙烯板的反应孔中加0.1ml,4℃过夜。次日,弃去孔内溶液,用洗涤缓冲液洗3次,每次3分钟。-20℃保存,直到需要进行测定之前。
[0071] 2)加样:加入血清样本100μl,37℃,孵育1~2h,洗涤(洗涤液为Tris-Hcl,必要时可添加适量的具有蛋白质促溶能力的非离子表面活性剂,例如Tween,浓度代表性的为约0.005~约0.2%,优选0.01~约0.1%)。(同时做空白孔,阴性对照孔及阳性对照孔)。
[0072] 3)加入第二抗体:加入用BSA适当稀释的第二抗体100μl。37℃,孵育2h,充分洗涤。
[0073] 4)加增强液:100μl。增强液由伞酮、popop、甲醇组成,其目的是增强荧光强度,提高检测灵敏度。
[0074] 5)结果测定:测定上述步骤得到的含有镧系络合物的复合物装置是由Well ac公司提供的的时间分辨型荧光检测仪。测定条件是,代表性的是延迟时间约为0.2~约0.3毫秒(ms),窗口时间为约0.2~约0.6ms,闪烁速度为约0.5~约1.5ms,激发波长为
337.1nm(氮激光的波长),测定波长为615nm。时间分辨荧光免疫检测(TRFIA)方法,是以免疫学反应为
基础,将抗原、抗体的特异性反应与荧光物质检测的敏感性和直观性结合起来的一种免疫分析技术。此发明中时间分辨荧光
免疫测定是用镧系
金属离子络合物(如Eu3+络合物)标记抗体,检测样品中相应的PCDH10抗原。此络合物具有较长
荧光寿命,利用时间分辨荧光分析仪延长测量时间,可排除标本中非特异性荧光的干扰,所得信号完全是镧系金属离子络合物发射的特异荧光。另一特点是激发光与荧光的波长差别显著,其波长转变达270nm,可有效排除激发光的干扰,测得的荧光为镧系金属离子络合物发出的特异性荧
光信号。所测得的荧光信号强度与待测样品含量成正比。对比标准样品曲线和被测样品数据即可获得血清中PCDH10蛋白的数值。
[0075]
实施例1:具有固相结合部分和能与PCDH10N-端融合蛋白结合的第一抗体制备[0076] 1、采用聚合酶链式反应技术直接从体外培养细胞株中将PCDH10N 3’端碱基序列5 7
克隆至原核细胞,构建PCDH10N-端融合蛋白的方法是:将表达PCDH10的1×10 ~10 人白血病K562细胞离心沉淀,加入0.5~1.5mlTrizol充分混匀,提取总RNA,再用逆转录酶转录RNA至cDNA;然后设计上游引物包含BamH I内切酶位点GGATCC和下游引物包含Hind Ⅲ内切酶位点AAGCTT,通过PCR的方法直接将PCDH10N-端DNA序列克隆至pET32aBamH I/Hind III位点,经BamH I和Hind III内切酶酶切鉴定合格后,进一步用DNA测序验证,合格即为PCDH10N/PET32a表达载体。
[0077] 2、将PCDH10N/PET32a表达载体转化至BL21DE3pLysS大肠杆菌,建立PCDH10N-端融合蛋白的原核细胞表达系统,用His金属螯合树脂纯化PCDH10N-端融合蛋白,用Thrombin酶切除PCDH10N-端融合蛋白N-端的His-tag标签包括如下步骤:
[0078] 1)取1~3μl鉴定合格的PCDH10N/PET32a重组质粒加至10~90μl感受态的BL21DE3pLysS大肠杆菌,冰浴15~45min,42℃60s休克,加入50~350μlLB液30~44℃30~90min,涂布含50~150μg/ml的LB平板,37℃孵箱培养过夜,次日,用灭菌牙签挑取单个菌落于一管6~8ml新的LB液中,至37℃孵箱静置过夜,取OD为0.4~0.6的过夜菌液300~1000μl于一管6~8ml新的LB液中,30~44℃扩大培养2~8h,加入终浓度为1~7mM的IPTG诱导0.5~6h,离心收集细菌沉淀。
[0079] 2)将细菌沉淀以每克湿重细菌加入1~5ml pH6~8,含0.5~1.5%Trition,0.02~0.08M的磷酸盐缓冲液,重悬细菌,冰浴下超声粉碎细菌,高速冷冻离心区上清液,沉淀继续超声粉碎,高速冷冻离心,合并上清液,上His金属螯合树脂柱,用含5mM咪唑的pH6~8,0.02~0.08M的磷酸盐缓冲液充分洗柱,用5%的柳硫汞检测至无蛋白流出为止,改用含500mM咪唑,pH6~8,0.02~0.08M的磷酸盐缓冲液洗脱,收集流出的蛋白液,装入透析袋,2~8℃对pH6~8、0.005~0.015M的磷酸盐缓冲液透析除盐,每隔3~12h换液1次,共3~9次。在透析平衡结束后,用MW10000~30000的聚乙二醇浓缩至0.5~
1.5mg/ml,取5~10mg重组蛋白用Thrombin酶切除N-端的His-tag标签,同时通过加入Avidin-agarose的方法去除Thrombin蛋白,得到纯化的PCDH10N-端重组蛋白,该蛋白用SDS-PAGE电泳时,5~20μg/lane应无杂蛋白区带发现。
[0080] 3、用已切除标签的PCDH10N-端融合蛋白作为抗原免疫动物(这里采用大白兔),产生抗PCDH10N-端抗体的包括如下步骤:
[0081] 1)分别取1mg的PCDH10N-端重组蛋白与完全福氏佐剂混匀,充分乳化,接种大白兔皮下3~20余点,每隔5~12天强化免疫1次,待第3~4周末,用0.5~1.5mg PCDH10N-端重组蛋白进行直接的兔耳静脉内注射,5~7天后分离大白兔颈总动脉,剪短放血至三角烧瓶,2~8℃倾斜放置过夜,次日离心收集血清。
[0082] 2)将收集的抗血清,用硫酸铵沉淀、透析、ProteinA-Sepharose亲和柱纯化兔抗PCDH10N-端抗体的方法是:将收集的兔血清用2~6倍预冷的0.005~0.03M,pH 6~8PBS稀释,在不断搅拌的同时缓慢加入1~2倍体积的饱和(NH4)2SO4,2~8℃放置20~
30min,离心,去上清,沉淀用0.5~2倍原体积的PBS复溶后,再分别用50%和33.3%的饱和(NH4)2SO4重复沉淀各1次,最后蛋白沉淀用2~3ml PBS复溶后,装入透析袋,2~8℃对0.005~0.03M,pH6~8PBS透析除盐,每隔3~12h换液1次,加至预经0.01M,pH 6~
8PBS平衡的ProteinA-Sepharose柱,流速0.5ml/min,流尽后,用0.02~0.08M,pH 6~8的磷酸盐缓冲液充分洗至无蛋白流出为止,改用3M,pH 6~8硫氰酸钠洗脱结合的IgG,合并洗脱液,2~8℃对pH 6~8、0.005~0.015M的磷酸盐缓冲液透析除盐,每隔3~12h换液1次,共3~9次,用MW10000~30000的聚乙二醇浓缩至0.5~1.5mg/ml,分装,-20℃保存。
[0083] 实施例2:具有能与PCDH10C-端融合蛋白和BHHCT-Eu3+络合物结合的第二抗体制备
[0084] 1、采用聚合酶链式反应技术直接从体外培养细胞株中将PCDH10C 3’端碱基序列5 7
克隆至原核细胞,构建PCDH10C-端融合蛋白的方法是:将表达PCDH10的1×10 ~10 人白血病K562细胞离心沉淀,加入0.5~1.5ml Trizol充分混匀,提取总RNA,再用逆转录酶转录RNA至cDNA;然后设计上游引物包含NdeI内切酶位点CATATG和下游引物包含BamH I内切酶位点GGATCC,通过PCR的方法直接将PCDH10C-端DNA序列克隆至pET32a Nde I/BamHI位点,经Nde I和BamH I内切酶酶切鉴定合格后,进一步用DNA测序验证,合格即为PCDH10C/PET32a表达载体。
[0085] 2、将PCDH10C/PET32a表达载体转化至BL21DE3pLysS大肠杆菌,建立PCDH10C-端融合蛋白的原核细胞表达系统,用His金属螯合树脂纯化PCDH10C-端融合蛋白,用Thrombin酶切除PCDH10C-端融合蛋白N-端的His-tag标签包括如下步骤:
[0086] 1)取1~3μl鉴定合格的PCDH10C/PET32a重组质粒加至10~90μl感受态的BL21DE3pLysS大肠杆菌,冰浴15~45min,42℃60s休克,加入50~350μlLB液30~44℃30~90min,涂布含50~150μg/ml的LB平板,37℃孵箱培养过夜,次日,用灭菌牙签挑取单个菌落于一管6~8ml新的LB液中,至37℃孵箱静置过夜,取OD为0.4~0.6的过夜菌液300~1000μl于一管6~8ml新的LB液中,30~44℃扩大培养2~8h,加入终浓度为1~7mM的IPTG诱导0.5~6h,离心收集细菌沉淀。
[0087] 2)将细菌沉淀以每克湿重细菌加入1~5ml pH6~8,含0.5~1.5%Trition,0.02~0.08M的磷酸盐缓冲液,重悬细菌,冰浴下超声粉碎细菌,高速冷冻离心区上清液,沉淀继续超声粉碎,高速冷冻离心,合并上清液,上His金属螯合树脂柱,用含5mM咪唑的pH6~8,0.02~0.08M的磷酸盐缓冲液充分洗柱,用5%的柳硫汞检测至无蛋白流出为止,改用含500mM咪唑,pH6~8,0.02~0.08M的磷酸盐缓冲液洗脱,收集流出的蛋白液,装入透析袋,2~8℃对pH6~8、0.005~0.015M的磷酸盐缓冲液透析除盐,每隔3~12h换液1次,共3~9次。在透析平衡结束后,用MW10000~30000的聚乙二醇浓缩至0.5~
1.5mg/ml,取5~10mg重组蛋白用Thrombin酶切除N-端的His-tag标签,同时通过加入Avidin-agarose的方法去除Thrombin蛋白,得到纯化的PCDH10C-端重组蛋白,该蛋白用SDS-PAGE电泳时,5~20μg/lane应无杂蛋白区带发现。
[0088] 3、用已切除标签的PCDH10C-端融合蛋白作为抗原免疫动物(这里采用大白兔),产生抗PCDH10C-端抗体的包括如下步骤:
[0089] 1)分别取1mg的PCDH10C-端重组蛋白与完全福氏佐剂混匀,充分乳化,接种大白兔皮下3~20余点,每隔5~12天强化免疫1次,待第3~4周末,用0.5~1.5mg PCDH10C-端重组蛋白进行直接的兔耳静脉内注射,5~7天后分离大白兔颈总动脉,剪短放血至三角烧瓶,2~8℃倾斜放置过夜,次日离心收集血清。
[0090] 2)将收集的抗血清,用硫酸铵沉淀、透析、ProteinA-Sepharose亲和柱纯化兔抗PCDH10C-端抗体的方法是:将收集的兔血清用2~6倍预冷的0.005~0.03M,pH 6~8PBS稀释,在不断搅拌的同时缓慢加入1~2倍体积的饱和(NH4)2SO4,2~8℃放置20~
30min,离心,去上清,沉淀用0.5~2倍原体积的PBS复溶后,再分别用50%和33.3%的饱和(NH4)2SO4重复沉淀各1次,最后蛋白沉淀用2~3ml PBS复溶后,装入透析袋,2~8℃对0.005~0.03M,pH6~8PBS透析除盐,每隔3~12h换液1次,加至预经0.01M,pH 6~
8PBS平衡的ProteinA-Sepharose柱,流速0.5ml/min,流尽后,用0.02~0.08M,pH 6~8的磷酸盐缓冲液充分洗至无蛋白流出为止,改用3M,pH 6~8硫氰酸钠洗脱结合的IgG,合并洗脱液,2~8℃对pH 6~8、0.005~0.015M的磷酸盐缓冲液透析除盐,每隔3~12h换液1次,共3~9次,用MW10000~30000的聚乙二醇浓缩至0.5~1.5mg/ml,分装,-20℃保存。
[0091] 实施例3:把第一抗体包被于固相载体上
[0092] 用0.05M,pH9.6碳酸盐包被缓冲液将第一抗体稀释至蛋白质含量为1~10μg/ml。在每个聚苯乙烯板的反应孔中加0.1ml,4℃过夜。次日,弃去孔内溶液,用洗涤缓冲液洗3次,每次3分钟。-20℃保存,直到需要进行测定之前。
[0093] 实施例4:标准品的TRFIA
[0094] 在已包被第一抗体的96孔微量滴度板中加入含PCDH10蛋白标准溶液(100μl),3+
37℃孵育2h,用洗涤液洗涤3次;加入用BHHCT-Eu 标记的第二抗体100μl,37℃孵育2h,用洗涤液充分洗涤;加增强液100μl;应用Well ac公司的1420型多标记计数仪对该板进行固相荧光测定。
[0095] 实施例5:血清样品的制备
[0096] 用BD公司一次性静脉
真空采血管(不含抗凝剂管:红色盖或黄色盖)
抽取血液,