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肾脏足细胞特异敲除lncRNA DLX6-os1转基因小鼠的培育方法

阅读:221发布:2020-11-11

专利汇可以提供肾脏足细胞特异敲除lncRNA DLX6-os1转基因小鼠的培育方法专利检索,专利查询,专利分析的服务。并且本 发明 涉及肾脏足细胞特异敲除lncRNA DLX6-os1转基因小鼠的培育方法,可有效解决在不同肾脏 疾病 中研究足细胞损伤的作用机制的问题,其解决的技术方案是,通过基因工程技术对前期建立的携带FLOX-DLX6-os1转基因小鼠与另一种携带足细胞特异的NPHS2-Cre基因的转基因小鼠进行多代的繁殖杂交,实现肾脏足细胞特异敲除lncRNA DLX6-os1转基因小鼠的培育,本发明为明确lncRNA DLX6-os1在足细胞损伤中的作用提供了非常好的动物模型,有效解决在不同肾脏疾病中研究足细胞损伤的作用机制的问题,是转基因小鼠的培育方法上的创新。,下面是肾脏足细胞特异敲除lncRNA DLX6-os1转基因小鼠的培育方法专利的具体信息内容。

1.一种肾脏足细胞特异敲除lncRNA DLX6-os1转基因小鼠的培育方法,其特征在于,通过基因工程技术对前期建立的携带FLOX-DLX6-os1转基因小鼠与另一种携带足细胞特异的NPHS2- Cre基因的转基因小鼠进行多代的繁殖杂交,具体是:
1)基因动物打靶培育F0代:将Southern blot验证基因为阳性的ES细胞用于基因打靶,即将基因敲除质粒载体导入ES细胞中,通过显微注射到囊胚中,再移植到代孕母鼠的子宫内发育下一代,获得携带FLOX-DLX6-os1的首建鼠F0代;
2)F1代杂合子小鼠繁殖:利用携带FLOX-DLX6-os1的首建鼠与野生型小鼠交配,得到新生小鼠,剪鼠尾进行PCR作为基因鉴定,确定具有flox/+基因型的小鼠作为F1代杂合子;
3)F2代组织特异性KO杂合子小鼠繁殖:将F1代杂合子小鼠与带有NPHS2-Cre 基因型的小鼠杂交,得到新生小鼠,剪鼠尾进行PCR作为基因鉴定,确定具有flox/+,NPHS2-Cre基因型的小鼠作为F2代组织特异性KO杂合子;
4)纯合子足细胞特异敲除DLX6-os1的转基因小鼠繁殖:将F2代组织特异性KO杂合子相互交配,得到新生小鼠,剪鼠尾进行PCR作为基因鉴定,确定具有flox/flox,NPHS2-Cre基因型的小鼠作为组织特异性KO纯合子,即得足细胞特异敲除DLX6-os1的转基因小鼠。
2.根据权利要求1所述的肾脏足细胞特异敲除lncRNA DLX6-os1转基因小鼠的培育方法,其特征在于,具体包括以下步骤:
1、基因动物打靶培育F0代:
将靶向的ES细胞克隆6F4注射到C57BL/6白化胚胎中,然后将其重新植入CD-1假妊娠雌性中,通过其毛色辨别亲本,用C57BL/6雌性育种并随后对后代进行基因分型确认种系传递:
A、ES打靶-电转
(1)、DMEM培养基加入15%胎血清,37℃,5%CO2培养ES细胞;
(2)、胰酶消化,进行细胞计数,确定细胞量足够电转;
(3)、离心收集细胞,加入电转缓冲液和线性化质粒DNA,浴片刻,将混合物加入电转杯进行电转;
(4)、电转后冰浴片刻,接种于培养ES细胞的培养基,所述的培养基由DMEM培养基加入
15%胎牛血清组成;
(5)、培养过夜,次日加药,进行抗药性筛选;
(6)、继续培养,待细胞生长稳定后,挑单克隆于96孔板;
(7)、将96孔板ES细胞转移至新的96孔板,传代培养;
(8)、细胞生长稳定后,96孔板细胞送检PCR,做初次打靶筛选;同时,备份板于-80℃保存;
B、ES打靶-PCR筛选:
(1)、SDS裂解液和蛋白酶K混合液裂解96孔板ES细胞,过夜裂解;
(2)、次日,用无乙醇氯化钠混合液沉淀基因组DNA;
(3)、质量浓度70%乙醇清洗沉淀,去除残留乙醇,加入RNAaseA和注射水混合液,封口37℃培养箱过夜,作为PCR模板;
(4)、准备96孔PCR板,进行PCR扩增及电泳检测;
PCR引物:
5’arm-F (P1): 5’-CTACTAGCCACATGCTTCTCTTGTGAGG-3’
5’arm-R (P2): 5’-TCGAACTTGTGGCCGTTTACGTG-3’
野生型: N.A.
基因敲除:  2.7 kb
~
Distal loxP PCR:
Distal-loxP-F (P3): 5’-GCCCCAAACTAGAAATCCCTCATC-3’
Distal-loxP-R (P4): 5’-TTGTATGGAGTTGACCCAAAGGGAG-3’
Wildtype: 238 bp
Targeted: 325 bp
(5)、电泳完成,记录检测结果;
C、ES打靶-细胞复苏传代:
(1)、准备细胞复苏所需试剂及物品;
(2)、取出-80℃冻存的备份板;
(3)、将PCR阳性克隆从96孔板传代至12孔板;
(4)、12孔板细胞生长稳定后,传至6cm培养皿;
(5)、再将6cm培养皿细胞传至10cm培养皿;
(6)、待细胞生长稳定后,消化,离心收集细胞,一部份冻存;一部分送检Southern Blot;
D、ES打靶-Southern Blot
(1)、PCR法制备地高辛标记探针;
(2)、ES细胞基因组DNA的抽提;
(3)、基因组DNA酶切,酶切产物进行电泳分离;
(4)、电泳凝胶转膜,将凝胶上的DNA转移至尼龙膜;
(5)、紫外交联固定尼龙膜;
(6)、DNA预杂交;
(7)、预杂交完成后,进行杂交过夜;
(8)、杂交后,进行洗膜和阻断;
(9)、加入抗体孵育,洗涤缓冲液洗涤后,加入检测缓冲液平衡;
(10)、将膜放入底物显色液中,避光显色,使用碧天公司显色试剂盒显色;
(11)、显色完成,洗膜缓冲液洗涤,观察结果;
E、囊胚注射:
(1)、从交配后3.5天的供体母鼠子宫内获取囊胚;
(2)、安装显微注射设备,准备所需试剂及物品;
(3)、挑选形态良好、发育状态适中的囊胚,转移至注射皿的培养基内;
(4)、将待注射ES转移至注射皿的细胞培养基内,使其均匀排列,密度适中;
(5)、将ES细胞吸入注射针,将其逐个注射入囊胚腔;
(6)、注射完成后,可在囊胚腔内看到ES细胞;
F、代孕鼠制备及胚胎移植:
(1)、选取适龄的母鼠与结扎公鼠合笼,获取代孕母鼠;
(2)、将注射ES细胞的囊胚移植入代孕母鼠的子宫内;
(3)、将代孕母鼠放在干净的笼盒中,并保温待其清醒后放回笼架饲养;
(4)、囊胚移植完成,待嵌合体小鼠出生;
(5)、嵌合体出生1周后编号,3周后进行分笼;
2、正确打靶的F1代杂合子小鼠繁殖:
(1)、步骤1中的雄性嵌合体出生满8周,与8周龄B6或Flp/Cre工具母鼠合笼;
(2)、出生小仔放入新的笼盒,并进行编号;
(3)、待1周龄,剪小鼠脚趾送检PCR,进行一次鉴定;
(4)、保留一次鉴定阳性小鼠,待2周龄剪鼠尾送检PCR,进行二次鉴定;
(5)、经2次PCR鉴定阳性的小鼠,为正确打靶的具有flox/+基因型的F1代杂合子小鼠;
3、F2代组织特异性KO杂合子小鼠繁殖:
(1)、步骤2中的F1代杂合子小鼠杂交雄性嵌合体出生满8周,与带有NPHS2-Cre基因型的8周龄母鼠合笼;
(2)、出生小仔放入新的笼盒,并进行编号;
(3)、待1周龄剪小鼠脚趾送检PCR,进行一次鉴定;
(4)、保留一次鉴定阳性小鼠,待2周龄剪鼠尾送检PCR,进行二次鉴定;
(5)、经2次PCR鉴定阳性的小鼠,为正确打靶的具有flox/+,NPHS2-Cre基因型的F2代组织特异性KO杂合子小鼠;
4、纯合子足细胞特异敲除DLX6-os1的转基因小鼠繁殖:
(1)、步骤3中的F2代组织特异性KO 杂合子小鼠出生满8周相互交配合笼;
(2)、出生小仔放入新的笼盒,并进行编号;
(3)、待1周龄剪小鼠脚趾送检PCR,进行一次鉴定;
(4)、保留一次鉴定阳性小鼠,待2周龄剪鼠尾送检PCR,进行二次鉴定;
(5)、经2次PCR鉴定阳性的小鼠,确定具有flox/flox,NPHS2-Cre基因型的小鼠作为组织特异性KO 纯合子,即足细胞特异敲除DLX6-os1的转基因小鼠。

说明书全文

肾脏足细胞特异敲除lncRNA DLX6-os1转基因小鼠的培育

方法

技术领域

[0001] 本发明涉及医学生物,特别是一种肾脏足细胞特异敲除lncRNA DLX6-os1转基因小鼠的培育方法。

背景技术

[0002] 肾脏的滤过功能对于维持机体正常的运转至关重要,其滤过功能的维持需要滤过屏障才能发挥。而滤过屏障中最重要的组分之一就是足细胞。足细胞的健康与否关系着肾脏功能乃至整个机体功能的正常维持。疾病状态下,如果足细胞受损,发生足细胞肥大、凋亡、或者足突融合均会导致足细胞的滤过功能下降,最直接的临床表现就是患者出现蛋白尿,而蛋白尿的出现将会加重整个肾脏的损伤,目前已发现多种肾脏病的发生发展关键之一就是足细胞损伤,如糖尿病肾病、IgA肾病、狼疮肾等。因此,维持足细胞的健康状态是减少肾脏疾病损害的关键。
[0003] 前期的研究基础发现 LncRNA DLX6-AS1(DLX6 antisense RNA 1:RefSeq Gene ID 285987,对应于小鼠的是Dlx6-os1)在糖尿病肾病、IgA肾病患者的肾组织中表达增多,尤其是在足细胞中的表达较正常对照组表达增多,进一步通过肾病动物模型和细胞模型进行验证,发现 DLX6-os1的表达平与小鼠的尿蛋白的增加成正相关,和足细胞的损伤程度成正相关,进一步实验发现在正常足细胞中过表达lncRNA DLX6-os1可导致足细胞损伤、小鼠发生蛋白尿,说明lncRNA DLX6-os1与肾脏损伤、足细胞损伤密切相关,但具体的机制和作用不明。
[0004] 为了进一步明确该lncRNA在足细胞中的重要作用,需要改变实验动物足细胞DLX6-os1的表达水平,目前国际普遍应用的方法是注射携带lncRNA的病毒到相应的组织器官,试图改变该lncRNA的表达水平,即使是使用足细胞特异表达的慢病毒载体,仍然存在较多问题:1.病毒的感染效率低,不能实现在特定细胞中有效改变lncRNA的表达水平的效果;2.有些lncRNA序列较长,不适合包装病毒或造成病毒的滴度低,不合适感染动物;3.在特异靶细胞中的效果较差。
[0005] 因此,通过基因工程技术对前期建立的携带FLOX-DLX6-os1转基因小鼠进一步基因改造,发明了肾脏足细胞特异敲除lncRNA DLX6-os1转基因小鼠(flox / flox,NPHS2- Cre)的培育方法,为明确lncRNA DLX6-os1在足细胞损伤中的作用提供了非常好的动物模型,有效解决在不同肾脏疾病中研究足细胞损伤的作用机制的问题,但至今未见有公开报道。

发明内容

[0006] 针对上述情况,为解决现有技术缺陷,本发明之目的就是提供一种肾脏足细胞特异敲除lncRNA DLX6-os1转基因小鼠的培育方法,可有效解决在不同肾脏疾病中研究足细胞损伤的作用机制的问题。
[0007] 本发明解决的技术方案是,通过基因工程技术对前期建立的携带FLOX-DLX6-os1转基因小鼠与另一种携带足细胞特异的NPHS2- Cre基因的转基因小鼠进行多代的繁殖杂交,实现肾脏足细胞特异敲除lncRNA DLX6-os1转基因小鼠(flox/flox,NPHS2- Cre)的培育,具体是:1)基因动物打靶培育F0代:将Southern blot(印迹杂交)验证基因为阳性的ES细胞用于基因打靶,即将基因敲除质粒载体导入ES(胚胎干细胞)细胞中,通过显微注射到囊胚中,再移植到代孕母鼠的子宫内发育下一代,获得携带FLOX-DLX6-os1的首建鼠F0代;
2)F1代杂合子小鼠繁殖:利用携带FLOX-DLX6-os1的首建鼠与野生型小鼠交配,得到新生小鼠,剪鼠尾进行PCR作为基因鉴定,确定具有flox/+基因型的小鼠作为F1代杂合子;
3)F2代组织特异性KO杂合子小鼠繁殖:将F1代杂合子小鼠与带有NPHS2-Cre 基因型的小鼠杂交,得到新生小鼠,剪鼠尾进行PCR作为基因鉴定,确定具有flox/+,NPHS2-Cre基因型的小鼠作为F2代组织特异性KO杂合子;
4)纯合子足细胞特异敲除DLX6-os1的转基因小鼠繁殖:将F2代组织特异性KO杂合子相互交配,得到新生小鼠,剪鼠尾进行PCR作为基因鉴定,确定具有flox/flox,NPHS2-Cre基因型的小鼠作为组织特异性KO 纯合子,即得足细胞特异敲除DLX6-os1的转基因小鼠。
[0008] 本发明通过基因工程技术对C57小鼠进行基因改造,构建出肾脏足细胞特异敲除lncRNA DLX6-os1转基因小鼠flox/flox,NPHS2-Cre的培育方法,为明确lncRNA DLX6-os1在足细胞损伤中的作用提供了非常好的动物模型,有效解决在不同肾脏疾病中研究足细胞损伤的作用机制的问题,是转基因小鼠的培育方法上的创新。附图说明
[0009] 图1为本发明 PCR具有flox/+基因型的小鼠F1代杂合子基因鉴定示意图。
[0010] 图2为本发明PCR鉴定具有(flox/+,NPHS2-Cre)基因型的小鼠示意图。
[0011] 图3为本发明PCR鉴定足细胞特异敲除DLX6-os1的转基因小鼠示意图。
[0012] 图4为本发明利用RNA原位杂交荧光探针标记足细胞特异敲除DLX6-os1的转基因小鼠足细胞中DLX6-os1表达水平;在利用STZ(链脲佐菌素 Streptozocin)诱导转基因小鼠建立糖尿病肾病模型后,其足细胞中DLX6-os1的表达水平示意图。
[0013] 图5为本发明利用STZ诱导足细胞特异敲除DLX6-os1的转基因小鼠建立糖尿病肾病模型,足细胞特异敲除DLX6-os1的转基因小鼠的蛋白尿的量比非敲除小鼠明显减少示意图。
[0014] 图6为本发明利用STZ诱导足细胞特异敲除DLX6-os1的转基因小鼠建立糖尿病肾病模型,肾脏PAS染色和电镜检测发现其损伤程度较非敲除组明显减轻示意图。
[0015] 图7为本发明利用STZ诱导足细胞特异敲除DLX6-os1的转基因小鼠建立糖尿病肾病模型,足细胞发生损伤的程度较非敲除组明显减轻示意图。

具体实施方式

[0016] 以下结合具体情况和附图对本发明的具体实施方式作进一步详细说明。
[0017] 本发明在具体实施中,通过基因工程技术对前期建立的携带FLOX-DLX6-os1转基因小鼠进一步基因改造,实现了肾脏足细胞特异敲除lncRNA DLX6-os1转基因小鼠(flox/flox,NPHS2- Cre)的培育,具体包括以下步骤:1、基因动物打靶培育F0代:
将靶向的ES 细胞克隆6F4 注射到C57BL/6 白化胚胎中,然后将其重新植入CD-1 假妊娠雌性中,通过其毛色辨别亲本,用C57BL/6 雌性育种并随后对后代进行基因分型确认种系传递:
A、ES打靶-电转
(1)、DMEM培养基加入15%胎血清,37℃,5%CO2培养ES细胞;
(2)、胰酶消化,进行细胞计数,确定细胞量足够电转;
(3)、离心收集细胞,加入电转缓冲液和线性化质粒DNA,浴片刻,将混合物加入电转杯进行电转;
(4)、电转后冰浴片刻,接种于培养ES细胞(胚胎干细胞)的培养基(DMEM培养基加入15%胎牛血清)中;
(5)、培养过夜,次日加药,进行抗药性筛选;
(6)、继续培养,待细胞生长稳定后,挑单克隆于96孔板;
(7)、将96孔板ES细胞转移至新的96孔板,传代培养;
(8)、细胞生长稳定后,96孔板细胞送检PCR,做初次打靶筛选;同时,备份板于-80℃保存;
B、ES打靶-PCR筛选:
(1)、SDS裂解液和蛋白酶K混合液裂解96孔板ES细胞,过夜裂解;
(2)、次日,用无水冰乙醇氯化钠混合液沉淀基因组DNA;
(3)、质量浓度70%乙醇清洗沉淀,去除残留乙醇,加入RNAaseA和注射水混合液,封口37℃培养箱过夜,作为PCR模板;
(4)、准备96孔PCR板,进行PCR扩增及电泳检测;
PCR引物:
5’arm-F (P1): 5’-CTACTAGCCACATGCTTCTCTTGTGAGG-3’
5’arm-R (P2): 5’-TCGAACTTGTGGCCGTTTACGTG-3’
野生型: N.A.
基因敲除:  2.7 kb
~
Distal loxP PCR:
Distal-loxP-F (P3): 5’-GCCCCAAACTAGAAATCCCTCATC-3’
Distal-loxP-R (P4): 5’-TTGTATGGAGTTGACCCAAAGGGAG-3’
Wildtype: 238 bp
Targeted: 325 bp
(5)、电泳完成,记录检测结果;
C、ES打靶-细胞复苏传代:
(1)、准备细胞复苏所需试剂及物品;
(2)、取出-80℃冻存的备份板;
(3)、将PCR阳性克隆从96孔板传代至12孔板;
(4)、12孔板细胞生长稳定后,传至6cm培养皿;
(5)、再将6cm培养皿细胞传至10cm培养皿;
(6)、待细胞生长稳定后,消化,离心收集细胞,一部份冻存;一部分送检Southern Blot;
D、ES打靶-Southern Blot
(1)、PCR法制备地高辛标记探针;
(2)、ES细胞基因组DNA的抽提;
(3)、基因组DNA酶切,酶切产物进行电泳分离;
(4)、电泳凝胶转膜,将凝胶上的DNA转移至尼龙膜;
(5)、紫外交联固定尼龙膜;
(6)、DNA预杂交;
(7)、预杂交完成后,进行杂交过夜;
(8)、杂交后,进行洗膜和阻断;
(9)、加入抗体孵育,洗涤缓冲液洗涤后,加入检测缓冲液平衡;
(10)、将膜放入底物显色液中,避光显色,使用碧天公司显色试剂盒(C3206)显色;
(11)、显色完成,洗膜缓冲液洗涤,观察结果;
E、囊胚注射:
(1)、从交配后3.5天的供体母鼠子宫内获取囊胚;
(2)、安装显微注射设备,准备所需试剂及物品;
(3)、挑选形态良好、发育状态适中的囊胚,转移至注射皿的培养基内;
(4)、将待注射ES转移至注射皿的细胞培养基内,使其均匀排列,密度适中;
(5)、将ES细胞吸入注射针,将其逐个注射入囊胚腔;
(6)、注射完成后,可在囊胚腔内看到ES细胞;
F、代孕鼠制备及胚胎移植:
(1)、选取适龄的母鼠与结扎公鼠合笼,获取代孕母鼠;
(2)、将注射ES细胞的囊胚移植入代孕母鼠的子宫内;
(3)、将代孕母鼠放在干净的笼盒中,并保温待其清醒后放回笼架饲养;
(4)、囊胚移植完成,待嵌合体小鼠出生;
(5)、嵌合体出生1周后编号,3周后进行分笼;
2、正确打靶的F1代杂合子小鼠繁殖:
(1)、步骤1中的雄性嵌合体出生满8周,与8周龄母鼠(B6或Flp/Cre工具鼠)合笼;
(2)、出生小仔放入新的笼盒,并进行编号;
(3)、待1周龄,剪小鼠脚趾送检PCR,进行一次鉴定;
(4)、保留一次鉴定阳性小鼠,待2周龄剪鼠尾送检PCR,进行二次鉴定;
(5)、经2次PCR鉴定阳性的小鼠,为正确打靶的具有flox/+基因型的F1代杂合子小鼠;
3、F2代组织特异性KO杂合子小鼠繁殖:
(1)、步骤2中的F1代杂合子(flox/+)小鼠杂交雄性嵌合体出生满8周,与带有NPHS2-Cre 基因型的8周龄母鼠合笼;
(2)、出生小仔放入新的笼盒,并进行编号;
(3)、待1周龄剪小鼠脚趾送检PCR,进行一次鉴定;
(4)、保留一次鉴定阳性小鼠,待2周龄剪鼠尾送检PCR,进行二次鉴定;
(5)、经2次PCR鉴定阳性的小鼠,为正确打靶的具有flox/+,NPHS2-Cre基因型的F2代组织特异性KO杂合子小鼠;
4、纯合子足细胞特异敲除DLX6-os1的转基因小鼠繁殖:
(1)、步骤3中的F2代组织特异性KO 杂合子小鼠(flox/+,NPHS2-Cre)出生满8周相互交配合笼;
(2)、出生小仔放入新的笼盒,并进行编号;
(3)、待1周龄剪小鼠脚趾送检PCR,进行一次鉴定;
(4)、保留一次鉴定阳性小鼠,待2周龄剪鼠尾送检PCR,进行二次鉴定;
(5)、经2次PCR鉴定阳性的小鼠,确定具有flox/flox,NPHS2-Cre基因型的小鼠作为组织特异性KO 纯合子,即足细胞特异敲除DLX6-os1的转基因小鼠。
[0018] 本发明培育方法科学,为明确lncRNA DLX6-os1在足细胞损伤中的作用提供了非常好的动物模型,有效解决在不同肾脏疾病中研究足细胞损伤的作用机制的问题,应用范围广,开拓了对足细胞损伤相关肾脏疾病的诊断治疗的新途径,为治疗此类肾脏疾病提供了技术支持,具有很强的使用价值,有显著的经济和社会效益,并对小鼠进行鉴定,效果非常好,有关资料如下:小鼠鉴定
Step 1 基因组DNA提取,Triton X-100和蛋白酶混合物裂解液,裂解样品过夜Step 2 次日,高温灭活蛋白酶,离心收集上清,作为PCR模板
Step 3 PCR扩增及电泳检测
1. Neo PCR
引物序列:
F1: 5’-TGGGAGGCTTTTGAGTTAGGAAT-3’
R1: 5’-ATTGGACCATCTTACTGGACAGG-3’
目标产物:
野生型(MT): 222 bp
目标产物(MT): 327 bp
体系:
成分x1
小鼠基因组1.5 μl
上游引物(10 μM) 1.0 μl
下游引物(10 μM) 1.0 μl
Taq 聚合酶12.5 μl
ddH2O 9.0 μl
总计25.0 μl
程序:
步骤温度. 时间循环数
预变性94 °C 3 min
变性94 °C 30 s
退火62 °C 35 s 33 x
延伸72 °C 35 s
终延伸72 °C 5 min
小鼠基因组DNA 1.5 μl
上游引物(10 μM) 1.0 μl
上游引物(10 μM) 1.0 μl
Taq 聚合酶12.5 μl
ddH2O 9.0 μl
总和25.0 μl
PCR 条件:
步骤Temp. Time Cycles
预变性94 ℃ 3 min
变性94 ℃ 30s
退火62 ℃ 35s 33 x
延伸72 ℃ 35s
终延伸72 ℃ 5 min
Step 4 记录阳性样品编号
结果:
通过Neo PCR 确认1#,2#,3#,4#,5#,6#,7#,9#,11#,12#,13#,16#,21#,
23#,24#,56#、68#为阳性(图1)。
[0019] 2. NPHS2-cre PCRNPHS2-cre PCR 引物:
F3: 5’-CGGTTATTCAACTTGCACCA-3’
R3: 5’-GCGCTGCTGCTCCAG-3’
目标产物:
野生型: N.A.
目标产物: 200 bp
体系:
成分x1
小鼠基因组1.5 μl
上游引物(10 μM) 1.0 μl
下游引物(10 μM) 1.0 μl
Taq 聚合酶12.5 μl
ddH2O 9.0 μl
总计25.0 μl
程序:
步骤温度. 时间循环数
预变性94 °C 3 min
变性94 °C 30 s
退火62 °C 35 s 33 x
延伸72 °C 35 s
终延伸72 °C 5 min
结果:
通过NPHS2-cre PCR 确认1#,2#,3#,4#,5#,6#,7#,9#,11#,12#,13#,
16#,21#,23#,24#,56#、68#为阳性(图2)。
[0020] 3. 5'arm PCR5'arm PCR PCR 引物:
F2: 5’-TTGATGGTTTTGGTAGATTATGCCC-3’
R2: 5’-TGAAAAGTCAGAAGCACTGTTACC-3’
目标产物:
野生型(MT): 170 bp
目标产物(MT): 257 bp
体系:
成分x1
小鼠基因组1.5 μl
上游引物(10 μM) 1.0 μl
下游引物(10 μM) 1.0 μl
Taq 聚合酶12.5 μl
ddH2O 9.0 μl
总计25.0 μl
程序:
步骤温度. 时间循环数
预变性94 °C 3 min
变性94 °C 30 s
退火62 °C 35 s 33 x
延伸72 °C 35 s
终延伸72 °C 5 min
结果:
通过5'arm PCR 确认1#,2#,3#,4#,5#,6#,7#,9#,11#,12#,13#,16#,
21#,23#,24#,56#、68#为阳性(图3)。
[0021] 最终PCR结果:通过以上PCR 实验确认来着ES 克隆6F4 的17 只小鼠(1#,2#,3#,4#,5#,6#,
7#,9#,11#,12#,13#,16#,21#,23#,24#,56#来自68#)均为阳性。
[0022] 本发明利用RNA原位杂交荧光探针标记足细胞特异敲除DLX6-os1的转基因小鼠,发现其足细胞中DLX6-os1表达水平明显减少;在利用STZ(链脲佐菌素 Streptozocin)诱导转基因小鼠建立糖尿病肾病模型后,其足细胞中DLX6-os1的表达水平也较非敲除小鼠表达明显降低(如图4所示)。
[0023] 本发明利用STZ诱导足细胞特异敲除DLX6-os1的转基因小鼠建立糖尿病肾病模型,发现足细胞特异敲除DLX6-os1的转基因小鼠的蛋白尿的量比非敲除小鼠明显减少,说明足细胞特异敲除DLX6-os1可缓解糖尿病肾病小鼠蛋白尿(如图5所示)。
[0024] 本发明利用STZ诱导足细胞特异敲除DLX6-os1的转基因小鼠建立糖尿病肾病模型,肾脏PAS染色和电镜检测发现其损伤程度较非敲除组明显减轻,说明足细胞特异敲除DLX6-os1可缓解糖尿病肾病小鼠足细胞和肾脏损伤(如图6所示)。
[0025] 本发明利用STZ诱导足细胞特异敲除DLX6-os1的转基因小鼠建立糖尿病肾病模型,足细胞发生损伤的程度较非敲除组明显减轻(如图7所示)。
[0026] 由上述可以看出,本发明为明确lncRNA DLX6-os1在足细胞损伤中的作用提供了非常好的动物模型,有效解决在不同肾脏疾病中研究足细胞损伤的作用机制的问题,应用范围广,开拓了对足细胞损伤相关肾脏疾病的诊断治疗的新途径,为治疗此类肾脏疾病提供了技术支持,具有很强的使用价值,有显著的经济和社会效益。
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