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枸杞多糖通过调节血脑屏障抑制胶质瘤生长的实验方法

阅读:1010发布:2021-07-27

专利汇可以提供枸杞多糖通过调节血脑屏障抑制胶质瘤生长的实验方法专利检索,专利查询,专利分析的服务。并且枸杞多糖通过调节血脑屏障抑制胶质瘤生长的实验方法,属于中医药领域。取雄性SD大鼠,给予枸杞多糖溶液饲养3-4周;然后构建大鼠胶质瘤模型;造模后继续给予枸杞多糖溶液并检测:①每组大鼠的生存时间,生存率及中位生存期;②取各组大鼠脑组织观察并测量 肿瘤 大小;③对各组大鼠通过股静脉注射伊文思蓝溶液,取等量脑组织检测伊文思蓝含量,判断血脑屏障通透性变化;④电镜观察血脑屏障超微结构变化;⑤对各组大鼠用多聚甲 醛 溶液进行心尖灌注,取脑 组织切片 后做免疫组化试验;⑥取各组大鼠分别直接断头取脑,提取RNA及蛋白,进行RT-PCR及Western blotting实验。本 发明 对 治疗 多种血脑屏障 疾病 提供了新的治疗途径。,下面是枸杞多糖通过调节血脑屏障抑制胶质瘤生长的实验方法专利的具体信息内容。

1.枸杞多糖通过调节血脑屏障抑制胶质瘤生长的实验方法,其特征在于:取雄性SD大鼠,先分别给予自来与不同梯度枸杞多糖溶液(25mg/kg.d、50mg/kg.d、100mg/kg.d、
200mg/kg.d、400/kg.d)饲养3-4周;然后立体定位仪固定,构建大鼠胶质瘤模型,大鼠尾状核接种C6胶质瘤细胞(1×105个);造模后继续给予不同浓度的枸杞多糖并检测以下指标:
①观察并记录每组大鼠的生存时间,计算生存率及中位生存期;以空白对照组大鼠中位生存期为准,再继续作如下检测:②取各组大鼠脑组织观察并测量肿瘤大小;③对各组大鼠通过股静脉注射伊文思蓝溶液,取等量脑组织检测伊文思蓝含量,判断血脑屏障通透性变化;
④电镜观察血脑屏障超微结构变化;⑤对各组大鼠应用4%多聚甲溶液进行心尖灌注,取脑组织切片后做免疫组化试验;⑥取各组大鼠分别直接断头取脑,提取RNA及蛋白,进行RT-PCR及Western blotting实验(③、④、⑤和⑥均选自上述肿瘤最小组脑组织,来检测颅内免疫指标及血脑屏障相关分子变化),该实验方法的技术路线为:实验动物分组及饲养——胶质瘤模型制备——生存期观察——肿瘤大小比较——血脑屏障通透性检测——扫描电镜观察血脑屏障超微结构变化——免疫组化实验——RT-PCR实验——Westernblotting实验——结果分析。
2.如权利要求1所述的实验方法,其特征在于:所述的实验动物分组及饲养的具体实验方法为:①取标准体重(180-200g)雄性SD大鼠200只,随机分为6组,每组25只(其中7只观察生存期,5只注射伊文思蓝检测血脑屏障变化,7只4%多聚甲醛灌注取脑测量肿瘤大小并做免疫组化实验,6只断头取脑用于RT-PCR 及Westernblotting实验),各组大鼠再随机分配:
4-5只/笼;各组均备有多余大鼠,以防造模失败或其他意外因素对实验造成影响;②空白对照组大鼠饮用水全程为自来水,实验组大鼠饮用水为不同浓度枸杞多糖溶液(实验开始前3天为大鼠适应期,给予自来水喂养,记录每笼大鼠的每天平均饮水量,并计算每只大鼠每天平均饮水量,以此来配置不同浓度枸杞多糖溶液,每5天测量一次大鼠体重,对枸杞多糖溶液浓度进行调整,保证每组大鼠所食用枸杞多糖分别为:25mg/kg.d、50mg/kg.d、100mg/kg.d、200mg/kg.d、400mg/kg.d)。
3.如权利要求1所述的实验方法,其特征在于:所述的胶质瘤模型制备具体操作方法为:①将培养瓶中C6细胞,用胰蛋白酶消化成单细胞悬液,调整细胞密度为4×106个/mL,备用;②麻醉:大鼠称重后,用10%水合氯醛麻醉(4ml/kg,ip);③大鼠俯卧位固定于脑立体定位仪上,调整使前囟和后囟保持水平,备皮,碘伏消毒后头皮正中矢状切口,分离骨膜,暴露前囟;④定位左侧尾状核:前囟后0.5mm,左旁开3mm;标记后牙科钻钻孔;⑤用微量注射器吸取25ul单细胞悬液,进针5.8mm,6min内均匀注射完毕,停留5min,分2次缓慢退针(每次2-3分钟,中间停留5min);⑥退针结束后骨蜡封孔,碘伏消毒后缝合皮肤;手术结束后大鼠喂养同前,注意保暖。
4.如权利要求1所述的实验方法,其特征在于:所述的生存期观察是从造模后开始记录,直到大鼠自然死亡,计算大鼠平均生存天数。
5.如权利要求1所述的实验方法,其特征在于:所述的肿瘤大小比较是用4%多聚甲醛溶液灌注后开颅取全脑,将全脑放于大鼠脑切片模具中,做全脑冠状位切片,层厚1mm,测量肿瘤最大长径a、最大宽径b(冠状面,单位mm)及层数c,计算肿瘤体积,肿瘤体积V=a×b×c×π/6。
6.如权利要求1所述的实验方法,其特征在于:所述的血脑屏障通透性检测是将10%水合氯醛溶液对大鼠麻醉,大鼠仰卧固定于手术台上,备皮,暴露股静脉,穿刺注射2%(2g伊文思蓝加入100mlPBS缓冲液)伊文思蓝溶液(2ml/kg),40min后断头取脑组织100 mg左右(大鼠脑切片模具切取同一层面,右侧用来检测血脑屏障,左侧检测血肿瘤屏障),称重后放入存有3 ml二甲基甲酰胺的试管中, 60℃水浴中( 避光) 抽提 24 h ,1500g离心10 min  ,取上清,应用  RF540荧光分光光度计(λ=632  nm)  测定伊文思蓝荧光光度
(opticaldensity,OD),蒸馏水作为空白对照,根据光密度数值,从标准曲线上算出脑组织中伊文思蓝含量,以伊文思蓝含量 (μg /g湿脑组织) 代表血脑屏障通透性的改变。
7.如权利要求1所述的实验方法,其特征在于:所述的扫描电镜观察血脑屏障超微结构变化:用4%多聚甲醛溶液灌注后开颅取全脑,4℃生理盐水冲洗3次;切取右侧同一部位大鼠脑组织(大小约3mm×3mm×3mm)置于固定液后标记,4℃固定30min;将组织载玻片上修小,置于固定液4℃固定2-2.5h;更换缓冲液2h×3次;4℃ 1% 锇酸浸泡2h;0.1M二甲砷酸钠缓冲液冲洗15min×2次;脱水:①4℃ 30%酒精脱水 10min;②4℃ 50%酒精脱水 10min;③4℃ 70%酒精脱水 10min;④室温80%酒精脱水10min;⑤室温90%酒精脱水10min;⑥室温100%酒精脱水15min×2次;⑦室温环丙烷渗透15min×2次;⑧室温1:1(不完全包埋液:环氧丙烷)渗透1h;室温2:1(不完全包埋液:环氧丙烷)渗透1h;室温完全包埋液渗透过夜;⑨完全包埋液浸泡,置于35℃温箱6h,然后转移至包埋板(完全包埋液),42℃温箱过夜;⑩扫描电镜观察血脑屏障超微结构变化。
8.如权利要求1所述的实验方法,其特征在于:所述的免疫组化试验是用4%多聚甲醛溶液灌注后开颅取全脑,将脑组织置于4%多聚甲醛溶液中浸泡24h,更换20%及30%的蔗糖溶液分别脱水24h(均在4℃箱中完成),PBS缓冲液冲洗后,包埋剂包埋固定后置于莱卡冰冻切片机上切片(层厚25μm),直接贴在黏附载玻片上;置于37℃烘干箱中进行抗原修复1-2h;取出后PBS将脑片湿润;3%H2O2去离子水孵育10min,以阻断内源性过氧化物酶;PBS冲洗2min×
3次;山羊血清封闭40min;滴加一抗(兔抗大鼠CD3单克隆抗体,兔抗大鼠CD8单克隆抗体),
37℃孵育2h,PBS冲洗2min×3次;加二抗,37℃孵育20min,PBS冲洗2min×3次;滴加试剂1,
37℃孵育20min,PBS冲洗2min×3次;滴加试剂2,37℃孵育20min,PBS冲洗2min×3次;滴加苏木素复染15min;化液(75%酒精99ml+浓盐酸1ml)浸泡2-5s,pbs冲洗2min×3次,晾干;
梯度酒精(75%、80%、90%、100%)脱水(各2-3min);二甲苯脱水透明2-3min;中性树胶封片;显微镜下观察拍照。
9.如权利要求1所述的实验方法,其特征在于:所述的RT-PCR检测是将大鼠直接断头取脑后,取脑组织100mg置于组织匀浆器中研碎,加入1-1.5ml Trizol试剂,转移至2ml EP管中,室温下使脑组织充分裂解;加入氯仿(为Trizol体积的1/5),震荡均匀,室温放置15min;
离心15min(4℃,12000rpm),管中液体分三层;吸取最上层(RNA)置于新的无RNA酶EP管中,加入等体积的异丙醇,充分混匀后室温静置10min;4℃,12000rpm离心10min,弃上清,底部沉淀即为RNA;加入1ml 75%酒精上下混匀对RNA进行清洗,4℃,12000rpm离心10min,弃上清;自然晾干后加入适量DEPC水溶解,测定RNA浓度;根据美国Thermo公司RNA逆转录试剂盒对RNA进行反转录,再根据德国DBI荧光定量试剂盒进行RT-PCR检测。
10.如权利要求1所述的实验方法,其特征在于:所述Westernblotting实验:大鼠直接断头取脑后,取脑组织100mg置于组织匀浆器中研碎,根据凯基蛋白提取试剂盒操作进行蛋白提取,根据BCA试剂盒操作方法进行蛋白浓度测定;然后加上样缓冲液,100 ℃ 5 min使蛋白变性;取50 μg蛋白(25 μL)上样,进行SDS-PAGE(90 V,90 mi n)以分离蛋白,然后电转膜(300 mA,70 min),PVDF 膜用脱脂奶封闭1 h;分别加入兔抗大鼠GAPDH和ANXA1单克隆抗体(体积稀释比例均为1∶1 000),4 ℃反应过夜;TBS缓冲液洗膜后,加入IRDye 800CW 标记的山羊抗兔荧光二抗(体积稀释比例为1∶4 000),常温杂交1 h;再次洗膜后,置于Odyssey Infrared Imaging仪进行曝光,应用ImageJ Setup软件进行蛋白条带的灰度值扫描,以目的蛋白与内参GAPDH蛋白条带的灰度值之比表示各蛋白的相对表达水平。

说明书全文

枸杞多糖通过调节血脑屏障抑制胶质瘤生长的实验方法

技术领域

[0001] 本发明属于中医药应用领域,特别涉及一种枸杞多糖通过调节血脑屏障抑制胶质瘤生长的实验方法。

背景技术

[0002] 胶质母细胞瘤是成人最常见的恶性脑肿瘤,其最典型的特点是向周边脑组织高度浸润,由于浸润的肿瘤细胞不能完全被切除,从而复发形成新的肿瘤组织,导致患者预后极差,尽管给予积极的手术、放疗、化疗,并辅以新型的分子生物学疗法,患者的中位生存期也仅仅被延长至2年。分子生物学诊断显示,胶质母细胞瘤病理形态多样并且易变,这使的治疗愈加困难。目前研究显示,抗肿瘤药物替莫唑胺对治疗胶质瘤有积极的效果,但是由于血脑屏障的作用,药物进入瘤内的浓度甚微,致使总的效果也不是很理想。可见寻找有效的办法促使血脑屏障通透性增加,使药物顺利通过,在肿瘤中达到有效浓度,对胶质瘤的治疗会起到至关重要的作用。
[0003] 宁夏枸杞是我国传统的名贵中药材,也是唯一被载入《中国药典》的枸杞物种。《本草纲目》记载:“性味甘平,归肝,肾经,滋补肝肾,益精明目”,坚精骨,去疲劳,易颜色,变白,明目安神,令人长寿。”《神农本草经》中指出:久服坚筋骨;《名医别录》谓枸杞擅长“补益精气”;《食疗本草》也记载枸杞“能益人,去虚劳”。枸杞多糖是枸杞中主要活性成分,含量在5.42%~8.23%,现代药理学研究证实枸杞多糖有多种药理学作用,包括清除自由基、抗化、抗衰老、抗肿瘤、神经调节、免疫调节、降血糖、降血脂等作用,且有动物实验研究证实枸杞多糖无任何毒副作用,可延长胶质瘤大鼠生存期,但其机制不详。

发明内容

[0004] 本发明的目的是针对现有因血脑屏障导致药物作用效果甚微的状况所存在的不足之处,提供一种枸杞多糖通过调节血脑屏障抑制胶质瘤生长的实验方法的技术方案。
[0005] 本发明在研究枸杞多糖对胶质瘤大鼠生存期影响的基础上,着重探索枸杞多糖对大鼠胶质瘤生长及血脑屏障通透性的影响,发现枸杞多糖可以调节血脑屏障,在颅内产生肿瘤的情况下,增加血脑屏障的通透性,促使机体周围系统免疫细胞进入颅内,对胶质瘤细胞生长起到抑制或杀灭作用。
[0006] 本发明的具体技术方案是这样的:取雄性SD大鼠,先分别给予自来与不同梯度枸杞多糖溶液(25mg/kg.d、50mg/kg.d、
100mg/kg.d、200mg/kg.d、400/kg.d)饲养3-4周;然后立体定位仪固定,构建大鼠胶质瘤模型,大鼠尾状核接种C6胶质瘤细胞(1×105个);造模后继续给予不同浓度的枸杞多糖并检测以下指标:①观察并记录每组大鼠的生存时间,计算生存率及中位生存期;以空白对照组大鼠中位生存期为准,再继续作如下检测:②取各组大鼠脑组织观察并测量肿瘤大小;③对各组大鼠通过股静脉注射伊文思蓝溶液,取等量脑组织检测伊文思蓝含量,判断血脑屏障通透性变化;④电镜观察血脑屏障超微结构变化;⑤对各组大鼠应用4%多聚甲溶液进行心尖灌注,取脑组织切片后做免疫组化试验;⑥取各组大鼠分别直接断头取脑,提取RNA及蛋白,进行RT-PCR及Western blotting实验(③、④、⑤和⑥均选自上述肿瘤最小组脑组织,来检测颅内免疫指标及血脑屏障相关分子变化)。
[0007] 本发明的技术路线为:实验动物分组及饲养——胶质瘤模型制备——生存期观察——肿瘤大小比较——血脑屏障通透性检测——扫描电镜观察血脑屏障超微结构变化——免疫组化试验——RT-PCR检测——Western blotting实验——结果分析。
[0008] 本发明具有如下有益效果:1、枸杞多糖是中药枸杞的提取物,属于天然植物来源,且种植广泛,价格相对低廉,为新型抗肿瘤药物的研制提供了优质原材料,本发明实验方法证明了枸杞多糖抑制胶质瘤生长的作用,该研究成果将极大地减轻中低收入患者的家庭负担;
2、本发明实验方法结果显示枸杞多糖具有调节血脑屏障开放的作用,可有效辅助化疗,特别是对术后患者的保守治疗,促使化疗药物进入颅内,增强药物疗效,从而达到治疗肿瘤的效果;
3、 本发明实验方法对枸杞多糖相关药物研发,联合多种制剂更加有效调节血脑屏障的开放,为阿尔茨海默病等多种血脑屏障相关疾病提供了新的治疗途径。
附图说明
[0009] 图1为枸杞多糖不同喂养量的各组组胶质瘤大鼠生存期及存活率示意图;图2为枸杞多糖不同喂养量脑组织切片肿瘤大小示意图;
图3为伊文思蓝在不同组大鼠脑组织中的含量示意图;
图4为不同组血脑屏障关键分子变化示意图;
图5为免疫组化实验示意图。
[0010] 如图1所示:A、B、C、D、E分别为400/kg.d、200mg/kg.d、100mg/kg.d、50mg/kg.d、25mg/kg.d枸杞多糖混合物溶液喂养的大鼠,F为自来水喂养。
[0011] 如图2所示: A、B、C、D、E分别为400/kg.d、200mg/kg.d、100mg/kg.d、50mg/kg.d、25mg/kg.d枸杞多糖混合物溶液喂养的大鼠,F为自来水喂养。
[0012] 如图4所示:RT-PCR及Westernblotting实验结果显示,调节血脑屏障的关键分子ANXA1在肿瘤中的表达要明显低于正常脑组织中(P﹤0.05);而且分别在对照组(正常大鼠)及肿瘤组中,枸杞多糖喂养的大鼠脑组织中ANXA1的表达与空白组(自来水喂养)相比,同样是明显降低(P﹤0.05);免疫组化实验显示,在肿瘤组织中,ANXA1蛋白表达阳性细胞在枸杞多糖喂养的大鼠脑组织比自来水喂养的大鼠脑组织中明显减少。

具体实施方式

[0013] 本发明的具体实施方式如下。
[0014] 1.实验动物分组及饲养:①取标准体重(180-200g)雄性SD大鼠200只,随机分为6组,每组25只(其中7只观察生存期,5只注射伊文思蓝检测血脑屏障变化,7只4%多聚甲醛灌注取脑测量肿瘤大小并做免疫组化实验,6只断头取脑用于RT-PCR 及Western blotting实验),各组大鼠再随机分配:4-5只/笼;各组均备有多余大鼠,以防造模失败或其他意外因素对实验造成影响;②空白对照组大鼠饮用水全程为自来水,实验组大鼠饮用水为不同浓度枸杞多糖溶液(实验开始前3天为大鼠适应期,给予自来水喂养,记录每笼大鼠的每天平均饮水量,并计算每只大鼠每天平均饮水量,以此来配置不同浓度枸杞多糖溶液,每5天测量一次大鼠体重,对枸杞多糖溶液浓度进行调整,保证每组大鼠所食用枸杞多糖分别为:25mg/kg.d、50mg/kg.d、100mg/kg.d、200mg/kg.d、400mg/kg.d)。
[0015]  2.胶质瘤模型制备:①将培养瓶中C6细胞,用胰蛋白酶消化成单细胞悬液,调整细胞密度为4×106个/mL,备用;②麻醉:大鼠称重后,用10%水合氯醛麻醉(4ml/kg,ip);③大鼠俯卧位固定于脑立体定位仪上,调整使前囟和后囟保持水平,备皮,碘伏消毒后头皮正中矢状切口,分离骨膜,暴露前囟;④定位左侧尾状核:前囟后0.5mm,左旁开3mm;标记后牙科钻钻孔;⑤用微量注射器吸取25ul单细胞悬液,进针5.8mm,6min内均匀注射完毕,停留5min,分2次缓慢退针(每次2-3分钟,中间停留5min);⑥退针结束后骨蜡封孔,碘伏消毒后缝合皮肤;手术结束后大鼠喂养同前,注意保暖。
[0016] 3.生存期观察:从造模后开始记录,直到大鼠自然死亡,计算大鼠平均生存天数。
[0017] 4.肿瘤大小比较:用4%多聚甲醛溶液灌注后开颅取全脑,将全脑放于大鼠脑切片模具中,做全脑冠状位切片,层厚1mm,测量肿瘤最大长径a、最大宽径b(冠状面,单位mm)及层数c,计算肿瘤体积,肿瘤体积V=a×b×c×π/6。
[0018] 5.血脑屏障通透性检测:10%水合氯醛溶液对大鼠麻醉(同前),大鼠仰卧固定于手术台上,备皮,暴露股静脉,穿刺注射2%(2g伊文思蓝加入100mlPBS缓冲液)伊文思蓝溶液(2ml/kg),40min后断头取脑组织100 mg左右(大鼠脑切片模具切取同一层面,右侧用来检测血脑屏障,左侧检测血流屏障),称重后放入存有3 ml二甲基甲酰胺的试管中, 60℃水浴中( 避光) 抽提 24 h 。 1 500 g离心 10 min  , 取上清,应用 RF540荧光分光光度计(λ=632 nm) 测定 EB荧光光度值(opticaldensity,OD),蒸馏水作为空白对照。根据光密度数值,从标准曲线上算出脑组织中伊文思蓝含量,以 伊文思蓝含量 (μg /g湿脑组织) 代表血脑屏障通透性的改变。
[0019] 6.扫描电镜观察血脑屏障超微结构变化:用4%多聚甲醛溶液灌注后开颅取全脑,4℃生理盐水冲洗3次;切取右侧同一部位大鼠脑组织(大小约3mm×3mm×3mm)置于固定液后标记,4℃固定30min;将组织载玻片上修小,置于固定液4℃固定2-2.5h;更换缓冲液2h×3次;4℃ 1% 锇酸浸泡2h;0.1M二甲砷酸钠缓冲液冲洗15min×2次;脱水:①4℃ 30%酒精脱水 10min;②4℃ 50%酒精脱水 10min;③4℃ 70%酒精脱水 10min;④室温80%酒精脱水10min;⑤室温90%酒精脱水10min;⑥室温100%酒精脱水15min×2次;⑦室温环氧丙烷渗透
15min×2次;⑧室温1:1(不完全包埋液:环氧丙烷)渗透1h;室温2:1(不完全包埋液:环氧丙烷)渗透1h;室温完全包埋液渗透过夜;⑨完全包埋液浸泡,置于35℃温箱6h,然后转移至包埋板(完全包埋液),42℃温箱过夜;⑩扫描电镜观察血脑屏障超微结构变化。
[0020] 7.免疫组化试验:用4%多聚甲醛溶液灌注后开颅取全脑,将脑组织置于4%多聚甲醛溶液中浸泡24h,更换20%及30%的蔗糖溶液分别脱水24h(均在4℃箱中完成),PBS缓冲液冲洗后,包埋剂包埋固定后置于莱卡冰冻切片机上切片(层厚25um),直接贴在黏附载玻片上;置于37℃烘干箱中进行抗原修复1-2h;取出后PBS将脑片湿润;3%H2O2去离子水孵育10min,以阻断内源性过氧化物酶;PBS冲洗2min×3次;山羊血清封闭40min;滴加一抗(兔抗大鼠CD3单克隆抗体,兔抗大鼠CD8单克隆抗体),37℃孵育2h,PBS冲洗2min×3次;加二抗,
37℃孵育20min,PBS冲洗2min×3次;滴加试剂1,37℃孵育20min,PBS冲洗2min×3次;滴加试剂2,37℃孵育20min,PBS冲洗2min×3次;滴加苏木素复染15min;化液(75%酒精99ml+浓盐酸1ml)浸泡2-5s,pbs冲洗2min×3次,晾干;梯度酒精(75%、80%、90%、100%)脱水(各2-
3min);二甲苯脱水透明2-3min;中性树胶封片;显微镜下观察拍照。
[0021] 8.RT-PCR检测:大鼠直接断头取脑后,取脑组织100mg置于组织匀浆器中研碎,加入1-1.5ml Trizol,转移至2mlEP管中,室温下使脑组织充分裂解;加入氯仿(为Trizol体积的1/5),震荡均匀,室温放置15min;离心15min(4℃,12000rpm),管中液体分三层;吸取最上层(RNA)置于新的无RNA酶EP管中,加入等体积的异丙醇,充分混匀后室温静置10min;4℃,12000rpm离心10min,弃上清,底部沉淀即为RNA;加入1ml 75%酒精上下混匀对RNA进行清洗,4℃,12000rpm离心10min,弃上清;自然晾干后加入适量DEPC水溶解,测定RNA浓度;根据ThermoRNA逆转录试剂盒对RNA进行反转录,再根据DBI荧光定量试剂盒进行RT-PCR检测。
[0022] 9.Western blotting实验:大鼠直接断头取脑后,取脑组织100mg置于组织匀浆器中研碎,根据凯基蛋白提取试剂盒操作进行蛋白提取,根据BCA试剂盒操作方法进行蛋白浓度测定;然后加上样缓冲液,100 ℃ 5 min使蛋白变性;取50 μg蛋白(25 μL)上样,进行SDS-PAGE(90 V,90 mi n)以分离蛋白,然后电转膜(300 mA,70 min),PVDF 膜用脱脂奶封闭1 h;分别加入兔抗大鼠GAPDH和ANXA1单克隆抗体(体积稀释比例均为1∶1 000),4 ℃反应过夜;TBS缓冲液洗膜后,加入IRDye 800CW 标记的山羊抗兔荧光二抗(体积稀释比例为1∶4 000),常温杂交1 h;再次洗膜后,置于Odyssey Infrared Imaging仪进行曝光,应用ImageJ Setup软件进行蛋白条带的灰度值扫描,以目的蛋白与内参GAPDH蛋白条带的灰度值之比表示各蛋白的相对表达水平。
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