一种重组幽螺杆菌蛋白疫苗及其制备方法

申请号 CN201710601630.8 申请日 2017-07-21 公开(公告)号 CN107298716A 公开(公告)日 2017-10-27
申请人 成都亿妙生物科技有限公司; 发明人 刘开云;
摘要 本 发明 公开了一种重组幽 门 螺杆菌蛋白 疫苗 及其制备方法,所述疫苗的活性成分重组融合蛋白是由重组LTA1-UreA1蛋白和LTB蛋白构成,所述重组LTA1-UreA1蛋白的 氨 基酸序列如Seq ID No.1所示,所述LTB蛋白的氨基酸序列如Seq ID No.2所示。本发明将Hp尿素酶A亚单位富含 抗原 表位的基因 片段 插入编码LTA亚单位的基因的中,并替换其包含毒性部位的片段制成重组质粒,进行表达获取重组融合蛋白多聚体作为疫苗抗原,本发明融合抗原与LTB蛋白五聚体结合形成六聚体结构,既保留了LT的粘膜佐剂结构 基础 及活性,又去除了其毒性,通过粘膜途径免疫可有效诱导 机体 粘膜免疫应答,产生特异性IgA 抗体 ,提供了一种用于 预防 和 治疗 幽门螺杆菌感染的疫苗方式。
权利要求

1.一种重组融合蛋白,其特征在于,所述重组融合蛋白是由重组LTA1-UreA1蛋白和LTB蛋白构成,所述重组LTA1-UreA1蛋白的基酸序列如Seq ID No.1所示,所述LTB蛋白的氨基酸序列如Seq ID No.2所示。
2.根据权利要求1所述的一种重组融合蛋白,其特征在于,所述重组融合蛋白是由重组LTA1-UreA1蛋白和LTB蛋白五聚体通过LTA2亚单位连接构成的六聚体结构。
3.一种编码权利要求1或2所述重组融合蛋白的基因,其特征在于,所述基因是由幽螺杆菌(Helicobacter pylori,Hp)的尿素酶A亚单位中富含抗原表位的基因片段插入大肠杆菌不耐热肠毒素(heat-labile enterotoxin,LT)基因中并替换A亚单位毒性基因片段制成。
4.根据权利要求3所述的编码重组融合蛋白的基因,其特征在于,所述编码重组融合蛋白基因的核苷酸序列如Seq ID No.3所示;所述编码重组融合蛋白基因用于编码重组LTA1-UreA1蛋白和LTB蛋白。
5.一种重组质粒,其特征在于,所述重组质粒包括表达载体和外源基因,所述外源基因如Seq ID No.3所示。
6.根据权利要求5所述的一种重组质粒,其特征在于,所述表达载体为pET-11c。
7.一种制备权利要求1所述重组融合蛋白的方法,其特征在于,包括以下步骤:
步骤A,将大肠杆菌不耐热肠毒素基因中A亚单位基因编码核苷酸序列100-585bp去除以形成基础基因,并将幽门螺杆菌尿素酶A亚单位基因片段插入所述基础基因获得了lt-ureA1融合基因序列;
步骤B,将所述lt-ureA1融合基因序列与质粒表达载体pET-11c连接,获得重组质粒pET-
11c/lt-ureA1;
步骤C,将所述组质粒pET-11c/lt-ureA1转入宿主菌进行表达获取重组融合蛋白。
8.一种重组幽门螺杆菌蛋白疫苗,所述疫苗的活性成分包括权利要求1或7所述的重组融合蛋白。

说明书全文

一种重组幽螺杆菌蛋白疫苗及其制备方法

技术领域

[0001] 本发明涉及生物制药领域,具体涉及一种重组幽门螺杆菌蛋白疫苗及其制备方法。

背景技术

[0002] 幽门螺杆菌(Helicobacter pylori,Hp)是一种螺旋状、微需革兰阴性杆菌,主要定植于人胃粘膜,已造成全球50%以上人口感染(Lee A.Prevention of Helicobacter pylori infection.Scand-J-Gastroenterol.1996.Suppl 215:11-15.)。Hp感染是慢性胃炎、消化性溃疡及胃粘膜相关淋巴组织淋巴瘤(MALT)等疾病的重要致病因子,并与胃癌的发生密切相关,已被WHO列为Ⅰ类致癌因子。目前质子抑制剂加两种抗生素的三联疗法是全球推荐的Hp根除治疗一线方案,但是随着抗生素在Hp感染治疗中的广泛应用,Hp耐药株的发生率不断上升,以致Hp根除的难度加大。由于Hp在胃内栖居部位的特殊性,以及现在药物治疗的不足,单纯依靠药物根除Hp并不是一件易事,对Hp感染所致的胃、十二指肠疾病的防治难度仍很大,必须寻找新的有效方法进行防治。借鉴人类与传染病作斗争的经验,接种疫苗有望成为预防Hp感染、大幅度降低Hp相关性疾病发病率的最佳途径。
[0003] 目前,Hp疫苗取得了极大的进展,我国已成功研制出一种Hp疫苗并获得新药证书,国外也有多种Hp疫苗已进入临床实验。所有的研究都表明,Hp疫苗需要添加粘膜免疫佐剂,才具有免疫保护效果。目前公认的最强的粘膜免疫佐剂是霍乱肠毒素(CT)和大肠杆菌不耐热肠毒素(LT),但是CT和LT对人具有较强的毒性,限制了它们的应用。在粘膜疫苗研究中,作为佐剂的LT无毒或减毒突变体研究较多[Park EJ,Chang0JH,Kim JS,et al.The mucosal adjuvanticity oftwo nontoxic mutants ofEscherichia coli heat-labile enterotoxin varies with immunization routes.Exp.Mol.Med.,2000,32(2):72-78],其基本原理是对LT具有肠毒素毒性的A亚单位进行基酸点突变,使LT不具有毒性或降低毒性,但是仍保留其很强的粘膜佐剂活性。

发明内容

[0004] 综上所述,本发明目的在于提供一种重组幽门螺杆菌蛋白疫苗及其制备方法,将Hp尿素酶A亚单位富含抗原表位的基因片段插入编码LT A亚单位的基因中,并替换其包含毒性部位的片段制成重组质粒,进行表达获取重组融合蛋白多聚体作为疫苗抗原,本发明融合抗原与LTB蛋白五聚体结合形成六聚体结构,既保留了LT的粘膜佐剂结构基础及活性,又去除了其毒性,通过粘膜途径免疫可有效诱导机体粘膜免疫应答,产生特异性IgA抗体,提供了一种用于预防和治疗幽门螺杆菌感染的疫苗方式。
[0005] 本发明通过下述技术方案实现:
[0006] 一种重组融合蛋白,所述重组融合蛋白是由重组LTA1-UreA1蛋白和LTB蛋白构成,所述重组LTA1-UreA1蛋白的氨基酸序列如Seq ID No.1所示,所述LTB蛋白的氨基酸序列如Seq ID No.2所示。
[0007] 进一步地,所述重组融合蛋白是由重组LTA1-UreA1蛋白和LTB蛋白五聚体通过LTA2亚单位连接构成的六聚体结构。
[0008] 一种编码上述重组融合蛋白的基因,所述基因是由幽门螺杆菌(Helicobacter pylori,Hp)的尿素酶A亚单位中富含抗原表位的基因片段插入大肠杆菌不耐热肠毒素(heat-labile enterotoxin,LT)基因中并替换A亚单位毒性基因片段制成。
[0009] 进一步地,所述编码重组融合蛋白基因的核苷酸序列如Seq ID No.3所示;所述编码重组融合蛋白基因用于编码重组LTA1-UreA1蛋白和LTB蛋白。
[0010] 一种重组质粒,所述重组质粒包括表达载体和外源基因,所述外源基因如Seq ID No.3所示。所述表达载体可采用现有基因工程常用表达质粒作为表达载体。
[0011] 进一步地,所述表达载体为pET-11c。
[0012] 一种制备上述重组融合蛋白的方法,包括以下步骤:
[0013] 步骤A,将大肠杆菌不耐热肠毒素基因中A亚单位基因编码核苷酸序列100-585bp去除以形成基础基因,并将幽门螺杆菌尿素酶A亚单位基因片段插入所述基础基因获得了lt-ureA1融合基因序列;
[0014] 步骤B,将所述lt-ureA1融合基因序列与质粒表达载体pET-11c连接,获得重组质粒pET-11c/lt-ureA1;
[0015] 步骤C,将所述组质粒pET-11c/lt-ureA1转入宿主菌进行表达获取重组融合蛋白。
[0016] 一种重组幽门螺杆菌蛋白疫苗,所述疫苗的活性成分包括上述重组融合蛋白。
[0017] D-半乳糖填料(Thermo,20372)仅能与LTB五聚体结合,不能与LTA1-UreA1蛋白结合。如果LTA1-UreA1蛋白与LTB蛋白五聚体解离,则纯化产物中就不含有LTA1-UreA1蛋白。而采用D-半乳糖填料纯化获得的产物,电泳可见LTA1-UreA1蛋白条带。这一结果,间接证实了LTA1-UreA1蛋白和LTB蛋白五聚体结合形成六聚体。
[0018] 本发明与现有技术相比,具有如下的优点和有益效果:
[0019] 本发明一种重组幽门螺杆菌蛋白疫苗及其制备方法,将候选抗原尿素酶A亚单位中富含抗原表位的片段插入LT的A亚单位片段中并替换其毒性部位作为疫苗抗原,通过LTA2片段与LTB蛋白五聚体连接,既保留了LT的粘膜佐剂结构基础及活性,又去除了其毒性,通过粘膜途径免疫可有效诱导机体粘膜免疫应答,产生特异性IgA抗体,无需添加佐剂即可获得较高的免疫效果,提供了一种用于预防和治疗治疗幽门螺杆菌感染的疫苗方式,具有重要的社会价值和经济价值。附图说明
[0020] 此处所说明的附图用来提供对本发明实施例的进一步理解,构成本申请的一部分,并不构成对本发明实施例的限定。在附图中:
[0021] 图1为本发明重组质粒pET-11c/lt-ureA1的构建示意图;
[0022] 图2为本发明重组质粒酶切鉴定结果;
[0023] 图3为本发明SDS-PAGE观察目的蛋白表达鉴定结果;
[0024] 图4为本发明蛋白纯化鉴定结果;
[0025] 图5为对比例重组质粒pET-22b/ureA-1构建示意图;
[0026] 图6为对比例UreA-1蛋白表达鉴定结果;
[0027] 图7为对比例UreA-1蛋白纯化鉴定结果;
[0028] 图8为唾液特异性IgA检测结果;
[0029] 图9为血清特异性IgG检测结果。

具体实施方式

[0030] 为使本发明的目的、技术方案和优点更加清楚明白,下面结合实施例和附图,对本发明作进一步的详细说明,本发明的示意性实施方式及其说明仅用于解释本发明,并不作为对本发明的限定。
[0031] 实施例1
[0032] 合成基因:
[0033] 以GenBank公布的大肠杆菌不耐热肠毒素基因(GenBank:AB011677.1)核酸序列为模板进行改造,具体设计如下:
[0034] 编码LT的基因全长1148bp,包括:LTA信号肽(18个氨基酸)基因、编码LTA(240个氨基酸)的基因、编码LTB信号肽(21个氨基酸)基因及编码LTB(103个氨基酸)的基因。在编码LTA的基因末尾与编码LTB信号肽基因开头处有一个移码阅读框,因而编码整个LT的基因是一个连续的DNA序列。其完整基因核苷酸序列如Seq ID No.4所示。
[0035] 经生物信息学分析及结构分析,去除LT A亚单位基因编码核苷酸序列100-585bp,将幽门螺杆菌尿素酶A亚单位基因片段ureA1插入其中以替换去除的LT A亚单位基因编码核苷酸序列100-585bp,并在5’端引入NdeI酶切位点,3’端引入BamHI酶切位点,形成编码重组融合蛋白的融合基因lt-ureA1,其核苷酸序列如Seq ID No.3所示。
[0036] 所述幽门螺杆菌尿素酶A亚单位基因片段ureA1核苷酸序列如Seq ID No.5所示。合成基因序列由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。
[0037] 实施例2
[0038] 重组质粒pET-11c/lt-ureA1的构建,如图1所示:
[0039] 表达载体采用pET-11c,购于Novagen公司。该表达载体携带氨苄抗性基因,是化学物质IPTG诱导控制的模式,表达平高。未诱导前IacIq编码阻遏蛋白,该蛋白可同操纵子中的操纵基因相结合,从而控制相邻结构基因的转录作用;当诱导物存在时,阻遏蛋白因受诱导物的作用,其构形发生变化,从而失去同操纵基因的亲和性而解脱下来,聚合酶便可对结构基因进行转录,进而进行表达。在该质粒NdeI位点后插入含有LTA信号肽的重组目的基因及含有LTB信号肽的ltB基因,pET-11c能在宿主菌中共表达重组目的蛋白LTA1-UreA1及LTB蛋白,利用LTA及LTB信号肽,分别将目的蛋白LTA1-UreA1蛋白和LTB蛋白分泌至胞周质组装成LTA1-UreA1+5LTB的六聚体而发挥相应的靶向和佐剂作用。编码蛋白LTA1-UreA1蛋白的氨基酸序列如Seq ID No.1所示,编码LTB蛋白的氨基酸序列如Seq ID No.2所示。
[0040] 将合成基因序列,上游引入NdeI、下游引入BamH I酶切位点,双酶切后连接经同样酶双酶切的pET-11c,酶切反应体系配制如表1所示:
[0041] 表1重组质粒构建酶切反应体系
[0042]
[0043] 将上述反应物混匀,酶切,经琼脂糖凝胶电泳观察,酶切鉴定结果如图2所示。
[0044] 转化E.coli/DH5a感受态,氨苄抗性LB平板37℃培养,调取单菌落用氨苄抗性液体LB培养基培养,提取重组质粒测序鉴定,质粒送北京六合华大基因科技股份有限公司测序,融合基因序列与预计完全一致。
[0045] 实施例3
[0046] 目的蛋白表达、纯化及鉴定:
[0047] 宿主菌采用E.coli/BL21(DE3),购于天根生化科技(北京)有限公司。基因型:F-ompT gal dcm lon hsdSB(rB-mB-)λ(DE3[lacI lacUV5-T7 gene 1 ind1 sam7 nin5])。该菌株用于以T7 RNA聚合酶为表达系统的高效外源基因的蛋白表达宿主。T7噬菌体RNA聚合酶基因的表达受控于λ噬菌体DE3区的lacUV5启动子,该区整合于BL21的染色体上。该菌适合于非毒性蛋白的表达。
[0048] (1)转化
[0049] 取重组质粒pET-11c/lt-ureA1转化E.coli/BL21(DE3)感受态细胞(TIANGEN,Code:CB105),按操作说明书进行,氨苄抗性LB平板筛选阳性重组子。
[0050] (2)重组工程菌鉴定
[0051] 挑取氨苄抗性筛选平板上的单个菌落,接种10ml氨苄抗性LB液体培养基中培养,抽提质粒,用NdeI和BamHI做双酶切鉴定,鉴定结果如图2所示,见5.6kb表达载体片段和996bp lt-ureA1基因片段,Lane1:pET-11c/lt-ureA1经NdeI和BamHI双酶产物,Lane2:核酸Marker(TaKaRa,DL5000)。
[0052] (3)表达鉴定
[0053] (a)取鉴定正确的菌液,加入氨苄抗性LB培养基中,37℃,振荡培养;然后加入M IPTG,16℃诱导表达。
[0054] (b)细菌破碎:将诱导表达后的菌液取出,离心处理,弃上清,加入PBS重悬,水浴超声破菌。取样涂片革兰染色镜检,见破菌完全后,取上清离心处理,分离上清和沉淀。
[0055] (c)SDS-PAGE观察目的蛋白表达情况:
[0056] 分别取破菌未离心样品(全菌)、离心后上清及沉淀样品,调整至适合的浓度,以LT及未诱导全菌样品作对照,用5×SDS-PAGE上样buffer处理后,各15μl上样,进行15%SDS-PAGE电泳观察结果,如图3所示。Lane 1:16诱导前全菌,Lane 2:16诱导后全菌,Lane 3:16诱导后超声上清,Lane 4:蛋白Marker(Thermo,26616),Lane 5:16诱导后超声沉淀。见21.1kd重组LTA1-UreA1表达及11.7kdltB表达,如图中箭头所指。
[0057] (4)目的蛋白纯化鉴定
[0058] (a)取D-半乳糖填料(Thermo,20372)1ml,按说明书操作,用PBS洗涤,将诱导表达的菌体超声破菌上清10ml加入层析柱中,室温结合1h。
[0059] (b)用PBS洗涤,用含300mM D-半乳糖的PBS洗脱,分管收集。
[0060] (c)SDS-PAGE观察目的蛋白表达情况:取15μl样品上样,进行15%SDS-PAGE电泳观察结果,如图4所示,Lane 1:蛋白Marker(Thermo,26616),Lane 2-5:纯化样品,见21.1kd LTA1-UreA1及11.7kd ltB条带。
[0061] 对比例
[0062] UreA-1蛋白的制备,所述UreA-1蛋白的氨基酸序列如Seq ID No.6所示:
[0063] 1、pET-22b/ureA-1重组质粒获得
[0064] 采用幽门螺杆菌尿素酶A亚单位基因片段ureA1编码UreA1,所述幽门螺杆菌尿素酶A亚单位基因片段ureA1核苷酸序列如Seq ID No.5所示,上游引入NdeI、下游引入Xho I酶切位点,插入pET-22b(+)中构建重组质粒,pET-22b(+)购自Novagen(69744-3)。重组质粒构建结构示意图如图5所示。
[0065] 2、UreA-1的蛋白表达
[0066] (1)表达
[0067] 取pET-22b/ureA-1质粒转化E.coli/BL21(DE3)感受态细胞(TIANGEN,Code:CB105),按操作说明书进行,氨苄抗性LB平板筛选阳性重组子。挑取氨苄抗性筛选平板上的单个菌落,接种10ml氨苄抗性LB液体培养基中培养,抽提质粒,用NdeI和BamHI做双酶切鉴定。取鉴定正确的菌液,接种氨苄抗性的LB培养基中,振荡培养。加入IPTG,37℃诱导表达。
[0068] 3、UreA-1的蛋白鉴定
[0069] (1)细菌破碎
[0070] 将诱导表达后的菌液取出,离心处理,弃上清,加入A液重悬(A液:50mM PB(pH7.4)+300mM NaCl+50mM imidazole),冰水浴超声破菌。取样涂片革兰染色镜检,见破菌完全后,离心处理,分离上清和沉淀。
[0071] (2)纯化
[0072] 用镍离子亲和柱纯化破菌上清(HisTrapTM FF,GE),A液:50mM PB(pH7.4)+300mM NaCl+50mM imidazole,B液:50mM PB(pH7.4)+300mM NaCl+200m M imidazole。分管收集纯化样品。
[0073] (3)SDS-PAGE观察目的蛋白表达情况
[0074] 分别取破菌未离心样品(全菌)、离心后上清及沉淀样品,调整至适合的浓度,以LT及未诱导全菌样品作对照,用5×SDS-PAGE上样buffer处理后,各15μl上样,进行15%SDS-PAGE电泳观察结果,UreA-1表达如图6所示,Lane 1:诱导前全菌,Lane 2:诱导后超声沉淀,Lane 3:诱导后超声上清,Lane 4:诱导后全菌,见蛋白表达(箭头所示)。UreA-1纯化和如图7所示,Lane 1-4:UreA-1纯化样品,Lane 5:蛋白Marker(Thermo,26616),纯化获得12.6kd蛋白。
[0075] 免疫性能测试:
[0076] (一)、免疫原性检测
[0077] 以纯化实施例1制备的重组蛋为免疫原,分别通过注射(50μg)和灌胃(200μg)方式免疫小鼠,检测血清、唾液特异性抗体,以鉴定重组蛋白的免疫原性。
[0078] 1、实验动物:BALB/c小鼠,6~8周龄,雌性,SPF级,60只,购自北京华阜康生物科技股份有限公司。
[0079] 2、动物分组,如表1所示:
[0080] 表1实施例制备的重组融合蛋白A1和对比例制备的UreA-1蛋白免疫原性检测动物分组
[0081]分组 动物数(只) 抗原及免疫剂量 免疫方式
1组 10 A1 50μg/只 注射
2组 10 A1 200μg/只 灌胃
3组 10 UreA-1 50μg/只 注射
4组 10 UreA-1 200μg/只 灌胃
5组 10 PBS 注射
6组 10 PBS 灌胃
[0082] 注:本发明制备的重组融合蛋白命名为A1。
[0083] 3、免疫方案
[0084] 动物分别于0、7、14天免疫,共3次。
[0085] 4、特异性抗体检测
[0086] 免疫后21天,采集血液和唾液标本,ELISA检测抗原特异性血清IgG及唾液sIgA。每个样品做双重复。
[0087] (1)酶标板包被
[0088] 取UreA-1蛋白,用包被液(酸盐缓冲液,pH9.6)稀释为4μg/ml,100μl/孔包被酶标板,封闭后4℃保存备用。
[0089] (2)标本稀释:以抗体稀释液按1:1000稀释血清;1:5稀释唾液。
[0090] (3)加样:按100μl/孔向酶标板加入稀释后的待检测样品,37℃放置60min,PBST洗涤4次,拍干。
[0091] (4)抗体稀释:以抗体稀释液按1:10000分别稀释辣根酶标记羊抗小鼠IgG及辣根酶标记羊抗小鼠IgA。
[0092] (5)加二抗:按100μl/孔向酶标板加入抗体,37℃放置40min,PBST洗涤4次,拍干;
[0093] (6)显色:向各孔加入100μl显色液,37℃显色10min,50μl/孔加入2M H2SO4终止反应。
[0094] (7)结果记录:测定450nm各孔吸光度值,保存数据。
[0095] 测定结果如图8和图9所示,经统计学分析(t检验),A1蛋白免疫组与UreA1蛋白免疫组及PBS组比较,A1蛋白免疫组唾液抗原特异性sIgA水平显著升高(P<0.01),血清抗原特异性IgG水平也显著升高(P<0.01)。UreA1蛋白免疫组与PBS组比较,唾液抗原特异性sIgA及血清抗原特异性IgG水平均无显著性差异(P>0.05)。口服免疫A1蛋白有利于唾液抗原特异性sIgA水平升高(2组与1组比较,P<0.01),注射免疫A1蛋白有利于血清抗原特异性IgG水平升高(1组与2组比较,P<0.01)。
[0096] 以上所述的具体实施方式,对本发明的目的、技术方案和有益效果进行了进一步详细说明,所应理解的是,以上所述仅为本发明的具体实施方式而已,并不用于限定本发明的保护范围,凡在本发明的精神和原则之内,所做的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
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