1.一种腹主动脉瘤疾病动物模型的制备方法，其特征在于，步骤如下：
第一步，pAAV/D377Y-mPCSK9载体的构建：
1)将pAAV-MCS质粒经内切酶EcoRI和内切酶HindIII双酶切，制得pAAV-MCS酶切产物；
2)将pAAV-MCS酶切产物进行琼脂糖凝胶电泳，切胶并回收4700bp的DNA片段，纯化，得到纯化后的pAAV-MCS酶切产物；
3)以小鼠肝脏cDNA为模板，经PCR扩增，纯化，制得mPCSK9DNA片段；
PCR扩增的特异引物核苷酸序列如下：
正向引物：5’GAATTCATGGGCACCCACTGCTCTGCGTGG3’；
反向引物：5’AAGCTT TCACTGAACCCAGGAGGCCTTTGC3’；
4)将步骤3)制得的mPCSK9DNA片段经内切酶EcoRI和内切酶HindIII双酶切，制得mPCSK9酶切产物；
5)将mPCSK9酶切产物进行琼脂糖凝胶电泳，切胶并回收含2000bp大小的DNA片段，纯化，得到纯化后的mPCSK9酶切产物；
6)将步骤2)纯化后的pAAV-MCS酶切产物和步骤5)纯化后的mPCSK9酶切产物进行连接，制得连接产物；
7)将步骤6)制得的连接产物转化大肠杆菌，经抗性筛选和测序验证后，制得提取质粒pAAV/mPCSK9，然后将mPCSK9的377位点天冬氨酸突变为酪氨酸，经Dpn1内切酶酶切，抗性筛选和测序验证后，制得提取质粒pAAV/D377Y-mPCSK9；
第二步，制备表达D377Y-mPCSK9的腺相关病毒：
将提取质粒pAAV/D377Y-mPCSK9和辅助质粒pAAV-RC8、辅助质粒pHelper，在Ultra-PEI试剂条件下，共转入AAV293细胞，提取质粒pAAV/D377Y-mPCSK9：辅助质粒pAAV-RC8：辅助质粒pHelper的质量比为2:1:1，转染后收集病毒，经超离心纯化，同时测定病毒滴度，制得表达D377Y-mPCSK9的腺相关病毒；
第三步，病毒感染获得腹主动脉瘤疾病动物模型：
将8周龄的C57BL/6小鼠经尾静脉注射1.0×1011拷贝数的表达D377Y-mPCSK9的腺相关病毒，同时背部皮下植入1.44mg/kg/day的微渗透压泵，同时给予高脂饮食三周，即得。
2.如权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述第一步1)中的双酶切反应体系如下：
加灭菌超纯水至体积30μL；
双酶切反应条件：37℃水浴2小时。
3.如权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述第一步2)、3)、5)中的纯化采用AxyPrep DNA凝胶回收试剂盒。
4.如权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述第一步3)中，PCR反应体系如下：
加灭菌超纯水至体积50μL；
反应条件：98℃变性15sec，56℃退火15sec，72℃延伸2min，34Cycles。
5.如权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述第一步3)中，小鼠肝脏cDNA采用如下方法制备：
a、取新鲜小鼠肝组织置于EP管中，加入200μL Trizol充分研磨后，补加800μL Trizol，混匀；
b、加入200μL氯仿，剧烈震荡15秒，4℃12000rpm离心15min；
c、将上层水相移至洁净EP管中，加入500μL异丙醇颠倒混匀；
d、4℃、12000rpm离心10min；
e、弃水相，EP管开盖干燥，溶于50μL DEPC水中；
f、进行反转录反应，制得小鼠肝脏cDNA；反转录反应体系如下，总体积10μL：
反转录反应条件：37℃15min，85℃5sec。
6.如权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述第一步4)中，双酶切反应体系如下：
加灭菌超纯水至体积30μL；
双酶切反应条件：37℃水浴2小时；
优选的，所述第一步6)中，连接采用T4DNA连接酶和快速连接试剂盒；
优选的，所述第一步7)中，mPCSK9的377位点天冬氨酸突变为酪氨酸的反应特异引物核苷酸序列如下：
正向引物：5'-gaagcatgtgctgcaataactggacgctccgatgatgtc-3'；
反向引物:5'-gacatcatcggagcgtccagttattgcagcacatgcttc-3'；
反应体系如下，体系总体积50μL：
反应条件：95℃30sec，55℃1min，68℃7min，16个循环。
7.如权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述第一步7)中，Dpn1内切酶酶切条件为：1μL Dpn1内切酶，37℃水浴1小时；
优选的，所述第一步制得的pAAV/D377Y-mPCSK9载体的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示。
8.如权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述第二步中制备D377Y-mPCSK9的腺相关病毒的具体步骤如下：
①接种AAV293细胞至含有DMEM培养基的10cm培养皿中，培养至汇合度为70～90％；
②使用250μL无血清培养基稀释48μL Ultra-PEI试剂；
③使用250μL无血清培养基稀释8μg pAAV/D377Y-mPCSK9质粒、4μg pAAV-RC8质粒和4μg pHelper质粒，得到质粒预混液；
④在已稀释的Ultra-PEI试剂中加入③制得的质粒预混液，室温孵育14～16min，得到DNA-脂质体复合物；
⑤将DNA-脂质体复合物加入①制得的细胞培养液中；
⑥转染后培养24、48、72h，分别收集富含腺相关病毒颗粒的上清液，上清液通过超离心浓缩病毒，制得表达D377Y-mPCSK9的腺相关病毒。
9.如权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述第三步中，背部皮下植入采用AngII 微渗透压泵。
10.如权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述第三步中，高脂饮食中含有不低于如下百分含量的营养成分：
脂肪16％、胆固醇1.25％、胆酸盐0.5％。