1.一种抗菌涂料抗细菌性能的检测方法，包括：(1)样品提取、制备及前处理；(2)设备选型及试剂、培养基配制；(3)菌种保藏、活化及菌悬液制备；(4)OD值-活菌含量对数值lgCB标准曲线建立及接种菌液CB标定；(5)活菌含量对数值lgCB-相对荧光强度对数值lgIB标准曲线建立；(6)样品接种、培养及洗脱回收；(7)回收液相对荧光强度值IB测定；(8)回收液活菌含量CB和TB推算及抗菌率R和抗菌活性值A计算；(9)结果评价；其特征在于，应用ATP荧光光度计对以抗菌率R或抗菌活性值A表征的抗菌涂料抗细菌性能进行精准定量测试的ATP生物荧光lgCB-lgIB标准曲线法，具体的：
在回收液相对荧光强度值IB测定中：
明确涂料样品的提取以及对照样品和抗菌样品的制备、数量、尺寸、前处理等要求，将试验标准菌株进行传代、活化后，取连续转接2次的新鲜细菌培养物制备菌悬液，应用MTT比色分析法进行活菌计数，建立OD值-活菌含量对数值lgCB标准曲线，推导得出曲线的线性方
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程式Y＝a0X+b0及相关系数R0；并对接种菌液进行活菌含量CB标定：5.0×10CFU/mL～9.0×
106CFU/mL，同时，选择CB为4.2×103CFU/mL、4.2×104CFU/mL、4.2×105CFU/mL的稀释液作为标准系列菌悬液；测定其相对荧光强度值IB，绘制lgCB-lgIB标准曲线，并推导得出曲线的线性方程式Y＝aBX+bB及相关系数RB2，然后，向各组对照样品和抗菌样品待测表面分别滴加
0.3mL菌液；立即用4.7mL洗脱液对6组0h接触样品进行洗脱回收，应用ATP荧光光度计测定回收液的相对荧光强度值IBC0ij、IBT0ij，根据曲线方程式Y＝aBX+bB推算其活菌含量CBOij和TBOij，同时，将另外6组24h接触样品密封于无菌平皿内，(37±1)℃、(90±2)％RH培养24h±
2h后；采用与0h接触样品相同的方式回收表面残留菌并测定其回收液相对荧光强度值IBCtij、IBTtij，推算相应的活菌含量CBtij和TBtij；
在抗菌率R及抗菌活性值A计算中：
根据试验菌种标准曲线lgCB-lgIB线性方程式Y＝aBX+bB，以0h接触及24h培养后每件对照样品和抗菌样品回收液的相对荧光强度测定值 和 作为基础数据；在
试验有效条件下，计算其经24h培养后的细菌增长值Fij、Gij以及抗菌率Rij和抗菌活性值Aij；
对每组样品的Rij和Aij取算术平均值得到相应的Ri和Ai；每批抗菌涂料样品的抗菌率R和抗菌活性值A为其3组样品Ri和Ai的算术平均值；并明确相关数据修约和测量不确定度要求；
在结果评价中：
参考卫生行业通用做法和相关抗菌产品标准要求，确定抗细菌性能分级判定标准；当某组(件)抗菌涂料样品的抗菌率Ri(Rij)或抗菌活性值Ai(Aij)与其他两组(四件)样品的抗细菌性能相比至少相差一个水平级时，重新提取一组(件)样品重复实验；计算其经ATP生物荧光lgCB─lgIB标准曲线法测得的抗菌率或抗菌活性值，如果前后两组(件)抗菌涂料样品抗细菌性能水平相同，则弃之；取另外两组(四件)剩余样品抗菌率Ri(Rij)或抗菌活性值Ai(Aij)的算术平均值作为该批次(组)抗菌涂料样品抗细菌性能的评价结。
2.根据权利要求1所述的抗菌涂料抗细菌性能的检测方法，其特征在于，所述的样品提取、制备及前处理，按下述步骤进行：
(1)涂料样品提取：本专利方法所涉涂料样品为建筑和木器用抗菌涂料，包括液态或加热时可液化但不发生化学变化以及粉状、粒状、膏状的色漆和清漆物料；取样地点涵盖罐、柱状桶、贮槽、集装箱、槽车/槽船以及鼓状桶、袋、大包、贮仓、贮仓车或传送带等场所，取样由具备相关经验人员参照GB/T3186-2006《色漆、清漆和色漆与清漆用原材料取样》中有关规定，根据待测涂料类别、聚集状态及容器大小，选择适用类型和规格的清洁器具提取至少
2kg或抗菌试验所需量3～4倍的样品，当涂料存放于鼓状桶、柱状桶、袋等小容器时，如果交付批存在若干个容器，取样数量遵循GB/T 3186-2006中表1的规定，否则从每个容器中各提取一件样品；若交付批由不同生产批容器组成，则从每个生产批容器中分别提取，当涂料存放于贮槽、公路槽车、贮仓、贮仓车、铁路槽车、槽船或平均高度至少1m的反应器等大容器时，对于均匀物料及搅拌或加热后可成为均匀物料的暂时性不均匀物料，上部样品可用取样勺或取样管提取，中部样品用浸人式罐提取，距液面十分之九深度处的底部样品用浸人式罐或区域取样器提取；如果大容器由几个隔段组成，从每个隔段中至少提取一件样品，并将所取单一样品混合成一件平均样品，对于永久性不均匀物料，至少提取2件样品，其中上层样品可用取样勺、下层样品用区域取样器、浸人式瓶(罐)或在容器底阀处取样；制备样品时将所取两层样品按照产品标准规定的配比称量混合成1件平均样品；
取样结束后，使用旋转分样器将所提取的全部固、液体涂料样品充分混匀并分成15等分；其中固体样品每份500g，液体样品每份400mL，然后，将每份涂料样品分别放入带螺旋盖的罐、瓶、桶或塑料袋等容器中存放，其中金属容器配有密封金属盖，无焊料且内部不涂色漆和清漆(不用镀锌和铝质容器)；玻璃容器配有密封盖；
(2)对照样品：除未添加任何抗菌防腐防霉成分外，对照样品的涂料类别、底板材质及制备方法、规格尺寸、试板厚度等均与抗菌样品完全相同，每个菌种试验使用6组样品；其中
0h接触和24h培养试验各用3组，每组5件样品；
(3)抗菌样品：添加抗菌成分的涂料试板，根据待测涂料样品的实际应用情况，可选择石棉水泥板、木质板、金属板、塑料板、玻璃板、贴膜纸板等底材；试板尺寸为(50±1)mm×(50±1)mm；其中钢板、铝板、马口铁板等金属试板厚度为1mm，木质试板厚度不大于10mm，矿石建筑板、石棉水泥板、复合木板、玻璃等材质试板厚度为1mm～10mm，所用试板表面平整、无锈、无油污，金属试板表面经磨砂纸打磨粗糙后，用75％的乙醇溶液擦拭2min；木质面板不取木心材且无树节，烘干后使用；
按照GB/T 1727-1992《漆膜一般制备法》要求制作漆膜，涂料施涂包括两次涂刷过程，第一次表干后再涂刷第二次，漆膜总厚度(湿膜)小于100μm；若以木板或纸板为底材，应确保漆膜封住整个木板，抗菌样品数量与对照样品相同，每组待测样品选择一组对照样品作为参照物并有效标识；
(4)样品前处理：试板涂刷后置于(23±2)℃、(50±5)％RH的洁净环境中，彼此间距至少20mm；避免日光直射，自然状态下调节7d，直至试板涂膜完全干燥，试验前将各组对照样品和抗菌样品置于超净工作台上，紫外灭菌消毒5min；然后将其待测表面向上放入无菌平皿内，备用。
3.根据权利要求1所述的抗菌涂料抗细菌性能的检测方法，其特征在于，所述的设备选型及试剂、培养基配制，按下述步骤进行：
(1)通用要求：试验用分析纯试剂及符合GB/T 6682-2008规定的三级水(蒸馏水或去离子水)，实验室具备二级生物安全资质，人员具有正规微生物实验室工作经验；
(2)仪器设备：洁净等级不低于100的超净工作台；含ATP荧光光度计、配套试剂盒、专用试管等的细菌总数ATP生物荧光快速检测系统，其中ATP荧光光度计波长量程300nm～
650nm，检测范围101CFU/mL～107CFU/mL；波长范围400nm～760nm，读数范围0.0Abs～4.0Abs的酶标仪；(20～50)℃±1℃、(50～95)％RH±2％RH的恒温恒湿培养箱；46℃±1℃的恒温水浴箱；(121±2)℃、(103±5)kPa的压力蒸汽灭菌器；-20℃～-70℃的低温冰箱；2℃～8℃的冷藏箱；感量0.001g的电子天平；频率范围(30～50)kHz的超声波清洗器；转速范围(500～3000)r/min的旋涡振荡器；分样比率≥1:15的旋转分样器；精度±0.1(25℃)的pH计；电炉；
(3)材料器具：1mL、10mL的无菌刻度吸管；0.05mL、0.1mL、0.2mL、1mL、5mL、10mL(计量误差小于1％)的单道可变量程移液枪和无菌枪头；滤膜孔径不大于0.45μm的针头式过滤器；
容量250mL、500mL的无菌锥形瓶；直径90mm的无菌培养皿；96孔平底培养板；麦氏细菌标准比浊管及配套试管；无菌试管；直径不大于4mm的接种环；L棒；酒精灯；灭菌镊子；医用胶带；
酒精棉球(75％)；分度值1mm的直尺；分度值0.01mm的千分尺； 的温度
计； 的湿度计；精度0.01s的秒表；A6白色复印纸；0.7mm芯黑色中性笔；
宽 的漆刷或喷嘴内径 的喷枪；适用的涂料取样器及存放容器；
(4)试剂：75％的乙醇溶液；85％的生理盐水(121℃高压灭菌15min，5℃～10℃存放
30d)；5mg/mL、pH值7.4的MTT(四甲基偶氮唑盐)溶液(0.45μm滤膜过滤除菌，4℃～6℃避光保存15d)；
(5)培养基/液(可用市售培养基/液)：所配培养基/液分装后经121℃高压灭菌15min，2℃～8℃存放30d；
营养琼脂(NA)：将5g牛肉膏、10g蛋白胨、5g氯化钠、15g琼脂加热溶解于1000mL水中，调节pH至7.0～7.2；
营养肉汤(NB)：将3g牛肉膏、10g蛋白胨、5g氯化钠加热溶解于1000mL水中，调节pH至
7.0～7.2；
沙门氏菌保藏用脑心浸出液肉汤(BHI)：将10g蛋白胨、5g氯化钠、2.5g磷酸氢二钠、2g葡萄糖加热溶解于500mL牛心浸出液中，调节pH至7.4±0.2；
大肠埃希氏菌及志贺氏菌/金黄色葡萄球菌及沙门氏菌的培养液：将1:500/1:100的营养肉汤(NB)与85％的无菌生理盐水溶液混合，调节pH至7.0～7.2；
平板计数琼脂(PCA):将5g胰蛋白胨、2.5g酵母浸膏、1g葡萄糖、15g琼脂加热溶解于
1000mL水中,调节pH至7.0±0.2；
(6)ATP荧光反应试剂(或用市售试剂)：除磷酸盐缓冲溶液外，所配ATP荧光反应试剂-
20℃～-70℃保存，6个月内使用；
稀释缓冲溶液：0.005mol/L且含0.037％蔗糖的磷酸氢二钠溶液，调节pH至7.2±0.2；
121℃高压灭菌15min，2℃～8℃存放30d；
ATP荧光试剂缓冲溶液：将1117mg三羟甲基氨基甲烷、183mg乙二胺四乙酸二钠、808mg乙酸镁、6.7mg二巯基苏糖醇、25000mg的β-环糊精和925mg葡萄糖加热溶解于250mL水中，调节pH至7.5±0.2；8h内使用；
ATP裂解液：将4.6国际单位/ml的三磷酸腺苷双磷酸酶(EC:3.6.1.5)和46国际单位/ml的磷酸腺苷脱氨酶(EC:3.5.4.6或EC:3.5.4.17)、37mg蔗糖、20mg牛血清蛋白溶解于10mL浓度为0.05mol/L的2-吗啉乙磺酸缓冲溶液中，调节pH至6.0±0.5，8h内使用(1mL裂解液在
15min内可将营养肉汤中的ATP浓度降至10-13mol/L以下)；
ATP提取液：将45mg三羟甲基氨基甲烷加热溶解于9.8ml水中，与0.2ml浓度为10％的苯扎氯铵溶液混匀后，调节pH至12.0±0.5；
ATP荧光试剂：将16mg荧光素酶(EC:1.13.12.7)、12.6mg的D-荧光素、56mg牛血清蛋白溶解于30mL的ATP荧光试剂缓冲溶液中，混匀后室温静置15min，3h内使用。
4.根据权利要求1所述的抗菌涂料抗细菌性能的检测方法，其特征在于，所述的菌种保藏、活化及菌悬液制备，按下述步骤进行：
(1)试验菌种：大肠埃希氏菌ATCC 8739；金黄色葡萄球菌ATCC 6538；沙门氏菌ATCC 
14028；志贺氏菌CMCC 51105(或由国家相应菌种保藏管理中心提供并可溯源的其他菌种)；
(2)菌种保藏：以无菌操作打开冻干菌种管，用毛细吸管加入适量营养肉汤(沙门氏菌用BHI培养液)，吹吸数次使菌种融化分散，然后，将少许试验菌种悬浮液滴入装有5mL～
10mL营养肉汤的试管中，(37±1)℃培养24h～48h；用作斜面保藏菌，(5±1)℃存放(不超过
1个月)，接种次数不超过14代；
(3)菌种活化：将斜面保藏菌转接营养琼脂斜面培养基，(37±1)℃培养18h～24h；每天转接1次，连续转接不超过15d，试验使用第3代～第14代且于24h内转接的新鲜细菌培养物；
(4)菌悬液制备：用接种环从菌种活化培养基上刮取少量新鲜细菌，加入试验菌种培养液制成菌悬液；1000r/min振摇试管1min或以30cm摆幅振摇试管80次，确保细菌悬浮均匀，将适量菌悬液移至与麦氏标准比浊管配套的无菌试管中，用0.7mm芯黑色中性笔在A6白色复印纸上划3条长度为10cm的平行线；目测试管与标准比浊管(标称浓度6.0×108CFU/mL)的浊度差异，滴加培养液直至二者浊度相同为止。
5.根据权利要求1所述的抗菌涂料抗细菌性能的检测方法，其特征在于，所述的OD值-活菌含量对数值lgCB标准曲线建立及接种菌液CB标定，按下述步骤进行：
(1)菌液OD值测定：用试验菌种培养液对细菌总量为6.0×108CFU/mL的菌悬液进行1:5、
1:10、1:15、1:20系列稀释，并以培养液作为空白对照样液，对酶标仪进行调零校正，然后，将100μL上述不同稀释度的菌液分别注入96孔平底培养板，每个稀释度做3个复孔；向每孔滴加20μL的MTT溶液，(37±1)℃、(90±2)％RH培养30min后；在560nm～610nm波长范围内扫描最大吸收峰，确定最大吸收波长；测定各孔混和溶液的活菌OD值，不同稀释度菌悬液的活菌OD值为其3个复孔OD测定值的算术平均值，同时，按照国标GB 4789.2-2016规定的方法，对上述菌悬液进行适当稀释后，在(37±1)℃培养24h±2h，并对平皿进行菌落计数，标定其活菌含量CB；
(2)OD值-活菌含量对数值lgCB标准曲线建立及接种菌液CB标定：以不同稀释度菌悬液的活菌OD值作为纵坐标，以其活菌含量对数值lgCB为横坐标，绘制OD值-lgCB标准曲线；应用最小二乘拟合法推导得出曲线的线性方程式Y＝a0X+b0及相关系数R02，其中大肠埃希氏菌(或志贺氏菌)和金黄色葡萄球菌(或沙门氏菌)分别选取稀释度为1:10、1:15、1:20和1:5、
1:10、1:15的菌悬液作为标准系列溶液绘制曲线，当R02≥0.98、置信水平≥0.95时，按照本专利方法测得的菌悬液活菌含量CB有效，然后，经试验菌种培养液调整，得到CB范围为5.0×
106CFU/mL～9.0×106CFU/mL的接种菌液。
6.根据权利要求1所述的抗菌涂料抗细菌性能的检测方法，其特征在于，所述的活菌含量对数值lgCB-相对荧光强度对数值lgIB标准曲线建立，按下述步骤进行：
(1)标准系列菌悬液确定及其IB测定：用试验菌种培养液将已知活菌含量CB的菌液梯度稀释为标准系列菌悬液：4.2×103CFU/mL、4.2×104CFU/mL、4.2×105CFU/mL并充分混匀，然后，根据本专利中相对荧光强度值IB测定方法，按照活菌含量CB从低到高的顺序，测定并记录上述标准系列菌悬液及0.3mL接种菌液经4.7mL洗脱液稀释后1min内的相对荧光强度值(将后者记为IB0)；
(2)活菌含量对数值lgCB-相对荧光强度对数值lgIB标准曲线建立：以标准系列菌悬液的相对荧光强度对数值lgIB作为横坐标，以其相应的活菌含量对数值lgCB为纵坐标作图；对二者之间的数学关系进行曲线标定，并应用最小二乘拟合法推导得出曲线的线性方程式Y
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＝aBX+bB及相关系数RB ；当RB ≥0.98、置信水平≥0.95时，按照本专利方法所做的测定有效。
7.根据权利要求1所述的抗菌涂料抗细菌性能的检测方法，其特征在于，所述的样品接种、培养及洗脱回收，按下述步骤进行：
(1)接种培养：用灭菌移液枪向各组对照样品和抗菌样品待测表面分别滴加0.3mL菌液(与lgCB-lgIB曲线标定用菌液取自同一支试验菌种原液试管，2℃±0.2℃保存，2h内使用)，用L棒(附着接种菌液但不挂滴)将菌液涂抹均匀，使其覆盖样品整个表面，盖上皿盖，用医用胶带密封装有6组24h接触样品的平皿；(37±1)℃、(90±2)％RH培养24h±2h；
(2)洗脱回收：以4.7mL试验菌种培养液作为洗脱液(可加入0.2％无菌表面活性剂)，6组0h接触样品接种细菌后，立即采用固体或液体拭子法进行充分洗脱；6组24h培养的样品采用与0h接触样品相同的洗脱方式回收细菌，固体拭子法即用头部浸有饱和洗脱液的无菌棉签分别在每个样品表面横竖往返均匀涂擦10次，并随之转动棉签；剪去实验人员手接触部分的棉棒，将棉签置于装有剩余洗脱液的无菌试管中，混匀后作为回收液(若回收液不足
5mL，添加洗脱液至5mL)，液体拭子法即用灭菌移液枪吸取4.7mL洗脱液，在平皿内反复冲洗每个样品表面至少4次，充分洗脱并将洗液移入无菌试管中，混匀后作为回收液(若回收液不足5mL，添加洗脱液至5mL)。
8.根据权利要求1所述的抗菌涂料抗细菌性能的检测方法，其特征在于，所述的回收液相对荧光强度值IB测定，按下述步骤进行：
(1)仪器及试剂组相对荧光强度本底值校准：用灭菌移液枪将0.1mL试验菌种培养液、
0.8mL含0.037％蔗糖的磷酸氢二钠缓冲溶液和0.1mL的ATP裂解液依次加入同一支无菌试管中并充分混匀，然后将0.1mL混和溶液分别移至三支仪器专用无菌试管中，静置5min～
30min，作为空白测试平行样，向三个平行样中分别滴加0.1mL的ATP提取试剂，混匀后滴入
0.1mL的ATP荧光试剂；再次混匀，立即用ATP荧光光度计测定其相对荧光强度值IB并记录(确保各环节操作时间一致，避免交叉污染)，每个平行样测定时间不超过15s，以三个空白测试平行样相对荧光强度值的算术平均值作为仪器和试剂组的本底值(或按照仪器使用说明校准本底值)；
(2)回收液相对荧光强度值IB测定：如本底水平符合仪器使用要求，则用灭菌移液枪将
0.1mL回收液、0.8mL含0.037％蔗糖的磷酸氢二钠缓冲溶液和0.1mL的ATP裂解液依次加入同一支无菌试管中，充分混匀后将0.1mL混和溶液分别移至三支仪器专用无菌试管中，静置
5min～30min，作为ATP荧光测试平行样，向三个平行样中分别滴加0.1mL的ATP提取试剂，混匀后滴入0.1mL的ATP荧光试剂；再次混匀，立即用ATP荧光光度计测定其相对荧光强度值IB并记录(确保各环节操作时间一致，避免交叉污染)，每个平行样测定时间不超过15s，以三个ATP荧光测试平行样相对荧光强度值的算术平均值作为待测样品回收液的IB测定值(或使用仪器配套试剂盒，按照相关使用说明书要求，直接上机测定回收液三个平行样的相对荧光强度值IB)。
9.根据权利要求1所述的抗菌涂料抗细菌性能的检测方法，其特征在于，所述的回收液活菌含量CB和TB推算以及抗菌率R和抗菌活性值A计算，按下述步骤进行：
(1)回收液活菌含量CB及TB推算
根据试验菌种标准曲线lgCB-lgIB的线性方程式Y＝aBX+bB，推算对照样品和抗菌样品经
0h接触及24h培养后回收液的活菌含量CB和TB，相关计算(使用仪器配套试剂盒时，根据其实际进样量推算1mL回收液的活菌含量CB和TB)见公式(1)～(12)：
式中：
CB0和CBt—3组0h接触和经24h培养后对照样品回收的平均活菌量，单位为菌落形成单位每毫升(CFU/mL)；
CB0i和CBti—每组0h接触和经24h培养后对照样品回收的平均活菌量，单位为菌落形成单位每毫升(CFU/mL)；样品组别i＝1,2,3；
CB0ij和CBtij—每件0h接触和经24h培养后对照样品回收的活菌量，单位为菌落形成单位每毫升(CFU/mL)；样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,5；
和 —每件0h接触和经24h培养后对照样品回收液的相对荧光强度测定值，RLU；
样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,5；
aB—标准曲线lgCB-lgIB斜率；bB—标准曲线lgCB-lgIB在纵轴截距；
TB0和TBt—3组0h接触和经24h培养后抗菌样品回收的平均活菌量，单位为菌落形成单位每毫升(CFU/mL)；
TB0i和TBti—每组0h接触和经24h培养后抗菌样品回收的平均活菌量，单位为菌落形成单位每毫升(CFU/mL)；样品组别i＝1,2,3；
TB0ij和TBtij—每件0h接触和经24h培养后抗菌样品回收的活菌量，单位为菌落形成单位每毫升(CFU/mL)；样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,5；
和 —每件0h接触和经24h培养后抗菌样品回收液的相对荧光强度测定值，RLU；
样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,5；
(2)试验有效条件
如果每件0h接触对照样品回收液与0.3mL接种菌液经4.7mL洗脱液稀释后1min内的相对荧光强度测定值接近，即 每件经24h培养后的对照样品回收液相对荧光强度测定值的对数 即CBtij≥0.1×CB0ij，则当3组0h接触对照样品回收液相对荧
光强度测定值 的组内及组间变异系数C·V≤10％时(所涉计算公式见本专利相关测量不确定度要求)，按照本专利方法进行的测定有效；
(3)细菌增长值Fij、Gij计算
每件对照样品和抗菌样品经24h培养后，细菌增长值Fij、Gij分别按照公式(13)、(14)计算：
式中：
Fij和Gij—每件对照样品和抗菌样品经24h培养后的细菌增长值，样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,5；
CB0ij和CBtij—每件0h接触和经24h培养后对照样品回收的活菌量，单位为菌落形成单位每毫升(CFU/mL)；样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,5；
和 —每件0h接触和经24h培养后对照样品回收液的相对荧光强度测定值，RLU；
样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,5；
TB0ij和TBtij—每件0h接触和经24h培养后抗菌样品回收的活菌量，单位为菌落形成单位每毫升(CFU/mL)；样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,5；
和 —每件0h接触和经24h培养后抗菌样品回收液的相对荧光强度测定值，RLU；
样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,5；
aB—标准曲线lgCB-lgIB斜率；
(4)抗菌率R计算
试验有效条件下，每件抗菌涂料样品的抗菌率Rij、每组及每批样品的抗菌率Ri和R分别按照公式(15)、(16)、(17)计算：
式中：
Rij—每件抗菌涂料样品的抗菌率，％；样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,
5；
Ri—每组抗菌涂料样品的抗菌率，％；样品组别i＝1,2,3；
R—每批抗菌涂料样品的抗菌率，％；
TBtij和CBtij—每件抗菌样品和对照样品经24h培养后回收的活菌量，单位为菌落形成单位每毫升(CFU/mL)；样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,5；
和 —每件抗菌样品和对照样品经24h培养后，回收液的相对荧光强度测定值，
RLU；样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,5；
aB—标准曲线lgCB-lgIB斜率；
(5)抗菌活性值A计算
试验有效条件下，每件抗菌涂料样品的抗菌活性值Aij、每组及每批样品的抗菌活性值Ai和A分别按照公式(18)、(19)、(20)计算：
式中：
Aij—每件抗菌涂料样品的抗菌活性值；样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,
5；
Ai—每组抗菌涂料样品的抗菌活性值，样品组别i＝1,2,3；
A—每批抗菌涂料样品的抗菌活性值；
Fij和Gij—每件对照样品和抗菌样品经24h培养后的细菌增长值，样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,5；
和 —每件0h接触和经24h培养后对照样品回收液的相对荧光强度测定值，RLU；
样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,5；
和 —每件0h接触和经24h培养后抗菌样品回收液的相对荧光强度测定值，RLU；
样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,5；
aB—标准曲线lgCB-lgIB斜率；
(6)数据修约要求：采用平板计数法标定菌悬液活菌含量CB时，参考GB4789.2—2016相关规定，当CB小于100CFU/mL时，“四舍五入”取整数；当CB不小于100CFU/mL时，第3位数字“四舍五入”后取前2位数字，后面用0代替位数；也可用10的指数形式表示，“四舍五入”后采用两位有效数字；对照样品和抗菌样品经0h接触及24h培养后回收液的相对荧光强度测定值取整数，抗菌率Rij、Ri、R计算结果取三位有效数字；细菌增长值Fij、Gij和抗菌活性值Aij、Ai、A计算结果取两位有效数字；
(7)测量不确定度：本专利方法主要通过计算对照样品和抗菌样品经0h接触及24h培养后，回收液相对荧光强度测定值的组内及组间变异系数C·V＝σ÷μ×100％(μ、σ和C·V计算结果保留到小数点后两位)，判断将ATP生物荧光分析法应用于涂料抗细菌性能测试的重现性；规定组内及组间变异系数C·V不得大于10％，
每组0h接触的5件对照样品、5件抗菌样品以及经24h培养后的5件对照样品、5件抗菌样品，其回收液相对荧光强度测定值的算术平均值 及 分别按照公式(21)、
(22)计算(样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,5；ATP测试平行样编号k＝1,2,3；
式中 和 分别为每组对照样品和抗菌样品经0h接触及24h培养后，各
ATP测试平行样的相对荧光强度测定值)：
3组0h接触的15件对照样品、15件抗菌样品以及经24h培养后的15件对照样品、15件抗菌样品，其回收液相对荧光强度测定值的算术平均值 及 分别按照公式
(23)、(24)计算(样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,5；ATP测试平行样编号k＝
1,2,3；式中 和 分别为每组对照样品和抗菌样品经0h接触及24h培
养后，各ATP测试平行样的相对荧光强度测定值)：
每组0h接触的5件对照样品、5件抗菌样品以及经24h培养后的5件对照样品、5件抗菌样品，其回收液相对荧光强度测定值的标准偏差 及 分别按照公式(25)和
(26)计算(样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,5；ATP测试平行样编号k＝1,2,3；
式中 和 分别为每组对照样品和抗菌样品经0h接触及24h培养后，各
ATP测试平行样的相对荧光强度测定值)：
3组0h接触的15件对照样品、15件抗菌样品以及经24h培养后的15件对照样品、15件抗菌样品，其回收液相对荧光强度测定值的标准偏差 及 分别按照公式
(27)和(28)计算(样品组别i＝1,2,3；每组样品编号j＝1,2,3,4,5；ATP测试平行样编号k＝
1,2,3；式中 和 分别为每组对照样品和抗菌样品经0h接触及24h培
养后，各ATP测试平行样的相对荧光强度测定值)：
10.根据权利要求1所述的抗菌涂料抗细菌性能的检测方法，其特征在于，所述的结果评价，按下述步骤进行：
(1)参考卫生行业通用做法和相关抗菌产品标准要求，采取以下分级判定标准：
如果采用抗菌率R作为相关性能评价指标：当Rij/Ri/R＜90％时(金黄色葡萄球菌和沙门氏菌Rij/Ri/R＜80％)，样品无抗细菌作用；当90％≤Rij/Ri/R＜99％时(金黄色葡萄球菌和沙门氏菌80％≤Rij/Ri/R＜90％)，样品具有抗细菌作用；当99％≤Rij/Ri/R＜99.9％时(金黄色葡萄球菌和沙门氏菌90％≤Rij/Ri/R＜99％)，样品抗细菌作用较强；当Rij/Ri/R≥
99.9％时(金黄色葡萄球菌和沙门氏菌Rij/Ri/R≥99％)，样品抗细菌作用极强；
如果采用抗菌活性值A作为相关性能评价指标：当Aij/Ai/A＜1.0时(金黄色葡萄球菌和沙门氏菌Aij/Ai/A＜0.5)，样品无抗细菌作用；当1.0≤Aij/Ai/A＜2.0时(金黄色葡萄球菌和沙门氏菌0.5≤Aij/Ai/A＜1.0)，样品具有抗细菌作用；当2.0≤Aij/Ai/A＜3.0时(金黄色葡萄球菌和沙门氏菌1.0≤Aij/Ai/A＜2.0)，样品抗细菌作用较强；当Aij/Ai/A≥3.0时(金黄色葡萄球菌和沙门氏菌Aij/Ai/A≥2.0)，样品抗细菌作用极强；
(2)当某组(件)抗菌涂料样品的抗菌率Ri(Rij)或抗菌活性值Ai(Aij)与其他两组(四件)样品的抗细菌性能相比至少相差一个水平级时，重新提取一组(件)样品重复实验；计算其经ATP生物荧光lgCB─lgIB标准曲线法测得的抗菌率或抗菌活性值，如果前后两组抗菌涂料样品抗细菌性能水平相同，则弃之；取另外两组(四件)剩余样品抗菌率Ri(Rij)或抗菌活性值Ai(Aij)的算术平均值作为该批次(组)抗菌涂料样品抗细菌性能的评价结果。