化学
农药已经应用了半个多世纪,给农业带来了巨大的经济效益。然而,在
农作物 种植中滥用
化学农药,普遍存在农药物残留,威胁人类的健康,同时引起的有害昆虫的 抗药性日益增强,使农药防治各种
害虫的效果明显下降,给农作物种植带来危害。由此 可见绿色农药或
生物农药是未来农药发展的必然趋势,也是农业可持续发展的一项基本 保证。它的特点是:1)有很高的生物活性,药效高,单位面积使用量少;2)选择性强, 对
益虫和非靶标生物无毒或毒性极小;3)对农作物无害;4)使用后在农作物体内外、 农产品以及
土壤、大气、
水体无残留或即使有微量残留也可在短期内降解,生成无害的 无毒天然物质而完全融入大自然。
多杀菌素是野生型菌株放线菌刺糖多孢菌(Saccharopolyspora spinosa)在培养介 质中经有
氧发酵而得的
次级代谢产物。从结构上看,这些化合物属大环内酯类,是两种 活性组分Spinosad A和D的混合物。它的作用机理被认为是烟酸乙酰胆
碱受体的作用体, 同时也作用于γ-
氨基丁酸受体,可使害虫迅速麻痹、瘫痪,最后导致死亡,其杀虫速度 可与化学农药相媲美,安全性高,且与目前常用
杀虫剂无交互抗性,被美国环保组织确 定为低毒、高效、低残留的生物杀虫剂,既有高效的杀虫性能,又有对益虫和
哺乳动物 安全的特性,最适合无公害农作物的生产应用。但是S.Spinosa生长周期长达二至三星 期,它的生长缓慢限制了Spinosad的生产应用。由于其生产价格的昂贵,目前在西方国 家只使用在蔬菜和水果的种植上。因此,缩短S.Spinosa生长周期,提高Spinosad的生 产量是一个很有前景的科研项目。
苏
云金芽孢杆菌是对鳞翅目(Lepidopteran)、
双翅目(dipteran)和鞘翅目 (coleopteran)等多种害虫具有毒杀作用的
微生物,Bt的
杀虫活性主要来自伴孢晶体, 杀虫晶体蛋白(insecticidal crystal proteins,ICPs)由cry基因和cyt基因编码。 该种晶体毒蛋白进入昆虫消化道后,经特定蛋白酶
水解,释放出毒性肽,并与昆虫消化 道缘膜囊泡上的受体高
亲和性结合,快速而不可逆地插入
细胞质膜,形成孔或病灶,引 起细胞膜非极性化,破坏细胞渗透平衡,从而导致细胞裂解。同时,Bt在昆虫的血腔中 迅速增殖引起昆虫的败血症。目前普遍认为,该种晶体毒蛋白先与昆虫中肠膜上的受体 结合,然后插入膜并形成孔,引起害虫死亡。
苏云金芽孢杆菌不杀死害虫天敌,以其高 效安全、对
目标害虫的特异性而倍受人们青睐,并已逐渐成为研究最深入、应用最广泛 的生物杀虫剂,但是Bt基因在应用中也存在一些问题,Bt晶体蛋白杀虫谱较窄,害虫易 对杀虫晶体蛋白产生耐受性,如蔬菜害虫
小菜蛾在苏云金杆菌选择压
力下抗性增强,因 此提高Bt杀虫
毒力已成为科学研究者研究的目标。通过多杀菌素基因与Cry基因重组构 建工程菌解决二者各自存在的问题是值得探索的课题。
图1:工程菌构建
流程图;
图2:Spinosad家簇基因示意图;
图3:cry1Ac基因示意图;
图4:Spinosad全基因80kb的BAC文库其修饰;
图5:pTps-BAC-Spn-cry1Ac重组示意图;
图6:pTps-BAC-Spn-T修饰示意图;
图7:pTps-BAC-Spn-cry1Ac-T重组修饰示意图;
图8:pTps-BAC-Spn-cry1Ac-T通过F因子导入不同的异质宿主并整合到异质宿主的 染色体示意图;
图9:工程菌菌剂的发酵工艺流程图。
本研究从S.Spinosa分离Spinosad全基因,此基因大于80kb,用一般的分子生物学方 法很难达到对其全基因进行修饰及插入功能组件,本发明中,我们采用了Red/ET同源重 组技术[Improved RecT or RecET cloning and subcloning method,EP:01117529.6; Methods for heterologous expressio ofsecondary metabolites,:PCT/IB2005/003650; Recombination method,EP:0103276.2],Red/ET同源重组技术是分子生物学领域一个 较大突破,是一种全新的核苷酸大分子操纵技术。应用这项技术,无论DNA
片段有多大, 结构如何,都可以克隆和精确修饰。在目标DNA分子中,对于任何
选定位置,都可以进行 位点突变、片段插入或缺失的操作,无需受到限制性酶切位点的限制。在进行DNA克隆时, Red/ET重组技术优于任何传统DNA扩增技术。本发明将Spinosad全基因簇克隆进BAC文库, 通过Red/ET同源重组技术对全基因进行修饰及插入功能性组件,同时将Spinosad全基因 与Bt菌株cry1Ac基因重组,分别以发光杆菌(P.luminescens)和苏云金芽孢杆菌 (Bacillus thuringiensis)菌株为异质宿主进行表达,构建出新型高效、安全的杀虫 工程菌。
在异质表达体系建立之后,拟通过重组合化合物物库(Recombinatorial compound library)的建立,应用高通量筛选系统(High Thruoghput Screen)进行微型化活体试 验,可同时或短时间内完成大量化合物的筛选,从而节省3~5倍的工程量,因而大大提 高了筛选效率,获得新的更有效的杀虫
生物农药。
通过建立Spinosad与Bt菌株cry1Ac基因重组的异质表达体系,提高Spinosad的 生产水平、降低成本,同时高水平表达Cry 1 Ac晶体杀虫蛋白,使生物农药能大面积 使用造福于人类.同时研制新型的具有更理想的抗虫谱、抗虫活性高的Spinosad衍生物。 在国际上率先应用基因工程技术致力于实现Spinosad在工程菌中的高效表达,实现廉价 生产。
工程菌生物杀虫剂的制备,包括多杀菌素异质表达工程菌的构建与多杀菌素异质表 达工程菌剂的发酵生产两部分:
1、Spinosad与cry1Ac重组异质表达工程菌的构建(图1):
(1).spinosad基因簇的分离和BAC载体的修饰
将从S.spinosa(菌种保藏号:CCTCCNO:M206084)中提取的染色体DNA,用Sau3A I 消化后进行脉冲
电泳,回收100kb左右片段。用BamHI(Sau3A I的同尾酶)酶切BAC,去 磷
酸化后与回收的DNA片段连接,1500V 25μF 200Ω电转化E.coliYZ2005(Introducing Recombination:DNA Engineering for the 21st Century Gene Cloning & Expression Technologies),经设计两对引物
F1:CCGTCGAGCCTACCGCTGATTCATA R1--:GCGGCATCTCGGAGGATTTCAGCAAC
F2:CAGGCGGCGGACACCGCGCTC R2--:TCAGCGTTGCCGAGCGGTGCGCTG
PCR扩增Spinosad基因簇两端的基因,挑选出含Spinosad基因簇(基因序列号: AY007564)(图2)的阳性转化子,获得重组质粒PBeloBAC11-Spn。PCR扩增位于S.spinosa 染色体不同位置鼠李糖基因gtt[gi:15077644]、epi[gi:15077642]、gdh[gi:15077646] 和kre[gi:15077646],并将鼠李糖(gtt、gdh、epi和kre)基因通过Red/ET同源重组加 入到Spinosad基因簇中,其PCR的引物分别是:
Fepi:TGCCTCAGCCGGAGCCTTCGCAACTTCCTGGAGGGAAACGCCACGGGATCAACAACAACTTCACCAG
Repi:CCACGAGCGCACGCCGCAAGTACTCCCGGAGCTTCTCTTCATTCGACATTGGAGGTGGATGTGAAATCCCTCGGGC
GC
Fgtt:CCAACCGCCGCCAGGGCCAGCGCCCGAGGGATTTCACATCCACCTCCAAAGGCCACCGGCAAGGTCGTGC
AGGG
Rgtt:CCACGAGCGCACGCCGCAAGTACTCCCGGAGCTTCTCTTCATTCGACATGCACCCGCCGATGGCCGACCGC
Fgdh/kre:GGCCGGCCATGCCCTCCAGGCGGCGAATGCGGTCGGCCATCGGCGGGTGCGGATCCTGCTTCGTAGCTCGGTGTG
Rgdh/kre:CACGAGCGCACGCCGCAAGTACTCCCGGAGCTTCTCTTCATTCGACATGGATCCGCTTCCCCCACGGCGACCCG
这四个基因在Spinosad合成中起修饰的作用,获得重组质粒pTps-BAC-Spn。(图4)
(2).与cry1Ac基因的重组
提取Bt4.0718菌株的总DNA,方法参考文献[Diversity of locations for Bacillus thuringiensis crystal protein genes.J Bacteriol.1983 Apr;154(1):419-28.], 以Bt4.0718菌株的总DNA为模板,采用PCR技术从Bt4.0718菌株中分离得到4.2kb的 cry1Ac全基因(图3),含有启动子(promoter)、阅读框(CDS)和终止子(terminator) 设计引物:
F1AC:CCAGATCCCGGGTACCGAGCTCGAATTCGCCCTATAGTGAGTCGTATTAATGGATAACAATCCGAACATCAATG
R1AC:CGCCAGGGTTTTCCCAGTCACGACGTTGTAAAACGACGGCCAGTGAATTGAGATTCCTCCATAAGGAGTAATTC
并利用Red/ET同源重组技术将之与含有Spinosad全基因BAC文库进行重组,使 cry1Ac全基因插入Spinosad全基因簇之后,构建pTps-BAC-Spn-cry1Ac重组载体(图5)。 通过上面的引物PCR鉴定阳性转化子。
(3).重组表达质粒pTps-BAC-Spn和pTps-BAC-Spn-cry1Ac在异质宿主菌中的表达及 重组合化合物库的建立
以本项目组选育的发光杆菌(菌种保藏号:CCTCC NO:M206085)、苏云金杆菌 Bt4.0718(菌种保藏号:CCTCC NO:M200016)及Bt无晶体突变株(苏云金芽孢杆菌伴 孢晶体20KbDNA中cry1Ac基因的克隆、高效表达和生物活性研究
生物工程学报Vol 30 No.5 September 2004 656-661)为异质宿主,通过转染及Red/ET技术将融合基因整合 于宿主菌染色体上,这个操作有下面三个实验步骤组成:首先:对重组表达质粒进行进 一步修饰,插入oriT,Tn5,IR,Tpase转染、转座抗性装置相关基因和抗性基因tetR、Km, (图6和图7)其方法参照上面鼠李糖(gtt、gdh、epi和kre)基因的插入,利用 Red/ET同源重组技术插入其载体中。其次,由于修饰后的pTps-BAC-Spn-cry1Ac-T重组 载体有90多Kb,一般的电转是无法将这么大的质粒转入外源异质体中,我们将重组质粒 pTps-BAC-Spn-cry1Ac-T整合到F因子上,通过F因子的介导重组质粒 pTps-BAC-Spn-cry1Ac-T导向外源异质体中。最后一步是通过在重组质粒 pTps-BAC-Spn-cry1Ac-T的Tn5转座子把重组基因整合到外源异质体中(图8).按照同 样的方式修饰重组质粒pTps-BAC-Spn构成重组表达质粒pTps-BAC-Spn-T,重组表达质粒 pTps-BAC-Spn-T在苏云金杆菌Bt4.0718中直接表达,因为在苏云金杆菌Bt4.0718的染 色体中含有Cry 1 Ac基因,通过本技术采用相似的反应条件,一次性同步合成成千上万 (甚至上百万、亿)种结构不同的分子,构建重组合化合物物库(Recombinatorial compound library),通过化合物库来进行高效率的筛选。重组合化合物物库中每个化合 物的花费则为传统的1/600。组合化学是基于药物开发研究而发展起来的一种新的合成技 术,它加快了新药先导化合物的出现和优化速度。
(4).高效杀虫工程菌的筛选
将重组质粒转入异源表达宿主菌后,主要应用高通量定向筛选生物毒力高的转化子, 从同一个平板上挑选3-5个转化子接种到同一个摇瓶中培养(S.Spinosa 30℃ P.Iuminescens 37℃ Bacillus thuringiensis 30℃),同时接种多个这样的摇瓶。用 摇瓶培养的培养液进行生物毒力测定,从中筛选生物毒力高的培养液。这样比单独的单 个转化子进行生物毒力测定筛选的效率要高上3-5倍。
2、Spinosad与cry1Ac重组异质表达工程菌剂的发酵生产(图9):
通过优化发酵培养基配方、筛选最佳发酵条件生产工程菌菌剂
(1)、工程菌菌剂发酵生产工艺条件概述:
①.菌种活化
将保藏的高效广谱杀虫工程菌划线接种于固体
种子培养基斜面上,接种前将装有培 养基的扁瓶在121℃条件下灭菌30分钟,接种后在28~35℃条件下培养30~48h,配成 孢子液,以5%的接种量用于种子罐接种。
②.灭菌及培养条件
上述灭菌采用高压
蒸汽灭菌,即在121℃,压力0.3-0.5kg/cm2条件下灭菌30min
③.种子罐发酵
先将一级种子罐灭菌,装入培养基后再灭菌,冷却至30℃,将孢子液接入培养液中, 通入无菌空气培养,可得一级种子罐发酵菌液;将二级种子罐在121℃下灭菌30min,装 入培养基后再灭菌,冷却至30℃,将一级种子罐发酵液按5%~8%接种量接入二级种子罐, 通入无菌空气和搅拌进行培养,可得二级种子罐发酵菌液。
④.生产
发酵罐培养先将发酵罐灭菌,装入培养基后再灭菌,保压降温至25℃~30℃,按5%~8%的 接种量将二级种子罐发酵液接入发酵罐中培养,通过无菌空气。
⑤.浓缩
发酵罐中发酵结束后,将菌液通过
超滤进行浓缩、补加增效添加剂、随后
装瓶。各 种工程菌在总的发酵
基础条件,还有各自在培养基及工艺条件上的差异:
(2)、工程菌发酵工艺条件
①.S.Spinosa的发酵生产工艺条件
S.Spinosa培养基:
MM培养基:KNO30.1%NaCl 0.05%K2HPO3·3H2O 0.05%
FeSO40.001%MgSO4·7H2O 0.05%
葡萄糖2%琼脂1.2%~2%pH 6.8
10L发酵罐培养基:把MM培养基中的琼脂和NaCl去掉,加
酵母膏,蛋白胨各0.4%pH 6.5~7.0 S.Spinosa的培养
温度为24~33℃,而合成Spinosad的最适宜的温度28~31。 发酵时用通气量和搅拌速率来维持溶氧在65%以上。罐压为0.034Mpa
②.P.luminescens工艺发酵条件:
P.luminescens培养基:
可溶性
淀粉1%酵母膏1%蛋白胨1%NaCl 0.5%K2HPO40.05%pH7.0固体培养 基在原有的培养基的基础上加琼脂1.2%~2%摇瓶培养的温度在37℃。发酵罐的温度在 33-37℃,通气量0.8~2.5Vols/vol/min,氧气含量40~50%。
③.Bacillus thuringiensis工艺发酵条件
Bacillus thuringiensis培养基:
牛肉膏0.3~0.8%,蛋白胨0.7~1.2%,葡萄糖0.1~ 0.6%,NaCl 0.1~0.6%,MgSO4·7H2O 0.01~0.06%,K2HPO40.01%~0.06%,MnSO40.02%~ 0.08%,pH6.8~7.2。固体培养基在原有的培养基的基础上加琼脂1.2%~2%。通气量1~ 2Vols/vol/min,氧气含量30~40%。
通过实验证明:
单独的Spinosad在S.Spinosa发酵生产所需要的时间与Spinosad与cry1Ac重组异质表达 所需要的时间结果见表1:
表一、工程菌剂的发酵生产需要的时间比较:
从表1可以看出,工程菌剂发酵生产时间缩短了3/4。
杀虫功能验证
1.验证表达的正确性
通过HPLC纯化鉴定Spinosad。
2.ELISA检测毒素基因的表达产物
将已纯化的目标Cry 1 Ac晶体蛋白免疫兔子,获得
抗体后与辣根过氧化物酶连接, 形成酶联抗体;将培养的细菌用
超声波处理后,将总蛋白电泳后转膜、用抗体杂交,洗 脱、显色,确定是否有毒素表达。
3.室内杀虫试验确定工程菌株的杀虫效价。
表二不同杀虫剂的生物活性测定
从表二中我们可以看出,工程菌的生物毒力要比任何一个单价的毒素蛋白表达强。 工程菌含(spinosad+cry1Ac)比单独的spinosad要强上60%,而比单独的Bt(cry1Ac) 强近一倍。
本发明采用了一种全新的核酸大分子操作技术--Red/ET同源重组技术,对80kb的 Spinosad全基因家簇进行操作修饰。实现了基因重组,重组的工程菌剂与现有的生物农 药相比具有以下优点:
(1).杀虫效果好:Spinosad为低毒、高效、低残留的生物杀虫剂,Bt晶体蛋白也是苏 云金芽孢杆菌中杀虫效果具有突出效果的一种杀虫剂,本发明把两者结合起来,扬长避 短,充分发挥两种杀虫剂的优点,既能充分发挥Spinosad速杀效果,也能表现了Bt晶体 蛋白的高产高效、安全等优点。
(2).杀虫谱广:工程菌带有两种不同的高效
杀虫毒素,Spinosad被认为是烟酸乙酰 胆碱受体的作用体,可使害虫迅速麻痹、瘫痪,最后导致死亡,其杀虫速度可与化学农 药相媲美。而Bt晶体蛋白与昆虫中肠膜上的受体结合,然后插入膜并形成孔,引起害虫 死亡。不同杀虫作用的两种杀虫剂重组在一起,使其可识别的范围增大,同时能对鳞翅 目、双翅目、鞘翅目等多类害虫有效,因此在使用上防治面很广,成本相对较低。
(3).经济效益高:Spinosad与Cry 1 Ac重组异质表达所需要的时间比原来单独的 Spinosad在S.Spinosa所需要的时间要缩短了近300小时,工程菌发酵周期仅为原 S.Spinosa的1/4时间,大大的降低了生产成本,经济效益显著提高。
(4).安全性更高:Spinosad与目前常用杀虫剂无交互抗性,既有高效的杀虫性能,又 有对有益虫和哺乳动物安全的特性,最适合无公害农作物的生产应用。同样,苏云金芽 孢杆菌晶体蛋白以其高效安全、对目标害虫的特异性早已被证实。因此,在生态环境保 护、出口创汇及促进人类健康等方面有极大的优势。
<110>湖南师范大学
<120>
多杀菌素基因重组的工程菌菌剂<160>2
<210>1
<211>25
<212>DNA
<213>PCR检测Spinosad基因引物1F
<220>
<400>1
ccgtcgagcc taccgctgat tcata 25
<210>2
<211>26
<212>DNA
<213>PCR检测Spinosad基因引物1R
<220>
<400>1
gcggcatctc ggaggatttc agcaac 26
<160>2
<210>1
<211>21
<212>DNA
<213>PCR检测Spinosad基因引物2F
<220>
<440>1
caggcggcgg acaccgcgct c 21
<210>2
<211>24
<212>DNA
<213>PCR检测Spinosad基因引物2R
<220>
<400>1
tcagcgttgc cgagcggtgc gctg 24
<160>2
<210>1
<211>67
<212>DNA
<213>PCR扩增鼠李糖基因epi引物F
<220>
<440>1
tgcctcagcc ggagccttcg caacttcctg gagggaaacg ccacgggatc aacaacaact 60
tcaccag 67
<210>2
<211>78
<212>DNA
<213>PCR扩增鼠李糖基因epi引物R
<220>
<400>1
ccacgagcgc acgccgcaag tactcccgga gcttctcttc attcgacatt ggaggtggat 60
gtgaaatccc tcgggcgc 78
<160>2
<210>1
<211>74
<212>DNA
<213>PCR扩增鼠李糖基因gtt引物F
<220>
<440>1
ccaaccgccg ccagggccag cgcccgaggg atttcacatc cacctccaaa ggccaccggc 60
aaggtcgtgc aggg 74
<210>2
<211>71
<212>DNA
<213>PCR扩增鼠李糖基因gtt引物R
<220>
<400>1
ccacgagcgc acgccgcaag tactcccgga gcttctcttc attcgacatg cacccgccga 60
tggccgaccg c 71
<160>2
<210>1
<211>75
<212>DNA
<213>PCR扩增鼠李糖基因gdh/kre引物F
<220>
<440>1
ggccggccat gccctccagg cggcgaatgc ggtcggccat cggcgggtgc ggatcctgct 60
tcgtagctcg gtgtg 75
<210>2
<211>74
<212>DNA
<213>PCR扩增鼠李糖基因gdh/kre引物R
<220>
<400>1
cacgagcgca cgccgcaagt actcccggag cttctcttca ttcgacatgg atccgcttcc 60
cccacggcga cccg 74
<160>2
<210>1
<211>74
<212>DNA
<213>PCR扩增cry1Ac全基因引物F
<220>
<440>1
ccagatcccg ggtaccgagc tcgaattcgc cctatagtga gtcgtattaa tggataacaa 60
tccgaacatc aatg 74
<210>2
<211>74
<212>DNA
<213>PCR扩增cry1Ac全基因引物R
<220>
<400>1
cgccagggtt ttcccagtca cgacgttgta aaacgacggc cagtgaattg agattcctcc 60
ataaggagta attc 74