在其乳中生产寡糖的转基因哺乳动物

技术领域

本发明涉及产生在其乳中产生各种寡糖的非人类转基因哺乳动 物的方法。另外，本发明涉及所产生的哺乳动物、这些哺乳动物所产 的乳、包含所述乳的组合物、所述乳的分级分离组分和所述纯化的寡 糖以及所述乳中存在的糖蛋白。

背景信息

过去，已有数人达到在转基因哺乳动物乳中表达初级基因产物(即 蛋白质)(美国专利第5,322,775号，Wall等，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 88： 1696-1700(1991)和Krimpenfort，P.，Cancer Detection and Prevention 17 (2)：301-305(1993))。进行这种表达以在乳中产生大量的异源蛋白 (Velander等，Sciencific American，1997年1月，第70-74页)。

最近，也证明了次级转基因产物(例如寡糖、糖蛋白和糖脂)的表 达事实上是可能的(Prieto等，Journal of Biological Chemistry 49：29515- 29519(1995))。Prieto等进行的实验提出了这样一个概念：采用转基因 哺乳动物的乳腺作为生物反应器，而非仅仅作为替代的蛋白合成系 统。

在以上文章中引用的大多数实验是通过表达异源转基因进行 的。这种表达的一个原因是，转基因表达的同源基因由于与乳腺发育 的内部蛋白合成相冲突而可能引起困难(Burdon等，Mechanisms of Development36：64-67(1991))。利用异源基因表达的另一原因是，已经 进行的大多数实验设计用于产生人类生物制品。

诸如乳寡糖的次级基因产物的合成，主要取决于生乳期间糖基转 移酶的表达。另外，生产这种寡糖有许多益处。例如，在用于合成寡 糖的转基因系统中，仅必需催化量的糖基转移酶。此外，所述转基因 的来源可以不相关，只要一种或多种所述次级基因产物是一种或多种 所需次级基因产物即可。

也必须注意到，非人类哺乳动物有具有人类酶所有组分成分中相 应物的多种糖基转移酶(Thurin等，The Journal of Biological Chemistry 265(12)：7055-7061(1990))。这些转移酶中的某些酶已经从非人类哺乳 动物(例如小鼠)组织中克隆出来(Larsen等，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 86：8227-8231(1989))。因此，同源糖基转移酶在非人类哺乳动物乳腺 中的转基因表达，代表除用异源糖基转移酶产生寡糖外产生寡糖的一 种方法。这两种酶类型的表达以及由于这类酶的作用产生的寡糖以及 与其相关的糖蛋白，被认为属于本发明的范围。

将上述寡糖例如加入婴儿配制食品中，使得所述配制食品喂养的 婴儿可以接受与母乳喂养婴儿相同的益处。例如，所述寡糖可以提供 对致病细菌的抗性，这是可能的(Prieto等，见上文)。另外，这类寡糖 可以加入其它组合物中，诸如加入营养补充剂或药物中。本发明的目 标是产生用或者同源酶或异源酶(包括例如糖基转移酶)产生寡糖的非 人类转基因哺乳动物。然后，由于这类寡糖的有益特性，可以将其加 入各种组合物中。

另外，在转基因动物乳中存在寡糖和其它糖缀合物，可能导致这 种动物的子代获得抵抗病毒、细菌或真菌感染或毒素的保护作用或抗 性。

                      发明概述

本发明包括通过在哺乳期间转基因表达酶(例如糖基转移酶)而合 成寡糖和糖蛋白的方法。此外，本发明也包括产生不存在于自然界的 寡糖结构。可以在哺乳动物中通过转基因表达合适的目的真核或原核 酶(例如糖基转移酶)，产生这类结构。因此，本发明使得能够在转基 因哺乳动物的乳中产生同源、异源和新的结构。

更具体地讲，本发明包括产生其体细胞和生殖细胞含有至少一个 转基因的非人类转基因哺乳动物。所述转基因的表达导致在该哺乳动 物乳中产生寡糖和糖蛋白。该方法包括以下步骤：(a)制备至少一种转 基因，(b)将所述转基因引入非人类哺乳动物胚中，并将所得的胚转 移入雌性受体中，然后(c)鉴别至少一个雌性后代。所述转基因的表达 导致产生至少一种酶，这种酶然后催化该哺乳动物乳中产生寡糖和糖 蛋白。每种转基因本身包括以可操作连接的至少一种在泌乳细胞中有 功能的表达调节序列、编码在泌乳细胞中有功能的信号序列的DNA 序列和编码一种酶的DNA序列。所述非人类转基因哺乳动物可以例如 是小鼠、大鼠、兔子、猪、山羊绵羊或乳牛。所述酶可以例如是糖基 转移酶，诸如岩藻糖基转移酶、半乳糖基转移酶、乙酰基转移酶、 glucoronyl转移酶、葡糖酸差向异构酶(gluconylepimerase)、唾液酸转移 酶、甘露糖基转移酶、磺基转移酶、β-乙酰半乳糖胺转移酶或N-乙酰 葡糖胺转移酶。另外，所述寡糖可以例如是半乳糖α1-3半乳糖β1-4葡 萄糖、2’岩藻糖乳糖、3’岩藻糖乳糖、乳糖-N-新四糖、乳糖-N-四糖、 乳糖-N-岩藻五糖、乳糖-N-岩藻五糖的唾液酸化衍生物、乳糖-N-岩藻 五糖II、乳糖-N-岩藻五糖II的唾液酸化衍生物、乳糖-N-岩藻五糖III、 乳糖-N-岩藻五糖III的唾液酸化衍生物、乳糖-N-岩藻五糖IV、乳糖- N-岩藻五糖IV的唾液酸化衍生物、乳糖-N-岩藻五糖V、乳糖-N-岩藻 五糖V的唾液酸化衍生物、乳糖-N-二岩藻五糖I、乳糖-N-二岩藻五糖 I的唾液酸化衍生物、乳糖-N-二岩藻五糖II、乳糖-N-二岩藻五糖II的 唾液酸化衍生物、乳糖-N-己糖、乳糖-N-己糖的岩藻糖基化衍生物、 唾液酸四糖(tetrasaccharide)a、唾液酸四糖a的岩藻糖基化衍生物、唾 液酸四糖b、唾液酸四糖b的岩藻糖基化衍生物、唾液酸四糖c或唾 液酸四糖c的岩藻糖基化衍生物。

另外，本发明包括非人类转基因哺乳动物。该哺乳动物的基因组 包含至少一种操作性连接至乳腺特异性启动子、编码酶的DNA序列。 所述DNA序列的表达导致在该哺乳动物乳中产生寡糖和糖蛋白。所述 哺乳动物、酶和寡糖可以是上述哺乳动物、酶和寡糖。

此外，本发明包括在非人类转基因哺乳动物中产乳的方法。该方 法包括(a)制备至少一种转基因，(b)将所述转基因插入所述非人类转基 因哺乳动物中，和(c)挤出所述非人类转基因哺乳动物的乳，以获得所 述乳。所述乳包含所述寡糖和糖蛋白。每种转基因包含操作性连接的 在泌乳细胞中有功能的启动子和编码酶的DNA序列。每种转基因的表 达导致在该哺乳动物乳中产生寡糖和糖蛋白。所述哺乳动物、酶和寡 糖可以是上述哺乳动物、酶和寡糖。

此外，本发明包括由非人类转基因哺乳动物所产的乳。该非人类 转基因哺乳动物的基因组包含至少一种编码酶的DNA序列。所述 DNA序列操作性地连接至启动子。每种DNA序列的表达均导致最终 产生寡糖和糖蛋白。再者，所述哺乳动物、酶和寡糖可以是上述哺乳 动物、酶和寡糖。

而且，本发明还包括上述乳的分级分离组分。该分级分离组分可 以包括例如由于表达所述转基因产生的一种或多种可溶性寡糖和/或 糖蛋白。因此，所述乳的分级分离组分可以包含一种或多种上述组分 (即寡糖或糖缀合物)或其任何组分。这种分级分离组分也可以包括在 所述转基因哺乳动物乳中天然存在的寡糖和由于存在所述转基因而产 生的一种或多种寡糖和/或糖缀合物。

另外，本发明包括从上述乳中纯化的寡糖或糖蛋白，以及包括含 有所述乳、其分级分离组分、或所述寡糖和/或糖蛋白的营养制品，所 有所述乳、分级分离组分、寡糖和糖蛋白已在上述进行了描述。该营 养制品可以是或者液体或者固体形式的婴儿配制食品。

本发明也包括为患者提供营养的方法。该方法包括给予所述患者 上述的乳、其分级分离组分或寡糖或糖蛋白，其给予量足以实现所述 营养。

                      附图简述

图1-6涉及包括表达同源酶(即鼠UDP-Ga1β-D-α1，3-半乳糖基转移 酶)的方法。

图1描述pWAP-GT构成物的产生。

图2描述半乳糖α1-3半乳糖β1-4葡萄糖的层析分析，这是由本发 明一种方法产生的一种新的寡糖。

图3图示半乳糖α1-3半乳糖β1-4葡萄糖的荧光团辅助的糖类电泳 分析(FACE)。

图4图示掺入半乳糖α1-3半乳糖β1-4葡萄糖的小鼠乳的FACE分 析。

图5描述用Dionex方法2分析的阴性转基因、阳性转基因和阴性 对照小鼠乳寡糖分布型的实例。于31-32分钟洗脱出的大峰推测为所 述三糖。

图6图示图5所用样品的FACE分析。具体地说，进行FACE分 析，以证实图5中检测出的“新”峰为所述三糖。与G3淀粉水解物 标准带同时洗脱出的带确实为所述三糖。

图7-13涉及包括表达异源酶(即H-α-1，2-岩藻糖基转移酶)的方 法。

图7描述两种兔乳样品的高pH阴离子交换层析(HPAEC)的寡糖 分布型。A板为由阴性转基因动物对照获得的样品的乳寡糖分布型。 该样品含有乳糖和仅痕量的2’-岩藻糖乳糖(Fucα1-2Galβ1-4Glc)。B板 为从其基因组含有编码人H-α1-2岩藻糖基转移酶的转基因的哺乳兔 获得的样品的分布型。该样品含有大量的2’-岩藻糖乳糖，其乳糖浓度 低于非转基因动物乳样品中存在的乳糖浓度的1/10。C板为得自用于 产生B板分布型的同一样品的分布型，但C板的样品掺入20mg/升2’- 岩藻糖乳糖。

图8图示另一转基因兔乳样品的离子层析分布型。A板为对照 乳，B板为2号转基因样品，C板为3号转基因样品，而D板为4号 转基因样品。仅4号样品(C板)含有大量的2’-岩藻糖乳糖(即＞50 mg/L)。3号样品(B板)表现出其乳糖浓度显著降低。

图9描述用来自以下样品的α1-2岩藻糖乳糖消化前后乳寡糖的荧 光团辅助糖类电泳(FACE)：未处理的兔乳和酶控制的兔乳、转基因兔 乳和真正的标准品。具体地说，1道代表真正的2’-岩藻糖乳糖标准品， 2道代表未处理的5号转基因样品，3道代表岩藻糖苷酶处理的5号转 基因样品，4道代表未处理的非转基因对照样品，而5道代表岩藻糖 苷酶处理的对照样品。6道代表一组直链葡萄糖聚合物标准品，其中 G2代表2个葡萄糖单位，而G3代表3个葡萄糖单位。

图10图示其它转基因兔样品的FACE。具体地说，1道代表真正 的2’-岩藻糖乳糖标准品，2道代表未处理的5号转基因样品，3道代 表另一转基因乳样品，4道代表4号转基因样品，5道代表非转基因对 照样品，6道代表一组直链葡萄糖聚合物标准品，而7道代表3号转 基因样品。

图11描述转基因兔乳蛋白和对照兔乳蛋白的Ulex Europaeus凝集 素I(UEA-1)蛋白质印迹。1道代表非转基因对照样品，2道代表1号 转基因样品，3道代表2号转基因样品，4道代表第二种非转基因对照。

图12图示其它兔乳蛋白样品的UEA-1蛋白质印迹。1道来自非 转基因对照，2道为4号转基因样品，3道为3号转基因样品，4道为 非转基因对照样品，而5道代表分子量标准。

图13图示分离兔乳蛋白的考马斯染色的SDS电泳图。1道显示 非转基因对照乳的染色蛋白，2道为3号转基因样品，3道为4号转基 因样品，4道为5号转基因样品，而5道显示染色的分子量标准。

图14-16涉及用异源生乳诱导的转基因表达来表达酶(即人类岩藻 糖基转移酶IV)的方法。

图14描述乳寡糖提取物的层析分布型。A板代表对照寡糖提取 物，B板代表转基因乳寡糖提取物，而C板代表掺料(即3-岩藻糖乳糖) 转基因乳寡糖提取物。

图15描述用来分离荧光团标记的寡糖的凝胶电泳的FACE结 果。1道为用作分子量标准的标记的淀粉水解物，2道为由非转基因对 照动物乳获得的中性分布型，3道为真正的3-岩藻糖乳糖，4道为表达 FucT-IV的转基因动物的中性分布型，而5道为4道的同一样品，但 用特定的岩藻糖苷酶消化过。

图16描述高pH阴离子交换层析后选自对照和转基因乳寡糖提取 物的流分的FACE。A板代表转基因乳样品，而B板代表非转基因对 照。该凝胶的1道代表染料，2道代表转基因寡糖提取物(于19.5分钟 洗脱出的流分)，3道代表转基因寡糖提取物(于20.0分钟洗脱出的流 分)，4道代表转基因寡糖提取物(于20.5分钟洗脱出的流分)，5道代 表真正的3-岩藻糖乳糖，6道代表对照寡糖提取物(于20.0分钟洗脱出 的流分)，7道代表对照寡糖提取物(于20.5分分钟洗脱出的流分)，而8 道代表所述寡聚梯(oligo ladder)标准。

图17和图18涉及在小鼠中同时转基因表达糖基转移酶。

图17为得自对照非转基因哺乳动物的乳寡糖分布型的层析图。

图18为得自表达人类Fucα1-2-转移酶和鼠Galα1-3转移酶的转 基因哺乳动物的乳的层析图。

图19-21涉及在哺乳的小鼠乳腺中转基因表达细菌糖基转移酶的 方法。

图19显示得自对照L细胞平板的酶活性测定的层析图。

图20和图21显示表达细菌N-乙酰葡糖胺转移酶的转染L细胞合 成的寡糖。

                      发明详述

如上所述，本发明涉及利用转基因技术在非人类转基因哺乳动物 乳中产生一种或多种寡糖和/或糖缀合物的方法。可以用本发明方法产 生的一种寡糖(即半乳糖α1-3半乳糖β1-4葡萄糖)具有新的结构，从未 作为游离的寡糖报道过。按照本发明产生的这种转基因产生的寡糖和/ 或糖缀合物，可以加入婴儿配制食品中，或加入给予老年人或无免疫 应答患者的药用营养物(medical nutritional)中。目前描述的方法及其变 化的方法的益处是，使得科学家可以常规设计转基因动物的乳寡糖分 布型。

简而言之，为了产生所需的一种或多种乳寡糖，从特定的真核或 原核物种中分离编码特定目的酶的DNA的区段。该酶负责产生第二基 因产物或乳寡糖。分离之后，将所述DNA区段插入含有各种遗传组分 的载体中，所述遗传组分诸如多腺甘酸化信号和启动子。然后将该载 体含有所需组分的部分插入与分离所述DNA区段的哺乳动物相同或 不同的哺乳动物物种的胚胎的原核中。然后将该胚胎移植到雌性受体 中，让其出生。来自所述后代的乳样品含有一种或多种目的寡糖。也 监测后代所述一种或多种寡糖的产生，并由此将编码一种或多种目的 酶的一种或多种基因整合入该哺乳动物基因组中。应该强调的是，可 以将一种以上的转基因引入所述胚胎中，由此导致产生一种以上的寡 糖。因此，本发明的潜力是无限的。以下详细描述本发明方法的每个 步骤。 所述酶

最后表达的目的酶的选择基于人们希望在所述非人类转基因哺 乳动物乳中产生的一种或多种寡糖。所述可以例如是糖基转移酶。合 适的糖基转移酶包括诸如α-1，2-岩藻糖基转移酶、岩藻糖基转移酶IV 或“H”岩藻糖α-1，2-转移酶的岩藻糖基转移酶、诸如galα-1-3转移酶 的半乳糖基转移酶、乙酰基转移酶、glucoronyl转移酶、葡糖基差向异 构酶、唾液酸转移酶、甘露糖基转移酶、磺基转移酶、β-乙酰半乳糖 胺转移酶和N-乙酰葡糖胺转移酶。选择的酶优选半乳糖基转移酶，更 优选UDP-Gal B-D-α1，3半乳糖基转移酶、唾液酸转移酶或诸如FucT- III或FuvT-IV的α1-3/4岩藻糖基转移酶。

由所述转基因编码的糖基转移酶由信号序列引导，所述信号序列 或者由cDNA或基因组DNA天然编码，或者用标准遗传工程技术加 入所述转基因。它们可以存在于所述转基因哺乳动物生乳细胞中，可 以或者锚定至生乳细胞的细胞内膜区室(例如内质网、高尔基体或分泌 小泡)，或作为游离的催化性多肽存在于这类区室的腔中。通过合适的 胞内定位，所述酶已经接近由生乳的乳腺细胞天然合成的糖核苷酸或 其它糖供体，或可以从该动物的血流达到接近这种细胞。这些供体优 选糖核苷酸。

所述糖基转移酶具有催化单糖单位从糖供体转移至诸如乳糖、其 它寡糖、糖脂或糖蛋白的受体。所述糖基转移酶对于供体和受体均具 有有限的或足够的特异性，可以通过将一个以上的单糖单位转移至新 生的或正在延长的糖缀合物。因此，通过所述糖基转移酶的反复或迭 代作用，可以合成较大的寡糖和/或多糖。所述糖基转移酶本身可以是 糖蛋白或非糖基化糖蛋白，或可以有或没有额外的共翻译或翻译后修 饰。

此外，重要的是注意到，根据导致产生选择的寡糖和糖蛋白的一 种或多种合适的酶的选择，可以设计转基因哺乳动物的寡糖分布型。

此外，也应该注意到，本发明使得能够同时表达两种或两种以上 的酶和由此相应的寡糖和糖蛋白。因此，潜在地，可以产生具有产生 人乳中存在的许多寡糖的能力的非人类转基因哺乳动物，例如乳牛。 所述寡糖然后可以加入婴儿配制食品中，例如由此为所述配制食品喂 养的婴儿提供母乳喂养婴儿接受的得自所述寡糖的益处。然后可以让 诸如上述乳牛的哺乳动物交配(即杂交繁育)，以便获得能够在其乳中 产生种类繁多的有价值寡糖的子代。

另外，本发明也包括来自无脊椎动物的酶(例如糖基转移酶)的生 产。这类无脊椎动物包括例如曼氏裂体吸虫(Schistosoma mansonii)或细 菌，诸如奈瑟氏球菌属(Neisseriae)的细菌。这些酶在生乳期间，可以 在哺乳动物组织中以活性形式表达。 所述非人类转基因哺乳动物

从中分离出编码目的酶的cDNA的哺乳动物可以选自例如小鼠、 大鼠、兔子、猪、山羊、绵羊、马和乳牛。然而，可以利用任何哺乳 动物，只要它具有将编码目的酶的DNA整合入其基因组中即可。

根据是需要所述酶的异源表达还是需要同源表达，其中插入所述 cDNA的胚胎可以对应于或不对应于初始从中分离所述DNA的相同物 种。更具体地讲，如果人们需要例如产生人类酶，该人类酶又导致在 非人类转基因哺乳动物乳中产生人类寡糖(即所述酶的异源表达)，则 所用的转基因哺乳动物为诸如猪或山羊的非人类哺乳动物。然而，如 果人们希望例如产生山羊酶，而所述酶又导致在山羊乳中产生至少一 种寡糖(即所述酶的同源表达)，则所用的转基因哺乳动物为山羊。

关于同源表达，本发明使得人们可以合成不存在于自然界中的寡 糖(诸如半乳糖α1-3半乳糖β1-4葡萄糖)以及所有天然存在的寡糖。此 外，本发明使得人们可以分析目的基因编码的酶的合成效率。另外， 由于所述酶对于该哺乳动物为“天然的”(即得自相同物种)，则降低 了乳喂养的后代对所述酶的自身免疫反应或耐受的潜力。另外，由于 在某些物种发现某些酶(例如糖基转移酶)，而在其它物种中没有发现 这些酶，因此，采用可利用的编码同源酶的基因，可以扩大在乳中转 基因合成的潜在寡糖的范围。

此外，关于同源表达，应该注意到，例如可以从生乳的乳腺以外 的组织获得并克隆同源糖基转移酶。例如，通常在肝脏和其它组织中 表达、但不在小鼠生乳的乳腺中表达的鼠糖基转移酶，可以通过生乳 应答启动子的作用，在生乳期间表达。第二基因产物(即寡糖和糖缀合 物)将存在于所述转基因小鼠的乳中。因此，在以下实施例I中可明显 看出，合成通常不由给定哺乳动物生乳的乳腺合成的寡糖是可能的， 只要正常在其它组织中表达的糖基转移酶在生乳的乳腺中转基因表达 即可。 载体

最初插入所述cDNA(编码所述酶)的实体称为载体。所述载体可 以例如为细菌质粒(例如pBR322)。如果使用细菌质粒，则它应该含有 至少一种最好在生乳期间指导基因表达和蛋白合成的编码至少一种糖 基转移酶的重组DNA序列(或者为cDNA、基因或基因片段)和编码正 确的信使DNA加工所需的多腺甘酸化添加位点的DNA序列。或者， 所述可以用其它质粒、粘粒、噬菌体DNA、病毒以及酵母、植物、哺 乳动物和其它合适宿主特有的其它载体来构建。

调节编码所述酶的cDNA、基因或基因片段表达、且操作性连接 至所述cDNA、基因或基因片段的启动子，可以例如为乳清蛋白、酪 蛋白、乳清酸性蛋白(WAP)或另一生乳启动子。

所述多腺甘酸化信号可以例如为哺乳动物或病毒信号，包括例如 SV-40T抗原、卵清蛋白或牛生长激素(bGHpdyA)的poly-a信号。 寡糖

可以按照本发明方法产生的寡糖包括例如半乳糖α1-3半乳糖β1-4 葡萄糖、2’岩藻糖乳糖、3’岩藻糖乳糖、乳糖-N-新四糖、乳糖-N-四糖 (例如α-乳糖-N-四糖)、乳糖-N-岩藻五糖I及其唾液酸化衍生物、乳糖 -N-岩藻五糖II及其唾液酸化衍生物、乳糖-N-岩藻五糖III及其唾液酸 化衍生物、乳糖-N-岩藻五糖IV及其唾液酸化衍生物、乳糖-N-岩藻五 糖V及其唾液酸化衍生物、乳糖-N-二岩藻五糖I及其唾液酸化衍生 物、乳糖-N-二岩藻五糖II及其唾液酸化衍生物、乳糖-N-己糖及其岩 藻糖基化衍生物、唾液酸四糖a、b和c及其岩藻糖基化衍生物、其它 人乳寡糖或非人乳寡糖。

在所述实施例中产生半乳糖α1-3半乳糖β1-4葡萄糖和α1-2岩藻 糖-乳糖。前一种化合物代表通过转基因技术合成的第一种新的未描述 的第二基因产物。具体地说，半乳糖α1-3半乳糖β1-4葡萄糖以前从未 显示作为游离的寡糖存在于自然界，直至本发明为止。人们认为，该 寡糖可以例如在诸如心脏、肝脏和肾脏的非人类动物器官异种移植之 前，用作诱导人类对Galα1-3抗原耐受性的药物。

必须注意到，本发明包括由非人类转基因哺乳动物产生的含有一 种或多种上述寡糖的乳。然而，另外，本发明也包括所述乳的分级分 离组分以及从所述乳中分离或纯化的寡糖和糖缀合物(例如糖蛋白)。 这种分级分离组分可以包括例如奶粉、脱脂乳、来自已去除乳脂或脂 质的乳、可溶性糖类分级分离组分(即特定寡糖或特定寡糖结合哺乳动 物天然产生的糖类)和/或特定的糖缀合物或数组糖缀合物。通过本领域 技术人员已知的方法，例如蒸发、冻干、结晶、超滤、透析或层析(例 如亲和层析、阴离子交换层析或凝胶排阻层析)，可以获得这类分级分 离组分。

另外，本发明包括由于所述转基因表达的酶作用而修饰的糖缀合 物(例如人乳蛋白和人血清蛋白)。这种糖缀合物可以是内源的或转基 因表达。可以经受修饰的人乳蛋白(例如糖蛋白)的实例包括分泌性免 疫球蛋白、溶菌酶、乳铁蛋白、κ-酪蛋白、α-乳清蛋白、β-乳清蛋白、 乳过氧化物酶和胆盐刺激的脂酶。所述酶可以例如向所述糖蛋白加入 可能天然不存在于所述糖蛋白的一个键(参见Prieto等，Journal of Biological Chemistry 270：29515-29519(1995))。因此，所述糖蛋白用作 所述酶的底物。

应该注意到，或者同源或者异源的糖蛋白可以在已经表达编码糖 基转移酶的转基因的哺乳动物中转基因表达。因此，例如由于内源以 及转基因表达的糖基转移酶的作用，可以导致直接糖基化。

通过使用以下非限制性实施例，可以说明本发明：

以下试剂和设备需要用于实施例I中： 试剂：

1)500mM氢氧化钠和200mM氢氧化钠，RICCA Chemical Company(Arlington，TX)，无碳酸盐，National Institute of Standards and Technology(NIST)-可示踪的(traceable)(Baxter Inc.，McGaw Park，IL)；

2)乙酸钠，ACS级(Sigma，St.Louis，MO)；

3)FACE试剂盒(Glyko Inc.，Novato，CA)；

4)Milli-Q水(Millipore，Bedford，MA)；和

5)硫酸Ultrex超纯级(Baxter)。 设备：

样品干燥：所有样品和标准品均用配有冷冻蒸汽捕获器(trap) RVT4104(Savant，Farmingdale，IL)的Speed Vac Plus SC210A干燥。 实施例I

鼠UDP-Galβ-D-α1，3半乳糖基转移酶的表达(同源表达)

A.质粒的制备和转基因小鼠胚胎的产生

在俄亥俄大学的爱迪生生物技术研究所(Athens，Ohio)制备基因构 成物。将编码鼠UDP-Gal：β-D-α1，3半乳糖基转移酶的cDNA插入含有 牛生长激素多腺甘酸化信号(bGHpolyA)和生乳应答型乳清酸性蛋白 (WAP)启动子的质粒中(参见图1)。将EcoRI-BamHI片段微注射入小鼠 胚胎的原核中。通过尾狭线印迹(tail slot blot)检测到存在所述基因。收 集哺乳雌鼠的乳，冷冻贮存于-70℃，直至运送至Ross Labs进行糖类 分析。

B.A的寡糖的高效阴离子交换层析分析：

用配有以下装置的Dionex Bio-LC系统，分析小鼠乳寡糖标准品：

泵：          Dionex高级梯度泵(Advanced Gradient Pump)

探测器：      配有金工作电极和pH/参考电极的Dionex脉

              冲电化学检测器

自动加样器：  Spectrophysics Refrigerated AS3500

柱：          方法1：上接一个护罩(4×50mm)的1根

              Dionex CarboPac PA1分析型柱(4×250mm)

              方法2：上接一个护罩(4×50mm)的2根

              Dionex CarboPac PA1分析型柱(每根4×250

              mm，串联连接)

化学抑制：

              Dionex AMMS-II Anion Micromembrance

              Suppression，(在检测器后、但在分部收集器之

              前安装，用来中和样品)，用Dionex AutoRegen

              Apparatus和阴离子再生柱(Anion Regenerate

              Cartridge)通过0.15％硫酸再生

分部收集器：

              BioRad 2110型(BioRad Inc.，Hercules，CA)

所有设备均购自Dionex，Inc.(Sunnyvale，CA)，除非另有说明。所 用的洗脱剂为(A)Milli-Q水(或相当物)、(B)500mM氢氧化钠、(C)600 mM乙酸钠的100mM氢氧化钠溶液和/或(D)200mM氢氧化钠的组 合，流速为1.0ml/min。以下表I有所用两种方法的洗脱剂分布型。检 测器环境为以下表II所列的环境。注射体积为20μl。 样品和标准品的Dionex分析：所有样品和/或标准品均不进行进一步 稀释，按制备的进行分析。 表I：洗脱剂分布型

               方法1：                                                         方法2：   时间   (min) A％ B％ C％ D％   0.0   50   0   0   50   12.0   50   0   0   50   12.1   46   0   7   47   20.0   46   0   7   47   20.1   45   0   10   45   27.0   45   0   10   45   27.1   25   0   50   25   32.0   25   0   50   25   32.1   50   0   0   50   59.0   50   0   0   50 时间 (min) A％ B％ C％ D％   0.0   99   1   0   0   60.0   0  100   0   0   60.1   99   1   0   0   75.0   99   1   0   0 A＝Milli-Q水 B＝500mM NaOHC＝600mM NaOAc/100mM NaOHD＝200mM NaOH

            表II：检测器环境   积分参数 方法1： 方法2：   起始峰宽 50 8.0   峰阈值 0.5 25   峰面积剔除值   (peak area reject) 500 1000   PED记录仪范围 0.100uC 0.300uC

                方法1：                                                            方法2：

     波形                积分                                           波形                  积分 时间 (sec) 电势 (V) 开始 (sec) 结束 (sec)  0.00  0.40  0.30  0.50  0.50  0.40  0.51  0.90  0.59  0.90  0.60  -0.30  0.65  -0.30 时间 (sec) 电势 (V) 开始 (sec) 结束 (sec)  0.00  0.00  0.20  0.40  0.40  0.05  0.41  0.75  0.60  0.75  0.61  -0.15  1.00  -0.15

C.荧光团辅助的糖类电泳(FACE)：制备样品和标准品，用 试剂盒(Glyko)并按照生产商提供的说明进行FACE。以下是建议的电 泳条件。凝胶用FACE成象器(Glyko)成象。

将15毫摩尔(7.5μg)的合成Galα1-3Galβ1-4Glc标准品重悬浮于 37.5μl水中，制备200ppm溶液。用36μl水稀释4μl该溶液，并经 HPAEC分析(参见图2，用方法1)。(将剩余的标准品母液分装为5μl 的等份，冷冻贮存以用于将来的分析)。收集流分(0.5ml)，合并相应于 标准品峰的流分，在Speed Vac中于室温下过夜干燥。按照生产商的 说明，将所得的干燥合并物于45℃标记3小时并干燥。然后将样品重 悬浮于14μl水中，将2μl(105pmol)在2μl上样缓冲液中稀释，上样 至聚丙烯酰胺凝胶上。按生产商的说明进行凝胶电泳。凝胶的荧光图 象示于图3中。

如附图简述一节中所述，图5显示用HPAEC方法2分析的阴性 转基因、阳性转基因和阴性对照小鼠乳寡糖分布型的实例。于31-32 分钟洗脱出的大峰推测为所述三糖。HPAEC方法1产生一个非常接近 所述三糖标准品洗脱出的小的人工产物峰(artifact peak)，该峰用方法2 仍洗脱出，因此证实：检测出的“新”峰实际上为所述三糖，将来自 这些样品的寡糖提取物标记，并通过FACE测试。将8μl所述寡糖提 取物干燥，并按照试剂盒的说明进行标记。将标记的样品重悬浮于10 μl水中，将2μl上样至凝胶上。先前标记的所述三糖标准品冷冻样品 也进行电泳。该凝胶的图象示于图6。与G3淀粉水解物标准品带的同 时洗脱的带为所述三糖。

D.小鼠乳的提取：

将贮存于-70℃的小鼠乳样品于室温解冻。将100μl用移液管加入 500μl Eppendorf离心管中，用BioFuge 15(Baxter，McGaw Park，IL)以 11000rpm离心20分钟。小心地除去脂质层，将中间层转移至第二个 500μl管中。加入2倍体积的冷(4℃)乙醇，将管制瓶涡旋混合，置于 冰上至少20分钟。然后如前将管制瓶离心。将透明的上清液转移至第 三个管制瓶中，将该提取物于中等热量下在Speed Vac中过夜干燥。 也将蛋白沉淀干燥，分析前贮存于-70℃。将干燥的寡糖提取物重悬浮 于100μl水中，贮存于-70℃待分析用。由于可获得的标准品的量少， 因此不能完成这整个程序；然而，其它寡糖已经过该提取方法，而没 有显著的量的损失(数据未显示)。

表III显示测试的、根据建立者号分类的所有WAP/GT转基因乳 的总结。在所测试的23个“转基因”样品(其中“转基因”用来定义 在尾狭线印迹中测试为多个拷贝所述转基因阳性的小鼠)中，10只动 物，即相关种系中所有动物的44％为所述三糖合成阳性。(请注意：鉴 别为“建立者B6SJL”的样品为阴性对照/非转基因小鼠。)

                                     表III     19     B6SJL     12     B6SJL     21     B6SJL     25     B6SJL     4     8     1     19 半合子 3061.187   阴性     3     5     8     1     20 半合子 3061.187   阴性     3     8     1     22 半合子 3061.187   阴性     6     8     2     13 纯合子 3147.19   阴性     11     8     2     23 纯合子 3061.242   阴性     1     64     0 3061.11   阴性     ？     13     82     1     71 半合子 3147.23   阴性     1-2     7     98     0 3147.2   阴性     1     16     106     1     93 半合子 3147.199   阴性     1     29     106     2     61 半合子 3147.200   阴性     8     109     1     48 半合子 3147.21   阳性     1-2     15     109     1     67 半合子 3147.24   阳性     20     109     1     118 半合子 3147.2   阴性     22     109     2     50 半合子 3147.2   阴性     27     109     2     51 半合子 3147.2   阳性     17     109     2     51 半合子 3147.2   阳性     18     109     2     53 半合子 3147.2   阳性     28     109     2     54 半合子 3147.2   阳性     2     156     0 3061.187   阳性     5     9     156     0 3061.242   阳性     10     156     1     42 半合子 3061.242   阳性     23     156     1     100 半合子 3147.199   阴性     26     156     2     27 半合子 3147.200   阳性     14     193     0   未测试     1     24     193     1     120 半合子   未测试

请注意，在表III中，来自同一建立者的乳样品可能是或可能不是 所述三糖合成阳性；在该DNA中具有一个拷贝(或多个拷贝)的所述转 基因不能保证所述小鼠能够合成所述三糖。(例如，参见来自与建立者 109相关的不同动物的乳的结果)。可能这些样品含有所述三糖；然而， 它的产生低于该方法的检测极限(约10ppm)。

E.将三糖标准品掺入对照小鼠乳中：

将1852pmol的三糖标准品在500μl eppendorf离心管中干燥。加 入100μl对照(非转基因)小鼠乳(mouse mile)，将管制瓶的内容物充分 混合。然后，将该掺料的乳样品如上所述脱脂和去蛋白。回收45μl 乙醇提取物，将其中20μl(理论上含有820pmol三糖)干燥，并于45 ℃标记3小时用于寡糖分析(Glyko)。干燥后，将样品重悬浮于10μl 水中，将2μl上样至FACE凝胶上。图4为其图象。也分析未掺料的 对照乳样品用于比较。

C和D中的所有样品和/或标准品均不进一步稀释，按所制备的用 HPAEC分析。 实施例II

人类α1，2-岩藻糖基转移酶在兔子中的表达(异源表达)

与俄亥俄州Athens的俄亥俄大学的爱迪生生物技术研究所的 John Kopchick博士及其同事以及波兰Balice的Zootechnics Institute的 Zdizislaw Smorage合作，实现转基因胚胎的产生。所用的90％的兔子 为新泽西培育的，其余10％为加州培育的。

A.转基因合子的制备：

从4-6月龄超排卵雌兔收集合子。通过标准方法，即采用肌内注 射的50-100i.u.受孕母马血清促性腺激素(PMSG)，PMSG注射后72小 时，静脉注射50-100i.u.人绒毛膜促性腺激素(HCG)，实现超排卵。HCG 注射后，立即使超排卵雌兔交配或用得自5月龄雄兔的新鲜或冷冻的 精液受精。受精或交配后20-22小时，屠宰雌兔，通过补充PBS的输 卵管冲洗液收集合子。冲洗后1-2小时，用配有Namarski光学镜片的 倒置显微镜以及与Da Venbrine或Leitz显微操作器连接的微量加液 器，向合子微注射2-6ng/ml编码2’-岩藻糖基转移酶的DNA(即从前 述质粒(Prieto等，Journal of Biological Chemistry 270：29515-29519(1995) 切下的线性DNA片段，该DNA片段含有包括鼠乳清酸性蛋白启动子 在内的转录调节区、编码人H-α1-2岩藻糖基转移酶的cDNA和编码牛 生长激素多腺苷酸化信号的序列)。

B.转基因合子的移植和乳的收集：

微注射后1小时，将合子经手术转移到5-6月龄同步假受孕受体 的输卵管中。表IV给出了受精计划的进展报告。通过斑点印迹分析， 分析所产幼畜所述DNA的成功转录。收集并分析来自其中两只这些动 物的乳以及来自非转基因对照的乳。

                      表IV：受精进展报告 组号 受精雌兔数 受孕雌兔数 出生的活兔数 死产兔数 I  8  7  26  1 II  4  4  16  8 III  20  16  67  17 IV  20  7  **  ** 合计  52  34  109  26

                                             (**此时不能得到资料)

C.得自幼畜的乳的制备

将来自转基因兔和对照兔的乳样品用乙醇1∶3稀释，并运送到 Ross Laboraries(Columbus，OH)。将它们充分涡旋混合并以10,000rpm 离心10分钟。去除乙醇层，置于洁净的管制瓶中用于寡糖分析，将沉 淀冷冻用于未来的蛋白分析。

D.寡糖分布型分析：

将50μl每种乙醇提取物用50μl水稀释。稀释液通过预冲洗的 30,000 MWCO滤器(Microcon，Amico，Inc.，Berverly，MA)过滤，用 HPAEC方法1(参见该实施例结尾的附录I)进行分析。通过用48μl水 和2μl 1000ppm 2’-岩藻糖乳糖稀释50μl样品，并如前过滤，制备每 种对照之一的掺料样品和转基因样品。也分析这些样品。第二组乳样 品不进一步稀释，按接收的乳样品分析。

在其余的乙醇提取物中，将240μl在Speed Vac(Savant，Inc.， Farmingdale，IL)中干燥。然后用7％IPA将提取物重悬浮至一定体积， 并如前通过Microcon 30,000 MWCO过滤。将来自组1的20μl每种样 品和来自组2的50μl每种样品干燥，并按照生产商的说明(Glyko，Inc.， Novato，CA)标记过夜。然后按照生产商的说明(Glyko，Inc.)将其标记过 夜。将标记样品重悬浮于10μl水中。将2μl每种样品上样至寡糖凝胶 并电泳。

E.岩藻糖苷酶处理：

在2个单独的管制瓶中，将来自组1的25μl过滤的IPA稀释液 与2个等份1000ppm的2’-岩藻糖乳糖(2’-FL)一起干燥。将样品重悬 浮于25μl 1×PBS pH8.5中。将来自Arthrobacter oxidans的200mU α1，2-岩藻糖苷酶(Tekara-Panvera，Madison，WI)的PBS溶液加至每一个 管制瓶中。将相同体积煮沸(失活)的酶加入第二个管制瓶中。将样品 于37℃、甲苯氛围下温育过夜。将它们通过冲洗的Centricon 10,000 MWCO滤器(Dionex)过滤，用950μl水冲洗。然后使滤液通过强阴离 子交换柱On-Guard A(Amicon)，该柱按照生产商的说明进行制备。用 200μl水冲洗所述样品。将收集的滤液冷冻、干燥并过夜标记用于 FACE分析(Glyko)。将样品在10μl水中稀释，将2μl等份的该物质电 泳和成象。

F.糖蛋白SDS-PAGE和蛋白质印迹：

将蛋白沉淀解冻至室温，用冷68％乙醇洗涤2次并干燥。将它们 重悬浮于2×SDS变性缓冲液中。样品在沸水中加热5分钟，以使蛋 白变性，将其冷却。用1×SDS缓冲液制备稀释液。将样品和预染的 低分子量标准(Sigma，St.Louis，MO)上样至聚丙烯酰胺凝胶(Novex， Inc.，San Diego，CA)，并在Xcell II Mini Cell系统(也得自Novex)中电 泳。将由此获得的凝胶转移至PVDF膜，用Ulex europaeus凝集素I (UEA I)(过氧化物酶标记的，Sigma)过夜探测。用TBS-Tween 20洗涤 后，用DAB-过氧化氢染色溶液(Sigma)使凝胶显色。用普通的300dpi 计算机扫描仪扫描干燥凝胶，并将其数字化

结果如下：

图7有以下兔乳样品的层析寡糖分布型：对照非转基因兔乳样 品、阳性转基因兔乳样品和得自一种样品的掺料阳性转基因兔乳样 品。1号转基因样品含有2’-FL，这是通过掺料分布型证实的事实。注 意到对照样品和转基因样品之间乳糖浓度的大的差异。未显示第二个 转基因样品(2号)，发现它为阴性(不含2’-FL)。在图9中发现的分布型 中，4号样品(C板)和5号(D板)含有用该方法可检测量的2’-FL。该样 品表现出乳糖浓度的显著降低，而3号样品(B板)没有可检测量的乳 糖。

为了进一步证实存在于得自转基因动物的乳样品中的寡糖的本 质，将来自对照非转基因乳和转基因乳的寡糖用α1-2岩藻糖苷酶水 解。该酶仅水解岩藻糖1-2键。结果示于图9。真正的2’-岩藻糖乳糖 (2’-FL)示于1道，而未处理的得自转基因样品的寡糖示于2道。3道 显示2道的同一样品，但经岩藻糖苷酶处理。与真正的2’-FL一起迁 移的带在2道中明显可见。该带在岩藻糖苷酶处理后消失，进一步支 持在所述转基因乳样品中存在2’FL。来自对照非转基因样品的寡糖在 岩藻糖苷酶处理后大致没有变化(参见4道和5道)。

其它乳样品的FACE寡糖分布型示于图10。该图的2道显示自5 号样品乳分离的标记寡糖。3道显示另一转基因乳样品的寡糖。4道显 示4号样品的寡糖。5道为来自对照非转基因动物的分布型，而7道 为3号样品。这些结果证实了图8的层析分布型，并进一步支持某些 转基因乳样品无乳糖的观念。

图11比较了用UEA-I探测的1号和2号乳蛋白样品的蛋白质印 迹。阳性带仅在其中一个阳性转基因样品2道见到。2号样品和非转 基因对照均不含以α1，2键用岩藻糖糖基化的蛋白。其它样品的蛋白质 印迹示于图12。正如预期的，4号样品含有在α-1，2位岩藻糖基化的蛋 白。然而，3号样品也含有相似修饰的蛋白。该结果是预料之外的， 因为该样品缺乏其它两种方法未检测到的可检测的2’-FL。迄今分析的 所有其它样品(包括来自小鼠的样品)均至少含有岩藻糖基化的蛋白。 与图12中所发现的相同的凝胶的考马斯染色如图13所示。该图说明， 尽管通过UEA-I在非转基因对照中没有检测到蛋白，但在该样品中存 在许多蛋白。作为对比，将3号样品和4号样品中发现的总蛋白与 UEA-I印迹中检测的带进行比较。尽管它们以几乎不可检测量的存 在，但用所述凝集素强烈地检测到它们。

                          ***

                     附录I：层析条件

              经高压阴离子交换层析的寡糖分析

用配有一个脉冲电化学检测器的Dionex Bio-LC系统，用带有护 罩的单根分析型CarboPac PA-1柱，分析样品。条件如下：

灵敏度：0.200C

洗脱时间：45分钟

峰宽：8.0秒

峰阈值：25.00

峰面积剔除值：1000

样品体积：20L

梯度程序：

0-12分钟：       100mM NaOH

12.1-20分钟：    42mM NaOAc的100mM NaOH溶液

20.1-27分钟：    60mM NaOAc的100mM NaOH溶液

27.1-32分钟：    300mM NaOAc的100mM NaOH溶液

32.1-45分钟：    100mM NaOHPED程序：

        波形                   积分

时间(sec)    电势(V)    开始(sec)    结束(sec)

0.00         0.05       0.20         0.40

0.40         0.05

0.41         0.75

0.60         0.75

0.61        -0.15

1.00        -0.15 实施例III 人岩藻糖基转移酶IV在小鼠中的表达(异源表达)

先前已经在小鼠生乳的乳腺中表达了人岩藻糖基转移酶(即“H” 岩藻糖α1-2-转移酶)(Prieto等，Journal of Biological Chemistry， 270：29515-19(1995))。其表达导致产生由该酶合成的寡糖和糖蛋白。 为了证明将该系统生产第二基因产物的潜在、广泛应用，本发明人决 定在小鼠中转基因表达非人H-岩藻糖α1-2转移酶的糖基转移酶。一种 这种酶为岩藻糖基转移酶IV(Kukosawa-Latallo等，Genes and Development 4：1288-1303(1989))。该酶存在于某些人乳样品中 (Serenella等，Glycoconjugate Journal 6：101-114(1989))，具有特殊价值， 因此它负责某些血液群抗原的合成(Legault等，The Journal of Biological Chemistry 270：20987-20996和Ginsburg等，Immunology of the Erythrocyt， Alan R.Liss，Inc.，New York，New York)。这些血液群抗原非常重要， 因为它们在存在癌时水平升高(Orntof等，The Journal of Biological Chemistry 271：32260-32268(1996))，并且与诸如炎症的胞粘连现象有 关(Lowe等，The Journal of Biological Chemistry 266：17467-17477))。人 岩藻糖基转移酶IV的表达和3-岩藻糖乳糖的合成如下进行：

使用以下试剂：

·500mM氢氧化钠和200mM氢氧化钠，RICCA Chemical Company(Arlington，TX)，无碳酸盐

·可示踪的NIST(Baxter Inc.，McGaw Park，IL)

·乙酸钠，ACS级(Sigma，St.Louis，MO.)

·FACE试剂盒(Glyko Inc.，Novato，CA)

·Milli-Q水(Millipore，Bedford，MA)

·硫酸Ultrex超纯级(Baxter)

样品干燥：所有样品和标准品均用配有冷冻蒸汽捕获器RVT4104 (Savant，Farmingdale，IL)的Speed Vac Plus SC210A干燥。 A.质粒的制备和转基因胚胎的产生：

在俄亥俄大学的爱迪生生物技术研究所(Athens，Ohio)制备基因构 成物。将编码人岩藻糖基转移酶(IV)的cDNA(即从前述质粒(Prieto等， Journal of Biological Chemistry 270：29515-29519(1995))切下的线性 DNA片段，该DNA片段含有包括所述乳清酸性蛋白启动子在内的转 录调节区、编码人H-α1-2岩藻糖基转移酶的cDNA和编码牛生长激素 多腺苷酸化信号的序列)插入含有牛生长激素多腺甘酸化信号(bGH polyA)和生乳应答型鼠乳清酸性蛋白(WAP)启动子的质粒中。将 EcoRI-BamHI片段微注射入小鼠胚胎的原核中。通过尾狭线印迹检测 到存在所述基因。收集哺乳雌鼠的乳，冷冻贮存于-70℃，直至运送至 Ross Labs(Columbus，OH)进行糖类分析。获得3只转基因雌鼠。收集 并分析得自其中2只雌鼠的乳。 B.样品和标准品的HPAEC分析：

用配有以下装置的Dionex Bio-LC系统，分析小鼠乳寡糖和寡糖 标准品：

泵：          Dionex高级梯度泵

探测器：      配有金工作电极和pH/参考电极的Dionex脉

              冲电化学检测器

自动加样器：  Spectrophysics Refrigerated AS3500

柱：          上接一个护罩(4×50mm)的2根Dionex

              CarboPac PA1分析型柱(每根4×250mm，串

              联连接)

化学抑制：    Dionex AMMS-II Anion Micromembrance

              Suppression，(在检测器后、但在分部收集器之

              前安装，用来中和样品)，用Dionex AutoRegen

              Apparatus和阴离子再生柱通过0.15％硫酸再

              生

分部收集器：  BioRad 2110型(BioRad Inc.，Hercules，CA)

所有设备均购自Dionex，Inc.(Sunnyvale，CA)，除非另有说明。所 用的洗脱剂为(A)Milli-Q水(或相当物)、(B)500mM氢氧化钠、(C)600 mM乙酸钠的100mM氢氧化钠溶液和/或(D)200mM氢氧化钠的组 合，流速为1.0ml/min。以下表V有所用两种方法的洗脱剂分布型。 检测器环境为以下表VI所列的环境。注射体积为20μl。

所有样品和/或标准品均不进行进一步稀释，按制备的进行分析。 当认为必需进一步表征时，收集流分(每个流分0.5分钟)并在其收集管 中干燥。然后将这些样品标记，用于FACE分析。可能时，获得转基 因动物和对照动物的层析图。作为初步表征步骤，将等份样品掺入3- 岩藻糖乳糖真正的标准品。以该方式证明新寡糖与真正的3-岩藻糖乳 糖其同洗脱出。

              表V：洗脱剂分布型 A＝Milli-Q水 B＝500mM NaOHC＝600mM  NaOAc/100mM NaOHD＝200mM NaOH

方法     时间     (min)     A％     B％     C％     D％     0.0     99     1     0     0     60.0     0     100     0     0     60.1     99     1     0     0     75.0     99     1     0     0

              表VI：检测器环境    积分参数   方法1：   方法2：    起始峰宽   50   8.0    峰阈值   0.5   25    峰面积剔除值   500   1000    PED记录仪范围   0.100uC   0.300uC

                       方法

         波形                        积分   时间(sec)     电势(V)   开始(sec)   结束(sec)     0.00     0.00     0.20     0.40     0.40     0.05     0.41     0.75     0.60     0.75     0.61     -0.15     1.00     -0.15

C.荧光团辅助的糖类电泳(FACE)：

制备样品和标准品，用试剂盒并按照生产商提供的说明(Glyko， Novalto，CA)进行FACE。以下是建议的电泳条件。凝胶用FACE成象 器(Glyko)成象。

如前所述，将乳寡糖提取物样品(10μl)干燥，并于45℃标记3小 时用于寡糖分析(Glyko)。干燥后，将样品重悬浮于10μl水中，将2μl 上样至聚丙烯酰胺寡糖分离胶上。用Glyko Face Imager获得电泳图的 成象。

D.小鼠乳的提取：

将贮存于-70℃的小鼠乳样品于室温解冻，并涡旋混合。将50μl 吸移至500μl Eppendorf管中，加入100μl冷的无水乙醇。将所得混合 物涡旋混合，并用BioFuge 15(Baxter，McGaw Park，IL)于4℃以1100 rpm离心15分钟。离心后，将85μl透明的上清液转移至另一500μl 离心管中，加入199μl蒸馏的去离子水。将所得混合物充分混合，将 50μl转移至自动加液器管制瓶中，用水1∶1稀释，并上样至高pH阴 离子交换层析(HPAEC)。这最后一种溶液被认为是所述乳样品的寡糖 提取物。

E.将直正的3-岩藻糖乳糖掺入对照小鼠乳中

将50mg/升3-岩藻糖乳糖Galβ1-4[Fucα1-3]Glc溶液加入50μl 上述寡糖提取物中，并充分混合。然后将该掺料的乳样品直接上样层 析，并与用1倍体积的水稀释的寡糖提取物比较。

F.外切糖苷酶处理：

得自棒状杆菌属菌种(Corynehacterium sp.)和链霉菌属菌种 (Streptomyces sp.)的岩藻糖苷酶(α1-3/4特异性的)购自Takara Panvera (Madison WI)。用大肠杆菌(E.coli)和所用的其它化学药品为可得到的 最高纯度，均购自Sigma Chemical Co.(St.Louis，MO)，除非另有说明。

G.中性和带电荷寡糖的分离：

将寡糖提取物(200μl等份)分离为中性组分和带电荷组分，以有利 于由于所述转基因编码的岩藻糖基转移酶的作用而合成的新寡糖的检 测和鉴别。

通过使约20倍体积的0.002M pH5.4乙酸吡啶缓冲液通过一根 DE-52柱(二乙基氨基乙基纤维素，Whatman，Maidstone，英格兰)，使该 柱在所述缓冲液中平衡。将所述寡糖提取物等份样品上样至该柱，使 其渗透到树脂中，静置5-10分钟。然后，通过用6倍体积的同一缓冲 液洗脱，洗脱出中性寡糖。将由此获得的组分干燥，并制备用于标记 和荧光团辅助的糖类电泳。随后，通过用5倍体积的0.2M乙酸吡啶 缓冲液冲洗该柱，洗脱出带电荷组分。

以上方法的结果如下：

图14显示对照和转基因的乳寡糖提取物的电泳图(分别为A板和 B板)。可以清楚地观察到，由用岩藻糖基转移酶FucT-IV转染的动物 获得的乳产生一个峰信号，而在非转移对照动物乳中仅有痕量信号。 另外，B板所示的物质掺有真正的3-岩藻糖乳糖，以确定转基因动物 乳中存在的新寡糖是否确实是3-岩藻糖乳糖(C板)。该糖的洗脱进一步 与B板中箭头所示的真正的3-岩藻糖乳糖单独洗脱一致。

另外，将来自对照和转基因动物的寡糖提取物分离为中性寡糖和 唾液酸寡糖或带负电寡糖结构。当标记的寡糖经凝胶电泳分离时，这 使得可以更加简单地成象。图15为用来分离标记的中性寡糖的凝胶的 图象。(1道为标记的淀粉水解物，用作分子量标准，2道为得自非转 基因对照动物乳的中性分布图，3道为真正的3岩藻糖乳糖，4道为表 达FucT-IV的转基因动物的中性分布图，而5道为4道的同一物质， 但经特异性的岩藻糖苷酶消化)。与真正的3岩藻糖乳糖共同迁移的带 仅在得自转基因样品的分布图中清晰可见，当用特异性3-岩藻糖苷酶 处理时该带消失。另外，该物质不易被α1-2-岩藻糖苷酶水解。

为了进一步特征鉴定所述新寡糖，直接从层析流出液中收集组 分。将寡糖提取物如上所述进行HPAEC，分部收集流出液。每种组分 为0.5分钟的流出液。在图16的A板中，用括号显示转基因乳样品的 收集组分，而B板用括号表示非转基因对照的收集组分。将这些组分 标记并经FACE，如图16电泳图图象的泳道鉴别说明所示。

HPAEC和FACE均表明，非转基因动物仅有痕量的与真正的3 岩藻糖乳糖共同迁移的寡糖(5道)。然而，由得自转基因动物乳样品的 寡糖提取物得到的组分产生清晰的与3-岩藻糖乳糖共同迁移的信号。 该进一步支持3-岩藻糖乳糖是通过所述转基因表达而合成的观念。 实施例IV

通过两种先前建立的鼠转基因系的品种间杂交同时表达两种转

基因岩藻糖基转移酶

让由生乳启动于驱动表达人岩藻糖基转移酶“H”的稳定转基因 系(Prieto等，Journal of Biological Chemistry，270：29515-29519(1995))的 雌性小鼠，与也由生乳启动子驱动表达鼠Galα1-3转移酶的稳定转基 因系的雄性小鼠交配(参见实施例I)。

利用尾部活检并用合适的杂交探针探测，评估所得后代其基因组 中所述转基因的存在。将确定为两种转基因阳性的雌鼠进一步交配， 使其受孕至足月。由这些雌鼠之一获得乳，如实施例I和实施例II所 述，通过高pH阴离子交换层析(HPAEC)确定糖类分布型。

如图17和图18观察到的，可以于2’-岩藻糖乳糖的洗脱时间观察 到一个主要信号，而准确地于合成的三糖Galα1-3 Galβ1-4Glc的洗脱 时间观察到一个次要信号。显示了真正标准品的洗脱位置。

具体地说，上述结果表明，为了获得产生含复杂寡糖和糖蛋白分 布型的乳的转基因动物，不必从头开始并随后给小鼠胚胎注射新的糖 基转移酶编码构成物。表达不同糖基转移酶的转基因动物的品种间杂 交将产生由其亲代按照孟德尔遗传学遗传转移酶的动物。该又将导致 相关第二基因产物的合成。 实施例V

在小鼠生乳乳腺中转基因表达细菌糖基转移酶(即UDP- GlcNAc：Galβ1-4)

使用得自多糖奈瑟氏球菌(Neisseria polysaccharea)的GlcNAc转移 酶。改变编码该酶的基因的密码子偏倚，以有利于在哺乳动物基因中 常见的密码子使用。“重偏倚”的基因用来转染通常用作鼠培养细胞 系的鼠“L”细胞。一旦在这些哺乳动物细胞中证明活性，则将所得的 编码所述GlcNAc转移酶的DNA用来制备适于在小鼠生乳期间转基因 表达的构成物。

通过液相合成测定评估GlcNAc转移酶活性。小鼠“L”细胞(即 来自一个培养皿的沉淀)重悬浮于含1mM CaCl2、20mM乳糖和20mM UDP-GlcNAC的磷酸缓冲盐缓冲液中。将所得的混合物超声处理5分 钟，于37℃温育过夜。然后使所得的温育混合物通过microcon(Amicon， Beverly，MA)centricon(10,000 AMU，MW截留值)过滤器过滤，将滤液 稀释用于HPAEC分析。

如实施例I所报道的制备寡糖提取物。图19-21清楚地表明，该 细菌酶成功地在哺乳动物组织中表达。

由于N-乙酰-葡糖胺转移酶的表达，所述转基因动物乳可以含有 四糖乳糖-N-新四糖(NnnT)。

本申请是1994年3月9日申请的未决的美国专利申请系列第 08/208,889号、1996年9月16日申请的未决的美国专利系列第 08/715,259号(为1994年3月9日申请的放弃的美国专利申请系列第 08/209,132号的继续)、1995年5月2日申请的未决的美国专利申请序 列第08/434,151号(为1994年3月9日申请的未决的美国专利申请系 列第08/209,132号的分案)和1995年5月2日申请的未决的美国专利 申请系列第08/433,271号(为未决的美国专利申请系列第08/209,122号 的分案)的部分继续，所有这些专利申请均通过引用结合到本文中。

                       发明背景