一种基于巨噬细胞的活细胞载药系统、其制备方法和应用
阅读：40发布：2020-05-12
专利汇可以提供一种基于巨噬细胞的活细胞载药系统、其制备方法和应用专利检索，专利查询，专利分析的服务。并且本 发明 公开了一种基于巨噬细胞的活细胞载药系统、其制备方法和应用。所述基于巨噬细胞的活细胞载药系统，包含巨噬细胞、锚定的 化疗药物 和锚定的促细胞裂解基团。其制备方法包括以下步骤：取小鼠骨髓细胞，体外进行培养，在培养基中加入重组小鼠巨噬细胞集落刺激因子和小鼠 乳腺癌 4T1细胞培养上清液或脂多糖LPS，继续培养，诱导巨噬细胞极化，得到调节性M1或M2型巨噬细胞；将巨噬细胞培养基中锚定的化疗药物和锚定的促细胞裂解基团，共同孵育，制得基于巨噬细胞的活细胞载药系统。上述制备的基于巨噬细胞的活细胞载药系统能够主动靶向至乳腺癌 肺 转移病灶部位，有效抑制乳腺癌的肺转移。，下面是一种基于巨噬细胞的活细胞载药系统、其制备方法和应用专利的具体信息内容。
1.一种基于巨噬细胞的活细胞载药系统，其特征在于：包含巨噬细胞、锚定的化疗药物和锚定的促细胞裂解基团，其中，所述锚定的化疗药物和所述锚定的促细胞裂解基团均包含磷脂部分，所述锚定的化疗药物的磷脂部分和所述锚定的促细胞裂解基团的磷脂部分分别锚定到巨噬细胞膜上。
2.根据权利要求1所述的基于巨噬细胞的活细胞载药系统，其特征在于：所述锚定的化疗药物选自含脂肪酸链的磷脂或其衍生物连接的化疗药物、胆固醇或其衍生物连接的化疗药物。
3.根据权利要求1所述的基于巨噬细胞的活细胞载药系统，其特征在于：所述巨噬细胞为M1型或M2型巨噬细胞，优选M1型或M2型小鼠骨髓来源巨噬细胞。
4.根据权利要求1所述的基于巨噬细胞的活细胞载药系统，其特征在于：所述的锚定的化疗药物选自二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺或其衍生物连接的化疗药物；
优选地，其中，被连接的化疗药物选自美登素及其衍生物、海兔毒素及其衍生物、倍癌霉素和卡奇霉素；被连接的化疗药物优选为美登素衍生物DM4；和/或
优选地，其中，所述的连接是在指含脂肪酸链的磷脂或其衍生物与化疗药物之间，或者在胆固醇或其衍生物与化疗药物之间通过选自如下的连接基团所连接：二硫键、腙键、酶可降解多肽、马来酰亚胺-巯基、硫醚；进一步优选地，连接基团为二硫键或酶可降解多肽；和/或
更优选地，其中，所述锚定的化疗药物为二硫键连接的二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化美登素-4或酶可降解多肽连接的二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化美登素-4。
5.根据权利要求4所述的基于巨噬细胞的活细胞载药系统，其特征在于：所述的酶可降解多肽选自组织蛋白酶B底物多肽GFLG、组织蛋白酶S底物多肽GGRK、基质金属蛋白酶GPLGLK、Legumain酶底物多肽AANK和AANCRGDR；
优选地，其中，所述锚定的化疗药物为二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇-AANK-美登素-4或二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇-AANCRGDR-美登素-4。
6.根据权利要求1所述的基于巨噬细胞的活细胞载药系统，其特征在于：所述锚定的促细胞裂解基团选自含脂肪酸链的磷脂或其衍生物连接的基团、胆固醇或及其衍生物连接的基团。
7.根据权利要求6所述的基于巨噬细胞的活细胞载药系统，其特征在于：所述锚定的促细胞裂解基团为二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺或其衍生物连接的基团；其中，被连接的基团选自蜂毒多肽前肽、溶血磷脂，优选为蜂毒多肽前肽，进一步优选为Legumain酶敏感的蜂毒多肽前肽、基质金属蛋白酶敏感的蜂毒多肽前肽、胶原酶敏感的蜂毒多肽前肽；
优选地，其中，所述连接是指在含脂肪酸链的磷脂或其衍生物与被连接基团之间，或者在胆固醇或及其衍生物与被连接基团之间通过选自如下的连接基团所连接：二硫键、腙键、酶可降解多肽、马来酰亚胺-巯基、硫醚；连接基团更优选为马来酰亚胺-巯基；
进一步优选地，其中，所述锚定的促细胞裂解基团为Legumain酶敏感的二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化蜂毒多肽前肽或基质金属蛋白酶敏感的二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化蜂毒多肽前肽。
8.权利要求1-7中任一项所述基于巨噬细胞的活细胞载药系统的制备方法，其包括如下步骤：培养巨噬细胞，待巨噬细胞成熟后，更换新鲜培养基，并向培养基中加入待锚定的化疗药物和待锚定的促细胞裂解基团，共同孵育，制得基于巨噬细胞的活细胞载药系统。
9.根据权利要求8所述的制备方法，其特征在于，包括以下步骤：
(1)合成待锚定的化疗药物和待锚定的促细胞裂解基团；
(2)从小鼠骨髓中提取骨髓细胞，进行培养，培养时在培养基中加入重组小鼠巨噬细胞集落刺激因子和脂多糖LPS，或者加入重组小鼠巨噬细胞集落刺激因子和小鼠乳腺癌4T1细胞培养上清液，培养5-8天，分别诱导巨噬细胞极化为M1或M2型巨噬细胞；
(3)巨噬细胞成熟后，更换新鲜培养基，并向培养基中加入待锚定的化疗药物和待锚定的促细胞裂解基团，共同孵育，制得基于巨噬细胞的活细胞载药系统；
优选地，步骤(2)所述培养基为含胎牛血清的RPMI 1640培养基；
优选地，步骤(2)所述重组小鼠巨噬细胞集落刺激因子为M-CSF；
优选地，步骤(2)中加入的小鼠乳腺癌4T1细胞培养上清液在培养基中体积占比为10-
50％；
优选地，步骤(2)中加入的脂多糖LPS在培养基中浓度为10-50ng/mL。
10.权利要求1-7中任一项所述基于巨噬细胞的活细胞载药系统在制备治疗乳腺癌转移的药物中的应用；优选地，所述的乳腺癌转移为乳腺癌的肺转移。
一种基于巨噬细胞的活细胞载药系统、其制备方法和应用
技术领域
[0001] 本发明属于制药领域，具体涉及一种基于巨噬细胞的活细胞载药系统、其制备方法和应用。
背景技术
[0002] 乳腺癌转移是导致乳腺癌患者死亡的主要原因。在乳腺癌发病早期可以采用手术切除的方法治疗，但手术切除，病灶难以彻底清除，并且预后效果差，容易复发和转移。化疗药物可以抑制乳腺癌细胞增殖和扩散，但由于化疗药物选择性差，通常具有严重的毒副作用，并且给予化学药物治疗后，容易导致乳腺癌肿瘤细胞产生耐药，从而导致临床治疗的失败。放射疗法可以杀死肿瘤细胞，但是瘤旁的正常细胞也会受到不同程度的破坏，并且还会产生骨髓抑制、消化道反应、免疫功能降低、器官粘膜损害等一系列的毒副反应。据统计，临床上乳腺癌转移的患者中约60-70％的患者发生了肺部转移。因此，抑制乳腺癌的肺转移是乳腺癌治疗过程中极富挑战性的问题。
[0003] 纳米给药系统能够通过EPR效应被动靶向肿瘤部位，在乳腺癌治疗中具有广阔的应用前景。但是由于肿瘤转移灶直径小、分散性高，简单的被动靶向难以保证良好的治疗效果，因此，开发高效的纳米载药系统仍是一个挑战性问题。
[0004] 骨髓生成的单核细胞进入血液循环系统，到达全身不同的组织中，分化成为不同功能的巨噬细胞。巨噬细胞在肿瘤微环境中表现为M2型巨噬细胞，在乳腺癌原位瘤的生长和转移过程中，肿瘤相关巨噬细胞发挥了重要的作用。肿瘤相关巨噬细胞不仅影响了肿瘤的产生，促进原位肿瘤的快速增殖，而且直接提高了肿瘤细胞的侵袭能力和转移能力，并协助血管生成，促进转移细胞在远端组织的种植，形成新的转移病灶，促进肿瘤的转移单核细胞来源于骨髓的造血干细胞，单核/巨噬细胞的肿瘤趋向性主要受CC趋化因子2(CCL2)调控。CCL2的表达与肿瘤的生长和转移、肿瘤相关巨噬细胞的浸润呈正相关。肿瘤及其基质分泌趋化因子CCL2，与表达其受体CCR2的单核/巨噬细胞作用，引起单核/巨噬细胞的趋化特性。
发明内容
[0005] 本发明的目的是提供一种基于巨噬细胞的活细胞载药系统及其制备方法，由该方法制得的重组装的基于巨噬细胞的活细胞载药系统，具有显著的legumain 酶响应性，主动靶向乳腺癌肺转移病灶部位，对乳腺癌肺转移的治疗具有很好的应用前景。
[0006] 本发明的另一个目的是提供一种上述基于巨噬细胞的活细胞载药系统的应用。
[0007] 根据一个方面，本发明提供了一种基于巨噬细胞的活细胞载药系统，其包含巨噬细胞、锚定的化疗药物和锚定的促细胞裂解基团，其中，所述锚定的化疗药物和所述锚定的促细胞裂解基团均包含磷脂部分，所述锚定的化疗药物的磷脂部分和所述锚定的促细胞裂解基团的磷脂部分分别锚定到巨噬细胞膜上。
[0009] 本发明的基于巨噬细胞的活细胞载药系统中，优选地，所述巨噬细胞为M1 型或M2型巨噬细胞，优选M1型或M2型小鼠骨髓来源巨噬细胞。
[0010] 本发明的基于巨噬细胞的活细胞载药系统中，进一步优选地，所述的锚定的化疗药物选自二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺(DMPE)或其衍生物连接的化疗药物；其中，被连接的化疗药物选自美登素及其衍生物、海兔毒素及其衍生物(如海兔毒素衍生物一甲基澳瑞他汀E等)、倍癌霉素和卡奇霉素等；更优选为美登素衍生物DM4。
[0011] 本发明的基于巨噬细胞的活细胞载药系统中，优选地，所述的连接是指在含脂肪酸链的磷脂或其衍生物与化疗药物之间，或者在胆固醇或其衍生物与化疗药物之间通过选自如下的连接基团所连接：二硫键、腙键、酶可降解多肽、马来酰亚胺-巯基、硫醚等；进一步优选地，连接基团为二硫键或酶可降解多肽。
[0012] 本发明的基于巨噬细胞的活细胞载药系统中，优选地，所述锚定的化疗药物可为二硫键连接的二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化美登素-4或酶可降解多肽连接的二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化美登素-4。
[0013] 本发明的基于巨噬细胞的活细胞载药系统中，优选地，所述的酶可降解多肽选自组织蛋白酶B底物多肽GFLG、组织蛋白酶S底物多肽GGRK、基质金属蛋白酶GPLGLK、Legumain酶底物多肽AANK和AANCRGDR。
[0014] 本发明的基于巨噬细胞的活细胞载药系统中，进一步优选地，所述锚定的化疗药物可为二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺(DMPE)-聚乙二醇-AANK-美登素-4或二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺(DMPE)-聚乙二醇-AANCRGDR-美登素-4。
[0015] 本发明的基于巨噬细胞的活细胞载药系统中，优选地，所述锚定的促细胞裂解基团选自含脂肪酸链的磷脂或其衍生物连接的基团、胆固醇或及其衍生物连接的基团；其中，被连接的基团选自蜂毒多肽前肽、溶血磷脂等。
[0016] 本发明的基于巨噬细胞的活细胞载药系统中，进一步优选地，所述锚定的促细胞裂解基团为二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺(DMPE)或其衍生物连接的基团；其中，被连接的基团选自蜂毒多肽前肽、溶血磷脂等，优选为蜂毒多肽前肽，进一步优选为Legumain酶敏感的蜂毒多肽前肽、基质金属蛋白酶敏感的蜂毒多肽前肽、胶原酶等酶敏感的蜂毒多肽前肽。
[0017] 本发明的基于巨噬细胞的活细胞载药系统中，优选地，所述连接是在指含脂肪酸链的磷脂或其衍生物与被连接基团之间，或者在胆固醇或及其衍生物与被连接基团之间通过选自如下的连接基团所连接：二硫键、腙键、酶可降解多肽、马来酰亚胺-巯基、硫醚等；连接基团优选为马来酰亚胺-巯基。
[0018] 本发明的基于巨噬细胞的活细胞载药系统中，进一步优选地，所述锚定的促细胞裂解基团可为Legumain酶敏感的二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化蜂毒多肽前肽或基质金属蛋白酶敏感的二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化蜂毒多肽前肽。
[0019] 根据另一个方面，本发明提供了所述基于巨噬细胞的活细胞载药系统的制备方法，其包括如下步骤：培养巨噬细胞，待巨噬细胞成熟后，更换新鲜培养基，并向培养基中加入待锚定的化疗药物和待锚定的促细胞裂解基团，共同孵育，制得基于巨噬细胞的活细胞载药系统。
[0020] 具体地，所述基于巨噬细胞的活细胞载药系统的制备方法包括以下步骤：
[0021] (1)合成待锚定的化疗药物和待锚定的促细胞裂解基团；
[0022] (2)从小鼠骨髓中提取骨髓细胞，进行培养，培养时在培养基中加入重组小鼠巨噬细胞集落刺激因子和脂多糖LPS，或者加入重组小鼠巨噬细胞集落刺激因子和小鼠乳腺癌4T1细胞培养上清液，培养5-8天，分别诱导巨噬细胞极化为 M1或M2型巨噬细胞；
[0023] (3)巨噬细胞成熟后，更换新鲜培养基，并向培养基中加入待锚定的化疗药物和待锚定的促细胞裂解基团，共同孵育，制得基于巨噬细胞的活细胞载药系统。
[0024] 本发明的制备方法中，优选地，步骤(2)所述小鼠乳腺癌4T1细胞培养上清液可以是通过本领域技术人员熟知的培养小鼠乳腺癌4T1细胞得到的上清液。更优选地，步骤(2)所述小鼠乳腺癌4T1细胞培养上清液可以是通过将小鼠乳腺癌4T1细胞接种于培养板中，加入含10％胎牛血清的RPMI1640培养基，在 5％CO2、37℃细胞培养箱培养24h后收集得到的上清液。例如，所述小鼠乳腺癌4T1细胞培养上清液可以是通过将小鼠乳腺癌4T1细胞5×7
10个接种于 10mm培养板中，加入10mL含10％胎牛血清的RPMI1640培养基，在5％CO2、 37℃细胞培养箱培养24h后收集得到的上清液。
10个接种于 10mm培养板中，加入10mL含10％胎牛血清的RPMI1640培养基，在5％CO2、 37℃细胞培养箱培养24h后收集得到的上清液。
[0025] 本发明的制备方法中，优选地，步骤(2)所述培养基可为含胎牛血清的RPMI 1640培养基，更优选含10％胎牛血清的RPMI1640培养基。
[0026] 本发明的制备方法中，优选地，步骤(2)所述重组小鼠巨噬细胞集落刺激因子可以是M-CSF，用量可以是20ng/mL。
[0027] 本发明的制备方法中，优选地，步骤(2)中加入的小鼠乳腺癌4T1细胞培养上清液在培养基中体积占比可为10-50％。
[0028] 本发明的制备方法中，进一步优选地，步骤(2)中加入的小鼠乳腺癌4T1 细胞培养上清液在培养基中体积占比可为20％。
[0029] 本发明的制备方法中，优选地，步骤(2)中加入的脂多糖LPS在培养基中浓度可为10-50ng/mL。
[0030] 本发明的制备方法中，进一步优选地，步骤(2)中加入的脂多糖LPS在培养基中浓度可为20ng/mL。
[0031] 本发明中，所述的“锚定到巨噬细胞膜上”是指通过物理作用将“锚定的化疗药物”或“锚定的促细胞裂解基团”的脂质端插入到细胞膜上，而不是通过化学连接到细胞膜上。因此，本发明中，术语“锚定的化疗药物”与术语“待锚定的化疗药物”相同，以及术语“锚定的促细胞裂解基团”与术语“待锚定的促细胞裂解基团”相同。
[0032] 根据另一个方面，本发明提供了一种上述基于巨噬细胞的活细胞载药系统的应用；具体包括所述基于巨噬细胞的活细胞载药系统在治疗乳腺癌转移中的应用；所述基于巨噬细胞的活细胞载药系统在制备治疗乳腺癌转移的药物中的应用。
[0033] 在其中一个实施例中，所述的乳腺癌转移为乳腺癌的肺转移。
[0034] 本发明采用乳腺癌细胞培养上清液体外诱导巨噬细胞，可以定向诱导分化为 M2型巨噬细胞，并保持巨噬细胞的稳定性。
[0035] 本发明采用脂多糖LPS体外诱导巨噬细胞，可以定向诱导分化为M1型巨噬细胞，并保持巨噬细胞的稳定性。
[0036] 本发明采用二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化的美登素-4和酶敏感的二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化的蜂毒多肽前肽，可以方便的锚定到巨噬细胞膜，并有效保持巨噬细胞的活性。
[0037] 本发明所制备的基于巨噬细胞的活细胞载药系统，主动靶向至乳腺癌肺转移病灶部位，并在转移灶部位活化，引发巨噬细胞的死亡以及抗肿瘤药物响应性快速释放。
[0039] 图1为巨噬细胞载药系统示意图。
[0040] 图2为二硫键连接的二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化美登素-4的合成路线示意图。其中：(A)3-(2-吡啶二巯基)丙酸N-羟基琥珀酰亚胺酯-美登素-4 的合成路线图；(B)二硫键连接的二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化美登素-4的合成路线图；(C)1
二硫键连接的二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化美登素-4的 H核磁谱图。
二硫键连接的二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化美登素-4的 H核磁谱图。
[0041] 图3为3-(2-吡啶二巯基)丙酸N-羟基琥珀酰亚胺酯-美登素-4的低分辨质谱图。
[0042] 图4为二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化蜂毒多肽前肽的合成路线图。其中：(A)二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化蜂毒多肽前肽的合成路线图；(B)二肉豆蔻1
酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化蜂毒多肽前肽的 H核磁谱图。
酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化蜂毒多肽前肽的 H核磁谱图。
[0043] 图5为二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇-AANK-美登素-4的合成路线图。其中：(A)AANK-DM4的合成路线图；(B)二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺 -聚乙二醇-AANK-美登素-4的合成路线图；
[0044] 图6为二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇-AANCRGDR-美登素-4的合成路线图。其中：(A)AANCRGDR-s-s-吡啶的合成路线；(B)AANCRGDR-DM4 的合成路线；(C)二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇-AANCRGDR-美登素 -4的合成路线。
[0045] 图7为M2型巨噬细胞表型的鉴定。
[0046] 图8为激光共聚焦显微镜观察基于M2型巨噬细胞的活细胞载药系统在乳腺癌肺转移部位分布。
[0047] 图9为基于M2型巨噬细胞的活细胞载药系统药效学研究。
[0048] 图10为M1型巨噬细胞表型的鉴定。
[0049] 图11为激光共聚焦显微镜观察基于M1型巨噬细胞的活细胞载药系统在乳腺癌肺转移部位分布。
具体实施方式
[0050] 下列实施例旨在进一步举例描述本发明，而不是以任何方式限制本发明。
[0051] 制备实施例1
[0052] 本实施例通过体外诱导重组装巨噬细胞得到基于M2型巨噬细胞的活细胞载药系统。具体地，基于M2型巨噬细胞的活细胞载药系统的制备方法包括以下步骤：
[0053] (1)二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化美登素-4和二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化蜂毒多肽前肽的合成
[0054] 1)二硫键连接的二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化美登素-4的合成[0055] 二硫键连接的二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化美登素-4分两步进行合成：①3-(2-吡啶二巯基)丙酸N-羟基琥珀酰亚胺酯-美登素-4的合成路线见图 2(A)。具体步骤如下：称取美登素-4(19.5mg，0.025mmol，购自苏州博瑞生物有限公司)溶解于1mL甲醇溶液中，称取3-(2-吡啶二巯基)丙酸N-羟基琥珀酰亚胺酯(SPDP，15.6mg，0.05mmol，购自Sigma公司)溶解于1mL无水甲醇中，将3-(2-吡啶二巯基)丙酸N-羟基琥珀酰亚胺酯溶液在搅拌状态下缓慢滴加至美登素-4溶液中，搅拌均匀，室温下反应过夜。将产物使用制备薄层板进一步提纯，展开剂为乙酸乙酯：二氯甲烷：甲醇(V:V:V＝9:2:1)，收集目标产物条带，用展开剂将产物冲洗在烧瓶中，旋蒸除去展开剂，真空干燥，得白色产物 3-(2-吡啶二巯基)丙酸N-羟基琥珀酰亚胺酯-美登素-4(DM4-SPDP)。
[0056] 称取少量DM4-SPDP，适量甲醇溶解后，通过低分辨质谱鉴定分子量，结果见图2(B)。
[0057] ②二硫键连接的二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇-美登素-4的合成路线见图2(C)。称取DM4-SPDP(19.6mg，0.02mmol)，二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇-氨基(DMPE-PEG-NH2，50mg，0.0088mmol，购自美国Nanocs 公司)，二者溶解于2mL无水甲醇中，加入适量三乙胺，搅拌状态下，室温反应过夜。将反应液使用3500Da的透析袋，二甲基亚砜溶液透析，透析结束后，更换为去离子水透析除去二甲基亚砜。透析后产物冻干，将冻干后样品-20℃冰箱保存，备用。
[0058] 称取5mg二硫键连接的二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇-美登素-4，溶解于500μL氘代二甲基亚砜，核磁共振谱仪鉴定其结构，结果见图2(C)。
[0059] 2)二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化蜂毒多肽前肽的合成
[0060] 二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化蜂毒多肽前肽的合成路线图见图4 (A)。具体步骤如下：称取二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇-马来酰亚胺 (DMPE-PEG-Mal，
50mg，0.0088mmol，购自美国Nanocs公司)，蜂毒多肽前肽(50mg，0.0135mmol，购自吉尔生化有限公司)，二者溶解于5mL无水甲醇中，加入三乙胺(10mg，0.1mmol，购自Sigma公司)，搅拌状态下，室温反应过夜。随后将反应液放入分子量为7000Da的透析袋透析24h，冷冻干燥，得白色固体即为二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化蜂毒多肽前肽，-20℃保存待用。
50mg，0.0088mmol，购自美国Nanocs公司)，蜂毒多肽前肽(50mg，0.0135mmol，购自吉尔生化有限公司)，二者溶解于5mL无水甲醇中，加入三乙胺(10mg，0.1mmol，购自Sigma公司)，搅拌状态下，室温反应过夜。随后将反应液放入分子量为7000Da的透析袋透析24h，冷冻干燥，得白色固体即为二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化蜂毒多肽前肽，-20℃保存待用。
[0061] 称取5mg二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化蜂毒多肽前肽，溶解于 500μL氘代氯仿，核磁共振谱仪鉴定其结构，结果见图4(B)。
[0062] (2)二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇-AANK-美登素-4的合成
[0063] 二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇-AANK-美登素-4的合成分两步进行合成，合成路线见图5。具体步骤如下：称取美登素-4(19.5mg，0.025mmol，购自苏州博瑞生物有限公司)溶解于1mL二甲基亚砜溶液中，称取多肽AANK (9.2mg，0.0167mmol，购自吉尔生化有限公司)溶解于1mL二甲基亚砜中，将AANK溶液在搅拌状态下缓慢滴加至美登素-4溶液中，搅拌均匀，滴加三乙胺(10mg，0.1mmol，购自Sigma公司)，室温下反应24h。将产物制备液相纯化分离，旋蒸除去有机溶剂，真空干燥，得白色产物AANK-DM4。
[0064] 称取AANK-DM4(26.6mg，0.02mmol)，二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺- 聚乙二醇-马来酰亚胺(DMPE-PEG-Mal，25mg，0.0044mmol，购自美国Nanocs 公司)，二者溶解于2mL二甲基亚砜中，加入三乙胺(10mg，0.1mmol，购自 Sigma公司)，搅拌状态下，室温反应过夜。将反应液使用3500Da的透析袋，二甲基亚砜溶液透析，透析结束后，更换为去离子水透析除去二甲基亚砜。透析后产物冻干，将冻干后样品-20℃冰箱保存，备用。
[0065] (3)二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇-AANCRGDR-美登素-4的合成[0066] 二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇-AANCRGDR-美登素-4的合成分三步进行合成，合成路线见图6。具体步骤如下：称取2,2'-二硫二吡啶(55mg， 0.025mmol，购自Sigma公司)溶解于1mL甲醇溶液中，称取多肽AANCRGDR (37.5mg，0.025mmol，购自吉尔生化有限公司)溶解于1mL甲醇中，将 AANCRGDR溶液在搅拌状态下缓慢滴加至美登素-4溶液中，搅拌均匀，室温下反应24h。将产物制备液相纯化分离，旋蒸除去有机溶剂，真空干燥，得白色产物AANCRGDR-s-s-吡啶。
[0067] 称取AANCRGDR-s-s-Pyridine吡啶(32.2mg，0.02mmol)，美登素-4(10.4mg， 0.0133mmol，购自苏州博瑞生物有限公司)，二者溶解于2mL甲醇中，搅拌状态下，室温反应
24h。将产物制备液相纯化分离，旋蒸除去有机溶剂，真空干燥，得白色产物AANCRGDR-DM4。
24h。将产物制备液相纯化分离，旋蒸除去有机溶剂，真空干燥，得白色产物AANCRGDR-DM4。
[0068] 称取AANCRGDR-DM4(20.0mg，0.0088mmol)，DMPE-PEG-NHS(12.5 mg，0.0022mmol，购自美国Nanocs公司)，二者溶解于2mL二甲基亚砜中，加入三乙胺(10mg，0.1mmol，购自Sigma公司)，搅拌状态下，室温反应24h。将反应液使用3500Da的透析袋，二甲基亚砜溶液透析，透析结束后，更换为去离子水透析除去二甲基亚砜。透析后产物冻干，将冻干后样品-20℃冰箱保存，备用。
[0069] (4)小鼠骨髓来源巨噬细胞的分离与纯化
[0070] 1)取小鼠骨髓细胞(Balb/c-nu裸鼠(购自中国科学院上海实验动物中心))，用含10％胎牛血清(Gibco)的RPMI 1640(Gibco)培养基培养。同时加入重组小鼠巨噬细胞集落刺激因子(M-CSF，购自Sigma公司，终浓度为20ng/mL) 和4T1细胞培养上清液(小鼠乳腺癌
4T1细胞培养24h后培养上清液，该上清液加入的体积占比为20％)于培养基中，置于低粘附板(购自Corning公司)， 37℃、5％CO2培养5天，得贴壁细胞。
4T1细胞培养24h后培养上清液，该上清液加入的体积占比为20％)于培养基中，置于低粘附板(购自Corning公司)， 37℃、5％CO2培养5天，得贴壁细胞。
[0071] 2)更换M2型巨噬细胞培养基，并在培养基中加入二硫键连接的二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺(DMPE)-聚乙二醇化美登素-4(在培养基中终浓度1mg/mL) 和二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化蜂毒多肽前肽(在培养基中终浓度0.4 mg/mL)，37℃孵育2h，得到基于M2型巨噬细胞的活细胞载药系统。
[0072] (5)M2巨噬细胞表型鉴定
[0073] 将步骤(4)得到的基于M2型巨噬细胞的活细胞载药系统用荧光标记的抗体标记，荧光标记的抗体分别为PE anti-mouse/human CD11b(PE抗小鼠/人 CD11b)、FITC anti-mouseF4/80(FITC抗小鼠F4/80)、PE anti-mouse/human CD206(PE抗小鼠/人CD206)(上述荧光标记的抗体均购自Biolegend公司， USA)，同时取步骤(4)得到的基于M2型巨噬细胞的活细胞载药系统，不加上述抗体孵育，作为对照组。样本采用FACS Calibur流式细胞仪(购自BD Biosciences公司，USA)进行分析，结果见图7。
[0074] 以下试验实施例1-2中所用基于M2型巨噬细胞的活细胞载药系统为本制备实施例1所制备得到。
[0075] 试验实施例1
[0076] 将生长状态良好的GFP-4T1细胞(购自美国PerkinElmer公司)培养到对数生长期，用胰酶消化完全，使用细胞计数器计数。用PBS缓冲液洗涤细胞2次，用PBS缓冲液重悬细胞，并调节细胞数量，制备成细胞密度为2×106个/mL 的细胞悬液。取4-6周龄的Balb/c-nu裸鼠(18-20g，购自中国科学院上海实验动物中心)，通过尾静脉接种4T1细胞，接种量为2×105个细胞/只。接种 GFP-4T1细胞的裸鼠(即荷GFP-4T1肺转移肿瘤模型鼠)继续培养10天后备用。
[0077] 取M2型巨噬细胞的活细胞载药系统，向培养基中加入近红外染料DiR(购自大连美仑生物科技有限公司)，使DiR在培养基中终浓度为100μg/mL，在 37℃，5％CO2培养箱中培养2h。标记结束后，使用PBS缓冲液洗去游离DiR 染料，即得红外染料DiR标记的基于M2型巨噬细胞的活细胞载药系。
[0078] 取接种好的荷GFP-4T1肺转移肿瘤模型鼠，尾静脉注射近红外染料DiR标记的基于M2型巨噬细胞的活细胞载药系统，6h后，CO2窒息处死小鼠，解剖将肺冰冻切片后，DAPI标记细胞核，置于激光共聚焦扫描显微镜下观察、拍照，结果见图8(从左至右依次为DAPI标记的细胞核、GFP-4T1细胞、M2型巨噬细胞载药系统及左1至左3的叠加图)。
[0079] 试验实施例2
[0080] 将生长状态良好的4T1细胞(购自中国科学院上海细胞库)培养到对数生长期，用胰酶消化完全，使用细胞计数器计数。用PBS缓冲液洗涤细胞2次，用PBS缓冲液重悬细胞，并调节细胞数量，制备成细胞密度为2×106个/mL 的细胞悬液。取4-6周龄的Balb/c-nu裸鼠(18-20g)，通过尾静脉接种4T1细胞，接种量为2×105个细胞/只。
[0081] 将接种好肿瘤的尾静脉肺转移鼠随机分成7组，每组6只，分别为生理盐水组、巨噬细胞组、蜂毒多肽前肽组、DM4组、单载DM4巨噬细胞组、单载蜂毒多肽前肽巨噬细胞组和M2型巨噬细胞载药系统组。分别在种瘤后12h与种瘤后8d，通过尾静脉注射给药；具体地，巨噬细胞组给药巨噬细胞10μg/只，蜂毒多肽前肽组给药蜂毒多肽前肽给15.5μg/只，DM4组给药DM410μg/只，单载DM4巨噬细胞组给药单载DM4的巨噬细胞(通过高效液相法确定5×106个巨噬细胞中DM4载药量为10μg)，单载蜂毒多肽前肽巨噬细胞组给药单载蜂毒多肽前肽巨噬细胞15.5μg/只，M2型巨噬细胞载药系统组给药基于M2型巨噬细胞的活细胞载药系统10μg/只，生理盐水组给药生理盐水0.2mL/只。
[0082] 接种4T1细胞14天后，CO2窒息处死各组小鼠，取出肺组织，在PBS缓冲液中洗去游离血迹，统计各给药组中肉眼可见肺转移灶数量，结果见图9。
[0083] 制备实施例2
[0084] 本实施例通过体外诱导巨噬细胞得到基于M1型巨噬细胞的活细胞载药系统。具体地，基于M1型巨噬细胞的活细胞载药系统的制备方法包括以下步骤： (1)小鼠骨髓来源巨噬细胞的分离与纯化
[0085] 1)取小鼠骨髓细胞(Balb/c-nu裸鼠(购自中国科学院上海实验动物中心))，用含10％胎牛血清(Gibco)的RPMI 1640(Gibco)培养基培养。加入重组小鼠巨噬细胞集落刺激因子(M-CSF，购自Sigma公司，终浓度为20ng/mL)和LPS (20ng/mL)于培养基中，置于低粘附板(购自Corning公司)，37℃、5％CO2培养5天，得贴壁细胞。
[0086] 2)更换M1型巨噬细胞培养基，并在培养基中加入二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺(DMPE)-聚乙二醇化美登素-4(在培养基中终浓度1mg/mL)和二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇化蜂毒多肽前肽(在培养基中终浓度0.4mg/mL)， 37℃孵育2h，得到基于M1型巨噬细胞的活细胞载药系统。
[0087] (2)M1型巨噬细胞表型鉴定
[0088] 将步骤(1)得到的基于M1型巨噬细胞的活细胞载药系统用荧光标记的抗体标记PE anti-mouse/human CD11b(PE抗小鼠/人CD11b)、FITC anti-mouseF4/80(FITC抗小鼠F4/80)、PE anti-mouse/human CD86(PE抗小鼠 /人CD206)(上述荧光标记的抗体均购自Biolegend公司，USA)，同时取步骤(1)得到的基于M1型巨噬细胞的活细胞载药系统，不加上述抗体孵育，作为对照组。样本采用FACS Calibur流式细胞仪(购自BD Biosciences公司，USA) 进行分析，结果见图10。
[0089] 以下试验实施例3中所用基于M1型巨噬细胞的活细胞载药系统为本制备实施例2所制备得到。
[0090] 试验实施例3
[0091] 按照试验实施例1的方法建造荷GFP-4T1肺转移肿瘤模型鼠。
[0092] 取基于M1型巨噬细胞的活细胞载药系统，向培养基中加入近红外染料DiR (购自大连美仑生物科技有限公司)，使DiR在培养基中终浓度为100μg/mL，在37℃，5％CO2培养箱中培养2h。标记结束后，使用PBS缓冲液洗去游离DiR 染料，即得红外染料DiR标记的基于M1型巨噬细胞的活细胞载药系。
[0093] 取接种好的荷GFP-4T1肺转移肿瘤模型鼠，尾静脉注射近红外染料DiR标记的M1型巨噬细胞，6h后，CO2窒息处死小鼠，解剖将肺冰冻切片后，DAPI 标记细胞核，置于激光共聚焦扫描显微镜下观察、拍照，结果见图11(从左至右依次为DAPI标记的细胞核、GFP-4T1细胞、M1型巨噬细胞载药系统及左1 至左3的叠加图)。
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