半胱氨酸蛋白酶抑制剂S与癌胚抗原的联合应用 |
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| 申请号 | CN201310164754.6 | 申请日 | 2013-05-07 | 公开(公告)号 | CN103913574A | 公开(公告)日 | 2014-07-09 |
| 申请人 | 上海良润生物医药科技有限公司; | 发明人 | 王弢; 秦勇; 渠香云; | ||||
| 摘要 | 本 发明 公开了半胱 氨 酸蛋白酶 抑制剂 S（Cystatin？S）与癌胚 抗原 （CEA）的联合应用，具体为Cystatin？S与CEA在制备诊断和预示胃癌或胃肠间质瘤标志物中的应用；本发明还公开了胃癌或胃肠间质瘤标志物的捕获剂和含有该捕获剂的 试剂 盒 ，所得试剂盒具有特异性好、灵敏度高等优点，能够用于胃癌或胃肠间质瘤的早期诊断、 治疗 过程中的疗效监控以及治疗后转移复发监控，其诊断结果早于临床症状。 | ||||||
| 权利要求 | 1.半胱氨酸蛋白酶抑制剂S和癌胚抗原在制备诊断和预示胃癌或胃肠间质瘤标志物中的应用，所述半胱氨酸蛋白酶抑制剂S的氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示，所述癌胚抗原的氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示。 |
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| 说明书全文 | 半胱氨酸蛋白酶抑制剂S与癌胚抗原的联合应用技术领域[0001] 本发明属于医学检测领域，涉及半胱氨酸蛋白酶抑制剂S与癌胚抗原的联合应用。 背景技术[0002] 胃癌是严重威胁人类健康的恶性肿瘤之一，死亡率居各恶心肿瘤的第二位。目前全球每年新发胃癌九十三万四千例，其中有近四十万在中国，患病和死亡率均超过世界平均水平的两倍。随着胃镜及现代影像学技术的应用，早期胃癌的诊断率已提高到百分之十左右，早期治疗治愈率达到百分之九十五，但目前中国住院病例中超过九成是中晚期才就医，五年生存率不到五分之一。提高胃癌的总体疗效很大程度上取决于早发现、早诊断、早治疗及治疗后的复发检测，因此寻找高灵敏度和高特异性的肿瘤标志物对胃癌的早期诊断和复发监控有重大意义。 [0003] 据文献报道胃肠间质瘤（GIST）发病率为（1-2）/10万，占胃肠道肿瘤的0.1%-0.3%。在美国每年新发病例为4000-6000例，年发病率约为（11-14.5）/100万。发病高峰位于50-70岁之间人群，40岁以下少见，青少年罕见。GIST大部分发生于胃（50～ 70%）和小肠（20～30%），结直肠约占10～20%，食道占0～6%，肠系膜、网膜及腹腔后罕见。 GIST病人20-30%是恶性的，第一次就诊时约有11～47%已有转移，转移主要在肝和腹腔。 [0004] 胃肠道间质肿瘤中存在c-kit基因功能获得性突变及C-KIT蛋白产物CD117的表达。研究发现GIST发生主要与c-kit基因突变导致酪氨酸激酶持续活化使突变细胞增殖失控有关。80-88%GIST的发生源于c-kit基因功能获得性突变，即CD117。据2008年中国胃肠间质瘤诊断治疗共识意见，病理诊断流程对疑似GIST应做组织免疫组化检查，CD117阳性则可确诊，阴性再做c-kit突变检测，阳性为GIST，阴性再进行PDGFR基因检测，阳性可确诊，阴性可能为野生型GIST或其它肿瘤，如desmin检测为阳性则可能为平滑肌瘤；S-100为阳性则考虑神经鞘瘤，如二者阴性应进一步做DOG1免疫组化检测，阳性则可确诊GIST。因此，GIST病理确诊程序繁复，而且GIST转移复发率高，特别是沿活检路径，或手术时瘤体破溃等极易带来种植转移。因此，临床迫切需要高灵敏度的血清检测标志物来突破GIST诊治瓶颈。 [0005] 近年来，随着对肿瘤发病机理研究的不断深入，发现Cystatin家族作为组织蛋白酶主要是半胱氨酸蛋白酶的内源性抑制剂，在肿瘤的发生、发展、浸润和转移过程中起着非常重要的作用。研究结果显示，Cystatin家族的几个成员在不同肿瘤中的表达水平有所上升，例如Cystatin C在卵巢癌和头颈部癌症中的表达有不同水平的上升，stefin A在非小细胞肺癌中的表达水平有所增加，Cystatin F在多种肿瘤中的表达水平都有显著增加，很可能是由于在肿瘤发生、发展过程中需要组织蛋白酶的参与，先诱导其表达量增加，再激活机体本身的应激机制，导致Cystatin的表达量上升以抑制过盛的组织蛋白酶活性。但Cystatin的表达量并不与肿瘤的发展成正相关关系，例如在胶质瘤中，Cystatin C的低表达意味着疾病的晚期，患者的生存期较短，且易于复发，这可能是到了肿瘤的后期阶段，又会有一些其他的机制对Cystatin的水平进行调控，以促进肿瘤的进一步恶化。半胱氨酸蛋白酶抑制剂S（Cystatin S）是人类Cystatin家族成员，由CST4基因编码，含141个氨基酸，分子中有两个二硫键，分子量为16.4Kda，为典型的分泌蛋白，分布于多种体液和分泌物中，如眼泪、唾液、血清、血浆等。文献报道，CST4在胃癌组织中的表达量高于正常胃粘膜组织，在胃癌细胞系中的表达部位与胃癌组织较一致，且表达率随细胞系的分化程度降低而降低；临床资料分析表明，CST4的表达与浸润深度、远处转移以及TNM分期相关；生存分析表明，CST4表达阳性组的5年生存率显著高于无表达组；Cox回归分析表明，CST4是一个独立预后因子；从而提示CST4可能在胃癌的发生、发展过程中发挥类似肿瘤抑制因子的作用。 [0006] CEA最初发现于结肠癌和胎儿肠组织中，故名癌胚抗原。CEA升高常见于大肠癌、胰腺癌、胃癌、小细胞肺癌、乳腺癌、甲状腺髓样癌等。但吸烟、妊娠期和心血管疾病、糖尿病、非特异性结肠炎等疾病，15%～53%的病人血清CEA也会升高，所以CEA不是恶性肿瘤的特异性标志，在诊断上只有辅助价值。CEA在胃癌患者血清中检测的临床意义是：（1）与进展期低分化腺癌相关-亦与肿瘤大小、浆膜面浸润和淋巴转移相关；（2）能介导肿瘤细胞与肝实质接触而提示肝转移；（3）可与其它指标联合应用，如与腹腔灌洗液中细胞学检查联合提示胃癌的腹膜复发、腹腔种植，但准确性较CA125差；（4）可与其它指标联合应用评价胃癌的化疗疗效，如CEA水平下降范围在50%以上或降至正常范围并持续4周以上可作为治疗有效指标；（5）其与预后的关系尚存在争议，但多数结果认为，如治疗后持续增高提示胃癌患者预后不良。但是，目前未见联合Cystatin S和CEA标志物检测胃癌和胃肠间质瘤的报道。 发明内容[0007] 有鉴于此，本发明的目的在于提供一种半胱氨酸蛋白酶抑制剂S（Cystatin S）和癌胚抗原（CEA）在制备诊断和预示胃癌或胃肠间质瘤标志物中的应用；本发明的目的之二在于提供胃癌或胃肠间质瘤标志物的捕获剂；本发明的目的之三在于提供含有上述捕获剂的检测试剂盒；本发明的目的之四在于提供利用试剂盒建立计算诊断和预示胃癌或胃肠间质瘤阈值的方法。 [0008] 为达到上述目的，本发明提供如下技术方案： [0009] 1.半胱氨酸蛋白酶抑制剂S和癌胚抗原在制备诊断和预示胃癌或胃肠间质瘤标志物中的应用，所述半胱氨酸蛋白酶抑制剂S的氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示，所述癌胚抗原的氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示。 [0010] 优选的，所述诊断和预示为诊断、疗效评估或转移复发监控。 [0011] 2.胃癌或胃肠间质瘤标志物的捕获剂，所述标志物为半胱氨酸蛋白酶抑制剂S和癌胚抗原，所述半胱氨酸蛋白酶抑制剂S的氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示，所述癌胚抗原的氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示。 [0012] 优选的，所述捕获剂为识别半胱氨酸蛋白酶抑制剂S和癌胚抗原的特异性抗体。 [0013] 3.含有所述捕获剂的试剂盒。 [0014] 优选的，所述试剂盒为检测血清中半胱氨酸蛋白酶抑制剂S和癌胚抗原浓度的试剂盒。 [0015] 更优选的，所述试剂盒为酶联免疫检测试剂盒。 [0016] 优选的，所述试剂盒含有包被有单克隆抗体的固相载体、生物素标记的多克隆抗体和显色底物。 [0017] 最优选的，所述单克隆抗体为鼠抗人Cystatin S单克隆抗体，所述多克隆为兔抗人Cystatin S多克隆抗体，所述显色底物为四甲基联苯胺。 [0018] 4.利用所述试剂盒建立计算诊断和预示胃癌或胃肠间质瘤阈值的方法，用所述试剂盒检测半胱氨酸蛋白酶抑制剂S和癌胚抗原浓度，利用P=exp(-5.321-0.069*a+0.152*b)/[1+exp(-5.321-0.069*a+0.152*b)]计算胃癌阈值P或P=exp(-9.306-0.031*a+0.415*b)/[1+exp(-9.306-0.031*a+0.415*b)]计算胃肠间质瘤阈值P，当P大于或等于0.75时，为阳性；当P小于0.75时，为阴性； [0019] 其中a代表半胱氨酸蛋白酶抑制剂S浓度，单位为pg/mL，b代表癌胚抗原浓度，单位为ng/mL。 [0020] 本发明的有益效果：本发明公开了诊断和预示胃癌或胃肠间质瘤的新标志物，即将Cystatin S和CEA联合用于诊断和预示胃癌或胃肠间质瘤，利用上述两个标志物共同检测胃癌或胃肠间质瘤的灵敏度高和特异性均高于检测单一标志物，其中检测胃癌的灵敏度为80.7%，检测胃肠间质瘤的灵敏度为74.8%；检测胃癌的特异性为91.4%，检测胃肠间质瘤的灵敏度为81.9%；本发明还公开了胃癌或胃肠间质瘤标志物的捕获剂和含有该捕获剂的试剂盒，制成试剂盒具有使用方便，重复性好，便于携带等优点，能够用于胃癌或胃肠间质瘤的早期诊断、疗效评估或移转复发监控等，并且检测结果早于临床症状，为医生提前治疗和干预提供指导。附图说明 [0021] 为了使本发明的目的、技术方案和有益效果更加清楚，本发明提供如下附图进行说明： [0022] 图1为Cystatin S酶联免疫检测试剂盒检测Cystatin S蛋白的标准曲线。 [0023] 图2为CEA酶联免疫检测试剂盒检测CEA蛋白的标准曲线。 [0024] 图3为Cystatin S-CEA联合检测试剂盒检测胃癌ROC曲线。 [0025] 图4为Cystatin S和CEA联合检测试剂盒检测胃肠间质瘤ROC曲线。 具体实施方式[0026] 下面将结合附图，对本发明的优选实施例进行详细的描述。 [0027] 本发明使用的试剂如下：鼠抗人Cystatin S单克隆抗体购自美国R&D公司（货号为：MAB1285）；兔抗人Cystatin S多克隆抗体、Cystatin S蛋白标准品购自北京义翘神州生物技术有限公司。CEA单克隆抗体、CEA多克隆抗体，CEA蛋白标准品购自北京义翘神州生物技术有限公司（CEA单克隆抗体和CEA多克隆抗的货号分别为：11077-MM08和11077-MM07）。 [0028] 实施例1 建立Cystatin S血清检测反应体系及其优化 [0029] 用浓度为5μg/mL鼠抗人Cystatin S单克隆抗体包被ELISA板，于4℃条件下包被过夜，洗板；然后在质量分数为2%的BSA中室温封闭2小时，洗板；将浓度分别为0pg/mL，50pg/mL，100pg/mL，200pg/mL，400pg/mL，800pg/mL，1600pg/mL的Cystatin S蛋白标准品（编码Cystatin S蛋白的氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示）和血清样品加入封闭板中，于37℃反应1小时，洗板；然后用浓度为0.5μg/mL HRP标记的兔抗人Cystatin S多克隆抗体，在37℃条件下反应1小时，洗板；再与四甲基联苯胺（TMB）反应2-3分钟，最后用浓度为2M的硫酸终止反应，并于450nm条件下检测OD值（图1）。结果显示，Cystatin S线性范围为50pg/mL-1600pg/mL，在线性范围内标准品线性相关系数r≥0.990，回收率在90%～ 110%范围内。 [0030] 检测体系优化，比对分别由美国R&D，英国Abcam和美国NOVUS BIOLOGICALS 3个不同公司生产的Cystatin S单克隆抗体、美国R&D公司和北京义翘神州生物技术有限公司生产的Cystatin S蛋白标准品和R&D公司，英国Abcam和北京义翘神州生物技术有限公司生产的Cystatin S多克隆抗体。结果表明，Cystatin S单抗优选R&D公司提供的产品，最佳工作浓度为5μg/mL；Cystatin S蛋白标准品和Cystatin S多克隆抗体优选北京义翘神州生物技术有限公司产品，最佳工作浓度为0.5μg/mL，在最佳条件下，可实现背景OD值＜0.1，能够有效区分阴性组与阳性组，且具有统计学意义。 [0031] 固相载体的确定：对美国Corning、德国Greiner、美国Thermo和丹麦Nunc4个不同厂家生产的酶标板进行了比较，结果显示，美国corning公司（货号为：9018）和thermo（货号为：468667）公司的酶标板符合背景OD值＜0.1，且信噪比较高。 [0032] 包被液的选择：根据抗体包被于固相载体所需要的缓冲体系，ELISA常用包被液为缓冲盐溶液，分别用磷酸盐缓冲液（pH7.5）和碳酸盐缓冲液（pH9.6）检测包被环境对反应体系的影响，结果显示碳酸盐缓冲液（pH9.6）可满足空白组OD值＜0.1，有效区分空白组、阴性组和阳性组，信噪比较高。 [0033] 稀释剂的选择：通过实验对比了2种商品化稀释剂（分别购自天津博美科生物技术有限公司（货号BMKF017-1）；上海西唐生物科技有限公司（货号C0901））和自制稀释剂的稀释效果，主要从保护蛋白能力，自身稳定性两方面评价稀释剂的稀释效果。结果显示自制稀释剂的效果最佳，自制稀释剂各组分的终浓度如下：3mM EDTA、质量分数为0.5%的BSA、1×PBS、质量分数为0.05%的Tween-20和质量分数为0.02%的硫柳汞（pH6.0）。 [0034] 稳定剂的选择：使用3种稳定剂（具体如下：稳定剂Ⅰ：质量分数为3%的蔗糖，体积分数为8%的甘油和质量分数为1.3%的NaCl；稳定剂Ⅱ：质量分数为3%的蔗糖，体积分数为8%的甘油，质量分数为0.1%的EDTA和质量分数为1.3%的NaCl，稳定剂Ⅲ：体积分数为68.8%的PBS，体积分数为30%的胎牛血清和质量分数为0.2%的硫柳汞）分别稀释单克隆抗体、蛋白标准品和多克隆抗体至浓度为0.5mg/mL、0.16ng/mL和50μg/mL，使用时按体积比为1：100稀释。并于第0天、第7天和第14天进行检测OD值。结果显示，稳定剂Ⅲ效果最佳，具体组分为：体积分数为68.8%的PBS、体积分数为30%胎牛血清和质量分数为0.2%硫柳汞。 [0035] 通过以上研究确定了检测体系的主要组分，并建立Cystatin S血清检测试剂盒。 [0036] 实施例2 建立CEA血清检测体系及其优化 [0037] 用浓度为3μg/mL鼠抗人CEA单克隆抗体单克隆抗体包被ELISA板，包被条件是于4℃条件下包被过夜，洗板；然后在质量分数为2%的BSA中室温封闭2小时，洗板；将浓度分别为0pg/mL，39.0625pg/mL，78.125pg/mL，156.25pg/mL，312.5pg/mL，625pg/mL，1250pg/mL）的CEA蛋白标准品（编码CEA蛋白的氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示）和血清样品加入封闭板中，于37℃反应1小时，洗板；然后加入浓度为0.5μg/mL HRP标记的兔抗人CEA多克隆抗体，在37℃条件下反应1小时，洗板；再与四甲基联苯胺（TMB）反应2-3分钟，最后用浓度为2M的硫酸终止反应，并于450nm条件下检测OD值（图2）。结果显示，CEA线性范围为39.0625pg/mL-1250pg/mL，在线性范围内线性相关系数r≥0.990，回收率在90%～110%范围内。 [0038] 检测体系优化：比对美国R&D，英国Abcam和美国NOVUS BIOLOGICALS 3个不同公司生产的的CEA单克隆抗体、美国R&D，北京义翘神州生物技术有限公司生产的CEA蛋白标准品和美国R&D，英国Abcam和北京义翘神州生物技术有限公司生产的CEA多克隆抗体。结果表明，CEA单克隆抗体优选北京义翘神州生物技术有限公司提供的产品（货号为：11077-MM08），最佳工作浓度为3μg/mL；CEA蛋白标准品和CEA多克隆抗体优选北京义翘神州生物技术有限公司提供产品，CEA蛋白标准品的最佳工作浓度为1.6ng/mL，CEA多克隆抗体的最佳工作浓度为0.5μg/mL。在最佳条件下，可实现背景OD值＜0.1，能够有效区分阴性组与阳性组，且具有统计学意义。 [0039] 固相载体的确定：对美国Corning、德国Greiner、美国Thermo和丹麦Nunc 4个不同厂家生产的酶标板进行比较，实验结果显示，其中美国corning公司（货号为：9018）和thermo（货号为：468667）公司的酶标板符合背景OD值＜0.1，且信噪比较高。 [0040] 包被液的选择：根据抗体包被于固相载体所需要的缓冲体系，ELISA常用包被液为缓冲盐溶液，分别用磷酸盐缓冲液（pH7.5）和碳酸盐缓冲液（pH9.6）检测包被环境对反应体系的影响，结果显示碳酸盐缓冲液（pH9.6）可满足空白组OD值＜0.1，有效区分空白组、阴性组和阳性组，信噪比较高。 [0041] 稀释剂的选择：通过实验对比了2种商品化稀释剂（分别购自天津博美科生物技术有限公司（货号BMKF017-1）和上海西唐生物科技有限公司（货号C0901））和自制稀释剂的稀释效果，主要从保护蛋白能力，自身稳定性两方面评价稀释剂的稀释效果。结果显示稀释剂终浓度如下式效果最佳：3mM EDTA、质量分数为0.5%的BSA、1×PBS、质量分数为0.05%的Tween-20和质量分数为0.02%的硫柳汞（pH6.0）。 [0042] 稳定剂的选择：使用3种稳定剂（3种稳定剂具体如下：稳定剂Ⅰ：质量分数为3%的蔗糖，体积分数为8%的甘油和质量分数为1.3%的NaCl；稳定剂Ⅱ：质量分数为3%的蔗糖，体积分数为8%的甘油，质量分数为0.1%的EDTA和质量分数为1.3%的NaCl，稳定剂Ⅲ：体积分数为68.8%的PBS，体积分数为30%的胎牛血清和质量分数为0.2%的硫柳汞）分别稀释单克隆抗体、蛋白标准品和多克隆抗体至浓度为0.5mg/mL、0.16ng/mL和50μg/mL，使用时按体积比为1：100稀释。并于第0天、第7天和第14天进行检测。结果显示稳定剂Ⅲ效果最佳最佳组分为：其组分为：体积分数为68.8%的PBS、体积分数为30%的胎牛血清、质量分数为0.2%的硫柳汞。 [0043] 通过以上研究确定了检测体系的主要组分，并建立CEA血清检测试剂盒。 [0044] 实施例3 Cystatin S-CEA酶联免疫检测试剂盒 [0045] 根据实施例1和实施例2中建立Cystatin S和CEA血清检测体系构建Cystatin S-CEA酶联免疫检测试剂盒，具体组分如表1所示： [0046] 表1、Cystatin S-CEA酶联免疫检测试剂盒组分 [0047] [0048] [0049] 评价Cystatin S-CEA酶联免疫检测试剂盒：使用Cystatin S-CEA酶联免疫检测试剂盒对Cystatin S阳性质控品和阳性CEA质控品，在浓度为160pg/mL和80pg/mL水平分别重复检测10次，结果显示变异系数CV≤10%；用3个批号试剂盒检测同一样本，结果显示3个批号试剂盒的批间变异系数CV≤15%。并对试剂盒稳定性进行了研究，结果显示密封、4℃条件下能稳定保藏8个月，开封、4℃条件下能稳定性保藏2个月，在0-4℃条件下运输7天稳定性。因此，试剂盒稳定性好，符合产品预期效果。 [0050] 实施例4 Cystatin S-CEA联合检测试剂盒用于诊断和预示胃癌 [0051] （1）Cystatin S-CEA联合检测试剂盒诊断胃癌 [0052] 从上海肿瘤医院收集200例胃癌患者治疗前血清，同时从血站收集245例健康献血人员血清，每例血清1mL。使用Cystatin S-CEA联合检测试剂盒分别检测胃癌患者和健康人血清中Cystatin S与CEA浓度，并根据检测结果绘制受试者工作特征曲线（ROC曲线）（图3）。然后根据ROC曲线统计单独或联合检测Cystatin S和CEA标志物的曲线下面积、灵敏度和特异性（表2）。 [0053] 表2、Cystatin S与CEA联合诊断胃癌结果 [0054]标志物 曲线下面积 灵敏度 特异性 Cystatin S 0.821 63.5% 80.1% CEA 0.748 45.2% 72.3% Cystatin S+CEA 0.896 80.7% 91.4% [0055] [0056] 由表2所示，Cystatin S和CEA单独检测的曲线下面积分别为0.821和0.748，灵敏度分别为63.5%和45.2%，特异性分别为80.1%和72.3%；Cystatin S与CEA联合检测的曲线下面积为0.896，灵敏度为80.7%，特异性为91.4%。因此，使用Cystatin S-CEA联合检测试剂盒诊断胃癌的特异性更高，检测结果更可靠。 [0057] 然后根据检测结果，在特异性达到75%的情况下，应用Logistic回归统计方法Cystatin S和CEA联合检测的判断公式，具体为P=exp(-5.321-0.069*a+0.152*b)/[1+exp(-5.321-0.069*a+0.152*b)]（a=Cystatin S浓度，单位为pg/mL；b=CEA浓度，单位为ng/mL），P大于或等于0.75，为阳性；P小于0.75，为阴性。 [0058] 应用：利用Cystatin S-CEA联合检测试剂盒对100例疑似胃癌患者进行检测，然 后 根 据 P=exp(-5.321-0.069*a+0.152*b)/[1+exp(-5.321-0.069*a+0.152*b)]（a=Cystatin S浓度，单位为pg/mL；b=CEA浓度，单位为ng/mL）计算P值。结果显示，100例被检样本中，36例患者P值大于0.75，为胃癌患者；64例患者P值小于0.75，为非胃癌患者，与临床诊断结果一致。 [0059] （2）Cystatin S-CEA联合检测试剂盒用于评估胃癌疗效 [0060] 从上海肿瘤医院取10例胃癌患者治疗前血清，检测血清中Cystatin S和CEA浓度，治疗结束后再采集患者血清，检测血清中Cystatin S和CEA浓度。根据Cystatin S和CEA浓度，利用公式P=exp(-5.321-0.069*a+0.152*b)/[1+exp(-5.321-0.069*a+0.152*b)]（a=Cystatin S浓度，单位为pg/mL；b=CEA浓度，单位为ng/mL）计算P值，然后根据治疗前后P值变化评估胃癌疗效，判断标准为：P值与治疗前相比下降小于30%，判断为治疗无效；P值与治疗前相比下降大于或等于30%，判断为病情改善；P值与治疗前相比下降大于或等于70%，判断为治疗效果显著，其评估结果如表3所示。同时，医生根据临床症状评价胃癌疗效，结果如表3所示。 [0061] 表3、Cystatin S-CEA联合检测试剂盒评估胃癌疗效结果 [0062]患者编号 治疗前后浓度变化百分比 临床评价 1 下降23% 无效 2 升高11.5% 无效 3 降低76% 无效 4 降低46% 改善 5 升高14.6% 无效 6 降低20% 无效 7 降低43% 改善 8 降低91.5% 有效 9 降低24% 无效 10 降低49% 改善 [0063] 由表3可知，试剂盒评估结果是10例胃癌患者中，其中1例患者治疗有效，3例患者治疗后病情得到改善，其余6例患者治疗无效，与临床判断结果相比符合率达90%。 [0064] （3）Cystatin S-CEA联合检测试剂盒用于监控胃癌转移复发 [0065] 对6例疗程结束后的胃癌早期患者进行跟踪随访，治疗后6周首次采集患者血清，并检测血清中Cystatin S和CEA浓度，以后每三个月检测一次，跟踪九个月，共检测四次。根据检测结果，利用公式P=exp(-5.321-0.069*a+0.152*b)/[1+exp(-5.321-0.069*a+0.152*b)]（a=Cystatin S浓度，单位为pg/mL；b=CEA浓度，单位为ng/mL）计算P值，当P大于或等于0.75时，为转移复发；当P小于0.75时，表明未发生转移复发，为无进展生存，其结果如表4所示。9个月时，医生根据临床症状判断是否发生转移复发，结果如表4所示。 [0066] 表4、Cystatin S-CEA联合检测试剂盒监控胃癌移转复发结果 [0067]患者编号 6周 3个月 6个月 9个月 临床评价 1 0.54 0.43 0.73 0.84 转移复发 2 0.41 0.52 0.53 0.44 无进展生存 3 0.55 0.41 0.33 0.39 无进展生存 4 0.62 0.58 0.47 0.42 无进展生存 5 0.52 0.54 0.54 0.53 无进展生存 6 0.57 0.64 0.73 0.82 转移复发 [0068] 由表4可知，试剂盒检测结果是6例胃癌患者中有2例出现转移复发，其余4例未发生转移复发，即无进展生存，与临床评价结果一致。并且使用Cystatin S-CEA联合检测试剂盒监控移转复发结果早于临床症状和体征发现，为医生提前进行干预提供指导。 [0069] 综上所述，Cystatin S和CEA可以作为诊断和预示胃癌的标志物，同时检测2个标志物的灵敏度和特异性高于检测单一标志物，能够提高诊断的准确性。 [0070] 实施例4 Cystatin S-CEA联合检测试剂盒用于诊断和预示胃肠间质瘤[0071] （1）Cystatin S-CEA联合检测试剂盒诊断胃肠间质瘤 [0072] 从上海肿瘤医院收集200例胃肠间质瘤患者治疗前血清，同时从血站收集245例健康献血人员血清，每例血1mL。使用Cystatin S-CEA联合检测试剂盒分别检测胃肠间质瘤和健康人血清中Cystatin S与CEA浓度，然后根据检测结果绘制ROC曲线（图4）。再根据ROC曲线获得单独或联合检测Cystatin S和CEA的曲线下面积、灵敏度和特异性（表5）。 [0073] 表5、Cystatin S与CEA联合诊断胃肠间质瘤结果 [0074]标志物 曲线下面积 灵敏度 特异性 Cystatin S 0.738 59.3% 78.5% CEA 0.569 40.3% 65.8% Cystatin S+CEA 0.838 74.8% 81.9% [0075] 由表5可知，Cystatin S单独检测的曲线下面积为0.738，灵敏度为59.3%，特异性为78.5%；单独检测CEA的曲线下面积为0.569，灵敏度为40.3%，特异性为65.8%；而联合检测Cystatin S和CEA的曲线下面积为0.838，灵敏度为74.8%，特异性为81.9%。因此，使用Cystatin S和CEA联合检测试剂盒诊断胃肠间质瘤的灵敏度更高。 [0076] 根 据Cystatin S和 CEA浓 度，在 特 异 性 达 到 75%的 情 况 下，应 用Logistic回归统计方法得出Cystatin S和CEA联合检测的判断公式，具体为P=exp(-9.306-0.031*a+0.415*b)/[1+exp(-9.306-0.031*a+0.415*b)]（a=Cystatin S浓度，单位为pg/mL；b=CEA浓度，单位为ng/mL），当P大于或等于0.75时，为阳性；当P小于0.75时，为阴性。 [0077] 应用：利用Cystatin S-CEA联合检测试剂盒对100例疑似胃肠间质瘤患者进行检测，然后根据P=exp(-9.306-0.031*a+0.415*b)/[1+exp(-9.306-0.031*a+0.415*b)]（a=Cystatin S浓度，单位为pg/mL；b=CEA浓度，单位为ng/mL）计算P值。结果显示，100例被检患者中，15例P值大于0.75，为胃肠间质瘤患者；85例P值小于0.75，为非胃肠间质瘤患者，与临床诊断结果一致。 [0078] （2）Cystatin S-CEA联合检测试剂盒评估胃肠间质瘤治疗效果 [0079] 从上海肿瘤医院取10例胃肠间质瘤患者治疗前血清，检测血清中Cystatin S和CEA浓度，疗程结束后再采集患者血清，检测血清中Cystatin S和CEA浓度。然后利用公式P=exp(-9.306-0.031*a+0.415*b)/[1+exp(-9.306-0.031*a+0.415*b)]（a=Cystatin S浓度，单位为pg/mL；b=CEA浓度，单位为ng/mL）计算P值，根据P值变化评估治疗效果。判断标准为：P值与治疗前相比下降小于30%，判断为治疗无效；P值与治疗前相比下降大于30%，判断为病情改善；P值与治疗前相比下降大于70%，判断为治疗效果显著，结果如表6所示。同时，医生根据临床症状评价胃肠间质瘤治疗效果，结果如表6所示。 [0080] 表6、Cystatin S-CEA联合检测试剂盒评估胃肠间质瘤疗效结果 [0081]患者编号 治疗前后浓度变化百分比 临床评价 1 升高8% 无效 2 降低36.8% 改善 3 降低41.6% 改善 4 降低85.6% 有效 5 升高16% 无效 6 降低49% 改善 7 升高14.8% 无效 8 降低78.6% 无效 9 降低24% 无效 10 升高9.5% 无效 [0082] 由表6可知，试剂盒检测结果是10例胃肠间质瘤患者中，其中2例患者治疗有效，3例治疗后病情得到改善，其余5例治疗无效果，其中有9例与临床评价一致。因此使用Cystatin S-CEA联合检测试剂盒与临床评价的符合率达90%。 [0083] （3）Cystatin S-CEA联合检测试剂盒监控胃肠间质瘤移转复发 [0084] 对上海肿瘤医院的6例疗程结束的早期胃肠间质瘤患进行跟踪随访，治疗后六周首次采集患者血清，检测血清中Cystatin S和CEA浓度，以后每三个月检测一次，跟踪九个月，共检测四次。将检测所得Cystatin S和CEA浓度利用公式为P=exp(-9.306-0.031*a+0.415*b)/[1+exp(-9.306-0.031*a+0.415*b)]（a=Cystatin S浓度，单位为pg/mL；b=CEA浓度，单位为ng/mL）计算其P值，当P大于或等于0.75时，为转移复发；当P小于0.75时，表明未发生转移复发，为无进展生存，结果如表7所示。9个月时，医生根据临床症状评价胃肠间质瘤的转移复发，结果如表7所示。 [0085] 表7、Cystatin S-CEA联合检测试剂盒监控胃肠间质瘤移转复发结果[0086]患者编号 6周 3个月 6个月 9个月 临床评价 1 0.57 0.46 0.55 0.54 无进展生存 2 0.65 0.54 0.43 0.42 无进展生存 3 0.55 0.63 0.77 0.88 转移复发 4 0.45 0.44 0.38 0.21 无进展生存 5 0.37 0.46 0.75 0.84 转移复发 6 0.49 0.58 0.57 0.56 无进展生存 [0087] 由表7所示，6例胃肠间质瘤患者中，有2例治疗后出现移转复发，其余4例未发生转移复发，为无进展生存，与临床评价结果一致。并且使用Cystatin S-CEA联合检测试剂盒监控胃肠间质瘤结果早于临床症状和体征发现，为医生提前进行干预提供指导。 [0088] 综上所述，Cystatin S和CEA可以作为诊断和预示胃肠间质瘤的标志物，同时检测2个标志物的灵敏度和特异性高于检测单一标志物，能够提高诊断的准确性。 [0089] 最后说明的是，以上优选实施例仅用以说明本发明的技术方案而非限制，尽管通过上述优选实施例已经对本发明进行了详细的描述，但本领域技术人员应当理解，可以在形式上和细节上对其作出各种各样的改变，而不偏离本发明权利要求书所限定的范围。 |
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