TEV蛋白酶变体、其融合蛋白及制备方法和用途
阅读：1028发布：2020-05-13
专利汇可以提供TEV蛋白酶变体、其融合蛋白及制备方法和用途专利检索，专利查询，专利分析的服务。并且本 发明 提供了TEV蛋白酶变体、其融合蛋白及制备方法和用途。本发明提供了经筛选得到的具有独特性能的TEV蛋白酶变体以及融合蛋白。采用本发明的TEV蛋白酶变体与多肽融合表达可以用于快速、高效制备多肽，解决目前重组生产多肽工艺中存在的问题。，下面是TEV蛋白酶变体、其融合蛋白及制备方法和用途专利的具体信息内容。
1.TEV蛋白酶变体，其中所述TEV蛋白酶变体在宿主内表达过程中具有低酶切活性，优选与具有以SEQ ID NO.10所示的氨基酸序列的S219V变体相比更低的酶切活性，所述TEV蛋白酶变体的酶切位点选自EXXYXQG/S/H，其中X为任意氨基酸残基，优选所述酶切位点选自SEQ ID NO:7和8。
2.根据权利要求1所述的TEV蛋白酶变体，其中所述TEV蛋白酶变体在中高程度变性条件下，优选在3M-5M尿素，优选3.5M-4.5M尿素，更优选4M尿素或1M-2M盐酸胍，优选1.5M的盐酸胍的体外环境下保留S219V变体的体外酶切活性。
3.根据权利要求2所述的TEV蛋白酶变体，其中所述酶切活性是对包含所述TEV蛋白酶变体及其酶切位点的融合蛋白测定的，优选所述酶切位点是EXXYXQG/S/H，其中X为任意氨基酸残基，优选所述酶切位点选自SEQ ID NO:7和8。
4.根据权利要求1-3中任一项所述的TEV蛋白酶变体，其中所述TEV蛋白酶变体包含选自下组的一种或多种突变：
与SEQ ID NO:1所示序列的第111位对应的位置处由亮氨酸(L)变为苯丙氨酸(F)或组氨酸(H)的突变；
与SEQ ID NO:1所示序列的第138位对应的位置处由异亮氨酸(I)变为赖氨酸(K)的突变；
与SEQ ID NO:1所示序列的第28位对应的位置处由组氨酸(H)变为亮氨酸(L)的突变；
与SEQ ID NO:1所示序列的第196位对应的位置处由谷氨酸(Q)变为组氨酸(H)的突变；
与SEQ ID NO:1所示序列的第135位对应的位置处由丝氨酸(S)变为甘氨酸(G)的突变；
和
与SEQ ID NO:1所示序列的第187位对应的位置处蛋氨酸(M)变为异亮氨酸(I)的突变。
5.根据权利要求1-4中任一项所述的TEV蛋白酶变体，其中所述TEV蛋白酶变体包含选自以下的突变组合：
与SEQ ID NO:1所示序列的第111位对应的位置处由亮氨酸(L)变为苯丙氨酸(F)的突变和与SEQ ID NO:1所示序列的第138位对应的位置处由异亮氨酸(I)变为赖氨酸(K)的突变；
与SEQ ID NO:1所示序列的第28位对应的位置处由组氨酸(H)变为亮氨酸(L)的突变、与SEQ ID NO:1所示序列的第111位对应的位置处由亮氨酸(L)变为苯丙氨酸(F)的突变和与SEQ ID NO:1所示序列的第196位对应的位置处由谷氨酸(Q)变为组氨酸(H)的突变；和与SEQ ID NO:1所示序列的第111位对应的位置处由亮氨酸(L)变为组氨酸(H)的突变、与SEQ ID NO:1所示序列的第135位对应的位置处由丝氨酸(S)变为甘氨酸(G)的突变和与SEQ ID NO:1所示序列的第187位对应的位置处蛋氨酸(M)变为异亮氨酸(I)的突变。
6.根据权利要求1-5中任一项所述的TEV蛋白酶变体，其中所述TEV蛋白酶变体包含与SEQ ID NO:1所示序列的第219位对应的位置处由丝氨酸(S)变为缬氨酸(V)的突变。
7.根据权利要求1-6中任一项所述的TEV蛋白酶变体，其中所述TEV蛋白酶进一步包含一个或多个除上述突变以外的突变，条件是所述TEV蛋白酶变体在宿主内表达过程中具有低酶切活性，优选地与具有以SEQ ID NO.10所示的氨基酸序列的S219V变体相比更低的酶切活性和/或所述TEV蛋白酶变体在中高程度变性条件下，优选在3M-5M尿素，优选3.5M-
4.5M尿素，更优选4M尿素或1M-2M盐酸胍，优选1.5M的盐酸胍的体外环境下具有高酶切活性，优选保留S219V变体的体外酶切活性。
8.根据权利要求1-7中任一项所述的TEV蛋白酶变体，其中所述蛋白酶变体包含SEQ ID NO:4、5或6所示的氨基酸序列或其同源物。
9.根据权利要求8所述的TEV蛋白酶变体，其中所述同源物包含与SEQ ID NO:4、5或6具有至少90％，优选至少95％，更优选至少98％，最优选至少99％序列同一性的氨基酸序列。
10.根据权利要求8或9所述的TEV蛋白酶变体，其中所述同源物包含与SEQ ID NO:4、5或6具有至少1个，优选至少2个，更优选至少3个，最优选至少4个氨基酸位点的取代、缺失或添加的氨基酸序列。
11.根据权利要求8-10中任一项所述的TEV蛋白酶变体，其中所述同源物在宿主内表达过程中具有低酶切活性，优选与具有以SEQ ID NO.10所示的氨基酸序列的S219V变体相比更低的酶切活性和/或所述TEV蛋白酶变体在中高程度变性条件下，优选在3M-5M尿素，优选
3.5M-4.5M尿素，更优选4M尿素或1M-2M盐酸胍，优选1.5M的盐酸胍的体外环境下保留S219V变体的体外酶切活性。
12.根据权利要求8-11中任一项所述的TEV蛋白酶变体，其中所述同源物来源于烟草蚀纹病毒。
13.融合蛋白，其包含根据权利要求8-12中任一项所述的TEV蛋白酶变体。
14.根据权利要求13所述的融合蛋白，其包含结构TEVp-sTEV-Y1，
其中Y1为感兴趣的多肽；
TEVp为根据权利要求8-12中任一项所述的TEV蛋白酶变体；
sTEV为TEV蛋白酶酶切位点，其是EXXYXQG/S/H，其中X为任意氨基酸残基，优选所述酶切位点选自SEQ ID NO:7和8。
15.根据权利要求14所述的融合蛋白，其中感兴趣的多肽选自ACTH、GLP-1/GLP-2、IFN-α、IFN-γ、Histatin、CCL5、SDF-1α、IGF-1、Leptin、BNP、Ex-4，优选ACTH，优选人ACTH，更优选SEQ ID NO.2所示的氨基酸序列的人ACTH。
16.根据权利要求14或15所述的融合蛋白，其中TEVp与sTEV是直接连接的或者相隔一个或多个氨基酸残基，条件是TEVp能识别并切割sTEV。
17.根据权利要求14-16中任一项所述的融合蛋白，其中sTEV与Y1是直接连接的或者相隔一个或多个氨基酸残基，条件是TEVp能识别并切割sTEV，优选地sTEV与Y1是直接连接的。
18.根据权利要求14-17中任一项所述的融合蛋白，其还包含标签。
19.根据权利要求18所述的融合蛋白，其中所述标签为纯化标签。
20.根据权利要求18或19所述的融合蛋白，其中所述标签选自下组：His标签、麦芽糖结合蛋白(MBP)标签、谷胱甘肽转移酶(GST)标签、NusA标签、SUMO标签、Avi标签、T7标签、S标签、Flag标签、HA标签、c-myc标签、或Strep II标签。
21.根据权利要求18-20中任一项所述的融合蛋白，其中所述标签在融合蛋白的N端，或者TEVp的N端无标签。
22.编码根据权利要求1-12中任一项所述的TEV蛋白酶变体或根据权利要求13-21中任一项所述的融合蛋白的多核苷酸序列，优选选自SEQ ID NO.14-16。
23.多核苷酸构建体，其包含根据权利要求22所述的多核苷酸序列。
24.表达载体，其包含根据权利要求22所述的多核苷酸序列或权利要求23所述的多核苷酸构建体。
25.根据权利要求24所述的表达载体，其中所述表达载体为真核生物表达载体或原核生物表达载体。
26.根据权利要求25所述的表达载体，其为真核生物表达载体，优选选自下组：pRS314、pYES2、杆状病毒-S2表达系统和pcDNA3.1。
27.根据权利要求25所述的表达载体，其为原核生物表达载体，优选选自下组：pET系列表达载体、pQE系列表达载体和pBAD系列表达载体。
28.细胞，其包含根据权利要求22所述的多核苷酸序列、根据权利要求23所述的多核苷酸构建体或根据权利要求24-27中任一项所述的表达载体。
29.根据权利要求28所述的细胞，其为真核细胞或原核细胞。
30.权利要求29的细胞，其为真核细胞，所述真核细胞选自下组：酿酒酵母、昆虫细胞表达系统。
31.权利要求29的细胞，其为原核细胞，所述原核细胞选自下组：BL21、BL21(DE3)、BL21(DE3)pLysS、Rosetta2、Rosetta2pLysS、Tuner(DE3)、或Origami 2。
32.制备根据权利要求1-12中任一项所述的TEV蛋白酶变体的方法，其包括：
(1)在适合于培养权利要求28-31中任一项所述的细胞的条件下在培养基中培养所述细胞；
(2)收获培养基，或裂解细胞以收获裂解物；
(3)纯化获得所述TEV蛋白酶变体。
33.根据权利要求1-12中任一项所述的TEV蛋白酶变体用于制备感兴趣的多肽的用途，其中所述TEV蛋白酶变体与所述感兴趣的多肽以融合蛋白形式表达，优选地，所述融合蛋白为根据权利要求14-21中任一项所述的融合蛋白。
34.制备感兴趣的多肽的方法，其包括：
(1)在合适的条件下在培养基中培养根据权利要求13-21中任一项所述的融合蛋白；
(2)获得融合蛋白的包涵体；
(3)在高变性条件下，例如约8M尿素或约6M盐酸胍溶解包涵体；
(4)在中高程度变性条件下，优选在3M-5M尿素，优选3.5M-4.5M尿素，更优选4M尿素或
1M-2M盐酸胍，优选1.5M的盐酸胍的条件下在一定的温度，例如20-40℃，优选25℃温育一段时间，例如10-24小时，例如12小时；
(5)用缓冲液例如Tris-HCl，优选50mM Tris-HCl稀释后沉淀TEV蛋白酶；
(6)除去，优选离心除去TEV蛋白酶沉淀物获得所述感兴趣的多肽；并且
(7)纯化所述感兴趣的多肽。
35.根据权利要求34的方法，其中所述纯化用选自下组的技术进行：盐析、超滤、有机溶剂沉淀、凝胶过滤、离子交换层析柱、反相高效液相色谱。
TEV蛋白酶变体、其融合蛋白及制备方法和用途
技术领域
[0002] 本发明涉及蛋白质领域，具体涉及TEV蛋白酶。
背景技术
[0003] TEV蛋白酶(TEV Protease)是来源于烟草蚀纹病毒(TEV)的Nla蛋白酶中27kDa的活性结构域，其氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示。TEV蛋白酶具有很强的位点特异性，能够识别EXXYXQ(G/S)七氨基酸序列，最常用序列的是Glu-Asn-Leu-Tyr-Phe-Gln-Gly(或ENLYFQG)，其切割位点在谷氨酰胺Gln(P1)和甘氨酸Gly(P1′)之间(即P1和P1’之间)，其序列专一性远比凝血酶、因子Xa、肠激酶等蛋白酶高。
[0004] TEV蛋白酶能够耐受范围广泛的pH(pH 4-8.5)和温度(4-34℃)，对一些常见的增加蛋白可溶性或稳定性的添加剂(乙二醇、EGTA、去垢剂以及还原剂)也都有不同程度的耐受。有研究证明，TEV蛋白酶对乙二醇、EGTA和一些除垢剂(Triton X-100、Tween-20和NP-40)不敏感，当1％CHAPS存在时活性降低，在低浓度变性剂(2M尿素,1％SDS)和还原剂(0.7Mβ-巯基乙醇)中依旧可以保持大部分活性(C.Sun et al.,2012)。
[0005] 野生型TEV酶在表达和溶解性等方面存在一定的缺陷，所以通过基因工程技术改良的突变体有大量报道。例如，天然的TEV蛋白酶会发生自我切割，在表达和纯化过程中，它会不断由于其它TEV蛋白酶的碰撞而发生构象变化，在特定位点发生自我切割，从而使完整的蛋白酶被截短，活性大大降低。Lucast等人找到的S219N突变体，稳定性得到很大的提高，但是可溶性并不高，有大约95％的蛋白是以包涵体的形式存在于沉淀中。Kapust等人使用基因工程点突变了天然TEV蛋白酶的基因序列，得到S219V这一稳定性较高并且酶活性也有稍微提高的突变体，其稳定性比S219N要高出约100倍。其次，TEV蛋白酶表达产量不高，溶解度也非常低。大约只有5％的TEV蛋白酶存在于细胞破碎液的上清中，产量为12.5mg/L。Van den Berg等人通过基因改组(DNA shuffling)、易错PCR(error-prone PCR)发现了一种可以将产量提高到54mg/L的突变体TEVSH，其溶解度比S219N有很大提高，并且酶活性变化不大。Cabrita，L.D.等人使用PoPMuSiC软件设计，对TEV蛋白酶单点突变体进行稳定性分析，筛选出了五个突变体，它们的可溶性和酶活性相对于野生型TEV蛋白酶都得到提升，同时还得到一个双突变体，其可溶性及酶活性相对于单突变体有显著提高。针对TEV蛋白酶本身的缺点，研究者一直在寻找改良的突变体。例如，TEV Ser135Gly突变体比WT更稳定，可以耐受对更高的温度(>40℃)；还有一些突变(T17S，N68D，N177V)可以显著提高TEV蛋白酶的溶解性。
[0006] TEV蛋白酶作为一种工具酶已在蛋白质研究和生物制药生产中得到了广泛的应用。可根据目的蛋白的性质选择反应条件。通过设计自身带有组氨酸标签的重组TEV蛋白酶，切割后也很容易利用亲和标签将TEV蛋白酶清除。例如，TEV蛋白酶经常被用于高效切割融合蛋白，但是仅限于在二者都可溶状态下切割。目前采用TEV蛋白酶切割融合蛋白以制备蛋白多肽药物的主流方案是：多肽与标签蛋白(如MBP)融合表达，中间用酶切序列连接；纯化融合蛋白；TEV蛋白酶制备；用TEV蛋白酶切割融合蛋白；分离、纯化酶切产物。这种生产方式的缺点是工艺环节过多，效率不高，不利于控制成本。
[0007] 针对上述重组生产多肽工艺中存在的问题，发明人找到了一种TEV蛋白酶变体，其适合于根据本发明快速和高效制备多肽。
发明内容
[0008] 本发明人发现采用TEV蛋白酶直接与多肽融合表达的方式制备多肽药物可以大幅简化工艺。目前常规的TEV蛋白酶会在表达过程中大量切割融合蛋白(自我酶切)，导致多肽被提前释放，容易被胞内蛋白酶水解，反而不利于纯化，不适合工业化生产。常规TEV蛋白酶虽然在低浓度变性剂中(2Murea,1％SDS)依旧可以保持大部分活性(C.Sun et al.,2012)，但是有很多蛋白在2M尿素等低浓度变性条件下往往是不能完全溶解的，这就限制了TEV蛋白酶的使用。除此之外，TEV蛋白酶虽然小量实验室制备成本低廉，但是大量制备需要通过大规模发酵、纯化、复性，生产成本仍然很高。
[0009] 本发明提供了经筛选得到的具有独特性能的TEV蛋白酶变体以及融合蛋白。采用本发明的融合蛋白可以用于快速、高效制备多肽，解决目前重组生产多肽工艺中存在的问题。
[0010] 本发明部分基于本发明的TEV蛋白酶变体在表达过程中在细胞内无蛋白酶切活性或具有极弱的蛋白酶切割活性，而在体外在中高程度变性条件下具有很好的酶切活性。
[0011] 在一方面，本发明提供了TEV蛋白酶变体。
[0012] 在一个实施方案中，TEV蛋白酶变体可以在宿主内表达过程中低酶切活性。优选地，TEV蛋白酶变体在宿主内表达过程中与具有以SEQ ID NO.10所示的氨基酸序列的S219V变体相比更低的酶切活性。
[0013] 在一个实施方案中，TEV蛋白酶变体可以在中高程度变性条件下具有高蛋白酶酶切活性。优选地，中高程度变性条件是在3M-5M尿素，优选3.5M-4.5M尿素，更优选4M尿素或1M-2M盐酸胍，优选1.5M的盐酸胍的体外环境。优选地，TEV蛋白酶变体在中高程度变性条件下保留了S219V变体的体外酶切活性。
[0014] 在一个实施方案中，酶切活性是对包含TEV蛋白酶变体及其酶切位点的融合蛋白测定的。优选地，酶切位点选自EXXYXQG/S/H，其中X为任意氨基酸残基，优选所述酶切位点选自SEQ ID NO:7和8。在一个实施方案中，融合蛋白可以包含结构TEVp-sTEV-Y1，其中Y1为感兴趣的多肽；TEVp为TEV蛋白酶变体；sTEV为TEV蛋白酶酶切位点，其是EXXYXQG/S/H，其中X为任意氨基酸残基，优选所述酶切位点选自SEQ ID NO:7和8。
[0015] 在一个实施方案中，TEV蛋白酶变体可以包含选自下组的一种或多种突变：
[0016] 与SEQ ID NO:1所示序列的第111位对应的位置处由亮氨酸(L)变为苯丙氨酸(F)或组氨酸(H)的突变；
[0017] 与SEQ ID NO:1所示序列的第138位对应的位置处由异亮氨酸(I)变为赖氨酸(K)的突变；
[0018] 与SEQ ID NO:1所示序列的第28位对应的位置处由组氨酸(H)变为亮氨酸(L)的突变；
[0019] 与SEQ ID NO:1所示序列的第196位对应的位置处由谷氨酸(Q)变为组氨酸(H)的突变；
[0020] 与SEQ ID NO:1所示序列的第135位对应的位置处由丝氨酸(S)变为甘氨酸(G)的突变；和
[0021] 与SEQ ID NO:1所示序列的第187位对应的位置处蛋氨酸(M)变为异亮氨酸(I)的突变。
[0022] 在一个实施方案中，TEV蛋白酶变体可以包含选自以下的突变组合：
[0023] 与SEQ ID NO:1所示序列的第111位对应的位置处由亮氨酸(L)变为苯丙氨酸(F)的突变和与SEQ ID NO:1所示序列的第138位对应的位置处由异亮氨酸(I)变为赖氨酸(K)的突变；
[0024] 与SEQ ID NO:1所示序列的第28位对应的位置处由组氨酸(H)变为亮氨酸(L)的突变、与SEQ ID NO:1所示序列的第111位对应的位置处由亮氨酸(L)变为苯丙氨酸(F)的突变和与SEQ ID NO:1所示序列的第196位对应的位置处由谷氨酸(Q)变为组氨酸(H)的突变；和[0025] 与SEQ ID NO:1所示序列的第111位对应的位置处由亮氨酸(L)变为组氨酸(H)的突变、与SEQ ID NO:1所示序列的第135位对应的位置处由丝氨酸(S)变为甘氨酸(G)的突变和与SEQ ID NO:1所示序列的第187位对应的位置处蛋氨酸(M)变为异亮氨酸(I)的突变。
[0026] 在一个实施方案中，TEV蛋白酶变体可以包含与SEQ ID NO:1所示序列的第219位对应的位置处由丝氨酸(S)变为缬氨酸(V)的突变。
[0027] 在一个实施方案中，TEV蛋白酶变体可以进一步包含一个或多个除上述突变以外的突变，条件是所述TEV蛋白酶变体在宿主内表达过程中具有低酶切活性，优选地，TEV蛋白酶变体在宿主内表达过程中与具有以SEQ IDNO.10所示的氨基酸序列的S219V变体相比更低的酶切活性和/或所述TEV蛋白酶变体在中高程度变性条件下，优选在3M-5M尿素，优选3.5M-4.5M尿素，更优选4M尿素或1M-2M盐酸胍，优选1.5M的盐酸胍的体外环境下具有高酶切活性，优选TEV蛋白酶变体在中高程度变性条件下保留了S219V变体的体外酶切活性。
[0028] 在一个实施方案中，蛋白酶变体可以包含SEQ ID NO:4、5或6所示的氨基酸序列或其同源物。
[0029] 在一个实施方案中，同源物可以包含与SEQ ID NO:4、5或6具有至少90％，优选至少95％，更优选至少98％，最优选至少99％序列同一性的氨基酸序列。同源物应当保留TEV蛋白酶变体的上述特性。
[0030] 在一个实施方案中，同源物可以包含与SEQ ID NO:4、5或6具有至少1个，优选至少2个，更优选至少3个，最优选至少4个氨基酸位点的取代、缺失或添加的氨基酸序列。同源物应当保留TEV蛋白酶变体的上述特性。
[0031] 在一个实施方案中，同源物可以在宿主内表达过程中具有低酶切活性，优选同源物在宿主内表达过程中与具有以SEQ ID NO.10所示的氨基酸序列的S219V变体相比更低的酶切活性和/或所述TEV蛋白酶变体在中高程度变性条件下，优选在3M-5M尿素，优选3.5M-4.5M尿素，更优选4M尿素或1M-2M盐酸胍，优选1.5M的盐酸胍的体外环境下具有高酶切活性，优选同源物在中高程度变性条件下保留了S219V变体的体外酶切活性。
[0032] 在一个实施方案中，同源物来源于烟草蚀纹病毒。
[0033] 一方面，本发明提供了融合蛋白，其可以包含本发明的TEV蛋白酶变体。出乎意料地，发明人发现在本发明的融合蛋白中掺入本发明的TEV蛋白酶变体可以快速有效地生产感兴趣的多肽。
[0034] 在一个实施方案中，融合蛋白可以包含结构TEVp-sTEV-Y1，
[0035] 其中Y1为感兴趣的多肽；
[0036] TEVp为根据前述TEV蛋白酶变体；
[0037] sTEV为TEV蛋白酶酶切位点，其是EXXYXQG/S，其中X为任意氨基酸残基，优选所述酶切位点选自SEQ ID NO:7和8。
[0038] 在一个实施方案中，感兴趣的多肽可以选自ACTH、GLP-1/GLP-2、IFN-α、IFN-γ、Histatin、CCL5、SDF-1α、IGF-1、Leptin、BNP、Ex-4，优选ACTH，优选人ACTH，更优选SEQ ID NO.2所示的氨基酸序列的人ACTH。
[0039] 在一个实施方案中，TEVp与sTEV可以是直接连接的或者相隔一个或多个氨基酸残基，条件是TEVp能识别并切割sTEV。
[0040] 在一个实施方案中，sTEV与Y1可以是直接连接的或者相隔一个或多个氨基酸残基，条件是TEVp能识别并切割sTEV。
[0041] 在一个实施方案中，融合蛋白可以还包含标签。
[0042] 在一个实施方案中，标签可以为纯化标签。
[0043] 在一个实施方案中，标签可以选自下组：His标签、麦芽糖结合蛋白(MBP)标签、谷胱甘肽转移酶(GST)标签、NusA标签、SUMO标签、Avi标签、T7标签、S标签、Flag标签、HA标签、c-myc标签、或StrepⅡ标签。
[0044] 在一个实施方案中，标签可以在融合蛋白的N端。
[0045] 在一个实施方案中，TEVp的N端无标签。
[0046] 一方面，本发明提供了编码本发明的TEV蛋白酶变体或本发明的融合蛋白的多核苷酸序列。多核苷酸序列优选选自SEQ ID NO.14-16。
[0047] 一方面，本发明提供了多核苷酸构建体，其包含本发明的多核苷酸序列。
[0048] 一方面，本发明提供了表达载体，其包含本发明的多核苷酸序列或本发明的多核苷酸构建体。
[0049] 在一个实施方案中，表达载体可以为真核生物表达载体或原核生物表达载体。
[0050] 在一个实施方案中，表达载体可以为真核生物表达载体。优选地，真核生物表达载体可以选自下组：pRS314、pYES2、杆状病毒-S2表达系统和pcDNA3.1。
[0051] 在一个实施方案中，表达载体可以为原核生物表达载体。优选地，原核生物表达载体可以选自下组：pET系列表达载体、pQE系列表达载体和pBAD系列表达载体。
[0052] 一方面，本发明提供了细胞，其包含本发明的多核苷酸序列、本发明的多核苷酸构建体或本发明的表达载体。
[0053] 在一个实施方案中，细胞可以为真核细胞或原核细胞。
[0054] 在一个实施方案中，细胞可以为真核细胞。优选地，真核细胞可以选自下组：酿酒酵母、昆虫细胞表达系统。
[0055] 在一个实施方案中，细胞可以为原核细胞。优选地，原核细胞可以选自下组：BL21、BL21(DE3)、BL21(DE3)pLysS、Rosetta2、Rosetta2pLysS、Tuner(DE3)、或Origami 2。
[0056] 一方面，本发明提供了制备本发明的TEV蛋白酶变体的方法，其包括：
[0057] (1)在适合于培养本发明的细胞的条件下在培养基中培养所述细胞；
[0058] (2)收获培养基，或裂解细胞以收获裂解物；
[0059] (3)纯化获得所述TEV蛋白酶变体。
[0060] 一方面，本发明提供了TEV蛋白酶变体用于制备感兴趣的多肽的用途，其中所述TEV蛋白酶变体与所述感兴趣的多肽以融合蛋白形式表达。优选地，融合蛋白为本发明的融合蛋白。
[0061] 一方面，本发明提供了制备感兴趣的多肽的方法，其包括：
[0062] (1)在合适的条件下在培养基中培养本发明的融合蛋白；
[0063] (2)获得融合蛋白的包涵体；
[0064] (3)在高变性条件下，例如约8M尿素或约6M盐酸胍溶解包涵体；
[0065] (4)在中高程度变性条件下，优选在3M-5M尿素，优选3.5M-4.5M尿素，更优选4M尿素或1M-2M盐酸胍，优选1.5M的盐酸胍的条件下在一定的温度，例如20-40℃，优选25℃温育一段时间，例如10-24小时，例如12小时；
[0066] (5)用缓冲液例如Tris-HCl，优选50mM Tris-HCl稀释后沉淀TEV蛋白酶；
[0067] (6)除去TEV蛋白酶沉淀物，获得所述感兴趣的多肽；并且
[0068] (7)纯化所述感兴趣的多肽。
[0070] 本发明的优点：
[0071] 1.本发明的TEV蛋白酶变体可以广泛用于生产各种具有天然N端的多肽或蛋白。
[0072] 2.本发明的TEV蛋白酶变体是通过筛选获得的，但是直接获得的突变体无法满足要求或部分满足要求。通过一系列的突变点组合，能获得具有独特的获得性能进一步提高的改良型突变体，例如L111F与其他位点组合，其特点是体内无或极低活性，但是体外中等变性条件下有较高活性。
[0073] 3.本发明的方法采用DNA重组技术和原核表达系统表达目的蛋白，具有广泛的适用性。
[0074] 4.相比于猪脑垂体提取ACTH的方法，采用本发明的方法制备人源或猪源ACTH的生产成本比传统猪脑提取生产技术降低能达上百倍，极大地缩短了生产周期，节省了生产时间和成本，且不再依赖于大量生猪屠宰获得猪脑垂体，避免了使用猪源ACTH产生的免疫原性过敏反应等风险，大大提升药物安全性。而且本方法制备的ACTH与人体自身分泌的ACTH完全一样，具有极高氨基酸序列精准度和产品纯度，优异的生物活性，提高了药物疗效，降低了不良反应的发生。相比于化学有机合成的方法，本方法制备全长人源ACTH的难度和成本都显著降低，操作简单，不需要昂贵的催化剂和高压设备，产率高，适合大规模生产。总体而言，本方法生产工艺明确、简单，具有较好的可重复性，易于实现规模化生产，且降低了对环境的污染。附图说明
[0076] 图2：TEVP突变体4D在不同浓度尿素中酶切效率的SDS-PAGE凝胶考马斯亮蓝染色图。箭头表示目标蛋白。
[0077] 图3：TEVP突变体32C在不同浓度尿素中酶切效率的SDS-PAGE凝胶考马斯亮蓝染色图。箭头表示目标蛋白。
[0078] 图4A：TEVP突变体4D在不同浓度尿素中酶切效率的SDS-PAGE凝胶考马斯亮蓝染色图。图4B：电泳条带灰度值比较。
[0079] 图5：TEVP突变体4D、12D和32C的体内酶切活性、体外酶切活性与S219V的比较。箭头表示目标蛋白。
[0080] 图6：TEVP突变体4D、12D、32C和S219V的融合蛋白在0.5M尿素中的溶解度检测。
[0081] 图7：质粒pET-28b-PD1-Avi图谱。
[0082] 图8：质粒pET-28b-ACTH图谱。
[0083] 图9：质粒Avi-TEV-sTEV-ACTH基因结构图。
[0084] 图10：质谱仪测定纯化后的ACTH的分子量。
[0085] 图11：体外法测定ACTH活性。
具体实施方式
[0086] 为使本发明的目的、技术方案和优点更加清楚，下面将对本发明实施方式作进一步地详细描述，但本发明的实施方式不限于此。
[0087] TEV蛋白酶
[0088] TEV蛋白酶虽然经常被用于高效切割融合蛋白，但是仅限于在二者都可溶状态下切割。目前大部分多肽药物是溶解性较差的，通常以包涵体形式表达，这与TEV蛋白酶的酶切条件不匹配。包涵体需要用高浓度尿素或盐酸胍溶解，但在这种条件下酶切是极具挑战性的，常规TEV蛋白酶与底物很难在同一条件下既有高效切割活性又同时溶解。
[0089] 包涵体有利于纯化，通过简单处理即可得到相对较纯的目的蛋白。但是包涵体蛋白需要用高浓度尿素或盐酸胍才能溶解，野生型TEV蛋白酶在这种条件下是无活性或活性极低，无法高效切割融合蛋白。目前，改良型TEV蛋白酶有大量报道，但是其最佳酶切条件都是生理条件或非变性条件，通常对低浓度的变性剂(尿素或盐酸胍)具有一定程度的耐受性，但是绝大多数包涵体蛋白在低浓度变性条件下是不溶解的，因此，常规TEV蛋白酶不适用于这种场合。
[0090] 发明人发现TEV蛋白酶与多肽融合制备多肽药物的理想生产条件是：(1)该融合蛋白以包涵体形式表达，利于纯化，同时可以保护蛋白免受蛋白酶的水解；(2)该融合蛋白在胞内不发生自我切割，否则不利于纯化；(3)该融合蛋白在高浓度变性剂中溶解后，稀释到含中高等浓度变性剂的酶切反应体系中，此时TEV蛋白酶恢复活性，高效地自我切割，释放多肽；(4)从高容量的TEV蛋白酶文库中筛选进化得到的TEV蛋白酶变体对其酶切位点的P1’位置的氨基酸要具有广谱性，这样就可以广泛用于生产各种具有天然N端的多肽或蛋白。
[0091] 本发明的方法
[0092] US2010035300A1中提供了通常制备的具有自我切割的融合蛋白的结构。在融合蛋白的制备中，均需要His标签与要表达的目标蛋白(例如EGFP)紧密相连。这样的原因在于，当融合蛋白体内表达时，传统的野生型TEVp或突变体TEVp在胞内具有一定的酶切活性，会发生自我切割。切割后的EGFP可以通过与其紧密相连的His标签回收。若没有该His标签，则由于在胞内提前发生自我切割而难以回收，无法高效生产EGFP。但这样同样带来一个问题，即可能根据具体需要会进一步除去EGFP的His标签。这样做显然较为费时费力。
[0093] 在本发明中，融合蛋白中的目标蛋白可以不含标签，例如His。在一个实施方案中，融合蛋白包含Avi-TEVp-sTEV-ACTH的结构，其中，Avi为Avi标签蛋白，sTEV为TEV蛋白酶酶切位点。由于TEVp变体(如12D变体)在胞内的酶活性极低，因此可以所表达的融合蛋白基本上不会在胞内发生裂解的情况。在收集包涵体，用8M尿素溶解，并调整到4M尿素的环境下时，12D发挥其酶活性，进而切割其识别位点为sTEV。酶切结束后，通过简单的稀释，使尿素或盐酸胍终浓度降至0.5M，TEV蛋白酶因溶解性很差，容易沉淀下来，而释放的具有生物活性的多肽往往易于溶于缓冲液，因此通过离心就可以得到高纯度的多肽，巧妙克服了原本需要增加的蛋白酶去除环节，大幅精简后期的纯化工艺。
[0094] 形成包涵体较有利于纯化：1)容易通过离心收获浓度高而相对纯净的蛋白；2)包涵体保护蛋白免受蛋白酶水解。另外，毒性蛋白以无活性的包涵体形式表达，不会影响宿主菌的生长。例如，本方法中涉及的TEVP-ACTH融合蛋白是以包涵体的形式表达，大大地简化了其纯化步骤，能够达到较高浓度和纯度，且不会受到蛋白酶的水解，因此容易获得稳定的高的产量。
[0095] 本发明的ACTH生产方法
[0096] 本发明的方法采用的TEV蛋白酶直接与ACTH多肽融合表达的方式制备多肽药物，依赖于独特的TEV蛋白酶变体，可以大幅简化工艺。常规的TEV蛋白酶会在表达过程中大量切割融合蛋白(自我酶切)，例如用MBP-TEVP融合蛋白制备TEVP，这会导致多肽被提前释放，纯化困难，不适合工业化生产。本发明提供了一种基于独特的TEV蛋白酶变体的融合蛋白制备蛋白多肽药物的方法和应用。这种TEV蛋白酶变体具有以下特点：(1)体内酶切活性很低，约0～10％，保证了与TEV融合表达的多肽不被提前释放，同时也可以增加多肽产量；(2)融合蛋白以包涵体的形式表达，大大地简化了其纯化步骤，能够达到较高浓度和纯度，且不会受到蛋白酶的水解，因此容易获得稳定的高的产量；(3)包涵体溶解到8M尿素或6M盐酸胍后，直接稀释到4M尿素或1.5M盐酸胍的酶切缓冲液中，此时TEV蛋白酶恢复活性，高效精准地自我切割，释放ACTH多肽；(4)酶切结束后，通过简单的稀释，使尿素或盐酸胍终浓度降至0.5M，通过离心即可分离可溶性的ACTH多肽，和不可溶的TEV蛋白酶及未酶切的融合蛋白。
与常规融合蛋白制备多肽药物相比，整个工艺环节大幅简化，从蛋白表达到酶切产物分离，仅需四个步骤就可以得到相对纯度较高的初步产品。
与常规融合蛋白制备多肽药物相比，整个工艺环节大幅简化，从蛋白表达到酶切产物分离，仅需四个步骤就可以得到相对纯度较高的初步产品。
[0097] 本发明的目的通过下述技术方案实现：一种TEV蛋白酶变体与ACTH多肽的融合蛋白，其结构式为：Avi-TEVP-sTEV-ACTH。其中，Avi为Avi标签蛋白，一个15个氨基酸的短肽，具有一个单生物素化赖氨酸位点；TEVP为TEV蛋白酶变体；sTEV为TEV蛋白酶酶切位点，其序列为：L-谷氨酸1-L-天冬氨酸2-L-亮氨酸3-L-酪氨酸4-L-苯丙氨酸5-L-谷氨酰胺6-L-丝氨酸；ACTH为人ACTH多肽，氨基酸序列见SEQ ID NO.2。本发明在TEV蛋白酶与目标多肽之间以蛋白酶酶切氨基酸序列连接(sTEV)，将融合蛋白表达和蛋白酶表达整合到了同一步骤，而且以包涵体形式表达，这样不仅可以大量表达，而且通过简单的处理(超声破碎、洗涤、离心)即可得到相对较高纯度的融合蛋白(在细胞内的生理条件下，TEVP变体因溶解性不好而没有酶切活性或活性极弱，不会大量自我切割)，用8M尿素溶解包涵体后再直接稀释到中高度浓度变性条件(4M尿素，野生型TEV蛋白酶在此条件活性较低)，就可以开始酶水解工艺，释放多肽。酶解产物经过稀释后，TEV蛋白酶因溶解性很差，容易沉淀下来，而释放的具有生物活性的多肽往往易于溶于缓冲液，因此通过离心就可以得到高纯度的多肽，巧妙克服了原本需要增加的蛋白酶去除环节，大幅精简后期的纯化工艺。本发明的TEV蛋白酶变体可以作为一种融合蛋白法制备蛋白多肽药物的平台，用于快速、高效地表达和纯化那些常规重组表达法和化学合成法难以实现或成本高昂的多肽，尤其适合制备易降解或对宿主菌有毒性的多肽。该技术平台可以大幅减少下游工艺时间和成本，对于大规模工业化生产和小量实验室制备均适用。
[0098] 酶切活性或效率的测定
[0099] 体内酶切活性可以根据SDS-PAGE胶的结果计算，具体过程是：将TEV蛋白酶变体的包涵体稀释10倍后加含10％β-巯基乙醇的5xSDS上样缓冲液，100℃煮样5min，上样跑胶，结束后将胶放入考马斯亮蓝染色液中染色30min，随后放入考马斯亮蓝脱色液中，加热脱色20min左右，至背景无色为止。然后，将胶放入凝胶成像系统拍照。获取的图片用Image J软件处理，将条带灰度值量化，体内酶切活性＝1-融合蛋白条带灰度值/(融合蛋白条带灰度值+Avi-TEVP条带灰度值*融合蛋白分子量/Avi-TEVP分子量)。
[0100] 在本文中，用Image J软件分析电泳条带灰度值的方法为目前的通用方法。
[0101] 在本文中，体外酶切效率的计算方法如下：
[0102] 体外酶切效率＝1-酶切后融合蛋白的条带灰度值/酶切前融合蛋白的条带灰度值。
[0103] 在本文中，8M以上尿素或6M以上盐酸胍视为高浓度的变性剂，而4M尿素为中等浓度的变性剂。中高程度变性条件是指4M尿素或1.5M盐酸胍、50mM Tris-HCl(pH8.0)、1mM EDTA,2mM DTT，反应温度4℃～37℃，优选25℃。优选在3M-5M尿素，优选3.5M-4.5M尿素，更优选4M尿素或1M-2M盐酸胍，优选1.5M的盐酸胍的条件下在一定的温度，例如20-40℃，优选25℃温育一段时间，例如10-24小时，例如12小时。
[0104] 提供以下实施例以例示本发明。
[0105] 实施例
[0106] 实施例1：TEV蛋白酶变体的获得
[0107] 1.大容量TEV蛋白酶随机突变文库构建
[0108] 1.1实验材料：
[0109] 大肠杆菌TG1：supE hsdΔ5thiΔ(lac-proAB)F’[traD36proAB+lacIqlacZΔM15]，购买自北京宝科食维安公司。噬菌粒载体pHEN1(购自BioVectorNTCC质粒载体菌种细胞基因保藏中心，货号Biovector786623)。DNA聚合酶、T4DNA连接酶、限制性内切酶购自英潍捷基贸易有限公司。质粒抽提试剂盒及琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒购自天根(北京)生物科技有限公司。随机突变试剂盒(GeneMorph II Random Mutagenesis Kit)购自Agilent Technologies。引物合成和基因测序在南京金斯瑞生物科技有限公司完成。
[0110] 1.2.TEVP随机突变文库构建
[0111] 1.2.1随机突变PCR制备TEVP DNA片段
[0112] 以pQE30-TEV(S219V)(此27kDa TEV NIa蛋白酶变体基因由南京金斯瑞合成，克隆到pQE30载体的BamH1和HindIII之间，S219V氨基酸序列见SEQID NO.10，核苷酸序列见SEQ ID NO.3)为模板，用随机突变试剂盒(GeneMorph II Random Mutagenesis Kit)对TEVP S219V基因进行大范围随机突变。PCR引物为：
[0113] TEV-F：5-
[0114] AATCTCGAGGGATCTAAAGGTCCTGGAGAAAGCTTGTTTAAGGGACCAC-3
[0115] TEV-R：5-AATGGATCCTTGCGAGTACACCAATTC-3
[0116] 具体步骤依据说明书操作，控制好PCR循环数及模板用量，将PCR条件设置为产生中等程度突变的条件。50ul的反应体系配制如下：在PCR管中依次加入，41.5μl ddH2O，5μl 10×Mutazyme II反应缓冲液，1μl 40mM dNTP混合物(终浓度各200μM)，0.5μl引物混合物(每种引物250ng/μl)，1μlMutazyme II DNA聚合酶(2.5U/μl)，1μl TEVP模板(模板量
10ng)，PCR扩增条件：95℃预变性3min；95℃，30s；60℃，30s；72℃，50s，共32个循环，最后72℃延伸10min。PCR结束后，取5ul产物跑1％琼脂糖凝胶电泳检测，分子量标准用试剂盒里的
1.1-kb凝胶标准品，染色后比较目的条带与标准品的亮度，计算PCR产量，除以模板量得出扩增倍数，以此计算PCR过程中的d值(计算公式：2d＝PCR产量/初始模板量)。本发明的TEVP随机突变PCR最后的d值＝7.5，对应的突变频率约为9个突变/kb(参考说明书)，符合预期要求。PCR产物用酚氯仿抽提纯化，然后用Xho1和BamH1进行双酶切，利用琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒回收酶切产物，-20℃保存。
10ng)，PCR扩增条件：95℃预变性3min；95℃，30s；60℃，30s；72℃，50s，共32个循环，最后72℃延伸10min。PCR结束后，取5ul产物跑1％琼脂糖凝胶电泳检测，分子量标准用试剂盒里的
1.1-kb凝胶标准品，染色后比较目的条带与标准品的亮度，计算PCR产量，除以模板量得出扩增倍数，以此计算PCR过程中的d值(计算公式：2d＝PCR产量/初始模板量)。本发明的TEVP随机突变PCR最后的d值＝7.5，对应的突变频率约为9个突变/kb(参考说明书)，符合预期要求。PCR产物用酚氯仿抽提纯化，然后用Xho1和BamH1进行双酶切，利用琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒回收酶切产物，-20℃保存。
[0117] 1.2.2线性化载体的制备
[0118] 在线性化噬菌粒载体pHEN1(购自BioVector NTCC质粒载体菌种细胞基因保藏中心，货号Biovector786623)之前，先对它进行改造。首先，要将一个Avi tag序列GLNDIFEAQKIEWHE插入到信号肽下游，如此产生的融合蛋白能被生物素化，进而被链霉亲合素磁珠固定。PCR扩增Avi标签的模板用pET28b-PD1-Avi(在南京金斯瑞合成，基因结构为Nco1-PD1基因-Not1-BamHI-GGGS接头-avi标签-Xho1，PD1基因的Genebank登录号NM_005018，质粒图谱见图7)，PCR引物如下：
[0119] Avi-F:5-ACTCCATGGCCGGTCTGAATGATATTTTTGAAGC-3
[0120] Avi-R:5-AATCTCGAGCTCGTGCCACTCGATTTTCTG-3
[0121] 产物经过酚氯仿纯化，用Nco1和Xho1进行双酶切，胶回收后与同样酶切过的pHEN1载体连接 ，得到pHEN1-Avi。然后，将一段包含sTEV(核苷酸序列为：GAAAATCTGTATTTTCAGAGC，氨基酸序列ENLYFQS)与人ACTH基因的串联序列插入到Avi tag后面(克隆位点Xho1+Not1)，PCR扩增sTEV-ACTH串联序列的模板为pET28b-ACTH(在南京金斯瑞合成，质粒图谱见图8，氨基酸序列见SEQ ID NO.2；核苷酸序列见SEQ ID NO.13)，PCR引物如下：
[0122] ACTH-F:
[0123] AATCTCGAGGGATCTGGATCCGGAGGTGGCGGTAGCGAAAATCTGTATTTTCAGAGCTATAGCATGGAAC-3
[0124] ACTH-R:5-AATGCGGCCGCAAATTCCAGCGGAAATGC-3
[0125] 引物上游额外引入BamH1位点，PCR产物经过酚氯仿纯化，用Not1和Xho1进行双酶切，然后与同样酶切的pHEN1-Avi载体连接，得到pHEN1–Avi–sTEV-ACTH。载体线性化：用Xho1和BamH1进行双酶切pHEN1-Avi-sTEV-ACTH，胶回收酶切产物中的大片段，-20℃保存。
[0126] 1.2.3连接及连接产物的回收处理
[0127] 对酶切回收的载体(pHEN1-Avi-sTEV-ACTH)与插入片段(随机突变的TEVP基因)按1∶3，1∶5，1∶10进行连接，具体过程：先准备载体pHEN1-Avi-sTEV-ACTH(见1.2.2线性化载体的制备)，再准备插入片段(见1.2.1随机突变PCR制备TEVP DNA片段)，二者通过T4DNA连接酶(Thermo Fisher Scientific)连接，得到pHEN1-Avi-TEVp-sTEV-ACTH。连接体系参考说明书，以20ul反应体系为例：在PCR管中依次加入线性化的载体150ng，对应量的插入片段(与载体的摩尔比为1:3或1:5或1:10)，10×T4DNA Ligase buffer 2ul，T4DNA Ligase
1ul，最后用ddH2O补足体积至20ul。通过计算转化产生的克隆数，确定最佳连接比例为1∶5。
质粒图谱见图9。确定最佳连接比例为1∶5。用不同浓度的连接产物进行转化以确定最佳转化产物量为0.2μg(10μl)。连接产物经过酚氯仿抽提法纯化，除去蛋白和盐离子，溶于ddH2O中。
1ul，最后用ddH2O补足体积至20ul。通过计算转化产生的克隆数，确定最佳连接比例为1∶5。
质粒图谱见图9。确定最佳连接比例为1∶5。用不同浓度的连接产物进行转化以确定最佳转化产物量为0.2μg(10μl)。连接产物经过酚氯仿抽提法纯化，除去蛋白和盐离子，溶于ddH2O中。
[0128] 1.2.4电转化
[0129] 连接产物通过电穿孔法，转到宿主菌TG1中。电转化感受态细胞的制备方法依照分子克隆实验指南(第三版)。取10μl连接产物与200μl电转感受态细胞轻柔混匀，冰浴2min，转入预冷的孔隙为0.2cm的电转杯，进行电转。电转仪(Bio-Rad Gene-Pulser)参数为2.5KV，25μF，200Ω。电击后，立即加入1mlSOC培养基，吸出后再用1ml SOC培养基漂洗电击杯2次，合并3ml菌液，于37℃，200rpm振摇45～60min。将菌液梯度稀释：10-2，10-3,10-4，每个梯度取100ul菌体涂布SOC(含25μg/ml羧苄青霉素)小平板，其余5000xg离心5min收集菌体，重悬后涂布SOC(含25μg/ml羧苄青霉素)方形大平板(25x25cm)，37℃倒置培养12～16h，以小平板进行计数，大平板上的菌落用2YT培养基冲洗，轻轻用涂布棒均匀刮下来，加甘油至终浓度50％，分装成小管，-80℃冻存。文库容量计算方法：容量板上的克隆数*稀释倍数*稀释前菌液总体积。重复多次电转，直到文库容量达到1x109以上。
[0130] 1.2.5序列测定及分析
[0131] 随机挑取若干原始细菌克隆，通过做菌落PCR对重组质粒进行验证，PCR验证引物：
[0132] 上游引物:5-CCACCATGGCCGGTCTGAATGATATTTTTGAAGC-3
[0133] 下游引物：5-TTGTTCTGCGGCCGCAAATTCCAGC-3
[0134] PCR阳性的重组质粒，将其送去测序(金斯瑞生物科技有限公司)，并对构建的文库的随机性、库容及丰度进行评价。
[0135] 1.2.6文库的库容及多样性评价
[0136] 载体与插入片段摩尔比为1∶5，取10μl的连接产物进行电转，转化效率为9x108cfu/μg DNA。将多次转化合并后，库容为2.02x109，满足用于筛选的需要。从肽库中随机挑取20个克隆，进行序列测定。结果显示(表1)，整体突变频率为中低程度(1.5～7个/kb)。实际值与理论值存在一定的偏差，可能原因一是同义突变未统计，二是由于样本较小的缘故，随着测序样本的增加，这种差异将逐渐减小。上述结果表明，所构建的TEVP随机噬菌体文库不论从基本框架，还是从库容及多样性方面均满足设计要求。
[0137] 表1随机挑选克隆氨基酸突变的分布
[0138]
[0139]
[0140] 2.从TEVP随机突变噬菌体文库中筛选目标克隆
[0141] 2.1实验材料
[0142] HRP－M13抗体购自北京义翘神州公司，96孔酶标板和ELISA试剂购自上海生工。链霉亲合素磁珠购自NEB。D-biotin，IPTG等试剂均购自上海生工。
[0143] 2.2噬菌体文库培养
[0144] 取至少一个文库容量的菌加到含2xYT-CG(2xYT+100微克/毫升羧苄青霉素及2％葡萄糖)的2L锥形瓶中，使初始OD600值＝0.1左右，于37℃，200rpm振摇，直到OD600达到0.5左右，加入辅助噬菌体M130K07(购自北京宝科食为安公司))侵染(MOI＝20)，在100转/分的缓慢转动中继续37℃培养一小时。随后，离心收菌(2000xg离心20分钟)，尽量去除并丢弃上清液,菌体重新用1L 2xYT-CK(2xYT+100微克/毫升羧苄青霉素和50微克/毫升卡那霉素+200uM D-biotin)重悬，在25℃中用250转/分钟培养过夜。第二天，收获并纯化包装的噬菌体。把细胞培养物转移到一个750毫升离心瓶中并在冰中稍微冷却，用大型台式离心机以
4500转/分钟在4℃离心30分钟，如果上清液是混浊的,把它转入另一个干净瓶子里并重复这一步骤。把上层80％的上清液(不要搅动细胞沉定物)转入到另一个新的750毫升离心瓶里,加1/6体积的PEG/NaCl溶液(20％[w/v]PEG-8000，2.5MNaCl)，混合,然后在冰中静止至少两小时，在4℃下用4500转/分钟离心30分钟，小心地去除所有的上清液，加10毫升PBS,用移液器重新溶解沉淀物，然后转入2ml Ep管中。4℃下用15000xg离心20分钟,以去掉残留的菌体或碎片。小心吸取上清液到新的Ep管，加入于加1/6体积的PEG/NaCl溶液，在冰中放置1小时再次沉淀噬菌体，然后4℃下15000xg离心20分钟收集噬菌体沉淀，小心吸去并丢弃所有的上清液。随后，用适量PBS重新溶解噬菌体沉淀，彻底溶解后，4℃下15000xg离心10分钟以去掉剩余的不溶杂质。把上清液分装到新的EP管子里，同时加入50％甘油，放-80℃长期保存。
4500转/分钟在4℃离心30分钟，如果上清液是混浊的,把它转入另一个干净瓶子里并重复这一步骤。把上层80％的上清液(不要搅动细胞沉定物)转入到另一个新的750毫升离心瓶里,加1/6体积的PEG/NaCl溶液(20％[w/v]PEG-8000，2.5MNaCl)，混合,然后在冰中静止至少两小时，在4℃下用4500转/分钟离心30分钟，小心地去除所有的上清液，加10毫升PBS,用移液器重新溶解沉淀物，然后转入2ml Ep管中。4℃下用15000xg离心20分钟,以去掉残留的菌体或碎片。小心吸取上清液到新的Ep管，加入于加1/6体积的PEG/NaCl溶液，在冰中放置1小时再次沉淀噬菌体，然后4℃下15000xg离心20分钟收集噬菌体沉淀，小心吸去并丢弃所有的上清液。随后，用适量PBS重新溶解噬菌体沉淀，彻底溶解后，4℃下15000xg离心10分钟以去掉剩余的不溶杂质。把上清液分装到新的EP管子里，同时加入50％甘油，放-80℃长期保存。
[0145] 2.3测定文库滴度
[0146] 参考Carol M Y Lee等(M Y Lee,Carol&Iorno,Niccoló&Sierro,Frederic&Christ,Daniel.(2007).Selection of human antibody fragments by phage display.Nature protocols.2.3001-8.10.1038/nprot.2007.448.)的方法，用2×YT梯度稀释噬菌体文库，取10-9，10-10，10-11的稀释液各10ul，加入到已经培养到对数期的新鲜TG1菌液200ul，混匀，37℃温育30min，全部涂含2×YT-CG平板。30℃温箱培养过夜，次日计单菌落数，计算滴度。
[0147] 2.4文库淘选
[0148] 本发明淘选TEVP变体的原理：Avi tag是一个由15个氨基酸残基组成的短肽标签(GLNDIFEAQKIEWHE)，在体内或体外都能被生物素连接酶在赖氨酸残基连接上一个生物素，从而实现蛋白的生物素化，而生物素化的蛋白可以专一地被链霉亲和素结合，基于这两个反应，本发明中的TEVp噬菌体可在体内被生物素化，生物素化的噬菌体文库可用链霉亲和素磁珠固定。理想条件下，胞内有酶切活性的TEVP变体会在表达过程中自我酶切，导致最终组装的噬菌体PⅢ蛋白末端只有ACTH，无Avi tag，无法被磁珠捕获；而在细胞内表达时无酶切活性的TEVP变体在表达过程中不发生自我酶切，最终组装的噬菌体PⅢ蛋白N端是Avi-TEVP-sTEV-ACTH，N端的Avi tag被生物素化，可被含有streptavidin磁珠捕获。被磁珠捕获的噬菌体置于中高浓度尿素中孵育，本来在生理条件下不溶解的TEVP变种，在此条件下能溶解并恢复活性，进行酶切，在此条件下发生酶切的噬菌体会因自我切割从磁珠上掉下来，进入溶液。收集该溶液即获得初始目的噬菌体，经扩增后就可进入下一轮筛选。经过数轮的筛选，体内酶切活性弱同时在体外变性条件下有酶切活性的TEV蛋白酶变种会被富集。通过基因测序分析，得到富集的序列，克隆到表达载体即可逐一验证。各轮的淘选情况如下表2所示。
[0149] 表2.各轮淘选数据
[0150]
[0151] 噬菌体淘选具体流程如下：
[0152] (1)噬菌体固定：在一个干净的2ml EP管中，将100倍文库容量的噬菌体稀释到TBST缓冲液(50mM Tris-HCl PH7.5，150mM NaCl，0.1％[v/v]Tween-20)，加入适量链霉亲和素磁珠混合，4℃旋转孵育20min，用磁铁沉淀磁珠，然后用TBST清洗磁珠5次，去掉未结合的噬菌体。
[0153] (2)酶切筛选：在磁珠中加入含3M尿素的TBS缓冲液，室温孵育1-2h，用磁铁沉淀磁珠，尽量收集全部上清。
[0154] (3)噬菌体扩增：将洗脱下来的噬菌体加入50ml OD600＝0.5的TG1宿主菌中，37℃缓慢摇晃1小时，加入100微克/毫升羧苄青霉素及2％葡萄糖，继续培养2小时，加入辅助噬菌体(M130K07(购自北京宝科食为安公司))侵染(MOI＝20)，低转速继续37℃培养1小时。随后离心收菌，尽量去除并丢弃上清液,菌体重新用100ml 2xYT-CK(2xYT+100微克/毫升羧苄青霉素和50微克/毫升卡那霉素+200uM D-biotin)重悬，在25℃中用250转/分钟培养过夜。第二天，收获及纯化包装好的噬菌体。将培养物转入干净的50ml离心管中，4℃13,000g离心
20min。将上清的上部80％转入新鲜离心管中，加入1/6体积的PEG/NaCl溶液，4℃沉淀1小时以上。然后再次离心收集沉淀，加适量PBS重悬噬菌体沉淀，再离心一次去除细菌碎片等杂质，收集上清，加入1/6体积的PEG/NaCl溶液，冰上静置1小时，然后再次离心收集沉淀，将其溶于适量PBS，随后13,000g离心10分钟，去除不溶解的杂质，将上清转移至另一新鲜Ep管中，即为扩增后的洗脱物。
20min。将上清的上部80％转入新鲜离心管中，加入1/6体积的PEG/NaCl溶液，4℃沉淀1小时以上。然后再次离心收集沉淀，加适量PBS重悬噬菌体沉淀，再离心一次去除细菌碎片等杂质，收集上清，加入1/6体积的PEG/NaCl溶液，冰上静置1小时，然后再次离心收集沉淀，将其溶于适量PBS，随后13,000g离心10分钟，去除不溶解的杂质，将上清转移至另一新鲜Ep管中，即为扩增后的洗脱物。
[0155] (4)取出1μl纯化好的噬菌体用于滴度测定，其他用来进行下一轮淘选或保存。
[0156] (5)测序分析筛选序列富集情况：3轮淘选后，将最后一轮洗脱下来的噬菌体感染宿主菌后铺在2xYT-CG板上，30℃培养过夜。次日挑取单克隆菌落，先进行菌落PCR鉴定是否属于文库序列，阳性克隆再送测序分析。通过分析测序结果，统计突变位点出现的频率，最终挑选出其中最佳的7个突变体，作为候选克隆。
[0157] 3.候选克隆表征
[0158] 上述7个候选序列经酶切(Nco1/Not1)克隆到表达载体pET28b(购自Novagen)，并转入Rosetta2(DE3)(购自湖南优宝生物)表达。表达条件：在LB培养基中，37℃培养，至OD600＝0.6左右。诱导条件：37℃下250rpm摇，2mMIPTG，诱导4小时。菌处理：离心收菌，重悬后用超声波破碎，离心收集包涵体沉淀，洗涤包涵体，最后用8M尿素(50mM Tris-HCl,1mM EDTA,2mMDTT,8M尿素,pH8.0)溶解包涵体。
[0159] 包涵体蛋白稀释及酶切测试：用TEVP酶切缓冲液(50mM Tris-HCl,1mMEDTA,2mM DTT,pH8.0)稀释各候选克隆的包涵体蛋白，使尿素终浓度为3M或4M，然后在25℃酶切过夜。次日，跑SDS-PAGE胶检测酶切情况。蛋白电泳条带用Image J软件处理，计算条带灰度值。
[0160] 酶切条件优化：通过上面的酶切试验得到的阳性克隆，要进一步测试在不同条件下的酶切效率，这些条件包括：不同尿素浓度，不同温度，不同盐酸胍浓度，反应液中DTT及EDTA浓度。
[0161] 本发明通过上述筛选，最终获取体内酶切活性弱但是体外活性正常的突变体3个。测试结果见图1、2、3、4A-B。
[0162] 具体过程：将各个已溶解到8M尿素缓冲液中的TEV蛋白酶变体-ACTH融合蛋白分别以1:10比例加到稀释液中，稀释液为含不同浓度的尿素的50mM Tris-HCl pH8.0，1mM EDTA，2mMDTT。对于尿素终浓度4M时，稀释液为3.56M Urea，50mM Tris-HCl pH8.0，1mM EDTA，2mMDTT。每个样品混匀后立即等分到两支EP管中，一支立即加入5×SDS-上样缓冲液，100℃煮样5min，此为酶切0h的样品。另一支放25℃自我酶切16h，然后加入5×SDS-上样缓冲液，100℃煮样5min，此为酶切16h的样品。随后，跑SDS-PAGE变性胶检测各个变体的酶切
0h、16h的样品。电泳结束后，凝胶经过考马斯亮蓝染色，脱色，拍照。图片用Image J软件处理，计算电泳条带灰度值。计算方法如下：
0h、16h的样品。电泳结束后，凝胶经过考马斯亮蓝染色，脱色，拍照。图片用Image J软件处理，计算电泳条带灰度值。计算方法如下：
[0163] 体内酶切活性＝1-酶切前融合蛋白条带灰度值/(酶切前融合蛋白条带灰度值+Avi-TEVP条带灰度值x融合蛋白分子量/Avi-TEVP分子量)。
[0164] 体外酶切效率＝1-酶切后融合蛋白的条带灰度值/酶切前融合蛋白的条带灰度值。
[0165] 如表3所示，4D，12D和32C蛋白酶变种体内酶切活性显著下降，体外4M尿素中切割效率都在30％以上。本发明制备ACTH多肽所用的TEV蛋白酶变种为表3中任一种。本发明筛选到的TEV蛋白酶变种可用于其他重组多肽和蛋白的制备。
[0166] 表3：几种蛋白酶变种与ACTH的融合蛋白产量(计算方法：将融合蛋白样品与BSA标准品一起跑SDS-PAGE变性凝胶，跑胶结束后放入考马斯亮蓝染色液染色，然后转入脱色液中脱去背景，拍照。比较图片中BSA标准品条带的灰度值和样品灰度值即可估算样品的浓度，进而计算出融合蛋白浓度和产量)、体内活性及在体外对4M尿素的耐受能力(以S219V为对照)，基于蛋白条带灰度值比较。数据为3个不同批次表达的TEVP变体的融合蛋白的产量和体内、外酶切比例统计结果。
[0167]
[0168] 注：此处的融合蛋白产量是指未发生酶切的融合蛋白，体内已酶切的部分因无利用价值故不计算进去。S219V为野生型TEVP的第219个氨基酸由丝氨酸(S)突变为缬氨酸(V)；
[0169] 4D：为S219V的第111位氨基酸由亮氨酸(L)突变为苯丙氨酸(F)，第138位氨基酸由异亮氨酸(I)突变为赖氨酸(K)；
[0170] 12D：S219V的第28位氨基酸由组氨酸(H)突变为亮氨酸(L)，第111位氨基酸由亮氨酸(L)突变为苯丙氨酸(F)，第196位氨基酸由谷氨酸(Q)突变为组氨酸(H)；
[0171] 32C：为S219V的第111位氨基酸由亮氨酸(L)突变为组氨酸(H)，第135位氨基酸由丝氨酸(S)突变为甘氨酸(G)；第187位氨基酸由蛋氨酸(M)突变为异亮氨酸(I)。
[0172] 图1表明TEVp突变体12D在4M尿素溶液中酶切效率最高；图2表明TEVp突变体4D在4M尿素中酶切效率最高；图3表明TEVp突变体32C在4M尿素中酶切效率最高；图4A和图4B表明TEVp变体4D在4M尿素、25℃条件下的酶切效率最高。当尿素浓度超出4M时，各种突变体的酶切效率逐渐下降。
[0173] 图5表明本发明筛选到的TEVp突变体4D、12D和32C的体内酶切活性显著低于S219V对照(根据0小时的条带比较)，体外酶切活性略小于或等于S219V。
[0174] 图6表明各TEVp突变体的融合蛋白在0.5M尿素中的溶解度都较低(稀释后的上清中只有少量蛋白，大部分都在稀释后的沉淀中)，证明了TEVP突变体融合蛋白在稀释到0.5M尿素后以沉淀形式存在。
[0175] 本发明制备ACTH多肽所用的TEV蛋白酶突变体为表1中任一种。本发明筛选到的TEV蛋白酶突变体可用于其他重组多肽和蛋白的制备。
[0176] 实施例2：以TEVP-ACTH融合蛋白制备ACTH多肽
[0177] 1.TEVP-ACTH融合蛋白表达载体构建
[0178] 在实施例1中，融合蛋白酶切释放的ACTH的羧基端带有His标签，在实际生产中要求去掉该标签。因此，需要通过PCR在ACTH基因下游引入终止密码子。具体过程是：以在实施例1步骤3中效果最佳的带TEV蛋白酶变体12D的质粒为模板，通过PCR将该载体开放阅读框中的Avi-TEVP-sTEV-ACTH区域一起扩增出来的(TEVP变体12D序列SEQ ID NO.5，ACTH基因序列SEQ IDNO.13)。用KOD-plus DNA高保真聚合酶(东洋纺)进行扩增，扩增程序为：95℃预变性2min，98℃变性10s，60℃退火30s，68℃延伸1min 12s，扩增30个循环)，基因下游引入终止密码子。引物如下：
[0179] TEV-ACTH-F:5-CCACCATGGCCGGTCTGAATGATATTTTTGAAGC-3
[0180] TEV-ACTH-R:5-
[0181] AGAGCGGCCGCTTATTAAAATTCCAGCGGAAATGCTTCTGC-3
[0182] 其中下划线部分别为酶切位点Nco1和Not1。PCR产物和载体pET-28b(Novagen)用Nco1和Not1在37℃酶切3h之后，胶回收酶切片段，然后用T4DNA连接酶在20℃连接2h。将连接产物转化进入DH5α感受态细胞，然后将转化产物涂布在卡那霉素抗性(50μg/ml)LB平板上培养直至单菌落长出，挑取单菌落，提取质粒进行酶切验证，将重组质粒送金斯瑞测序，得到质粒pET-28b-Avi-TEVP-sTEV-ACTH(其中的sTEV序列在TEVP-ACTH质粒中)。
[0183] 2.TEVP-ACTH融合蛋白的诱导表达、纯化、酶切及验证
[0184] 将构建的表达载体转化。具体过程：取50ng质粒pET-28b-TEVP-sTEV-ACTH加到相应的化学感受态细胞Rosetta2(DE3)中，冰浴30分钟，42℃热激45秒，冰浴2分钟，加入1毫升无抗生素的LB培养基，37℃培养1小时，取100ul菌液涂布在含卡那霉素(50μg/ml)+氯霉素(34μg/ml)的LB平板上，37℃培养直至单菌落长出。
[0185] TEVP-ACTH融合蛋白的诱导表达：挑取单菌落于含卡那霉素(50μg/ml)和氯霉素(34μg/ml)的LB液体培养基中培养至OD600＝0.5～0.8。将培养物以体积比1:50的比例接种于LB液体培养基，37℃剧烈震荡培养至OD600＝0.5～0.8，加入终浓度为2mM的IPTG于37℃诱导4h。在表达过程中，TEVP-ACTH融合蛋白以不可溶的包涵体存在。发酵完成后，收集菌体超声破碎后，经洗涤缓冲液(组成：50mM Tris-HCl，200mM NaCl，10mM EDTA，10mMβ-Mercaptoethanol，0.5％Triton X-100)多次洗涤后，得到TEVP-ACTH融合蛋白粗提物，加入含变性剂盐酸胍或尿素(组成：50mM Tris-HCl pH8.0，1mMEDTA，2mMDTT，8M Urea或6M GuHCl)的缓冲液溶解TEVP-ACTH融合蛋白，制备成变性溶液。
[0186] 将融合蛋白变性溶液用TEVP酶切缓冲液(3.556M Urea，50mM Tris-HCl,1mM EDTA,2mM DTT,pH8.0)稀释十倍，使尿素终浓度为4M，放25℃自我酶切过夜，酶切产物经过8倍稀释(稀释液为50mM Tris-HCl pH8.0)后，TEV蛋白酶和未酶切的融合蛋白因溶解性差，会沉淀出来(见图6)，而ACTH多肽可以溶解到溶液中，因此经4℃，13000g低温高速离心30分钟后收集上清液，即获得ACTH原液。
[0187] 3.ACTH的纯化与保存
[0188] ACTH原液用0.22um滤膜过滤杂质，用1k的超滤离心管(Millipore)超滤浓缩同时脱盐，然后用50％硫酸铵沉淀，ACTH会形成悬浮物在溶液上层，小心收集，用PBS溶解，超滤浓缩脱盐，即可获得高纯度的重组人源或猪源ACTH溶液，再经冻干后保存。
[0189] 4.ACTH的结构鉴定
[0190] 采用质谱仪测定纯化后的ACTH的分子量，测定的分子量值与理论值一致。结果见图10。
[0191] 5.ACTH的活性测定
[0192] 取健康2周龄的SD大鼠，用1％戊巴比妥钠(40mg/kg)麻醉，在无菌条件下取出肾上腺，去除被摸和髓质，放入Hanks平衡盐溶液中，剪成1mm3大小的碎块，转入含Ⅰ型胶原酶和DNA酶的消化液中消化1小时，间隔5分钟振摇混匀，用吸管吹吸数次机械离散细胞形成悬液，用细胞筛过滤到50ml离心管中，1000xg离心10分钟，小心吸掉上清，沉淀的细胞用Hanks液洗涤2次，最后用含20％胎牛血清的DMEM/F12培养基(Gibco)重悬，调整浓度为2x105个/ml，接种到90mm培养皿，在37℃、5％CO2条件下培养。倒置相差显微镜下观察肾上腺细胞的生长过程及其形态变化,培养48小时后，在显微镜下可见肾上腺细胞贴壁生长，细胞体积增大，胞体呈圆形或多角形，胞体大，胞浆透亮，胞浆内有许多大小较为规则的颗粒，从而获得大鼠肾上腺皮质细胞。
[0193] 将纯化后的ACTH与离体的大鼠肾上腺皮质细胞孵育。具体地，分别在各组肾上腺细胞中加入不同浓度(0.1μU、0.2μU、2μU、20μU、200μU，1U＝10μg蛋白)的ACTH(细胞与ACTH的体积比400:1)，37℃孵育24小时后取培养液，离心去掉细胞碎片后用酶联免疫分析法测定其中皮质酮浓度(酶联免疫分析法可以参见何上进等"PCNA在大鼠肾上腺细胞培养中的表达及其意义."临床泌尿外科杂志21.8(2006):625-626.)，结果显示随着ACTH浓度的增加，皮质酮浓度也逐步增加。ACTH刺激细胞分泌甾体类激素，通过测定生成的皮质酮的浓度来定量ACTH的活性(ELISA法)。结果显示，纯化后的多个批次的ACTH具有很高的生物活性和活性稳定性。结果见图11。
[0194] 以上所述，仅是本发明的较佳实施例而已，并非对本发明做任何形式上的限制，故凡未脱离本发明技术方案的内容，依据本发明的技术实质对以上实施例所做的任何简单修改、等同变化与修饰，均仍属于本发明技术方案的范围内。
[0196] SEQ ID NO.1(野生型TEVP)
[0197] GESLFKGPRDYNPISSTICHLTNESDGHTTSLYGIGFGPFIITNKHLFRRNNGTLLVQSLHGVFKVKNTTTLQQHLIDGRDMIIIRMPKDFPPFPQKLKFREPQREERICLVTTNFQTKSMSSMVSDTSCTFPSSDGIFWKHWIQTKDGQCGSPLVSTRDGFIVGIHSASNFTNTNNYFTSVPKNFMELLTNQEAQQWVSGWGLNADSVLWGGHKVFMSKPEEPFQPVKEATQLMNELVYSQ
[0198] SEQ ID NO.2(人ACTH氨基酸序列)
[0199] SYSMEHFRWGKPVGKKRRPVKVYPNGAEDESAEAFPLEF
[0200] >SEQ ID NO.3：TEVP(219V)核苷酸序列
[0201] GGAGAAAGCTTGTTTAAGGGACCACGTGATTACAACCCGATATCGAGCACCATTTGTCATTTGACGAATGAATCTGATGGGCACACAACATCGTTGTATGGTATTGGATTTGGTCCCTTCATCATTACAAACAAGCACTTGTTTAGAAGAAATAATGGAACACTGTTGGTCCAATCACTACATGGTGTATTCAAGGTCAAGAACACCACGACTTTGCAACAACACCTCATTGATGGGAGGGACATGATAATTATTCGCATGCCTAAGGATTTCCCACCATTTCCTCAAAAGCTGAAATTTAGAGAGCCACAAAGGGAAGAGCGCATATGTCTTGTGACAACCAACTTCCAAACTAAGAGCATGTCTAGCATGGTGTCAGACACTAGTTGCACATTCCCTTCATCTGATGGCATATTCTGGAAGCATTGGATTCAAACCAAGGATGGGCAGTGTGGCAGTCCATTAGTATCAACTAGAGATGGGTTCATTGTTGGTATACACTCAGCATCGAATTTCACCAACACAAACAATTATTTCACAAGCGTGCCGAAAAACTTCATGGAATTGTTGACAAATCAGGAGGCGCAGCAGTGGGTTAGTGGTTGGGGATTAAATGCTGACTCAGTATTGTGGGGGGGCCATAAAGTTTTCATGGTTAAACCTGAAGAGCCTTTTCAGCCAGTTAAGGAAGCGACTCAACTCATGAATGAATTGGTGTACTCGCAA
[0202] SEQ ID NO.4(4D TEVP)
[0203] GESLFKGPRDYNPISSTICHLTNESDGHTTSLYGIGFGPFIITNKHLFRRNNGTLLVQSLHGVFKVKNTTTLQQHLIDGRDMIIIRMPKDFPPFPQKLKFREPQREERICFVTTNFQTKSMSSMVSDTSCTFPSSDGKFWKHWIQTKDGQCGSPLVSTRDGFIVGIHSASNFTNTNNYFTSVPKNFMELLTNQEAQQWVSGWGLNADSVLWGGHKVFMVKPEEPFQPVKEATQLMNELVYSQ
[0204] SEQ ID NO.5(12D TEVP)
[0205] GESLFKGPRDYNPISSTICHLTNESDGLTTSLYGIGFGPFIITNKHLFRRNNGTLLVQSLHGVFKVKNTTTLQQHLIDGRDMIIIRMPKDFPPFPQKLKFREPQREERICFVTTNFQTKSMSSMVSDTSCTFPSSDGIFWKHWIQTKDGQCGSPLVSTRDGFIVGIHSASNFTNTNNYFTSVPKNFMELLTNQEAHQWVSGWGLNADSVLWGGHKVFMVKPEEPFQPVKEATQLMNELVYSQ
[0206] SEQ ID NO.6(32C TEVP)
[0207] GESLFKGPRDYNPISSTICHLTNESDGHTTSLYGIGFGPFIITNKHLFRRNNGTLLVQSLHGVFKVKNTTTLQQHLIDGRDMIIIRMPKDFPPFPQKLKFREPQREERICHVTTNFQTKSMSSMVSDTSCTFPSGDGIFWKHWIQTKDGQCGSPLVSTRDGFIVGIHSASNFTNTNNYFTSVPKNFIELLTNQEAQQWVSGWGLNADSVLWGGHKVFMVKPEEPFQPVKEATQLMNELVYSQ
[0208] SEQ ID NO.7
[0209] ENLYFQS
[0210] SEQ ID NO.8
[0211] ENLYFQH
[0212] SEQ ID NO.9
[0213] EXXYXQ(G/S)
[0214] SEQ ID NO.10(S219V)
[0215] GESLFKGPRDYNPISSTICHLTNESDGHTTSLYGIGFGPFIITNKHLFRRNNGTLLVQSLHGVFKVKNTTTLQQHLIDGRDMIIIRMPKDFPPFPQKLKFREPQREERICLVTTNFQTKSMSSMVSDTSCTFPSSDGIFWKHWIQTKDGQCGSPLVSTRDGFIVGIHSASNFTNTNNYFTSVPKNFMELLTNQEAQQWVSGWGLNADSVLWGGHKVFMVKPEEPFQPVKEATQLMNELVYSQ
[0216] SEQ ID NO.11:EXXYXQS
[0217] SEQ ID NO.12：sTEV(实施例中使用的TEVp酶切位点的核苷酸序列)
[0218] GAAAATCTGTATTTTCAGAGC
[0219] SEQ ID NO.13:ACTH DNA核苷酸序列
[0220] AGCTATAGCATGGAACATTTTCGTTGGGGTAAACCGGTTGGTAAAAAACGTCGTCCGGTTAAAGTTTATCCGAATGGTGCAGAAGATGAATCGGCAGAAGCATTTCCGCTGGAATTT
[0221] SEQ ID NO.14:TEV(4D)
[0222] GGAGAAAGCTTGTTTAAGGGACCACGTGATTACAACCCGATATCGAGCACCATTTGTCATTTGACGAATGAATCTGATGGGCACACAACATCGTTGTATGGTATTGGATTTGGTCCCTTCATCATTACAAACAAGCACTTGTTTAGAAGAAATAATGGAACACTGTTGGTCCAATCACTACATGGTGTATTCAAGGTCAAGAACACCACGACTTTGCAACAACACCTCATTGATGGGAGGGACATGATAATTATTCGCATGCCTAAGGATTTCCCACCATTTCCTCAAAAGCTGAAATTTAGAGAGCCACAAAGGGAAGAGCGCATATGTTTTGTGACAACCAACTTCCAAACTAAGAGCATGTCTAGCATGGTGTCAGACACTAGTTGCACATTCCCCTCATCTGATGGCAAATTCTGGAAGCATTGGATTCAAACCAAGGATGGGCAGTGTGGCAGTCCATTAGTATCAACTAGAGATGGGTTCATTGTTGGTATACACTCAGCATCGAATTTCACCAACACAAACAATTATTTCACAAGCGTGCCGAAAAACTTCATGGAATTGTTGACAAATCAGGAGGCGCAGCAGTGGGTTAGTGGTTGGGGATTAAATGCTGACTCAGTATTGTGGGGGGGCCATAAAGTTTTCATGGTTAAACCTGAAGAGCCTTTTCAGCCAGTTAAGGAAGCGACTCAACTCATGAATGAATTGGTGTACTCGCAA
[0223] SEQ ID NO.15:TEV(12D)
[0224] GGAGAAAGCTTGTTTAAGGGACCACGTGATTACAACCCGATATCGAGCACCATTTGTCATTTGACGAATGAATCTGATGGGCTCACAACATCGTTGTATGGTATTGGATTTGGTCCCTTCATCATTACAAACAAGCACTTGTTTAGAAGAAATAATGGAACACTGTTGGTCCAATCACTACATGGTGTATTCAAGGTCAAGAACACCACGACTTTGCAACAACACCTCATTGATGGGAGGGACATGATAATTATTCGCATGCCTAAGGATTTCCCACCATTTCCTCAAAAGCTGAAATTTAGAGAGCCACAAAGGGAAGAGCGCATATGTTTTGTGACAACCAACTTCCAAACTAAGAGCATGTCTAGCATGGTGTCAGACACTAGTTGCACATTCCCTTCATCTGATGGCATATTCTGGAAGCATTGGATTCAAACCAAGGATGGGCAGTGTGGCAGTCCATTAGTATCAACTAGAGATGGGTTCATTGTTGGTATACACTCAGCATCGAATTTCACCAACACAAACAATTATTTCACAAGCGTGCCGAAAAACTTCATGGAATTGTTGACAAATCAGGAGGCGCATCAGTGGGTTAGTGGTTGGGGATTAAATGCTGACTCAGTATTGTGGGGGGGCCATAAAGTTTTCATGGTTAAACCTGAAGAGCCTTTTCAGCCAGTTAAGGAAGCGACTCAACTCATGAATGAATTGGTGTACTCGCAA
[0225] SEQ ID NO.16:TEV(32C)
[0226] GGAGAAAGCTTGTTTAAGGGACCACGTGATTACAACCCGATATCGAGCACCATTTGTCATTTGACGAATGAATCTGATGGGCACACAACATCGTTGTATGGTATTGGATTTGGTCCCTTCATCATTACAAACAAGCACTTGTTTAGAAGAAATAATGGAACACTGTTGGTCCAATCACTACATGGTGTATTCAAGGTCAAGAACACCACGACTTTGCAACAACACCTCATTGATGGGAGGGACATGATAATTATTCGCATGCCTAAGGATTTCCCACCATTTCCTCAAAAGCTGAAATTTAGAGAGCCACAAAGGGAAGAGCGCATATGTCATGTGACAACCAACTTCCAAACTAAGAGCATGTCTAGCATGGTGTCAGACACTAGTTGCACATTCCCTTCAGGTGATGGCATATTCTGGAAGCATTGGATTCAAACCAAGGATGGGCAGTGTGGCAGTCCATTAGTATCAACTAGAGATGGGTTCATTGTTGGTATACACTCAGCATCGAATTTCACCAACACAAACAATTATTTCACTAGCGTGCCGAAAAACTTCATTGAATTGTTGACAAATCAGGAGGCGCAGCAGTGGGTTAGTGGTTGGGGATTAAATGCTGACTCAGTATTGTGGGGGGGCCATAAAGTTTTCATGGTTAAACCTGAAGAGCCTTTTCAGCCAGTTAAGGAAGCCACTCAACTCATGAATGAATTGGTGTACTCGCAA
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