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欧洲鹅枥的组培快繁方法

阅读:0发布:2022-04-26

专利汇可以提供欧洲鹅枥的组培快繁方法专利检索,专利查询,专利分析的服务。并且本 发明 涉及一种欧洲鹅 耳 枥的组培快繁方法,其特征是包括如下工艺:选取生长饱满的茎尖,表面消毒后接种在诱导培养基上;培养4周统计诱导率。剪取1.5~2.0cm茎段接种于增殖培养基上,60天统计增殖倍数。剪取生长健壮、长3~4cm的单苗接种于生根培养基上诱导生根。培养50天统计生根率、平均根数和平均根长。当根长到3~5cm时进行炼苗移栽,30天后,调查其移栽成活率。本发明的优点:能够诱导欧洲鹅耳枥试管苗快速增殖产生大量不定芽,成活率高达85%,为欧洲鹅耳枥的工厂化育苗提供了一条有效的途径。,下面是欧洲鹅枥的组培快繁方法专利的具体信息内容。

1.一种欧洲鹅枥的组培快繁方法,其特征是该方法包括如下工艺步骤:
1)选择生长饱满的茎尖,表面消毒后接种在含0.5~10.0mg/L 6-苄基基嘌呤的WPM基本培养基上进行不定芽诱导培养,培养基中还包含6.5g/L琼脂粉和30.0g/L蔗糖
2)待不定芽长出后,剪取1.5~ 2.0cm茎尖,在附加0.1~2.0mg/L 的6-苄基氨基嘌呤,
0.1~2.0mg/L的激动素,0~0.5mg/L 的吲哚丁酸植物激素的MS基本培养基上进行增殖培养;
3)剪取生长健壮、长3~4cm的单苗进行生根培养,WPM基本培养基大量元素减少1/2,其他元素保持不变,简称1/2WPM基本培养基;附加0~1.0 mg/L吲哚丁酸,0~1.0mg/的乙酸;培养温度为25±2℃,pH 5.8~6.0,光照12h/天,光照强度为2000 lx;
4)当单苗根长到3~5cm时,将生根试管苗的瓶口封口膜打开,在培养室散射光下进行开口炼苗,使试管苗逐渐与外界接触,在1周内将周围环境湿度保持在70%~80%,逐步提高小苗适应外界环境的能;5天后取出试管苗洗净根部的培养物质,移栽到育苗基质中生长,基质由珍珠岩、泥炭土、园土的重量比为2:2:1组成,充分混合后用多菌灵消毒。
2.根据权利要求1所述的欧洲鹅耳枥的组织培养方法,其特征是:步骤1)中的WPM基本培养基主要包含以下成分:NH4NO3 400mg/L、Ca(NO3)2·4H2O 556mg/L、CaCl2·2H2O 96mg/L、MgSO4·7H2O 370mg/L、KH2PO4 170mg/L、K2SO4 990mg/L、H3BO3 6.2mg/L、MnSO4·H2O 17.7mg/L、ZnSO4·7H2O 8.6mg/L、NaMoO4·2H2O 0.25mg/L、CuSO4·5H2O 0.25mg/L、FeSO4·7H2O
27.8mg/L、Na2-EDTA 37.3mg/L、肌醇100mg/L、甘氨酸2mg/L、烟酸0.5mg/L、盐酸硫胺素
1.0mg/L、盐酸吡哆醇0.5mg/L;步骤2)中的MS基本培养基中还包含6.0g/L琼脂粉和
30.0g/L的蔗糖;主要包含以下成分:NH4NO3 1650mg/L、KNO3 1900mg/L、MgSO4·7H2O 370mg/L、KH2PO4 170mg/L、CaCl2·2H2O 440 mg/L、KI 0.83mg/L、H3BO3 6.2mg/L、MnSO4·4H2O 22.3 mg/L、ZnSO4·7H2O 8.6mg/L、NaMoO4·2H2O 0.25mg/L、CuSO4·5H2O 0.025mg/L、CoCl2·6H2O
0.025mg/L、FeSO4·7H2O 27.8mg/L、Na2-EDTA 37.25mg/L、肌醇 100mg/L、甘氨酸2mg/L、烟酸0.5mg/L、盐酸吡哆醇0.5mg/L、盐酸硫胺素0.1 mg/L。
3.根据权利要求1所述的欧洲鹅耳枥的组织培养方法,其特征是:步骤3)中的1/2WPM基本培养基,主要包含以下成分:NH4NO3 200mg/L、Ca(NO3)2·4H2O 278mg/L、CaCl2·2H2O
48mg/L、MgSO4·7H2O 185mg/L、KH2PO4 85mg/L、K2SO4 495mg/L、H3BO3 6.2mg/L、MnSO4·H2O
17.7mg/L、ZnSO4·7H2O 8.6mg/L、NaMoO4·2H2O 0.25mg/L、CuSO4·5H2O 0.25mg/L、FeSO4·7H2O
27.8mg/L、Na2-EDTA 37.3mg/L、肌醇100mg/L、甘氨酸2mg/L、烟酸0.5mg/L、烟酸硫胺素
1.0mg/L、盐酸吡哆醇0.5mg/L;附加0~1.0 mg/L吲哚丁酸,0~1.0mg/的萘乙酸;还包含
6.5g/L琼脂粉和15.0g/L的蔗糖,PH 5.8~6.0,光照12h/d,光照强度为2000 lx;培养至60天时统计其增殖倍数、平均株高、生根率、平均根数和平均根长;当根长到3~5cm时,将生根试管苗的瓶口封口膜打开,在培养室散射光下进行开口炼苗,使试管苗逐渐与外界接触,在
1周内将周围环境湿度保持在70%~80%,逐步提高小苗适应外界环境的能力;5天后取出试管苗洗净根部的培养物质,移栽到育苗基质中生长,基质由珍珠岩、泥炭土、园土2:2:1组成,充分混合后用多菌灵消毒。

说明书全文

欧洲鹅枥的组培快繁方法

技术领域

[0001] 本发明涉及一种欧洲鹅耳枥的组培快繁方法,属于植物组织培养领域。

背景技术

[0002] 欧洲鹅耳枥(Carpinus betulus)又名西洋千金榆,落叶乔木,属于桦木科(Betulaceae)鹅耳枥属(CarpinusL.),主要分布在欧洲、伊朗、土耳其。其枝叶浓密,株型紧凑、叶型秀丽,秋色叶金黄,果穗奇特,颇为美观,是道路、城市绿地和四旁绿化的良好树种。另外,其多分枝,极耐修剪,可以通过人工整形形成各种造型,用以丰富植物景观,如在早期的英国和美国花园中常修剪成绿篱。又因其抗寒性强,抗强,适应性广,少病虫害,为我国东部沿海城市园林绿化及荒山造林的理想树种。欧洲鹅耳枥幼叶含有抗癌物质正受到越来越多的研究,其材质也相当坚硬可以制造地板、乐器车削及各种工具的手柄等,也可以制造成高质量木炭。故要加快欧洲鹅耳枥引种与应用的步伐,使之能广泛地在我国的工业、城市林业、园林绿化及荒山造林中得以推广应用,市场前景十分广阔。
[0003] 目前,欧洲鹅耳枥主要通过种子繁殖,但种子成熟后,外部会形成坚硬的外壳,影响种子的发芽率,致使发芽率较低。通过层积处理可以促进种子的发芽,但层积的时间较长,且经过层积处理种子的发芽率仍然较低。欧洲鹅耳枥扦插很难生根,黄化和烫漂、绑扎处理能提高其扦插生根率,但生根率仍然较低。欧洲鹅耳枥的组培快繁研究在过去鲜有报道,仅个别学者利用茎段和顶芽作为外植体对欧洲鹅耳枥进行离体快速繁殖获得了完整植株,但为欧洲鹅耳枥的工厂化育苗奠定了一定的理论基础,不过离工厂化育苗还有一定的差距。

发明内容

[0004] 本发明的主要目的是克服欧洲鹅耳枥组织培养过程中,不定芽难以诱导、成活率和繁殖系数低的不足,提供一种欧洲鹅耳枥的组织培养快速繁殖方法。
[0005] 本发明的技术解决方案:一种欧洲鹅耳枥的组培快繁方法,其特征是该方法包括如下工艺步骤:1)选择生长饱满的茎尖,表面消毒后接种在含0.5~10.0mg/L 6-苄基基嘌呤的WPM基本培养基上进行不定芽诱导培养,培养基中还包含6.5g/L琼脂粉和30.0g/L蔗糖
2)待不定芽长出后,剪取1.5~ 2.0cm茎尖在附加0.1~2.0mg/L 的6-苄基氨基嘌呤,
0.1~2.0mg/L的激动素,0~0.5mg/L 的吲哚丁酸植物激素MS基本培养基上进行增殖培养;
3)剪取生长健壮、长3~4cm的单苗进行生根培养,基本培养基大量元素减少1/2,其他元素保持不变,简称1/2基本培养基;附加0~1.0 mg/L吲哚丁酸,0~1.0mg/的乙酸;培养温度为25±2℃,pH 5.8~6.0,光照12h/天,光照强度为2000 lx;
4)当单苗根长到3~5cm时,将生根试管苗的瓶口封口膜打开,在培养室散射光下进行开口炼苗,使试管苗逐渐与外界接触,在1周内将周围环境湿度保持在70%~80%,逐步提高小苗适应外界环境的能力;5天后取出试管苗洗净根部的培养物质,移栽到育苗基质中生长,基质由珍珠岩、泥炭土、园土的重量比为2:2:1组成,充分混合后用多菌灵消毒。
[0006] 本发明的有益效果:解决了欧洲鹅耳枥组培过程中新芽不易启动、成活率和繁殖系数低的问题,通过培养基组分的调整,诱导了欧洲鹅耳枥产生大量不定芽和较高的生根率,移栽后成活率高达85%,提供了一种欧洲鹅耳枥的组织培养快速繁殖方法,对于欧洲鹅耳枥的工厂化育苗具有重要意义。

具体实施方式

[0007] 一种欧洲鹅耳枥的组培快繁方法,包括如下工艺步骤:1)选择生长饱满的茎尖,表面消毒后放在含0.5~10.0mg/L 6-苄基氨基嘌呤
(benzylaminopurine,简称BA)进行诱导培养,基本培养基是WPM(Woody Plant Medium,简称WPM),主要包含以下成分:NH4NO3 400mg/L、Ca(NO3)2·4H2O 556mg/L、CaCl2·2H2O 96mg/L、MgSO4·7H2O 370mg/L、KH2PO4 170mg/L、K2SO4 990mg/L、H3BO3 6.2mg/L、MnSO4·H2O 17.7mg/L、ZnSO4·7H2O 8.6mg/L、NaMoO4·2H2O 0.25mg/L、CuSO4·5H2O 0.25mg/L、FeSO4·7H2O 27.8mg/L、Na2-EDTA 37.3mg/L、肌醇100mg/L、甘氨酸2mg/L、烟酸0.5mg/L、烟酸硫胺素1.0mg/L、盐酸吡哆醇0.5mg/L;基本培养基还包含6.5g/L的琼脂粉和30.0g/L蔗糖。
[0008] 2)待不定芽诱导长出后,1.5~ 2.0cm茎尖进行增殖培养,基本培养基是MS(Murashige and Skoog,简称MS);附加0.1~2.0mg/L 的6-苄基氨基嘌 呤(benzylaminopurine,简称BA),0.1~2.0mg/L的激动素(kinetin,简称KT),0~0.5mg/L 的吲哚丁酸(indole butyric acid,简称IBA)植物激素;还包含6.0g/L的琼脂粉和30.0g/L的蔗糖;主要包含以下成分::NH4NO3 1650mg/L、KNO3 1900mg/L、MgSO4·7H2O 370mg/L、KH2PO4 170mg/L、CaCl2·2H2O 440 mg/L、KI 0.83mg/L、H3BO3 6.2mg/L、MnSO4·4H2O 22.3 mg/L、ZnSO4·7H2O 8.6mg/L、NaMoO4·2H2O 0.25mg/L、CuSO4·5H2O 0.025mg/L、CoCl2·6H2O0.025mg/L、FeSO4·7H2O 27.8mg/L、Na2-EDTA 37.25mg/L、肌醇 100mg/L、甘氨酸2mg/L、烟酸0.5mg/L、盐酸吡哆醇0.5mg/L、盐酸硫胺素0.1 mg/L。
[0009] 3)剪取生长健壮、长3~4cm的单苗进行生根培养,基本培养基为1/2WPM(WPM培养基大量元素减少1/2,其他元素保持不变,简称1/2WPM)培养基,主要包含以下成分:NH4NO3200mg/L、Ca(NO3)2·4H2O 278mg/L、CaCl2·2H2O 48mg/L、MgSO4·7H2O 185mg/L、KH2PO4 85mg/L、K2SO4 495mg/L、H3BO3 6.2mg/L、MnSO4·H2O 17.7mg/L、ZnSO4·7H2O 8.6mg/L、NaMoO4·2H2O
0.25mg/L、CuSO4·5H2O 0.25mg/L、FeSO4·7H2O 27.8mg/L、Na2-EDTA 37.3mg/L、肌醇100mg/L、甘氨酸2mg/L、烟酸0.5mg/L、烟酸硫胺素1.0mg/L、盐酸吡哆醇0.5mg/L;附加0~1.0 mg/L吲哚丁酸(indole butyric acid,简称IBA),0~1.0mg/的萘乙酸(naphthylene acetic acid,简称NAA);还包含6.5g/L琼脂粉和15.0g/L的蔗糖,pH 5.8~6.0,光照12h/d,光照强度为2000 lx。培养至60天时统计其增殖倍数、平均株高、生根率、平均根数和平均根长。
当根长到3~5cm时,将生根试管苗的瓶口封口膜打开,在培养室散射光下进行开口炼苗,使试管苗逐渐与外界接触,在1周内将周围环境湿度保持在70%~80%,逐步提高小苗适应外界环境的能力。5d后取出试管苗洗净根部的培养物质,移栽到育苗基质中生长,基质由珍珠岩、泥炭土、园土2:2:1组成,充分混合后用多菌灵消毒。
[0010] 选取生长饱满的茎尖,表面消毒后接种在诱导培养基上;培养4周统计诱导率。剪取1.5~ 2.0cm茎段接种于增殖培养基上,60天统计增殖倍数。剪取生长健壮、长3~4cm的单苗接种于生根培养基上诱导生根。培养50天统计生根率、平均根数和平均根长。当根长到3~5cm时进行炼苗移栽,30天后,调查其移栽成活率。
[0011] 实施例1选取生长饱满的茎尖,表面消毒后接种在附加0.5mg/L BA的诱导培养基上;基本培养基为WPM,基本培养基还包含6.5g/L琼脂粉和30.0g/L的蔗糖。待不定芽长出,剪取1.5~
2.0cm茎段进行增殖,基本培养基是MS;附加的植物激素为0.1mg/L的BA、0.5mg/L的KT和
0.01mg/L的IBA;还包含6.0g/L的琼脂粉和30.0g/L的蔗糖。60天统计增殖倍数。剪取生长健壮、长3~4cm的单苗进行生根培养,基本培养基为1/2WPM;附加的植物激素为0.01mg/L的NAA、0.5mg/L的IBA;还包含6.5g/L的琼脂粉和15.0g/L的蔗糖,PH 5.8~6.0,光照12h/d,光照强度为2000 lx。60天后统计增殖倍数、平均株高、生根率、平均根数和平均根长。结果表明每个外植体平均分化2.86个不定芽,平均芽长达3.25cm;生根率达56.8%,平均根数达2.95,平均根长达4.48cm。将生根试管苗的瓶口封口膜打开,在培养室散射光下进行开口炼苗,使试管苗逐渐与外界接触,在1周内将周围环境湿度保持在70%~80%,逐步提高小苗适应外界环境的能力。5d后取出试管苗洗净根部的培养物质,移栽到育苗基质中生长,基质由珍珠岩、泥炭土、园土2:2:1组成,充分混合后用多菌灵消毒,成活率达70%。
[0012] 实施例2选取生长饱满的茎尖,表面消毒后接种在附加2.0mg/L BA的诱导培养基上;基本培养基为WPM,基本培养基还包含6.5g/L琼脂粉和30.0g/L的蔗糖。待不定芽长出,剪取1.5~
2.0cm茎段进行增殖,基本培养基是MS;附加的植物激素为1.0mg/L的BA、2.0mg/L的KT和
0.01mg/L的IBA;还包含6.0g/L的琼脂粉和30.0g/L的蔗糖。60天统计增殖倍数。剪取生长健壮、长3~4cm的单苗进行生根培养,基本培养基为1/2WPM;附加的植物激素为0.5mg/L的NAA、0.5mg/L的IBA;还包含6.5g/L的琼脂粉和15.0g/L的蔗糖,PH 5.8~6.0,光照12h/d,光照强度为2000 lx。60天后统计增殖倍数、平均株高、生根率、平均根数和平均根长。结果表明每个外植体平均分化2.54个不定芽,平均芽长达3.89cm;生根率达65.8%,平均根数达2.35,平均根长达3.08cm。将生根试管苗的瓶口封口膜打开,在培养室散射光下进行开口炼苗,使试管苗逐渐与外界接触,在1周内将周围环境湿度保持在70%~80%,逐步提高小苗适应外界环境的能力。5d后取出试管苗洗净根部的培养物质,移栽到育苗基质中生长,基质由珍珠岩、泥炭土、园土2:2:1组成,充分混合后用多菌灵消毒,成活率达65%。
[0013] 实施例3选取生长饱满的茎尖,表面消毒后接种在附加1.0mg/L BA的诱导培养基上;基本培养基为WPM,基本培养基还包含6.5g/L琼脂粉和30.0g/L的蔗糖。待不定芽长出,剪取1.5~
2.0cm茎段进行增殖,基本培养基是MS;附加的植物激素为1.0 mg/L的BA、0.5mg/L的KT和
0.5mg/L的IBA;还包含6.0g/L的琼脂粉和30.0g/L的蔗糖。60天统计增殖倍数。剪取生长健壮、长3~4cm的单苗进行生根培养,基本培养基为1/2WPM;附加的植物激素为0.01mg/L的NAA;还包含6.5g/L的琼脂粉和15.0g/L的蔗糖,PH 5.8~6.0,光照12h/d,光照强度为
2000 lx。60天后统计增殖倍数、平均株高、生根率、平均根数和平均根长。结果表明每个外植体平均分化4.06个不定芽,平均芽长达3.87cm;生根率达76.8%,平均根数达3.65,平均根长达3.76cm。将生根试管苗的瓶口封口膜打开,在培养室散射光下进行开口炼苗,使试管苗逐渐与外界接触,在1周内将周围环境湿度保持在70%~80%,逐步提高小苗适应外界环境
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