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一种鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验方法

阅读:91发布:2020-05-23

专利汇可以提供一种鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验方法专利检索,专利查询,专利分析的服务。并且一种鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的 彗星 实验方法,它属于环境对鱼体遗传毒理学评价领域。方法:一、制备鱼肌肉组织的细胞悬液;二、彗星实验采用双层凝胶结构,进行裂解;三、裂解后冲洗,放入 电泳 缓冲液中电泳;四、电泳结束后 载玻片 经冲洗、晾干后移去盖玻片, 染色 后清洗,盖上盖玻片,用 荧光 显微镜 观察彗星图像,然后计算细胞受损率或分析图像,再分析结果,即完成。本 发明 优点在于具有高灵敏性,无需 放射性 示踪,并且这种技术只需要少量细胞,操作简单、直观、检测快速和具有良好经济性,相比 试剂 盒 更为廉价;还为鱼体遗传毒性进行定性、定量化评价提供支持,了解其江河 水 产 质量 、水质情况及其鱼体遗传毒理现状。,下面是一种鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验方法专利的具体信息内容。

1.一种鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验方法,其特征在于它按以下步骤实现:
一、称取鱼肌肉组织0.8mg,放入离心管中,加入400μL 4℃预冷的PBS,用科弯剪剪成糜状,然后用匀浆器研磨,过100目筛网,再用2mL的PBS冲洗并滤去碎组织,取400μL滤液,置于离心管待用,获得细胞悬液;步骤一的操作全程于0~4℃下进行;
二、彗星实验采用双层凝胶结构,双层凝胶制备好后,将载玻片放置在4℃箱中
0.8~1.2h,然后放入4℃预冷的新配制细胞裂解液中,4℃下避光裂解1.5h;
三、裂解后将载玻片取出,用双蒸冲洗,然后放入盛有4℃的新配制电泳缓冲液的水平电泳槽中静止30min,再在4℃,300mA,0.7V/cm的条件下电泳20min;
四、电泳结束后将载玻片用去离子水冲洗3次,晾干后移去盖玻片,将载玻片用50μl EB染液染色15~20min,然后用双蒸水清洗,盖上盖玻片,用荧光显微镜观察彗星图像,在
100倍荧光显微镜下随机选取8~12个清晰细胞核图像进行观察并用CCD拍摄彗星图像,然后计算细胞受损率或用casp软件分析图像,再使用spss统计软件分析结果,即完成鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验。
2.根据权利要求1所述的一种鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验方法,其特征在于步骤一中鱼肌肉取自鲤科鱼类胸腔背部、侧线与背鳍间肌肉。
3.根据权利要求1所述的一种鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验方法,其特征在于步骤一中的操作全程于2℃下进行。
4.根据权利要求1所述的一种鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验方法,其特征在于步骤一中PBS的浓度为0.01mol/L,pH为7.2~7。
5.根据权利要求1所述的一种鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验方法,其特征在于步骤二中细胞裂解液的配制:2.5mol/L NaCl、100mmol/L Na2EDTA、10mmol/L Tris、临用前加10%DMSO和1%Triton X-100。
6.根据权利要求1所述的一种鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验方法,其特征在于步骤二中将载玻片放置在4℃冰箱中1h。
7.根据权利要求1所述的一种鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验方法,其特征在于步骤二中双层凝胶的制备方法如下:
(1)取45mg正常熔点琼脂糖溶于6mL PBS,微波炉加热使其充分溶解,制备成0.75%正常熔点琼脂糖溶液,然后浇注到磨砂载玻片上,盖上盖玻片并于室温下贮存至琼脂糖凝固,移去盖玻片,获得第一层琼脂糖;
(2)取10mg低熔点琼脂糖溶于2mL PBS,微波炉稍加热使其充分溶解,制备成0.5%低熔点琼脂糖溶液,待温度降至35~38℃,取400μL细胞悬液与其混匀,然后将所得混合液加到第一层琼脂糖上,盖上盖玻片,即完成双层凝胶的制备。
8.根据权利要求1所述的一种鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验方法,其特征在于步骤三中电泳缓冲液的配制:1mmol/L Na2EDTA和300mmol/L NaOH。
9.根据权利要求1所述的一种鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验方法,其特征在于步骤四中EB染液的浓度为2μg/ml。

说明书全文

一种鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验方法

技术领域

[0001] 本发明属于环境对鱼体遗传毒理学评价领域,具体涉及一种检测体中鱼类肌肉组织细胞基因损伤程度的方法。

背景技术

[0002] 重金属是污染水体及危害鱼类食用安全性的重要因素。鱼体过多富集重金属,会导致机体的DNA损伤。检测其中鱼体DNA损伤,判断其遗传毒理对其食用安全性评价具有重要意义。彗星实验(Comet assay)又称单细胞凝胶电泳实验,是一种灵敏性高的遗传毒性研究方法,已被用作检测诸如DNA单链和双链断裂、性位点、不完全修复位点、DNA交联等多种类型的DNA损伤。
[0003] 鲤科鱼类是中国居民的主要膳食鱼肉来源,因此,检测分析鲤科鱼肉遗传毒性程度对评价鲤科鱼肉重金属残留、膳食摄入险、食用安全性及确保人类健康具有极其重要的应用意义。

发明内容

[0004] 本发明提供一种鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验方法,目的是检测鱼类食用安全性。
[0005] 鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验方法,按以下步骤实现:
[0006] 一、称取鱼肌肉组织0.8mg,放入离心管中,加入400μL 4℃预冷的PBS,用科弯剪剪成糜状,然后用匀浆器研磨,过100目筛网,再用2mL的PBS冲洗并滤去碎组织,取400μL滤液,置于离心管待用,获得细胞悬液;步骤一的操作全程于0~4℃下进行;
[0007] 二、彗星实验采用双层凝胶结构,双层凝胶制备好后,将载玻片放置在4℃箱中0.8~1.2h,然后放入4℃预冷的新配制细胞裂解液中,4℃下避光裂解1.5h;
[0008] 三、裂解后将载玻片取出,用双蒸水冲洗,然后放入盛有4℃的新配制电泳缓冲液的水平电泳槽中静止30min,再在4℃,300mA,0.7V/cm的条件下电泳20min;
[0009] 四、电泳结束后将载玻片用去离子水冲洗3次,晾干后移去盖玻片,将载玻片用50μl EB染液染色15~20min,然后用双蒸水清洗,盖上盖玻片,用荧光显微镜观察彗星图像,在100倍荧光显微镜下随机选取8~12个清晰细胞核图像进行观察并用CCD拍摄彗星图像,然后计算细胞受损率或用casp软件分析图像,再使用spss统计软件分析结果,即完成鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验。
[0010] 本发明优点在于具有高灵敏性,无需放射性示踪,并且这种技术只需要少量细胞,操作简单、直观、检测快速和具有良好经济性,相比试剂盒更为廉价。在评价复合污染毒性时,可充分考虑污染物之间的相互作用,是评价复合污染的有效生物监测手段。相对其他DNA损伤检测方法,节约了时间和成本,可以检测的鱼类DNA损伤,为判断是否具有毒理学安全,是否具有人体食用安全性提供依据。此外本发明还为鱼体遗传毒性进行定性、定量化评价提供支持,了解其江河水产质量、水质情况及其鱼体遗传毒理现状,可为进一步的江河流域鱼类食用安全性评价打下基础
[0011] 本发明方法利用鱼类,取其肌肉组织细胞进行彗星实验,使用casp软件可计算出细胞的TM值。当TM>1时就可认为发生了DNA损伤。通过视野内计数观察受损细胞所占比例数,判断DNA损伤情况。根据受损率,为该流域鱼类的毒理学安全评价提供理论基础。附图说明
[0012] 图1为实施例中鲤鱼肌肉彗星实验结果图;
[0013] 图2为实施例中鲫鱼肌肉彗星实验结果图。

具体实施方式

[0014] 本发明技术方案不局限于以下所列举具体实施方式,还包括各具体实施方式间的任意组合。
[0015] 具体实施方式一:本实施方式鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验方法,按以下步骤实现:
[0016] 一、称取鱼肌肉组织0.8mg,放入离心管中,加入400μL 4℃预冷的PBS,用科弯剪剪成糜状,然后用匀浆器研磨,过100目筛网,再用2mL的PBS冲洗并滤去碎组织,取400μL滤液,置于离心管待用,获得细胞悬液;步骤一的操作全程于0~4℃下进行;
[0017] 二、彗星实验采用双层凝胶结构,双层凝胶制备好后,将载玻片放置在4℃冰箱中0.8~1.2h,然后放入4℃预冷的新配制细胞裂解液中,4℃下避光裂解1.5h;
[0018] 三、裂解后将载玻片取出,用双蒸水冲洗,然后放入盛有4℃的新配制电泳缓冲液的水平电泳槽中静止30min,再在4℃,300mA,0.7V/cm的条件下电泳20min;
[0019] 四、电泳结束后将载玻片用去离子水冲洗3次,晾干后移去盖玻片,将载玻片用50μl EB染液染色15~20min,然后用双蒸水清洗,盖上盖玻片,用荧光显微镜观察彗星图像,在100倍荧光显微镜下随机选取8~12个清晰细胞核图像进行观察并用CCD拍摄彗星图像,然后计算细胞受损率或用casp软件分析图像,再使用spss统计软件分析结果,即完成鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验。
[0020] 本实施方式中使用casp软件可计算出细胞的TM值;当TM>1时就可认为发生了DNA损伤。通过视野内计数观察受损细胞所占比例数,判断DNA损伤情况。根据受损率,为该流域鱼类的毒理学安全评价提供理论基础。
[0021] 具体实施方式二:本实施方式与具体实施方式一不同的是:步骤一中鱼肌肉取自鲤科鱼类胸腔背部、侧线与背鳍间肌肉。其它步骤及参数与具体实施方式一相同。
[0022] 具体实施方式三:本实施方式与具体实施方式二不同的是:步骤一中的操作全程于2℃下进行。其它步骤及参数与具体实施方式一相同。
[0023] 具体实施方式四:本实施方式与具体实施方式一至三之一不同的是:步骤一中PBS的浓度为0.01mol/L,pH为7.2~7。其它步骤及参数与具体实施方式一至三之一相同。
[0024] 具体实施方式五:本实施方式与具体实施方式一至四之一不同的是:步骤二中细胞裂解液的配制:2.5mol/L NaCl、100mmol/L Na2EDTA、10mmol/L Tris、临用前加10%DMSO和1%Triton X-100。其它步骤及参数与具体实施方式一至四之一相同。
[0025] 具体实施方式六:本实施方式与具体实施方式一至五之一不同的是:步骤二中将载玻片放置在4℃冰箱中1h。其它步骤及参数与具体实施方式一至五之一相同。
[0026] 具体实施方式七:本实施方式与具体实施方式一至六之一不同的是:步骤二中双层凝胶的制备方法如下:
[0027] (1)取45mg正常熔点琼脂糖溶于6mL PBS,微波炉加热使其充分溶解,制备成0.75%正常熔点琼脂糖溶液,然后浇注到磨砂载玻片上,盖上盖玻片并于室温下贮存至琼脂糖凝固,移去盖玻片,获得第一层琼脂糖;
[0028] (2)取10mg低熔点琼脂糖溶于2mL PBS,微波炉稍加热使其充分溶解,制备成0.5%低熔点琼脂糖溶液,待温度降至35~38℃,取400μL细胞悬液与其混匀,然后将所得混合液加到第一层琼脂糖上,盖上盖玻片,即完成双层凝胶的制备。其它步骤及参数与具体实施方式一至六之一相同。
[0029] 具体实施方式八:本实施方式与具体实施方式一至七之一不同的是:步骤三中电泳缓冲液的配制:1mmol/L Na2EDTA和300mmol/L NaOH。其它步骤及参数与具体实施方式一至七之一相同。
[0030] 具体实施方式九:本实施方式与具体实施方式一至八之一不同的是:步骤四中EB染液的浓度为2μg/ml。其它步骤及参数与具体实施方式一至八之一相同。
[0031] 采用以下实施例验证本发明的有益效果:
[0032] 实施例:
[0033] 鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验方法,按以下步骤实现:
[0034] 一、称取鱼肌肉组织0.8mg,放入离心管中,加入400μL 4℃预冷的PBS,用科弯剪剪成糜状,然后用匀浆器研磨,过100目筛网,再用2mL的PBS冲洗并滤去碎组织,取400μL滤液,置于离心管待用,获得细胞悬液;步骤一的操作全程于0℃下进行;
[0035] 二、彗星实验采用双层凝胶结构,双层凝胶制备好后,将载玻片放置在4℃冰箱中1h,然后放入4℃预冷的新配制细胞裂解液中,4℃下避光裂解1.5h;
[0036] 三、裂解后将载玻片取出,用双蒸水冲洗,然后放入盛有4℃的新配制电泳缓冲液的水平电泳槽中静止30min,再在4℃,300mA,0.7V/cm的条件下电泳20min;
[0037] 四、电泳结束后将载玻片用去离子水冲洗3次,晾干后移去盖玻片,将载玻片用50μl EB染液染色15min,然后用双蒸水清洗,盖上盖玻片,用荧光显微镜观察彗星图像,在
100倍荧光显微镜下随机选取8~12个清晰细胞核图像进行观察并用CCD拍摄彗星图像,然后用casp软件分析图像,再使用spss统计软件分析结果,即完成鱼类肌肉组织细胞基因损伤检测的彗星实验。
[0038] 采用上述实施例的方法,选取黑龙江、吉林境内的松花江全流域部分江段进行检测。主要采集吉林省(长春市白山断面,长春市松林断面)、黑龙江省(哈尔滨市大顶子山断面,齐齐哈尔市尼尔基水库,佳木斯市佳木斯断面,佳木斯市名山断面,佳木斯市抚远断面)等地松花江流域水样及春季开江底栖性鲤科鱼类作为实验对象。
[0039] 图1所示实验结果为松花江干流哈尔滨江段鲤鱼肌肉彗星结果图,如图所示,可明显观测到11个明显的细胞核,通过casp软件分析这些细胞核均不具有彗尾,即并未发现明显DNA损伤细胞,DNA受损率为0%,表明该流域鲤鱼无膳食摄入风险,具有食用安全性。
[0040] 图2所示实验结果为松花江干流哈尔滨江段鲫鱼肌肉彗星结果图,如图所示,可明显观测到13个明显的细胞核,通过casp软件分析这些细胞核均不具有彗尾,即并未发现明显DNA损伤细胞,DNA受损率为0%,表明该流域鲫鱼无膳食摄入风险,具有食用安全性。
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