How antibody production

本発明は、抗体すなわち免疫グロブリンの持続的産生の誘導方法に関する。 より詳細には、本発明は、哺乳動物の乳汁中において抗体の持続的な産生を誘導する方法に関する。

血液という従来の抗体源と比べて、乳汁中において抗体を産生することの有利な点は、乳汁は日常で入手可能であり、安定して供給される点にある。 抗体産生動物は、血液を採取した後、長期間（例えば、１ヶ月程の期間）かけて回復させる。 したがって、得られる血液量は限られるため、抗体の収量は限られてしまう（１ヶ月で約３〜３０ｍｇ）。 しかし、例えば、乳畜から乳汁を毎日採取すると、収量は大幅に増加する（例えば、日に２ｍｇを３０日で乗すれば、月に１５０ｍｇとなる）。

哺乳動物の乳頭に直接注射すなわち注入して、乳汁中の抗体の産生を促進する方法が以前から使用されており、そのような例は、非特許文献１〜３に記載されている。 このような注射は、抗体産生を再促進させるため繰り返さなければならず時間がかかる上、哺乳動物の乳頭に直接注射することによって、乳腺炎等の感染が頻繁に起こってしまう。

乳房内免疫技術は乳房感染の可能性が高いため、屋外での予防接種経路としては一般的に好ましくなく（非特許文献４）、また、高度に熟練した技術者が必要となる場合が多い。

乳腺分泌物における免疫グロブリン産生に関する公開文献の多くは、動物、又はその子孫の病気予防（すなわち、予防接種）を対象としている点に注目すべきである。 免疫グロブリン自体の入手を目的とする、免疫グロブリンが豊富な乳汁の産生を対象とした文献はほとんどない。

JL Smith, JS Hogan & KL Smith （1999） " Efficac of intramammary immunization with an Escherichia coli JS bacteria. " Journal of Dairy Science, 82:2582-2588 JS Hogan, KL Smith, P. Schoenberger, S. Romig & L Thompson （1997） " Response of antibody titres to intramammary immunization with Escherichia coli JS bacteria. " Journal of Dairy Science, 80:2398-2402 FJ Bourne, TJ Newby & JW Chidlow （1975） " The influence of route of vaccination on the systemic and local immune response in the pig. " Research in Veterinary Science, 18:244-248 RF Sheldrake （1987） Australian Journal of Dairy Technology, 42:30-32 FJ Bourne et al （1975） Research in Veterinary Science 18:244-248 Hanly et al; Review of Polyclonal Antibody Production Procedures, ILAR Journal （1995）, 37:3, 93-118 Langer et al., J. Biomed. Mater. Res. 15:167-277 （1981） Langer, Chem. Tech. 12:98-105 （1982） Sidman et al., Biopolymers 22:547-556 [1983] B. Baras, MA Benoit & J. Gillard （2000） " Parameters infl uencing the antigen release from spray dried poly（DL-lactide）microparticles. " International Journal of Pharmaceutics, 200:133-145 Epstein et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82:3688-3692 （1985） Hwang et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 77:4030-4034 （1980） Hood et al., in Immunology, p.384, Second Ed., Benjamin/Cummings, Menlo Park， California （1984） Nielson, K. （1986） Can. J. Vet. Res 50:227-231 Kanamara et al （1993） Milchwissenschaft 48:247-251 Kanamaru et al （1982） Agric. Biol. Chem 46:1531-1537

米国特許３,２７９,９９６号明細書

豪州特許７４０１３３号明細書

独国特許ＤＥ６９９１７６２５Ｄ号明細書

米国特許６,７１６,２０８号明細書

米国特許３，７７３，９１９号明細書

欧州特許５８，４８１号明細書

欧州特許１３３，９８８号明細書

独国特許３，２１８，１２１号明細書

欧州特許５２，３２２号明細書

欧州特許３６，６７６号明細書

欧州特許８８，０４６号明細書

欧州特許１４３，９４９号明細書

欧州特許１４２，６４１号明細書

特開昭６０−７９３４号公報

米国特許４，４８５，０４５号明細書

米国特許４，５４４，５４５号明細書

欧州特許１０２，３２４号明細書

米国特許４，３４２，５６６号明細書

欧州特許０３２０１５２号明細書

国際公開第９７／２７７５７号パンフレット

英国特許２ １７９９４７号明細書

米国特許４，２２９，３４２号明細書

仏国特許２５２０２３５号明細書

ニュージーランド特許２３９４６６号明細書

米国特許４，５８２，５８０号明細書

米国特許４，６４４，０５６号明細書

スイス特許１，５７３，９９５号明細書

本発明の第一の態様は、少なくとも一つの乳腺上リンパ節に隣接して、又は前記リンパ節内に、少なくとも一つの抗原放出装置を埋め込む工程を含む乳汁に抗体の持続的な放出を誘導する方法であって、前記抗原放出装置は、使用中に前記乳腺上リンパ節周辺の組織領域に抗原を放出し、乳腺へ抗体分泌を刺激することを特徴とする方法を提供することである。

本発明の第二の態様は、本発明のいずれかの方法によって産生される抗体を提供することである。

本発明の第三の態様は、抗体含有乳汁の生成方法に関する。 該方法は、上に詳述した方法による抗体の誘導工程、及び前記哺乳動物から乳汁に含まれる抗体を回収する工程を含む。 乳汁の回収工程は、通常の搾乳工程により達成可能である。

本発明の他の目的、特徴、及び利点は、上記から詳細に理解されるように、また、以下に述べる好適な実施形態にから理解されるものである。

概要
当業者ならば、本明細書に記載の発明に対して、本明細書で具体的に記載のもの以外の改変及び修正が加えられ得ることを理解するであろう。 本発明は、そのような改変及び修正を全て包含するものであることを理解されたい。 また、本発明は、本明細書に言及又は示したあらゆる工程、特徴、組成物、及び化合物を単独で或いはまとめて含み、前記工程又は前記特徴は、任意及び全ての組合せ、又は任意の二つ以上の全てを含む。

本明細書に引用した資料、参考文献、特許出願、又は特許それぞれは、本願に参照して明確に援用する。 これは、本明細書の一部として読者が読み、熟考すべきであることを意味する。 引用した前記資料、参考文献、特許出願、又は特許が本明細書で繰り返されてないのは、簡潔にするためである。

本発明は、本明細書に記載の特定の実施形態に限定されず、例示を目的としたものである。 本明細書に記載のように、機能的に均等な生成物、組成物、及び方法は、本発明の範囲に明確に含まれる。

本明細書を通して、文脈からそうでない限り、「含有する(comprise)」、又は「含む(comprises)」若しくは「含んでいる(comprising)」等のその変形語は、規定した整数又は整数群を含み、その他全ての整数又は整数群は除外しないものと理解される。

本明細書を通じて、ＣＲＤ及びＡＲＤの頭字語は、どちらも同じ意味で用いられる。 両方とも、本明細書で記述、開示、及びクレームされている抗原放出装置を意味する。

本発明に記載の用語に対して、他の定義が本明細書を通して適用されている場合があり得るが、他に定義されない限り、本明細書で使用される他の全ての科学用語及び技術用語は、本発明が属する技術分野の当業者が通常理解する意味と同じ意味である。

本発明の詳細開示
本発明は、乳腺上リンパ節に隣接若しくは十分近接させた位置、又は該乳腺上リンパ節内部に埋め込んだ抗原放出装置から放出させた抗原により、長期間に渡り前記乳腺上リンパ節を刺激することで、乳汁内で抗体を持続的に放出させることが可能であるという予想外の発見に基づく。 乳腺上リンパ節を刺激することの利点は、該リンパ節が乳腺に近いことである。 乳腺上リンパ節から産生された抗体は、乳腺に分泌されるため、哺乳動物の乳汁に含有される。 本方法は、前記抗原放出装置から抗原を除放することで、長期間に渡って抗体産生の促進を維持する。 本方法は、ＩｇＡ、ＩｇＧ、及びＩｇＭ等、免疫グロブリンの種々のサブクラスすなわちアイソタイプの産生を促進する。

本発明の第一の態様では、少なくとも一つの乳腺上リンパ節に隣接若しくは十分近接させた位置、又は前記リンパ節内に、少なくとも一つの抗原放出装置を埋め込む工程を含む乳汁に抗体の持続的な放出を誘導する方法であって、前記抗原放出装置が、使用中に前記乳腺上リンパ節周辺の組織領域に抗原を放出し、乳腺への抗体分泌を刺激する方法を提供する。

本発明によれば、抗原放出装置からの抗原放出により（当該抗原放出装置を埋め込んだ）哺乳動物の抗体反応が、治療上又は抗細菌性上適した量の抗体の産生を乳汁内で促進するレベルで維持されるように、乳腺上リンパ節から該インプラントの距離は十分近くなければならない。 例えば、ＡＲＤは、乳房に埋め込んでもよい。 あるいは、実例として、少なくとも一つの乳腺上リンパ節から最大１００ｍｍ離間させて前記抗原放出装置を埋め込むのが好ましく、前記抗原放出装置は、使用中に前記乳腺上リンパ節周辺の組織領域に抗原を放出し、乳腺に抗体分泌を刺激する。 好ましくは、乳腺上リンパ節に隣接して、又は乳腺上リンパ節から１〜１００ｍｍ離間させて前記抗原放出装置を埋め込むのが好ましい。 該距離は、約５０〜１００ｍｍが最も好ましい。

本発明が、一体の動物の多くの分泌腺での抗体産生の促進に使用され得ることが理解されよう。 このことに関して、１つの分泌腺を免疫すると、他の乳腺による分泌物による抗体活性が得られることが示されている（例えば、非特許文献５参照）。

本発明の方法は、哺乳動物に対して行われる。 本方法を使用する哺乳動物は、げっ歯類、又は反すう動物であることが好ましい。 該哺乳動物は、ヤギ、ヒツジ、又は牛であることが最も好ましい。 該哺乳動物は、乳牛品種が望ましいが、乳用ヤギ品種、又は乳用ヒツジ品種を使用してもよい。

本明細書中で使用される「乳汁」とは、液状又は固形状の、哺乳動物により産生される態様の乳汁及び初乳、或いは、脱脂粉乳又は乳清等の全乳のあらゆる派生物のことを言う。

本明細書中で使用される「抗原」とは、処置した哺乳動物の抗原反応を促進可能なあらゆる物質を示す。 抗原は、抗体の効用に従って選択してよい。 すなわち、抗体を受動免疫を引き起こすために使用する場合、そのような免疫を行う抗原は、バクテリア、ウィルス、イースト菌、マイコプラズマ、タンパク質、ハプテン、ペプチド、動物組織抽出物、植物組織抽出物、菌類、花粉、煤塵、化学抗原に暴露されていない哺乳類細胞（精子を含む）、及び細胞分画から由来するものでもよい。 ハプテン、又はペプチドを抗原として使用する場合、まず、当該技術分野に熟達した者に公知の化学反応によって、これらをタンパク質等のキャリアと共役させなければならない（非特許文献６）。

本発明の一実施形態において、あらゆる細菌性抗原を本発明において使用してよい。 前記細菌性抗原は、好ましくはエシェリキア属菌、ブドウ球菌、連鎖球菌、サルモネラ菌、及びヘリコバクター属菌から選択される細菌種から選択されることが望ましいが、これらに限定されるものではない。 特に好ましい細菌種は、大腸菌、Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｄｉｆｆｉｃｉｌｅ菌、コレラ菌、及びヘリコバクター・ピロリ菌、及び蛍光菌である。 最も好ましくは、抗原は、蛍光菌由来のリポタンパク質リパーゼである。

少なくとも一つの乳腺上リンパ節に隣接した位置、又は当該リンパ節内に抗原放出装置を埋め込むことにより、前記抗原放出装置に含まれる抗原が、近接の細胞及びリンパ節内に放出される（図１）。 これにより、リンパ節は刺激され、抗原に対する抗体が産生される。 これらの抗体は、乳腺に分泌されるため、哺乳動物の乳汁に含有される。

前記抗原放出装置の大きさ、特性、及び種類は、対象の抗原の大きさ及び性質に依存する。 前記抗原放出装置としては、埋め込んだ哺乳動物の抗体反応が所望のレベルで維持される速度で抗原を放出するものを選ぶことが望ましい。

組成物の除放装置は、例えば、特許文献１に記載され、抗原を持続的に放出するための免疫増強装置は、例えば、特許文献２に記載されている。

有益な物質を含浸させた多孔質シリコン製インプラントが、特許文献３に記載されている。 分子送達のための埋め込み可能な装置が、特許文献４に記載されている。 持続的な放出をする配合物の他の好適な例としては、前記タンパク質を含む固形疎水性ポリマーの半透明マトリックスが挙げられ、このマトリックスは、例えば、送達装置に押し込められる、フィルム又はマイクロカプセル等の成形品の形状を有する。 持続的放出マトリックスの例としては、ポリエステル、ヒドロゲル（（例えば、非特許文献７〜８に記載のポリ（２−ヒドロキシエチル−メタクリレート）、又はポリ（ビニルアルコール））、ポリラクチド（特許文献５〜６）、Ｌ−グルタミン酸及びγエチル−Ｌ−グルタミン酸塩の共重合体（非特許文献９）、非分解性のエチレン酢酸ビニル（非特許文献７）、ＬＵＰＲＯＮ ＤＥＰＯＴ ^（Ｒ） （乳酸−グリコール酸共重合体、及び酢酸ロイプロリドを含む注入可能な微小球）等の分解性の乳酸−グリコール酸共重合体、及びポリ−Ｄ−（−）−３−ヒドロキシ酪酸（特許文献７）等が挙げられる。更なる参照文献は、非特許文献１０である。

エチレン酢酸ビニル、及び乳酸−グリコール酸等のポリマーにより、１００日間以上に渡る分子放出が可能となるが、あるヒドロゲルは、タンパク質をより短い期間で放出する。 封入された抗原が体内に長期間留まる場合、３７℃の水分に暴露される結果、変性又は凝集し、生物的活性が失活したり、また免疫原性が変化してしまうこともある。 抗体を安定させるために、関与する機構に応じた論理的手法が考えられる。 例えば、前記凝集機構が、チオ−ジスルフィド交換による分子間のＳＳ、すなわちジフルフィド結合の形成によるものであることが判明した場合、安定化は、スルフヒドリル残基を修飾し、酸性溶液から凍結乾燥し、適切な添加剤を使用して水分を調整し、特定のポリマーマトリックス組成物を形成させることにより達成可能である。

持続的な放出をするための断片組成物としては、リポソームに封入された断片も含まれる。 前記抗体を含むリポソームは、特許文献８〜１７、非特許文献１１〜１２に公知の方法で調製される。 通常、前記リポソームは、脂質含量がコレステロール約３０％超過である微小（約２００〜８００オングストローム）の単層型のものであり、該脂質含有率は、最適な抗体療法に応じて調整される。 乳腺上リンパ節近くの組織に抗原を除放する他の装置も、本発明に含まれる。

治療で使用する抗原の効果的な量は、例えば、目的、投与経路、抗原及び／又はアジュバントの種類、動物の状態に依存する。 従って、最適な効果を得るために、必要な投与量の調整及び投薬様式の変更を治療医が行う必要がある。 投与者は、通常、投薬量が所望の効果を達成する量に達するまで、抗原を投与する。 この治療の進行は、従来のアッセイにより容易にモニターできる。

本発明の更なる態様においては、乳房内、腹腔内、筋肉間、又は鼻腔内から選択される投与経路でプライマー組成物を投与する工程をさらに含む、乳汁中の抗体の持続的な放出を誘導する方法が提供される。 プライマーの投与は、前記抗原放出装置の埋め込み前、埋め込み中、又は埋め込み後に行ってもよい。 粘膜面（乳腺はその一つである）の抗体産生が優先的に刺激されるように、前記プライマー組成物を粘膜面に送達することが好ましい。

前記プライマー組成物の投与は、単回投与、或いは、数日間又は数週間の間隔を空けた複数回投与でもよい。 一般的に、プライマー組成物の投与は、現代の免疫プロトコルに基づいて間隔（例えば、２週間）をあける。 局所的な炎症及びうっ血を避けるため、通常、２週間よりも短い間隔で、同じ場所に前記プライマー組成物を投与しないのが好ましい。 初期のこのプライミング工程により、低量の抗体産生が促進され、その後、前記抗原放出装置から放出される抗原により抗体の産生は増加し、その量が維持される。

本発明の方法はまた、前記抗原放出装置を埋め込んだ後、乳房内、腹腔内、筋肉間及び／又は鼻腔内から選択される投与経路で、哺乳動物に抗原を含むブースター組成物を投与する工程も含む。 粘膜面（乳腺はその一つである）の抗体産生が優先的に刺激されるように、前記ブースター組成物を粘膜面に送達することが好ましい。

そのようなブースター組成物の投与は、単回投与、或いは、数日間又は数週間の間隔を空けた複数回投与でもよい。 一般的に、ブースター組成物の投与は、投与者の都合に適して間隔をあける。 局所的炎症及びうっ血を避けるため、通常、２週間よりも短い間隔で、同じ場所に前記ブースター組成物を投与しないのが好ましい。

好ましい方法においては、投与される抗原は、該方法の各工程において同一である。 そのため、同一の抗原を前記抗原放出装置、前記プライマー組成物、及び／又は前記ブースター組成物に対して使用してよい。

前記抗原放出装置中と、プライミング及びブースティングに使用される組成物中との両方にアジュバントを使用することも望ましい。 アジュバントは、免疫原を除放する組織内貯蔵庫として、また、免疫反応（非特許文献１３を参照）を非特異的に高めるリンパ活性剤としても作用することができる。 本発明の抗原と併用する適切なアジュバントとしては、フロイント完全アジュバント（ＦＣＡ）、フロイント不完全アジュバント（ＦＩＣ）、ＴｉｔｅｒＭａｘ Ｇｏｌｄ ^（Ｒ） 、アジュバント６５、クロレラトキシンＢ−サブユニット、ＩＬ１−Ｂ Ｆｒａｇｍｅｎｔ １６３−１７１ Ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ ヒトアジュバント、水酸化アルミニウムゲル、又は百日咳菌、ムラミールジペプチド、サイトカイン、サポニン、Ａｄｊｙｕ−Ｐｈｏｓ、Ａｌｇａｌ Ｇｌｕｃａｕ、Ａｌｇａｍｍｕｌｉｕ、Ａｌｈｙｄｒｏｇｅｌ、抗体形成、アブリジン、Ｂａｙ Ｒ１００５、ｃａｌｃｉｔｒｉａｌ、リン酸カルシウム、Ｇｅｌ、ＣＲＬ１００５、コレラホロトキシン（ＣＴ）、ＤＤＡ、ＤＨＥＡ、ＤＭＰＣ、ＤＭＰＧ、ＤＯＣ／Ａｌｕｍ Ｃｏｍｐｌｅ ｘ、ガンマイヌリン、ゲルブアジュバント、ＧＭＤＰ、イミキモド、Ｉｍｕｉｔｈｅｒ、インターフェロン−ガンマ、ＩＳＣＯＭ（ｓ）、Ｉｓｃｏｐｒｏｐ７．０．３、ロキソリビン、ＬＴ−ＯＡ、又はＬＴ Ｏｒａｌアジュバント、ＭＦ５９、モンタニドＩＳＡ５１、及びＩＳＡ７２０、ＭＰＬ、ＭＴＰ−ＰＥ、ＭＴＰ ＰＥ リポソーマ、ムラメチド、ｍｕｒａｐａｌｍｉｔｉｖｅ、ＮＡＧＯ、非イオン性界面活性小胞、Ｐｌｅｕｒａｍ、ＰＬＧＡ、ＰＧＡ、及びＰＬＡ、Ｐｌｕｒｏｎｉｃ Ｌ１２１、ＰＭＭＡ、ＰＯＤＤＳ、Ｐｏｌｙ Ｒａ、Ｐｏｌｙｒｕ Ｐｏｌｙｐｈｏｐｈａｚｅｎｅ、Ｐｏｌｙｓｏｒｂａｔｅ ８０、Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｃｏｃｈｌｅａｔｅｓ、ＱＳ−２１、Ｑｕｉｌ Ａ、Ｒｅｈｙｄｒｏｇｅｌ ＨＰＡ、Ｒｅｈｙｄｒｏｇｅ ｌ ＬＶ、Ｓ−２８４６５、ＳＡＦ−１、Ｓｃｌａｖｏ、ペプチド、Ｓｅｕｄａｉ Ｐｒｏｔｅｄｉｐｏｓｏｍｅｓ、ｓｅｎｄａｉ−ｃｏｎｔａｉｍｉｎｇ ｌｉｐｉｄ ｍａｔｒｉｃｅｓ、Ｓｐａｎ８５、ｓｐｅｃａｌ、スクアレン、ステアリルチロシン、Ｔｈｅｒａｍｉｄｅ、スレオニル−ＭＤＰ、Ｔｙ Ｐａｒｔｉｃｌｅｓ、サポニン Ｑ５２１、ＭＦ５９、及びＡｌｕｍ等が挙げられるが、これらに限定されない。

本発明の更なる態様において、本発明の方法は、プレ選択工程をさらに含む。 この工程において、個々の動物の抗体産生能力を試験し、動物を選択する。 抗体産生能の動物間でのバラツキはかなり大きい。 抗体力価反応が最も良好であった動物を選択する前記プレ選択工程により、動物間のバラツキとなる要因を減少させることができる。 同様に、前記工程を使用して抗体産生に特に適する動物群を構築してもよい。

前記プライマー組成物又は前記ブースター組成物の投与工程に関して、前記抗原物質を液体媒体に懸濁させ、公知の手順に従って注入又は注射するのが好ましい。 当該技術分野において公知のあらゆる適切なキャリア、希釈剤、緩衝液、及びアジュバントを使用してよい。 適切な懸濁液としては、生理食塩水溶液、水、及び生理緩衝液が挙げられる。

前記プライマー組成物又は前記ブースター組成物を注射で投与する場合、注射前に、例えば実験室用ホモゲナイザーを用いて、抗原をアジュバントと適切なキャリア中で乳化させるのが好ましい。 そのような方法の一例としては、抗原水溶液を３倍量のアジュバントと混合し、安定した油中水型のエマルジョンが形成されるまで乳化する。 安定したエマルジョンの存在は、当該技術分野において周知の試験により確かめることが可能である。

第二の態様によれば、本発明は、本発明のいずれかの方法により産生された抗体、及びそのような抗体の断片も提供する。 前記抗体は、免疫グロブリンの種々のサブクラス、すなわちアイソタイプのいずれでもよく、ＩｇＡ、ＩｇＧ、又はＩｇＭ、又は他のサブクラスの任意のものが挙げられる。

本発明の本態様に従って調製可能な抗体分子及び断片の例としては、実質的にインタクトな免疫グロブリン分子、実質的にインタクトな免疫グロブリン分子、及びパラトープを含んだ、免疫グロブリン分子の一部が挙げられる。 前記パラトープを含むそのような抗体部は、Ｆａｂ、Ｆａｂ'、Ｆ（ａｂ'） _２ 、及びＦ（ｖ）として当該技術分野において公知の部分が挙げられる。 これらの抗体の一部は、周知の方法により、実質的にインタクトな抗体にパパイン及びペプシンそれぞれのタンパク質分解反応によって調製可能である。 例えば、特許文献１８を参照。 Ｆａｂ'抗体部も周知であり、メルカプトエタノールで２つの重鎖部を連結しているジスルフィド結合の還元し、生じたメルカプタンタンパク質をヨードアセタミド等の試薬でアルキル化することによって、Ｆ（ａｂ'） _２から生成される。 前記抗体は、インタクトな抗体分子であることが好ましく、本明細書に示したように使用される。

本発明の第三の態様は、抗体を含有した哺乳動物の乳汁の生成方法に関し、前記に詳述した方法による抗体の誘導工程と、前記哺乳動物から乳汁に含まれる前記抗体を回収する工程とを含む。 この乳汁回収工程は、通常の搾乳工程により達成される。

前記乳汁は、前記哺乳動物から直接得たままの状態で使用できるが、必要に応じて加工してもよい。 処理工程の例としては、加熱処理、紫外線放射、濃縮、食品添加物の添加、及び濃縮物、乳粉又は乳清粉等への乾燥挙げられる。

本発明の方法の更なる工程として、抗体を乳汁から単離してもよい。 単離は、当該技術分野で公知の単離技術を使用することで可能である。 例えば、乳清から免疫グロブリンを豊富に含む分画を単離する方法（非特許文献１４、特許文献１９〜２１）、乳汁から免疫グロブリンを豊富に含む分画を単離する方法（非特許文献２０、特許文献２２）、初乳から免疫グロブリン豊富な分画を単離する方法（非特許文献２１、特許文献２３〜２５）、及び、乳汁及び初乳から免疫グロブリンを豊富に含む分画を単離する方法（特許文献２６）が知られている。

必要に応じて、次いで、前記単離した抗体を精製してもよい。 精製は、沈殿及びイオン交換クロマトグラフィー等の公知の技術により、達成可能である。 好適な技術が、上記に引用した非特許文献及び特許文献に開示されている。 上記追加の処理工程に従って得られた、単離・精製抗体の双方はまた、本発明の一部である。

抗体を含有するタンパク質濃縮物を商業規模で生成する方法が、特許文献２７に開示されており、参照することで本願に援用する。 簡潔に説明すると、該方法は、超免疫した乳汁担持雌の乳汁を回収する工程と、乳脂と不純物とに分ける分離工程と、精製物及び脱脂粉乳の凝固工程と、カゼインの単離工程と、乳清タンパク質のフィルターによる濾過、限外濾過、及び滅菌工程と、抗体が変性せず且つ滅菌性が保たれた条件下にて、生成物を脱水・乾燥する工程とを含む。

本発明の更なる特徴を以下の限定されない実施例で更に詳しく説明するが、この詳細記載は、本発明の例示の目的の為だけであることを理解されたい。 いかなる場合も、上記に示した本発明の概略記載の範囲を制限するように理解されるべきでない。

（実施例１）
アジュバントを含まない抗原放出装置の準備
材料 （ｉ）マンニトール−Ｄ（シグマアルドリッチ社製）：０．１５ｇ
（ｉｉ）クエン酸ナトリウム（Ｐｒｏａｎａｌｙｓ社製）：０．１５ｇ
（ｉｉｉ）蛍光菌由来のリパーゼ（シグマアルドリッチ社製）：１１．２５ｍｇ
（ｉｖ）シラスティック・パートＡ（Ｄｏｗ Ｃｏｒｎｉｎｇ社製、Ｑ７−４８５０）：０．７５ｍｌ
（ｖ）シラスティック・パートＢ（Ｄｏｗ Ｃｏｒｎｉｎｇ社製、Ｑ７−４８５０）：０．７５ｍｌ
（ｖｉ）使い捨て２．５ｍｌシリンジ（テルモ社製）：２本 （ｖｉｉ）１ｍｌシリンジ（テルモ社製）：２本 （ｖｉｉｉ）インチステンレス製皮下注射針（２×１２Ｇ×４）
（ｉｘ）インキュベーター（３７℃）
（ｘ）滅菌ペトリ皿 （ｘｉ）滅菌外科用メス （ｘｉｉ）滅菌スパチューラ （ｘｉｉｉ）３２ｍｌガラス製マッカートニー・ボトル 方法 （ｉ）全シリンジからピストンを取り外す。
（ｉｉ）スパチューラを用いて、シラスティック・パートＡを１ｍｌ注射器に移す。 ピストンをシリンジに戻し、０．７５ｍｌ液量を２．５ｍｌシリンジ内へ分注。 シラスティック・パートＢについても同様の手順で行う。
リパーゼ、マンニトール、及びクエン酸ナトリウムを混合し、小サイズのマッカートニー・ボトルへ投入。 その後、シラスティック・パートＡを含む前記２．５ｍｌシリンジに移した。 次に、パートＢをシリンジから前記２．５ｍｌシリンジに射出し、前記２．５ｍｌシリンジ内で前記シラスティック・パートＡ及びパートＢ間に前記リパーゼ、マンニトール、及びクエン酸ナトリウムを効果的に挟み込んだ。 前記ピストンをこのシリンジに戻し、空のシリンジから取り外した。 第一のシリンジの内容物を第二のシリンジに射出し、その後、ピストンを取り替えた。 この手順を２０回繰返し、全試薬を効果的に混合した。 最終的に、前記試薬を２本の１２Ｇ針内へ射出し、３７℃で３日間保存した。 硬化したシラスティックを前記針２本から出し、蓋を開けたペトリ皿へ３ｃｍの長さに切断し、紫外光下で２４時間静置した後、滅菌した１０ｍｌ遠心分離管内で−２０℃で保存した。 ３ｃｍの各ＡＲＤは、シラスティック２５０μｌ中に、リパーゼを１ｍｇ、マンニトールを１３ｍｇ、クエン酸ナトリウムを１３ｍｇ含有していた。

（実施例２）
アジュバントを含む抗原放出装置の準備
材料 （ｉ）マンニトール−Ｄ（シグマアルドリッチ社製）：０．３ｇ
（ｉｉ）クエン酸ナトリウム（Ｐｒｏａｎａｌｙｓ社製）：０．３ｇ
（ｉｉｉ）蛍光菌由来のリパーゼ（シグマアルドリッチ社製）：２２．５０ｍｇ
（ｉｖ）ＩＬ１−Ｂ Ｆｒａｇｍｅｎｔ １６３−１７１ Ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ Ｈｕｍａｎ（Ｓｉｇｍａ社製）：１．２ｍｇ
（ｖ）シラスティック・パートＡ（Ｄｏｗ Ｃｏｒｎｉｎｇ社製、Ｑ７−４８５０）：１．５ｍｌ
（ｖｉ）シラスティック・パートＢ（Ｄｏｗ Ｃｏｒｎｉｎｇ社製、Ｑ７−４８５０）：１．５ｍｌ
（ｖｉｉ）使い捨て２．５ｍｌシリンジ（テルモ社製）：２本 （ｖｉｉｉ）１ｍｌシリンジ（テルモ社製）：２本 （ｉｘ）ステンレス製皮下注射針（２×１２Ｇ×４インチ）
（ｘ）インキュベーター（３７℃）
（ｘｉ）滅菌ペトリ皿 （ｘｉｉ）滅菌外科用メス （ｘｉｉｉ）滅菌スパチューラ （ｘｉｖ）３２ｍｌガラス製マッカートニー・ボトル 方法 （ｉ）全シリンジからピストンを取り外す。
（ｉｉ）スパチューラを用いて、シラスティック・パートＡを１ｍｌシリンジに移す。 ピストンをシリンジに戻し、０．７５ｍｌ液量を２．５ｍｌシリンジ内へ分注。 シラスティック・パートＢについても同様の手順で行う。
（ｉｉｉ）リパーゼ、マンニトール及びクエン酸ナトリウムを混合し、小サイズのマッカートニー・ボトルへ投入。 その後、シラスティック・パートＡを含む前記２．５ｍｌシリンジに移す。 次に、パートＢをシリンジから前記２．５ｍｌシリンジに射出し、前記２．５ｍｌシリンジ内で前記シラスティック・パートＡ及びパートＢ間に前記リパーゼ、マンニトール、及びクエン酸ナトリウムを効果的に挟み込んだ。 前記ピストンをこのシリンジに戻し、空のシリンジから取り外した。 第一のシリンジの内容物を第二のシリンジに射出し、その後、ピストンを戻した。 この手順を２０回繰返し、全試薬を効果的に混合した。 前記試薬を１２Ｇ針２本に最後に射出し、３７℃で３日間保存した。 硬化したシラスティックを前記針２本から出し、蓋を開けたペトリ皿中で３ｃｍの長さに切断し、紫外光下で２４時間静置した後、滅菌した１０ｍｌ遠心分離管内で−２０℃で保存した。 ３ｃｍの各ＡＲＤは、シラスティック２５０μｌ中に、リパーゼを１ｍｇ、マンニトールを１３ｍｇ、クエン酸ナトリウムを１３ｍｇ、ＩＬ１−Ｂを５０μｇ含有していた。

（実施例３）
ＡＲＤの送達
使い捨て１０ｍｌルアロック・シリンジ、１０Ｇ×４インチステンレス製皮下注射針、及び９０ｍｍ×１０Ｇステンレス製溶接ロッドを備えた装置を目的に合わせて設計した（図５参照）。 この装置は、前記ロッドを前記シリンジのピストンに取り付け且つ前記針内を貫通させて組み立てられている。 前記ピストンを３ｃｍ程引いて、抗原放出装置を挿入する空き領域を針の先端近くに設けている。 そのため、前記ピストンを押圧すると、前記抗原放出装置はロッドにより針から射出される（図５参照）。
動物を床面に仰向けに寝かし、飼育員により押さえつけた。 乳房近傍の右側約３ｃｍ×１０ｃｍ四方をヨードで消毒した。 局部麻酔として、２％リグノカイン２ｍｌを２６Ｇ皮下注射器で皮膚組織に浸潤させた。 ＡＲＤを入れた１０Ｇ針を、該領域後端に挿入し、皮下で前端へ向けて押し込んだ。 前記ピストンを押圧すると同時に、針を引いた。 注射箇所を、ヨードで消毒した。 ほとんどの場合において、前記抗原放出装置が注射箇所に存在することが感じられた。

（実施例４）
鼻腔接種用リパーゼの調製
材料 （ｉ）Ｐ． ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ由来のリパーゼ（シグマアルドリッチ社製）：１５．５ｍｇ
（ｉｉ）０．８５％生理食塩水（Ｅｘｃｅｌ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社製）：３８．７５ｍｌ
（ｉｉｉ）クロレラトキシンＢ-サブユニット（ＵＳ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ社製）：１ｍｇ
（ｉｖ）２．５ｍｌシリンジ （ｖ）滅菌５０ｍｌチューブ（Ｆａｌｃｏｎ社製）
（ｖｉ）翼付点滴セットから得た長さ８〜１０ｃｍの約２０Ｇプラスチック・チューブ（テルモ社製）
方法 （ｉ）第一投与日に、全試薬を５０ｍｌチューブに混合した。
（ｉｉ）残りは、使用時まで４℃で保存した。

（実施例５）
鼻腔接種剤の送達
接種剤（リパーゼ１ｍｇ、クロレラトキシンＢ-サブユニット６４．５μｇ含有）２．５ｍｌを、点滴セットから２０Ｇチューブを取り付けたシリンジに引き込んだ。 チューブの６０〜８０％を動物の右鼻孔に入れ、ゆっくりと投与しながら、前記鼻孔からチューブを同時に引き抜いた（図２参照）。

（実施例６）
筋肉注射接種剤リパーゼの調製
材料 （ｉ）Ｐ． ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ由来のリパーゼ（Ｓｉｇｍａ社製）：３６．５ｍｇ
（ｉｉ）０．８５％生理食塩水（Ｅｘｃｅｌ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社製）：９．１ｍｌ
（ｉｉｉ）ＴｉｔｅｒＭａｘ Ｇｏｌｄ ^（Ｒ）アジュバント （ｉｖ）マッカートニー・ボトル （ｖ）３ｍｌプラスチック製シリンジ（テルモ社製）
（ｖｉ）ステンレス製ダブルハブ （ｖｉｉ）２３Ｇ×１インチ皮下注射針 方法 （ｉ）第一投与日に、リパーゼ及び生理食塩水をマッカートニー・ボトルに混合し、４ｍｇ／ｍｌ濃度とした。 残りは、使用時まで４℃で保存した。

（実施例７）
接種材の筋肉経路送達
生理食塩水溶液に溶かした４ｍｇ／ｍｌのリパーゼ０．５ｍｌを、メーカーの指示書に従って、シリンジに入れ、０．５ｍｌのＴｉｔｅｒＭａｘ Ｇｏｌｄ ^（Ｒ）と乳化した。 このシリンジを取り付けた２３Ｇ×１インチ針を用いて、左後肢の後方部に接種剤を筋肉（ＩＭ）注射した。 動物に対するＩＭ注射を７日目、１４日目、２１日目に行った。

（実施例８）
免疫プロトコル１
前記動物の後肢上部（臀部）に、ＩＭ注射を行った。
動物５頭を、４種の抗原で免疫した。 このうち２頭には１種の抗原を投与し、残り３頭には、それぞれ違う抗原を投与した。 第一接種及び続く２回免疫（ブースト）のスケジュール、抗原（Ａｇ）濃度、ＴｉｔｅｒＭａｘアジュバント（Ｔ／ｍａｘ）量を表１にまとめた。
表１：種々の抗原を接種したヤギに対する、免疫原組成物及び接種スケジュール

（実施例９）
免疫プロトコル２
抗原放出装置（ＡＲＤ）及び／又は注射により、前記動物に対して抗原免疫付与を行った。
動物６頭、１種の抗原に対する接種スケジュールを表２にまとめた。
１頭に、０日目に鼠径部に前記抗原の皮下注射を行い、３０日目にその抗原のＩＭ注射を行った。 １頭に、０日目にのみ、前記抗原の皮下注射を行った。 １頭に、０日目に鼠径部に前記抗原を含むインプラントの埋め込みを行った。 １頭に、０日目に鼠径部に前記抗原を含むインプラントの埋め込みを行い、３０日目に臀部に前記抗原のＩＭ注射を行った。 残りの２頭に、０日目に鼠径部に前記抗原を含むインプラントを埋め込み、１５日目に一方に鼻腔注射による免疫ブーストを行い、他方にはＩＭ注射による免疫ブーストを行った。
表２：抗原放出装置（ＡＲＤ）の初期試験プロトコル

（実施例１０）
免疫プロトコル３
本プロトコルでは、各グループにヤギ２頭を使用し、合計で１２頭を使用した。
２頭の別々の動物に対して６種類のプロトコルを評価して、乳汁内で一定した量の抗体の産生に最適なプロトコルを決定した。 表４及び表５に結果をまとめた。
表４：乳汁中の抗体産生の促進に使用した免疫プロトコル

表５：乳汁中の抗体産生の促進に使用した免疫プロトコル

各投与計画に対して２頭ずつ、合計で１２頭のヤギに対して試験を行った。 抗リパーゼ抗体の存在は、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）により確かめた。 コントロールである普通の牛乳サンプルの平均吸光度を差し引いた平均吸光度をプロットした（図６）。 図７に示すように、実験結果は、動物間で再現性があった。

６種類全ての投与計画で抗体が増加した。 しかし、各グループにおける抗体の相対濃度は異なった。 産生した抗体の濃度が最も高いことを示す、最高平均吸光度を記録したのは動物グループ４であった。 動物グループ４に、本プログラム０日目にＡＲＤを埋め込み、次いで７日目、１４日目、２１日目に、３回後脇腹付近に注射を行った。

７日目、１４日目、２１日目にＩＭ注射のみ行ったグループ１のヤギの平均吸光度よりも、グループ４の平均吸光度は高かった。
動物グループ１及び４は、約１４日目まである程度の反応を示した。 １５日目に、抗リパーゼ抗体値が大幅に上昇したが、これは二次免疫反応の結果であると推測される。 より高濃度の抗体が本試験中に維持され、２８日目まで維持された。

図８、図９、図１０に示すように、接種した動物の血清中の抗リパーゼ抗体値も測定した。 抗原放出装置（ＡＲＤ）を埋め込み、且つ筋肉注射を行った２体の動物中の抗リパーゼ抗体の吸光度の測定結果を図８に示す。 種々のプロトコルで免疫したヤギから得た血清中の抗リパーゼ抗体量の測定結果を図９に示す。 抗原放出装置（ＡＲＤ）の埋め込み及び筋肉間注射で免疫したヤギから産生された、乳汁中及び血清中の平均抗リパーゼ抗体量の比較結果を図１０に示す。 抗原放出装置を埋め込んだヤギの乳汁及び血清中の抗リパーゼ抗体の産生を図１１に示す。 乳汁中の抗リパーゼ抗体量及び血清中に抗リパーゼ抗体が無いことから、鼠径部分に埋め込んだ抗原放出装置内の抗原が、乳腺上リンパ節に拡散していることが示唆される。

（実施例１１）
免疫付与プロトコル４
このプロトコルでは、各グループに２頭の泌乳ヤギ（ヒマラヤ山羊）を使用し、合計で４頭使用した。 前記抗原として、蛍光菌由来のリパーゼを使用した。
・免疫プロトコルの準備
１．８５％生理食塩水１５ｍｌにリパーゼ３０ｍｇを乳化。
２． ＴｉｔｅｒＭａｘ Ｇｏｌｄとの乳化は、メーカーの仕様に従った。 生理食塩水溶液中の前記リパーゼを、等倍のＴｉｔｅｒＭａｘ Ｇｏｌｄと混合（１：１）。
３． 投与用に２．５ｍｌシリンジに１ｍｌ分注。 （１ｍｌ中、リパーゼ１ｍｇ含有）
４．２グループの動物に、０日目、１０日目、及び１９日目に接種。
５． グループ１に対しては左脇腹に接種し、グループ２に対しては乳腺上リンパ節近傍に接種。
６． 乳汁及び血清を回収。
・酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）用のコーティングプレート
１． コーティング緩衝液で抗原を２．５μｇ／ｍｌに調製。
２． 混合物１００μｌを９６ウェルＥＬＩＳＡプレートの各ウェルに分注。
３． 前記プレートに、カバーをかけ、４℃で一晩放置。
・酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）プロトコル
１． 使用前に、前記コーティングプレートをＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎで３回洗浄。
２． ＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎに１％ヒト血清とした希釈血清。
３． 各ウェルに前記希釈血清１００μｌを分注。
４． ウェルに対象サンプル１μｌを分注。
５． プレートを３７℃で２時間インキュベート。
６． プレートをＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎで３回洗浄。
７． マウスα−ヒツジＩｇＧ、マウスα−ヒツジＩｇＡ及びマウスα−ヒツジＩｇＭを、１％希釈血清（ＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎ中の１％ヒト血清）で１０００倍希釈したサンプルを調製。
８． 各ウェルに１００μｌ分注。
９． 前記プレートを３７℃で２時間静置。
１０． 前記プレートをＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎで３回洗浄。
１１． ウサギα−マウスＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）を１％希釈血清で２５００倍希釈したサンプルを調製。
１２． 各ウェルに１００μｌ分注。
１３．３７℃で２時間インキュベート。
１４． 前記プレートをＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎで３回洗浄。
１５． ジエタノールアミン緩衝液で１００倍希釈した２５０ｍｇ／ｍｌニトロフェニルリン酸を調製。
１６． 各ウェルに１００μｌ分注。
１７． 約２０分間〜３０分間、室温でインキュベート。
１８．３．７５Ｍの水酸化ナトリウム５０μｌで反応を停止。
１９． ＥＬＩＳＡプレートを４０５ｎｍで測定。
・結果
回収した乳汁中のＩｇＧ、ＩｇＡ及びＩｇＭ量をＥＬＩＳＡで分析した。 図１３のグループ１（脇腹に筋肉注射した動物群：Ｇ１とする）及びグループ２（乳腺上リンパ節を刺激した動物群：Ｇ２とする）の結果から、グループ２の動物の乳汁で産生された３種全てのクラスの免疫グロブリン量は、グループ１の動物と比べて高かった。

（実施例１２）
乳汁サンプルの回収及び保存
材料 （ｉ）冷却した遠心分離機（Ｂｅｃｋｍａｎ Ａｃｕｓｐｉｎ社製）
（ｉｉ）Ｈｐ水中の糸状菌（Ｓｉｇｍａ社製）由来のレニットタイプＩＩ（濃度：２ｍｇ／ｍｌ）
（ｉｉｉ）滅菌１０ｍｌ遠心分離管 （ｉｖ）Ｐ１０００ピペットマン （ｖ）使い捨て１ｍｌトランスファー・ピペット （ｖｉ）５ｍｌプラスチック保存チューブ （ｖｉｉ）インキュベーター（３７℃）
方法 化学的又は機械的刺激物が全く存在しない３２ｍｌのガラス製マッカートニー・ボトルに、乳汁を手絞り搾乳で回収した。 乳汁は、子ヤギから離さずに朝に回収した。 サンプルを回収後、氷上で保存し、その後できる限り速やかに移送した。 乳汁を滅菌１０ｍｌ遠心分離管に移送し、４℃で１５分間、２０００ｒｐｍで遠心分離した。 使い捨てピペットを用いて、乳汁を固形脂肪層下から吸引し、新しい１０ｍｌチューブに置いた。 前記ピペットを脂肪層を貫通させ、その下の乳汁層へ慎重に突き刺した。 ２ｍｇ／ｍｌのレネット溶液をレネット０．４ｍｌ：乳汁５ｍｌの割合で前記乳汁に追加し、チューブを振った後、３７℃で１〜２時間インキュベートした。 チューブを４℃で１５分間、５０００ｒｐｍで遠心分離した。 上清をトランスファー・ピペットで除き、−２０℃で保存した。
前記乳汁中の抗体を酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）により定量した。 抗リパーゼ抗体の相対的濃度を示す吸光度において、血清の吸光度は、乳汁と比べると低かった。 乳汁中に産生された抗リパーゼ抗体量は、血清の抗体量と比べると高かった。

（実施例１３）
血液サンプルの回収及び保存
材料 （ｉ）血清回収用の９ｍｌＶａｃｕｔａｉｎｅｒｓ ^（Ｒ） （Ｂｅｃｔｃｏ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ社製）：７ｍｌ
（ｉｉ）２０Ｇ×１．５インチのＶａｃｕｔａｉｎｅｒ ^（Ｒ） （Ｂｅｃｔｃｏ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ社製）針及びホルダー 方法 Ｖａｃｕｔａｉｎｅｒ ^（Ｒ）回収チューブ、ホルダー、及び針を用いて、血液サンプルを頸静脈から採取した。 チューブを４℃で保存した。 サンプルを４０℃で１５分間、４０００ｒｐｍで遠心分離した。 上部血清層をトランスファー・ピペットを用いて除去し、−２０℃で保存した。

（実施例１４）
酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）
材料 （ｉ）１０ｘリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）：二回蒸留水１Ｌ、ＫＨ _２ ＰＯ _４ （ＢＤＨ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ Ａｕｓｔ Ｐｔｙ Ｌｔｄ社製）１．９１ｇ、Ｎａ _２ ＨＰＯ _４ （ＡＳＡＸ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ社製）６．１ｇ、及びＫＣＬ（ＢＤＨ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ Ａｕｓｔ Ｐｔｙ Ｌｔｄ社製）２ｇ含有 （ｉｉ）ＮａＣｌ８０ｇ、ＮａＮ _３ （シグマアルドリッチ社製）１．９５ｇ、ｐＨ７．４
（ｉｉｉ）炭酸塩被膜緩衝液２００ｍｌ（ｐＨ９．６）：二回蒸留水２００ｍｌ、Ｎａ _２ ＣＯ _３ （ＢＤＨ社製）３．１８ｇ、及びＮａＨＣＯ _３ （ＢＤＨ社製）５．８８ｇ、ＮａＮ _３ （Ｓｉｇｍａ社製）０．３９ｇ含有 （ｉｖ）０．８５％生理食塩水（Ｅｘｃｅｌ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社製）
（ｖ）Ｐ． ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ由来のリパーゼ（シグマアルドリッチ社製）の炭酸塩被膜緩衝液（０．２５ｍｇ／ｍｌ）
（ｖｉ）ＰＢＳ−ＴＷ２０プレート洗浄溶液（ＢＤＨ社製）：１０ｘＰＢＳ（上と同じ）：２００ｍｌ、蒸留水１８００ｍｌ、及びＴｗｅｅｎ−２０（Ｌａｂｃｈｅｍ社製）１ｍｌを含有 （ｖｉｉ）希釈血清：グリセロール（ＢＤＨ社製）２００ｍｌ、ＮａＣｌ（ＢＤＨ社製）２９ｇ、ＫＨ _２ ＰＯ _４ （ＢＤＨ社製）０．２ｇ、Ｎａ _２ ＨＰＯ _４ （ＢＤＨ社製）０．６１ｇ、ＫＣｌ（ＢＤＨ社製）０．２ｇ、ＮａＮ _３ （Ｓｉｇｍａ社製）１．９５ｇ、蒸留水１Ｌ、及びＴｗｅｅｎ−２０（Ｌａｂｃｈｅｍ社製）１．５ｍｌを含有。 ｐＨ＝７．４、４℃で保存。 使用前に、乾燥ＢＳＡ（ＣＳＬ社製）を１％濃度で所望量へ添加。
（ｖｉｉｉ）生理食塩水（Ｅｘｃｅｌ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社製）０．８５％
（ｉｘ）ロバ抗−ヤギＩｇＧ−Ｈｏｒｓｅ Ｒａｄｉｓｈ Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ（ＨＲＰ）（プロメガ社製）
（ｘ）１Ｍ Ｈ _２ ＳＯ _４ （ＡＪＡＸ Ｆｉｎｅｃｈｅｍ社製）
（ｘｉ）ＴＭＢＳ ＥＩＡ溶液（ＢｉｏＲａｄ社製）パートＡ＆Ｂ
（ｘｉｉ）Ｐ２００ピペットマン及びチップ （ｘｉｉｉ）Ｐ２０ピペットマン及びチップ （ｘｉｖ）ｎｕｎｃ ^（Ｒ） ｐｏｌｓｏｒｂ ９６ウェルＥＬＩＳＡプレート （ｘｖ）ＢｉｏＲａｄ ^（Ｒ） ９６ウェルプレート分光光度計モデル４５０
方法 炭酸塩緩衝液中のリパーゼ１００μｌを、ＥＬＩＳＡプレートの各ウェルに加え、一晩４℃で保存した。 プレートをＰＢＳ−ＴＷで３回洗浄した。 希釈血清１００μｌを血清分析用ウェルに加え、希釈血清９０μｌを乳汁分析用ウェルに加えた。 血清サンプル１μｌ及び乳汁サンプル１０μｌを前記希釈血清に加えた。 プレートを優しく叩いて混和させた。 前記プレートを一晩４℃で保存した。 前記プレートをＰＢＳ−ＴＷで３回洗浄した。 ロバ抗−ヤギＩｇＧ−ＨＲＰを０．８５％生理食塩水で２５００倍希釈したサンプル１００μｌを、各ウェルに加えた。 前記プレートを室温で一時間インキュベートした。 前記プレートをＰＢＳ−ＴＷで３回洗浄した。 ＴＭＢＳのパートＡを９部、パートＢを１部ガラス製ショットボトルに混合し、１００μｌを各ウェルに加えた。 前記プレートを室温で１０分間インキュベートした。 １ＭのＨ _２ ＳＯ _４ １００μｌを各ウェルに加え、分光光度計により４５０ｎｍでプレートを読んだ。 吸光度結果のプリントアウトを得た。 動物全てから回収した乳汁及び血液サンプルの各吸光度を測定した。 吸光度をＹ軸とし時間（日数）をＸ軸として、個々の動物の吸光度、及び（被験動物２頭からなる）各グループの平均吸光度をプロットした。

（実施例１５）
乳汁アガースライド中でのリパーゼの拡散
（ｉ）リン酸緩衝生理食塩水（ｐＨ７．４）中で、１％（１ｇ／１００ｍｌ）アガー（Ｂａｓｉｎｇｓｔｏｋｅ Ｈａｍｐｓｈｉｒｅ社（英国）、Ｏｘｏｉｄ Ｃａｔ Ｎｏ Ｌ１３）を調製。
（ｉｉ）１％アガー５ｍｌに全乳（Ｍａｓｔｅｒｓ，Ｐｅｒｔｈ（オーストラリア））１００μｌを添加。
（ｉｉｉ）スライド形式とするため、「乳汁アガー」２．５ｍｌをガラス上に注ぎ、１０分間かけて固めた。 （１％アガー中に２％の乳汁）
（ｉｖ）アガーパンチを用いて前記乳汁アガーゲルに直径１．５ｍｍの穴を５つあけ、アガーを吸引除去した。
（ｖ）アガーフィルムをＰ． ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ由来のリパーゼ（アメリカ、ウィスコンシン州、ミルウォーキー、Ａｌｄｒｉｃｈ社製）と共に一晩インキュベートした。 ５ｍｇ／ｍｌのリパーゼを０．８５％生理食塩水で調製した。
（ｖｉ）本リパーゼ試験における脂質分解を示す拡散領域を、（ａ）生理食塩水、（ｂ）リパーゼ＋抗体非含有血清、及び（ｃ）リパーゼ＋抗リパーゼ抗体含有血清を含むプレートと比較した。
結果を図１１に示す。 それぞれの乳汁スライドにおいて、５つのウェルが生理食塩水（スライド１）、リパーゼ酵素（スライド２）、抗体非含有血清＋リパーゼ（スライド３）、及び抗リパーゼ抗体含有血清＋リパーゼ（スライド４）充てんされた。 スライド２では、リパーゼ酵素が前記乳汁フィルム内で脂質を加水分解するにつれて、加水分解領域が可視できる。 ネガティブコントロール（スライド１の生理食塩水）により、前記酵素が加水分解領域の原因であることが認められる。 前記リパーゼ酵素の加水分解活性は、スライド４に明らかなように、抗リパーゼ抗体により阻害される。 抗体非含有血清を含むスライド３により、酵素を阻害しているのが血清の他の組成分ではなく、抗体であること認められる。
本発明を特定の好適な実施例に基づいて説明したが、本発明の広い理念内において種々変形及び修正が可能であることが理解されよう。 従って、好適な実施例、そのような変形及び修正は全て本発明の範囲、要旨に包含される。

図１は、鼠径部分に接種した染料が移動したため、青色に変色した乳腺の写真である。 （マードック大学、解剖学部、Ｄｒ．Ｍａｒｔｉｎ ＣＡＫＥによる写真提供）

図２は、ヤギの鼻腔内免疫の写真である。

図３は、ヒツジの鼠径部に本発明の態様に従って抗原放出装置を埋め込んでいる写真である。

図４は、ヒツジに図３の抗原放出装置を埋め込んだ場所である。

図５は、抗原放出装置の埋め込みに使用した装置の概略図である。

図６は、本発明の態様に従って、抗原放出装置からリパーゼタンパク質が乳汁アガープレートに分散している写真である。 酵素がチューブの孔隙から拡散するにつれて、ロッド周辺の暗帯から明らかなように、乳汁アガー中で脂質を加水分解している。 本発明の開発のためのモデル抗原として、リパーゼタンパク質を使用した。

図７は、種々のプロトコルで免疫したヤギから得た乳汁中の抗リパーゼ抗体量を示すグラフである。 各プロトコルに対して、動物２頭の平均吸光度を２８日間プロットした。 抗原放出装置（ＣＲＤ）を使用し、且つ筋肉間注射を行ったプロトコルで抗体量最大となった。

図８は、抗原放出装置（ＡＲＤ）を埋め込み、且つ筋肉注射を行った２頭の別々動物の抗リパーゼ抗体の個別の吸光度を示すグラフである。 ２つの結果により、免疫プロトコルは再現性があることが明らかとなった。

図９は、種々のプロトコルで免疫したヤギから得た血清中の抗リパーゼ抗体量を示すグラフである。 各プロトコルに対して、動物２頭の平均吸光度を２８日間プロットした。

図１０は、抗原放出装置（ＡＲＤ）及び筋肉間注射を行って免疫したヤギより産生された乳汁（◆）及び血清（■）の平均抗リパーゼ抗体量の比較である。

図１１は、抗原放出装置を埋め込んだヤギの乳汁（◆）及び血清（■）中の抗リパーゼ抗体産生を示すグラフである。 乳汁中の抗リパーゼ抗体量及び血清中に抗リパーゼ抗体が無いことから、鼠径部分に埋め込んだ抗原放出装置内の抗原が、前記乳腺上リンパ節に拡散していることが示唆される。

図１２は、リパーゼ酵素の脂肪分解活性に対する抗リパーゼ抗体の阻害効果を示す、ガラススライド上の乳汁アガーの拡散アッセイの写真である。 スライド１：ＰＢＳ又は生理食塩水をウェルに添加。 スライド２：Ｐ． ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ由来のリパーゼ（５ｍｇ／ｍｌ）。 スライド３：抗体非含有血清（１：１希釈）を有するリパーゼ（５ｍｇ／ｍｌ）。 スライド４：抗リパーゼ抗体（１：１希釈）を含有した血清を持つリパーゼ（５ｍｇ／ｍｌ）。

図１３は、蛍光菌由来のリパーゼを接種したヤギの乳汁中のＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＭ量を示すグラフである。 ２グループの動物に、０日目、１０日目、１９日目に異なる位置に接種した。 （グループ１（Ｇ１）は脇腹に、グループ２（Ｇ２）は、乳腺上リンパ節に隣接した辺り）ＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＭの相対量は、ＥＬＩＳＡで測定した。 グループ１の動物よりも、グループ２の動物の乳汁において、免疫グロブリンの３クラス全ての量が高かった。