Allergy treatment with acid treatment aqueous whey protein extract

本発明は、乳清タンパク質抽出物の製造、乳児用調製粉乳、および食物アレルギーの低減または防止に関する。

母乳を与えられない乳児は、栄養源として、正常な成長と発達を確実にするのを助けるために、乳児用調製粉乳に依存しなくてはならない。

乳児用調製粉乳は、一般に牛乳ベースである。 しかし約２〜３％の乳児は、牛乳中のタンパク質に対してアレルギーがある。 アレルゲンに対する免疫応答を制御するいくつかの要素があるが、乳児におけるＴｈ１／Ｔｈ２バランスが免疫発達において重要であり、調製粉乳には免疫制御機序を促進し、Ｔｈ１およびＴｈ２分化を進めるサイトカインが欠乏している。 したがって適切な免疫応答と発達を促進する健康補助食品、食材または乳児用調製粉乳に対する必要性がある。

一実施形態では、
− 乳清タンパク質含有組成物を水溶液と接触させ、それによって可溶性タンパク質含有構成素と不溶性構成要素を含むサンプルを形成するステップと；
− 可溶性タンパク質含有構成要素をサンプルから回収するステップと；
− 可溶性タンパク質含有構成要素を酸性化するステップを含み；
それによって乳清タンパク質抽出物が形成する、乳清タンパク質含有組成物から乳清タンパク質抽出物を製造する方法が提供される。

別の実施形態では、
− 乳清タンパク質含有溶液中で不溶性乳清タンパク質から可溶性乳清タンパク質を分離するステップと；
− 可溶性乳清タンパク質を酸性化するステップを含み；
それによって乳清タンパク質抽出物を形成する、乳清タンパク質含有溶液から乳清タンパク質抽出物を製造する方法が提供される。

別の実施形態では、酸処理水溶性乳清タンパク質含有構成要素を含む乳清タンパク質抽出物が提供される。 特定の実施形態では、抽出物は上述の方法に従って製造される。

別の実施形態では、乳児用調製粉乳、健康補助食品または食材を製造するための、酸処理水溶性乳清タンパク質含有構成要素を含む乳清タンパク質抽出物の使用が提供される。

関連実施形態では、酸処理水溶性乳清タンパク質含有構成要素を含む乳清タンパク質抽出物を含む、乳児用調製粉乳、健康補助食品または食材が提供される。

さらなる実施形態では、食物アレルギーを予防しまたは最小限に抑えるための薬剤を製造するための、酸処理水溶性乳清タンパク質含有構成要素を含む乳清タンパク質抽出物の使用が提供される。

別の実施形態では、酸処理水溶性乳清タンパク質含有構成要素を含む乳清タンパク質抽出物を個体に提供するステップを含む、食物アレルギーを予防しまたは最小限に抑える方法が提供される。

さらなる実施形態では、酸処理水溶性乳清タンパク質含有構成要素を含む乳清タンパク質抽出物を個体に提供するステップを含む、食物アレルギーを起こしやすい個体においてＴＮＦまたはＩＬ−２の放出を減少させる方法が提供される。

なおもさらなる実施形態では、酸処理水溶性乳清タンパク質含有構成要素を含む乳清タンパク質抽出物を個体に提供するステップを含む、食物アレルギーを起こしやすい個体においてＩＬ−１８の放出を増大させる方法が提供される。

なおもさらなる実施形態では、酸処理水溶性乳清タンパク質含有構成要素を含む乳清タンパク質抽出物を個体に提供するステップを含む、食物アレルギーを起こしやすい個体において腸管上皮細胞バリア機能を高める方法が提供される。

なおもさらなる実施形態では、酸処理水溶性乳清タンパク質含有構成要素を含む乳清タンパク質抽出物を個体に提供するステップを含む、食物アレルギーを起こしやすい個体においてＴｈ１免疫応答を高める方法が提供される。

別の実施形態では、酸処理水溶性乳清タンパク質含有構成要素を含む乳清タンパク質抽出物を個体に提供するステップを含む、食物アレルギーを起こしやすい個体においてＴｈ２免疫応答を最小限に抑える方法が提供される。

図１は、抽出物（Ｉ２３）による処置後のＲＡＷ細胞からのＴＮＦ−α放出の阻害。

図２は、抽出物（Ｉ２３）による処置後のＴＨＰ−１細胞からのＩＬ−１８放出の増大。

図３は、抽出物（Ｉ２３）による処置後の一次ＣＤ４＋Ｔ細胞からのＩＬ−２放出の阻害。

図４は、ＣＤ４Ｔ細胞によるＩＬ−２放出に対する抽出物（Ｉ２３）の効果。

図５は、ＣＤ３およびＣＤ２８刺激後の、ＣＤ４Ｔ細胞によるＩＬ−２放出に対する抽出物（Ｉ２３）（酸性化または中性）の効果。

図６は、中性または酸性化された抽出物（Ｉ２３）またはラクトフェリン処置後のＴ８４細胞の経皮抵抗性。

図７は、中性（Ｉ２３中性）または酸活性化（酸性化Ｉ２３）どちらかの抽出物による処置後のＴ８４細胞の経皮性抵抗性。

図８は、調製粉乳中１／８または１／１２希釈での、または３回／日のボーラス用量としての抽出物（Ｉ２３）処置後の血清ＩｇＥ。

図９は、調製粉乳中１／８または１／１２希釈での、または３回／日のボーラス用量としての抽出物（Ｉ２３）処置後のＢＬＧ特異的ｌｇＧ１濃度（異常値も含まれｘで示される）。

図１０は、調製粉乳中１／８または１／１２希釈での、または３回／日のボーラス用量としての抽出物（Ｉ２３）処置後の血清ＲＭＣＰＩＩ濃度。

図１１は、調製粉乳中１／８または１／１２希釈での、または３回／日のボーラス用量としての抽出物（Ｉ２３）処置後の肥満細胞数／ｍｍ

^２基底膜。

図１２（Ａ）は、調製粉乳中１／８または１／１２希釈での、または３回／日のボーラス用量としての抽出物（Ｉ２３）処置後の腸内のＩＬ−１０。 図１２（Ｂ）は、調製粉乳中１／８または１／１２希釈での、または３回／日のボーラス用量としての抽出物（Ｉ２３）処置後の腸内のＩＦＮγ。 図１２（Ｃ）は、調製粉乳中１／８または１／１２希釈での、または３回／日のボーラス用量としての抽出物（Ｉ２３）処置後の腸内のＩＬ−４。

図１３（Ａ）は、離乳研究：血清ＢＬＧ特異的ｌｇＧ１。 抽出物（Ｉ２３）を用いた胃管栄養法は４日目に開始され、経口ＢＬＧは１４日目に開始された。 図１３（Ｂ）は、離乳研究：血清ＢＬＧ特異的ＩｇＥ。 抽出物（Ｉ２３）を用いた胃管栄養法は４日目に開始され、経口ＢＬＧは１４日目に開始された。 図１３（Ｃ）は、離乳研究：血清ＢＬＧ特異的ＲＭＣＰＩＩ。 抽出物（Ｉ２３）を用いた胃管栄養法は４日目に開始され、経口ＢＬＧは１４日目に開始された。

本明細書で開示され定義される本発明は、言及される、または本文または図面から明白である、２つ以上の個々の徴群の全ての代案の組み合わせに及ぶものと理解される。 これらの全ての異なる組み合わせは、本発明の様々な代案の態様を構成する。

ここで本発明の特定の実施形態について詳述する。 本発明を実施形態と結びつけて記載するが、これらの実施形態に限定することは意図されないものと理解される。 むしろ本発明は、特許請求の範囲によって定義される本発明の範囲内に含まれてもよい、全ての代案、修正、および同等物を包含することが意図される。

当業者は、本発明の実施において使用し得る、本明細書に記載されるものと同様の多数の方法と材料を認識するであろう。 本発明は、記載される方法と材料に決して限定されるものではない。

本明細書で開示され定義される本発明は、言及される、または本文または図面から明白である、２つ以上の個々の徴群の全ての代案の組み合わせに及ぶものと理解される。 これらの全ての異なる組み合わせは、本発明の様々な代案の態様を構成する。

本明細書での用法では、文脈が必要とする場合を除き、「含んでなる（ｃｏｍｐｒｉｓｅ）」という用語、および「含んでなる（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」、「含んでなる（ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ）」、および「含んでなる（ｃｏｍｐｒｉｓｅｄ）」などの用語のバリエーションは、さらなる添加剤、構成要素、整数またはステップを排除することを意図しない。

本発明者は、酸処理水溶性乳清タンパク質含有構成要素の形態の乳清タンパク質抽出物が、免疫制御特性を有することを意外にも発見した。 特に本明細書に記載される生体外研究は、抽出物（「Ｉ２３」としても知られている）が、Ｔｈ１応答に特徴的な生物マーカー反応を増大させながら、Ｔｈ２応答マーカーを最小化することを示す。 具体的には、これらの生体外研究は、抽出物がＣＤ４ ^＋ Ｔ細胞によるＩＬ−２分泌を低下させ、ＩＬ−１８およびＴＮＦ分泌を増大させることを示す。 重要なことには、研究は抽出物が腸管バリア機能を増強することを示す。

上に加えて、本明細書の生体内研究は、抽出物が、調製粉乳を与えられたアレルギー易発性個体において、総血清ＩｇＥ、抗ＢＬＧ ｌｇＧ１、および肥満細胞数を最小化することを示す。 なおもさらには、本明細書の生体内研究は、抽出物が、アレルギー易発性個の離乳中に、総血清ＩｇＥを最小化することを示す。 これらの所見は、調製粉乳摂取および離乳中のアレルギー易発性個体の免疫調節における、抽出物の有用性を実証する。

酸処理水溶性乳清タンパク質含有構成要素を含んでなる乳清タンパク質抽出物は、乳清タンパク質含有組成物の可溶化と、組成物の水溶性構成要素の酸性化を伴う方法によって生成されてもよい。

したがって特定の実施形態では、乳清タンパク質含有組成物から乳清タンパク質抽出物を製造する方法が提供される。 方法は、
−乳清タンパク質含有組成物を水溶液と接触させ、それによって可溶性タンパク質含有構成要素と不溶性構成要素を含むサンプルを形成するステップと；
−サンプルから可溶性タンパク質含有構成要素を回収するステップと；
−可溶性タンパク質含有構成要素を酸性化するステップを含み；
それによって乳清タンパク質抽出物が形成される。

別の実施形態では、乳清タンパク質抽出物は、水溶性乳清（液体乳清など）を酸性化する方法によって生成されてもよい。
したがって別の実施形態では、
−乳清タンパク質含有溶液中で不溶性乳清タンパク質から可溶性乳清タンパク質を分離するステップと；
−可溶性乳清タンパク質を酸性化するステップを含み；
それによって乳清タンパク質抽出物が形成する、
乳清タンパク質含有溶液から乳清タンパク質抽出物を製造する方法が提供される。

上述の方法は、酸性化された可溶性乳清タンパク質を中和する追加的ステップを含んでもよい。

「乳清」は、一般に乳が凝固する際に、カード形成とともに形成する乳の漿液または水様画分である。 乳清は典型的にチーズ製造中のカード形成時に形成される。 乳清は、乳糖、ミネラル、およびビタミンに富み、ラクトアルブミンと痕跡量の脂肪を含有する。

乳清は、あらゆる哺乳類の乳、好ましくは雌牛、ヤギまたは羊乳、より好ましくは牛乳から形成されてもよい。

「乳清タンパク質」は、一般に乳清中に見られるタンパク質である。 それは、固体、液体または濃縮物の形態で提供されてもよい。

「乳清タンパク質含有組成物」は、一般に乳清タンパク質を含む組成物である。 いくつかの実施形態では、乳清タンパク質含有組成物は乳清タンパク質からなる。 これらの実施形態では、組成物は炭水化物および脂肪などのその他の非タンパク質構成要素を含んでもよいが、組成物は、乳清中には見られないタンパク質を実質的に欠いている。 例としては、乳清タンパク質濃縮物（ＷＰＣ）および乳清タンパク質単離物（ＷＰＩ）が挙げられる。 ＷＰＣおよびＷＰＩおよびこれらの組成物を製造する方法については、本明細書でさらに詳しく述べられる。

別の実施形態では、乳清タンパク質含有組成物は、一般に乳清中には見られないタンパク質を含む。 例としては、カゼインタンパク質が挙げられる。 これらのその他のタンパク質を乳清タンパク質と共に添加して、乳清タンパク質を含有する組成物を形成してもよい。 代案としてはこれらのタンパク質は、組成物が形成される際に、乳清タンパク質含有組成物に含まれてもよい。 後者の形成された組成物の例としては、乳および乳製品が挙げられる。

一実施形態では、乳清タンパク質含有組成物は、乳清タンパク質が濃縮されていてもよい。 例えば乳清タンパク質を乳清タンパク質含有組成物に添加して、組成物中の乳清タンパク質の相対存在量を増大させてもよい。 別の実施形態では、非乳清タンパク質、またはその他の非タンパク質構成要素を乳清タンパク質含有組成物から除去し、それによって組成物中の乳清タンパク質の相対存在量を増大させてもよい。 濾過をはじめとする乳清タンパク質を濃縮する方法の例は、本明細書でさらに詳しく記載される。

一実施形態では、乳清タンパク質含有組成物は、特定のタンパク質種が濃縮されていてもよい。 特に関心の持たれるタンパク質種は、免疫調節における用途を有するタンパク質、特にアレルギーを最小限に抑えまたは予防するのに有用なタンパク質である。 例としては、Ｔｈ２応答よりもＴｈ１免疫応答を媒介する傾向がある、タンパク質が挙げられる。 一例はＴＧＦ−βである。

一実施形態では、乳清タンパク質含有組成物は、離乳時に哺乳類に新たに導入される食餌性タンパク質に対する耐性を誘発するのに有用なペプチドを含んでもよい。

一実施形態では、乳清タンパク質含有組成物のタンパク質構成要素は、部分的にまたは高度に加水分解されていてもよい。 「部分的に加水分解された乳清タンパク質含有組成物」は、一般に分子量が５０００Ｄ未満のオリゴペプチドを一般に含有する。 「高度に加水分解された乳清タンパク質含有組成物」は、一般に分子量が３０００Ｄ未満のペプチドを含有する。

一実施形態では、乳清タンパク質含有組成物は、生理学的に許容可能な塩、ｐＨ緩衝剤、保存料または抗菌剤を含有してもよい。

一実施形態では、乳清タンパク質含有組成物は、甘性乳清、酸性乳清、乳糖低減乳清、脱ミネラル乳清、ＷＰＣまたはＷＰＩの１つ以上を含む。

「甘性乳清」は、チェダー、モツァレラ、およびスイスチーズなどのチーズの製造に由来してもよく、低温殺菌されており、いかなる保存料もそれに添加されていない。 甘性乳清粉末は、一般に水を除いた新鮮乳清の全構成物を同一相対比で含有する。 典型的に甘性乳清粉末は、１１〜１４．５％のタンパク質、約６３〜７５％の乳糖、約１〜１．５％の脂肪、約８．２〜８．８％の灰分、および約３．５〜５％の水分を有する。

「酸性乳清」は、カテージチーズ、クリームチーズ、およびリコッタなどのチーズの製造に由来してもよく、低温殺菌されており、いかなる保存料もそれに添加されていない。 酸性乳清粉末は、水を除く元の酸性乳清の全構成物を同一相対比で含有する。 典型的に、酸乳清粉末は、約１１〜１３．５％のタンパク質、約６１〜７０％の乳糖、約０．５〜１．５％の脂肪、約９．８〜１２．３％の灰分、および約３．５〜５％の水分を有する。 酸性乳清は、本明細書に記載される本発明で使用する前に中和されてもよい。

「乳糖低減乳清」は、乳清からの乳糖の選択的除去または加水分解によって得られてもよい。 乾燥製品中の乳糖含量は、６０％を超えてはならない。 乳糖の低減は、沈殿または濾過などの物理的分離技術、または乳糖からグルコースおよびガラクトースへの酵素的加水分解によって達成してもよい。 乳糖低減乳清の酸性度は、安全で適切な成分の添加によって調節してもよい。 典型的に、乳糖低減乳清粉末は、約１８〜２４．０％のタンパク質、約５２〜５８％の乳糖、約１〜４％の脂肪、約１１〜２２％の灰分、および約３〜４％の水分を有する。

「脱ミネラル乳清」（「減塩乳清」とも称される）は、低温殺菌乳清からミネラルの一部を除去することで得られる。 脱ミネラルの典型的レベルは、２５％、５０％、および９０％である。 乾燥製品は、灰分が７％を超えてはならない。 脱ミネラル乳清は、イオン交換、ダイアフィルトレーションまたは電気透析などの分離技術によって生成されてもよい。 脱ミネラル乳清の酸性度は、安全で適切な成分の添加によって調節してもよい。

ＷＰＣは、規定量のタンパク質を有する乳清濃縮物である。 一般にＷＰＣ３４は３４％以上のタンパク質を有する濃縮物を規定し、ＷＰＣ５０は５０％以上のタンパク質を有する濃縮物を規定し、ＷＰＣ６０は６０％以上のタンパク質を有する濃縮物を規定し、ＷＰＣ７５は７５％以上のタンパク質を有する濃縮物を規定し、ＷＰＣ８０は８０％以上のタンパク質を有する濃縮物を規定する。 これらの濃縮物は、ＷＰＣ３４およびＷＰＣ５０粉末を形成するための、低温殺菌乳清の限外濾過、濃縮水の回収とそれに続く濃縮および濃縮水の噴霧乾燥；またはＷＰＣ５０、ＷＰＣ６０、ＷＰＣ７５またはＷＰＣ８０を形成するための、濃縮水のダイアフィルトレーションと、それに続く濃縮および噴霧乾燥によって形成されてもよい。

ＷＰＩは、最終乾燥製品が９０％以上のタンパク質を含有するように、乳清から十分な非タンパク質構成物を除去することで得られる。 ＷＰＩは、膜分離法またはイオン交換によって生成される。 一例では、低温殺菌された流体乳清に精密濾過を実施して脂質除去をもたらし、次にダイアフィルトレーションを実施して透過液および乳清タンパク質単離物を形成し、次に乳清タンパク質単離物を濃縮し噴霧乾燥してＷＰＩ粉末を形成する。 別の例では、低温殺菌流体乳清にイオン交換タンパク質分離を実施して、脱タンパク質乳清をもたらし、次に吸着された乳清タンパク質を脱着して、限外濾過またはさらなるイオン交換を実施してミネラルを除去する。 次にこのように形成された乳清タンパク質単離物に濃縮および噴霧乾燥を実施して、ＷＰＩ粉末を形成する。

一実施形態では、乳清タンパク質含有組成物中のタンパク質の量は、乾燥重量を基準にして少なくとも約１０％ｗ／ｗである。

一実施形態では、タンパク質の量は約１０％〜約９０％ｗ／ｗ未満である。

一実施形態では、タンパク質の量は約１１％〜約２５％ｗ／ｗである。

一実施形態では、タンパク質の量は約１１％〜約１８％ｗ／ｗである。

一実施形態では、タンパク質の量は約１８％〜約２５％ｗ／ｗである。

一実施形態では、タンパク質の量は約３４％〜約８０％ｗ／ｗである。

一実施形態では、タンパク質の量は約５０％〜約７５％ｗ／ｗである。

一実施形態では、タンパク質の量は約５０％〜約６０％ｗ／ｗである。

一実施形態では、タンパク質の量は約６０％〜約７５％ｗ／ｗである。

一実施形態では、タンパク質の量は約９０％〜約９５％ｗ／ｗである。

一実施形態では、乳清タンパク質含有組成物は、炭水化物（乳糖など）および脂肪の少なくとも１つを含む。

一実施形態では、乳清タンパク質含有組成物中の乳糖の量は、乾燥重量を基準にして少なくとも約１％ｗ／ｗである。

一実施形態では、乳糖の量は約１％〜約８０％未満である。

一実施形態では、乳糖の量は約６３％〜約７５％ｗ／ｗである。

一実施形態では、乳糖の量は約６１％〜約７０％ｗ／ｗである。

一実施形態では、乳糖の量は約５２％〜約５８％ｗ／ｗである。

一実施形態では、乳糖の量は約７０％〜約８０％ｗ／ｗである。

一実施形態では、乳糖の量は約４８％〜約５２％ｗ／ｗである。

一実施形態では、乳糖の量は約３３％〜約３７％ｗ／ｗである。

一実施形態では、乳糖の量は約２５％〜約３０％ｗ／ｗである。

一実施形態では、乳糖の量は約１０％〜約１５％ｗ／ｗである。

一実施形態では、乳糖の量は約４％〜約８％ｗ／ｗである。

一実施形態では、乳糖の量は約０．５％〜約１．０％ｗ／ｗである。

一実施形態では、乳清タンパク質含有組成物中の脂肪の量は、乾燥重量を基準にして少なくとも約０．５％ｗ／ｗである。

一実施形態では、脂肪の量は約０．５％〜約１０％ｗ／ｗ未満である。

一実施形態では、脂肪の量は約１％〜約５％ｗ／ｗである。

一実施形態では、脂肪の量は約５％〜約７％ｗ／ｗである。

一実施形態では、乳清タンパク質含有組成物は、約８０〜８２％のタンパク質、約４〜８％の乳糖、および約４〜８％の脂肪ｗ／ｗを含む。

一実施形態では、乳清タンパク質含有組成物はＷＰＣである。

一実施形態では、ＷＰＣはＷＰＣ８０である。 その他のＷＰＣとしては、ＷＰＣ３４、ＷＰＣ５０、ＷＰＣ６０、およびＷＰＣ７５が挙げられる。

一実施形態では、乳清タンパク質含有組成物は、水溶液との接触のための粉末形態で提供される。

「水性溶媒」としてもまた知られている「水溶液」は、乳清タンパク質を完全にまたは部分的に溶解するために使用し得る、水ベースの構成要素である。 水溶液は、精製水、蒸留水または滅菌水をはじめとする水であってもよい。 水溶液は、生理学的に許容可能な塩を含有してもよい。 これらの塩を含有する溶液の例としては、食塩水が挙げられる。 水溶液は、ｐＨ緩衝剤または保存料または抗菌剤を含有してもよい。

「水溶性タンパク質含有構成要素」または「画分」は、一般に、水性溶媒中に完全にまたは部分的に溶解したタンパク質を含有する、サンプルの構成要素または画分である。 これはまた、「水性可溶化タンパク質含有構成要素」または「水性可溶化タンパク質含有画分」と称されこともある。 水性溶媒に完全に溶解するタンパク質は、疎水性または非極性側鎖および基がタンパク質内に埋没して溶液と接触せず、極性または親水性側鎖が溶媒との接触のためにタンパク質表面に露出する高次構造を、溶液中で取る傾向がある。 水性溶媒に部分的に溶解するタンパク質は、疎水性側鎖または基のいくつかが、タンパク質表面で溶媒に曝露する高次構造を、溶液中で取ってもよい。

一実施形態では、可溶化タンパク質含有構成要素の形成を増進する条件で、乳清タンパク質含有組成物を溶液と接触させる。 例えば既知の方法を使用して、溶液と組成物の混合物をかき混ぜまたは撹拌してもよい。 温度を調節して、完全なまたは部分的可溶化を向上させてもよい。 可溶化を助ける１つ以上の薬剤を混合物に添加することもできる。

一実施形態では、少なくとも約０．５％ｗ／ｗの乳清タンパク質含有組成物の量で水溶液と接触する、乳清タンパク質含有組成物が提供される。

一実施形態では、乳清タンパク質含有組成物は約０．５％〜１０％ｗ／ｗの量で提供される。

一実施形態では、乳清タンパク質含有組成物は約０．５％〜７％ｗ／ｗの量で提供される。

一実施形態では、乳清タンパク質含有組成物は約５％〜６％ｗ／ｗの量で提供される。

典型的には、構成要素中で完全にまたは部分的に可溶化するタンパク質は、乳清タンパク質であるが、方法のための出発または供給材料を形成する乳清タンパク質含有組成物次第で、構成要素中にその他の乳由来タンパク質があってもよい。

方法で形成される「不溶性の構成要素構成要素」は、一般にタンパク質、脂肪または灰分を含有する。 一般に水溶液をかき混ぜ、撹拌しまたは温度調節しても、不溶性構成要素は溶解しない。

一般に、溶液量あたりより多量の乳清タンパク質含有組成物が提供される場合に、より多量の不溶性構成要素が形成する。

一般に不溶性構成要素は、ペースト様テクスチャと白色または白みがかった色を有する。

一般に不溶性の構成要素は容器底に沈殿し、その中で乳清タンパク質含有構成要素は水性溶媒と接触する。 沈殿は、遠心分離によって、またはそれによらずに生じてもよい。

可溶化タンパク質含有構成要素は、可溶化タンパク質含有構成要素を不溶性固体から分離することで回収することもできる。 一般に、実質的に全ての可溶化タンパク質含有構成要素が回収される。 いくつかの実施形態では、実質的に全ての可溶化タンパク質含有構成要素が不溶性固体から分離される。 仮説による拘束は望まないが、不溶性構成要素は、Ｔｈ１免疫応答を抑制し、またはバリア機能を撹乱する分子を含有するかもしれないので、不溶性構成要素を水溶性構成要素から分離することは重要であると考えられる。

分離法は、一段または多段工程であってもよい。

可溶化タンパク質含有構成要素を不溶性固体から分離するために、上清などの完全にまたは部分的に可溶性の画分を固体から分離するために乳加工で知られている、任意の数の技術を使用することもできる。 例としては、傾斜法、遠心分離、クロマトグラフィー（イオン交換、ゲル濾過、ＨＰＬＣ、ＲＰ−ＨＰＬＣ、アフィニティ）、電気透析、濾過または吸着が挙げられる。

典型的に、可溶化タンパク質含有構成要素は、可溶化タンパク質含有構成要素に、少なくとも約２．５、好ましくは約３〜６．０、より好ましくは約３．０〜５．５、３．５〜５．０のｐＨを提供することで酸性化される。

仮説による拘束は望まないが、酸性化ステップは、ＬＡＰペプチドを除去することで、水溶性構成要素中のＴＧＦ−βを活性化すると考えられる。

酸性化ステップは、サンプルからの可溶化タンパク質含有構成要素の回収前に実施してもよいものと理解されるが、典型的にはそれは回収後に実施され、その場合、可溶化タンパク質含有構成要素に酸が提供される。

したがって −乳清タンパク質含有組成物を水溶液と接触させ、それによって可溶性タンパク質含有構成要素と不溶性構成要素を含むサンプルを形成するステップと；
−可溶性タンパク質含有構成要素をサンプルから回収するステップと；
−可溶性タンパク質含有構成要素を酸性化するステップをこの順で含み、それによって乳清タンパク質抽出物が生成する、乳清タンパク質含有組成物から乳清タンパク質抽出物を製造する方法が提供される。

典型的には、可溶化タンパク質含有構成要素は、可溶化タンパク質含有構成要素に、約６．５〜７．５、好ましくは約７のｐＨを提供することで中和される。

中和工程は可溶化タンパク質含有構成要素をサンプルから回収する前に実施してもよいが、一般にそれは可溶化タンパク質含有構成要素をサンプルから回収し酸性化した後に実施される。

上述の乳清タンパク質抽出物は、液体または固体形態で提供されてもよい。 典型的にはそれは粉末などの固体形態で提供される。 したがって特定の実施形態では、上述の方法は、可溶化タンパク質含有構成要素を乾燥させ、それによって粉末を得るさらなるステップを含む。 適切な乾燥方法は、熟練労働者に良く知られている。 真空濃縮、噴霧乾燥、ローラーおよびドラム乾燥をはじめとする蒸発が実例である。

上述の方法によって形成されるものをはじめとする、酸処理水溶性乳清タンパク質含有構成要素を含んでなる、乳清タンパク質抽出物は、使用前にさらに加工または変性することもできる。 以下の方法のいずれか１つ、または変法を応用することもできる。
・ 例えば本明細書でさらに詳しく考察する膜濾過技術を使用した、乳清タンパク質の富化、濃縮または分画；
・ 抽出物中に含有される、部分的にまたは高度に加水分解されタンパク質の酵素的加水分解；
・ 例えば本明細書でさらに詳しく考察する、電気透析技術を使用したミネラルまたは灰分除去；
・ 技術本明細書でさらに詳しく述べる、クロマトグラフィーまたは結晶化技術を使用した、非タンパク質構成要素の除去；
・ ＴＧＦーβなどの免疫調節分子の添加；
・ 離乳中に新たに与えられる、食餌性タンパク質に対する耐性を誘発するのに有用なペプチド抗原の添加；
・ さらなる乾燥；
・ 顆粒の定寸。

逆浸透、ナノ濾過、限外濾過、および精密濾過をはじめとする膜技術は、半透過性膜を使用した圧力駆動分離を伴ってもよく、それによってポンプとバルブの組み合わせが膜を越えて圧力勾配を作り出し、乳清中のより小型の分子を膜に通過させることで、膜を通過できないより大型の分子および粒子を濃縮する。 異なる孔径または分子量カットオフの膜を使用して、選択的分離または濃縮を達成し得る。 膜の例としては、逆浸透（ＲＯ）、ナノ濾過（ＮＦ）、限外濾過（ＵＦ）、および精密濾過（ＭＦ）で使用されるものが挙げられる。 ＦＲ膜は最も小さい孔を有し、水だけを膜に通過させる一方で、乳清のその他の全構成要素は保持される。 一般的なＲＯ膜の用途は、水の脱塩である。 これらの膜は、一般に塩を阻止するそれらの能力に従って格付けされる。 真空濃縮と同様に、ＲＯ系は乳清の固体構成要素の比率を変化させず、むしろ水のみを除去することで固体構成要素を濃縮する。 ＲＯによる乳清の濃縮度は、水の除去に伴う乳清の粘度増大と浸透圧によって制限される。

ナノ濾過膜は、時折「緩い」ＲＯ膜と称される。 ＮＦ膜は、水と共にいくつかの一価のイオンに膜を通過させ、乳清の部分的「脱塩」をもたらす。 単一電荷があるミネラルのみが除去されるため、ＮＦ膜は乳清のミネラル含量をわずかにのみ低下させる。 乳清のタイプによっては、ＮＦ膜を使用して塩化ナトリウム含量を低下させることもできる。

限外濾過膜は、ＲＯまたはＮＦ膜よりもさらに大きな孔を有する。 ＵＦ膜は乳糖および灰分を透過しながら乳清中にタンパク質を保持するので、ＵＦ膜はＷＰＣの製造の標準ツールとなっている。 除去される乳糖の量および灰分の量が大きいほど、ＷＰＣのタンパク質含量が高くなる。 タンパク質濃度が増大するにつれて乳清粘度は増大するので、５０％を超えるタンパク質があるＷＰＣを製造する場合、ダイアフィルトレーションとして知られている工程において、追加量の乳糖とミネラルを洗い出すために、水を濃縮水に添加することが必要である。

精密濾過膜は、膜分離法中で最も大きい孔を有する。 より小さな可溶性タンパク質、ペプチド、乳糖、ミネラル、非タンパク質窒素構成要素、および水はＭＦ膜を容易に透過する。 脂肪小球はＭＦ膜によって保持されるので、これらの膜を使用して遠心分離によって回収されない少量の脂肪を除去し得る。 ＷＰＩを製造するためには、痕跡量の脂肪を除去しなくてはならない。

電気透析もまた半透膜を使用するが、乳清構成要を分離する駆動力として、圧力を電流で置き換える。 電気透析膜はミネラルのみを通過させる一方で、乳糖およびタンパク質を保持する。 電流は荷電無機イオンを膜に通過させて、鹹水流中に引き出す。 乳糖は電流によって影響されず、タンパク質は膜を通過できない。 電気透析は乳清タンパク質を変性させない一方で、最高７５％の乳清中ミネラルを除去する。

イオン交換はクロマトグラフィーの一種である。 例えば脱ミネラル乳清を製造する場合、乳清中のイオン（荷電ミネラル）を結合する吸収剤ビーズを含有するカラムに乳清を通過させる。 タンパク質および乳糖などの乳清構成要素の残部は、妨げられずにカラムを通過する。 したがって得られた乳清は、未処理乳清と比較してミネラルの量が低下する。 イオン交換はタンパク質を変性させず、乳清中ミネラルの最高９８％を除去し得る。

クロマトグラフィーは処理は荷電樹脂を使用して、乳清中のタンパク質をその他の構成要素から分離する。 タンパク質は逆帯電した樹脂に結合する一方、乳糖のような構成要素は結合せず、したがってシステムをそのまま通過する。 樹脂を含有するカラムまたはタンクを乳清が通過した後に緩衝液をシステムに送り込んで、結合タンパク質を遊離させる。 タンパク質をＵＦによってさらに精製し、次に噴霧乾燥し得る。

クロマトグラフィーはまた、特異的タンパク質を乳清中のその他のタンパク質から分離するのに使用し得る。 ラクトフェリンおよびラクトペルオキシダーゼは、甘性乳清に典型的なｐＨで正に帯電する。 乳清の主要タンパク質であるαラクトアルブミン、βラクトグロブリン、およびウシ血清アルブミンは同一ｐＨで負に帯電する。 負に帯電した樹脂を含有するタンクを乳清が通過する際、正に帯電したラクトフェリンおよびラクトペルオキシダーゼが樹脂に結合するのに対し、その他のタンパク質および乳清構成物はカラムを通過する。 次にアルカリ性溶液をカラムに送り込み、結合タンパク質を樹脂から遊離させる。 次に回収されたタンパク質を洗浄し、噴霧乾燥する。

結晶化を使用して、乳糖または非吸湿性乳清／透過液粉末のどちらかを生成する。 蒸発によって乳清または透過液を少なくとも５０％全固形物に濃縮すると乳糖は過飽和し、濃縮乳清／透過液を冷却すると乳糖が容易に結晶化する。 乳清／透過液が十分に冷却した後、高品質乳糖へのさらなる加工のために乳糖結晶を除去し得て、または結晶化乳糖がある乳清／透過液溶液を乾燥させて、非吸湿性乳清／透過液粉末を生成し得る。

酵素βガラクトシダーゼを乳清に添加して、二糖類である乳糖をその構成要素単糖類であるグルコースとガラクトースに加水分解し得る。 時間および温度を使用して、乳糖加水分解の程度を調節する。

プロテアーゼは、タンパク質を加水分解するために乳清に添加される酵素である。 添加プロテアーゼのタイプ、時間、および温度を使用して、タンパク質加水分解のタイプおよび程度を調節する。

原則として加水分解によるタンパク質修飾は、重合の反対である。 プロテアーゼは、タンパク質分子のペプチド結合を切断して、より小さなペプチドおよびポリペプチドをもたらすのに使用される、最も一般的な酵素群である。 加水分解度、すなわち乳清タンパク質が加水分解される程度は、加水分解産物の食品成分としての機能特性に影響を及ぼす。

乳清タンパク質は加熱によって変性させ、それらの機能特性を変化させ得る。 時間および温度の組み合わせを使用して、乳清タンパク質変性の量を調節する。 制御された変性は、予熱処理中に行われることが多い。 未変性乳清タンパク質の量は、乳清タンパク質窒素指数によって測定し得る。

一実施形態では、乳児用調製粉乳、後継調製粉乳、健康補助食品または食材の製造のために、上述の抽出物の使用が提供される。

乳児用調製粉乳は、一般に母乳の代わりに新生児に与える栄養組成物である。 乳児用調製粉乳は、約４〜６ヶ月齢まで与えることもできる。

後期調製粉乳は、一般に約６ヶ月齢以上の乳児に与える栄養組成物である。

調製粉乳は、あらゆる適切な様式で調製されてもよい。 例えばそれは、適切な比率の炭水化物源または脂肪源などのその他の栄養構成要素と共に、本明細書に記載される乳清タンパク質抽出物を混ぜ合わせて調製してもよい。 使用される場合、この時点で乳化剤を含めることもできる。 免疫調節分子、ビタミン、およびミネラルなどのその他の構成要素は、この時点で添加してもよいが、通常は熱分解を避けるために後から添加される。 あらゆる親油性ビタミン、乳化剤などは、混合に先だって脂肪源に溶解してもよい。 次に水、好ましくは逆浸透水を混ぜ込んで液体混合物を形成する。 水の温度は、成分の分散を助けるために、好都合には約５０℃〜約８０℃である。 市販される液化装置を使用して、液体混合物を形成することもできる。 次に液体混合物を例えば二段階で均質化する。

次に液体混合物を例えば約８０℃〜約１５０℃の範囲の温度で約５秒間〜約５分間迅速に加熱することによって液体混合物を加熱処理し、細菌負荷を低下させてもよい。 これは水蒸気圧入、オートクレーブによって、または例えばプレート熱交換器などの熱交換器によって実施されてもよい。

次に液体混合物を例えばフラッシュ冷却によって、約６０℃〜約８５℃に冷却してもよい。 次に液体混合物を例えば約１０ＭＰａ〜約３０ＭＰａの第一段と、約２ＭＰａ〜約１０ＭＰａの第二段の二段階で、再度均質化してもよい。 次に均質化混合物をさらに冷却して、ビタミンおよびミネラルなどのあらゆる熱過敏性構成要素を添加してもよい。 均質化混合物のｐＨおよび固形分は、この時点で都合良く調節できる。

均質化混合物を噴霧乾燥機または凍結乾燥機などの適切な乾燥装置に移し、粉末に変換する。 粉末は、約５重量％未満の水分含量を有するべきである。

液体製品が好ましければ、均質化混合物を滅菌し、次に適切な容器に無菌充填することもできる。 別の実施形態では、熱処理などを通じた、貯蔵寿命を延長させる様式で製品を処理してもよい。

一実施形態では、上述の抽出物を含む乳児用調製粉乳、健康補助食品または食材が提供される。

調製粉乳は、炭水化物源を含有してもよい。 乳糖、ショ糖、マルトデキストリン、デンプン、およびそれらの混合物などの乳児用調製粉乳に普通見られるあらゆる炭水化物源を使用することもできるが、好ましい炭水化物源は乳糖である。 好ましくは炭水化物源は、調製粉乳の総エネルギーの３５〜６５％に寄与する。

本発明に従った後期調製粉乳は、脂質源を含有してもよい。 脂質源は、乳児用調製粉乳での使用に適した、あらゆる脂質または脂肪であってもよい。 好ましい脂肪源としては、パームオレイン、高オレイン酸ヒマワリ油および高オレイン酸ベニバナ油が挙げられる。 必須脂肪酸であるリノール酸およびαリノレン酸もまた添加してもよく、多量のプレフォームアラキドン酸およびドコサヘキサエン酸を含有する、魚油または微生物油などの少量の油もまた添加してもよい。 脂肪含量は総計で、好ましくは調製粉乳の総エネルギーの３０〜５５％程度に寄与する。 脂肪源は、好ましくは、例えば約８：１〜約１０：１など、約５：１〜約１５：１のｎ−６対ｎ−３脂肪酸比率を有する。

後期調製粉乳はまた、日々の食餌に栄養的に有意な量で必須であることが分かっている、全ビタミンおよびミネラルも含有してもよい。 特定のビタミンおよびミネラルについては、最小必要量が確立されている。 場合により乳児用調製粉乳中に存在するミネラル、ビタミン、およびその他の栄養素の例としては、ビタミンＡ、ビタミンＢ１、ビタミンＢ２、ビタミンＢ６、ビタミンＢ２、ビタミンＥ、ビタミンＫ、ビタミンＣ、ビタミンＤ、葉酸、イノシトール、ナイアシン、ビオチン、パントテン酸、コリン、カルシウム、亜リン酸、ヨウ素、鉄、マグネシウム、銅、亜鉛、マンガン、塩素、カリウム、ナトリウム、セレン、クロム、モリブデン、タウリン、およびＬ−カルニチンが挙げられる。 ミネラルは、通常、塩形態で添加される。 特異的ミネラルおよびその他のビタミンの存在および量は、対象とする乳児集団に応じて変動する。

必要ならば、調製粉乳は、ダイズレシチン、モノ−およびジ−グリセリドのクエン酸エステルなどの乳化剤および安定剤を含有してもよい。

調製粉乳は、ラクトフェリン、ヌクレオチド、ヌクレオシドなどの有益な効果を有することもあるその他の物質を場合により含有してもよい。

最後に調製粉乳は、例えば０．３〜７％の量でガラクトオリゴ糖類などの不消化オリゴ糖類を含有してもよい。

調製粉乳の例は、Ｋｏｌｅｔｚｋｏ Ｂ ｅｔ ａｌ． ２００５ Ｊ． Ｐｅｄｉａｔｒｉｃ Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌ Ｍｅｄ． ４１：５８４−５９９で考察される。

特定の実施形態では、２．３ｇ／ｋｇ個体体重の量で抽出物が個体に提供される。

一実施形態では、酸性乳清を含有する乳児用調製粉乳、後期調製粉乳、健康補助食品または食材、および調製粉乳、栄養補給剤または食材を製造するための酸性乳清の使用が提供される。 これらの実施形態では、酸性乳清は、本明細書に記載される酸処理水溶性乳清タンパク質含有構成要素をはじめとする、乳清タンパク質抽出物を効果的に置き換える。 これらの実施形態では、酸性乳清は使用前に中和されてもよい。

一実施形態では、食物アレルギーを予防しまたは最小限に抑える薬剤を製造するための、本明細書に記載される抽出物の使用が提供される。

一実施形態では、本明細書に記載される抽出物を個体に提供するステップを含む、食物アレルギーを予防しまたは最小限に抑える方法が提供される。 典型的には個体はヒトである。 典型的にはヒトはアレルギーを起こしやすい。 典型的にはヒトは新生児である。 典型的には新生児は約２歳未満である。

一実施形態では、請求項４８の抽出物を個体に提供するステップを含む、食物アレルギーを起こしやすい個体において、ＴＮＦまたはＩＬ−２の放出を減少させる方法が提供される。

一実施形態では、請求項４８の抽出物を個体に提供するステップを含む、食物アレルギーを起こしやすい個体において、ＩＬ−１８の放出を増大させる方法が提供される。

一実施形態では、本明細書に記載される抽出物を個体に提供するステップを含む、食物アレルギーを起こしやすい個体において、腸管上皮細胞バリア機能を高める方法が提供される。

一実施形態では、本明細書に記載される抽出物を個体に提供するステップを含む、食物アレルギーを起こしやすい個体において、Ｔｈ１免疫応答を高める方法が提供される。

一実施形態では、本明細書に記載される抽出物を個体に提供するステップを含む、食物アレルギーを起こしやすい個体において、Ｔｈ２免疫応答を最小限に抑える方法が提供される。

上述の方法では、酸性乳清は、本明細書に記載される酸処理水溶性乳清タンパク質を含有する構成要素をはじめとする、乳清タンパク質抽出物を効果的に置き換えることもできる。

続く実施例は例証を意図するが、本発明をどのようにも限定するものではない。

実施例１ 酸処理水溶性乳清タンパク質含有構成要素を含む乳清タンパク質抽出物の製造 ２００ｍｌのＨ _２ Ｏを１２ｇのＷＰＣ８０に添加して、溶解するまで室温で３０分間インキュベートした。 溶液を１６０００ｇで１０分間遠心分離して、未溶解固形物を除去した。 上清を取り出し、１．３３５ｍｌの１０Ｎ ＨＣＬを３０分間添加して酸性化した。 １．５５５ｍｌの１０Ｍ ＮａＯＨを添加して酸性化溶液を中和し、ｐＨは約７．０ｐＨと測定された。 最終溶液を０．４５ｕｍのフィルター、次に０．２ｕｍのフィルターを通して濾過し滅菌した。 ６％溶液を試験のための原液として使用した（すなわち原液を調製粉乳中で１／８または１／１２に希釈した）。

実施例２ 酸処理水溶性乳清タンパク質含有構成要素の生体外免疫調節活性 いくつかの細胞ベースのアッセイで、実施例１で形成された抽出物（Ｉ２３）を生体外免疫調節活性について試験した。 抽出物を９６ウェルプレート内で等分し、次に迅速な細胞ベーススクリーニングアッセイにおいてスクリーニングした。

図１のデータは、マクロファージ細胞系であるＲＡＷ細胞による、ＴＮＦ−α（Ｔｈ１サイトカイン）の生体外放出を示す。 Ｉ２３はＲＡＷ細胞中のＴＮＦ−α産生を刺激した（図１の画分番号３を参照されたい）。

ＩＬ−１８は、周囲のサイトカイン環境に応じて、Ｔ細胞をＴｈ１（炎症）またはＴｈ２（アレルギー）方向のどちらかに発達させる、主要な初期免疫調節性サイトカインである。 本発明人らはまた、ＴＨＰ１細胞（単球細胞系）にリポ多糖類（ＬＰＳ）刺激を加えてまたは加えないで、１３−酢酸１２−ミリスチン酸ホルボール（ＰＭＡ）後のＩＬ−１８分泌も評価した。 対照細胞はリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）に入れた。 画分Ｉ２３はＴＨＰ１細胞からのＩＬ−１８産生を刺激した（図２の画分番号３を参照されたい）。

ＩＬ−２は、Ｔ細胞活性化に必須のサイトカインであり、免疫応答にとって重要である。 本発明人らはＴＧＲ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ一次Ｔ細胞アッセイにおいて、ＩＬ−２放出に影響を及ぼす能力についてＩ２３を評価した。 Ｔ細胞は、ＭＡＣＳ磁気ビーズ技術（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｐｔｙ．Ｌｔｄ）を使用して、末梢血から精製された（白血球を含有する軟膜は、Ｒｅｄ Ｃｒｏｓｓ Ｂｌｏｏｄ Ｂａｎｋ，Ａｄｅｌａｉｄから得られた）。 ＣＤ４ ^＋ Ｔ細胞の間接的精製を実施した。 適切な細胞表面マーカーに対する磁気ビーズ抱合型抗体で、望まれない細胞（すなわちＣＤ８ ^＋リンパ球、マクロファージ、Ｂ細胞など）を最初に標識した。 次に標識細胞をＭＡＣＳ磁気カラムに流して望まれない細胞をカラムに結合させ、カラム溶出物中にはＣＤ４ ^＋ Ｔ細胞が残された。 これらのＣＤ４ ^＋ Ｔ細胞を洗浄し、ＰＭＡならびにライブラリー中の乳画分と共にインキュベートして、サイトカイン産生のために細胞を刺激した。 ＩＬ−２放出は、ＥＬＩＳＡによって評価した（図３参照）。

Ｉ２３（図３中の画分３）は、ヒトＣＤ４ ^＋ Ｔ細胞の細胞分裂活性化によって実証されるように、生体外でＩＬ−２サイトカイン放出を抑制する。 ＩＬ−２放出は、ＰＭＡ刺激後に用量依存性であった。 Ｉ２３によるＩＬ−２産生の短期おび長期抑制は、一晩（Ｏ／Ｎ）のインキュベーションまたは１時間にわたるパルス投与を使用して評価した（図４参照）。

本発明人らは、生体外免疫調節活性がある４つの可能な画分を同定した。 図４のＩ２３画分は、ＩＬ−２放出によって測定される、Ｔ細胞活性化の用量反応性阻害を誘発した。 ＩＬ−２抑制は、画分と共に２４時間インキュベートされたＴ細胞中で起き、ならびに短い１時間のパルス投与後に起きる。

精製されたヒトＣＤ４ ^＋ Ｔ細胞を、Ｉ２３の存在下でＰＨＡおよびＰＭＡによって一晩刺激した。 Ｉ２３濃度の低下はＩＬ−２分泌増大をもたらすので、投与量決定試験で明らかなように、Ｉ２３はＩＬ−２分泌を明白に抑制する。 最大レベルの抑制は、未刺激細胞および既知の免疫抑制剤デキサメタゾン（ＤＥＸ）に匹敵する。 Ｔ細胞が活性化されるためには、生体内抗原がＴ細胞受容体に提示され、副刺激分子が活性化されて、Ｔ細胞活性化およびサイトカイン放出がもたらされる。 免疫調節活性をさらに確認するために、本発明人らは、抗ＣＤ３抗体および抗ＣＤ２８（副刺激分子に対する抗体）を使用して、Ｔ細胞受容体細胞を通じたＣＤ４ ^＋ Ｔ細胞刺激後にＩＬ−２放出抑制を評価した。 この活性化プロトコルは、ＰＨＡ／ＰＭＡによるＣＤ４ ^＋ Ｔ細胞の非特異的細胞分裂活性化に対する比較として、生体内で自然発生するものを模倣するように設定された。 Ｉ２３は、抗ＣＤ３および抗ＣＤ２８抗体で活性化されたＣＤ４ ^＋ Ｔ細胞によるＩＬ−２分泌を抑制する（図５参照）。

本発明人らは、Ｔ８４細胞の上皮性バリア機能アッセイ（ＴＧＲ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を使用して、乳画分Ｉ２３の生体外効果を評価した。 Ｉ２３は生体外免疫抑制活性を示し、本発明人らは、酸性活性化および中性Ｉ２３およびＩ２９をバリア機能アッセイに含めた。 経上皮耐性（ＴＥＲ）は、酸性活性化Ｉ２３および中性Ｉ２３を添加してまたは添加せずに、培養下のＴ８４腸管上皮細胞中で測定した（図６参照）。 Ｉ２３およびそのＴＥＲに対する効果のより詳細なグラフを図７に示す。 ＴＥＲの低下は、細胞バリア機能の低下を表す。

図６のデータは、中性形態または酸性化形態どちらかのＩ２３も、１または２日間の培養後に、上皮細胞バリアの完全性に有害な影響を与えないことを示す（図６および図７参照）。 しかしそれは、ＴＥＲアッセイにおいて細胞バリア機能を顕著に増大させる。

牛乳アレルギーがある乳児では、Ｔｈ２からＴｈ１タイプの免疫応答への移行があれば、アレルギーの消散が起きる。 Ｉ２３はまた、ＴＨＰ１細胞からのＴｈ１サイトカインＩＬ−１８産生も促進した（図２、画分３参照）。 したがって本発明人らは、Ｂｒｏｗｎ Ｎｏｒｗａｙ仔ラットにおけるＩ２３の生体内試験に着手した。

実施例３ 酸処理水溶性乳清タンパク質含有構成要素の生体内免疫調節活性 Ｂｒｏｗｎ Ｎｏｒｗａｙアレルギー易発性仔ラットを使用した、生体内試験を実施した。 酸性活性化Ｉ２３は、調製粉乳に混合された連続投与として、または毎日３回０．１ｍｌの胃内にボーラス投与した。 試験はｎ＝８匹／群で完了し、血清分析を実施した。

Ｉ２３は、調製粉乳への栄養補給剤（６％開始溶液の１／８）として使用すると、または調製粉乳給餌仔ラットに３回／日でボーラス投与すると、免疫調節活性を有する。 調製粉乳のみを与えた仔ラットのＩｇＥレベルと比較して、ＩｇＥの顕著な減少が得られた。 チューキーのポストホック検定がある一元配置分散分析を使用し、処置群と調製粉乳投与群とを比較して、群間の有意差^＊ ＝Ｐ＜０．０５を評価した。

調製粉乳への１／８希釈Ｉ２３補給、または毎日３回投与される胃管栄養法は、調製粉乳投与仔ラットと比較して、血清ＩｇＥレベルを低下させた（図８参照）。 １／８のＩ２３補給または毎日３回投与されるボーラス用量の後に、ＢＬＧ特異的ｌｇＧ１は調製粉乳投与群と有意に異ならなかった。 しかし１／１２希釈では、８匹の仔ラットの内６匹でｌｇＧ１力価の低下が得られ、１／１２試験では２匹のラットに異常に高い血清力価があったが、異常値を除去すれば力価は有意に低下する。 図９中のデータは異常値血清データを含めて表示され、異常値はグラフ上に（ｘ）で同定される。 Ｉ２３処置によって、ＲＭＣＰＩＩレベルは低下しなかった（図１０参照）。

肥満細胞数もまた、調製粉乳Ｉ２３補給後に基底膜中で計数した（図１１参照）。 基底膜中の肥満細胞数は、１／１２希釈での調製粉乳の補給後に、Ｉ２３を与えた仔ラットで低下した。 サイトカイン１Ｌ−１０、インターフェロンγ、およびＩＬ−４もまた、食餌のＩ２３補給後に腸管ホモジネート中でアッセイした（それぞれ図１２（Ａ）、（Ｂ）、および（Ｃ）参照）。 群間でＩＬ−１０およびＩＬ−４レベルに有意差は見られなかった。 １／８または１／１２希釈での調製粉乳のＩ２３補給は、腸内のＩＦＮγ濃度を上昇させた。 牛乳アレルギーが消散した乳児では、アレルギーが持続する乳児と比較してＩＦＮγレベルが増大している。 Ｉ２３はＴｈ２応答からの移行を促進し、均衡の取れた免疫系に必要なＴｈ１応答を増大させるようである。

本発明人らは、免疫調節活性がある乳生理活性を同定した。 Ｉ２３は調製粉乳中で栄養補給剤（６％開始溶液の１／８希釈）として使用されると、または調製粉乳投与仔ラットに３回／日のボーラス用量として投与されると、調製粉乳のみを投与された仔ラットと比較して、ＩｇＥ（アレルギー発症関連抗体）の有意な減少をもたらす。

本発明人らはまた離乳試験も実施して、酸活性化Ｉ２３および非酸活性化Ｉ２３で胃管栄養法を実施した仔ラットの血清抗体反応を評価した。 試験は、Ｉ２３が離乳期の食物抗原に対する免疫応答もまた調節するかどうかを判定するために実施した。 本発明人らは試験の１４日目に、Ｉ２３での胃管栄養法を開始した。 個体発生研究からの本発明人らの最近のデータは、乳児の食餌への補給がより早い時期に起きなくてはならないことを示唆した。 Ｉ２３による前処置が、離乳時の食物抗原に対する免疫応答に影響するかどうかを判定するために、本発明人らは、Ｉ２３の投与が４日目に開始され、ＢＬＧが１４日目に開始される第２の試験を実施した（図１３Ａ、Ｂ、およびＣ参照）。 ＢＬＧチャレンジ不在下でのＩ２３は、血清中の総ＩｇＥの全体的濃度を低下させた。 本発明人らの個体発生研究による判定では、健康補助食品による免疫調節は、特異的抗原チャレンジと共に発達早期、すなわち哺乳期に開始されれば、より効果的なようである。