实施例1抗肿瘤溶栓双效嵌合蛋白SAK-linker-SEC2的制备
(一)带有嵌合基因sak-linker-sec2的表达质粒构建
为了保证嵌合蛋白中,SAK和SEC2不会发生结构和功能的影响,本发明采用由9个丙氨酸组成的柔性连接肽(linker)连接SAK和SEC2。通过重叠延伸剪接技术构建嵌合基因,连接到表达载体pET28a(+)上,并转化大肠杆菌BL21(DE3)。
1、嵌合基因sak-linker-sec2的构建:
经PCR方法分别克隆得到编码SAK的基因sak(其DNA序列如SEQID NO.6所示)和编码SEC2的基因sec2(其DNA序列如SEQ ID NO.7所示的),并在sak的3’端和sec2的5’端分别加上编码连接肽(linker)的基因linker(其DNA序列如SEQ ID NO.8所示),然后以linker为互补末端经重叠延伸剪接技术(SOE-PCR)扩增得到嵌合基因sak-linker-sec2(其DNA序列如SEQ ID NO.9所示)。同时,为了实现嵌合基因sak-linker-sec2连接到表达质粒pET-28a(+)上并能成功表达,通过PCR方法在嵌合基因sak-linker-sec2的5’端加上EcoRI酶切位点及保护
碱基,在嵌合基因sak-linker-sec2的3’端加上终止密码子,XhoI酶切位点及保护碱基。
2、构建重组质粒:
将带有酶切位点的嵌合基因sak-linker-sec2经限制性内切酶EcoRI和XhoI双酶切后,插入到表达载体pET28(+)的EcoRI/XhoI位点,T4连接酶16℃连接过夜,得到连接反应液。
3、大肠杆菌的化学转化:
将连接反应液加入到预先通过氯化
钙法制备的大肠杆菌BL21感受态细胞中,经化学方法转化(42℃
水浴热激),之后,将菌液涂布于LB平板上,37℃培养过夜,以筛选阳性克隆。
4、阳性克隆的筛选:
在含有Kan抗性的LB平板培养基上,挑取阳性克隆,培养后提取质粒经EcoRI和XhoI双酶切验证,确定嵌合基因sak-linker-sec2是否被插入到表达质粒中。再由上海生工公司(Sangon,China)对得到的重组质粒进行测序确认。
试验结果:
经双酶切验证和测序分析综合表明,表达SAK-linker-SEC2的原核表达载体构建成功。获得带有重组质粒pET28a-sak-linker-sec2的重组大肠杆菌。
(二)SAK-linker-SEC2的诱导表达及纯化
1、SAK-linker-SEC2的诱导表达
将带有重组质粒pET28a-sak-linker-sec2的重组大肠杆菌接种于含有Kan(卡那霉素,Kanamycine,Kan)(40μg/ml)的10ml LB培养基中,培养12~16小时,次日按2%的接种量,将培养好的菌液接种到含有Kan(40μg/ml)的200ml LB培养基中培养,当菌液吸光度值达到0.6时,用1mM IPTG进行诱导。为了避免在表达过程中出现包涵体,本发明选择在菌体生长不是很活跃的30℃作为诱导
温度,诱导4-5h。
2、SAK-linker-SEC2的纯化
经过4个小时的诱导表达后,通过8000rpm离心5分钟收集菌体细胞。零下20℃过夜冻存菌体,次日取出,室温放置15分钟。
用超声波破碎菌体细胞,功率:200-300W;处理时间:6×9sec,9sec间隔。处理后,6000rpm离心10min,去除不溶性细胞碎片,收集上清液。
将上清液低速上样于Ni-NTA亲和层析柱,平衡缓冲液(30mMTris-HCl,300mM NaCl pH7.6)平衡至基线,洗脱缓冲液(30mM Tris-HCl,300mM NaCl,50-300mM咪唑pH7.6)梯度洗脱,收集洗脱峰,浓缩除盐,SDS-PAGE分析纯度。得到带有组氨酸标签的重组SAK-linker-SEC2。
本发明中,载体质粒pET28a(+)编码了三个用于纯化的标签,C端6×Histag,t7tag和N端6×Histag,本发明选择了N端6×Histag。利用Ni离子特异性螯合His的特点,实现含有6×Histag的SAK-linker-SEC2与杂蛋白的分离,再通过咪唑竞争6×Histag与Ni离子的结合实现SAK-linker-SEC2的洗脱。
试验结果:经SDS-PAGE验证,成功表达并纯化出嵌合蛋白SAK-linker-SEC2,其氨基酸序列如SEQ ID NO.4所示。
(三)体外溶栓活性分析
具体实施如下:
称取125mg琼脂糖(
电泳级),加入23ml生理盐水,煮沸溶解,60℃水浴平衡,加凝血酶14μl(100IU/ml),人纤溶酶原280μl(0.5mg/ml),人纤维蛋白原2.2ml(6mg/ml),倒入80mm平板内冷却,制成人纤维蛋白平板,用前于4℃放置半个小时。
打孔上样,每个孔的直径为2mm,上样量为10μl,SAK和SAK-linker-SEC2的浓度为50μg/ml,每个样品设置3个重复,于37℃恒温湿盒内放置24h后,测溶栓直径并进行活性比较。
实验结果:
SAK的溶栓直径平均为24.68mm,SAK-linker-SEC2的溶栓直径平均为24.72mm,二者的溶栓活性基本相同。
(四)体外淋巴细胞(PBMC)增殖活性分析
具体实施如下:
取正常人新鲜外周血5ml,抗凝后(肝素,终浓度0.2mg/ml),与等量的D-Hanks液混匀,小心地加在等量的淋巴细胞分离液上面,3000rpm离心15min,取出中间的
云雾层(PBMC),再加入等量D-Hanks液混匀,3000rpm离心10min,弃上清,然后用3-5ml D-Hanks液重悬PBMC,3000rpm离心10min,重复一次,加入适量的含有10%血清的新鲜DMEM培养基,计数。将PBMC以1×105个/孔的量加入到96孔板中,于CO2含量为5%,37℃的恒温细胞
培养箱中培养12h,次日用含有10%血清的DNEM培养基将待测样品稀释至20ng/ml和200ng/ml两个浓度,加入到96孔板中,以BSA阴性作为对照,PHA-P作为阳性对照,每样3个复孔;5%CO2,37℃培养72h;取出96孔板,按50μl/孔加入MTT,5%CO2,37℃培养4h;3000rpm离心10min,加入DMSO 120μl/孔,37℃溶解20min;酶标仪上570nm测定各孔的吸光值。
实验结果:
从鼠脾淋巴细胞的增值情况可以看出,无论是较低浓度的20ng还是较高浓度的200ng,SAK-linker-SEC2和肠毒素SEC2的增值率是相同的。结果见表1
表1鼠脾淋巴细胞增殖实验
(五)体外抑瘤活性分析
具体实施如下:
取正常人新鲜外周血5ml,抗凝后(肝素,终浓度0.2mg/ml),与等量的D-Hanks液混匀,小心地加在等量的淋巴细胞分离液上面,3000rpm离心15min,取出中间的云雾层(PBMC),加入等量D-Hanks液混匀,3000rpm离心10min,弃上清,用3-5mlD-Hanks液重悬PBMC,3000rpm离心10min,重复一次,加入适量的含有10%血清的新鲜DMEM培养基,计数。将PBMC以2×105个/孔的量加入到96孔板中;倒掉Hella细胞培养瓶中旧培养基,加入2-3ml D-Hanks液洗去残留的培养基,或用少量胰酶涮洗一次,加入1-2ml胰酶,盖好瓶盖后在倒置
显微镜下观察,当细胞收回突起变圆时立即翻转培养瓶,使细胞脱离胰酶,将胰酶倒掉,加入少量含有10%血清的DMEM培养基,反复吹打消化好的细胞使其脱壁并分散,计数。将Hella细胞以1×104个/孔的量加入到96孔板中,用含有10%血清的DMEM培养基将待测样品稀释至20ng/ml和200ng/ml两个浓度,加入到96孔板中,仅加Hella细胞作为肿瘤细胞对照孔,仅加与实验孔等量的PBMC和待测样品作为本底释放孔,每样3个复孔,5%CO2,37℃培养36h;取出96孔板,加入50μl/孔MTT,5%CO2,37℃培养4h;3000rpm离心10min,加入DMSO 120μl/孔,37℃溶解20min,酶标仪上570nm测定各孔的吸光值。并按照下面的公式计算抑瘤率:
实验结果:
从抑瘤效果上看,在20ng和200ng两种不同浓度下,SAK-linker-SEC2都表现出和肠毒素SEC2相同的活力。结果见表2
表2体外抑瘤实验
实施例2嵌合蛋白SEC2-linker-SAK的制备
(一)带有嵌合基因sec2-linker-sak的表达质粒构建
1、嵌合基因sec2-linker-sak的构建:
经PCR方法分别克隆得到编码SAK的基因sak(其DNA序列如SEQID NO.10所示)和编码SEC2的基因sec2(其DNA序列如SEQ ID NO.11所示的),并在sec2的3’端和sak的5’端分别加上编码连接肽(linker)的基因linker(其DNA序列如SEQ ID NO.8所示),然后以linker为互补末端经重叠延伸剪接技术(SOE-PCR)扩增得到嵌合基因sec2-linker-sak(其DNA序列如SEQ ID NO.12所示)。同时,为了实现嵌合基因sec2-linker-sak连接到表达质粒pET-28a(+)上,并能成功表达,通过PCR方法在嵌合基因sec2-linker-sak的5’端加上EcoRI酶切位点及保护碱基,在嵌合基因sec2-linker-sak的3’端加上终止密码子,XhoI酶切位点及保护碱基。
2、构建重组质粒:
将带有酶切位点的嵌合基因sec2-linker-sak经限制性内切酶EcoRI和XhoI双酶切后,插入到表达载体pET28(+)的EcoRI/XhoI位点,T4连接酶16℃连接过夜,得到连接反应液。
3、大肠杆菌的化学转化:
将连接反应液加入到预先通过
氯化钙法制备的大肠杆菌BL21感受态细胞中,经化学方法转化(42℃水浴热激),之后,将菌液涂布于LB平板上,37℃培养过夜,以筛选阳性克隆。
4、阳性克隆的筛选:
在含有Kan抗性的LB平板培养基上,挑取阳性克隆,培养后提取质粒经EcoRI和XhoI双酶切验证,确定嵌合基因sec2-linker-sak是否被插入到表达质粒中。再由上海生工公司(Sangon,China)对得到的重组质粒进行测序确认。
试验结果:
经双酶切验证和测序分析综合表明,表达SEC2-linker-SAK的原核表达载体构建成功。获得带有重组质粒pET28a-sec2-linker-sak的重组大肠杆菌。
(二)SEC2-linker-SAK的诱导表达及纯化
1、SEC2-linker-SAK的诱导表达
将带有重组质粒pET28a-sec2-linker-sak的重组大肠杆菌接种于含有Kan(卡那霉素,Kanamycine,Kan)(40μg/ml)的10ml LB培养基中,培养12~16小时,次日按2%的接种量,将培养好的菌液接种到含有Kan(40μg/ml)的200ml LB培养基中培养,当菌液吸光度值达到0.6时,用1mM IPTG进行诱导。为了避免在表达过程中出现包涵体,本发明选择在菌体生长不是很活跃的30℃作为诱导温度,诱导4-5h。
2、SEC2-linker-SAK的纯化
经过4个小时的诱导表达后,通过8000rpm离心5分钟收集菌体细胞。零下20℃过夜冻存菌体,次日取出,室温放置15分钟。
用超声波破碎菌体细胞,功率:200-300W;处理时间:6×9sec,9sec间隔。处理后,6000rpm离心10min,去除不溶性细胞碎片,收集上清液。
将上清液低速上样于Ni-NTA亲和层析柱,平衡缓冲液(30mMTris-HCl,300mM NaCl pH7.6)平衡至基线,洗脱缓冲液(30mM Tris-HCl,300mM NaCl,50-300mM咪唑pH7.6)梯度洗脱,收集洗脱峰,浓缩除盐,SDS-PAGE分析纯度。得到带有组氨酸标签的重组SEC2-linker-SAK。
本发明中,载体质粒pET28a(+)编码了三个用于纯化的标签,C端6×Histag,t7tag和N端6×Histag,本发明选择了N端6×Histag。利用Ni离子特异性螯合His的特点,实现含有6×Histag的SEC2-linker-SAK与杂蛋白的分离,再通过咪唑竞争6×Histag与Ni离子的结合实现SEC2-linker-SAK的洗脱。。
试验结果:经SDS-PAGE验证,成功表达并纯化出嵌合蛋白SEC2-linker-SAK。其氨基酸序列如SEQ ID NO.5所示
(三)体外溶栓活性分析
具体实施:同实施例1
实验结果:
SAK的溶栓直径平均为24.68mm,SEC2-linker-SAK的溶栓直径平均为18.40mm,嵌合蛋白溶栓活性明显降低。
(四)体外淋巴细胞(PBMC)增殖活性分析
具体实施:同实施例1
实验结果:
从鼠脾淋巴细胞的增值情况可以看出,无论是较低浓度的20ng还是较高浓度的200ng,SEC2-linker-SAK和肠毒素SEC2的增值率是相同的。结果见表3
表3鼠脾淋巴细胞增殖实验
(五)体外抑瘤活性分析
具体实施:同实施例1
实验结果:
从抑瘤效果上看,在20ng和200ng两种不同浓度下,SEC2-linker-SAK都表现出和肠毒素SEC2相同的活力。结果见表4
表4体外抑瘤实验
序列表
<110>辽宁大学
<120>抗肿瘤溶栓双效嵌合蛋白及其制备方法和应用
<160>12
<210>1
<211>136
<212>PRT
<213>人工序列
<400>1
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PIKPGTTLTKEKIEYYVEWALDATAYKEFRVVELDPSAKIEVTYYDKN
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<211>9
<212>PRT
<213>人工序列
<400>2
AAAAAAAAA
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<212>PRT
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<210>4
<211>384
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<213>人工序列
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<213>人工序列
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<213>人工序列
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<213>人工序列
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<210>12
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<212>DNA
<213>人工序列
<400>12
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