产生脂质的方法

阅读:82发布:2021-09-19

专利汇可以提供产生脂质的方法专利检索,专利查询,专利分析的服务。并且本 发明 涉及产生脂质的方法。具体而言,本发明涉及提高营养性 植物 部分或者转基因 生物 体或其部分中一或多种非极性脂质和/或总非极性脂质含量 水 平的方法。,下面是产生脂质的方法专利的具体信息内容。

1.用于产生经提取的脂质的方法,所述方法包括步骤:
i)获得非人生物体或其部分,所述非人生物体或其部分包含一或多种外源多核苷酸以及分别相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应非人生物体或其部分而言升高平的一或多种非极性脂质,
ii)从所述非人生物体或其部分提取脂质,和
iii)回收所提取的脂质,
由此产生所述经提取的脂质,其中所述一或多种外源多核苷酸的每种可操纵地连接至启动子,所述启动子能够在非人生物体或其部分中引导所述多核苷酸的表达,并且其中适用下列特征中的一种或多种或全部:
(a)所述一或多种外源多核苷酸包含第一外源多核苷酸和第二外源多核苷酸,所述第一外源多核苷酸编码提高非人生物体或其部分中一或多种糖分解或脂肪酸生物合成基因表达的RNA或转录因子多肽,所述第二外源多核苷酸编码涉及一或多种非极性脂质的生物合成的RNA或多肽,
(b)如果所述非人生物体是植物,该植物的营养性部分具有至少约3%,更优选至少约
5%、优选至少约7%、更优选至少约10%、更优选至少约11%、更优选至少约12%、更优选至少约13%、更优选至少约14%、或者更优选至少约15%(w/w干重)的总非极性脂质含量,(c)所述非人生物体是选自以下的藻类:藻(硅藻类),绿藻(绿藻类),蓝绿藻(蓝藻类),金褐藻(金藻类),定鞭藻类,褐藻类和异鞭毛藻类,
(d)所述一或多种非极性脂质包含脂肪酸,所述脂肪酸包含羟基、环基、环丙烷基、碳双键、碳碳三键、共轭双键、支链如甲基化的或羟基化的支链,或者其两种或更多种的组合,
(e)与缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应非人生物体或其部分中的非极性脂质相比,所述非极性脂质中的总脂肪酸含量多包含至少2%的油酸和/或少包含至少2%的棕榈酸,
(f)相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应非人生物体或其部分中的非极性脂质而言,所述非极性脂质包含改变水平的总固醇,优选游离的(非酯化的)固醇、固醇酯、固醇糖苷,
(g)所述非极性脂质包含蜡和/或蜡酯,和
(h)所述非人生物体或其部分分别是至少约1000个提取出所述脂质的此类非人生物体或其部分所汇集的群体或集合的一员。
2.权利要求1的方法,其中所述一或多种外源多核苷酸包含第一外源多核苷酸和第二外源多核苷酸,并且其中适用所述特征(b)至(h)中的一种或多种或全部。
3.权利要求1或2的方法,其中
(i)所述非人生物体是植物、藻类、或者适宜于发酵的生物体如真菌,或者(ii)所述非人生物体的部分是植物的种子、果实、或营养性部分。
4.权利要求3的方法,其中所述部分是植物种子并且所提取的脂质是种子油。
5.根据权利要求1至4任一项的方法,其中所述植物是选自以下的物种或者所述所述营养性植物部分来自选自以下的物种:刺干椰(Acrocomia aculeata)、拟南芥(Arabidopsis thaliana)、花生(Aracinis hypogaea)、木鲁星果棕(Astrocaryum murumuru)、Astrocaryum vulgare(tucuma)、Attalea geraensis(Indaia-rateiro)、Attalea humilis(美洲油棕)、Attalea oleifera(andaia)、Attalea phalerata(uricuri)、Attalea speciosa(babassu)、燕麦(Avena sativa)、甜菜(Beta vulgaris)、芸苔类(Brassica sp.)如Brassica carinata、Brassica juncea、Brassica napobrassica、欧洲油菜(Brassica napus)、亚麻荠(Camelina sativa)、大麻(Cannabis sativa)、红花(Carthamus tinctorius)、Caryocar brasiliense(pequi)、椰子(Cocos nucifera)、海甘蓝(Crambe abyssinica)、甜瓜(Cucumis melo)、油棕(Elaeis guineensis,非洲棕榈)、大豆(Glycine max)、陆地(Gossypium hirsutum,棉花)、向日葵类(Helianthus sp.)如向日葵(Helianthus annuus)、大麦(Hordeum vulgare)、麻树(Jatropha curcas)、Joannesia princeps(arara nut-tree)、浮萍类(Lemna sp.)如青萍(Lemna aequinoctialis)、Lemna disperma、Lemna ecuadoriensis、膨胀浮萍(Lemna gibba)、日本浮萍(Lemna japonica)、浮萍(Lemna  minor)、单脉萍(Lemna minuta)、Lemna obscura、稀脉萍(Lemna paucicostata)、稀脉浮萍(Lemna perpusilla)、Lemna tenera、吕藻(Lemna trisulca)、鳞根萍(Lemna trisulca)、Lemna valdiviana、Lemna yungensis、奥蒂树(Licania rigida)、亚麻(Linum usitatissimum)、羽扇豆(Lupinus angustifolius)、曲叶矛榈(Mauritia flexuosa)、摩帝椰子(Maximiliana maripa)、芒草类(Miscanthus sp.)如异源三倍体芒草奇岗(Miscanthus x giganteus)和中国芒(Miscanthus sinensis),烟草类(Nicotiana sp.)如红花烟草(Nicotiana tabacum)或本氏烟草(Nicotiana benthamiana)、巴卡巴酒实棕(Oenocarpus bacaba)、巴套阿酒实棕(Oenocarpus bataua)、Oenocarpus distichus(bacaba-de-leque),稻类(Oryza sp.)如水稻(Oryza sativa)和光稃稻(Oryza glaberrima)、柳枝稷(Panicum virgatum)、Paraqueiba paraensis(mari)、鳄梨(Persea amencana)、水黄皮(Pongamia pinnata,印度山毛榉)、毛果杨(Populus trichocarpa)、蓖麻(Ricinus communis),蔗类(Saccharum sp.,甘蔗)、芝麻(Sesamum indicum)、铃薯(Solanum tuberosum)、高粱类(Sorghum sp.)如两色高粱(Sorghum bicolor)、高粱(Sorghum vulgare)、大花可可(Theobroma grandiforum)、三叶草类(Trifolium sp.)、巴西针棕(Trithrinax brasiliensis)、麦类(Triticum sp.)如小麦(Triticum aestivum)和玉米(Zea mays)。
6.用于产生经提取的油菜油的方法,所述方法包括步骤:
i)获得基于重量包含至少45%种子油的油菜种子,
ii)从所述油菜种子提取油,并
iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少90%(w/w)的三酰基甘油(TAG),由此产生所述油菜油。
7.用于产生经提取的玉米种子油的方法,所述方法包括步骤:
i)获得基于重量包含至少5%种子油的玉米种子,
ii)从所述玉米种子提取油,并
iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少90%(w/w)的三酰基甘油(TAG),由此产生所述玉米种子油。
8.用于产生经提取的大豆油的方法,所述方法包括步骤:
i)获得基于重量包含至少20%种子油的大豆种子,
ii)从所述大豆种子提取油,并
iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少90%(w/w)的三酰基甘油(TAG),由此生产所述大豆油。
9.用于产生经提取的羽扇豆种子油的方法,所述方法包括步骤:
i)获得基于重量包含至少10%种子油的羽扇豆种子,
ii)从所述羽扇豆种子提取油,并
iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少90%(w/w)的三酰基甘油(TAG),由此产生所述羽扇豆种子油。
10.用于产生经提取的花生油的方法,所述方法包括步骤:
i)获得基于重量包含至少50%种子油的花生种子,
ii)从所述花生提取油,并
iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少90%(w/w)的三酰基甘油(TAG),由此产生所述花生油。
11.用于产生经提取的向日葵油的方法,所述方法包括步骤:
i)获得基于重量包含至少50%种子油的向日葵种子,
ii)从所述向日葵种子提取油,并
iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少90%(w/w)的三酰基甘油(TAG),由此产生所述向日葵油。
12.用于产生经提取的棉花种子油的方法,所述方法包括步骤:
i)获得基于重量包含至少41%种子油的棉花种子,
ii)从所述棉花种子提取油,并
iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少90%(w/w)的三酰基甘油(TAG),由此产生所述棉花种子油。
13.用于产生经提取的红花油的方法,所述方法包括步骤:
i)获得基于重量包含至少35%种子油的红花种子,
ii)从所述红花种子提取油,并
iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少90%(w/w)的三酰基甘油(TAG),由此产生所述红花油。
14.用于产生经提取的亚麻种子油的方法,所述方法包括步骤:
i)获得基于重量包含至少36%种子油的亚麻种子,
ii)从所述亚麻种子提取油,并
iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少90%(w/w)的三酰基甘油(TAG),由此产生所述亚麻种子油。
15.用于产生提取的亚麻荠油的方法,所述方法包括步骤:
i)获得基于重量包含至少36%种子油的亚麻荠种子,
ii)从所述亚麻荠种子提取油,并
iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少90%(w/w)的三酰基甘油(TAG),由此产生所述亚麻荠油。
16.根据权利要求1至15任一项的方法,其包括以下的一或多种:干燥,辗压,压榨破碎研磨所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子,和/或纯化所提取的脂质或种子油。
17.根据权利要求1至3任一项的方法,其中包含所述一或多种外源多核苷酸的所述非人生物体是产油真菌如产油酵母
18.根据权利要求1至17任一项的方法,其在所述提取过程中使用有机溶剂以提取所述油。
19.根据权利要求1至18任一项的方法,其包括通过将所提取的脂质或油收集在容器中而回收所提取的脂质或油和/或包括以下的一种或多种:对所提取的脂质或油脱胶、除臭、脱色、干燥、分馏,从所提取的脂质或油去除至少一些蜡和/或蜡酯,或分析所提取的脂质或油的脂肪酸组成。
20.根据权利要求1至19任一项的方法,其中所提取的脂质或油的体积为至少1升。
21.根据权利要求1至20任一项的方法,其中适用以下特征的一种或多种或全部:
(i)所提取的脂质或油包含三酰基甘油,其中所述三酰基甘油占所提取的脂质或油的至少90%、优选至少95%或96%,
(ii)所提取的脂质或油包含游离固醇、固醇酯、固醇糖苷、蜡或蜡酯、或者其任意组合,和
(iii)所提取的脂质或油中的总固醇含量和/或组成与从相应非人生物体或其部分、或种子所产生的经提取的脂质或油中的固醇含量和/或组成有显著不同。
22.根据权利要求1至21任一项的方法,其中所述方法还包括将所提取的脂质或油转化成工业产品。
23.产生工业产品的方法,所述方法包括以下步骤:
i)获取具有至少约3%,优选至少约5%或至少约7%(w/w干重)的总非极性脂质含量的营养性植物部分,
ii)通过在所述营养性植物部分中原位对所述脂质应用热、化学、或酶促手段,或者其任意组合,将所述营养性植物部分中的至少一些所述脂质转化为工业产品,和iii)回收所述工业产品,
由此产生所述工业产品。
24.产生工业产品的方法,所述方法包括以下步骤:
i)获取具有至少约3%,优选至少约5%或至少约7%(w/w干重)的总非极性脂质含量的营养性植物部分,
ii)物理加工步骤i)的营养性植物部分,
iii)通过在所述经加工的营养性植物部分中原位对所述脂质应用热、化学、或酶促手段,或者其任意组合,将所述经加工的营养性植物部分中的至少一些所述脂质转化为工业产品,和
iv)回收所述工业产品,
由此产生所述工业产品。
25.产生工业产品的方法,所述方法包括以下步骤:
i)获得包含一或多种外源多核苷酸的非人生物体或其部分,其中所述一或多种外源多核苷酸的每种均可操纵地连接至启动子,所述启动子能够在非人生物体或其部分中引导所述多核苷酸的表达,并且其中所述非人生物体或其部分相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应非人生物体或其部分而言,具有升高水平的一或多种非极性脂质,和ii)通过在所述非人生物体或其部分中原位对所述脂质应用热、化学、或酶促手段,或者其任意组合,将所述非人生物体或其部分中的至少一些所述脂质转化为工业产品,和iii)回收所述工业产品,
由此产生所述工业产品。
26.产生工业产品的方法,所述方法包括以下步骤:
i)获得包含一或多种外源多核苷酸的非人生物体或其部分,其中所述非人生物体或其部分相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应非人生物体或其部分而言,具有升高水平的一或多种非极性脂质,
ii)物理加工步骤i)的非人生物体或其部分,
iii)通过在所述经加工的非人生物体或其部分中原位对所述脂质应用热、化学、或酶促手段,或者其任意组合,将所述经加工的非人生物体或其部分中的至少一些所述脂质转化为工业产品,和
iv)回收所述工业产品,
由此产生所述工业产品。
27.权利要求24或权利要求26的方法,其中物理加工所述营养性植物部分、或所述非人生物体或其部分的步骤包括以下的一种或多种:辗压、压榨、破碎或研磨所述营养性植物部分、或非人生物体或其部分。
28.权利要求23至27任一项的方法,还包括步骤:
(a)提取所述营养性植物部分或者所述非人生物体或其部分的非极性脂质含量中的至少一些作为非极性脂质,和
(b)回收所提取的非极性脂质,
其中步骤(a)和(b)在将所述营养性植物部分、或所述非人生物体或其部分中的至少一些所述脂质转化为工业产品的步骤之前进行。
29.根据权利要求1至22或28任一项的方法,其中所提取的非极性脂质包含三酰基甘油,其中所述三酰基甘油包含所提取的脂质的至少90%、优选至少95%。
30.根据权利要求22至29任一项的方法,其中所述工业产品是产品如脂肪酸酯,优选脂肪酸甲基酯和/或脂肪酸乙基酯,烷烃如甲烷、乙烷或更长链的烷烃,更长链的烷烃的混合物,烯烃,生物燃料一氧化碳和/或氢气,生物醇如乙醇、丙醇或丁醇,生物炭,或者一氧化碳、氢和生物炭的组合。
31.权利要求1至30任一项的方法,其中所述营养性植物部分或所述非人生物体的部分是气生植物部分或绿色植物部分如植物叶或茎。
32.权利要求1至31任一项的方法,还包括收获所述营养性植物部分、非人生物体或其部分的步骤,优选使用机械收割机,或者通过包括过滤、离心、沉降、浮选或如通过调节培养基的pH絮凝藻类或真菌的方法。
33.权利要求1至32任一项的方法,其中适用以下特征的一种或多种或全部:
(i)所述营养性植物部分、非人生物体或其部分中一或多种非极性脂质的水平,比缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分中的水平以重量计分别高至少0.5%,
(ii)所述营养性植物部分、非人生物体或其部分中一或多种非极性脂质的水平,比缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分中以相对计分别高至少1%,
(iii)所述营养性植物部分、非人生物体或其部分中总非极性脂质含量,比缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分中的水平以重量计分别高至少0.5%,
(iv)所述营养性植物部分、非人生物体或其部分中总非极性脂质含量,比缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分中以相对计分别高至少
1%,
(v)所述营养性植物部分、非人生物体或其部分中一或多种非极性脂质的水平和/或总非极性脂质含量,比缺乏所述一或多种外源多核苷酸和包含编码拟南芥DGAT1的外源多核苷酸的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分以重量计分别高至少0.5%和/或以相对计分别高至少1%,
(vi)所述营养性植物部分、非人生物体或其部分的脂质中、和/或从所述营养性植物部分、非人生物体或其部分所提取的脂质中的TAG、DAG、TAG和DAG、或MAG含量,比缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分的脂质中、或从缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分所提取的相应脂质中的TAG、DAG、TAG和DAG、或MAG含量以相对计分别高至少10%,以及
(vii)所述营养性植物部分、非人生物体或其部分的脂质中、和/或从所述营养性植物部分、非人生物体或其部分所提取的脂质中的总多不饱和脂肪酸(PUFA)含量,相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分的脂质中、或从缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分所提取的相应脂质中的总PUFA含量而言,分别被提高或者被降低。
34.权利要求1至33任一项的方法,其中所述营养性植物部分、非人生物体或其部分和/或从所述营养性植物部分、非人生物体或其部分所提取的脂质中的PUFA水平,相对于相应营养性植物部分、非人生物体或其部分、或者从所述相应营养性植物部分、非人生物体或其部分所提取的相应脂质中的PUFA水平而言,分别被提高被降低,其中所述多不饱和脂肪酸是二十碳二烯酸、花生四烯酸(ARA)、α-亚麻酸(ALA)、十八碳四烯酸(SDA)、二十碳三烯酸(ETE)、二十碳四烯酸(ETA)、二十碳五烯酸(EPA)、二十二碳五烯酸(DPA)、二十二碳六烯酸(DHA)、或者其任意两种或更多种的组合。
35.根据权利要求1至34任一项的方法,其中所述相应营养性植物部分、非人生物体或其部分分别是非转基因营养性植物部分、非人生物体或其部分。
36.权利要求1至35任一项的方法,其中适用下列特征的一种或多种或全部:
(i)油酸占所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中非极性脂质或油里的总脂肪酸含量的至少20%(mol%)、至少22%(mol%)、至少30%(mol%)、至少40%(mol%)、至少50%(mol%)、或至少60%(mo1%)、优选至少65%(mol%)或至少66%(mol%),
ii)油酸占所提取的脂质或油中的总脂肪酸含量的至少20%(mol%)、至少22%(mol%)、至少30%(mol%)、至少40%(mol%)、至少50%(mol%)、或至少60%(mol%)、优选至少65%(mol%)或至少66%(mol%),
(iii)所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或者种子中的非极性脂质或油包含脂肪酸,所述脂肪酸包含羟基,环氧基、环丙烷基、碳碳双键、碳碳三键、共轭双键、支链如甲基化的或羟基化的支链,或者其两种或更多种的组合,或者前述基团、键或支链的任意两种、三种、四种、五种或六种,和
(iv)所提取的脂质或油包含脂肪酸,所述脂肪酸包含羟基,环氧基、环丙烷基、碳碳双键、碳碳三键、共轭双键、支链如甲基化的或羟基化的支链,或者其两种或更多种的组合。
37.权利要求1至36任一项的方法,其中所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或者种子中的和/或所提取的脂质或油中的脂质水平能够通过使用从所提取的脂质或油制备的脂肪酸甲基酯的气相色谱的分析来确定。
38.权利要求1至37任一项的方法,其中所述方法还包括从植物收获所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或者种子。
39.根据权利要求1至38任一项的方法,其中所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含第一外源多核苷酸和第二外源多核苷酸,所述第一外源多核苷酸编码分别提高营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中一或多种糖分解或脂肪酸生物合成基因表达的RNA或转录因子多肽,所述第二外源多核苷酸编码涉及一或多种非极性脂质的生物合成的RNA或多肽,其中所述第一和第二外源多核苷酸各自可操纵地连接至启动子,所述启动子能够在营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中分别引导所述多核苷酸的表达。
40.权利要求39的方法,其中所述第一外源多核苷酸编码Wrinkled 1(WRI1)转录因子、Leafy Cotyledon 1(Lecl)转录因子、Leafy Cotyledon 2(LEC2)转录因子、Fus3转录因子、ABI3转录因子、Dof4转录因子、BABY BOOM (BBM)转录因子、或Dof 11转录因子。
41.权利要求39或40的方法,其中所述第二外源多核苷酸编码具有单酰基甘油酰基转移酶(MGAT)活性和/或二酰基甘油酰基转移酶(DGAT)活性、或者甘油-3-磷酸酰基转移酶(GPAT)活性的多肽。
42.根据权利要求39至41任一项的方法,其中所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子进一步包含第三种、或更多种外源多核苷酸,所述第三种、或更多种外源多核苷酸编码以下的一种或多种或任意组合
i)提高非人生物体或其部分中一或多种糖分解或脂肪酸生物合成基因的表达的另外的RNA或转录因子多肽,
ii)涉及一或多种非极性脂质的生物合成的另外的RNA或多肽,
iii)稳定所述一或多种非极性脂质的多肽,优选油体蛋白,如聚油体蛋白或油体蛋白,更优选聚油体蛋白,
iv)抑制基因表达的RNA分子,所述基因编码涉及淀粉生物合成的多肽,如AGPase多肽,v)抑制基因表达的RNA分子,所述基因编码涉及脂质降解的多肽和/或降低脂质含量的多肽,如脂肪酶如CGi58多肽,或
vi)沉默抑制子多肽,
其中所述第三种或更多种外源多核苷酸可操纵地连接至启动子,所述启动子能够在营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子中分别引导所述多核苷酸的表达。
43.权利要求42的方法,其中所述第三种多核苷酸编码油体蛋白,如聚油体蛋白或油体钙蛋白。
44.根据权利要求1至43任一项的方法,其中所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含一或多种外源多核苷酸,所述外源多核苷酸编码:
i)Wrinkled l(WRI1)转录因子和DGAT,
ii)WRI1转录因子和DGAT和油体蛋白,
iii)WRI1转录因子、DGAT、MGAT和油体蛋白,
iv)单酰基甘油酰基转移酶(MGAT),
v)二酰基甘油酰基转移酶2(DGAT2),
vi)MGAT和甘油-3-磷酸酰基转移酶(GPAT),
vii)MGAT和DGAT,
viii)MGAT、GPAT和DGAT,
ix)WRI1转录因子和MGAT,
x)WRI1转录因子、DGAT和MGAT,
xi)WRI1转录因子、DGAT、MGAT、油体蛋白和GPAT,
xii)DGAT和油体蛋白,或
xiii)MGAT和油体蛋白,和
xiv)任选地,沉默抑制子多肽,
其中所述一或多种外源多核苷酸的每种均可操纵地连接至启动子,所述启动子能够在营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中分别引导所述多核苷酸的表达。
45.根据权利要求41至44任一项的方法,其中
(i)所述GPAT也具有磷酸酶活性以产生MAG,如具有拟南芥GPAT4或GPAT6的基酸序列的多肽,和/或
(ii)所述DGAT是DGAT1或DGAT2,和/或
(iii)所述MGAT是MGAT1或MGAT2。
46.根据权利要求41至44任一项的方法,其中所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含:
i)编码WRI1的第一外源多核苷酸和编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸,ii)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、和编码油体蛋白的第三外源多核苷酸,
iii)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码MGAT优选MGAT2的第四外源多核苷酸,iv)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第四外源多核苷酸,
v)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码MGAT优选MGAT2的第四外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第五外源多核苷酸,
vi)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的第四外源多核苷酸,
vii)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的第四外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第五外源多核苷酸,
viii)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的第四外源多核苷酸、和编码MGAT优选MGAT2的第五外源多核苷酸,
ix)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的第四外源多核苷酸、编码MGAT优选MGAT2的第五外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第六外源多核苷酸。
47.权利要求46的方法,其中适用以下特征的一或多种
i)所述编码DGAT和油体蛋白的外源多核苷酸可操纵地连接至组成型启动子、或者至少在开花前和直至开花时在植物的绿色组织中有活性的启动子,其能够引导所述多核苷酸在所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中的表达,
ii)所述编码WRI1、和抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的外源多核苷酸,可操纵地连接至组成型启动子、至少在开花前和直至开花时在植物的绿色组织中有活性的启动子、或可诱导启动子,其能够引导所述多核苷酸在所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中的表达,和
iii)编码LEC2、BBM和/或MGAT2的外源多核苷酸可操纵地连接至可诱导启动子,所述可诱导启动子能够引导所述多核苷酸在所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中的表达。
48.根据权利要求1至47任一项的方法,其中所述营养性植物部分包含至少约7%、更优选至少约10%、更优选至少约11%、更优选至少约12%、更优选至少约13%、更优选至少约
14%、或者更优选至少约15%(w/w干重)的总非极性脂质含量。
49.根据权利要求1至48任一项的方法,其中所述营养性植物部分包含至少约7%、更优选至少约10%、更优选至少约11%、更优选至少约12%、更优选至少约13%、更优选至少约
14%、更优选至少约15%、或者更优选至少约17%(w/w干重)的TAG含量。
50.根据权利要求1至49任一项的方法,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子,优选所述营养性植物部分,包含编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码MGAT、优选MGAT2的第三外源多核苷酸、和编码油体蛋白的第四外源多核苷酸,其中所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子具有下列特征的一或多种或全部:
i)至少8%、至少10%、至少12%、至少14%、或至少15.5%(干重或种子重量的%重量)的总脂质含量,
ii)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,所述营养性植物部分或非人生物体中的总脂质含量高至少3倍、至少5倍、至少7倍、至少8倍、或至少10倍,
iii)至少5%、至少6%、至少6.5%或者至少7%(干重或种子重量的%重量)的总TAG含量,
iv)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,总TAG含量高至少40倍、至少50倍、至少60倍、或至少70倍、或至少100倍,
v)油酸占TAG中的脂肪酸的至少15%、至少19%或者至少22%(%重量),
vi)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,TAG中的油酸水平高至少10倍、至少15倍或至少17倍,
vii)棕榈酸占TAG中的脂肪酸的至少20%、至少25%、至少30%或者至少33%(%重量),
viii)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,TAG中的棕榈酸水平高至少1.5倍,
ix)亚油酸占TAG中的脂肪酸的至少22%、至少25%、至少30%或者至少34%(%重量),x)α-亚麻酸占TAG中的脂肪酸的低于20%、低于15%、低于11%或低于8%(%重量),和xi)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,TAG中的α-亚麻酸水平低至少5倍、或至少8倍。
51.根据权利要求1至49任一项的方法,其中所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、种子,优选营养性植物部分,包含编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸,其中所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子具有下列特征的一或多种或全部:
i)至少10%、至少12.5%、至少15%或者至少17%(干重或种子重量的%重量)的总TAG含量,
ii)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,所述营养性植物部分或非人生物体中的总TAG含量高至少40倍、至少50倍、至少60倍、或至少70倍、或至少100倍,
iii)油酸占TAG中的脂肪酸的至少19%、至少22%、或至少25%(%重量),iv)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,所述营养性植物部分或非人生物体中TAG中的油酸水平高至少10倍、至少15倍、至少17倍、或至少19倍,v)棕榈酸占TAG中的脂肪酸的至少20%、至少25%、或至少28%(%重量),vi)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,所述营养性植物部分或非人生物体中TAG中的棕榈酸水平高至少1.25倍,
vii)亚油酸占TAG中的脂肪酸的至少15%、或至少20%,(%重量),
viii)α-亚麻酸占TAG中的脂肪酸的低于15%、低于11%或低于8%(%重量),和ix)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,所述营养性植物部分或非人生物体中TAG中的α-亚麻酸水平低至少5倍、或至少8倍。
52.根据权利要求1至51任一项的方法,其中所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含以下的一或多种:
(i)一或多个引入基因的突变,所述基因分别编码所述植物、营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子的内源酶,或
(ii)外源多核苷酸,其分别下调所述植物、营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子的内源酶的产生和/或活性,
其中各内源酶选自:DGAT、sn-1甘油-3-磷酸酰基转移酶(sn-1 GPAT)、1-酰基-甘油-3-磷酸酰基转移酶(LPAAT)、酰基-CoA:溶血卵磷脂酰基转移酶(LPCAT)、磷脂酸磷酸酶(PAP)、涉及淀粉生物合成的酶如(ADP)-葡萄糖焦磷酸化酶(AGPase)、脂肪酸去饱和酶如Δ12脂肪酸去饱和酶(FAD2)、涉及脂质降解的多肽和/或降低脂质含量的多肽如脂肪酶如CGi58多肽,或者其两种或更多种的组合。
53.权利要求52的方法,其中所述外源多核苷酸选自:反义多核苷酸、有义多核苷酸、催化多核苷酸、微RNA、编码结合内源酶的多肽的多核苷酸、双链RNA分子或从其衍生的经加工的RNA分子。
54.根据权利要求1至53任一项的方法,其中所述总非极性脂质、提取的脂质或油包含:
(i)非极性脂质,其为TAG、DAG、TAG和DAG、或MAG,和
(ii)特定的PUFA,其为EDA、ARA、SDA、ETA、EPA、DPA、DHA,所述特定PUFA的水平为非极性脂质中的总脂肪酸含量的至少1%,或者两种或更多种所述特定PUFA的组合,或(iii)脂肪酸,其以所述非极性脂质中的总脂肪酸含量的至少1%的水平存在,并且其包含羟基、环氧基、环丙烷基、碳碳双键、碳碳三键、共轭双键、支链如甲基化的或羟基化的支链,或者其两种或更多种的组合。
55.藻类或真菌,其包含一或多种外源多核苷酸以及包含相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应藻类或真菌而言增加水平的一或多种非极性脂质,其中所述一或多种外源多核苷酸的每种可操纵地连接至启动子,所述启动子能够在藻类或真菌中引导所述多核苷酸的表达,并且适用其中下列特征中的一种或多种或全部:
(i)所述一或多种外源多核苷酸包含第一外源多核苷酸和第二外源多核苷酸,所述第一外源多核苷酸编码提高藻类或真菌中一或多种糖分解或脂肪酸生物合成基因表达的RNA或转录因子多肽,所述第二外源多核苷酸编码涉及一或多种非极性脂质的生物合成的RNA或多肽,
(ii)所述藻类或真菌具有至少约3%,更优选至少约5%、优选至少约7%、更优选至少约10%、更优选至少约11%、更优选至少约12%、更优选至少约13%、更优选至少约14%、或者更优选至少约15%(w/w干重)的总非极性脂质含量,
(iii)所述藻类选自由以下组成的组:硅藻(硅藻类),绿藻(绿藻类),蓝绿(蓝藻类),金褐藻(金藻类),定鞭藻类,褐藻类和异鞭毛藻类,
(iv)所述非极性脂质包含脂肪酸,所述脂肪酸包含羟基、环氧基、环丙烷基、碳碳双键、碳碳三键、共轭双键、支链如甲基化的或羟基化的支链,或者其两种或更多种的组合,(v)所述藻类或真菌在其脂质中包含酯化或非酯化形式的油酸,其中所述藻类的脂质中总脂肪酸的至少20%(mol%)、至少22%(mol%)、至少30%(mol%)、至少40%(mol%)、至少50%(mol%)、或至少60%(mol%)、优选至少65%(mo1%)或至少66%(mol%)是油酸,(vi)所述藻类或真菌在其非极性脂质中包含酯化形式的油酸,其中所述藻类或真菌的非极性脂质中总脂肪酸的至少20%(mol%)、至少22%(mo1%)、至少30%(mo1%)、至少
40%(mol%)、至少50%(mol%)、或至少60%(mol%)、优选至少65%(mol%)或至少66%(mol%)是油酸,
(vii)所述藻类或真菌的脂质中的总脂肪酸含量,与缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应藻类或真菌中的脂质相比多包含至少2%的油酸和/或少包含至少2%的棕榈酸,(viii)所述藻类或真菌的非极性脂质中的总脂肪酸含量,与缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应藻类或真菌中的非极性脂质相比多包含至少2%的油酸和/或少包含至少2%的棕榈酸,
(ix)所述非极性脂质包含改变水平的总固醇,优选游离固醇、固醇酯和/或固醇糖苷,(x)所述非极性脂质包含蜡和/或蜡酯,和
(xi)所述藻类或真菌是至少约1000个此类藻类或真菌的群体或集合的一员。
56.权利要求55的藻类或真菌,其中所述一或多种外源多核苷酸包含第一外源多核苷酸和第二外源多核苷酸,并且其中适用特征(ii)至(xi)的一种或多种或全部。
57.根据权利要求55或权利要求56的藻类或真菌,其中所述非极性脂质中的总固醇含量和/或组成与缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应藻类或真菌中的非极性脂质中的总固醇含量和/或组成有显著不同。
58.根据权利要求56至57任一项的藻类或真菌,其中所述一或多种非极性脂质的提高的水平适用下列特征中的一种或多种或全部:
(i)所述水平以重量计比相应藻类或真菌中的水平高至少0.5%,
(ii)所述水平以相对计比相应藻类或真菌中的水平高至少1%,
(iii)所述藻类或真菌的总非极性脂质含量以重量计比相应藻类或真菌中的该含量分别高至少0.5%,
(iv)所述藻类或真菌的总非极性脂质含量以相对计比相应藻类或真菌中的该含量分别高至少1%,和
(v)所述藻类或真菌的一或多种非极性脂质的水平和/或总非极性脂质含量,相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸和包含编码拟南芥DGAT1的外源多核苷酸的相应藻类或真菌而言,以重量计分别高至少0.5%和/或以相对计高至少1%。
59.根据权利要求55至58任一项的藻类或真菌,其包含:
(i)比相应藻类或真菌中的TAG、DAG、TAG和DAG、或MAG含量以相对计高至少10%的TAG、DAG、TAG和DAG、或MAG含量,和/或
(ii)相对于相应藻类或真菌的总多不饱和脂肪酸(PUFA)含量而言提高的或降低的总PUFA含量。
60.根据权利要求55至59任一项的藻类或真菌,包含相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应藻类或真菌的PUFA水平而言提高的PUFA水平,其中所述PUFA是二十碳二烯酸、花生四烯酸(ARA)、α-亚麻酸(ALA)、十八碳四烯酸(SDA)、二十碳三烯酸(ETE)、二十碳四烯酸(ETA)、二十碳五烯酸(EPA)、二十二碳五烯酸(DPA)、二十二碳六烯酸(DHA)、或者其任意两种或更多中的组合。
61.根据权利要求55至60任一项的藻类或真菌,其包含第一外源多核苷酸和第二外源多核苷酸,所述第一外源多核苷酸编码分别提高藻类或真菌中一或多种糖分解或脂肪酸生物合成基因的表达的RNA或转录因子多肽,所述第二外源多核苷酸编码涉及一或多种非极性脂质的生物合成的RNA或多肽,其中所述外源多核苷酸各自可操纵地连接至启动子,所述启动子能够在藻类或真菌中分别引导所述多核苷酸的表达。
62.权利要求61的藻类或真菌,其中所述第一外源多核苷酸编码Wrinkled 1(WRI1)转录因子、Leafy Cotyledon 1(Lecl)转录因子、Leafy Cotyledon 2(LEC2)转录因子、Fus3转录因子、ABI3转录因子、Dof4转录因子、BABY BOOM(BBM)转录因子、或Dof 11转录因子。
63.权利要求61或62的藻类或真菌,其中所述第二外源多核苷酸编码具有单酰基甘油酰基转移酶(MGAT)活性和/或二酰基甘油酰基转移酶(DGAT)活性或甘油-3-磷酸酰基转移酶(GPAT)活性的多肽。
64.根据权利要求61至63任一项的藻类或真菌,其中所述藻类或真菌还包含第三种、或更多种的外源多核苷酸,其编码下列的一种或多种或任意组合:
i)提高藻类或真菌中一或多种糖分解或脂肪酸生物合成基因的表达的另外的RNA或转录因子多肽,
ii)涉及一或多种非极性脂质的生物合成的另外的RNA或多肽,
iii)稳定所述一或多种非极性脂质的多肽,优选油体蛋白,如聚油体蛋白或油体钙蛋白,更优选聚油体蛋白,
iv)抑制基因表达的RNA分子,所述基因编码涉及淀粉生物合成的多肽如AGPase多肽,v)抑制基因表达的RNA分子,所述基因编码涉及脂质降解的多肽和/或降低脂质含量的多肽如脂肪酶如CGi58多肽,或
vi)沉默抑制子多肽,
其中所述第三种或更多种外源多核苷酸可操纵地连接至启动子,所述启动子能够在藻类或真菌中分别引导所述多核苷酸的表达。
65.权利要求64的藻类或真菌,其中所述第三种多核苷酸编码油体蛋白,如聚油体蛋白或油体钙蛋白。
66.根据权利要求55至65任一项的藻类或真菌,其中所述藻类或真菌包含一或多种外源多核苷酸,所述外源多核苷酸编码:
i)Wrinkled 1(WRI1)转录因子和DGAT,
ii)WRI1转录因子和DGAT和油体蛋白,
iii)WRI1转录因子、DGAT、MGAT和油体蛋白
iv)单酰基甘油酰基转移酶(MGAT),
v)二酰基甘油酰基转移酶2(DGAT2),
vi)MGAT和甘油-3-磷酸酰基转移酶(GPAT),
vii)MGAT和DGAT,
viii)MGAT、GPAT和DGAT,
ix)WRI1转录因子和MGAT,
x)WRi1转录因子、DGAT和MGAT,
xi)WRI1转录因子、DGAT、MGAT、油体蛋白和GPAT,
xii)DGAT和油体蛋白,或
xiii)MGAT和油体蛋白,和
xiv)任选地,沉默抑制子多肽,
其中每种外源多核苷酸可操纵地连接至启动子,所述启动子能够在植物、营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中分别引导所述多核苷酸的表达。
67.权利要求66的藻类或真菌,其中
(i)所述GPAT也具有磷酸酶活性以产生MAG,如具有拟南芥GPAT4或GPAT6的氨基酸序列的多肽,和/或
(ii)所述DGAT是DGAT1或DGAT2,和/或
(iii)所述MGAT是MGAT1或MGAT2。
68.根据权利要求55至67任一项的藻类或真菌,其中所述藻类或真菌包含:
i)编码WRI1的第一外源多核苷酸和编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸,ii)编码WRi1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、和编码油体蛋白的第三外源多核苷酸,
iii)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGATt的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码MGAT优选MGAT2的第四外源多核苷酸,iv)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第四外源多核苷酸,
v)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码MGAT优选MGAT2的第四外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第五外源多核苷酸,
vi)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的第四外源多核苷酸,
vii)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的第四外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第五外源多核苷酸,
viii)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的第四外源多核苷酸、和编码MGAT优选MGAT2的第五外源多核苷酸,
ix)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的第四外源多核苷酸、编码MGAT优选MGAT2的第五外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第六外源多核苷酸。
69.权利要求68的藻类或真菌,其中适用以下特征的一或多种:
i)所述编码DGAT和油体蛋白的外源多核苷酸可操纵地连接至组成型启动子,其能够引导所述多核苷酸在所述藻类或真菌中的表达,
ii)所述编码WRI1、和抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的外源多核苷酸,可操纵地连接至组成型启动子、或可诱导启动子,其能够引导所述多核苷酸在所述藻类或真菌中的表达,和
iii)所述编码LEC2、BBM和/或MGAT2的外源多核苷酸可操纵地连接至可诱导启动子,所述可诱导启动子能够在所述藻类或真菌中引导所述多核苷酸的表达。
70.根据权利要求55至69任一项的藻类或真菌,其中所述藻类或真菌包含至少约7%、更优选至少约10%、更优选至少约11%、更优选至少约12%、更优选至少约13%、更优选至少约14%、或者更优选至少约15%(w/w干重)的总非极性脂质含量。
71.根据权利要求55至70任一项的藻类或真菌,其中所述藻类或真菌包含至少约7%、更优选至少约10%、更优选至少约11%、更优选至少约12%、更优选至少约13%、更优选至少约14%、更优选至少约15%、或者更优选至少约17%(w/w干重)的总TAG含量。
72.根据权利要求55至71任一项的藻类或真菌,其包含编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码MGAT优选MGAT2的第三外源多核苷酸、和编码油体蛋白的第四外源多核苷酸,其中所述藻类或真菌具有下列特征一或多种或全部:
i)8%、至少10%、至少12%、至少14%、或至少15.5%(%重量)的总脂质含量,ii)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应藻类或真菌,所述藻类或真菌中的总脂质含量高至少3倍、至少5倍、至少7倍、至少8倍、或至少10倍,
iii)至少5%、至少6%、至少6.5%或者至少7%(干重的%重量)的总TAG含量,iv)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应藻类或真菌,总TAG含量高至少40倍、至少50倍、至少60倍、或至少70倍、或至少100倍,
v)油酸占TAG中的脂肪酸的至少15%、至少19%或者至少22%(干重的%重量),vi)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应藻类或真菌,TAG中的油酸水平高至少10倍、至少15倍或至少17倍,
vii)棕榈酸占TAG中的脂肪酸的至少20%、至少25%、至少30%或者至少33%(%重量),
viii)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应藻类或真菌,TAG中的棕榈酸水平高至少
1.5倍,
ix)亚油酸占TAG中的脂肪酸的至少22%、至少25%、至少30%或者至少34%(%重量),x)a-亚麻酸占TAG中的脂肪酸的低于20%、低于15%、低于11%或低于8%(%重量),和xi)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应藻类或真菌,TAG中的α-亚麻酸水平低至少5倍、或至少8倍。
73.根据权利要求55至71任一项的藻类或真菌,其中所述藻类或真菌包含编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸,其中所述藻类或真菌具有下列特征的一种或多种或全部:
i)至少10%、至少12.5%、至少15%或者至少17%(干重的%重量)的总TAG含量,ii)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应藻类或真菌,所述藻类或真菌中的总TAG含量高至少40倍、至少50倍、至少60倍、或至少70倍、或至少100倍,
iii)油酸占TAG中的脂肪酸的至少19%、至少22%、或至少25%(%重量),iv)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应藻类或真菌,所述藻类或真菌中的TAG中的油酸水平高至少10倍、至少15倍、至少17倍、或至少19倍,
v)棕榈酸占TAG中的脂肪酸的至少20%、至少25%、或至少28%(%重量),vi)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应藻类或真菌,所述藻类或真菌中TAG中的棕榈酸水平高至少1.25倍,
vii)亚油酸占TAG中的脂肪酸的至少15%、或至少20%,(%重量),
viii)α-亚麻酸占TAG中的脂肪酸的低于15%、低于11%或低于8%(%重量),和ix)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应藻类或真菌,所述藻类或真菌中TAG中的α-亚麻酸水平低至少5倍、或至少8倍。
74.根据权利要求55至73任一项的藻类或真菌,其包含:
(i)一或多个引入基因中的突变,所述基因分别编码所述藻类或真菌的内源酶,和/或(ii)外源多核苷酸,其分别下调所述藻类或真菌的内源酶的产生和/或活性,其中每种内源酶选自:DGAT、sn-1甘油-3-磷酸酰基转移酶(sn-1 GPAT)、1-酰基-甘油-3-磷酸酰基转移酶(LPAAT)、酰基-CoA:溶血卵磷脂酰基转移酶(LPCAT)、磷脂酸磷酸酶(PAP)、涉及淀粉生物合成的酶如(ADP)-葡萄糖焦磷酸化酶(AGPase)、脂肪酸去饱和酶如Δ12脂肪酸去饱和酶(FAD2)、涉及脂质降解的多肽和/或降低脂质含量的多肽如脂肪酶如CGi58多肽,或者其两种或更多种的组合。
75.权利要求74的藻类或真菌,其中所述外源多核苷酸选自反义多核苷酸、有义多核苷酸、催化多核苷酸、微RNA、编码结合内源酶的多肽的多核苷酸、双链RNA分子或从其衍生的经加工的RNA分子。
76.根据权利要求55至75任一项的藻类或真菌,其中所述非极性脂质
(i)包含TAG、DAG、TAG和DAG、或MAG,和
(ii)包含特定的PUFA,其为EDA、ARA、SDA、ETA、EPA、DPA或DHA,所述特定PUFA以非极性脂质中的总脂肪酸含量的至少1%的水平存在,或者其两种或更多种的组合,或(iii)包含脂肪酸,其以非极性脂质中的总脂肪酸含量至少1%的水平存在,并且其包含羟基、环氧基、环丙烷基、碳碳双键、碳碳三键、共轭双键、支链如甲基化的或羟基化的支链,或者其两种或更多种的组合。
77.获得具有增强的产生一或多种非极性脂质的能的细胞的方法,所述方法包括步骤:
i)将一或多种外源多核苷酸引入细胞中,
ii)在所述细胞或其后代细胞中表达所述一或多种外源多核苷酸,
iii)分析所述细胞或后代细胞的脂质含量
iv)选择相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应细胞或后代细胞而言具有提高水平的一或多种非极性脂质的细胞或后代细胞,
其中所述一或多种外源多核苷酸编码
i)Wrinkled 1(WRI1)转录因子和DGAT,
ii)WRI1转录因子和DGAT和油体蛋白,
iii)WRI1转录因子、DGAT、MGAT和油体蛋白,
iv)单酰基甘油酰基转移酶(MGAT),
v)二酰基甘油酰基转移酶2(DGAT2),
vi)MGAT和甘油-3-磷酸酰基转移酶(GPAT),
vii)MGAT和DGAT,
viii)MGAT、GPAT和DGAT,
x)WRI1转录因子和MGAT,
x)WRI1转录因子、DGAT和MGAT,
xi)WRI1转录因子、DGAT、MGAT、油体蛋白和GPAT,
xii)DGAT和油体蛋白,或
xiii)MGAT和油体蛋白,和
xiv)任选地,沉默抑制子多肽,
其中每种外源多核苷酸可操纵地连接至启动子,所述启动子能够在所述细胞或后代细胞中引导所述外源多核苷酸的表达。
78.权利要求77的方法,其中所选择的细胞或后代细胞包含:
i)编码WRI1的第一外源多核苷酸和编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸,ii)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、和编码油体蛋白的第三外源多核苷酸,
iii)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码MGAT优选MGAT2的第四外源多核苷酸,iv)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第四外源多核苷酸,
v)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码MGAT优选MGAT2的第四外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第五外源多核苷酸,
vi)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的第四外源多核苷酸,
vii)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的第四外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第五外源多核苷酸,
viii)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的第四外源多核苷酸、和编码MGAT优选MGAT2的第五外源多核苷酸,
ix)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的第四外源多核苷酸、编码MGAT优选MGAT2的第五外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第六外源多核苷酸。
79.权利要求77或权利要求78的方法,其中所述一或多种外源多核苷酸被稳定整合至所述细胞或后代细胞的基因组中。
80.权利要求79的方法,还包括从包含所述一或多种外源多核苷酸的细胞或后代细胞再生转基因植物的步骤。
81.权利要求80的方法,其中所述再生转基因植物的步骤可以在于所述细胞或其后代细胞中表达所述一或多种多核苷酸的步骤之前进行,和/或在分析所述细胞或后代细胞脂质含量的步骤之前进行,和/或在选择具有提高水平的一或多种脂质的细胞或后代细胞的步骤之前进行。
82.权利要求80或权利要求81的方法,其还包括从所述转基因植物获得种子或后代植物的步骤,其中所述种子或后代植物包含所述一或多种外源多核苷酸。
83.权利要求77至82任一项的方法,其中所选择的细胞或从其再生的植物、或者所述再生的植物的营养性植物部分或种子,具有权利要求1至54任一项所定义的一或多种特征。
84.编码下列的一或多种多核苷酸、或者包含编码下列的多核苷酸的遗传构建体的用途:
i)Wrinkled 1(WRI1)转录因子和DGAT,
ii)WRI1转录因子和DGAT和油体蛋白,
iii)WRI1转录因子、DGAT、MGAT和油体蛋白,
iv)单酰基甘油酰基转移酶(MGAT),
v)二酰基甘油酰基转移酶2(DGAT2),
vi)MGAT和甘油-3-磷酸酰基转移酶(GPAT),
vii)MGAT和DGAT,
viii)MGAT、GPAT和DGAT,
ix)WRI1转录因子和MGAT,
x)WRI1转录因子、DGAT和MGAT,
xi)WRI1转录因子、DGAT、MGAT、油体蛋白和GPAT,
xii)DGAT和油体蛋白,或
xiii)MGAT和油体蛋白,和
xiv)任选地,沉默抑制子多肽,
其用于产生转基因细胞、转基因非人生物体或其部分、或转基因种子,所述转基因细胞、转基因非人生物体或其部分、或转基因种子相对于缺乏所述一或多种多核苷酸的相应细胞、非人生物体或其部分或者种子而言具有增强的产生一或多种非极性脂质的能力,其中所述一或多种多核苷酸的每种对于所述细胞、非人生物体或其部分、或者种子均为外源的并且可操纵地连接至启动子,所述启动子能够分别在所述细胞、非人生物体或其部分、或种子中引导所述多核苷酸表达。
85.编码提高细胞、非人生物体或其部分或者种子中一或多种糖分解或脂肪酸生物合成基因表达的RNA或转录因子多肽的第一多核苷酸,与编码涉及一或多种非极性脂质的生物合成的RNA或多肽的第二多核苷酸一起,用于产生转基因细胞、转基因非人生物体或其部分、或转基因种子的用途,所述转基因细胞、转基因非人生物体或其部分、或转基因种子相对于缺乏所述第一和第二多核苷酸的相应细胞、非人生物体或其部分或者种子而言具有增强的产生一或多种非极性脂质的能力,其中所述第一和第二多核苷酸每种对所述细胞、非人生物体或其部分、或种子而言均为外源的并且可操纵地连接至启动子,所述启动子能够分别在所述转基因细胞、转基因非人生物体或其部分、或转基因种子中引导所述多核苷酸的表达。
86.一或多种多核苷酸用于产生转基因细胞、转基因非人生物体或其部分、或转基因种子的用途,所述转基因细胞、转基因非人生物体或其部分、或转基因种子相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应细胞、非人生物体或其部分、或种子而言具有增强的产生一或多种非极性脂质的能力,其中所述一或多种多核苷酸的每种对于所述细胞、非人生物体或其部分、或者种子均为外源的并且可操纵地连接至启动子,所述启动子能够分别在所述细胞、非人生物体或其部分、或种子中引导所述多核苷酸的表达,并且其中所述非极性脂质包含脂肪酸,所述脂肪酸包含羟基、环氧基、环丙烷基、碳碳双键、碳碳三键、共轭双键、支链如甲基化的或羟基化的支链,或者其两种或更多种的组合。
87.权利要求84至86任一项的用途,其中所述转基因细胞、非人生物体或其部分、或种子包含权利要求1至54中所定义的一或多种特征。
88.生产种子的方法,所述方法包括:
i)种植权利要求1至53任一项中定义的植物,和
ii)从所述植物收获种子。
89.权利要求88的方法,其包括种植至少约1000株植物的群体,每株植物为权利要求1至54任一项中定义的植物,以及从所述植物的群体收获种子。
90.发酵方法,包括步骤:
i)提供含有液体组合物的器皿,所述液体组合物包含适宜于发酵的权利要求55至76任一项的藻类或真菌、以及发酵和脂肪酸生物合成所需的成分,和
ii)提供有助于所述器皿中含有的液体组合物的发酵的条件。
91.经回收的或经提取的脂质,其可得自权利要求1至54任一项的方法,或者可得自权利要求55至76任一项的藻类或真菌。
92.权利要求1至54任一项的方法所产生的工业产品,其是烃产品如脂肪酸酯,优选脂肪酸甲基酯和/或脂肪酸乙基酯,烷烃如甲烷、乙烷或更长链的烷烃、更长链的烷烃的混合物,烯烃,生物燃料,一氧化碳和/或氢气,生物醇如乙醇、丙醇或丁醇,生物炭,或者一氧化碳、氢和生物炭的组合。
93.权利要求55至76任一项的藻类或真菌用于制备工业产品的用途。
94.权利要求93的用途,其中所述工业产品是烃产品如脂肪酸酯,优选脂肪酸甲基酯和/或脂肪酸乙基酯,烷烃如甲烷、乙烷或更长链的烷烃、更长链的烷烃的混合物,烯烃,生物燃料,一氧化碳和/或氢气,生物醇如乙醇、丙醇或丁醇,生物炭,或者一氧化碳、氢和生物炭的组合。
95.产生燃料的方法,所述方法包括:
i)将权利要求91的脂质,任选在催化剂的存在下,与醇反应以产生烷基酯,和ii)任选地,将所述烷基酯与基于石油的燃料混合。
96.权利要求95的方法,其中所述烷基酯是甲基酯。
97.产生合成柴油燃料的方法,所述方法包括:
i)将可得自权利要求1至54任一项的方法的脂质,或者可得自权利要求55至76任一项的藻类或真菌的脂质通过气化转化为合成气,和
ii)用金属催化剂或微生物催化剂将所述合成气转化为生物燃料。
98.产生生物燃料的方法,所述方法包括将可得自权利要求1至54任一项的方法的脂质,或者可得自权利要求55至76任一项的藻类或真菌的脂质通过热解转化为生物油、通过发酵转化为生物醇、或者通过气化或厌氧消化转化为生物气
99.用于产生饲料的方法,所述方法包括将可得自权利要求1至54任一项的方法的脂质,或者可得自权利要求55至76任一项的藻类或真菌的脂质,与至少一种其它食物成分掺合。
100.饲料、化妆品或化学品,其包含权利要求91的经回收或经提取的脂质。
101.确定何时收获植物以使收获时植物的营养性组织中脂质的量优化的方法,所述方法包括
i)测量所述营养性组织的光泽度,
ii)将该测量值与预先确定的最小光泽度水平比较,和
iii)任选收获所述植物。
102.预测植物的营养性组织中脂质量的方法,所述方法包括测量所述营养性组织的光泽。

说明书全文

产生脂质的方法

[0001] 本申请为申请日为2012年12月21日、申请号为201280070729.5、发明名称为“产生脂质的方法”的发明专利申请的分案申请。发明领域
[0002] 本发明涉及产生脂质的方法。具体而言,本发明涉及提高转基因生物体或其部分中的一种或多种非极性脂质平和/或总非极性脂质含量的方法。在一个特定的实施方案中,本发明涉及单酰基甘油酰基转移酶(MGAT)、二酰基甘油酰基转移酶(DGAT)、甘油-3-磷酸酰基转移酶(GPAT)、油体蛋白(oil body protein)和/或转录因子(调节脂质生物合成但却使淀粉生物合成和脂肪酸去饱和途径中关键酶促步骤沉默)中一或多种的任意组合,以提高植物或其任意部分(包括植物种子和/或叶)、藻类和真菌中的一种或多种非极性脂质水平和/或总非极性脂质含量。
[0003] 发明背景
[0004] 世界能源的大部分,特别是用于运输的能源,是由石油衍生燃料所提供,其供应有限。需要可再生的替代来源,如来自生物学产生的油。
[0005] 三酰基甘油生物合成
[0006] 三酰基甘油(TAG)构成了种子中脂质的主要形式并且由酯化至甘油骨架的三个酰基链所组成。脂肪酸在质体中作为酰基-酰基载体蛋白(ACP)中间体合成,在此其可经历第一次催化的去饱和。此反应由硬脂酰-ACP去饱和酶催化并产生油酸(C18:1Δ9)。随后,酰基链作为酰基辅酶(CoA)酯被转移至细胞质和内质网(ER)。在进入主要TAG生物合成途径之前,也已知为Kennedy或甘油-3-磷酸(G3P)途径,酰基链通常被整合至ER膜的磷脂中,在此其可经历进一步去饱和。多不饱和脂肪酸生产中的两种关键酶是膜结合的 FAD2和FAD3去饱和酶,其分别产生亚油酸(C18:2Δ9,12)和α-亚麻酸(C18:3Δ9,12,15)。
[0007] 经Kennedy途径的TAG生物合成由一系列相继的酰基化所组成,每个均使用酰基 -CoA酯作为酰基-供体。第一个酰基化步骤通常在G3P骨架的sn1-位置处发生并由甘油 -3-磷酸酰基转移酶(sn1-GPAT)催化。产物sn1-溶血磷脂酸(sn1-LPA)作为溶血磷脂酸酰基转移酶(LPAAT)的底物,其将第二个酰基链连接至sn2-位置以形成磷脂酸。PA进一步被磷脂酸磷酸酶(PAP)去磷酸化成二酰基甘油(DAG),由此提供用于最后的酰基化步骤的底物。最后,第三个酰基链在由二酰基甘油酰基转移酶(DGAT)催化的反应中被酯化至 DAG的sn3-位置,以形成在油体中聚集的TAG。第二个酶反应,磷脂酰甘油酰基转移酶(PDAT),也导致DAG被转化成TAG。此反应与DGAT不相关并且使用磷脂作为酰基-供体。
[0008] 为了最大程度提高脂质商业生产的产率,需要提高转基因生物或其部分诸如植物、种子、叶、藻类和真菌中脂质(尤其是非极性脂质诸如DAG和TAG)水平的更多措施。提高植物中的中性脂质产量的尝试主要集中在脂肪酸生物合成或TAG组装中所涉及的单个关键酶促步骤。然而这些策略已导致种子或叶中油含量一般程度的提高。最近在产油酵母解脂耶氏酵母(Yarrowia lipolytica)中的代谢工程工作已证实提高甘油-3-磷酸生产和防止TAG经β-化破坏的组合手段导致总脂质含量的累积增加(Dulermo et al.,2011)。
[0009] 植物脂质诸如种子油三酰基甘油(TAG)具有许多用途,例如烹饪用途(起酥油、质地、调味)、工业用途(用于肥皂、蜡烛、香水、化妆品、适合作为干燥剂、绝缘体、润滑剂),以及提供营养价值。使用植物脂质生产生物燃料的兴趣也在不断增长。
[0010] 为了最大程度提高脂质商业生物生产的产率,需要提高转基因生物或其部分诸如植物、种子、叶、藻类和真菌中脂质(尤其是非极性脂质诸如DAG和TAG)水平的更多方法。
[0011] 发明概述
[0012] 本发明已经证明了通过操纵脂肪酸生物合成和脂质组装途径使生物体脂质含量显著提高,特别是在植物的营养性部分(vegetative part)和种子中。基因的各种组合被用于实现油含量的实质性提高,其对于生物燃料及其它衍生自油的工业产品具有重要意义。
[0013] 在第一方面,本发明提供了用于从包含高水平非极性脂质的营养性植物部分 (vegetative plant part)或者非人生物体或其部分中产生工业产品的方法。
[0014] 在一实施方案中,本发明提供了产生工业产品的方法,所述方法包括步骤:
[0015] i)获得具有至少约3%,优选至少约5%或者至少约7%(w/w干重)的总非极性脂质含量的营养性植物部分,
[0016] ii)通过应用热、化学、或酶促手段,或者其任意组合,而在所述营养性植物部分中原位将至少部分脂质转化为工业产品,和
[0017] iii)回收工业产品,
[0018] 由此产生工业产品。
[0019] 在另一实施方案中,生产工业产品的方法包括步骤::
[0020] i)获得具有至少约3%,优选至少约5%或者至少约7%(w/w干重)的总非极性脂质含量的营养性植物部分,
[0021] ii)物理加工步骤i)的营养性植物部分,
[0022] iii)通过在所述经加工的营养性植物部分中原位对所述脂质应用热、化学、或酶促手段,或者其任意组合,而将所述经加工的营养性植物部分中的至少部分脂质转化为工业产品,和
[0023] iv)回收工业产品,
[0024] 由此产生工业产品。
[0025] 在另一实施方案中,生产工业产品的方法包括步骤::
[0026] i)获得包含一或多种外源多核苷酸的非人生物体或其部分,其中所述一或多种外源多核苷酸的每种均可操纵地连接至启动子,所述启动子能够在非人生物体或其部分中引导所述多核苷酸的表达,并且其中所述非人生物体或其部分相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应非人生物体或其部分而言,具有水平升高的一或多种非极性脂质,和[0027] ii)通过应用热、化学、或酶促手段,或者其任意组合,而在所述非人生物体或其部分中原位将至少部分脂质转化为工业产品,和
[0028] iii)回收工业产品,
[0029] 由此产生所述工业产品。
[0030] 在另外的实施方案中,生产工业产品的方法包括步骤:
[0031] i)获得包含一或多种外源多核苷酸的非人生物体或其部分,其中所述非人生物体或其部分相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应非人生物体或其部分而言,具有水平升高的一或多种非极性脂质,
[0032] ii)物理加工步骤i)的非人生物体或其部分,
[0033] iii)通过在所述非人生物体或其部分中原位对所述脂质应用热、化学、或酶促手段,或者其任意组合,而将所述非人生物体或其部分中的至少部分脂质转化为工业产品,和[0034] iv)回收工业产品,
[0035] 由此产生工业产品。
[0036] 在每个上述实施方案中,本领域技术人员会理解转化步骤可以与物理加工步骤同时进行或者在其之后进行。
[0037] 在每个上述实施方案中,所述营养性植物部分、或者非人生物体或其部分、优选植物叶或其部分、茎或茎的总非极性脂质含量为至少约3%、更优选至少约5%、优选至少约7%、更优选至少约10%、更优选至少约11%、更优选至少约12%、更优选至少约13%、更优选至少约14%、或者更优选至少约15%(w/w干重)。在优选的实施方案中,总非极性脂质含量为5%至25%、7%至25%、10%至25%、12%至25%、15%至25%、 7%至20%、10%至
20%、10%至15%、15%至20%、20%至25%、约10%、约11%、约12%、约13%、约14%、约
15%、约16%、约17%、约18%、约20%、或者约22%,每个均为干重百分比。在特别优选的实施方案中,所述营养性植物部分是其叶(或多个叶)或者其部分。在更优选的实施方案中,所述营养性植物部分是具有至少1cm2表面积的叶部分。
[0038] 另外,在每个上述实施方案中,所述营养性植物部分、或者非人生物体或其部分、优选植物叶或其部分、茎或块茎的总TAG含量为至少约3%、更优选至少约5%、优选至少约7%、更优选至少约10%、更优选至少约11%、更优选至少约12%、更优选至少约13%、更优选至少约14%、更优选至少约15%、或者更优选至少约17%(w/w干重)。在优选的实施方案中,总TAG含量为5%至30%、7%至30%、10%至30%、12%至30%、 15%至30%、7%至
30%、10%至30%、20%至28%、18%至25%、22%至30%、约10%、约11%、约12%、约13%、约14%、约15%、约16%、约17%、约18%、约20%、或者约22%,每个均为干重百分比。在特别优选的实施方案中,所述营养性植物部分是其叶(或多个叶)或者其部分。在更优选的实施方案中,所述营养性植物部分是具有至少1 cm2表面积的叶部分。
[0039] 另外,在每个上述实施方案中,所述营养性植物部分、或者非人生物体或其部分、优选植物叶或其部分、茎或块茎的总脂质含量为至少约3%、更优选至少约5%、优选至少约7%、更优选至少约10%、更优选至少约11%、更优选至少约12%、更优选至少约13%、更优选至少约14%、更优选至少约15%、更优选至少约17%(w/w干重),更优选至少约20%、更优选至少约25%。在优选的实施方案中,总脂质含量为5%至35%、 7%至35%、10%至35%、
12%至35%、15%至35%、7%至35%,10%至20%、18%至 28%、20%至28%、22%至28%、约10%、约11%、约12%、约13%、约14%、约15%、约16%、约17%、约18%、约20%、约22%、或者约25%,每个均为干重百分比。通常,营养性植物部分、或者非人生物体或其部分的总脂质含量比非极性脂质含量高约 2-3%。在特别优选的实施方案中,所述营养性植物部分是其叶(或多个叶)或者其部分。在更优选的实施方案中,所述营养性植物部分是具有至少
2
1cm表面积的叶部分。
[0040] 其中所述工业产品可以是产品如脂肪酸酯,优选脂肪酸甲基酯和/或脂肪酸乙基酯,烷烃如甲烷、乙烷或更长链的烷烃,更长链的烷烃的混合物,烯烃,生物燃料,一氧化和/或氢气,生物醇如乙醇、丙醇或丁醇,生物炭,或者一氧化碳、氢和生物炭的混合物。所述工业产品可以使任意这些组分的混合物,如烷烃的混合物,或烷烃和烯烃的混合物,优选主要(>50%)为C4-C8烷烃、或主要C6至C10烷烃、或主要C6至 C8烷烃的混合物。所述工业产品不是二氧化碳也不是水,虽然这些分子可以与所述工业产品组合产生。所述工业产品可以在大气压/室温下是气体、或者优选地为液体、或固体如生物炭,或者所述方法可以产生气体组分、液体组分和固体组分的混合物,如一氧化碳、氢气、烷烃和生物炭,其随后可以进行分离。在一实施方案中,所述烃产品主要是脂肪酸甲基酯。在另外的实施方案中,所述烃产品是脂肪酸甲基酯之外的产品。
[0041] 所述工业产品可以是中间产品,例如,包含脂肪酸的产品,其可进一步被转化为例如生物燃料,例如通过酯交换转化成脂肪酸酯。
[0042] 方法中可以应用热,如通过热解(pyrolysis)、燃烧、气化,或者与酶消化(包括厌氧消化、堆肥(composting)、发酵)一起。较低温度气化在例如约700℃至约1000℃之间发生。较高温度气化在例如约1200℃至约1600℃之间发生。较低温度热解(较慢热解) 在例如约400℃发生,而较高温度热解在例如约500℃发生。中温消化在例如约20°至约40℃之间发生。嗜热消化(Thermophilic digestion)在例如约50℃至约65℃之间发生。
[0043] 化学手段包括但不限于,催化裂解(cracking)、厌氧消化、发酵、堆肥和酯交换。在一实施方案中,化学手段使用催化剂或催化剂的混合物,其可以与热一起应用。所述方法可以使用均质的催化剂、异质的催化剂和/或酶催化剂。在一实施方案中,所述催化剂是过渡金属催化剂、分子筛型催化剂、活化的氧化催化剂或碳酸钠。催化剂包括酸催化剂如硫酸,或者催化剂如氢氧化或氢氧化钠或其他氢氧化物。所述化学手段可包括脂质中脂肪酸的酯交换,该过程可使用同质催化剂、异质催化剂和/或酶催化剂。所述转化可包括热解,其应用热并可以应用化学手段,以及可以使用过渡金属催化剂、分子筛型催化剂、活化的氧化铝催化剂和/或碳酸钠。
[0044] 酶促手段包括但不限于,由微生物消化,例如在厌氧消化、发酵或堆肥中,或者由重组酶蛋白消化。
[0045] 在本发明的此方面中,转化成工业产品的脂质可以是所述营养性植物部分或者非人生物体或其部分中的部分、或全部的非极性脂质,或者优选所述转化是至少部分非极性脂质和至少部分极性脂质的转化,更优选所述营养性植物部分或者非人生物体或其部分中的基本上所有的脂质(极性和非极性)都被转化成工业产品。
[0046] 在一实施方案中,脂质转化为工业产品是在原位发生的,没有物理破坏所述营养性植物部分或者非人生物体或其部分。在此实施方案中,所述营养性植物部分或者非人生物体或其部分可以首先被干燥,例如通过应用热,或者所述营养性植物部分或者非人生物体或其部分可以基本上如收获时那样进行使用,而没有干燥。在另外的实施方案中,所述方法包括物理加工所述营养性植物部分、或所述非人生物体或其部分的步骤。所述物理加工可包括如下的一种或多种:辗压(rolling)、压榨(pressing)如压片(flaking)、破碎 (crushing)或研磨(grinding)所述营养性植物部分、非人生物体或其部分,其可以与所述营养性植物部分、非人生物体或其部分的干燥组合。例如,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分可以首先被基本上干燥并继而被研磨成更精细的材料,以易于随后的加工。
[0047] 在一实施方案中,所述方法中使用的所述营养性植物部分、或所述非人生物体或其部分的重量为至少1kg或优选至少1吨(干重)的汇集的营养性植物部分、或者非人生物体或其部分。所述方法可以还包括收获营养性植物部分的第一个步骤,例如从田间生长的至少100或1000个植物中收获,以提供至少1000个此类营养性植物部分的集合,也即其基本上都是相同的。优选地,在非极性脂质的产量处于其最高时收获营养性植物部分。在一个实施方案中,大约在开花的时候收获营养性植物部分。在另一实施方案中,在从大约开花至大约开始衰败(senescence)时收获营养性植物部分。在另一实施方案中,在所述植物至少1个月大时收获营养性植物部分。
[0048] 所述方法在转化步骤之前,可以还包括或者不包括提取所述营养性植物部分、或所述非人生物体或其部分的部分非极性脂质含量。在一实施方案中,所述方法还包括步骤:
[0049] (a)提取所述营养性植物部分或者所述非人生物体或其部分的至少部分非极性脂质含量作为非极性脂质,和
[0050] (b)回收所提取的非极性脂质,
[0051] 其中步骤(a)和(b)在将所述营养性植物部分、或所述非人生物体或其部分中的至少部分脂质转化为工业产品的步骤之前进行。首先被提取的非极性脂质的比例可以是低于 50%、或高于50%、或优选至少75%的营养性植物部分、或者非人生物体或其部分中的总非极性脂质。在此实施方案中,所提取的非极性脂质包含三酰基甘油,其中所述三酰基甘油含至少90%、优选至少95%的所提取的脂质。所提取的脂质本身可以被转化成该脂质本身之外的工业产品,例如通过酯交换转化成脂肪酸酯。
[0052] 在第二方面,本发明提供了用于从非人生物体或其部分产生提取的脂质的方法。
[0053] 在一实施方案中,本发明提供了用于产生提取的脂质的方法,所述方法包括步骤:
[0054] i)获得非人生物体或其部分,所述非人生物体或其部分包含一或多种外源多核苷酸以及包含分别相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应非人生物体或其部分而言水平增加的一或多种非极性脂质,
[0055] ii)从所述非人生物体或其部分提取脂质,和
[0056] iii)回收所提取的脂质,由此产生经提取的脂质,其中所述一或多种外源多核苷酸的每种均可操纵地连接至启动子,所述启动子能够在非人生物体或其部分中引导所述多核苷酸的表达,并且其中适用下列特征中的一种或多种或全部:
[0057] (a)所述一或多种外源多核苷酸包含第一外源多核苷酸和第二外源多核苷酸,所述第一外源多核苷酸编码提高非人生物体或其部分中一或多种糖分解或脂肪酸生物合成基因表达的RNA或转录因子多肽,所述第二外源多核苷酸编码一或多种非极性脂质生物合成中所涉及的RNA或多肽,
[0058] (b)如果所述非人生物体是植物,该植物的营养性部分具有至少约3%的总非极性脂质含量,更优选至少约5%、优选至少约7%、更优选至少约10%、更优选至少约1 1%、更优选至少约12%、更优选至少约13%、更优选至少约14%、或者更优选至少约15% (w/w干重),
[0059] (c)所述非人生物体是选自以下的藻类:藻(硅藻类(bacillariophyte))、绿藻(绿藻类(chlorophyte))、蓝绿藻(蓝藻类(cyanophyte))、金褐藻(金藻类(chrysophyte))、定鞭藻类 (haptophyte)、褐藻类和异鞭毛藻类,
[0060] (d)所述一或多种非极性脂质包含脂肪酸,所述脂肪酸包含羟基、环氧基、环丙烷基、碳碳双键、碳碳三键、共轭双键、支链如甲基化的或羟基化的支链,或者其两种或更多种的组合,或者前述基团、键或支链的任意两种、三种、四种、五种或六种,
[0061] (e)与缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应非人生物体或其部分中的非极性脂质相比,所述非极性脂质中的总脂肪酸含量多包含至少2%的油酸和/或少包含至少2%的棕榈酸,
[0062] (f)相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应非人生物体或其部分中的非极性脂质而言,所述非极性脂质包含水平改变的总固醇,优选游离的(非酯化的)固醇、固醇酯、固醇糖苷,
[0063] (g)所述非极性脂质包含蜡和/或蜡酯,
[0064] (h)所述非人生物体或其部分分别是至少约1000个所述脂质所提取自的此类非人生物体或其部分所汇集的群体或集合的成员之一。
[0065] 在上述(b)的实施方案中,总非极性脂质含量为5%至25%、7%至25%、10%至25%、 12%至25%、15%至25%、7%至20%、10%至20%、约10%、约11%、约12%、约13%、约14%、约15%、约16%、约17%、约18%、约20%、或者约22%,每个均为干重百分比。
[0066] 在一实施方案中,所述非人生物体是藻类,或者适宜于发酵的生物体如真菌,或者更优选是植物。所述非人生物体的部分可以是种子,果实,或植物的营养性部分。在优选的实施方案中,所述植物部分为具有至少1cm2表面积的叶部分。在另一优选的实施方案中,所述非人生物体是植物,所述部分是种子并且所提取的脂质是种子油。在更优选的实施方案中,所述植物来自油籽(oilseed)物种,其商业使用或者可商业用于油生产。所述物种可选自:刺干椰(Acrocomia aculeata(macauba palm))、拟南芥(Arabidopsis thaliana)、花生(Aracinis hypogaea,花生(peanut))、木鲁星果棕(Astrocaryum murumuru, (murumuru))、Astrocaryum vulgare(tucuma)、Attalea geraensis(Indaia-rateiro)、Attalea humilis(美洲油棕(American oil palm))、Attalea oleifera(andaia)、Attalea phalerata (uricuri)、Attalea speciosa(babassu)、燕麦(Avena sativa,燕麦(oats))、甜菜(Beta vulgaris,甜菜(sugar beet))、芸苔类(Brassica sp.)如Brassica carinata、Brassica juncea、Brassica napobrassica、欧洲油菜(Brassica napus,(油菜))、亚麻荠(Camelina sativa,亚麻荠(false flax))、大麻(Cannabis sativa,大麻(hemp))、红花(Carthamus tinctorius,红花(safflower))、 Caryocar brasiliense(pequi)、椰子(Cocos nucifera,椰子(Coconut))、海甘蓝(Crambe abyssinica,海甘蓝(Abyssinian kale))、甜瓜(Cucumis melo,甜瓜(melon))、油棕(Elaeis guineensis,非洲棕榈(African palm))、大豆(Glycine max,大豆(soybean))、陆地 (Gossypium hirsutum,棉花)、向日葵类(Helianthus sp.)如向日葵(Helianthus annuus,向日葵(sunflower))、大麦(Hordeum vulgare,大麦(barley))、麻树(Jatropha curcas,麻风树(physic nut))、Joannesia princeps(arara nut-tree)、浮萍类(Lemna sp.,浮萍(duckweed)) 如青萍(Lemna aequinoctialis)、Lemna disperma、Lemna ecuadoriensis、膨胀浮萍(Lemna gibba,膨胀浮萍swollen duckweed)、日本浮萍(Lemna japonica)、浮萍(Lemna minor)、单脉萍(Lemna minuta)、Lemna obscura、稀脉萍(Lemna paucicostata)、稀脉浮萍(Lemna perpusilla)、Lemna tenera、吕藻(Lemna trisulca)、鳞根萍(Lemna trisulca)、Lemna valdiviana、Lemna yungensis、奥蒂树(Licania rigida,奥蒂(oiticica))、亚麻(Linum usitatissimum,亚麻(flax))、羽扇豆(Lupinus angustifolius,羽扇豆(lupin))、曲叶矛榈 (Mauritia flexuosa,Buriti棕榈)、摩帝椰子(Maximiliana maripa,Inaja棕榈)、芒草类  (Miscanthus sp.)如异源三倍体芒草奇岗(Miscanthus x giganteus)和中国芒(Miscanthus sinensis),烟草类(Nicotiana sp.,烟草(tabacco))如红花烟草(Nicotiana tabacum)或本氏烟草(Nicotiana benthamiana)、巴卡巴酒实棕(Oenocarpus bacaba巴卡巴酒实棕(bacaba- do-azeite))、巴套阿酒实棕(Oenocarpus bataua,pataua)、Oenocarpus distichus (bacaba-de-leque),稻类(Oryza sp.,稻(rice))如水稻(Oryza sativa)和光稃稻(Oryza glaberrima)、柳枝稷(Panicum  virgatum,柳枝稷
(switchgrass))、Paraqueiba paraensis  (mari)、鳄梨(Persea amencana,鳄梨(avocado))、水黄皮(Pongamia pinnata,印度山毛榉 (Indian beech))、毛果杨(Populus trichocarpa)、蓖麻(Ricinus communis,蓖麻(castor)),蔗类(Saccharum sp.,甘蔗(sugarcane))、芝麻(Sesamum indicum,芝麻(sesame))、铃薯 (Solanum tuberosum,马铃薯(potato))、高粱类(Sorghum sp.)如两色高粱(Sorghum bicolor)、高粱(Sorghum vulgare)、大花可可(Theobroma grandiforum,cupuassu)、三叶草类(Trifolium sp.)、巴西针棕(Trithrinax brasiliensis,巴西针棕(Brazilian needle palm))、麦类(Triticum sp., 麦(wheat))如小麦(Triticum aestivum)和玉米(Zea mays,玉米(corn))。在一实施方案中,所述欧洲油菜植物是Westar变种。在另外的实施方案中,如果所述植物是欧洲油菜,其是Westar之外的变种或品种。在一实施方案中,所述植物是拟南芥之外的物种。在另一实施方案中,所述植物是红花烟草之外的物种。在另一实施方案中,所述植物是本氏烟草之外的物种。在一个实施方案中,所述植物是多年生的,例如柳枝稷。对于第二方面的植物所描述的每个特征在必要修改后均适用于第一方面的所述营养性植物部分。
[0067] 在一实施方案中,所述非人生物体是产油真菌如产油酵母。
[0068] 在优选的实施方案中,提取脂质而并未在该提取前干燥所述非人生物体或其部分。所提取的脂质可随后被干燥或分馏以降低其水分含量。
[0069] 在本方面另外的实施方案中,本发明提供了用于从特定的油料种子植物产生经提取的脂质的方法。在一实施方案中,本发明提供了用于产生提取的油菜(canola)油的方法,所述方法包括步骤:
[0070] i)获得基于重量包含至少45%种子油的油菜种子,
[0071] ii)从所述油菜种子提取油,并
[0072] iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少90%(w/w)的三酰基甘油(TAG),由此产生油菜油。在优选的实施方案中,所述油菜种子基于重量具有至少46%、至少 47%、至少48%、至少49%、至少50%、至少51%、至少52%、至少53%、至少54%、至少55%或者至少
56%的油含量。所述油含量可通过测量从所述种子(该种子如通常所收获的那样是经脱粒的)提取的油的量来确定,并计算为该种子重量的百分比,即% (w/w)。油菜种子的水分含量为5%至15%,且优选为大约8.5%。在一实施方案中,油酸含量为油菜油中总脂肪酸的大约58%至62%,优选至少63%,并且棕榈酸的含量为油菜油中总脂肪酸的大约4%至大约
6%。优选的油菜油具有110-120的碘价以及低于 30ppm的叶绿素水平。
[0073] 在另一实施方案中,本发明提供了用于产生提取的玉米种子油的方法,所述方法包括步骤:
[0074] i)获得基于重量包含至少5%种子油的玉米种子,
[0075] ii)从所述玉米种子提取油,并
[0076] iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少80%、优选至少85%或者至少90% (w/w)的三酰基甘油(TAG),
[0077] 由此产生玉米种子油。在优选的实施方案中,所述玉米种子基于种子重量(w/w)具有至少6%、至少7%、至少8%、至少9%、至少10%、至少11%、至少12%或者至少13%的油含量。玉米种子的水分含量为大约13%至大约17%,优选大约15%。优选的玉米种子包含大约0.1%的生育酚。
[0078] 在另一实施方案中,本发明提供了用于产生提取的大豆油的方法,所述方法包括步骤:
[0079] i)获得基于重量包含至少20%种子油的大豆种子,
[0080] ii)从所述大豆种子提取油,并
[0081] iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少90%(w/w)的三酰基甘油(TAG),由此生产大豆油。在优选的实施方案中,所述大豆种子基于种子重量(w/w)具有至少 21%、至少22%、至少23%、至少24%、至少25%、至少26%、至少27%、至少28%的油含量;至少29%、至少30%、或至少31%的油含量。在一实施方案中,油酸含量为大豆油中总脂肪酸的大约
20%至大约25%,优选至少30%,亚油酸含量为至少大约 45%至大约57%,优选低于45%,且棕榈酸的含量为大豆油中总脂肪酸的大约10%至大约15,优选低于10%。优选所述大豆种子基于干重具有大约40%的蛋白含量,并且大豆种子的水分含量为大约10%至大约
16%,优选大约13%。
[0082] 在另一实施方案中,本发明提供了用于产生提取的羽扇豆种子油的方法,所述方法包括步骤:
[0083] i)获得基于重量包含至少10%种子油的羽扇豆种子,
[0084] ii)从所述羽扇豆种子提取油,并
[0085] iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少90%(w/w)的三酰基甘油(TAG),由此产生羽扇豆种子油。在优选的实施方案中,所述羽扇豆种子基于种子重量(w/w)具有至少11%、至少12%、至少13%、至少14%、至少15%、或至少16%的油含量。
[0086] 在另一实施方案中,本发明提供了用于产生提取的花生油的方法,所述方法包括步骤:
[0087] i)获得基于重量包含至少50%种子油的花生,
[0088] ii)从所述花生提取油,并
[0089] iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少90%(w/w)的三酰基甘油(TAG),由此产生花生油。在优选的实施方案中,所述花生种子(花生)基于种子重量(w/w)具有至少51%、至少52%、至少53%、至少54%、至少55%或者至少56%的油含量。在一实施方案中,油酸含量为花生油中总脂肪酸的大约38%至59%,优选至少60%,并且棕榈酸的含量为花生油中总脂肪酸的大约9%至大约13%,优选低于9%。
[0090] 在另一实施方案中,本发明提供了用于产生提取的向日葵油的方法,所述方法包括步骤:
[0091] i)获得基于重量包含至少50%种子油的向日葵种子,
[0092] ii)从所述向日葵种子提取油,并
[0093] iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少90%(w/w)的三酰基甘油(TAG),由此产生向日葵油。在优选的实施方案中,所述向日葵种子基于种子重量(w/w)具有至少51%、至少52%、至少53%、至少54%、或至少55%。
[0094] 在另一实施方案中,本发明提供了用于产生提取的棉花种子油的方法,所述方法包括步骤:
[0095] i)获得基于重量包含至少41%种子油的棉花种子,
[0096] ii)从所述棉花种子提取油,并
[0097] iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少90%(w/w)的三酰基甘油(TAG),由此产生棉花种子油。在前置的(prefixed)实施方案中,所述棉花种子基于种子重量(w/w) 具有至少42%、至少43%、至少44%、至少45%、至少46%、至少47%、至少48%、至少49%、或至少50%的油含量。在一实施方案中,油酸含量为棉花油中总脂肪酸的大约15%至22%,优选至少22%,亚油酸为大约45%至大约57%,优选低于45%,并且棕榈酸的含量为棉花种子油中总脂肪酸的大约20%至大约26%,优选低于18%。在一实施方案中,所述棉花种子油还含有环丙烷化的(cyclopropanated)脂肪酸如苹婆酸和锦葵酸,并且可含有小量的棉酚。
[0098] 在另一实施方案中,本发明提供了用于产生提取的红花油的方法,所述方法包括步骤:
[0099] i)获得基于重量包含至少35%种子油的红花种子,
[0100] ii)从所述红花种子提取油,并
[0101] iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少90%(w/w)的三酰基甘油(TAG),由此产生红花油。在优选的实施方案中,所述红花种子基于种子重量(w/w)具有至少 36%、至少37%、至少38%、至少39%、至少40%、至少41%、至少42%、至少43%、至少44%、或至少
45%的油含量。
[0102] 在另一实施方案中,本发明提供了用于产生提取的亚麻种子油的方法,所述方法包括步骤:
[0103] i)获得基于重量包含至少36%种子油的亚麻种子,
[0104] ii)从所述亚麻种子提取油,并
[0105] iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少90%(w/w)的三酰基甘油(TAG),由此产生亚麻种子油。在优选的实施方案中,所述亚麻种子基于种子重量(w/w)具有至少37%、至少38%、至少39%、或至少40%的油含量。
[0106] 在另一实施方案中,本发明提供了用于产生提取的亚麻荠油的方法,所述方法包括步骤:
[0107] i)获得基于重量包含至少36%种子油的亚麻荠种子,
[0108] ii)从所述亚麻荠种子提取油,并
[0109] iii)回收所述油,其中所回收的油包含至少90%(w/w)的三酰基甘油(TAG),由此产生亚麻荠油。在优选的实施方案中,所述亚麻荠种子基于种子重量(w/w)具有至少37%、至少38%、至少39%、至少40%、至少41%、至少42%、至少43%、至少44%、或至少45%的油含量。
[0110] 第二方面的方法还可以包括通过如Horn et al.(2007)中所述的近红外反射光谱来测量种子的油和/或蛋白含量。
[0111] 在一实施方案中,本发明第二方面的方法包括部分地或完全地干燥营养性植物部分、非人生物体、或其部分、或者种子,和/或在提取的过程中包括以下的一或多种:辗压、压榨如压片、破碎或研磨所述营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子,或者这些方法的任意组合。所述方法可在提取的过程中使用有机溶剂(例如,己烷如n- 己烷或者n-己烷与异己烷的组合,或者单独的丁烷或与己烷组合)以提取脂质或油或者提高提取过程的效率,其部分地与预先的干燥过程组合以降低水分含量。
[0112] 在一实施方案中,所述方法包括通过将所提取的脂质或油收集在容器中而回收所提取的脂质或油,和/或纯化所提取的脂质或种子油,如例如,通过将所提取的脂质或油脱胶、除臭、脱色、干燥和/或分馏,和/或从所提取的脂质或油去除至少部分、优选基本上全部的蜡和/或蜡酯。所述方法可包括分析所提取的脂质或油的脂肪酸组成,如例如,通过将所提取的脂质或油中的脂肪酸转化成脂肪酸甲基酯并使用GC来分析这些以确定脂肪酸组成。在脂质或油任何改变其脂肪酸组成的分流之前确定脂质或油的脂肪酸组成。所提取的脂质或油可包含多种脂质类型的混合和/或脂质的一或多种衍生物,如游离脂肪酸
[0113] 在一实施方案中,本发明第二方面的方法导致了大量的提取的脂质或油。在一实施方案中,所提取的脂质或油的体积为至少1升,优选至少10升。在优选的实施方案中,所提取的脂质或油经包装以备运输或销售。
[0114] 在一实施方案中,所提取的脂质或油基于重量包含至少91%、至少92%、至少93%、至少94%、至少95%或者至少96%的TAG。所提取的脂质或油可包含磷脂作为次要成份,其基于重量高达大约8%、优选基于重量低于5%、更优选基于重量低于3%。
[0115] 在一实施方案中,所述方法导致提取的脂质或油,其中以下特征的一种或多种或全部适用:
[0116] (i)三酰基甘油含至少90%、优选至少95%或96%的所提取的脂质或油,
[0117] (ii)所提取的脂质或油包含游离固醇、固醇酯、固醇糖苷、蜡或蜡酯、或者其任意组合,和
[0118] (iii)所提取的脂质或油中的总固醇含量和/或组成,与从相应非人生物体或其部分、或种子所产生的提取的脂质或油中的固醇含量和/或组成有显著不同。
[0119] 在一实施方案中,所述方法还包括将所提取的脂质或油转化成工业产品。即,在提取之后将所提取的脂质或油转化为作为工业产品的另一化学形式。优选地,其中所述工业产品是烃产品如脂肪酸酯,优选脂肪酸甲基酯和/或脂肪酸乙基酯,烷烃如甲烷、乙烷或更长链的烷烃,更长链的烷烃的混合物,烯烃,生物燃料,一氧化碳和/或氢气,生物醇如乙醇、丙醇或丁醇,生物炭,或者一氧化碳、氢和生物炭的混合物。
[0120] 在本发明第一方面或第二方面的方法中,营养性植物部分、或所述非人生物体的部分可以是气生植物部分或绿色植物部分如植物叶或茎,木质部分(woody part)如茎、枝条或树干、或者根或块茎。优选地,所述植物在田间生长并且所述部分如种子收获自田间的植物。
[0121] 在一实施方案中,所述方法还包括收获营养性植物部分、非人生物体或其部分的步骤,优选使用机械收割机。
[0122] 优选地,在非极性脂质的产量处于其最高时收获营养性植物部分。在一个实施方案中,大约在开花的时候收获营养性植物部分。在另一实施方案中,在从大约开花至大约开始衰败时收获营养性植物部分。在另一实施方案中,在所述植物至少1个月大时收获营养性植物部分。
[0123] 如果所述生物体是藻类或真菌生物体,则可以在封闭的容器中或者在开放的体系如池塘中培养细胞。所得的包含非极性脂质的生物体可通过如下方式收获,如例如,通过包括过滤、离心、沉降、浮选或絮凝藻类或真菌的方法,如通过调节培养基的pH。比较不优选沉降。
[0124] 在本发明第二方面的方法中,所述非人生物体或其部分(如营养性植物部分或种子) 的总非极性脂质含量,相对于相应营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子而言提高了。
[0125] 在一实施方案中,本发明第一方面或第二方面的营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子进一步由三个特征单独或组合限定,也即特征(i)、特征(ii)和特征(iii):
[0126] 特征(i)对营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子的一或多种非极性脂质或总非极性脂质含量水平提高的程度进行了定量,其可表示为以重量计的提高程度 (基于干重或基于种子重量),或者表示为与相应营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子中的水平相比相对的提高。特征(ii)指定了植物的属或种、或者真菌或藻类的种、或者其它细胞类型,而特征(iii)指定了非极性脂质含量中提高的一或多种特定脂质。
[0127] 对于特征(i),在一实施方案中,所述一或多种非极性脂质提高的程度为,基于干重或种子重量,比相应营养性植物部分、或非人生物体或其部分高至少0.5%、至少 1%、至少2%、至少3%、至少4%、至少5%、至少6%、至少7%、至少8%、至少9%、至少10%、至少11%、至少12%、至少13%、至少14%、至少15%、至少16%、至少 17%、至少18%、至少
19%、至少20%、至少21%、至少22%、至少23%、至少24%、至少25%或者至少26%。
[0128] 另外对于特征(i),在优选的实施方案中,营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子的总非极性脂质含量与相应营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子相比提高了。在一实施方案中,基于干重或种子重量,总非极性脂质含量提高到比相应营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子高至少0.5%、至少1%、至少2%、至少3%、至少4%、至少5%、至少6%、至少7%、至少8%、至少9%、至少10%、至少11%、至少12%、至少
13%、至少14%、至少15%、至少16%、至少17%、至少 18%、至少19%、至少20%、至少
21%、至少22%、至少23%、至少24%、至少25%或者至少26%。
[0129] 另外,对于特征(i),在一实施方案中,一或多种非极性脂质的水平和/或总非极性脂质含量以相对计比相应营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子至少高1%、至少2%、至少3%、至少4%、至少5%、至少6%、至少7%、至少8%、至少9%、至少10%、至少11%、至少12%、至少13%、至少14%、至少15%、至少16%、至少17%、至少18%、至少19%、至少20%、至少21%、至少22%、至少23%、至少24%、至少 25%、至少30%、至少35%、至少
40%、至少45%、至少50%、至少60%、至少70%、至少80%、至少90%、或至少100%。
[0130] 另外对于特征(i),一或多种非极性脂质的水平和/或总非极性脂质含量的提高程度可以是以相对计比相应营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子高至少2倍、至少3倍、至少4倍、至少5倍、至少6倍、至少7倍、至少8倍、至少9倍、至少 10倍、或至少12倍,优选至少约13倍或至少约15倍。
[0131] 作为如特征(i)所定义的一或多种非极性脂质和/或总非极性脂质含量提高的结果,营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子的总非极性脂质含量优选为5%至 25%、7%至25%、10%至25%、12%至25%、15%至25%、7%至20%、10%至20%、约10%、约11%、约12%、约13%、约14%、约15%、约16%、约17%、约18%、约 20%、或者约22%、每个均为干重或种子重量的百分比。
[0132] 对于特征(ii),在一实施方案中,所述非人生物体是植物、藻类、或适宜于发酵的其它生物体如酵母或真菌,优选产油真菌如产油酵母。所述植物可以是、或者所述营养性植物部分可来自,例如下列的植物:刺干椰(Acrocomia aculeata(macauba palm))、拟南芥(Arabidopsis thaliana)、花生(Aracinis hypogaea,花生(peanut))、木鲁星果棕 (Astrocaryum murumuru,(murumuru))、Astrocaryum vulgare(tucuma)、Attalea geraensis (Indaia-rateiro)、Attalea humilis(美洲油棕(American oil palm))、Attalea oleifera(andaia)、 Attalea phalerata(uricuri)、Attalea speciosa(babassu)、燕麦(Avena sativa,燕麦(oats))、甜菜(Beta vulgaris,甜菜(sugar beet))、芸苔类(Brassica sp.)如Brassica  carinata、Brassica juncea、Brassica napobrassica、欧洲油菜(Brassica napus,(油菜))、亚麻荠(Camelina sativa,亚麻荠(false flax))、大麻(Cannabis sativa,大麻(hemp))、红花(Carthamus tinctorius,红花(safflower))、Caryocar brasiliense(pequi)、椰子(Cocos nucifera,椰子 (Coconut))、海甘蓝(Crambe abyssinica,海甘蓝(Abyssinian kale))、甜瓜(Cucumis melo,甜瓜(melon))、油棕(Elaeis guineensis,非洲棕榈(African palm))、大豆(Glycine max,大豆(soybean))、陆地棉(Gossypium hirsutum,棉花)、向日葵类(Helianthus sp.)如向日葵 (Helianthus annuus,向日葵(sunflower))、大麦(Hordeum vulgare,大麦(barley))、麻风树 (Jatropha curcas,麻风树(physic nut))、Joannesia princeps(arara nut-tree)、浮萍类(Lemna sp.,浮萍(duckweed))如青萍(Lemna aequinoctialis)、Lemna disperma、Lemna ecuadoriensis、膨胀浮萍(Lemna gibba,膨胀浮萍swollen duckweed)、日本浮萍(Lemna japonica)、浮萍(Lemna minor)、单脉萍(Lemna minuta)、Lemna obscura、稀脉萍(Lemna paucicostata)、稀脉浮萍(Lemna perpusilla)、Lemna tenera、吕藻(Lemna trisulca)、鳞根萍(Lemna trisulca)、Lemna valdiviana、Lemna yungensis、奥蒂树(Licania rigida,奥蒂 (oiticica))、亚麻(Linum usitatissimum,亚麻(flax))、羽扇豆(Lupinus angustifolius,羽扇豆 (lupin))、曲叶矛榈(Mauritia flexuosa,Buriti棕榈)、摩帝椰子(Maximiliana maripa,Inaja 棕榈)、芒草类(Miscanthus sp.)如异源三倍体芒草奇岗(Miscanthus x giganteus)和中国芒 (Miscanthus sinensis),烟草类(Nicotiana sp.,烟草(tabacco))如红花烟草(Nicotiana tabacum) 或本氏烟草
(Nicotiana benthamiana)、巴卡巴酒实棕(Oenocarpus bacaba巴卡巴酒实棕 (bacaba-do-azeite))、巴套阿酒实棕(Oenocarpus bataua,pataua)、Oenocarpus distichus (bacaba-de-leque),稻类(Oryza sp.,稻(rice))如水稻(Oryza sativa)和光稃稻(Oryza glaberrima)、柳枝稷(Panicum virgatum,柳枝稷(switchgrass))、Paraqueiba paraensis (mari)、鳄梨(Persea amencana,鳄梨(avocado))、水黄皮(Pongamia pinnata,印度山毛榉 (Indian beech))、毛果杨(Populus trichocarpa)、蓖麻(Ricinus communis,蓖麻(castor)),蔗类(Saccharum sp.,甘蔗(sugarcane))、芝麻(Sesamum indicum,芝麻(sesame))、马铃薯 (Solanum tuberosum,马铃薯(potato))、高粱类(Sorghum sp.)如两色高粱(Sorghum bicolor)、高粱(Sorghum vulgare)、大花可可(Theobroma grandiforum,cupuassu)、三叶草类(Trifolium sp.)、巴西针棕(Trithrinax brasiliensis,巴西针棕(Brazilian needle palm))、麦类(Triticum sp., 麦(wheat))如小麦(Triticum aestivum)和玉米(Zea mays,玉米(corn))。在一实施方案中,所述欧洲油菜植物是Westar变种。在另外的实施方案中,如果所述植物是欧洲油菜,其是Westar之外的变种或品种。在一实施方案中,所述植物是拟南芥之外的物种.在另一实施方案中,所述植物是红花烟草之外的物种.在另一实施方案中,所述植物是本氏烟草之外的物种。在一个实施方案中,所述植物是多年生的,例如柳枝稷。对于第二方面的植物所描述的每个特征在必要修改后均适用于第一方面的所述营养性植物部分。
[0133] 对于特征(iii),TAG、DAG、TAG和DAG、MAG、多不饱和脂肪酸(PUFA)、或具体PUFA(诸如二十碳二烯酸(EDA)、花生四烯酸(ARA)、α亚麻酸(ALA)、十八碳四烯酸 (SDA)、二十碳三烯酸(ETE)、二十碳四烯酸(ETA)、二十碳五烯酸(EPA)、二十二碳五烯酸(DPA)、二十二碳六烯酸(DHA)),或者脂肪酸(其包含羟基、环氧基、环丙烷基、碳碳双键、碳碳三键、共轭双键、支链如甲基化的或羟基化的支链,或者其两种或更多种的组合,或者前述基团、键或支链的任意两种、三种、四种、五种或六种)得到了提高或者降低。TAG、DAG、TAG和DAG、MAG、PUFA或具体PUFA的升高程度可如上面的特征(i)所定义。在一个优选的实施方案中,MAG为2-MAG。优选地,DAG和/或 TAG,更优选DAG和TAG的总和得以升高。在一实施方案中,TAG水平提高而未提高MAG和/或DAG含量。
[0134] 另外对于特征(iii),在一实施方案中,相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子而言,总非极性脂质含量的总脂肪酸含量和/或TAG含量包含(a)至少多2%的、优选至少多5%的、更优选至少多7%的、最优选至少多10%的、至少多15%的、至少多20%的、至少多25%的油酸,或者至少多30%。在一实施方案中,相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子而言,非极性脂质中的总脂肪酸含量包含(b)至少低2%的、优选至少低4%的、更优选至少低7%的、至少低10%的、至少低15%的、或至少低20%的棕榈酸。在一实施方案中,相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子而言,总非极性脂质含量的总脂肪酸含量包含(c)至少低2%的、优选至少低4%的、更优选至少低7%的、至少低10%的s、或至少低15%的ALA。在一实施方案中,相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子而言,总非极性脂质含量的总脂肪酸含量包含(d)至少多2%的、优选至少多5%的、更优选至少多7%的、最优选至少多 10%的、至少多15%的LA。最优选地,总非极性脂质含量的总脂肪酸和/或TAG含量根据(a)中定义的情形具有提高的油酸水平以及根据(b)中定义的情形具有降低的棕榈酸水平。在一实施方案中,相对于来自相应种子的种子油,总固醇含量提高了至少10%。在一实施方案中,所提取的脂质或油包含至少10ppm的叶绿素,优选至少
30ppm的叶绿素。所述叶绿素可以随后通过将所提取的脂质或油进行脱色来去除。
[0135] 在优选的实施方案中,所述一种或多种非极性脂质和/或总非极性脂质含量通过特征(i)、(ii)和(iii),或特征(i)和(ii),或特征(i)和(iii)的组合定义。
[0136] 本发明第二方面的方法,在一实施方案中,适用以下特征的一种或多种或全部:
[0137] (i)营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子中一或多种非极性脂质的水平,比缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中的水平以重量计分别高至少0.5%,或者优选如特征(i)所进一步定义的,
[0138] (ii)营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中一或多种非极性脂质的水平,比缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中以相对计分别高至少1%,或者优选如特征(i)所进一步定义的,
[0139] (iii)营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中总非极性脂质含量,比缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中的水平以重量计分别高至少0.5%,或者优选如特征(i)所进一步定义的,
[0140] (iv)营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中总非极性脂质含量,比缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中以相对计分别高至少1%,或者优选如特征(i)所进一步定义的,
[0141] (v)营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中一或多种非极性脂质的水平和/或总非极性脂质含量,比缺乏所述一或多种外源多核苷酸并且包含编码拟南芥 DGAT1的外源多核苷酸的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中以重量计分别高至少0.5%和/或以相对计分别高至少1%,或者优选如特征(i)所进一步定义的,
[0142] (vi)营养性植物部分、非人生物体或其部分、和/或由其所提取的脂质中脂质里的 TAG、DAG、TAG和DAG、或MAG含量,以相对计至少比缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分、或由其所提取的脂质中脂质里的TAG、DAG、TAG和DAG、或MAG含量分别高10%,或者优选如特征(i)所进一步定义的,以及
[0143] (vii)营养性植物部分、非人生物体或其部分、和/或由其所提取的脂质中脂质里的总多不饱和脂肪酸(PUFA)含量,相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分、或由其所提取的脂质中脂质里的总PUFA含量而言,分别提高了(例如,在存在MGAT时)或者降低了(例如,在缺乏MGAT时),或者优选如特征(i)或特征(iii)所进一步定义的。
[0144] 在一实施方案中,营养性植物部分、非人生物体或其部分、或者种子和/或由其所提取的脂质中的PUFA水平,分别相对于相应营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子、或者由其所提取的相应脂质中的PUFA水平而言,被提高了,其中所述多不饱和脂肪酸是二十碳二烯酸、花生四烯酸(ARA)、α-亚麻酸(ALA)、十八碳四烯酸(SDA)、二十碳三烯酸(ETE)、二十碳四烯酸(ETA)、二十碳五烯酸(EPA)、二十二碳五烯酸(DPA)、二十二碳六烯酸(DHA)、或者其任意两种或更多种的组合。优选地,提高的程度如特征 (i)中所定义。
[0145] 在第二方面的实施方案中,所述相应营养性植物部分、或者非人生物体或其部分、或种子分别是非转基因营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子。在优选的实施方案中,所述相应营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子是相同的栽培种、株系或变种但却缺乏所述一或多种外源多核苷酸。在优选的实施方案中,相应的营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子与营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子处于相同的发育阶段,例如,开花。在另一实施方案中,在从大约开花至大约开始衰败时收获营养性植物部分。在另一实施方案中,在所述植物至少1个月大时收获种子。
[0146] 在一实施方案中,所述非人生物体的部分是种子并且该种子的总油含量、或总脂肪酸含量,比缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应种子高至少0.5%至25%、或至少 1.0%至24%。
[0147] 在一实施方案中,以相对计所述种子油的相对DAG含量比来自相应种子的种子油高至少10%、至少10.5%、至少11%、至少11.5%、至少12%、至少12.5%、至少13%、至少13.5%、至少14%、至少14.5%、至少15%、至少15.5%、至少16%、至少16.5%、至少17%、至少17.5%、至少18%、至少18.5%、至少19%、至少19.5%、至少20%。在一实施方案中,所述种子的DAG含量提高了如特征(i)所定义的量并且所述种子来自特征(ii)所定义的属和/或种。
[0148] 在一实施方案中,以绝对计,所述种子的相对TAG含量相对于相应种子而言高至少5%、至少5.5%、至少6%、至少6.5%、至少7%、至少7.5%、至少8%、至少8.5%、至少9%、至少9.5%、至少10%、或至少11%。在一实施方案中,所述种子的TAG含量提高了如特征(i)所定义的量并且所述种子来自特征(ii)所定义的属和/或种。
[0149] 在另一实施方案中,所述非人生物体的部分是营养性植物部分,并且所述营养性植物部分的TAG、DAG、TAG和DAG、或MAG含量,以相对计,比缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分的TAG、DAG、TAG和DAG、或MAG含量高至少10%、至少11%、至少12%、至少13%、至少14%、至少15%、至少16%、至少17%、至少18%、至少19%、至少20%、至少21%、至少22%、至少23%、至少24%、至少 25%、至少30%、至少35%、至少40%、至少
45%、至少50%、至少60%、至少70%、至少80%、至少90%、或至少100%。在优选的实施方案中,所述MAG为2-MAG。在一实施方案中,所述营养性植物部分的TAG、DAG、TAG和DAG、或MAG含量从营养性植物部分可提取脂质中这些脂质成分的量确定。在另外的实施方案中,转基因营养性植物部分的TAG、DAG、TAG和DAG、或MAG含量以特征(i)所定义的量增加。
[0150] 在一实施方案中,营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子、或者由其所提取的脂质或油的总非极性脂质含量的脂肪酸含量(优选TAG部分)的至少20%(mol%)、至少22%(mol%)、至少30%(mol%)、至少40%(mol%)、至少50%(mol%)或至少60% (mol%)、优选至少65%(mol%)、更优选至少66%(mol%)、至少67%(mol%)、至少68% (mol%)、至少69%(mol%)或至少70%(mol%),是油酸。这种高油酸含量对于生物柴油应用中的用途而言是优选的。
[0151] 在另一实施方案中,所述营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子的PUFA 含量在与相应营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子相比时提高了(例如,在存在MGAT时)或者降低了(例如,在缺乏MGAT时)。就此而言,所述PUFA含量包括酯化的PUFA(包括TAG、DAG等)和非酯化的PUFA。在一实施方案中,营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子的PUFA含量优选从营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子的可提取脂质中PUFA的量确定。PUFA含量增加的程度可以如特征(i)所定义。所述PUFA含量可包含EDA、ARA、ALA、SDA、ETE、ETA、EPA、 DPA、DHA,或其任意两种或更多种的组合。
[0152] 在另一实施方案中,营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子、或由其所提取的脂质或油中的PUFA水平在与相应营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子、或由其所提取的脂质或油相比时提高了或者降低了。所述PUFA含量可包含EDA、ARA、 ALA、SDA、ETE、ETA、EPA、DPA、DHA,或其任意两种或更多种的组合。PUFA 含量增加的程度可以如特征(i)所定义。
[0153] 在另一实施方案中,所提取的脂质或油中脂肪酸的水平在与从相应营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子提取的脂质相比市提高了,并且其中所述脂肪酸包含羟基,环氧基、环丙烷基、碳碳双键碳碳三键,共轭双键,支链如甲基化的或羟基化的支链,或者其两种或更多种的组合,或者前述基团、键或支链的任意两种、三种、四种、五种或六种。脂肪酸提高的程度可以如特征(i)所定义。
[0154] 在一实施方案中,所述一或多种非极性脂质(如TAG、DAG、TAG和DAG、MAG、 PUFA、或特定的PUFA、或特定的脂肪酸)的水平和/或总非极性脂质含量可通过使用气相色谱对得自提取的脂质的脂肪酸甲酯进行分析而测定。测定任何这些含量的备选方法在本领域中是已知的,并包括不需要从生物或其部分中提取脂质的方法,例如通过近红外(NIR)或核磁共振(NMR)进行的分析。
[0155] 在另外的实施方案中,所述营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子的所述一种或多种非极性脂质水平和/或所述总非极性脂质含量,与不含所述一种或多种外源多核苷酸但包含编码拟南芥DGAT1(SEQ ID NO:83)的外源多核苷酸的相应营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子相比,按干重或种子重量计高至少0.5%、和/ 或以相对计高至少1%,优选按干重或种子重量计高至少1%或2%。
[0156] 在又一实施方案中,所述营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子进还包含(i)一个或多个引入的突变,和/或(ii)下调所述所述营养性植物部分、或非人生物体或其部分的内源酶的产生和/或活性的外源多核苷酸,所述内源酶选自脂肪酸酰基转移酶,如DGAT、sn1-甘油-3-磷酸酰基转移酶(sn1-GPAT)、l-酰基-甘油-3-磷酸酰基转移酶 (LPAAT),酰基辅酶A:溶血卵磷脂酰基转移酶(LPCAT)、磷脂酸磷酸酶(PAP),淀粉生物合成中所涉及的酶如(ADP)-葡萄糖焦磷酸化酶(AGPase),脂肪酸去饱和酶如Δ12脂肪酸去饱和酶(FAD2),脂质降解中所涉及的多肽和/或降低脂质含量的多肽如脂肪酶诸如 CGi58多肽或SUGAR-DEPENDENT1三酰基甘油脂肪酶,或者其两种或更多种的组合。在另外的实施方案中,所述营养性植物部分或者所述非人生物体或其部分不包含上述的 (i)、或者不包含上述的(ii)、或者不包含上述的(i)且或者不包含上述的(ii)。在一实施方案中,下调AGPase产生的外源多核苷酸不是Sanjaya et al.(2011)中公开的多核苷酸。在一实施方案中,所述营养性植物部分或所述非人生物体或其部分、或种子中的外源多核苷酸不是由编码WRI1的外源多核苷酸和编码RNA分子(抑制编码AGPase基因的表达)的外源多核苷酸所组成。
[0157] 在第一方面或第二方面的方法中,营养性植物部分、者非人生物体或其部分、或种子、或者所提取的脂质或油进一步在优选的实施方案中进行限定。因此,在一个实施方案中,下列特征中的一种或多种或全部适用
[0158] (i)油酸占营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中非极性脂质或油里的总脂肪酸含量的至少20%(mol%)、至少22%(mol%)、至少30%(mol%)、至少40%(mol%)、至少50%(mol%)、或至少60%(mol%)、优选至少65%(mol%)或至少66%(mol%),
[0159] ii)油酸占所提取的脂质或油中的总脂肪酸含量的至少20%(mol%)、至少22% (mol%)、至少30%(mol%)、至少40%(mol%)、至少50%(mol%)、或至少60%(mol%)、优选至少65%(mol%)或至少66%(mol%),
[0160] (iii)营养性植物部分、非人生物体或其部分、或者种子中的非极性脂质或油包含脂肪酸,该脂肪酸包含羟基,环氧基、环丙烷基、碳碳双键、碳碳三键、共轭双键,支链如甲基化的或羟基化的支链,或者其两种或更多种的组合,或者前述基团、键或支链的任意两种、三种、四种、五种或六种,和
[0161] (iv)所提取的脂质或油包含脂肪酸,该脂肪酸包含羟基、环氧基、环丙烷基、碳碳双键、碳碳三键、共轭双键、支链如甲基化的或羟基化的支链,或者其两种或更多种的组合,或者前述基团、键或支链的任意两种、三种、四种、五种或六种。此实施方案中的脂肪酸组成在任何脂肪酸组成的改变前测量,如例如,分馏所提取的脂质或油以改变脂肪酸组成。在优选的实施方案中,提高的程度如特征(i)中所定义。
[0162] 在一实施方案中,营养性植物部分、非人生物体或其部分、或者种子中的和/或所提取的脂质或油中的脂质水平能够通过使用脂肪酸甲基酯的气相色谱的分析来确定,其中所述脂肪酸甲基酯从所提取的脂质或油制备。分析的方法优选如本文的实施例1中所述。
[0163] 另外对于第一或第二方面,本发明提供了所述方法中使用的营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子中的一或多种外源多核苷酸。因此,在一实施方案中,营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码RNA或优选转录因子多肽的第一外源多核苷酸,所述RNA或转录因子多肽在营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中分别提高一或多种糖分解或脂肪酸生物合成基因的表达,以及包含编码RNA 和多肽的第二外源多核苷酸,所述RNA和多肽涉及一或多种非极性脂质的生物合成,其中所述第一和第二外源多核苷酸每个均可操纵地连接至启动子,所述启动子能够在营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中分别引导所述多核苷酸的表达。也即,所述第一和第二外源多核苷酸编码不同的因子,其一起提供了营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子中非极性脂质含量的提高。
[0164] 相对于单独存在第一或者第二外源多核苷酸而言,所述提高优选是加和性的,更优选是协同性的。第一和第二多核苷酸所编码的因子由不同的机制所操控。优选地,转录因子多肽增加用于非极性脂质合成的底物的可用性,如例如,增加甘油-3-磷酸和/或脂肪酸优选酰基-CoA的形式,通过提高糖分解或脂肪酸生物合成中所涉及的基因的表达,例如至少5个或8个基因,(例如但不限于以下的一或多种:ACCase、蔗糖转运蛋白(SuSy、细胞壁转化酶)、缩酶(KAS)、磷酸果糖激酶(PFK)、丙酮酸激酶(PK)(例如,(At5g52920、 At3g22960)、丙酮酸脱氢酶、己糖转运蛋白(例如,GPT2和PPT1)、胞质果糖激酶、胞质磷酸甘油酸变位酶、烯酰-ACP还原酶(At2g05990)、和磷酸甘油酸变位酶(Atlg22170)),优选每个类别超过一种基因。在一实施方案中,第一外源多核苷酸编码Wrinkled 1 (WRI1)转录因子、Leafy Cotyledon 1(Lecl)转录因子、Leafy Cotyledon 2(LEC2)转录因子、 Fus3转录因子、ABI3转录因子、Dof4转录因子、BABY BOOM(BBM)转录因子或Dofl l转录因子。在一个实施方案中,所述LEC2不是拟南芥LEC2。作为此实施方案的一部分,或者单独地,第二外源多核苷酸可编码具有脂肪酸酰基转移酶活性的多肽,例如,单酰基甘油酰基转移酶(MGAT)活性和/或二酰基甘油酰基转移酶(DGAT)活性、或者甘油 -3-磷酸酰基转移酶(GPAT)活性。在一个实施方案中,所述DGAT不是拟南芥DGAT。
[0165] 在优选的实施方案中,本发明第一或第二方面的所述营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子包含两种或更多种外源多核苷酸,其中之一编码提高营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子中一或多种糖分解或脂肪酸生物合成基因的表达的转录因子多肽,如Wrinkled 1(WRIl)转录因子,以及其中的第二个编码一或多种非极性脂质的生物合成中所涉及的多肽如DGAT。
[0166] 在一实施方案中,本发明第一或第二方面的所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子可进一步包含第三种、或更多种外源多核苷酸。所述第三种、或更多种外源多核苷酸可编码以下的一种或多种或任意组合:
[0167] i)提高非人生物体或其部分中一或多种糖分解或脂肪酸生物合成基因的表达的另外的RNA或转录因子多肽(例如,如果第一外源多核苷酸编码Wrinkled 1(WRIl)转录因子,第三外源多核苷酸可编码LEC2或BBM转录因子(优选地,由可诱导启动子或者不导致高转基因表达水平的启动子所控制的LEC2或BBM表达),
[0168] ii)一或多种非极性脂质的生物合成中涉及的另外的RNA或多肽(例如,如果第二外源多核苷酸编码DGAT,第三外源多核苷酸可编码MGAT或GPAT,或者可存在另外两个外源多核苷酸编码MGAT和GPAT),
[0169] iii)稳定所述一或多种非极性脂质的多肽,优选油体蛋白(Oleosin),如聚油体蛋白 (polyoleosin)或者油体蛋白(油体钙蛋白),更优选聚油体蛋白,
[0170] iv)抑制基因表达的RNA分子,所述基因编码淀粉生物合成中所涉及的多肽,如 AGPase多肽,
[0171] v)抑制基因表达的RNA分子,所述基因编码脂质降解中所涉及的多肽和/或降低脂质含量的多肽,如脂肪酶如CGi58多肽或SUGAR-DEPENDENT 1三酰基甘油脂肪酶,或[0172] vi)沉默抑制子多肽,其中所述第三种或更多种外源多核苷酸均可操纵地连接至启动子,所述启动子能够在营养性植物部分、或非人生物体或其部分、第三种或更多种外源多核苷酸均可操纵地连接至启动子,所述启动子能够在营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子中分别引导所述多核苷酸的表达。
[0173] 本文示出了许多基因的特定组合,以有效地提高非极性脂质含量。因此,对于本发明第一或第二方面的方法,在一实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含一或多种外源多核苷酸,所述外源多核苷酸编码:
[0174] i)Wrinkled 1(WRI1)转录因子和DGAT,
[0175] ii)WRI1转录因子和DGAT和油体蛋白,
[0176] iii)WRI1转录因子、DGAT、MGAT和油体蛋白,
[0177] iv)单酰基甘油酰基转移酶(MGAT),
[0178] v)二酰基甘油酰基转移酶2(DGAT2),
[0179] vi)MGAT和甘油-3-磷酸酰基转移酶(GPAT),
[0180] vii)MGAT和DGAT,
[0181] viii)MGAT、GPAT和DGAT,
[0182] ix)WRI1转录因子和MGAT,
[0183] x)WRI1转录因子、DGAT和MGAT,
[0184] xi)WRI1转录因子、DGAT、MGAT、油体蛋白和GPAT,
[0185] xii)DGAT和油体蛋白,或
[0186] xiii)MGAT和油体蛋白,和
[0187] xiv)任选地,沉默抑制子多肽,
[0188] 其中所述一或多种外源多核苷酸的每种均可操纵地连接至启动子,所述启动子能够在营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子中分别引导所述多核苷酸的表达。优选所述一或多种外源多核苷酸被稳定整合至所述营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子的基因组中,且更优选以纯合状态存在。所述多核苷酸可编码酶,所述酶具有与天然存在的酶(例如植物、酵母或动物来源)的序列相同的基酸序列。另外,所述多核苷酸可编码酶,所述酶与天然存在的酶相比具有一或多个保守突变。
[0189] 在一个实施方案中,
[0190] (i)所述GPAT也具有磷酸酶活性以产生MAG,如具有拟南芥GPAT4或GPAT6 的氨基酸序列的多肽,和/或
[0191] (ii)所述DGAT是DGAT1或DGAT2,和/或
[0192] (iii)所述MGAT是MGAT1或MGAT2。
[0193] 在优选的实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,和编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸。
[0194] 在另一优选的实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、和编码油体蛋白的第三外源多核苷酸。
[0195] 在另外的实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码MGAT优选MGAT2的第四外源多核苷酸。
[0196] 在另外的实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第四外源多核苷酸。
[0197] 在另外的实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,编码DGAT、优选DGAT1的第二外源多核苷酸,编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码MGAT优选MGAT2的第四外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第五外源多核苷酸。
[0198] 在另外的实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,编码DGAT、优选DGAT1的第二外源多核苷酸,编码油体蛋白的第三外源多核苷酸,和编码抑制基因表达的RNA分子的第四外源多核苷酸,所述基因编码脂肪酶如CGi58多肽。
[0199] 在另外的实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,编码DGAT、优选DGAT1的第二外源多核苷酸,编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码抑制编码酯酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的第四外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第五外源多核苷酸。
[0200] 在另外的实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,编码DGAT、优选DGAT1的第二外源多核苷酸,编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA 分子的第四外源多核苷酸,和编码MGAT、优选MGAT2的第五外源多核苷酸。
[0201] 在另外的实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,编码DGAT、优选DGAT1的第二外源多核苷酸,编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA 分子的第四外源多核苷酸、编码MGAT优选MGAT2的第五外源多核苷酸、和编码LEC2 或BBM的第六外源多核苷酸。
[0202] 在一实施方案中,所述种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,编码DGAT、优选DGAT1的第二外源多核苷酸,编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码MGAT优选MGAT2的第四外源多核苷酸。优选地,所述种子还包含编码GPAT的第五多核苷酸。
[0203] 在适当时,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子在所述脂肪酶基因 (如CGi58基因)中具有的不是抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的多核苷酸,而是在脂肪酶基因如CGi58基因中具有一或多个引入的突变,其赋予了与缺乏所述突变的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子相比脂肪酶多肽降低的水平。
[0204] 在优选的实施方案中,编码DGAT和油体蛋白的外源多核苷酸可操纵地连接至组成型启动子、或者至少在开花前和直至开花时在植物的绿色组织中有活性的启动子,其能够在所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中引导所述外源多核苷酸的表达。在优选的实施方案中,编码WRI1、和抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的外源多核苷酸,可操纵地连接至组成型启动子、至少在开花前和直至开花时在植物的绿色组织中有活性的启动子、或可诱导启动子,其能够在所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中引导所述外源多核苷酸的表达。在另外的优选实施方案中,编码LEC2、BBM和/或MGAT2的外源多核苷酸可操纵地连接至可诱导启动子,其能够在所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中引导所述外源多核苷酸的表达。
[0205] 在每个上述实施方案中,所述多核苷酸可提供为分离的分子或者可提供为连续的单一分子,如单一的T-DNA分子。在一实施方案中,T-DNA分子上至少一个基因的转录方向是与该T-DNA分子上至少另一个基因的转录方向相反的。
[0206] 在每个上述实施方案中,营养性植物部分,或者非人生物体或其部分、或种子中,优选植物叶或其部分、茎或块茎中的总非极性脂质含量,为至少约3%、更优选至少约 5%、优选至少约7%、更优选至少约10%、更优选至少约11%、更优选至少约12%、更优选至少约13%、更优选至少约14%、或者更优选至少约15%(w/w干重)。在优选的实施方案中,总非极性脂质含量为5%至25%、7%至25%、10%至25%、12%至25%、15%至25%、7%至20%、
10%至20%、10%至15%、15%至20%、20%至25%、约10%、约11%、约12%、约13%、约
14%、约15%、约16%、约17%、约18%、约20%、或者约22%,每个均为干重或种子重量的百分比。在特别优选的实施方案中,所述营养性植物部分是其叶(或多个叶)或者其部分。在更
2
优选的实施方案中,所述营养性植物部分为具有至少1cm表面积的叶部分。
[0207] 另外,在每个上述实施方案中,营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子中,优选植物叶或其部分、茎或块茎中的总TAG含量,为至少约3%、更优选至少约 5%、优选至少约7%、更优选至少约10%、更优选至少约11%、更优选至少约12%、更优选至少约13%、更优选至少约14%、更优选至少约15%、或者更优选至少约17%(w/w 干重)。在优选的实施方案中,总TAG含量为5%至30%、7%至30%、10%至30%、12%至30%、15%至30%、
7%至30%、10%至30%、20%至28%、18%至25%、22%至30%、约10%、约11%、约12%、约
13%、约14%、约15%、约16%、约17%、约18%、约 20%、或者约22%,每个均为干重或种子重量百分比。在特别优选的实施方案中,所述营养性植物部分是其叶(或多个叶)或者其部分。在更优选的实施方案中,所述营养性植物部分为具有至少1cm2表面积的叶部分。
[0208] 另外,在每个上述实施方案中,营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子中,优选植物叶或其部分、茎或块茎中的总脂质含量,为至少约3%、更优选至少约5%、优选至少约7%、更优选至少约10%、更优选至少约11%、更优选至少约12%、更优选至少约13%、更优选至少约14%、更优选至少约15%、更优选至少约17%(w/w干重),更优选至少约
20%、更优选至少约25%。在优选的实施方案中,总脂质含量为5%至35%、 7%至35%、
10%至35%、12%至35%、15%至35%、7%至35%,10%至20%、18%至 28%、20%至28%、
22%至28%、约10%、约11%、约12%、约13%、约14%、约15%、约16%、约17%、约18%、约
20%、约22%、或者约25%,每个均为干重百分比。通常,营养性植物部分、或者非人生物体或其部分的总脂质含量比非极性脂质含量高大约 2-3%。在特别优选的实施方案中,所述营养性植物部分是其叶(或多个叶)或者其部分。在更优选的实施方案中,所述营养性植物部分为具有至少1cm2表面积的叶部分。
[0209] 在一实施方案中,营养性植物部分,所述非人生物体或其部分、或种子、优选营养性植物部分,包含编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码MGAT、优选MGAT2的第三外源多核苷酸、和编码油体蛋白的第四外源多核苷酸,其中所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子具有一或多种或全部下列特征:
[0210] i)8%、至少10%、至少12%、至少14%、或至少15.5%(%重量)的总脂质含量,[0211] ii)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,所述营养性植物部分或非人生物体中的总脂质含量高至少3倍、至少5倍、至少7倍、至少8 倍、或至少10倍,
[0212] iii)至少5%、至少6%、至少6.5%或者至少7%(干重或种子重量的%重量)的总TAG含量,
[0213] iv)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,总 TAG含量高至少40倍、至少50倍、至少60倍、或至少70倍、或至少100倍,
[0214] v)油酸占TAG中的脂肪酸的至少15%、至少19%或者至少22%(%重量),
[0215] vi)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,TAG 中的油酸水平高至少10倍、至少15倍或至少17倍,
[0216] vii)棕榈酸占TAG中的脂肪酸的至少20%、至少25%、至少30%或者至少33%(%重量),
[0217] viii)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,TAG 中的棕榈酸水平高至少1.5倍,
[0218] ix)亚油酸占至少22%、至少25%、至少30%或者至少34%(%重量)的TAG中的脂肪酸,
[0219] x)α-亚麻酸占TAG中的脂肪酸的低于20%、低于15%、低于11%或低于8%(%重量),和
[0220] xi)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,TAG 中的α-亚麻酸水平低至少5倍、或至少8倍。在此实施方案中,优选所述营养性植物部分至少具有特征i)、ii)、iii)、iv)、i)和ii)、i)和iii)、i)和iv)、i)至iii)、i)、iii)和iv)、i) 至iv)、ii)和iii)、ii)和iv)、ii)至iv)、或iii)和iv)。在一实施方案中,%干重是%叶干重。
[0221] 在另外的实施方案中,营养性植物部分,所述非人生物体或其部分、或种子、优选营养性植物部分,包含编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸,其中所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子具有一或多种下列特征:
[0222] i)至少10%、至少12.5%、至少15%或者至少17%(干重或种子重量的%重量) 的总TAG含量,
[0223] ii)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,所述营养性植物部分或非人生物体中的总TAG含量高至少40倍、至少50倍、至少60倍、或至少70倍、或至少100倍,
[0224] iii)油酸占TAG中的脂肪酸的至少19%、至少22%、或至少25%(%重量),[0225] iv)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,所述营养性植物部分或非人生物体中TAG中的油酸水平高至少10倍、至少15倍、至少17倍、或至少19倍,
[0226] v)棕榈酸占TAG中的脂肪酸的至少20%、至少25%、或至少28%(%重量),[0227] vi)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,所述营养性植物部分或非人生物体中TAG中的棕榈酸水平高至少1.25倍,
[0228] vii)亚油酸占TAG中的脂肪酸的至少15%、或至少20%,(%重量),
[0229] viii)α-亚麻酸占TAG中的脂肪酸的低于15%、低于11%或低于8%(%重量),和[0230] ix)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,所述营养性植物部分或非人生物体中TAG中的α-亚麻酸水平低至少5倍、或至少8倍。在此实施方案中,优选所述营养性植物部分至少具有特征i)、ii)、或i)和ii)。在一实施方案中,%干重是%叶干重。
[0231] 优选地,上述两个实施方案所定义的特征是处于所述植物的开花阶段。
[0232] 在另外的实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码DGAT1和LEC2的一或多种外源多核苷酸。
[0233] 在优选的实施方案中,所述编码WRI1的外源多核苷酸包含以下的一或多种:
[0234] i)其序列如SEQ ID NO:231至278任一项所示的核苷酸,
[0235] ii)编码多肽的核苷酸,所述多肽包含其序列如SEQ ID NO:279至337任一项所示的氨基酸,或其生物学活性片段
[0236] iii)其序列至少与i)或ii)30%相同的核苷酸,和
[0237] iv)与i)至iii)任一项在严格条件下杂交的核苷酸。
[0238] 在优选的实施方案中,所述编码DGAT的外源多核苷酸包含以下的一或多种:
[0239] i)其序列如SEQ ID NO:204至211、338至346任一项所示的核苷酸,
[0240] ii)编码多肽的核苷酸,所述多肽包含其序列如SEQ ID NO:83、212至219、347 至355任一项所示的氨基酸,或其生物学活性片段,
[0241] iii)其序列至少与i)或ii)30%相同的核苷酸,和
[0242] iv)与i)至iii)任一项在严格条件下杂交的多核苷酸。
[0243] 在另一优选的实施方案中,所述编码MGAT的外源多核苷酸包含以下的一或多种 i)其序列如SEQ ID NO:1至44任一项所示的核苷酸,
[0244] ii)编码多肽的核苷酸,所述多肽包含其序列如SEQ ID NO:45至82任一项所示的氨基酸,或其生物学活性片段,
[0245] iii)其序列至少与i)或ii)30%相同的核苷酸,和
[0246] iv)与i)至iii)任一项在严格条件下杂交的多核苷酸。
[0247] 在另一优选的实施方案中,所述编码GPAT的外源多核苷酸包含以下的一或多种:
[0248] i)其序列如SEQ ID NO:84至143任一项所示的核苷酸,
[0249] ii)编码多肽的核苷酸,所述多肽包含其序列如SEQ ID NO:144至203任一项所示的氨基酸,或其生物学活性片段,
[0250] iii)其序列至少与i)或ii)30%相同的核苷酸,和
[0251] iv)与i)至iii)任一项在严格条件下杂交的多核苷酸。
[0252] 在另一优选的实施方案中,所述编码DGAT2的外源多核苷酸包含以下的一或多种:
[0253] i)其序列如SEQ ID NO:204至211任一项所示的核苷酸,
[0254] ii)编码多肽的核苷酸,所述多肽包含其序列如SEQ ID NO:212至219任一项所示的氨基酸,或其生物学活性片段,
[0255] iii)其序列至少与i)或ii)30%相同的核苷酸,和
[0256] iv)与i)至iii)任一项在严格条件下杂交的多核苷酸。
[0257] 在另一优选的实施方案中,所述编码油体蛋白的外源多核苷酸包含以下的一或多种:
[0258] i)其序列如SEQ ID NO:389至408任一项所示的核苷酸,
[0259] ii)编码多肽的核苷酸,所述多肽包含其序列如SEQ ID NO:362至388任一项所示的氨基酸,或其生物学活性片段,
[0260] iii)其序列至少与i)或ii)30%相同的核苷酸,和
[0261] iv)在严格条件下与i)至iii)任一项杂交的核苷酸序列。
[0262] 在一实施方案中,所述CGi58多肽包含以下的一或多种:
[0263] i)其序列如SEQ ID NO:422至428任一项所示的核苷酸,
[0264] ii)编码多肽的核苷酸,所述多肽包含其序列如SEQ ID NO:429至436任一项所示的氨基酸,或其生物学活性片段,
[0265] iii)其序列至少与i)或ii)30%相同的核苷酸,和
[0266] iv)在严格条件下与i)至iii)任一项杂交的核苷酸序列。
[0267] 在另一实施方案中,所述编码LEC2的外源多核苷酸包含以下的一或多种:
[0268] i)其序列如SEQ ID NO:437至439任一项所示的核苷酸,
[0269] ii)编码多肽的核苷酸,所述多肽包含其序列如SEQ ID NO:442至444任一项所示的氨基酸,或其生物学活性片段,
[0270] iii)其序列至少与i)或ii)30%相同的核苷酸,和
[0271] iv)在严格条件下与i)至iii)任一项杂交的核苷酸序列。
[0272] 在另外的实施方案中,所述编码BBM的外源多核苷酸包含以下的一或多种:
[0273] i)其序列如SEQ ID NO:440或441任一项所示的核苷酸
[0274] ii)编码多肽的核苷酸,所述多肽包含其序列如SEQ ID NO:445或446任一项所示的氨基酸,或其生物学活性片段,
[0275] iii)其序列至少与i)或ii)30%相同的核苷酸,和
[0276] iv)在严格条件下与i)至iii)任一项杂交的核苷酸序列。
[0277] 清楚地,在一个实施方案中优选的序列可以与在另一实施方案中优选的序列组合,以及更有利地进一步与再一个实施方案中优选的序列组合。
[0278] 在一个实施方案中,所述一或多种外源多核苷酸编码突变体MGAT和/或DGAT和 /或GPAT。例如,所述一种或多种外源多核苷酸可编码与野生型MGAT和/或DGAT和 /或GPAT(如本文中SEQ ID NO所定义)相比具有如表1所示例的一个、或超过一个保守氨基酸取代的MGAT和/或DGAT和/或GPAT。优选所述突变体多肽相对于非突变体多肽具有相当的或更高的活性。
[0279] 在一实施方案中,营养性植物部分、非人生物体或其部分、或者种子包含编码MGAT 的第一外源多核苷酸和编码GPAT的第二外源多核苷酸。所述第一和第二多核苷酸可作为单独的分子提供或可作为连续的单个分子而提供,如在单个的T-DNA分子上。在一实施方案中,T-DNA分子上至少一个基因的转录方向是与该T-DNA分子上至少另一个基因的转录方向相反的。在优选的实施方案中,GPAT为具有磷酸酶活性的GPAT,诸如拟南芥GPAT4或GPAT6。具有磷酸酶活性的GPAT起到在转基因非人生物或其部分中催化从G-3-P形成MAG的作用(即,酰化G-3-P形成LPA,随后移除磷酸酯基团形成 MAG)。MGAT然后通过用衍生自脂肪酰基辅酶A的酰基使MAG酰化而起到在转基因非人生物或其部分中催化DAG形成的作用。MGAT诸如拟南芥MGAT1如果也具有 DGAT活性还可起到在转基因非人生物或其部分中催化TAG形成的作用。
[0280] 另外,植物、营养性植物部分、或所述非人生物体或其部分、或种子中的内源基因活性可以被下调。因此,在一实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含以下的一或多种:
[0281] (i)一或多个引入基因的突变,所述基因分别编码所述植物、营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子的内源酶,或
[0282] (ii)外源多核苷酸,其分别下调所述植物、营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子的内源酶的产生和/或活性,其中所述内源酶选自脂肪酸酰基转移酶如DGAT, sn1-甘油-3-磷酸酰基转移酶(sn1-GPAT),1-酰基-甘油-3-磷酸酰基转移酶(LPAAT),酰基辅酶A:溶血卵磷脂酰基转移酶(LPCAT),磷脂酸磷酸酶(PAP),淀粉生物合成中所涉及的酶如(ADP)-葡萄糖焦磷酸化酶(AGPase),脂肪酸去饱和酶如Δ12脂肪酸去饱和酶 (FAD2),脂质降解中所涉及的多肽和/或其降低脂质含量如脂肪酶诸如CGi58多肽或 SUGAR-DEPENDENT1三酰基甘油脂肪酶,或者其两种或更多种的组合。在一实施方案中,所述外源多核苷酸选自:反义多核苷酸,有义多核苷酸,催化多核苷酸,微RNA,编码结合内源酶的多肽的多核苷酸,双链RNA分子或从其衍生的经加工的RNA分子。在一实施方案中,下调AGPase产生的外源多核苷酸不是Sanjaya et al.(2011)中公开的多核苷酸。在一实施方案中,所述营养性植物部分或所述非人生物体或其部分、或种子中的外源多核苷酸不是由编码WRI1的外源多核苷酸和编码RNA分子(抑制编码 AGPase基因的表达)的外源多核苷酸所组成。
[0283] 提高非极性脂质的水平对于涉及特定脂肪酸的应用是重要的。因此,在一实施方案中,总非极性脂质、提取的脂质或油包含:
[0284] (i)非极性脂质,其为TAG、DAG、TAG和DAG、或MAG,和
[0285] (ii)特定的PUFA,其为EDA、ARA、SDA、ETE、ETA、EPA、DPA、DHA,所述特定PUFA的水平为非极性脂质中的总脂肪酸含量的至少1%,或者两种或更多种所述特定PUFA的组合,或[0286] (iii)脂肪酸,其以非极性脂质中的总脂肪酸含量的至少1%的水平存在,并且其包含羟基,环氧基、环丙烷基、碳碳双键、碳碳三键、共轭双键、支链如甲基化的或羟基化的支链,或者其两种或更多种的组合,或者前述基团、键或支链的任意两种、三种、四种、五种或六种。
[0287] 在第三方面,本发明提供了非人生物体,优选植物,或其部分如营养性植物部分或种子,其可用于第一和第二方面的方法中或者用于下文所述的其它的方面。对于第一和第二方面所描述的实施方案中的每个特征在必要修改后均适用于第三方面的所述非人生物体(优选植物)或其部分,如营养性植物部分或种子。特定的实施方案强调如下。
[0288] 在第三方面的实施方案中,本发明提供了包含营养性部分的植物、或其营养性部分,其中所述营养性部分具有至少约3%的总非极性脂质含量,更优选至少约5%、优选至少约7%、更优选至少约10%、更优选至少约1 1%、更优选至少约12%、更优选至少约 13%、更优选至少约14%、或者更优选至少约15%(w/w干重)。在优选的实施方案中,总非极性脂质含量为5%至25%、7%至25%、10%至25%、12%至25%、15%至25%、 7%至20%、10%至20%、约10%、约11%、约12%、约13%、约14%、约15%、约16%、约17%、约18%、约20%、或者约22%,每个均为干重百分比。在特别优选的实施方案中,所述营养性植物部分是其叶(或多个叶)或者其部分。在更优选的实施方案中,所述营养性植物部分为具有至少1cm2表面积的叶部分。在另外的实施方案中,所述非极性脂质包含至少90%的三酰基甘油(TAG)。优选的植物是可育的、形态正常的和/或农艺上有用的。植物的种子优选以与相应野生植物基本上相同的速率萌发。优选所述营养性植物部分为叶或茎,或这二者的组合,或者根或块茎,如例如,马铃薯块茎。
[0289] 在另一实施方案中,所述非人生物体、优选植物、或其部分如营养性植物部分或种子包含本文所述的一或多种外源多核苷酸,并且具有水平提高的一或多种非极性脂质和 /或总非极性脂质含量,其以相对计比缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应非人生物体、优选植物、或其部分如营养性植物部分或种子高至少2倍、至少3倍、至少4倍、至少5倍、至少6倍、至少7倍、至少8倍、至少9倍、至少10倍、或至少12倍,优选至少约13倍或至少约15倍。
[0290] 在一实施方案中,本发明提供了油菜植物,包含油菜种子,其油含量以重量计为至少45%。优选地,所述油菜植物或其种子具有本发明第一和第二方面所描述的特征。
[0291] 在一实施方案中,本发明提供了玉米植物,包含玉米种子,其油含量以重量计为至少5%。优选地,所述玉米植物或其种子具有本发明第一和第二方面所描述的特征。
[0292] 在一实施方案中,本发明提供了大豆植物,包含大豆种子,其油含量以重量计为至少20%。优选地,所述大豆植物或其种子具有本发明第一和第二方面所描述的特征。
[0293] 在一实施方案中,本发明提供了羽扇豆植物,包含羽扇豆种子,其油含量以重量计为至少10%。优选地,所述羽扇豆植物或其种子具有本发明第一和第二方面所描述的特征。
[0294] 在一实施方案中,本发明提供了花生植物,包含花生,其油含量以重量计为至少 50%。优选地,所述花生植物或其种子具有本发明第一和第二方面所描述的特征。
[0295] 在一实施方案中,本发明提供了向日葵植物,包含向日葵种子,其油含量以重量计为至少50%。优选地,所述向日葵植物或其种子具有本发明第一和第二方面所描述的特征。
[0296] 在一实施方案中,本发明提供了棉花植物,包含棉花种子,其油含量以重量计为至少41%。优选地,所述棉花植物或其种子具有本发明第一和第二方面所描述的特征。
[0297] 在一实施方案中,本发明提供了红花植物,包含红花种子,其油含量以重量计为至少35%。优选地,所述红花植物或其种子具有本发明第一和第二方面所描述的特征。
[0298] 在一实施方案中,本发明提供了亚麻植物,包含亚麻种子,其油含量以重量计为至少36%。优选地,所述亚麻植物或其种子具有本发明第一和第二方面所描述的特征。
[0299] 在一实施方案中,本发明提供了亚麻荠植物,包含亚麻荠种子,其油含量以重量计为至少36%。优选地,所述亚麻荠植物或其种子具有本发明第一和第二方面所描述的特征。
[0300] 在一实施方案中,所述植物可以进一步由本文前文所述的特征(i)、(ii)和(iii)来限定。在优选的实施方案中,所述植物或营养性部分包含以下特征的一种或多种或全部:
[0301] (i)植物的营养性部分或种子中的油酸,该油酸为酯化或非酯化的形式,其中所述营养性植物部分或种子的脂质含量中总脂肪酸的至少20%(mol%)、至少22%(mol%)、至少30%(mol%)、至少40%(mol%)、至少50%(mol%)、或至少60%(mol%)、优选至少65%(mol%)或至少66%(mol%)是油酸,
[0302] (ii)植物的营养性部分或种子中的油酸,该油酸为非极性脂质中的酯化形式非极性脂质,其中所述营养性植物部分或种子的非极性脂质含量中总脂肪酸的至少至少20% (mol%)、至少22%(mol%)、至少30%(mol%)、至少40%(mol%)、至少50%(mol%)、或至少60%(mol%)、优选至少65%(mol%)或至少66%(mol%)是油酸,
[0303] (iii)植物的营养性部分或种子中经修饰的脂肪酸,该修饰的脂肪酸为酯化的或非酯化的形式,优选为所述营养性部分或种子的非极性脂质中酯化的形式,其中所述修饰的脂肪酸包含羟基、环氧基、环丙烷基、碳碳双键碳碳三键,共轭双键,支链如甲基化的或羟基化的支链,或者其两种或更多种的组合,或者前述基团、键或支链的任意两种、三种、四种、五种或六种,和
[0304] (iv)所述营养性部分或种子的非极性脂质中的蜡和/或蜡酯。
[0305] 在一实施方案中,所述植物或营养性植物部分是至少约1000个此类植物或部分的群体或集合中的成员。也即,所述群体或集合中的每个植物或植物部分具有与该群体或集合的其它成员基本上相同的性质或者包含相同的外源核酸。优选地,植物对于所述外源多核苷酸是纯合的,其提供了一定程度的均一性。优选地,所述植物在田间生长。优选已从田间生长的植物收获所述营养性植物部分的集合。优选地,在非极性脂质的产量处于其最高时收获营养性植物部分。在一个实施方案中,大约在开花的时候收获营养性植物部分。在另一实施方案中,在所述植物至少1个月大时收获营养性植物部分。在另一实施方案中,在从大约开花至大约开始衰败时收获营养性植物部分。在另一实施方案中,在可诱导基因表达的诱导之后至少约1个月收获所述营养性植物部分。
[0306] 在本发明第三方面的另一实施方案中,本发明提供了营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子,其包含一或多种外源多核苷酸,以及相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子水平提高的一或多种非极性脂质,其中所述一或多种外源多核苷酸的每种均可操纵地连接至启动子,所述启动子能够在营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中引导所述多核苷酸的表达并且其中下列特征中的一种或多种或全部适用:
[0307] (i)所述一或多种外源多核苷酸包含第一外源多核苷酸和第二外源多核苷酸,所述第一外源多核苷酸编码提高营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中一或多种糖分解或脂肪酸生物合成基因表达的RNA或转录因子多肽,所述第二外源多核苷酸编码一或多种非极性脂质生物合成中所涉及的RNA或多肽,
[0308] (ii)若所述非人生物体是植物,该植物的营养性部分具有至少约3%,更优选至少约5%、优选至少约7%、更优选至少约10%、更优选至少约11%、更优选至少约12%、更优选至少约13%、更优选至少约14%、或者更优选至少约15%(w/w干重)的总非极性脂质含量,[0309] (iii)所述非人生物体是选自以下的藻类:硅藻(硅藻类),绿藻(绿藻类),蓝绿藻(蓝藻类),金褐藻(金藻类),定鞭藻类,褐藻类和异鞭毛藻类,
[0310] (iv)非极性脂质包含脂肪酸,所述脂肪酸包含羟基、环氧基、环丙烷基、碳碳双键、碳碳三键、共轭双键、支链如甲基化的或羟基化的支链,或者其两种或更多种的组合,或者前述基团、键或支链的任意两种、三种、四种、五种或六种,
[0311] (v)营养性植物部分、非人生物体或其部分、在其脂质中包含酯化的或非酯化形式的油酸,其中所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子的脂质中总脂肪酸的至少20%(mol%)、至少22%(mol%)、至少30%(mol%)、至少40%(mol%)、至少50% (mol%)、或至少60%(mol%)、优选至少65%(mol%)或至少66%(mol%)是油酸,
[0312] (vi)营养性植物部分、非人生物体或其部分、或者种子在其非极性脂质中包含酯化形式的油酸,其中所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子的非极性脂质中总脂肪酸的至少20%(mol%)、至少22%(mol%)、至少30%(mol%)、至少40%(mol%)、至少50%(mol%)、或至少60%(mol%)、优选至少65%(mol%)或至少66%(mol%)是油酸,[0313] (vii)营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子的脂质中的总脂肪酸含量,包含与缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中的脂质相比至少高2%的油酸和/或至少低2%的棕榈酸,和/或
[0314] (viii)营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子的非极性脂质中的总脂肪酸含量,包含与缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中的非极性脂质相比至少高2%的油酸和/或至少低2%的棕榈酸,
[0315] (ix)所述非极性脂质包含水平改变的总固醇,优选游离固醇、固醇酯和/或固醇糖苷,
[0316] (x)所述非极性脂质包含蜡和/或蜡酯,和
[0317] (xi)所述非人生物体或其部分是至少约1000个此类非人生物体或其部分的群体或集合中的成员之一。
[0318] 在一实施方案中,所述一或多种外源多核苷酸包含第一外源多核苷酸和第二外源多核苷酸,并且其中特征(ii)至(xi)的一种或多种或全部适用。
[0319] 在上文(ii)的实施方案中,总非极性脂质含量为5%至25%,7%至25%,10%至25%, 12%至25%,15%至25%,7%至20%,10%至20%、约10%、约1 1%、约12%、约
13%、约14%、约15%、约16%、约17%、约18%、约20%、或者约22%,每个均为干重百分比。
在更优选的实施方案中,所述营养性植物部分为具有至少1cm2表面积的叶部分。
[0320] 在优选的实施方案中,所述非人生物体或其部分是植物、藻类或者适宜于发酵的生物体如真菌。所述非人生物体的部分可以是种子、果实、或植物的营养性部分如气生植物部分或绿色部分如叶或茎。在另一实施方案中,所述部分为多细胞生物体的细胞。对于所述非人生物体的部分,该部分包含所述非人生物体的至少一个细胞。在另外的优选实施方案中,所述非人生物体或其部分由本发明第一和第二方面所述的任意实施方案中所定义的特征来进一步定义,包括但不限于特征(i)、(ii)和(iii),以及本发明的第一和第二方面所述的任意实施方案中所定义的外源多核苷酸或者外源多核苷酸的组合。
[0321] 在一实施方案中,所述植物、营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含一或多种外源多核苷酸,所述外源多核苷酸编码:
[0322] i)Wrinkled 1(WRI1)转录因子和DGAT,
[0323] ii)WRI1转录因子和DGAT和油体蛋白,
[0324] iii)WRI1转录因子、DGAT、MGAT和油体蛋白,
[0325] iv)单酰基甘油酰基转移酶(MGAT),
[0326] v)二酰基甘油酰基转移酶2(DGAT2),
[0327] vi)MGAT和甘油-3-磷酸酰基转移酶(GPAT),
[0328] vii)MGAT和DGAT,
[0329] viii)MGAT、GPAT和DGAT,
[0330] ix)WRI1转录因子和MGAT,
[0331] x)WRI1转录因子、DGAT和MGAT,
[0332] xi)WRI1转录因子、DGAT、MGAT、油体蛋白和GPAT,
[0333] xii)DGAT和油体蛋白,或
[0334] xiii)MGAT和油体蛋白,和
[0335] xiv)任选地,沉默抑制子多肽,
[0336] 其中每个外源多核苷酸均可操纵地连接至启动子,所述启动子能够在植物、营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中分别引导所述多核苷酸的表达。所述一或多种外源多核苷酸可以包含其序列在本文定义的核苷酸。优选地,所述植物、营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子对于所述所述一或多种外源多核苷酸是纯合的。优选地,所述外源多核苷酸被整合至所述植物、营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子的基因组中。所述一或多种多核苷酸可以提供为分离的分子或者提供为连续的单个分子。优选地,所述外源多核苷酸被整合至所述植物或生物体的基因组中位于单一的基因座处或者遗传学相联系的多个基因座处,而更优选为纯合状态。更优选地,所整合的外源多核苷酸与选择性标记基因遗传学相联系,如除草剂耐受基因。
[0337] 在优选的实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,和编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸。
[0338] 在另一优选的实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸,和编码油体蛋白的第三外源多核苷酸。
[0339] 在另外的实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码MGAT优选MGAT2的第四外源多核苷酸。
[0340] 在另外的实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,编码DGAT、优选DGAT1的第二外源多核苷酸,编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第四外源多核苷酸。
[0341] 在另外的实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,编码DGAT、优选DGAT1的第二外源多核苷酸,编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码MGAT优选MGAT2的第四外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第五外源多核苷酸。
[0342] 在另外的实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,编码DGAT、优选DGAT1的第二外源多核苷酸,编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的 RNA分子的第四外源多核苷酸。
[0343] 在另外的实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,编码DGAT、优选DGAT1的第二外源多核苷酸,编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA 分子的第四外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第五外源多核苷酸。
[0344] 在另外的实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,编码DGAT、优选DGAT1的第二外源多核苷酸,编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA 分子的第四外源多核苷酸,和编码MGAT、优选MGAT2的第五外源多核苷酸。
[0345] 在另外的实施方案中,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的第四外源多核苷酸、编码MGAT优选MGAT2的第五外源多核苷酸、和编码LEC2 或BBM的第六外源多核苷酸。
[0346] 在一实施方案中,所述种子包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,编码DGAT、优选DGAT1的第二外源多核苷酸,编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码MGAT优选MGAT2的第四外源多核苷酸。优选地,所述种子还包含编码GPAT的第五多核苷酸。
[0347] 在适当时,所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子在所述脂肪酶基因 (如CGi58基因)中具有的不是抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的多核苷酸,而是在脂肪酶基因如CGi58基因中具有一或多个引入的突变,其赋予了与缺乏所述突变的相应营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子相比脂肪酶多肽降低的水平。
[0348] 在优选的实施方案中,编码DGAT可操纵地连接至组成型启动子、或者至少在开花前和直至开花时在植物的绿色组织中有活性的启动子,其能够在所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中引导所述外源多核苷酸的表达。在优选的实施方案中,编码WRI1、和抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的外源多核苷酸,可操纵地连接至组成型启动子、至少在开花前和直至开花时在植物的绿色组织中有活性的启动子、或可诱导启动子,其能够在所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中引导所述外源多核苷酸的表达。在另外的优选实施方案中,编码LEC2、 BBM和/或MGAT2的外源多核苷酸可操纵地连接至可诱导启动子,其能够在所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子中引导所述外源多核苷酸的表达。
[0349] 在每个上述实施方案中,营养性植物部分,或者非人生物体或其部分、或种子,优选植物叶或其部分、茎或块茎的总非极性脂质含量,为至少约3%、更优选至少约5%、优选至少约7%、更优选至少约10%、更优选至少约11%、更优选至少约12%、更优选至少约13%、更优选至少约14%、或者更优选至少约15%(w/w干重种子重量)。在优选的实施方案中,总非极性脂质含量为5%至25%,7%至25%,10%至25%,12%至25%, 15%至25%,
7%至20%,10%至20%,10%至15%,15%至20%,20%至25%、约10%、约11%、约12%、约
13%、约14%、约15%、约16%、约17%、约18%、约20%、或者约22%,每个均为干重或种子重量百分比。在特别优选的实施方案中,所述营养性植物部分是其叶(或多个叶)或者其部分。在更优选的实施方案中,所述营养性植物部分为具有至少1cm2表面积的叶部分。
[0350] 另外,在每个上述实施方案中,营养性植物部分,或者非人生物体或其部分、或种子,优选植物叶或其部分、茎或块茎的总TAG含量,为至少约3%、更优选至少约5%、优选至少约7%、更优选至少约10%、更优选至少约11%、更优选至少约12%、更优选至少约13%、更优选至少约14%、更优选至少约15%、或者更优选至少约17%(w/w干重或种子重量)。在优选的实施方案中,总TAGA含量为5%至30%、7%至30%、10%至30%、12%至30%、15%至30%、7%至30%、10%至30%、20%至28%、18%至25%、 22%至30%、约10%、约11%、约
12%、约13%、约14%、约15%、约16%、约17%、约18%、约20%、或者约22%,每个均为干重或种子重量百分比。在特别优选的实施方案中,所述营养性植物部分是其叶(或多个叶)或者其部分。在更优选的实施方案中,所述营养性植物部分为具有至少1cm2表面积的叶部分。
[0351] 另外,在每个上述实施方案中,营养性植物部分,或者非人生物体或其部分、或种子,优选植物叶或其部分、茎或块茎的总脂质含量,为至少约3%、更优选至少约5%、优选至少约7%、更优选至少约10%、更优选至少约11%、更优选至少约12%、更优选至少约13%、更优选至少约14%、更优选至少约15%、更优选至少约17%(w/w干重或种子重量),更优选至少约20%、更优选至少约25%。在优选的实施方案中,总脂质含量为5%至35%、7%至35%、10%至35%、12%至35%、15%至35%、7%至35%,10%至20%、18%至28%、20%至
28%、22%至28%、约10%、约11%、约12%、约13%、约14%、约15%、约16%、约17%、约
18%、约20%、约22%、或者约25%,每个均为干重或种子重量百分比。通常,营养性植物部分、或者非人生物体或其部分的总脂质含量为比非极性脂质含量高大约2-3%。在特别优选的实施方案中,所述营养性植物部分是其叶(或多个叶)或者其部分。在更优选的实施方案中,所述营养性植物部分为具有至少1cm2表面积的叶部分。
[0352] 在一实施方案中,营养性植物部分,所述非人生物体或其部分、或种子、优选营养性植物部分,包含编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码MGAT、优选MGAT2的第三外源多核苷酸、和编码油体蛋白的第四外源多核苷酸,其中所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子具有一或多种下列特征:
[0353] i)至少8%、至少10%、至少12%、至少14%、或至少15.5%(干重或种子重量的%重量)的总脂质含量,
[0354] ii)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,所述营养性植物部分或非人生物体中高至少3倍、至少5倍、至少7倍、至少8倍、或至少 10倍的总脂质含量,
[0355] iii)至少5%、至少6%、至少6.5%或者至少7%(干重或种子重量的%重量)的总 TAG含量,
[0356] iv)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,高至少 40倍、至少50倍、至少60倍、或至少70倍、或至少100倍的总TAG含量,
[0357] v)油酸占TAG中的脂肪酸的至少15%、至少19%或者至少22%(%重量),
[0358] vi)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,TAG 中的油酸水平高至少10倍、至少15倍或至少17倍,
[0359] vii)棕榈酸占TAG中的脂肪酸的至少20%、至少25%、至少30%或者至少33% (%重量),
[0360] viii)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,TAG 中的棕榈酸水平高至少1.5倍,
[0361] ix)亚油酸占TAG中的脂肪酸的至少22%、至少25%、至少30%或者至少34% (%重量),
[0362] x)α-亚麻酸占TAG中的脂肪酸的低于20%、低于15%、低于11%或低于8%(%重量),和
[0363] xi)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,TAG 中的α-亚麻酸水平低至少5倍、或至少8倍。在此实施方案中,优选所述营养性植物部分至少具有特征i)、ii)、iii)、iv)、i)和ii)、i)和iii)、i)和iv)、i)至iii)、i)、iii)和iv)、i) 至iv)、ii)和iii)、ii)和iv)、ii)至iv)、或iii)和iv)。在一实施方案中,%干重是%叶干重。
[0364] 在另外的实施方案中,营养性植物部分,所述非人生物体或其部分、或种子、优选营养性植物部分,包含编码WRI1的第一外源多核苷酸,编码DGAT、优选DGAT1的第二外源多核苷酸,编码油体蛋白的第三外源多核苷酸,其中所述营养性植物部分、非人生物体或其部分、或种子具有一或多种下列特征:
[0365] i)至少10%、至少12.5%、至少15%或者至少17%(干重或种子重量的%重量)的总TAG含量,
[0366] ii)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,所述营养性植物部分或非人生物体中高至少40倍、至少50倍、至少60倍、或至少70倍、或至少100倍的总TAG含量,
[0367] iii)油酸占TAG中的脂肪酸的至少19%、至少22%、或至少25%(%重量),[0368] iv)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,所述营养性植物部分或非人生物体中TAG中的油酸水平高至少10倍、至少15倍、至少17倍、或至少19倍,
[0369] v)棕榈酸占TAG中的脂肪酸的至少20%、至少25%、或至少28%(%重量),[0370] vi)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,所述营养性植物部分或非人生物体中TAG中的棕榈酸水平高至少1.25倍,
[0371] vii)亚油酸占TAG中的脂肪酸的至少15%、或至少20%,(%重量),
[0372] viii)α-亚麻酸占TAG中的脂肪酸的低于15%、低于11%或低于8%(%重量),和[0373] ix)相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应营养性植物部分或非人生物体,所述营养性植物部分或非人生物体中TAG中的α-亚麻酸水平低至少5倍、或至少8倍。在此实施方案中,优选所述营养性植物部分至少具有特征i)、ii)、or i)和ii)。在一实施方案中,%干重是%叶干重。
[0374] 优选地,上述两个实施方案所定义的特征是处于所述植物的开花阶段。
[0375] 在第四方面,本发明提供了植物种子,其能够生长成本发明的植物、或得自本发明的植物、例如是植物的本发明的非人生物体。在一实施方案中,所述种子包含本文所述的一或多种外源多核苷酸。
[0376] 在第五方面,本发明提供了获得具有增强的产生一或多种非极性脂质的能的细胞的方法,所述方法包括步骤:
[0377] a)将一或多种外源多核苷酸引入细胞中,
[0378] b)在所述细胞或其后代细胞中表达所述一或多种外源多核苷酸,
[0379] c)分析所述细胞或后代细胞的脂质含量
[0380] d)选择相对于缺乏所述外源多核苷酸的相应细胞或后代细胞而言具有水平提高的一或多种非极性脂质的细胞或后代细胞,
[0381] 其中所述一或多种外源多核苷酸编码
[0382] i)Wrinkled 1(WRI1)转录因子和DGAT,
[0383] ii)WRI1转录因子和DGAT和油体蛋白,
[0384] iii)WRI1转录因子、DGAT、MGAT和油体蛋白,
[0385] iv)单酰基甘油酰基转移酶(MGAT),
[0386] v)二酰基甘油酰基转移酶2(DGAT2),
[0387] vi)MGAT和甘油-3-磷酸酰基转移酶(GPAT),
[0388] vii)MGAT和DGAT,
[0389] viii)MGAT、GPAT和DGAT,
[0390] ix)WRI1转录因子和MGAT,
[0391] x)WRI1转录因子、DGAT和MGAT,
[0392] xi)WRI1转录因子、DGAT、MGAT、油体蛋白和GPAT,
[0393] xii)DGAT和油体蛋白,或
[0394] xiii)MGAT和油体蛋白,和
[0395] xiv)任选地,沉默抑制子多肽,
[0396] 其中每个外源多核苷酸均可操纵地连接至启动子,该启动子能够在所述细胞或后代细胞中引导所述外源多核苷酸的表达。
[0397] 在一实施方案中,所选择的细胞或后代细胞包含:
[0398] i)编码WRI1的第一外源多核苷酸和编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸,[0399] ii)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、和编码油体蛋白的第三外源多核苷酸,
[0400] iii)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码MGAT优选MGAT2的第四外源多核苷酸,
[0401] iv)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第四外源多核苷酸,
[0402] v)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码MGAT优选MGAT2的第四外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第五外源多核苷酸,
[0403] vi)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的第四外源多核苷酸,
[0404] vii)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的第四外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第五外源多核苷酸,
[0405] viii)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的第四外源多核苷酸、和编码MGAT优选MGAT2的第五外源多核苷酸,
[0406] ix)编码WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸、编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、编码抑制编码脂肪酶如CGi58多肽的基因表达的RNA分子的第四外源多核苷酸、编码MGAT优选MGAT2的第五外源多核苷酸、和编码LEC2或BBM的第六外源多核苷酸。
[0407] 在另外的实施方案中,所选择的细胞或后代细胞是植物种子的细胞并包括编码 WRI1的第一外源多核苷酸、编码DGAT优选DGAT1的第二外源多核苷酸,编码油体蛋白的第三外源多核苷酸、和编码MGAT优选MGAT2的第四外源多核苷酸。优选地,所述种子还包含编码GPAT的第五多核苷酸。
[0408] 在优选的实施方案中,所述一或多种外源多核苷酸被稳定整合至所述细胞或后代细胞的基因组中。
[0409] 在优选的实施方案中,所述方法还包括从包含所述一或多种外源多核苷酸的细胞或后代细胞再生转基因植物的步骤。所述再生转基因植物的步骤可以在于所述细胞或其后代细胞中表达所述一或多种多核苷酸的步骤之前进行,和/或在分析所述细胞或后代细胞脂质含量的步骤之前进行,和/或在选择具有水平提高的一或多种脂质的细胞或后代细胞的步骤之前进行。所述方法可进一步包括从所述转基因植物获得种子或后代植物的步骤,其中所述种子或后代植物包含所述一或多种外源多核苷酸。
[0410] 第五方面的方法可以用作筛选测定法来确定由外源多核苷酸所编码的多肽是否具有期望的功能。此方面中的所述一或多种外源多核苷酸可以包含如上文所定义的序列。另外,所述一或多种外源多核苷酸在所述方法之前可以不是已知为编码WRI1转录因子和DGAT,WRI1转录因子和MGAT,WRI1转录因子、DGAT和MGAT,WRI1转录因子、DGAT、MGAT和油体蛋白,WRI1转录因子、DGAT、MGAT、油体蛋白和GPAT, WRI1转录因子、DGAT和油体蛋白,DGAT和油体蛋白,或MGAT和油体蛋白,但可以是其候选。因此所述方法可用作测定法以鉴别或者选择编码WRI1转录因子和DGAT, WRI1转录因子和MGAT,WRI1转录因子、DGAT和MGAT,WRI1转录因子、DGAT、 MGAT和油体蛋白,WRI1转录因子、DGAT、MGAT、油体蛋白和GPAT,WRI1转录因子、DGAT和油体蛋白,DGAT和油体蛋白,或MGAT和油体蛋白的多核苷酸。所述候选多核苷酸被引入至细胞中并分析产物以确定该候选是否具有期望的功能。
[0411] 在第六方面,本发明提供了使用本发明的方法获得的转基因细胞或转基因植物,或者从其所获得的包含所述一或多种外源多核苷酸的营养性植物部分或种子。
[0412] 在第七方面,本发明提供了编码下列的一或多种多核苷酸、或者包含编码下列的多核苷酸的遗传构建体的用途:
[0413] i)Wrinkled 1(WRI1)转录因子和DGAT,
[0414] ii)WRI1转录因子和DGAT和油体蛋白,
[0415] iii)WRI1转录因子、DGAT、MGAT和油体蛋白,
[0416] iv)单酰基甘油酰基转移酶(MGAT),
[0417] v)二酰基甘油酰基转移酶2(DGAT2),
[0418] vi)MGAT和甘油-3-磷酸酰基转移酶(GPAT),
[0419] vii)MGAT和DGAT,
[0420] viii)MGAT、GPAT和DGAT,
[0421] ix)WRI1转录因子和MGAT,
[0422] x)WRI 1转录因子、DGAT和MGAT,
[0423] xi)WRI1转录因子、DGAT、MGAT、油体蛋白和GPAT,
[0424] xii)DGAT和油体蛋白,或
[0425] xiii)MGAT和油体蛋白,以及
[0426] xiv)任选地,沉默抑制子多肽,
[0427] 所述用途用于产生转基因细胞、转基因非人生物体或其部分、或转基因种子,所述转基因细胞、转基因非人生物体或其部分、或转基因种子相对于缺乏所述一或多种多核苷酸的相应细胞、非人生物体或其部分或者种子而言具有增强的产生一或多种非极性脂质的能力,其中所述一或多种多核苷酸的每种对于所述细胞、非人生物体或其部分、或者种子均为外源并且可操纵地连接至能够分别在所述细胞、非人生物体或其部分、或种子中引导多核苷酸表达的启动子。
[0428] 在一实施方案中,本发明提供了编码提高细胞、非人生物体或其部分或者种子中一或多种糖分解或脂肪酸生物合成基因表达的RNA或转录因子多肽的第一多核苷酸,与编码一或多种非极性脂质的生物合成中所涉及的RNA或多肽的第二多核苷酸一起用于产生转基因细胞、转基因非人生物体或其部分、或转基因种子的用途,所述转基因细胞、转基因非人生物体或其部分、或转基因种子相对于缺乏所述第一和第二多核苷酸的相应细胞、非人生物体或其部分或者种子而言具有增强的产生一或多种非极性脂质的能力,其中所述第一和第二多核苷酸每个对所述细胞、非人生物体或其部分、或种子而言均为外源并且可操纵地连接至启动子,该启动子能够分别在所述转基因细胞、转基因非人生物体或其部分、或转基因种子中引导所述多核苷酸的表达。
[0429] 在另外的实施方案中,本发明提供了一或多种多核苷酸用于产生转基因细胞、转基因非人生物体或其部分、或转基因种子的用途,所述转基因细胞、转基因非人生物体或其部分、或转基因种子相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应细胞、非人生物体或其部分、或种子而言具有增强的产生一或多种非极性脂质的能力,其中所述一或多种多核苷酸的每种对于所述细胞、非人生物体或其部分、或者种子均为外源并且可操纵地连接至能够分别在所述细胞、非人生物体或其部分、或种子中引导多核苷酸表达的启动子,并且其中所述非极性脂质包含脂肪酸,该脂肪酸包含羟基、环氧基、环丙烷基、碳碳双键碳碳三键,共轭双键,支链如甲基化的或羟基化的支链,或者其两种或更多种的组合,或者前述基团、键或支链的任意两种、三种、四种、五种或六种。此类用途也具有作为筛选测定法的用处。
[0430] 在第八方面,本发明提供了生产种子的方法,所述方法包括:
[0431] i)种植本发明的植物、多个植物、或非人生物体,和
[0432] ii)从所述植物、多个植物、或非人生物体收获种子。
[0433] 在优选的实施方案中,所述方法包括使至少约1000株此类植物的群体在田间生长,并从所述植物群体收获种子。可将所收获的种子置于容器中并转移离开田间,例如转移出农村、或在使用前储存。
[0434] 在第九方面,本发明提供了发酵方法,其包括步骤:
[0435] i)提供含有液体组合物的器皿,所述液体组合物包含适宜于发酵的本发明的非人生物体、以及发酵和脂肪酸生物合成所需的成分,和
[0436] ii)提供用于所述器皿中含有的液体组合物的发酵的条件。
[0437] 在第十方面,本发明提供了回收的或提取的脂质,其可得自本发明的方法、或得自本发明的营养性植物部分、非人生物体或其部分、细胞或后代细胞、转基因植物、或种子。所回收的或提取的脂质,优选如种子油,可具有增加的TAG含量、DAG含量、TAG 和DAG含量、MAG含量、PUFA含量、特定PUFA含量、或特定脂肪酸含量、和/或总非极性脂质含量。在优选的实施方案中,所述MAG是2-MAG。TAG含量、DAG含量、TAG and DAG含量、MAG含量、PUFA含量、特定PUFA含量、特定脂肪酸含量和/或总非极性脂质含量的提高程度可以如特征(i)所定义。
[0438] 在第十一方面,本发明提供了由本发明的方法产生的工业产品,优选其是烃产品如脂肪酸酯,优选脂肪酸甲基酯和/或脂肪酸乙基酯,烷烃如甲烷、乙烷或更长链的烷烃,更长链的烷烃的混合物,烯烃,生物燃料,一氧化碳和/或氢气,生物醇如乙醇、丙醇或丁醇,生物炭,或者一氧化碳、氢和生物炭的混合物。
[0439] 在第十二方面,本发明提供了由本发明的方法产生的植物、营养性植物部分、非人生物体或其部分、细胞或后代细胞、转基因植物、或者本发明的种子或回收的或提取的脂质用于制备工业产品的用途。所述工业产品可以如上文所定义。
[0440] 在第十三方面,本发明提供了产生燃料的方法,所述方法包括:
[0441] i)将本发明的脂质与醇反应,任选在存在催化剂的情况下,以产生烷基酯,和[0442] ii)任选地,将所述烷基酯与基于石油的燃料混合。所述烷基酯优选为甲基酯。所述方法产生的燃料可以包含最低水平的本发明脂质或由其产生的烃产品如以体积计至少10%、至少20%、或至少30%。
[0443] 在第十四方面,本发明提供了用于产生合成柴油燃料的方法,所述方法包括:
[0444] i)通过气化将本发明的营养性部分、非人生物体中的脂质转化为合成气,和[0445] ii)用金属催化剂或微生物催化剂将所述合成气转化为生物燃料。
[0446] 在第十五方面,本发明提供了产生生物燃料的方法,所述方法包括将本发明的营养性植物部分、或非人生物体或其部分中的脂质通过热解转化为生物油、通过发酵转化为生物醇、或者通过气化或厌氧消化转化为生物气
[0447] 在第十六方面,本发明提供了产生饲料的方法,所述方法包括将本发明的方法产生的植物、其营养性植物部分、非人生物体或其部分、细胞或后代细胞、转基因植物、种子、回收的或提取的脂质、或者其提取物或部分,与至少一种其他食品成分混合。
[0448] 在第十七方面,本发明提供了饲料、化妆品或化学品,其包含本发明的植物、其营养性部分、非人生物体或其部分、细胞或后代细胞、本发明的方法所产生的转基因植物、种子、或回收或提取的脂质,或者其提取物或部分。
[0449] 自然地,在植物的营养性材料由于其油含量而要被收获的时候,会期望在脂质尽可能高的时候收获所述材料。本发明人已经注意到本发明植物的营养性组织的光泽度与油含量之间的关联,其中高水平的脂质与高光泽相关联。因此,营养性材料的光泽度可用作标记来辅助确定何时收获所述材料。
[0450] 在另一方面,本发明提供了重组细胞,其包含一或多种外源多核苷酸和相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应细胞而言水平提高的一或多种非极性脂质,
[0451] 其中所述一或多种外源多核苷酸的每种可操纵地连接至启动子,所述启动子能够在细胞中引导所述多核苷酸的表达,并且其中下列特征中的一种或多种或全部适用:
[0452] (a)所述一或多种外源多核苷酸包含第一外源多核苷酸和第二外源多核苷酸,所述第一外源多核苷酸编码提高非人生物体或其部分中一或多种糖分解或脂肪酸生物合成基因表达的RNA或转录因子多肽,所述第二外源多核苷酸编码一或多种非极性脂质生物合成中所涉及的RNA或多肽,
[0453] (b)如果所述细胞是植物的营养性部分的细胞,该细胞具有至少约3%的总非极性脂质含量、更优选至少约5%、优选至少约7%、更优选至少约10%、更优选至少约 11%、更优选至少约12%、更优选至少约13%、更优选至少约14%、或者更优选至少约 15%(w/w),[0454] (c)所述细胞是选自以下的藻类:硅藻(硅藻类),绿藻(绿藻类),蓝绿藻(蓝藻类),金褐藻(金藻类),定鞭藻类,褐藻和异鞭毛藻,
[0455] (d)所述一或多种非极性脂质包含脂肪酸,所述脂肪酸包含羟基,环氧基、环丙烷基、碳碳双键、碳碳三键、共轭双键、支链如甲基化的或羟基化的支链,或者其两种或更多种的组合,或者前述基团、键或支链的任意两种、三种、四种、五种或六种,
[0456] (e)与缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应细胞中的非极性脂质相比,所述非极性脂质中的总脂肪酸含量包含至少多2%的油酸和/或至少低2%的棕榈酸,
[0457] (f)相对于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应细胞中的非极性脂质而言,所述非极性脂质包含水平改变的总固醇,优选游离的(非酯化的)固醇、固醇酯、固醇糖苷,[0458] (g)所述非极性脂质包含蜡和/或蜡酯,和
[0459] (h)所述细胞是至少约1000个此类细胞的群体或集合的成员。
[0460] 在一实施方案中,所述一或多种外源多核苷酸包含第一外源多核苷酸和第二外源多核苷酸,并且其中所述特征(b)至(h)中的一种或多种或全部适用。
[0461] 在另一方面,本发明提供了确定何时收获植物以使所收获植物的营养性组织中脂质的量优化的方法,所述方法包括
[0462] i)测量所述营养性组织的光泽,
[0463] ii)将该测量与预先确定的最小光泽度水平比较,和
[0464] iii)任选收获所述植物。
[0465] 在另一方面,本发明提供了预测植物的营养性组织中脂质量的方法,所述方法包括测量所述营养性组织的光泽。
[0466] 在上述两方面的优选实施方案中,所述营养性组织是叶(多个叶)或其部分。
[0467] 在另一方面,本发明提供了交易植物或其部分方法,包括获得包含本发明的细胞的植物或部分,以及将所获得植物或植物部分交易以获得货币收益。
[0468] 在一实施方案中,所述方法还包括以下的一种或多种或全部:
[0469] i)培养所述植物,
[0470] ii)从所述植物收获植物部分,
[0471] iii)储存所述植物或其部分,或者
[0472] iv)将所述植物或其部分运输至不同地点。在另一方面,本发明提供了用于产生植物部分的储藏箱(bin)的方法,包括:
[0473] a)通过从植物收集植物部分、或通过将所述植物部分与植物的其它部分分离来收获包含本发明细胞的植物部分,
[0474] b)任选地,精选(sifting)和/或分选(sorting)所收获的植物部分,和
[0475] c)将a)的植物部分或b)的精选的和/或分选的植物部分装入储藏箱,由此产生植物部分的储藏箱。
[0476] 本文的任何实施方案在做必要修改后应可适用于任何其他实施方案,除非另有具体说明。
[0477] 本发明不是要用本文所述的具体实施方案来限定其范围,其仅仅是用于示例的目的。功能性等价的产品、组合物和方法明显在本文所述的本发明的范围之内。
[0478] 在全部本说明书中,除非另有明确声明或者其背景另有要求,在提及单一的步骤、物质的组合物、步骤组或物质的组合物组时应被理解为涵盖了单个和复数个(即一个或多个)的这些步骤、物质组合物、步骤组或物质的组合物组。
[0479] 下文中通过随后非限制性实例以及参考所附的图的方式来描述本发明。
[0480] 附图简述
[0481] 图1.各种脂质合成途径的图示,它们中的大多数均在DAG处汇合,DAG是脂质合成中的中心分子。该模型包括一条形成sn-2MAG的可能路线,而sn-2MAG可被双功能MGAT/DGAT用于由甘油-3-磷酸(G-3-P)形成DAG。缩写如下:
[0482] G-3-P:甘油-3-磷酸
[0483] LysoPA:溶血磷脂酸
[0484] PA:磷脂酸
[0485] MAG:单酰基甘油
[0486] DAG:二酰基甘油
[0487] TAG:三酰基甘油
[0488] 酰基-CoA和FA-CoA:酰基-CoA和脂肪酰基-CoA
[0489] PC:磷脂酰胆碱
[0490] GPAT:甘油-3-磷酸酰基转移酶;甘油-3-磷酸O-酰基转移酶;酰基-CoA:sn-甘油-3- 磷酸1-O-酰基转移酶;EC 2.3.1.15
[0491] GPAT4:甘油-3-磷酸酰基转移酶4
[0492] GPAT6:甘油-3-磷酸酰基转移酶6
[0493] LPAAT:1-酰基-甘油-3-磷酸酰基转移酶;1-酰基甘油-3-磷酸O-酰基转移酶;酰基 -CoA:1-酰基-sn-甘油-3-磷酸2-O-酰基转移酶;EC 2.3.1.51
[0494] PAP:磷脂酸磷酸酶;磷脂酸磷酸酯酶;磷脂酸磷酸水解酶;磷脂酸磷酸酶;EC 3.1.3.4
[0495] MGAT:一种具有单酰基甘油酰基转移酶(MGAT;2-酰基甘油O-酰基转移酶酰基 -CoA:2-酰基甘油O-酰基转移酶;EC 2.3.1.22)活性的酰基转移酶
[0496] M/DGAT:一种具有单酰基甘油酰基转移酶(MGAT;2-酰基甘油O-酰基转移酶;酰基-CoA:2-酰基甘油O-酰基转移酶;EC 2.3.1.22)和/或二酰基甘油酰基转移酶(DGAT;二酰基甘油O-酰基转移酶;酰基-CoA:1,2-二酰基-sn-甘油O-酰基转移酶;EC 2.3.1.20) 活性的酰基转移酶
[0497] LPCAT:酰基-CoA:溶血卵磷脂酰基转移酶;1-酰基甘油磷酸胆碱O-酰基转移酶;酰基-CoA:1-酰基-sn-甘油-3-磷酸胆碱O-酰基转移酶;EC 2.3.1.23
[0498] PLD-Z:磷脂酶Dζ;胆碱磷酸酶;卵磷脂酶D;磷脂二酯酶II;EC 3.1.4.4[0499] CPT:CDP-胆碱:二酰基甘油胆碱磷酸转移酶;1-烷基-2-酰基甘油胆碱磷酸转移酶;烷基酰基甘油胆碱磷酸转移酶;胆碱磷酸转移酶;磷酰胆碱甘油酯转移酶;EC 2.7.8.2[0500] PDCT:磷脂酰胆碱:二酰基甘油胆碱磷酸转移酶
[0501] PLC:磷脂酶C;EC 3.1.4.3
[0502] PDAT:磷脂:二酰基甘油酰基转移酶;磷脂:1,2-二酰基-sn-甘油O-酰基转移酶;EC 2.3.1.158
[0503] Pi:无机磷酸
[0504] 图2.在用编码p19(阴性对照)、拟南芥DGAT1、小家鼠(Mus musculus)MGAT1以及DGAT1与MGAT1的组合(每一者均由35S启动子表达)的构建体转化的本氏烟草叶组织中的相对DAG和TAG升高。在促进叶组织中DAG和TAG两者的积聚方面,MGAT1 酶远比DGAT1酶的活性高。与仅DGAT1的表达相比,MGAT1基因的表达导致了叶组织中DAG和TAG的积聚达两倍之多。
[0505] 图3.在用编码p19(阴性对照)、拟南芥DGAT1、小家鼠MGAT2以及MGAT2与 DGAT1组合的构建体转化的本氏烟草叶组织中的相对TAG升高。误差条表示三个平行样品的标准误差。
[0506] 图4.从供给sn-2-MAG[14C]和未标记油酸的瞬时转化的本氏烟草叶裂解物中分离的MAG、DAG和TAG级分随时间进程放射性(DPM)。所用的构建体如图3所示。
[0507] 图5.如图4所示,但供给[14C]G-3-P和未标记的油酸。
[0508] 图6.TLC板的放射自显影图,显示了在酵母测定中通过拟南芥DGAT1和小家鼠 MGAT1但非小家鼠MGAT2形成TAG。该测定如实施例5所述。
[0509] 图7.相对于亲代(未转化的)对照,转化了表达MGAT2的嵌合DNA的拟南芥T2 和T3种子中的TAG水平。种子在成熟期收获(干燥的)。SW:干燥的(desiccated)种子重量。TAG水平以每100μg种子重量的μg TAG给出。
[0510] 图8.经转化的拟南芥植物(用编码MGAT1或MGAT2的构建体转化)的种子中的总脂肪酸含量。
[0511] 图9.与拟南芥DGAT1过表达相比,瞬时转化的本氏烟草叶组织中的相对TAG水平。
[0512] 图10.从表达P19对照、拟南芥DGAT1和拟南芥DGAT2的本氏烟草叶组织的微粒体中于DGAT测定中由sn-1、2-OAG转化TAG。
[0513] 图11.用pJP3382和pJP3383转化的拟南芥种子中总FAME定量。
[0514] 图12.本氏烟草叶中瞬时表达的不同基因组合所获得的最大TAG水平。V2阴性对照代表基于15个独立重复的平均TAG水平。
[0515] 图13.编码拟南芥DGAT1酰基转移酶和拟南芥WRI1转录因子的基因的共表达导致对本氏烟草叶中TAG水平的协同效应。所示的数据是5个独立渗滤的平均和标准差。
[0516] 图14.稳定转化的本氏烟草气生幼苗组织中的Tag水平。总脂质提取自本氏烟草幼苗的气生组织并且通过使用内部DAGE标准的TLC-FID来分析以使得可以在样品之间准确对比。
[0517] 图15.用对照载体(pORE04)、小家鼠MGAT1(35S:MGAT1)或小家鼠MGAT2 (35S:MGAT2)转化的拟南芥T2种子群体的总脂质水平。
[0518] 图16.pJP3502的左边和右边边界之间的插入区图。TER Glyma-Lectin表示大豆凝集素(lectin)终止子;Arath-WRI1,拟南芥WRI1转录因子编码区;PRO Arath-Rubisco SSU,拟南芥核酮糖-1,5-二磷酸羧化酶(rubisco)小亚基启动子;Sesin-Oleosin,芝麻油体蛋白编码区;PRO CaMV35S-Ex2,具有复制的增强子区的花椰菜花叶病毒35S启动子; Arath-DGAT1,拟南芥DGAT1酰基转移酶编码区;TER Agrtu-NOS,根瘤土壤杆菌 (Agrobacterium tumefaciens)胭脂碱合酶终止子。
[0519] 图17.包括pJP3503的左边和右边边界之间的插入区的构建体pJP3503的示意图。 TER Agrtu-NOS表示根瘤土壤杆菌胭脂碱合酶终止子;Musmu-MGAT2,小家鼠 MGAT2酰基转移酶;PRO CaMV24S-Ex2,花椰菜花叶病毒35S复制的增强子区;TER Glyma-Lectin,大豆凝集素终止子;Arath-WRI1,拟南芥WRI1转录因子;PRO Arath-Rubisco SSU,拟南芥核酮糖-1,5-二磷酸羧化酶小亚基启动子;Sesin-Oleosin,芝麻油体蛋白;Arath-DGAT1,拟南芥DGAT1酰基转移酶。
[0520] 图18.三个野生型烟草植物(wt1-3)和三个pJP3503初代转化体(4、29、21)中不同年龄叶中的TAG产量。叶的阶段表示为‘G’,绿色;‘YG’,黄绿色;‘Y’,黄色。取样期间的植物阶段为:发芽,野生型1;首花出现,野生型2;开花,野生型3;产生种荚 (seed pod)(pJP3503转化体)。
[0521] 图19A.由大豆α'亚基β-伴大豆球蛋白启动子表达的含有拉曼伞形霉(Umbelopsis ramanniana)DGAT2A表达盒的DNA插入物,由大豆库尼兹胰蛋白酶(kunitz trypsin) 抑制因子3启动子表达的拟南芥WRI1,和由大豆α'亚基β-伴大豆球蛋白启动子表达的小家鼠MGAT2。基因编码区和表达盒是可由限制性消化剪切的。
[0522] 图19B.由可诱导曲霉(Aspergillus)alcA启动子表达的含有拟南芥LEC2和WRI1 转录因子基因表达盒的DNA插入物,由组成型CaMV-35S启动子表达的拟南芥 DGAT1,和由组成型CsVMV启动子表达的曲霉alcR基因。LEC2和WRI1转录因子的表达是由乙醇或类似化合物诱导的。
[0523] 图20.pJP3507图。
[0524] 图21.pJP3569图。
[0525] 序列表的标注
[0526] SEQ ID NO:1小家鼠(Mus musculus)密码子优化的MGAT1
[0527] SEQ ID NO:2小家鼠密码子优化的MGAT2
[0528] SEQ ID NO:3玻璃海鞘(Ciona intestinalis)密码子优化的预测MGAT1
[0529] SEQ ID NO:4赤拟谷盗(Tribolium castaneum)密码子优化的预测MGAT1
[0530] SEQ ID NO:5斑马鱼(Danio rerio)密码子优化的MGAT1
[0531] SEQ ID NO:6斑马鱼密码子优化的MGAT2
[0532] SEQ ID NO:7小家鼠MGAT1多核苷酸(AF384162)
[0533] SEQ ID NO:8智人(Homo spaniens)MGAT1多核苷酸(AF384163)
[0534] SEQ ID NO:9黑猩猩(Pan troglodytes)预测MGAT1多核苷酸转录变体 (XM_001166055)
[0535] SEQ ID NO:10黑猩猩预测MGAT1多核苷酸转录变体2(XM_0526044.2)
[0536] SEQ ID NO:11家犬(Canis familiaris)预测MGAT1多核苷酸(XM_545667.2)[0537] SEQ ID NO:12家(Bos taurus)MGAT1多核苷酸(NM_001001153.2)
[0538] SEQ ID NO:13褐家鼠(Rattus norvegicus)MGAT1多核苷酸(NM_001108803.1)[0539] SEQ ID NO:14斑马鱼MGAT1多核苷酸(NM_001122623.1)
[0540] SEQ ID NO:15秀丽隐杆线虫(Caenorhabditis elegans)预测MGAT1多核苷酸 (NM_073012.4)
[0541] SEQ ID NO:16秀丽隐杆线虫预测MGAT1多核苷酸(NM_182380.5)
[0542] SEQ ID NO:17秀丽隐杆线虫预测MGAT1多核苷酸(NM_065258.3)
[0543] SEQ ID NO:18秀丽隐杆线虫预测MGAT1多核苷酸(NM_075068.3)
[0544] SEQ ID NO:19秀丽隐杆线虫预测MGAT1多核苷酸(NM_072248.3)
[0545] SEQ ID NO:20乳酸克鲁维酵母(Kluyveromyces lactis)预测MGAT1多核苷酸 (XM_455588.1)
[0546] SEQ ID NO:21棉阿舒囊霉(Ashbya gossypii)预测MGAT1多核苷酸(NM_208895.1)[0547] SEQ ID NO:22稻瘟病菌(Magnaporthe oryzae)预测MGAT1多核苷酸 (XM_368741.1)
[0548] SEQ ID NO:23玻璃海鞘预测MGAT1多核苷酸(XM_002120843.1)
[0549] SEQ ID NO:24小家鼠MGAT2多核苷酸(AY157609)
[0550] SEQ ID NO:25智人MGAT2多核苷酸(AY157608)
[0551] SEQ ID NO:26黑猩猩预测MGAT2多核苷酸(XM_522112.2)
[0552] SEQ ID NO:27家犬预测MGAT2多核苷酸(XM_542304.1)
[0553] SEQ ID NO:28家牛MGAT2多核苷酸(NM_001099136.1)
[0554] SEQ ID NO:29褐家鼠MGAT2多核苷酸(NM_001109436.2)
[0555] SEQ ID NO:30红原鸡(Gallus gallus)预测MGAT2多核苷酸(XM_424082.2)
[0556] SEQ ID NO:31斑马鱼MGAT2多核苷酸(NM_001006083.1)
[0557] SEQ ID NO:32黑腹果蝇(Drosophila melanogaster)MGAT2多核苷酸 (NM_136474.2)
[0558] SEQ ID NO:33黑腹果蝇MGAT2多核苷酸(NM_136473.2)
[0559] SEQ ID NO:34黑腹果蝇MGAT2多核苷酸(NM_136475.2)
[0560] SEQ ID NO:35冈比亚按蚊(Anopheles gambiae)MGAT2多核苷酸  (XM_001688709.1)
[0561] SEQ ID NO:36冈比亚按蚊MGAT2多核苷酸(XM_315985)
[0562] SEQ ID NO:37赤拟谷盗预测MGAT2多核苷酸(XM_970053.1)
[0563] SEQ ID NO:38智人MGAT3多核苷酸(AY229854)
[0564] SEQ ID NO:39黑猩猩预测MGAT3多核苷酸转录变体1(XM_001154107.1)
[0565] SEQ ID NO:40黑猩猩预测MGAT3多核苷酸转录变体2(XM_001154171.1)
[0566] SEQ ID NO:41黑猩猩预测MGAT3多核苷酸转录变体3(XM_527842.2)
[0567] SEQ ID NO:42家犬预测MGAT3多核苷酸(XM_845212.1)
[0568] SEQ ID NO:43家牛预测MGAT3多核苷酸(XM_870406.4)
[0569] SEQ ID NO:44斑马鱼预测MGAT3多核苷酸(XM_688413.4)
[0570] SEQ ID NO:45小家鼠MGAT1多肽(AAK84177.1)
[0571] SEQ ID NO:46智人MGAT1多肽(AAK84178.1)
[0572] SEQ ID NO:47黑猩猩预测MGAT1多肽同工型1(XP_001166055.1)
[0573] SEQ ID NO:48黑猩猩预测MGAT1多肽同工型2(XP_526044.2)
[0574] SEQ ID NO:49家犬预测MGAT1多肽(XP_545667.2)
[0575] SEQ ID NO:50家牛MGAT1多肽(NP_001001153.1)
[0576] SEQ ID NO:51褐家鼠MGAT1多肽(NP_001102273.1)
[0577] SEQ ID NO:52斑马鱼MGAT1多肽(NP_001116095.1)
[0578] SEQ ID NO:53秀丽隐杆线虫预测MGAT1多肽(NP_505413.1)
[0579] SEQ ID NO:54秀丽隐杆线虫预测MGAT1多肽(NP_872180.1)
[0580] SEQ ID NO:55秀丽隐杆线虫预测MGAT1多肽(NP_497659.1)
[0581] SEQ ID NO:56秀丽隐杆线虫预测MGAT1多肽(NP_507469.1)
[0582] SEQ ID NO:57秀丽隐杆线虫预测MGAT1多肽(NP_504649.1)
[0583] SEQ ID NO:58乳酸克鲁维酵母预测MGAT1多肽(XP_455588.1)
[0584] SEQ ID NO:59棉阿舒囊霉预测MGAT1多肽(NP_983542.1)
[0585] SEQ ID NO:60稻瘟病菌预测MGAT1多肽(XP_368741.1)
[0586] SEQ ID NO:61玻璃海鞘预测MGAT1多肽(XP_002120879)
[0587] SEQ ID NO:62小家鼠MGAT2多肽(AA023673.1)
[0588] SEQ ID NO:63智人MGAT2多肽(AA023672.1)
[0589] SEQ ID NO:64黑猩猩预测MGAT2多肽(XP_522112.2)
[0590] SEQ ID NO:65家犬预测MGAT2多肽(XP_542304.1)
[0591] SEQ ID NO:66家牛MGAT2多肽(NP_001092606.1)
[0592] SEQ ID NO:67褐家鼠MGAT2多肽(NP_001102906.2)
[0593] SEQ ID NO:68红原鸡预测MGAT2多肽(XP_424082.2)
[0594] SEQ ID NO:69斑马鱼MGAT2多肽(NP_001006083.1)
[0595] SEQ ID NO:70黑腹果蝇MGAT2多肽(NP_610318.1)
[0596] SEQ ID NO:71黑腹果蝇MGAT2多肽(NP_610317.1)
[0597] SEQ ID NO:72黑腹果蝇MGAT2多肽(NP_610319.2)
[0598] SEQ ID NO:73冈比亚按蚊MGAT2多肽(XP_001688761)
[0599] SEQ ID NO:74冈比亚按蚊MGAT2多肽(XP_315985.3)
[0600] SEQ ID NO:75赤拟谷盗预测MGAT2多肽(XP_975146)
[0601] SEQ ID NO:76智人MGAT3多肽(AA063579.1)
[0602] SEQ ID NO:77黑猩猩预测MGAT3多肽同工型1(XP_001154107.1)
[0603] SEQ ID NO:78黑猩猩预测MGAT3多肽同工型2(XP_001154171.1)
[0604] SEQ ID NO:79黑猩猩预测MGAT3同工型3(XP_527842.2)
[0605] SEQ ID NO:80家犬预测MGAT3多肽(XP_850305.1)
[0606] SEQ ID NO:81家牛预测MGAT3多肽(XP_875499.3)
[0607] SEQ ID NO:82斑马鱼预测MGAT3多肽(XP_693505.1)
[0608] SEQ ID NO:83拟南芥DGAT1多肽(CAB44774.1)
[0609] SEQ ID NO:84拟南芥GPAT4多核苷酸(NM_100043.4)
[0610] SEQ ID NO:85拟南芥GPAT6多核苷酸(NM_129367.3)
[0611] SEQ ID NO:86拟南芥GPAT多核苷酸(AF195115.1)
[0612] SEQ ID NO:87拟南芥GPAT多核苷酸(AY062466.1)
[0613] SEQ ID NO:88水稻(Oryza sativa)GPAT多核苷酸(AC118133.4)
[0614] SEQ ID NO:89北美杉(Picea sitchensis)GPAT多核苷酸(EF086095.1)
[0615] SEQ ID NO:90玉米GPAT多核苷酸(BT067649.1)
[0616] SEQ ID NO:91拟南芥GPAT多核苷酸(AK228870.1)
[0617] SEQ ID NO:92水稻GPAT多核苷酸(AK241033.1)
[0618] SEQ ID NO:93水稻GPAT多核苷酸(CM000127.1)
[0619] SEQ ID NO:94水稻GPAT多核苷酸(CM000130.1)
[0620] SEQ ID NO:95水稻GPAT多核苷酸(CM000139.1)
[0621] SEQ ID NO:96水稻GPAT多核苷酸(CM000126.1)
[0622] SEQ ID NO:97水稻GPAT多核苷酸(CM000128.1)
[0623] SEQ ID NO:98水稻GPAT多核苷酸(CM000140.1)
[0624] SEQ ID NO:99江南卷柏(Selaginella moellendorffii)GPAT多核苷酸(GL377667.1)
[0625] SEQ ID NO:100江南卷柏GPAT多核苷酸(GL377667.1)
[0626] SEQ ID NO:101江南卷柏GPAT多核苷酸(GL377648.1)
[0627] SEQ ID NO:102江南卷柏GPAT多核苷酸(GL377622.1)
[0628] SEQ ID NO:103江南卷柏GPAT多核苷酸(GL377590.1)
[0629] SEQ ID NO:104江南卷柏GPAT多核苷酸(GL377576.1)
[0630] SEQ ID NO:105江南卷柏GPAT多核苷酸(GL377576.1)
[0631] SEQ ID NO:106水稻GPAT多核苷酸(NM_001051374.2)
[0632] SEQ ID NO:107水稻GPAT多核苷酸(NM_001052203.1)
[0633] SEQ ID NO:108:玉米(Zea mays)GPAT8多核苷酸(NM_001153970.1)
[0634] SEQ ID NO:109:玉米GPAT多核苷酸(NM_001155835.1)
[0635] SEQ ID NO:110:玉米GPAT多核苷酸(NM_001174880.1)
[0636] SEQ ID NO:111拟南芥GPAT6多核苷酸(NM_129367.3)
[0637] SEQ ID NO:112拟南芥GPAT8多核苷酸(NM_116264.5)
[0638] SEQ ID NO:113小立碗藓(Physcomitrella patens)GPAT多核苷酸(XM_001764949.1)
[0639] SEQ ID NO:114小立碗藓GPAT多核苷酸(XM_001769619.1)
[0640] SEQ ID NO:115小立碗藓GPAT多核苷酸(XM_001769672.1)
[0641] SEQ ID NO:116小立碗藓GPAT多核苷酸(XM_001771134.1)
[0642] SEQ ID NO:117小立碗藓GPAT多核苷酸(XM_001780481.1)
[0643] SEQ ID NO:118葡萄(Vitis Vinifera)GPAT多核苷酸(XM_002268477.1)
[0644] SEQ ID NO:119葡萄GPAT多核苷酸(XM_002275312.1)
[0645] SEQ ID NO:120葡萄GPAT多核苷酸(XM_002275996.1)
[0646] SEQ ID NO:121葡萄GPAT多核苷酸(XM_002279055.1)
[0647] SEQ ID NO:122毛果杨(Populus trichocarpa)GPAT多核苷酸(XM_002309088.1)[0648] SEQ ID NO:123毛果杨GPAT多核苷酸(XM_002309240.1)
[0649] SEQ ID NO:124毛果杨GPAT多核苷酸(XM_002322716.1)
[0650] SEQ ID NO:125毛果杨GPAT多核苷酸(XM_002323527.1)
[0651] SEQ ID NO:126两色高梁(Sorghum bicolor)GPAT多核苷酸(XM_002439842.1)[0652] SEQ ID NO:127两色高梁GPAT多核苷酸(XM_002458741.1)
[0653] SEQ ID NO:128两色高梁GPAT多核苷酸(XM_002463871.1)
[0654] SEQ ID NO:129两色高梁GPAT多核苷酸(XM_002464585.1)
[0655] SEQ ID NO:130蓖麻(Ricinus communis)GPAT多核苷酸(XM_002511827.1)
[0656] SEQ ID NO:131蓖麻GPAT多核苷酸(XM_002517392.1)
[0657] SEQ ID NO:132蓖麻GPAT多核苷酸(XM_002520125.1)
[0658] SEQ ID NO:133琴叶拟南芥(Arabidopsis lyrata)GPAT多核苷酸(XM_002872909.1)
[0659] SEQ ID NO:134琴叶拟南芥GPAT6多核苷酸(XM_002881518.1)
[0660] SEQ ID NO 135油桐(Vernicia fordii)推定GPAT8多核苷酸(FJ479753.1)
[0661] SEQ ID NO 136水稻GPAT多核苷酸(NM_001057724.1)
[0662] SEQ ID NO 137拟南芥GPAT4多核苷酸(NM_100043.4)
[0663] SEQ ID NO 138毛果杨GPAT多核苷酸(XM_002320102.1)
[0664] SEQ ID NO:139两色高梁GPAT多核苷酸(XM_002451332.1)
[0665] SEQ ID NO:140蓖麻GPAT多核苷酸(XM_002531304.1)
[0666] SEQ ID NO:141琴叶拟南芥GPAT4多核苷酸(XM_002889315.1)
[0667] SEQ ID NO:142拟南芥GPAT1多核苷酸(NM_100531.2)
[0668] SEQ ID NO 143拟南芥GPAT3多核苷酸(NM_116426.2)
[0669] SEQ ID NO:144拟南芥GPAT4多肽(NP_171667.1)
[0670] SEQ ID NO:145拟南芥GPAT6多肽(NP_181346.1)
[0671] SEQ ID NO:146拟南芥GPAT多肽(AAF02784.1)
[0672] SEQ ID NO:147拟南芥GPAT多肽(AAL32544.1)
[0673] SEQ ID NO:148水稻GPAT多肽(AAP03413.1)
[0674] SEQ ID NO:149北美云杉GPAT多肽(ABK25381.1)
[0675] SEQ ID NO:150玉米GPAT多肽(ACN34546.1)
[0676] SEQ NO ID:151拟南芥GPAT多肽(BAF00762.1)
[0677] SEQ ID NO:152水稻GPAT多肽(BAH00933.1)
[0678] SEQ ID NO:153水稻GPAT多肽(EAY84189.1)
[0679] SEQ ID NO:154水稻GPAT多肽(EAY98245.1)
[0680] SEQ ID NO:155水稻GPAT多肽(EAZ21484.1)
[0681] SEQ ID NO:156水稻GPAT多肽(EEC71826.1)
[0682] SEQ ID NO:157水稻GPAT多肽(EEC76137.1)
[0683] SEQ ID NO:158水稻GPAT多肽(EEE59882.1)
[0684] SEQ ID NO:159江南卷柏GPAT多肽(EFJ08963.1)
[0685] SEQ ID NO:160江南卷柏GPAT多肽(EFJ08964.1)
[0686] SEQ ID NO:161江南卷柏GPAT多肽(EFJ11200.1)
[0687] SEQ ID NO:162江南卷柏GPAT多肽(EFJ15664.1)
[0688] SEQ ID NO:163江南卷柏GPAT多肽(EFJ24086.1)
[0689] SEQ ID NO:164江南卷柏GPAT多肽(EFJ29816.1)
[0690] SEQ ID NO:165江南卷柏GPAT多肽(EFJ29817.1)
[0691] SEQ ID NO:166水稻GPAT多肽(NP_001044839.1)
[0692] SEQ ID NO:167水稻GPAT多肽(NP_001045668.1)
[0693] SEQ ID NO:168玉米GPAT8多肽(NP_001147442.1)
[0694] SEQ ID NO:169玉米GPAT多肽(NP_001149307.1)
[0695] SEQ ID NO:170玉米蛋白GPAT多肽(NP_001168351.1)
[0696] SEQ ID NO:171欧洲油菜(Brassica napus)GPAT4多肽(AFH02724.1)
[0697] SEQ ID NO:172拟南芥GPAT8多肽(NP_191950.2)
[0698] SEQ ID NO:173小立碗藓GPAT多肽(XP_001765001.1)
[0699] SEQ ID NO:174小立碗藓GPAT多肽(XP_001769671.1)
[0700] SEQ ID NO:175小立碗藓GPAT多肽(XP_001769724.1)
[0701] SEQ ID NO:176小立碗藓GPAT多肽(XP_001771186.1)
[0702] SEQ ID NO:177小立碗藓GPAT多肽(XP_001780533.1)
[0703] SEQ ID NO:178葡萄GPAT多肽(XP_002268513.1)
[0704] SEQ ID NO:179葡萄GPAT多肽(XP_002275348.1)
[0705] SEQ ID NO:180葡萄GPAT多肽(XP_002276032.1)
[0706] SEQ ID NO:181葡萄GPAT多肽(XP_002279091.1)
[0707] SEQ ID NO:182毛果杨GPAT多肽(XP_002309124.1)
[0708] SEQ ID NO:183毛果杨GPAT多肽(XP_002309276.1)
[0709] SEQ ID NO:184毛果杨GPAT多肽(XP_002322752.1)
[0710] SEQ ID NO:185毛果杨GPAT多肽(XP_002323563.1)
[0711] SEQ ID NO:186两色高梁GPAT多肽(XP_002439887.1)
[0712] SEQ ID NO:187两色高梁GPAT多肽(XP_002458786.1)
[0713] SEQ ID NO:188两色高梁GPAT多肽(XP_002463916.1)
[0714] SEQ ID NO:189两色高梁GPAT多肽(XP_002464630.1)
[0715] SEQ ID NO:190蓖麻GPAT多肽(XP_002511873.1)
[0716] SEQ ID NO:191蓖麻GPAT多肽(XP_002517438.1)
[0717] SEQ ID NO:192蓖麻GPAT多肽(XP_002520171.1)
[0718] SEQ ID NO:193琴叶拟南芥GPAT多肽(XP_002872955.1)
[0719] SEQ ID NO:194琴叶拟南芥GPAT6多肽(XP_002881564.1)
[0720] SEQ ID NO:195油桐(Vernicia fordii)GPAT多肽(ACT32032.1)
[0721] SEQ ID NO:196水稻GPAT多肽(NP_001051189.1)
[0722] SEQ ID NO:197欧洲油菜GPAT4多肽(AFH02725.1)
[0723] SEQ ID NO:198毛果杨GPAT多肽(XP_002320138.1)
[0724] SEQ ID NO:199两色高梁GPAT多肽(XP_002451377.1)
[0725] SEQ ID NO:200蓖麻GPAT多肽(XP_002531350.1)
[0726] SEQ ID NO:201琴叶拟南芥GPAT4多肽(XP_002889361.1)
[0727] SEQ ID NO:202拟南芥GPAT1多肽(NP_563768.1)
[0728] SEQ ID NO:203拟南芥GPAT3多肽(NP_192104.1)
[0729] SEQ ID NO:204拟南芥DGAT2多核苷酸(NM_115011.3)
[0730] SEQ ID NO:205蓖麻DGAT2多核苷酸(AY916129.1)
[0731] SEQ ID NO:206油桐DGAT2多核苷酸(DQ356682.1)
[0732] SEQ  ID NO:207拉曼被孢霉(Mortierella ramanniana)DGAT2多核苷酸 (AF391089.1)
[0733] SEQ ID NO:208智人DGAT2多核苷酸(NM_032564.1)
[0734] SEQ ID NO:209智人DGAT2多核苷酸(NM_001013579.2)
[0735] SEQ ID NO:210家牛DGAT2多核苷酸(NM_205793.2)
[0736] SEQ ID NO:211小家鼠DGAT2多核苷酸(AF384160.1)
[0737] SEQ ID NO:212拟南芥DGAT2多肽(NP_566952.1)
[0738] SEQ ID NO:213蓖麻DGAT2多肽(AAY16324.1)
[0739] SEQ ID NO:214油桐DGAT2多肽(ABC94474.1)
[0740] SEQ ID NO:215拉曼被孢霉DGAT2多肽(AAK84179.1)
[0741] SEQ ID NO:216智人DGAT2多肽(Q96PD7.2)
[0742] SEQ ID NO:217智人DGAT2多肽(Q58HT5.1)
[0743] SEQ ID NO:218家牛DGAT2多肽(Q70VZ8.1)
[0744] SEQ ID NO:219小家鼠DGAT2多肽(AAK84175.1)
[0745] SEQ ID NO:220YFP三肽保守DGAT2和/或MGAT1/2序列基序
[0746] SEQ ID NO:221HPHG四肽保守DGAT2和/或MGAT1/2序列基序
[0747] SEQ ID NO:222EPHS四肽保守植物DGAT2序列基序
[0748] SEQ  ID NO:223作为推定甘油磷脂结构域一部分的DGAT2的 RXGFX(K/R)XAXXXGXXX(L/V)VPXXXFG(E/Q)长保守序列基序
[0749] SEQ ID NO:224作为推定中性脂质结合结构域的小鼠DGAT2和MGAT 1/2的 FLXLXXXN保守序列基序
[0750] SEQ ID NO:225GPAT的plsC酰基转移酶结构域(PF01553)
[0751] SEQ ID NO:226GPAT的HAD样水解酶(PF12710)超家族结构域
[0752] SEQ ID NO:227磷酸丝氨酸磷酸酶结构域(PF00702).GPAT4-8包含与此结构域同源的N端区域
[0753] SEQ ID NO:228保守GPAT氨基酸序列GDLVICPEGTTCREP
[0754] SEQ ID NO:229保守GPAT/磷酸酶氨基酸序列(基序I)
[0755] SEQ ID NO:230保守GPAT/磷酸酶氨基酸序列(基序III)
[0756] SEQ ID NO:231拟南芥WRI1多核苷酸(NM 202701.2)
[0757] SEQ ID NO:232拟南芥WRI1多核苷酸(NM_001035780.2)
[0758] SEQ ID NO:233拟南芥WRI1多核苷酸(NM l 15292.4)
[0759] SEQ ID NO:234琴叶拟南芥琴叶亚种(Arabidopsis lyrata subsp.lyrata)多核苷酸 (XM 002876205.1)
[0760] SEQ ID NO:235欧洲油菜WRI1多核苷酸(DQ370141.1)
[0761] SEQ ID NO:236欧洲油菜WRI1多核苷酸(HM370542.1)
[0762] SEQ ID NO:237大豆(Glycine max)WRI1多核苷酸(XM_003530322.1)
[0763] SEQ ID NO:238麻风树(Jatropha curcas)WRI1多核苷酸(JF703666.1)
[0764] SEQ ID NO:239蓖麻WRI1多核苷酸(XM_002525259.1)
[0765] SEQ ID NO:240毛果杨WRI1多核苷酸(XM 002316423.1)
[0766] SEQ ID NO:241二穗短柄草(Brachypodium distachyon)WRI1多核苷酸 (XM_003578949.1)
[0767] SEQ ID  NO:242大麦(Hordeum vulgare subsp.vulgare)WRI1多核苷酸(AK355408.1)
[0768] SEQ ID NO:243两色高粱WRI1多核苷酸(XM_002450149.1)
[0769] SEQ ID NO:244玉米WRI1多核苷酸(EU960249.1)
[0770] SEQ ID NO:245二穗短柄草WRI1多核苷酸(XM_003561141.1)
[0771] SEQ ID NO:246两色高粱WRI1多核苷酸(XM_002437774.1)
[0772] SEQ ID NO:247两色高粱WRI1多核苷酸(XM_002441399.1)
[0773] SEQ ID NO:248大豆WRI1多核苷酸(XM_003530638.1)
[0774] SEQ ID NO:249大豆WRI1多核苷酸(XM_003553155.1)
[0775] SEQ ID NO:250毛果杨WRI1多核苷酸(XM_002315758.1)
[0776] SEQ ID NO:251葡萄WRI1多核苷酸(XM_002270113.1)
[0777] SEQ ID NO:252大豆WRI1多核苷酸(XM_003533500.1)
[0778] SEQ ID NO:253大豆WRI1多核苷酸(XM_003551675.1)
[0779] SEQ  ID  NO:254蒺藜苜蓿(Medicago truncatula)WRI1多核苷酸(XM_003621069.1)
[0780] SEQ ID NO:255毛果杨WRI1多核苷酸(XM_002323800.1)
[0781] SEQ ID NO:256蓖麻WRI1多核苷酸(XM 002517428.1)
[0782] SEQ ID NO:257二穗短柄草WRI1多核苷酸(XM_003572188.1)
[0783] SEQ ID NO:258两色高粱WRI1多核苷酸(XM_002444384.1)
[0784] SEQ ID NO:259玉米WRI1多核苷酸(NM_001176888.1)
[0785] SEQ ID NO:260琴叶拟南芥琴叶亚种WRI1多核苷酸(XM_002889219.1)
[0786] SEQ ID NO:261拟南芥WRI1多核苷酸(NMJ06619.3)
[0787] SEQ ID NO:262琴叶拟南芥琴叶亚种WRI1多核苷酸(XM_002890099.1)
[0788] SEQ ID NO:263小盐芥(Thellungiella halophila)WRI1多核苷酸(AK352786.1)[0789] SEQ ID NO:264拟南芥WRI1多核苷酸(NM 101474.2)
[0790] SEQ ID NO:265大豆WRI1多核苷酸(XM 003530302.1)
[0791] SEQ ID NO:266二穗短柄草WRI1多核苷酸(XM_003578094.1)
[0792] SEQ ID NO:267两色高粱WRI1多核苷酸(XM_002460191.1)
[0793] SEQ ID NO:268玉米WRI1多核苷酸(NM_001152866.1)
[0794] SEQ ID NO:269大豆WRI1多核苷酸(XM 003519119.1)
[0795] SEQ ID NO.270大豆WRI1多核苷酸(XM 003550628.1)
[0796] SEQ ID NO:271蒺藜苜蓿WRI1多核苷酸(XM 003610213.1)
[0797] SEQ ID NO:272大豆WRI1多核苷酸(XM_003523982.1)
[0798] SEQ ID NO:273大豆WRI1多核苷酸(XM_003525901.1)
[0799] SEQ ID NO:274毛果杨WRI1多核苷酸(XM 002325075.1)
[0800] SEQ ID NO:275葡萄WRI1多核苷酸(XM_002273010.2)
[0801] SEQ ID NO:276毛果杨WRI1多核苷酸(XM 002303830.1)
[0802] SEQ ID NO:277狭叶羽扇豆(Lupinis angustifolius)WRI1多核苷酸,部分序列(NA- 080818_Platel4f06.bl)
[0803] SEQ ID NO:278狭叶羽扇豆WRI1多核苷酸
[0804] SEQ ID NO:279拟南芥WRI1多肽(A8MS57)
[0805] SEQ ID NO:280拟南芥WRI1多肽(Q6X5Y6)
[0806] SEQ ID NO:281琴叶拟南芥琴叶亚种WRI1多肽(XP_002876251.1)
[0807] SEQ ID NO:282欧洲油菜WRI1多肽(ABD 16282.1)
[0808] SEQ ID NO:283欧洲油菜WRI1多肽(ADO16346.1)
[0809] SEQ ID NO:284大豆WRI1多肽(XP 003530370.1)
[0810] SEQ ID NO:285麻风树WRI1多肽(AE022131.1)
[0811] SEQ ID NO:286蓖麻WRI1多肽(XP_002525305.1)
[0812] SEQ ID NO:287毛果杨WRI1多肽(XP_002316459.1)
[0813] SEQ ID NO:288葡萄WRI1多肽(CBI29147.3)
[0814] SEQ ID NO:289二穗短柄草WRI 1多肽(XP 003578997.1)
[0815] SEQ ID NO:290大麦WRI1多肽(BAJ86627.1)
[0816] SEQ ID NO:291水稻WRI1多肽(EAY79792.1)
[0817] SEQ ID NO:292两色高粱WRI1多肽(XP_002450194.1)
[0818] SEQ ID NO:293玉米WRI1多肽(ACG32367.1)
[0819] SEQ ID NO:294二穗短柄草WRI1多肽(XP 003561189.1)
[0820] SEQ ID NO:295小颖短柄草(Brachypodium sylvaticum)WRI1多肽(ABL85061.1)[0821] SEQ ID NO:296水稻WRI1多肽(BAD68417.1)
[0822] SEQ ID NO'297两色高粱WRI1多肽(XP_002437819.1)
[0823] SEQ ID NO:298两色高粱WRI1多肽(XP_002441444.1)
[0824] SEQ ID NO:299大豆WRI1多肽(XP_003530686.1)
[0825] SEQ ID NO:300大豆WRI1多肽(XP_003553203.1)
[0826] SEQ ID NO:301毛果杨WRI1多肽(XP_002315794.1)
[0827] SEQ ID NO:302葡萄WRI1多肽(XP_002270149.1)
[0828] SEQ ID NO:303大豆WRI1多肽(XP_003533548.1)
[0829] SEQ ID NO.304大豆WRI1多肽(XP_003551723.1)
[0830] SEQ ID NO:305蒺藜苜蓿WRI1多肽(XP_003621117.1)
[0831] SEQ ID NO.306毛果杨WRI1多肽(XP_002323836.1)
[0832] SEQ ID NO:307蓖麻WRI1多肽(XP_002517474.1)
[0833] SEQ ID NO:308葡萄WRI1多肽(CAN79925.1)
[0834] SEQ ID NO:309二穗短柄草WRI1多肽(XP_003572236.1)
[0835] SEQ ID NO:310水稻WRI1多肽(B AD 10030.1)
[0836] SEQ ID NO:311两色高粱WRI1多肽(XP_002444429.1)
[0837] SEQ ID NO:312玉米WRI1多肽(NP_001170359.1)
[0838] SEQ ID NO:313琴叶拟南芥琴叶亚种WRI1多肽(XP_002889265.1)
[0839] SEQ ID NO:314拟南芥WRI1多肽(AAF68121.1)
[0840] SEQ ID NO:315拟南芥WRI1多肽(NPJ 78088.2)
[0841] SEQ ID NO:316琴叶拟南芥琴叶亚种WRI1多肽(XP.002890145.1)
[0842] SEQ ID NO:317小盐芥WRI1多肽(BAJ33872.1)
[0843] SEQ ID NO:318拟南芥WRI1多肽(NP_563990.1)
[0844] SEQ ID NO:319大豆WRI1多肽(XP_003530350.1)
[0845] SEQ ID NO.320二穗短柄草WRI1多肽(XP 003578142.1)
[0846] SEQ ID NO:321水稻WRI1多肽(EAZ09147.1)
[0847] SEQ ID NO:322两色高粱WRI1多肽(XP 002460236.1)
[0848] SEQ ID NO:323玉米WRI1多肽(NP_001146338.1)
[0849] SEQ ID NO:324大豆WRI1多肽(XP_003519167.1)
[0850] SEQ ID NO:325大豆WRI1多肽(XP_003550676.1)
[0851] SEQ ID NO:326蒺藜苜蓿WRI1多肽(XP_003610261.1)
[0852] SEQ ID NO:327大豆WRI1多肽(XP_003524030.1)
[0853] SEQ ID NO:328大豆WRI1多肽(XP_003525949.1)
[0854] SEQ ID NO:329毛果杨WRI1多肽(XP_002325111.1)
[0855] SEQ ID NO:330葡萄WRI1多肽(CBI36586.3)
[0856] SEQ ID NO:331葡萄WRI1多肽(XP_002273046.2)
[0857] SEQ ID NO:332毛果杨WRI1多肽(XP 002303866.1)
[0858] SEQ ID NO:333葡萄WRI1多肽(CBI25261.3)
[0859] SEQ ID NO:334Sorbi-WRL1
[0860] SEQ ID NO:335Lupan-WRL1
[0861] SEQ ID NO:336Ricco-WRL1
[0862] SEQ ID NO:337狭叶羽扇豆(Lupin angustifolius)WRI1多肽
[0863] SEQ ID NO:338烟曲霉(Aspergillus fumigatus)DGAT多核苷酸(XM_750079.1)[0864] SEQ ID NO:339蓖麻DGAT多核苷酸(AY366496.1)
[0865] SEQ ID NO:340油桐DGAT1多核苷酸(DQ356680.1)
[0866] SEQ ID NO:341斑鸠菊(Vernonia galamensis)DGAT1多核苷酸(EF653276.1)[0867] SEQ ID NO:342斑鸠菊DGAT1多核苷酸(EF653277.1)
[0868] SEQ ID NO:343卫矛(Euonymus alatus)DGAT1多核苷酸(AY751297.1)
[0869] SEQ ID NO:344秀丽隐杆线虫DGAT1多核苷酸(AF221132.1)
[0870] SEQ ID NO:345褐鼠(Rattus norvegicus)DGAT1多核苷酸(NM_053437.1)
[0871] SEQ ID NO:346人DGAT1多核苷酸(NM 012079.4)
[0872] SEQ ID NO:347烟曲霉DGAT1多肽(XP_755172.1)
[0873] SEQ ID NO:348蓖麻DGAT1多肽(AAR11479.1)
[0874] SEQ ID NO:349油桐DGAT1多肽(ABC94472.1)
[0875] SEQ ID NO:350斑鸠菊DGAT 1多肽(ABV21945.1)
[0876] SEQ ID NO:351斑鸠菊DGAT1多肽(ABV21946.1)
[0877] SEQ ID NO:352卫矛DGAT1多肽(AAV31083.1)
[0878] SEQ ID NO:353秀丽隐杆线虫DGAT1多肽(AAF82410.1)
[0879] SEQ ID NO:354褐鼠DGAT1多肽(NP 445889.1)
[0880] SEQ ID NO:355智人DGAT1多肽(NP_036211.2)
[0881] SEQ ID NO:356WRI1基序(R G V T/S R H R W T G R)
[0882] SEQ ID NO:357WRI1基序(F/Y E AH L W D K)
[0883] SEQ ID NO:358WRI1基序(D L AAL K Y W G)
[0884] SEQ ID NO:359WRI1基序(S X G F S/AR G X)
[0885] SEQ ID NO:360WRI1基序(H H H/Q N G R/K W E AR I G R/K V)
[0886] SEQ ID NO:361WRI1基序(Q E E AAAX Y D)
[0887] SEQ ID NO:362欧洲油菜油体蛋白多肽(CAA57545.1)
[0888] SEQ ID NO:363欧洲油菜油体蛋白S1-1多肽(ACG69504.1)
[0889] SEQ ID NO:364欧洲油菜油体蛋白S2-1多肽(ACG69503.1)
[0890] SEQ ID NO:365欧洲油菜油体蛋白S3-1多肽(ACG69513.1)
[0891] SEQ ID NO:366欧洲油菜油体蛋白S4-1多肽(ACG69507.1)
[0892] SEQ ID NO:367欧洲油菜油体蛋白S5-1多肽(ACG69511.1)
[0893] SEQ ID NO:368花生(Arachis hypogaea)油体蛋白1多肽(AAZ20276.1)
[0894] SEQ ID NO:369花生油体蛋白2多肽(AAU21500.1)
[0895] SEQ ID NO:370花生油体蛋白3多肽(AAU21501.1)
[0896] SEQ ID NO:371花生油体蛋白5多肽(ABC96763.1)
[0897] SEQ ID NO:372蓖麻油体蛋白1多肽(EEF40948.1)
[0898] SEQ ID NO:373蓖麻油体蛋白2多肽(EEF51616.1)
[0899] SEQ ID NO:374大豆油体蛋白同工型a多肽(P29530.2)
[0900] SEQ ID NO:375大豆油体蛋白同工型b多肽(P29531.1)
[0901] SEQ ID NO:376亚麻(Linum usitatissimum)油体蛋白低分子量同工型多肽 (ABB01622.1)
[0902] SEQ ID NO:377亚麻油体蛋白高分子量同工型多肽的氨基酸序列(ABB01624.1)[0903] SEQ ID NO:378向日葵(Helianthus annuus)油体蛋白多肽(CAA44224.1)
[0904] SEQ ID NO:379玉米油体蛋白多肽(NP 001105338.1)
[0905] SEQ ID NO:380欧洲油菜油体固醇蛋白多肽(ABM30178.1)
[0906] SEQ ID NO:381欧洲油菜油体固醇蛋白SLO1-1多肽(ACG69522.1)
[0907] SEQ ID NO:382欧洲油菜油体固醇蛋白SLO2-1多肽(ACG69525.1)
[0908] SEQ ID NO:383芝麻油体固醇蛋白多肽(AAL13315.1)
[0909] SEQ ID NO:384玉米油体固醇蛋白多肽(NP 001 152614.1)
[0910] SEQ ID NO:385欧洲油菜油体钙蛋白CLO-1多肽(ACG69529.1)
[0911] SEQ ID NO:386欧洲油菜油体钙蛋白CLO-3多肽(ACG69527.1)
[0912] SEQ ID NO:387芝麻(Sesamum indicum)油体钙蛋白多肽(AAF13743.1)
[0913] SEQ ID NO:388玉米油体钙蛋白多肽(NP 001151906.1)
[0914] SEQ ID NO:389欧洲油菜油体蛋白多核苷酸(X82020.1)
[0915] SEQ ID NO:390欧洲油菜油体蛋白S1-1多核苷酸(EU678256.1)
[0916] SEQ ID NO:391欧洲油菜油体蛋白S2-1多核苷酸(EU678255.1)
[0917] SEQ ID NO:392欧洲油菜油体蛋白S3-1多核苷酸(EU678265.1)
[0918] SEQ ID NO:393欧洲油菜油体蛋白S4-1多核苷酸(EU678259.1)
[0919] SEQ ID NO:394欧洲油菜油体蛋白S5-1多核苷酸(EU678263.1)
[0920] SEQ ID NO:395花生油体蛋白1多核苷酸(DQ097716.1)
[0921] SEQ ID NO:396花生油体蛋白2多核苷酸(AY722695.1)
[0922] SEQ ID NO:397花生油体蛋白3多核苷酸(AY722696.1)
[0923] SEQ ID NO:398花生油体蛋白5多核苷酸(DQ368496.1)
[0924] SEQ ID NO:399向日葵油体蛋白多核苷酸(X62352.1)
[0925] SEQ ID NO:400玉米油体蛋白多核苷酸(NM_0011 11868.1)
[0926] SEQ ID NO:401欧洲油菜油体固醇蛋白多核苷酸(EF143915.1)
[0927] SEQ ID NO:402欧洲油菜油体固醇蛋白SLO1-1多核苷酸(EU678274.1)
[0928] SEQ ID NO.403欧洲油菜油体固醇蛋白SLO2-1多核苷酸(EU678277.1)
[0929] SEQ ID NO:404玉米油体固醇蛋白多核苷酸(NM_001159142.1)
[0930] SEQ ID NO:405欧洲油菜油体钙蛋白CLO-1多核苷酸(EU678281.1)
[0931] SEQ ID NO:406欧洲油菜油体钙蛋白CLO-3多核苷酸(EU678279.1)
[0932] SEQ ID NO:407芝麻油体钙蛋白多核苷酸(AF 109921.1)
[0933] SEQ ID NO.408玉米油体钙蛋白多核苷酸(NM_001158434.1)
[0934] SEQ ID NO:409pJP3502完整载体序列(三基因)
[0935] SEQ ID NO:410pJP3503完整载体序列(四基因)
[0936] SEQ ID NO:411pJP3502 TDNA(插入至基因组内)序列
[0937] SEQ ID NO:412pJP3503 TDNA(插入至基因组内)序列
[0938] SEQ ID NO:413pJP3507载体序列
[0939] SEQ ID NO:414接头序列
[0940] SEQ ID NO:415大豆协同物(Synergy)
[0941] SEQ ID NO:416 12ABFJYC_pJP3569_insert
[0942] SEQ ID NO:417选择用于hpRNAi沉默的部分本氏烟草CGI-58序列(pTV46)
[0943] SEQ ID NO:418选择用于hpRNAi沉默的部分红花烟草AGPase序列(pTV35)
[0944] SEQ ID NO:419GXSXG脂肪酶基序
[0945] SEQ ID NO:420HX(4)D酰基转移酶基序
[0946] SEQ ID NO:421VX(3)HGF可能的脂质结合基序
[0947] SEQ ID NO:422拟南芥CGi58多核苷酸(NM_1 18548.1)
[0948] SEQ ID NO:423:二穗短柄草CGi58多核苷酸(XM_003578402.1)
[0949] SEQ ID NO:424大豆CGi58多核苷酸(XM 003523590.1)
[0950] SEQ ID NO:425玉米CGi58多核苷酸(NM_001155541.1)
[0951] SEQ ID NO:426两色高粱CGi58多核苷酸(XM 002460493.1)
[0952] SEQ ID NO:427蓖麻CGi58多核苷酸(XM 002510439.1)
[0953] SEQ ID NO:428蒺藜苜蓿CGi58多核苷酸(XM_003603685.1)
[0954] SEQ ID NO:429拟南芥CGi58多肽(NP_194147.2)
[0955] SEQ ID NO:430二穗短柄草CGi58多肽(XP_003578450.1)
[0956] SEQ ID NO:431大豆CGi58多肽(XP_003523638.1)
[0957] SEQ ID NO:432玉米CGi58多肽(NP_001149013.1)
[0958] SEQ ID NO:433两色高粱CGi58多肽(XP 002460538.1)
[0959] SEQ ID NO:434蓖麻CGi58多肽(XP_002510485.1)
[0960] SEQ ID NO:435蒺藜苜蓿CGi58多肽(XP 003603733.1)
[0961] SEQ ID NO:436水稻CGi58多肽(EAZ09782.1)
[0962] SEQ ID NO:437拟南芥LEC2多核苷酸(NM_102595.2)
[0963] SEQ ID NO:438蒺藜苜蓿LEC2多核苷酸(X60387.1)
[0964] SEQ ID NO:439欧洲油菜LEC2多核苷酸(HM370539.1)
[0965] SEQ ID NO:440拟南芥BBM多核苷酸(NM_121749.2)
[0966] SEQ ID NO:441蒺藜苜蓿BBM多核苷酸(AY899909.1)
[0967] SEQ ID NO:442拟南芥LEC2多肽(NP 564304.1)
[0968] SEQ ID NO:443蒺藜苜蓿LEC2多肽(CAA42938.1)
[0969] SEQ ID NO:444欧洲油菜LEC2多肽(ADO 16343.1)
[0970] SEQ ID NO:445拟南芥BBM多肽(NP_197245.2)
[0971] SEQ ID NO:446蒺藜苜蓿BBM多肽(AAW82334.1)
[0972] SEQ ID NO:447可诱导黑曲霉(Aspergilus niger)alcA启动子
[0973] SEQ ID NO:448在乙醇存在下激活AlcA启动子的AlcR诱导物
[0974] 发明详述
[0975] 一般技术和定义
[0976] 除非另外明确限定,否则本文所用的所有科技术语应采取本领域(如,细胞培养、分子遗传学、免疫学、免疫化学、蛋白化学、脂质和脂肪酸化学、生物燃料生产和生物化学领域)技术人员通常所理解的相同含义。
[0977] 除非另外指明,否则本发明所用的重组蛋白、细胞培养和免疫学技术为本领域技术人员熟知的标准程序。此类技术在诸如以下文献资源中有所描述和解释:J.Perbal,A Practical Guide to Molecular Cloning,John Wiley and Sons(1984),J.Sambrook等, Molecular Cloning:A Laboratory Manual,Cold Spring Harbour Laboratory Press(1989),T.A. Brown(编者),Essential Molecular Biology:A Practical Approach,卷1和2,IRL Press (1991),D.M.Glover和B.D.Hames(编者),DNA Cloning:A Practical Approach,卷1-4, IRL Press(1995和1996),F.M.Ausubel等(编者),Current Protocols in Molecular Biology, Greene Pub.Associates and Wiley-Interscience(1988,包括到目前为止的所有更新),Ed Harlow和David Lane(编者)Antibodies:A Laboratory Manual,Cold Spring Harbour Laboratory,(1988),和J.E.Coligan等(编者)Current Protocols in Immunology,John Wiley &Sons(包括到目前为止的所有更新)。
[0978] 所选的定义
[0979] 术语“转基因非人生物体”是指(例如)包含外源多核苷酸(转基因)或外源多肽的整个植物、藻类、非人动物或适合发酵的生物体,诸如酵母或真菌。在一个实施方案中,转基因非人生物体不是动物或其部分。在一个实施方案中,转基因非人生物体是能够由阳光获得能量以合成有机化合物作为营养的光养生物(例如植物或藻类)。在另一个实施方案中,转基因非人生物体为光合细菌。
[0980] 在多核苷酸或多肽背景下的术语“外源”是指当以与天然状态相比时改变的量存在于细胞中时的多核苷酸或多肽。这样的细胞在本文称作“重组细胞”或“转基因细胞”。在一个实施方案中,外源多核苷酸或多肽来自与包含所述外源多核苷酸或多肽的细胞不同的属。在另一个实施方案中,外源多核苷酸或多肽来自不同的种。在一个实施方案中,外源多核苷酸或多肽在宿主植物或植物细胞中表达,并且外源多核苷酸或多肽来自不同的种或属。所述外源多核苷酸或多肽可以使非自然发生的,如例如,由重组DNA方法所产生的合成的DNA分子。所述DNA分子可以(通常优选)包括已经过密码子优化用于在该细胞中表达的蛋白编码区,由此产生具有与天然发生的多肽相同的氨基酸序列的多肽,尽管所述蛋白编码区的核苷酸序列并不是天然发生的。所述外源多核苷酸可以编码、或所述外源多肽可以是:二酰基甘油酰基转移酶(DGAT)如DGAT1或DGAT2、甘油-3- 磷酸酰基转移酶(GPAT)如能够合成MAG的GPAT、Wrinkled 1(WRI1)转录因子、油体蛋白、沉默抑制子多肽。在一个实施方案中,所述外源多肽是外源MGAT如MGAT1 或MGAT2。
[0981] 如本文所用,术语“经提取的脂质”是指从包含至少60%(w/w)脂质的转基因生物或其部分中提取的组合物。
[0982] 如本文所用,术语“非极性脂质”是指可溶于有机溶剂但不溶于水的脂肪酸及其衍生物。脂肪酸可以为游离脂肪酸和/或为酯化形式。酯化形式的实例包括但不限于三酰基甘油(TAG)、二酰基甘油(DAG)、单酰基甘油(MAG)。非极性脂质还包括固醇、固醇酯和蜡酯。非极性脂质也称为“中性脂质”。非极性脂质在室温下通常为液体。优选地,非极性脂质主要(>50%)包含长度为至少16个碳的脂肪酸。更优选地,非极性脂质中总脂肪酸的至少50%为C18脂肪酸,例如油酸。在一个实施方案中,本发明的非极性脂质中脂肪酸的至少50%、更优选至少70%、更优选至少80%、更优选至少90%、更优选至少91%、更优选至少92%、更优选至少93%、更优选至少94%、更优选至少95%、更优选至少96%、更优选至少97%、更优选至少98%、更优选至少99%可作为TAG存在。非极性脂质可(例如)通过用强碱水解以释放游离脂肪酸或通过分馏、蒸馏等方法进一步纯化或处理。非极性脂质可存在于或得自植物的部分如种子、叶或果实、得自重组细胞或得自非人生物体如酵母。本发明的非极性脂质如果得自种子则可形成“种子油”的一部分。经提取的脂质中的游离和酯化固醇(例如,谷固醇、菜油固醇、豆固醇、芸苔固醇、D5-燕麦固醇(D5-avenasterol)、谷甾烷醇(sitostanol)、菜油甾烷醇(campestanol) 和胆固醇)浓度可如Phillips等,2002中所述。植物油中的固醇存在为:游离醇、与脂肪酸的酯(酯化的固醇)、固醇的糖苷和酰化的糖苷。天然发生的植物油(种子油)中固醇的浓度范围在高达最大约1100mg/100g。氢化的棕榈油具有天然发生的植物油的最低浓度之一为大约60mg/100g。本发明的回收的或提取的种子油优选具有大约100至大约 1000mg的总固醇/100g的油。对于作为食品或饲料的用途,优选固醇主要作为游离的或酯化的形式存在而不是糖基化的形式。在本发明的种子油中,优选油中至少的50%固醇作为酯化的固醇存在,除了大豆种子油外(其有大约25%的固醇被酯化)。本发明的油菜油和油菜籽(rapeseed)油优选就有大约500至大约800mg的总固醇/100g,其中谷固醇为主要固醇而菜油固醇其次。本发明的玉米种子油优选具有大约600至大约800mg 的总固醇/100g,其中谷固醇为主要固醇。本发明的大豆种子油优选具有大约150至大约350mg的总固醇/
100g,其中谷固醇为主要固醇而豆固醇其次,并且具有比酯化的固醇多的游离固醇。本发明的棉花种子油优选具有大约200至大约350mg的总固醇/100g,其中谷固醇为主要固醇。本发明的椰子油和棕榈油优选具有大约50至大约100mg的总固醇/100g,其中谷固醇为主要固醇。本发明的红花种子油优选具有大约150至大约 250mg的总固醇/100g,其中谷固醇为主要固醇。本发明的花生种子油优选具有大约100 至大约200mg的总固醇/100g,其中谷固醇为主要固醇。本发明的芝麻种子油优选具有大约400至大约600mg的总固醇/100g,其中谷固醇为主要固醇。本发明的向日葵种子油优选具有大约200至400mg的总固醇/100g,其中谷固醇为主要固醇。得自本发明的营养性植物部分的油优选具有低于200mg的总固醇/100g,更优选低于100mg的总固醇 /100g,以及最优选低于50mg的总固醇/100g,其中固醇的大部分为游离固醇。
[0983] 如本文所用,术语“种子油”是指从包含至少60%(w/w)脂质的植物的种子/粮食获得的或者在种子油仍存在于种子/粮食中时可从种子/粮食获得的组合物。也就是说,本发明的种子油包括存在于种子/粮食或其部分中的种子油,以及已从种子/粮食中提取出来的种子油。种子油优选为提取的种子油。种子油在室温下通常为液体。优选地,种子油中的总脂肪酸(TFA)含量主要(>50%)包含长度为至少16个碳的脂肪酸。更优选地,种子油中的总脂肪酸的至少50%为C18脂肪酸,例如油酸。脂肪酸通常为酯化形式,诸如TAG、DAG、酰基-CoA或磷脂。脂肪酸可以为游离脂肪酸和/或为酯化形式。在一个实施方案中,本发明的种子油中脂肪酸的至少50%、更优选至少70%、更优选至少 80%、更优选至少90%、更优选至少91%、更优选至少92%、更优选至少93%、更优选至少94%、更优选至少95%、更优选至少
96%、更优选至少97%、更优选至少98%、更优选至少99%可作为TAG存在。在一个实施方案中,本发明的种子油为已从在种子中或粗提取物中与其相关的一种或多种其他脂质、核酸、多肽或其他污染分子分离的“基本上纯化的”或“纯化的”油。优选的是,基本上纯化的种子油至少60%、更优选至少75%、更优选至少90%不含在种子或提取物中与其相关的其他组分。本发明的种子油可进一步包含非脂肪酸分子,诸如但不限于固醇。在一实施方案中,所述种子油是油菜油(芸苔如Brassica carinata、Brassica  juncea、Brassica 
napobrassica、欧洲油菜)、芥子油(芥菜 (Brassica juncea)),其它芸苔油(例如,Brassica napobrassica,Brassica camelina),向日葵油(向日葵如向日葵),亚麻油(亚麻),大豆油(大豆),红花油(红花),玉米油(玉米),烟草油(烟草类如红花烟草或本氏烟草),花生油(花生),棕榈油(油棕),棉花种子油(陆地棉),椰子油(椰子),鳄梨油(鳄梨),橄榄油(橄榄(Olea europaea)),腰果油(腰果 (Anacardium occidentale)),澳大利亚坚果油(澳大利亚坚果(Macadamia intergrifolia)),杏仁油(杏仁(Prunus amygdalus)),燕麦种子油(燕麦(Avena sativa)),米油(稻类如水稻和光稃稻),拟南芥种子油(拟南芥),或者来自以下的种子的油刺干椰(Acrocomia aculeate),花生(Aracinis hypogaea),Astrocaryum murumuru(murumuru),星实榈(Astrocaryum vulgare,tucuma),Attalea geraensis(Indaia-rateiro),Attalea humilis(美洲油棕榈),Attalea oleifera(andaia),Attalea phalerata(uricuri),Attalea speciosa(babassu),甜菜,亚麻荠, Caryocar brasiliense(pequi),海甘蓝(Abyssinian kale),甜瓜,大麦,麻风树(physic nut), Joannesia princeps(arara nut-tree),奥蒂树(oiticica),羽扇豆,曲叶矛榈,摩帝椰子,芒草类如异源三倍体芒草奇岗和中国芒,巴卡巴酒实棕,巴套阿酒实棕,Oenocarpus distichus(bacaba-de-leque),柳枝稷,Paraqueiba paraensis(mari),鳄梨,水黄皮(印度山毛榉),毛果杨,蓖麻,蔗类(甘蔗),芝麻,马铃薯(Solarium tuberosum),高粱类如两色高粱、高粱,大花可可,三叶草,巴西针棕和麦类如小麦。种子油可通过本领域已知的任何方法从种子/粮食中提取。这通常涉及使用通常与种子的第一次破碎相关的非极性溶剂诸如乙醚、石油醚、氯仿/甲醇或丁醇混合物进行提取。粮食中与淀粉相关的脂质可使用水饱和的丁醇提取。种子油可以通过本领域已知的方法“脱胶”以除去多糖,或以其他方式处理以除去污染物或改善纯度、稳定性或色泽。种子油中的TAG和其他酯可以水解以释放游离脂肪酸,或者如本领域所已知将种子油氢化、化学处理或酶法处理。
[0984] 如本文所用,术语“脂肪酸”是指饱和或未饱和的具有长度为至少8个碳原子的长脂族尾部的羧酸。通常,脂肪酸具有长度为至少12个碳的碳-碳键合链。最多的天然存在的脂肪酸具有偶数个碳原子,因为它们的生物合成涉及具有两个碳原子的乙酸酯。脂肪酸可以为游离状态(非酯化)或酯化形式,诸如TAG、DAG、MAG、酰基-CoA(硫代酯) 键合或其他共价键合形式的一部分。当以酯化形式共价键合时,脂肪酸在本文称为“酰基”基团。脂肪酸可以酯化为磷脂,诸如磷脂酰胆碱(PC)、磷酸酰乙醇胺、磷脂酰丝氨酸、磷脂酰甘油、磷脂酰肌醇或双磷脂酰甘油。饱和脂肪酸沿着链不含任何双键或其他官能团。术语“饱和的”是指氢,因为所有的碳(除了羧酸[-COOH]基团)都包含尽可能多的氢。换句话讲,omega(ω)端含3个氢(CH3-),链内的每个碳含2个氢(-CH2-)。不饱和脂肪酸具有与饱和脂肪酸相似的形式,不同的是一个或多个烯烃官能团沿着链存在,而每个烯烃用双键的"-CH=CH-"部分(即,以双键键合到另一个碳的碳)取代链的单键 "-CH2-CH2-"部分。结合到双键任一侧的链中的两个紧邻碳原子可以按顺式或反式构型存在。
[0985] 如本文所用,术语“多不饱和脂肪酸”或"PUFA"是指包含其碳链中的至少12个碳原子以及至少两个烯烃基团(碳-碳双键)的脂肪酸。本发明的营养性植物部分、或所述非人生物体或其部分的PUFA含量可以被提高或降低,这取决于本发明的营养性植物部分、或非人生物体或其部分、或种子中表达的外源多核苷酸的组合,例如,当表达MGAT 时PUFA通常水平提高,而当单独表达DGAT1时或其与WRI1组合表达时,由于油酸水平的提高PUFA水平通常降低。另外,如果Δ12去饱和酶活性被降低,例如通过使內源Δ12去饱和酶沉默,则在缺乏编码不同的Δ12去饱和酶的外源多核苷酸时PUFA含量不太可能提高。
[0986] “单酰基甘油酯”或"MAG"是其中甘油被一个脂肪酸酯化的甘油酯。如本文所用,MAG包含位于sn-1/3(本文也称为sn-1MAG或1-MAG或1/3-MAG)或sn-2位(本文也称为2-MAG)的羟基,因此MAG不包括磷酰化分子,诸如PA或PC。MAG因此为细胞中的中性脂质的组分。
[0987] “二酰基甘油酯”或"DAG"是其中甘油被两个脂肪酸酯化的甘油酯,该两个脂肪酸可以是相同的、或优选不同的。如本文所用,DAG包含位于sn-1,3或sn-2位的羟基,而因此DAG不包括磷酰化的分子,如PA或PC。DAG因此为细胞中的中性脂质的组分。在DAG合成的Kennedy途径中(图1),前体sn-甘油-3-磷酸(G-3-P)在sn-1位通过甘油-3-磷酸酰基转移酶(GPAT)催化的第一反应中酯化到两个酰基(每一个来自脂肪酸辅酶A酯)形成LysoPA,然后在通过溶血磷脂酸酰基转移酶(LPAAT)催化的sn-2位的第二酰化形成磷脂酸(PA)。该中间体然后去磷酰化形成DAG。在备选合成代谢途径中(图1), DAG可通过MGAT催化的sn-1MAG或优选sn-2MAG的酰化形成。DAG也可通过脂肪酶移除酰基由TAG形成,或通过CPT、PDCT或PLC任一种酶移除胆碱头基而基本上由PC形成(图1)。
[0988] “三酰基甘油酯”或"TAG"是其中甘油被三个脂肪酸酯化的甘油酯,其中三个脂肪酸可以是相同的(如甘油三油酸酯(tri-olein)中)、或者更常见的是不同的。在TAG合成的 Kennedy途径中,DAG如上文所述形成,然后通过DGAT的活性将第三酰基酯化到甘油主链。形成TAG的备选途径包括酶PDAT催化的途径和本文所述的MGAT途径。
[0989] 如本文所用,术语“酰基转移酶”是指能够将酰基从酰基-CoA转移到底物上的蛋白并且包括MGAT、GPAT和DGAT。
[0990] 如本文所用,术语“Wrinkled 1”或“WRI1”或“WRL1”是指AP2/ERWEBP类的转录因子,其调节糖分解和从头脂肪酸生物合成中所涉及的若干酶的表达。WRI1具有两个植物特异性(AP2/EREB)DNA-结合结构域。至少拟南芥中的WRI1还调节蔗糖经糖分解的断裂,由此调节脂肪酸生物合成前体的供应。换句话说,其控制碳流从光合作用至脂质储存,WRI1突变体具有褶皱(wrinkled)种子表型,这是由于将蔗糖和葡糖糖掺入TAG的缺陷
[0991] 由WRI1转录的基因实例包括但不限于,以下的一种或多种、优选全部:丙酮酸激酶(At5g52920、At3g22960),丙酮酸脱氢酶(PDH)E1α亚基(At1g01090),乙酰-CoA羧化酶(ACCase),BCCP2亚基(At5g15530),烯酰基-ACP还原酶(At2g05990;EAR),磷酸甘油酸变位酶(At1g22170),胞质果糖激酶,和胞质磷酸甘油酸变位酶,蔗糖合酶(SuSy) (参见,例如,Liu等,2010b;Baud等,2007;Ruuska等,2002)。
[0992] WRL1含有保守的结构域AP2(cd00018)。AP2是在植物里转录调节因子中发现的 DNA-结合结构域如APETALA2和EREBP(乙烯反应元件结合蛋白)。在EREBP中该结构域特异性结合乙烯反应元件(ERE,乙烯反应中必须的启动子元件)的11bp GCC盒。应激应答中所涉及的EREBP和C-重复序列结合因子CBF1,含有单拷贝的AP2结构域。在植物发育中发挥重要作用的类APETALA2蛋白含有两个拷贝。
[0993] WRI1及其功能同源物中的其它序列基序包括:
[0994] 1.R G V T/S R H R W T G R(SEQ ID NO:356)。
[0995] 2.FAT E AH L W D K(SEQ ID NO:357)。
[0996] 3.D L A A L K Y W G(SEQ ID NO:358)。
[0997] 4.S X G F S/A R G X(SEQ ID NO:359)。
[0998] 5.H H H/Q N G R/K W E A R I G R/K V(SEQ ID NO:360)。
[0999] 6.Q E E A A A X Y D(SEQ ID NO:361)。
[1000] 如本文所用,术语“Wrinkled 1”或“WRI1”还包括“Wrinkled 1样”或“WRI1 样”蛋白。WRI1蛋白的实例包括以下的登录号:Q6X5Y6,(拟南芥;SEQ ID NO:280), XP_002876251.1(琴叶拟南芥琴叶亚种;SEQ ID NO:281),ABD16282.1(欧洲油菜;SEQ ID NO:
282),ADO16346.1(欧洲油菜;SEQ ID NO:283),XP_003530370.1(大豆;SEQ ID NO:284),AEO22131.1(麻风树;SEQ ID NO:285),XP_002525305.1(蓖麻;SEQ ID NO:286),XP_
002316459.1(毛果杨;SEQ ID NO:287),CBI29147.3(葡萄;SEQ ID NO:288),XP_
003578997.1(二穗短柄草;SEQ ID NO:289),BAJ86627.1(大麦;SEQ ID NO:290),EAY79792.1(水稻;SEQ ID NO:291),XP_002450194.1(两色高粱;SEQ ID NO:292),ACG32367.1(玉米;SEQ ID NO:293),XP_003561189.1(二穗短柄草;SEQ ID NO:294),ABL85061.1(小颖短柄草;SEQ ID NO:295),BAD68417.1(水稻;SEQ ID NO:296),XP_
002437819.1(两色高粱;SEQ ID NO:297),XP_002441444.1(两色高粱; SEQ ID NO:298),XP_003530686.1(大豆;SEQ ID NO:299),XP_003553203.1(大豆;SEQ ID NO:300),XP_
002315794.1(毛果杨;SEQ ID NO:301),XP_002270149.1(葡萄;SEQ ID NO:302),XP_
003533548.1(大豆;SEQ ID NO:303),XP_003551723.1(大豆;SEQ ID NO:304),XP_003621 
1 17.1(蒺藜苜蓿;SEQ ID NO:305),XP_002323836.1(毛果杨;SEQ ID NO.306),XP_
002517474.1(蓖麻;SEQ ID NO:307),CAN79925.1(葡萄;SEQ ID NO:308),XP_003572236.1(二穗短柄草;SEQ ID NO:309),BAD10030.1(水稻;SEQ ID NO:310),XP_002444429.1(两色高粱;SEQ ID NO:311),NP_001170359.1(玉米;SEQ ID NO:312),XP_02889265.1(琴叶拟南芥琴叶亚种;SEQ ID NO:313),AAF68121.1(拟南芥; SEQ ID NO:314),NP_178088.2(拟南芥;SEQ ID NO:315),XP_002890145.1(琴叶拟南芥琴叶亚种;SEQ ID NO:316),BAJ33872.1(小盐芥;SEQ ID NO:317),NP_563990.1(拟南芥;SEQ ID NO:318),XP_003530350.1(大豆;
SEQ ID NO:319),XP_003578142.1(二穗短柄草;SEQ ID NO:320),EAZ09147.1(水稻;SEQ ID NO:321),XP_002460236.1(两色高粱;SEQ ID NO:322),NP_01146338.1(玉米;SEQ ID NO:323),XP_003519167.1(大豆;SEQ ID NO:324),XP_003550676.1(大豆;SEQ ID NO:
325),XP_003610261.1(蒺藜苜蓿;SEQ ID NO:326),XP_003524030.1(大豆;SEQ ID NO:
327),XP_003525949.1(大豆;SEQ ID NO:328),XP_002325111.1(毛果杨;SEQ ID NO:329),CBI36586.3(葡萄;SEQ ID NO:330),XP_002273046.2(葡萄;SEQ ID NO:331)XP_
002303866.1(毛果杨;SEQ ID NO:332),和CBI25261.3(葡萄;SEQ ID NO:333)。另外的实例包括Sorbi-WRL1(SEQ ID NO:334),Lupan-WRL1(SEQ ID NO:335),Ricco-WRL1(SEQ ID NO:
336),和狭叶羽扇豆WRI1(SEQ ID NO:337)。
[1001] 如本文所用,术语“单酰基甘油酰基转移酶”或"MGAT"是指将脂肪酰基从酰基 -CoA转移到MAG底物产生DAG的蛋白。因此,术语“单酰基甘油酰基转移酶活性”至少是指将酰基从酰基-CoA转移到MAG产生DAG。MGAT因其在哺乳动物肠道的脂肪吸收中的作用而最为知名,其中通过膳食脂肪消化生成的脂肪酸和sn-2MAG在肠细胞中重新合成为TAG,用于乳糜微粒的合成和分泌。MGAT催化此过程的第一步,其中来自脂肪酰基-CoA的由脂肪酸和CoA形成的酰基与sn-2MAG共价接合。如本文所用的术语"MGAT"包括作用于sn-1/3MAG和/或sn-2MAG底物以分别形成sn-1,3DAG 和/或sn-1,2/2,3-DAG的酶。在优选的实施方案中,MGAT比sn-1MAG更偏好sn-2MAG,或基本上只使用sn-2MAG作为底物,实例包括以下文献中所述的MGAT:Cao等, 2003(小鼠MGAT1对sn 2-18:1-MAG的特异性>sn 1/3-18:1-MAG(图5));Yen和Farese, 2003(小鼠MGAT1和人MGAT2的一般活性对2-MAG高于1-MAG酰基受体底物(图5));
以及Cheng等,2003(人MGAT3对2-MAG的活性远高于对1/3-MAG底物的活性(图 2D))。
[1002] 如本文所用,MGAT不包括将酰基优先地转移到LysoPA而非MAG的酶,此类酶称为LPAAT。也就是说,MGAT优先地使用非磷酰化单酰基底物,即使它们可能对 LysoPA的催化活性较低。优选的MGAT不具有可检测的酰化LysoPA的活性。如本文所示,MGAT(即,小家鼠MGAT2)还可具有DGAT功能,但主要用作MGAT,也就是说,当将酶活性以nmol产物/min/mg蛋白为单位表示时,它作为MGAT的催化活性高于作为DGAT的催化活性(另见Yen等,2002)。
[1003] 有三类已知的MGAT,分别称为MGAT1、MGAT2和MGAT3。人MGAT1基因 (AF384163)的同源物至少存在(即,序列是已知的)于黑猩猩、狗、牛、小鼠、褐鼠、斑马鱼、秀丽隐杆线虫、粟酒裂殖酵母(Schizosaccharomyces pombe)、酿酒酵母 (Saccharomyces cerevisiae)、乳酸克鲁维酵母(Kluyveromyces lactis)、棉假囊酵母菌 (Eremothecium gossypii)、稻瘟病菌(Magnaporthe grisea)和粗糙脉孢菌(Neurospora crassa) 中。人MGAT2基因(AY157608)的同源物至少存在于黑猩猩、狗、牛、小鼠、褐鼠、鸡、斑马鱼、果蝇和蚊子中。人MGAT3基因(AY229854)的同源物至少存在于黑猩猩、狗、牛和斑马鱼中。然而,其他生物的同源物可容易地通过本领域鉴定同源序列的已知方法加以鉴定。
[1004] MGAT1多肽的实例包括由来自以下的MGAT1基因编码的蛋白:智人(AF384163; SEQ ID NO:7),小家鼠(AF384162;SEQ ID NO:8),黑猩猩(Pan troglodytes) (XM_001166055和XM_0526044.2;分别为SEQ ID NO:9和SEQ ID NO:10),家犬(Canis familiaris)(XM_545667.2;SEQ ID NO:l 1),家牛(Bos taurus)(NM_001001153.2;SEQ ID NO:12),褐鼠(NM_001 108803.1;SEQ ID NO:13),斑马鱼(Danio rerio)MGAT1 (NM_001122623.1;SEQ ID NO:14),秀丽隐杆线虫(NM_073012.4,NM 182380.5, NM_065258.3,NM_075068.3,和NM_
072248.3;分别为SEQ ID NO:15,SEQ ID NO:16,SEQ ID NO:17,SEQ ID NO:18,和SEQ ID NO:19),乳酸克鲁维酵母(XM_455588.1;SEQ ID NO:20),棉阿舒囊霉(Ashbya gossypii)(NM_208895.1;SEQ ID NO:21),稻瘟病菌 (Magnaporthe oryzae)(XM_368741.1;SEQ ID NO:22),玻璃海鞘(Ciona intestinalis)预测的(XM_002120843.1SEQ ID NO:23)。MGAT2多肽的实例包括由来自以下的MGAT2基因编码的蛋白:智人(AY157608;SEQ ID NO:24),小家鼠(AY157609;SEQ ID NO:25),黑猩猩(XM_5221 12.2;SEQ ID NO:26),家犬(XM_542304.1;
SEQ ID NO:27),家牛 (NM 001099136.1;SEQ ID NO:28),褐鼠(NM_001109436.2;SEQ ID NO:29),家鸡(Gallus gallus)(XM_424082.2;SEQ ID NO:30),斑马鱼(NM 001006083.1SEQ ID NO:31),黑腹果蝇(Drosophila melanogaster)(NMJ36474.2,NM_136473.2,和NM_
136475.2;分别为  SEQ ID NO:32,SEQ ID NO:33,和SEQ ID NO:34),冈比亚按蚊(Anopheles gambiae)(XM 001688709.1和XM_315985;分别为SEQ ID NO:35和SEQ ID NO:
36),赤拟谷盗 (Tribolium castaneum)(XM_970053.1;SEQ ID NO:37)。MGAT3多肽的实例包括由来自以下的MGAT3基因编码的蛋白:智人(AY229854;SEQ ID NO:38),黑猩猩(XM _
001154107.1,XM_001154171.1,和XM_527842.2;SEQ ID NO:39,SEQ ID NO:40,和 SEQ ID NO:41),家犬(XMJ45212.1;SEQ ID NO:42),家牛(XMJ70406.4;SEQ ID NO:43),斑马鱼(XM_
688413.4;SEQ ID NO:44)。
[1005] 如本文所用,“MGAT途径”是指形成TAG的不同于Kennedy途径的合成代谢途径,其中DAG通过MGAT催化的sn-1MAG或优选sn-2MAG的酰化而形成。DAG可随后用于形成TAG或其他脂质。MGAT途径在图1中示例。
[1006] 如本文所用,术语“二酰基甘油酰基转移酶”(DGAT)是指将脂肪酰基从酰基-CoA转移到DAG底物产生TAG的蛋白。因此,术语“二酰基甘油酰基转移酶活性”是指将酰基从酰基-CoA转移到DAG产生TAG。DGAT还可具有MGAT功能,但主要用作DGAT,也即,当将酶活性以nmol产物/min/mg蛋白为单位表示时,它作为DGAT的催化活性高于作为MGAT的催化活性(参见例如Yen等,2005)。
[1007] 有三种已知类型的DGAT,分别称为DGAT1、DGAT2和DGAT3。DGAT1多肽通常具有10个跨膜结构域,DGAT2多肽通常具有2个跨膜结构域,而DGAT3多肽通常不含跨膜结构域并被认为可溶于细胞质,而不整合进细胞膜。DGAT1多肽的实例包括通过得自烟曲霉(Aspergillus fumigatus)(XP_755172.1;SEQ ID NO:347)、拟南芥 (CAB44774.1;SEQ ID NO:83)、蓖麻(AAR11479.1;SEQ ID NO:348)、油桐(ABC94472.1; SEQ ID NO:349)、斑鸠菊(Vernonia galamensis)(ABV21945.1和ABV21946.1;分别为SEQ ID NO:350和SEQ ID NO:351)、卫矛(Euonymus alatus)(AAV31083.1;SEQ ID NO:352)、秀丽隐杆线虫(AAF82410.1;SEQ ID NO:353)、褐鼠(NP_445889.1;SEQ ID NO:354)、智人(NP_036211.2;SEQ ID NO:355)的DGAT1基因及其变体和/或突变体编码的蛋白。 DGAT2多肽的实例包括通过得自拟南芥(NP_566952.1;SEQ ID NO:212)、蓖麻 (AAY16324.1;SEQ ID NO:213)、油桐(ABC94474.1;SEQ ID NO:214)、拉曼被孢霉 (Mortierella ramanniana)(AAK84179.1;SEQ ID NO:215)、智人(Q96PD7.2;SEQ ID NO: 216)(Q58HT5.1;SEQ ID NO:217)、家牛(Q70VZ8.1;SEQ ID NO:
218)、小家鼠 (AAK84175.1;SEQ ID NO:219)的DGAT2基因及其变体和/或突变体编码的蛋白。
[1008] DGAT3多肽的实例包括通过得自花生(Arachis hypogaea,Saha等,2006)的DGAT3 基因以及其变体和/或突变体编码的蛋白。DGAT几乎没有可检测的MGAT活性,例如低于300pmol/min/mg蛋白,优选低于200pmol/min/mg蛋白,更优选低于100 pmol/min/mg蛋白。
[1009] DGAT2但非DGAT1与MGAT酶共有高序列同源性,从而表明DGAT2和MGAT 基因可能共有共同的遗传起源。虽然多种同工型在TAG合成中涉及到催化相同的步骤,但是它们可能发挥着不同的功能作用,如通过酶DGAT/MGAT家族的不同组织分布和亚细胞定位而表明。在哺乳动物中,MGAT1主要在胃、肾、脂肪组织中表达,而MGAT2 和MGAT3则在小肠中表现出最高的表达。在哺乳动物中,DGAT1在许多组织中泛表达,在小肠中的表达最高,而DGAT2则在肝脏中的丰度最高。生物信息学分析表明, MGAT3只存在于高等哺乳动物和人类中而不存在于啮齿动物中。MGAT3比MGAT1和 MGAT3与DGAT2共有更高的序列同源性。当将MAG或DAG用作底物时MGAT3比 MGAT1和MGAT2酶表现出明显更高的DGAT活性(MGAT3>MGAT1>MGAT2),从而表明MGAT3用作推定的TAG合酶。
[1010] MGAT1和MGAT2均属于同一类作为DGAT2的酰基转移酶。已表明在某些 DGAT2中对DGAT2催化活性具有重要意义的某些基序在MGAT酰基转移酶中也是保守的。特别感兴趣的是具有共有序列FLXLXXXN(SEQ ID NO:224)(其中每个X独立地为非脯氨酸的任何氨基酸,N为任何非极性氨基酸,该序列位于N端跨膜结构域内)的推定中性脂质结合结构域,接着为推定甘油/磷脂酰基转移酶结构域。FLXLXXXN基序存在于小鼠DGAT2(第81-88位氨基酸)和MGAT1/2中但不存在于酵母或植物DGAT2 中。它对小鼠DGAT2的活性具有重要意义。其他DGAT2和/或MGAT1/2序列基序包括:
[1011] 1.存在于大多数DGAT2多肽中也存在于MGAT1和MGAT2中的高度保守的YFP 三肽(SEQ ID NO:220),例如作为小鼠DGAT2中的第139-141位氨基酸而存在。通过非保守取代使酵母DGAT2内的该基序发生突变将使酶丧失功能。
[1012] 2.在MGAT中以及在动物和真菌的DGAT2序列中高度保守的HPHG四肽(SEQ ID NO:221),例如作为小鼠DGAT2中的第161-164位氨基酸而存在,并至少在酵母和小鼠DGAT2中对催化活性具有重要意义。植物DGAT2酰基转移酶相反具有EPHS(SEQ ID NO:222)保守序列,因此可以接受对第一和第四氨基酸的保守变化。
[1013] 3.作为推定甘油磷脂结构域一部分的较长保守基序。该基序的实例为 RXGFX(K/R)XAXXXGXXX(L/V)VPXXXFG(E/Q)(SEQ ID NO:223),其作为小鼠 DGAT2中的第304-327位氨基酸而存在。该基序在氨基酸序列中不如其他的保守,如可以通过其长度所预料,但是通过基序查找可以识别同源物。在更保守的氨基酸之间,间距可以变化,也就是说,与上面的序列相比,在基序内可以存在附加的X氨基酸或者更少的X氨基酸。
[1014] 如本文所用,术语“甘油-3-磷酸酰基转移酶”或"GPAT"是指使甘油-3-磷酸(G-3-P) 酰化形成LysoPA和/或MAG的蛋白质,如果GPAT也具有对LysoPA的磷酸酶活性则形成后一产物。转移的酰基基团通常来自酰基-CoA。因此,术语“甘油-3-磷酸酰基转移酶活性”是指G-3-P酰化形成LysoPA和/或MAG。术语"GPAT"涵盖使G-3-P酰化形成 sn-1LPA和/或sn-2LPA优选sn-2LPA的酶。在优选的实施方案中,GPAT具有磷酸酶活性。在最优选的实施方案中,GPAT为具有产生sn-2MAG的磷酸酶活性的sn-2GPAT。
[1015] 如本文所用,术语“sn-1甘油-3-磷酸酰基转移酶”(sn-1GPAT)是指使sn-甘油-3-磷酸 (G-3-P)酰化优先地形成1-酰基-sn-甘油-3-磷酸(sn-1LPA)的蛋白质。因此,术语“sn-1甘油-3-磷酸酰基转移酶活性”是指使sn-甘油-3-磷酸酰化形成1-酰基-sn-甘油-3-磷酸(sn-1 LPA)。
[1016] 如本文所用,术语“sn-2甘油-3-磷酸酰基转移酶”(sn-2GPAT)是指使sn-甘油-3-磷酸 (G-3-P)酰化优先地形成2-酰基-sn-甘油-3-磷酸(sn-2LPA)的蛋白质。因此,术语“sn-2甘油-3-磷酸酰基转移酶活性”是指使sn-甘油-3-磷酸酰化形成2-酰基-sn-甘油-3-磷酸(sn-2 LPA)。
[1017] GPAT家族是一个庞大的家族,且所有已知的成员均包含两个保守结构域:plsC 酰基转移酶结构域(PF01553;SEQ ID NO:225)和HAD样水解酶(PF12710;SEQ ID NO: 226)超家族结构域。除此之外,在拟南芥中,GPAT4-8均包含与磷酸丝氨酸磷酸酶结构域(PF00702;SEQ ID NO:227)同源的N端区域。GPAT4和GPAT6均包含已知对磷酸酶活性至关重要的保守残基,具体地讲,位于N端的基序I(DXDX[T/V][L/V];SEQ ID NO: 229)和基序III(K-[G/S][D/S]XXX[D/N];SEQ ID NO:330)中的保守氨基酸(Yang等, 2010)。优选地,GPAT具有sn-2偏好和磷酸酶活性以通过甘油-3-磷酸(G-3-P)产生sn-2 MAG(也称为"2-MAG")(图1),例如,得自拟南芥属的GPAT4(NP_171667.1)和GPAT6 (NP_181346.1)。更优选地,GPAT使用酰基-CoA作为脂肪酸底物。
[1018] GPAT4(NP_171667.1;SEQ ID NO:144)和GPAT6(NP_181346.1;SEQ ID NO:145) 的同源物包括:AAF02784.1(拟南芥;SEQ ID NO:146),AAL32544.1(拟南芥;SEQ ID NO:147),AAP03413.1(水稻;SEQ ID NO:148),ABK25381.1(北美云杉(Picea sitchensis); SEQ ID NO:149),ACN34546.1(玉米;SEQ ID NO:150),BAF00762.1(拟南芥;SEQ ID NO:151),BAH00933.1(水稻;SEQ ID NO:152),EAY84189.1(水稻;SEQ ID NO:153), EAY98245.1(水稻;SEQ ID NO:154),EAZ21484.1(水稻;SEQ ID NO:155),EEC71826.1 (水稻;SEQ ID NO:156),EEC76137.1(水稻;SEQ ID NO:157),EEE59882.1(水稻;SEQ ID NO:158),EFJ08963.1(江南卷柏;SEQ ID NO:159),EFJ08964.1(江南卷柏;SEQ ID NO:160),EFJ11200.1(江南卷柏;SEQ ID NO:161),EFJ15664.1(江南卷柏;SEQ ID NO: 162),EFJ24086.1(江南卷柏;SEQ ID NO:163),EFJ29816.1(江南卷柏;SEQ ID NO: 164),EFJ29817.1(江南卷柏;SEQ ID NO:
165),NP_001044839.1(水稻;SEQ ID NO:166), NP_001045668.1(水稻;SEQ ID NO:167),NP_001147442.1(玉米;SEQ ID NO:168),NP_001149307.1(玉米;SEQ ID NO:169),NP_
001168351.1(玉米;SEQ ID NO:170), AFH02724.1(欧洲油菜;SEQ ID NO:171),NP_
191950.2(拟南芥;SEQ ID NO:172), XP_001765001.1(小立碗藓(Physcomitrella patens);SEQ ID NO:173),XP_001769671.1 (小立碗藓;SEQ ID NO:174),XP_001769724.1(小立碗藓;SEQ ID NO:175),XP_001771 186.1(小立碗藓;SEQ ID NO:176),XP_
001780533.1(小立碗藓;SEQ ID NO:177), XP_002268513.1(葡萄;SEQ ID NO:178),XP_
002275348.1(葡萄;SEQ ID NO:179), XP_002276032.1(葡萄;SEQ ID NO:180),XP_
002279091.1(葡萄;SEQ ID NO:181), XP_002309124.1(毛果杨;SEQ ID NO:182),XP_
002309276.1(毛果杨;SEQ ID NO: 183),XP_002322752.1(毛果杨;SEQ ID NO:184),XP_
002323563.1(毛果杨;SEQ ID NO: 185),XP_002439887.1(两色高粱;SEQ ID NO:186),XP_
002458786.1(两色高粱;SEQ ID NO:187),XP_002463916.1(两色高粱;SEQ I DNO:188),XP_002464630.1(两色高粱; SEQ I DNO:189),XP_002511873.1(蓖麻;SEQ ID NO:190),XP_002517438.1(蓖麻;SEQ ID NO:191),XP_02520171.1(蓖麻;SEQ ID NO:192),XP_
002872955.1(琴叶拟南芥;SEQ ID NO:193),XP_002881564.1(琴叶拟南芥;SEQ ID NO:
194),ACT32032.1(油桐;SEQ ID NO:195),NP_001051189.1(水稻;SEQ ID NO:196),AFH02725.1(欧洲油菜;SEQ ID NO:197),XP_002320138.1(毛果杨;SEQ ID NO:198),XP_
002451377.1(两色高粱;SEQ ID NO:199),XP_002531350.1(蓖麻;SEQ ID NO:200),和XP_
002889361.1(琴叶拟南芥; SEQ ID NO:201)。
[1019] 保守基序和/或残基可用作基于序列的诊断法,用以鉴定双功能的GPAT/磷酸酶。或者,可以采用更严格的基于功能的测定法。这样的测定法涉及(例如)向细胞或微粒体供给加标记的甘油-3-磷酸,然后通过薄层层析或类似技术定量标记产物的水平。GPAT 活性导致产生标记的LPA,而GPAT/磷酸酶活性则导致产生标记的MAG。
[1020] 如本文所用,术语“油体蛋白”是指种子的储存组织中油体的膜中存在的两亲性蛋白(参见,例如,Huang,1996;Lin等,2005;Capuano等,2007;Lui等,2009;Shimada 和Hara-Nishimura,2010)。
[1021] 植物种子在称作油体的亚细胞结构中积累TAG。这些器官含有磷脂单层膜所包围的TAG核,所述磷脂单层膜含有若干嵌入的蛋白包括油体蛋白(Jolivet等,2004)。油体蛋白代表了油体的膜中最丰富的蛋白。
[1022] 油体蛋白为低Mr(15-26,000)。在每种种子的种类中,通常有两种或更多种不同Mr的油体蛋白。每个油体蛋白分子含有相对亲水的N-端结构域(例如,大约48个氨基酸残基),中间的完全疏水结构域(例如,大约70-80个氨基酸残基的),其特别富含脂肪族氨基酸如丙氨酸、甘氨酸、亮氨酸、异亮氨酸和缬氨酸,以及位于或邻近C-末端的两亲性α-螺旋结构域(例如,大约33个氨基酸残基的)。一般而言,疏水残基的中央区段被插入至脂质核中而两亲性的N-端和/或两亲性的C-端则位于油体的表面,其中带正电的残基嵌入磷脂单层膜而带负电的残基则暴露于外部。
[1023] 如本文所用,术语“油体蛋白"涵盖了聚油体蛋白,其具有多个油体蛋白多肽融合在一起成为单个多肽,例如2x、4x或6x油体蛋白肽;以及涵盖了油体钙蛋白,其结合钙(Froissard等,2009);以及涵盖了油体固醇蛋白(steroleosin),其结合固醇。然而,一般油体中油体蛋白的大部分都不会是油体钙蛋白和/或油体固醇蛋白。
[1024] 已知许多的油体蛋白蛋白序列、以及编码其的核苷酸序列,来自许多不同的植物物种。其实例包括但不限于来自以下的油体蛋白:拟南芥、欧洲油菜、玉米、稻、花生、蓖麻,大豆、亚麻、葡萄、甘蓝、棉花、向日葵、高粱和大麦。油体蛋白(及其登录号) 的实例包括:欧洲油菜油体蛋白(CAA57545.1;SEQ ID NO:362),欧洲油菜油体蛋白 S1-1(ACG69504.1;SEQ ID NO:363),欧洲油菜油体蛋白S2-1(ACG69503.1;SEQ ID NO:364),欧洲油菜油体蛋白S3-1(ACG69513.1;SEQ ID NO:365),欧洲油菜油体蛋白 S4-1(ACG69507.1;SEQ ID NO:366),欧洲油菜油体蛋白S5-1(ACG69511.1;SEQ ID NO:367),花生油体蛋白1(AAZ20276.1;SEQ ID NO:368),花生油体蛋白2(AAU21500.1; SEQ ID NO:369),花生油体蛋白3(AAU21501.1;
SEQ ID NO:370),花生油体蛋白5 (ABC96763.1;SEQ ID NO:371),蓖麻油体蛋白1(EEF40948.1;SEQ ID NO:372),蓖麻油体蛋白2(EEF51616.1;SEQ ID NO:373),大豆油体蛋白同工型a(P29530.2;SEQ ID NO:374),大豆油体蛋白同工型b(P29531.1;SEQ ID NO:
375),亚麻油体蛋白低分子量同工型(ABB01622.1;SEQ ID NO:376),亚麻油体蛋白高分子量同工型(ABB01624.1; SEQ ID NO:377),向日葵油体蛋白(CAA44224.1;SEQ ID NO:378),玉米油体蛋白 (NP_001105338.1;SEQ ID NO:379),欧洲油菜油体固醇蛋白(ABM30178.1;
SEQ ID NO:380),欧洲油菜油体固醇蛋白SLO1-1(ACG69522.1;SEQ ID NO:381),欧洲油菜油体固醇蛋白SLO2-1(ACG69525.1;SEQ ID NO:382),芝麻油体固醇蛋白(AAL13315.1; SEQ ID NO:383),玉米油体固醇蛋白(NP_001152614.1;SEQ ID NO:384),欧洲油菜油体钙蛋白CLO-1(ACG69529.1;SEQ ID NO:385),欧洲油菜油体钙蛋白CLO-3 (ACG69527.1;SEQ ID NO:386),芝麻油体钙蛋白(AAF13743.1;SEQ ID NO:387),玉米油体钙蛋白(NP_
001151906.1;SEQ ID NO:388)。
[1025] 如本文所用,术语“涉及淀粉生物合成的多肽”是指任何多肽,其在细胞中下调至低于正常(野生型)水平导致淀粉合成水平的降低以及淀粉水平的升高。此类多肽的实例有AGPase。
[1026] 如本文所用,术语“ADP-葡糖糖磷酸化酶"或"AGPase”是指调节淀粉生物合成的酶,催化葡糖糖-1-磷酸和ATP至ADP-葡糖糖(其为淀粉多聚物的构建区块)的转化。 AGPase酶的活性形式由2个大亚基和2个小亚基组成。
[1027] 植物中的ADPase酶主要以四聚体存在,其由2个大亚基和2个小亚基组成。虽然这些亚基基于其种类而在催化和调节作用上有不同(Kuhn等,2009),在植物中小亚基一般展现催化活性。小亚基的分子量为大约50-55kDa。大亚基的分子量为大约55-60 kDa。该植物酶由3-磷酸甘油酸盐(PGA)所强烈激活,其为二氧化碳固定的产物;在缺乏PGA时,该酶仅展现出大约其3%的活性。植物AGPase也被无机磷酸(Pi)强烈抑制。相反,细菌和藻类AGPase以50kDa的同源四聚体存在。藻类酶(与其植物对应物类似) 被PGA激活且被Pi抑制,而细菌酶则被果糖-1,6-二磷酸酶(FBP)激活且被AMP和Pi 抑制。
[1028] 如本文所用,术语“涉及脂质降解的多肽和/或降低脂质含量的多肽”是指任何多肽,其在细胞中下调至低于正常(野生型)水平会导致该细胞(优选植物的营养性组织的细胞) 中油(如脂肪酸和/或TAG)水平的提高。此类多肽的实例包括但不限于,脂肪酶类 (lipases),或者脂肪酶如CGi58多肽、SUGAR-DEPENDENT 1三酰基甘油脂肪酶(参见,例如,Kelly等,2012)或者WO 2009/027335中所述的脂肪酶。
[1029] 如本文所用,术语“脂肪酶”是指将脂肪水解成甘油和脂肪酸的蛋白。因此,术语“脂肪酶活性”是指脂肪至甘油和脂肪酸的水解。
[1030] 如本文所用,术语“CGi58”是指可溶的酰基-CoA-依赖性溶血磷脂酸酰基转移酶,现有技术中也已知为"At4g24160"(植物中)和"Ict1p"(酵母中)。植物基因如来自拟南芥基因基因座的(At4g24160)被表达为两个可选择的转录物:较长的全长同工型(At4g24160.1) 和较短的缺少3'末端的同工型(At4g24160.2)(参见James等,2010;Ghosh等,2009;US 201000221400)。两种mRNA均编码蛋白,所述蛋白同源于人CGI58蛋白和其它此α/β水解酶家族(ABHD)的直系进化同源成员。在一实施方案中,所述CGI58(At4g24160) 蛋白含有三个在植物物种间保守的基序:GXSXG脂肪酶基序(SEQ ID NO:419)、HX(4)D 酰基转移酶基序(SEQ ID NO:420)、和可能的脂质结合基序VX(3)HGF(SEQ ID NO:421)。人CGI-58蛋白具有溶血磷脂酸酰基转移酶(LPAAT)活性而不具有脂肪酶活性。相反,该植物和酵母蛋白具有标准的脂肪酶序列基序GXSXG(SEQ ID NO:419),其在脊椎动物(人、小树、和斑马鱼)蛋白中缺失。虽然植物和酵母CGI58蛋白表现出在LPAAT活性之外还具有可检测量的TAG脂肪酶和磷脂酶A活性,但该人类蛋白却并不如此。
[1031] 拟南芥中CGI-58基因的破坏导致天然脂质小滴在成熟叶中的累积。来自cgi-58 功能缺失突变体的分离的脂质小滴的质谱显示出它们含有具有常规叶特异性脂肪酸的三酰基甘油。成熟cgi-58植物的叶展现出绝对三酰基甘油水平的显著提高,比野生植物中高超过10倍。cgi-58功能缺失植物的储油种子中的脂质水平未有变化,并且与β-氧化中的突变不同,该cgi-58种子正常萌发和生长,不需要以蔗糖救济(James等,2010)。
[1032] CGi58多肽的实例包括来自以下的蛋白:拟南芥(NP_194147.2;SEQ ID NO:429),二穗短柄草(XP_003578450.1;SEQ ID NO:430),大豆(XP_003523638.1;SEQ ID NO:431),玉米(NP_001149013.1;SEQ ID NO:432),两色高粱(XP_002460538.1;SEQ ID NO:433),蓖麻(XP_002510485.1;SEQ ID NO:434),蒺藜苜蓿(XP 003603733.1;SEQ ID NO:435),和水稻(EAZ09782.1;SEQ ID NO:436)。
[1033] 如本文所用,术语“Leafy Cotyledon 2"或"LEC2”是指B3结构域转录因子,其参与合子(zygotic)和体细胞(somatic)胚胎发生。其异位(ectopic)表达有助于从营养性植物部分的胚胎发生(Alemanno等,2008)。LEC2还包含目前仅在植物中发现的DNA结合区。 LEC2多肽的实例包括来自拟南芥(NP_564304.1)(SEQ ID NO:442)、蒺藜苜蓿 (CAA42938.1)(SEQ ID NO:443)和欧洲油菜(AD016343.1)(SEQ ID NO:444)的蛋白。
[1034] 如本文所用,术语“BABY BOOM"或"BBM"是指AP2/ERF转录因子,其在通常不支持野生型植物再生的条件下诱导再生。欧洲油菜BBM(BnBBM)基因在欧洲油菜和拟南芥中的异位表达从无激素基础培养基上生长的幼苗诱导自发体胚胎发生和器官发生(Boutilier等,2002)。在烟草中,异位BBM表达足以诱导无定型枝条和根在基础培养基上的再生,但是体胚胎(SE)形成需要外源细胞分裂素(Srinivasan等,2007)。BBM 多肽的示例包括来自拟南芥(NPJ97245.2)(SEQ ID NO:445)和蒺藜苜蓿(AAW82334.1) (SEQ ID NO:446)的蛋白。
[1035] 如本文所用,术语“FAD2”是指膜结合的Δ-12脂肪酸去饱和酶,其将油酸(18:1Δ9) Δ9,12去饱和以产生亚油酸(C18:2 )。
[1036] 如本文所用,术语“环氧化酶”或”脂肪酸环氧化酶”是指将环氧基引入脂肪酸的酶,其导致产生环氧基脂肪酸。在优选的实施方案中,环氧基被引入到脂肪酸链上的第12 个碳,在此情形中该环氧化酶是Δ12-环氧化酶,特别是C16或C18脂肪酸链。所述环氧化酶可以是Δ9-环氧化酶、Δ15环氧化酶、或者如本领域已知的那样做用于酰基链中的不同位置。所述环氧化酶可以是P450类的。优选的环氧化酶是如WO98/46762中所述的单氧化酶类的。许多环氧化酶或推定的环氧化酶已被克隆并且是本领域已知的。环氧化酶的另外的实例包括含有WO 2009/129582中的SEQ ID NO:21所提供的氨基酸序列的蛋白,由来自还阳参(Crepis paleastina)(CAA76156,Lee等,1998)、琉璃菊(Stokesia laevis)(AAR23815,Hatanaka等,2004)(单氧化酶类型)、大戟(Euphorbia lagascae) (AAL62063)(P450类型),人CYP2J2(花生四烯酸环氧化酶,U37143)的基因编码的多肽;人CYP1A1(花生四烯酸环氧化酶,K03191)、以及其变体和/或突变体。
[1037] 如本文所用,术语"羟化酶”或”脂肪酸羟化酶”是指将羟基引入脂肪酸内的酶,其导致产生羟基化的脂肪酸。在优选的实施方案中,羟基被引入C18脂肪酸链的第2、第 12和/或第17个碳。优选地,羟基被引入第12个碳,在此情形中该羟化酶是Δ12-羟化酶。在另一优选的实施方案中,羟基被引入C18脂肪酸链的第15个碳。羟化酶还可以具有作为脂肪酸去饱和酶的酶活性。编码Δ12-羟化酶的基因的实例包括来自以下的那些:蓖麻(AAC9010,van de Loo 1995);Physaria lindheimeri(ABQ01458,Dauk等,2007); Lesquerella fendleri(AAC32755,Broun等,1998);野胡萝卜(Daucus carota)(AAK30206);将脂肪酸的末端羟基化的脂肪酸羟化酶,例如:拟南芥CYP86A1(P48422,脂肪酸ω- 羟化酶);救荒野豌豆(Vicia sativa)CYP94A1(P98188,脂肪酸ω-羟化酶);小鼠CYP2E1 (X62595,月桂酸ω-1羟化酶);大鼠CYP4A1(M57718,脂肪酸ω-羟化酶),以及其变体和/或突变体。
[1038] 如本文所用,术语“轭合酶(conjugase)”或”脂肪酸轭合酶”是指能够在脂肪酸的酰基链中形成共轭键的酶。轭合酶的实例包括由来自以下的基因所编码的那些:金盏花 (Calendula officinalis)(AF343064,Qiu等,2001);油桐(AAN87574,Dyer等,2002);石榴(Punica granatum)(AY178446,Iwabuchi等,2003)和栝楼(Trichosanthes kirilowii) (AY178444,Iwabuchi等,2003);以及其变体和/或突变体。
[1039] 如本文所用,术语“乙炔酶(acetylenase)”或”脂肪酸乙炔酶”是指将三键引入脂肪酸的酶,其导致产生乙炔(acetylenic)脂肪酸。在优选的实施方案中,三键被引入至C18脂肪酸链的第2、第12和/或第17个碳。乙炔酶的实例包括来自向日葵(AA038032、 ABC59684)的那些,以及其变体和/或突变体。
[1040] 此类脂肪酸修饰基因的实例包括根据下列登录号的蛋白质(基于可能的功能、及与其它种类的同源性分组):Δ12乙炔酶ABC00769、CAA76158、AAO38036、AAO38032;Δ12轭合酶AAG42259、AAG42260、AAN87574;Δ12去饱和酶P46313、ABS18716, AAS57577、AAL61825、AAF04093、AAF04094;Δ12环氧化酶XP_001840127、 CAA76156、AAR23815;Δ12羟化酶ACF37070、AAC32755、ABQ01458、AAC49010;和Δ12P450酶如AF406732。
[1041] 如本文所用,术语“营养性组织”或”营养性植物部分"除了植物的性繁殖器官(具体而言携有种子的器官、花、花粉、果实和种子)之外的任何植物组织、器官或植物部分。营养性组织和部分至少包括植物的叶、茎(包括蓊(bolt)和蘖(tiller)但不包括穗(head))、块茎和根,但不包括花、花粉、种子(包括种皮)、胚和胚乳、果实(包括中果皮组织)、携有种子的荚(pod)和携有种子的穗。在一个实施方案中,植物的所述营养性部分是气生植物部分。在另外的实施方案中,所述营养性植物部分是绿色部分如叶或茎。
[1042] 如本文所用,术语“野生型”或其变体是指未经过遗传修饰的细胞或非人生物或其部分。
[1043] 术语“相应的”是指与本发明的营养性植物部分、细胞、或非人生物体或其部分、或种子具有相同或相似遗传背景但未如本文所述进行修饰的营养性植物部分、细胞、或非人生物体或其部分、或种子(例如,缺乏编码MGAT或外源MGAT的外源多核苷酸的营养性植物部分、细胞、或非人生物体或其部分、或种子)。在优选的实施方案中,营养性植物部分、细胞、或非人生物体或其部分、或种子与本发明的营养性植物部分、细胞、或非人生物体或其部分、或种子处于相同的发育阶段。例如,如果所述非人生物体是在开花的植物,那么优选相应的植物也在开花。相应的营养性植物部分、细胞、或非人生物体或其部分、或种子可用作对照,以与如本文所述经修饰的营养性植物部分、细胞、或非人生物体或其部分、或种子比较核酸或蛋白表达水平,或性状修饰的程度和性质,例如非极性脂质的产生和/或含量。
[1044] 如本文所用,“与……比较”是指将表达一种或多种外源多核苷酸或外源多肽的转基因非人生物体或其部分的非极性脂质水平或总非极性脂质含量与缺乏所述一种或多种外源多核苷酸或多肽的转基因非人生物体或其部分进行比较。
[1045] 如本文所用,“增强的产生非极性脂质的能力”是一个相对意义上的术语,是指通过本发明的细胞或非人生物或其部分产生的非极性脂质的总量相对于相应的细胞或非人生物或其部分是升高的。在一个实施方案中,非极性脂质的TAG和/或多不饱和脂肪酸含量是升高的。
[1046] 如本文所用,“与相应野生型植物基本上相同的速率萌发”是指本发明植物的种子在与缺乏给定的外源多核苷酸的野生型植物的种子相比较时相对可育。在一个实施方案中,萌发的种子的数目(例如在该植物物种最佳的温室条件下生长时),与相应的野生型种子相比至少为75%、更优选至少90%。在另一实施方案中,萌发的种子(例如在该植物物种最佳的温室条件下生长时),与相应的野生型植物相比平均至少以75%、更优选至少90%的速率生长。
[1047] 如本文所用,术语“下调内源酶的产生和/活性的分离或重组多核苷酸”或其变体是指所编码的RNA分子下调内源酶的产生和/或活性(例如,编码siRNA、hpRNAi)或其本身即可下调内源酶的产生和/或活性(例如,为可直接递送到例如细胞中的siRNA)的多核苷酸,所述内源酶例如为DGAT、sn-1甘油-3-磷酸酰基转移酶(GPAT)、1-酰基-甘油-3- 磷酸酰基转移酶(LPAAT)、酰基-CoA:溶血卵磷脂酰基转移酶(LPCAT)、磷脂酸磷酸酶 (PAP)、AGPase、或Δ-12脂肪酸去饱和酶(FAD2),或者其两种或更多种的组合。
[1048] 如本文所用,术语“以重量计”是指物质(例如,TAG、DAG、脂肪酸)的重量作为包含该物质的组合物(例如,种子、叶)的重量的百分比。例如,如果转基因种子每120μg 种子重量具有25μg总脂肪酸,则总脂肪酸的百分比按重量计为20.8%。
[1049] 如本文所用,术语“以相对计”是指物质在包含该物质的组合物中的量与相应组合物按百分比计算的比较。
[1050] 如本文所用,术语“相对非脂质含量”是指细胞、生物体或其部分或从其得到的提取脂质的非极性脂质含量与相应细胞、生物体或其部分或从相应细胞、生物体或其部分提取的脂质按百分比计算的比较的表达。例如,如果转基因种子具有25μg总脂肪酸,而相应的种子具有20μg总脂肪酸,则在相对的基础上非极性脂质含量的升高等于25%。
[1051] 如本文所用,术语"生物燃料"是指其能量来源于生物固碳的任意类型的燃料,通常为用于运转机械如汽车卡车或石油运转的发动机。生物燃料包括衍生自生物质转化的燃料,以及固体生物质,液体燃料和生物气。生物燃料的实例包括生物醇、生物柴油、合成柴油、植物油、生物醚(bioether)、生物气、合成气、固体生物燃料、藻类衍生燃料、生物氢气,生物甲醇、2,5-二甲基呋喃(DMF)、生物甲基醚(bioDME)、Fischer-Tropsch 柴油、生物氢气柴油、混合醇和木柴油(wood diesel)。
[1052] 如本文所用,术语“生物醇”是指生物学产生的醇类,例如,乙醇、丙醇、和丁醇。生物醇由微生物和/或酶通过蔗糖、半纤维素或纤维素的发酵的作用产生。
[1053] 如本文所用,术语“生物柴油”是指包含脂肪酸甲基-或乙基-酯(通过酯交换衍生自非极性脂质)的组合物。
[1054] 如本文所用,术语“合成柴油”是指衍生自可再生原料而非大多数柴油燃料中使用的化石原料的柴油燃料形式。
[1055] 如本文所用,术语“植物油”包括纯的植物的油(或者无添加(straight)的植物油)或者废物植物油(其它产业的副产品)。
[1056] 如本文所用,术语“生物醚”是指作为辛烷值促进剂(octane rating enhancer)的化合物。
[1057] 如本文所用,术语“生物气”是指通过厌氧生物对有机材料厌氧消化而产生的甲烷或甲烷与其它气体的可燃混合物。
[1058] 如本文所用,术语“合成气”是指含有变化量的一氧化碳和氢气及可能的其它烃的气体混合物,其由生物质的部分燃烧所产生。
[1059] 如本文所用,术语“固体生物燃料”包括木材、锯末、草料(grass trimmining)、和非食品能量作物。
[1060] 如本文所用,术语“纤维素乙醇”是指从纤维素或半纤维素产生的乙醇。
[1061] 如本文所用,术语“藻类燃料”是指从藻类制备的生物燃料,且包括藻类生物柴油、生物丁醇、生物汽油、甲烷、乙醇、以及从藻类制备的植物油的等价物。
[1062] 如本文所用,术语“生物氢气”是指由,例如藻类,生物产生的氢气。
[1063] 如本文所用,术语“生物甲醇”是指生物产生的甲醇。生物甲醇可以通过将有机材料气化成合成气随后通过转化甲醇合成来产生。
[1064] 如本文所用,术语“2,5-二甲基呋喃”或”DMF”是指具有式(CH3)2C4H2O的杂环化合物。DMF是衍生自纤维素的呋喃衍生物。
[1065] 如本文所用,术语“生物甲基醚”或”bioDME",也已知为甲氧基甲烷 (methoxymethane),是指具有式CH3OCH3的有机化合物。合成气可以在存在催化剂(通常是基于的)的情况下被转化为甲醇,随后在不同催化剂(例如,硅胶-铝土 (silica-alumina))的存在下甲醇脱水导致产生DME。
[1066] 如本文所用,术语“Fischer-Tropsch”是指一系列化学反应,其将一氧化碳和氢气的混合物转化为液态烃。合成气可首先被调节(例如使用水气迁移(water gas shift))以实现所需的H2/CO比例。转化在催化剂的存在下进行,通常是或钴。温度、压力和催化剂决定是产生轻合成油还是重合成油。例如在330℃主要产生汽油和石蜡,而在180°至250℃主要产生柴油和蜡。从合成气产生的液体(其包含各种烃部分)是非常清洁的(无硫)直链烃。如果首选产生Fischer-Tropsch蜡,随后通过加氢裂化,则可直接产生 Fischer-Tropsch柴油,但可实现较高的产率。
[1067] 如本文所用,术语“生物炭”是指从生物质制备的炭,例如,通过生物质的热解。
[1068] 如本文所用,术语“原料”是指当用于产生产品(例如,生物燃料如生物柴油或合成柴油)时所用的材料,例如,生物质或其转化产物(例如,合成气)。
[1069] 如本文所用,术语“工业产品”是指主要由碳和氢组成的烃产品,如脂肪酸甲基-和/ 或乙基-酯或者烷烃如甲烷,较长链的烷烃(在室温通常为液态)的混合物,生物燃料,一氧化碳和/或氢气,或者生物醇如乙醇、丙醇或丁醇,或生物炭。术语“工业产品"要包括可被转化为工业产品的中间产品,例如,合成气本身被认为是工业产品,其可用于合成也被认为是工业产品的烃产品。如本文所用,术语工业产品包括上述化合物的纯的形式,或者更常见地是各种化合物和组分的混合物,例如烃产品可含有一个范围的碳链长度,这是本领域熟知的。
[1070] 如本文所用,"光泽(gloss)"是指在评估表面的外观时所引起的光学现象。光泽的评估描述了表面反射定向光的能力。
[1071] 在本说明书全文中,词语“包含”或变体诸如“包括”或“含有”将被理解为意在包含所述的要素、整数或步骤,或要素、整数或步骤的群组,但不排除任何其他要素、整数或步骤,或要素、整数或步骤的群组。
[1072] 术语“和/或”例如“X和/或Y”应被理解为表示“X和Y”或“X或Y”,并且应当用来明确支持两种含义或任一种含义。
[1073] 如本文所用,术语大约(除非另有指明)是指指定值的+/-10%、更优选+/-5%、更优选+/-2%、更优选+/-1%、更优选+/-0.5%。
[1074] 二酰基甘油和三酰基甘油的产生
[1075] 在一个实施方案中,本发明的营养性植物部分、转基因非人生物体或其部分与相应的营养性植物部分、非人生物体或其部分相比产生更高水平的非极性脂质,诸如DAG 或TAG,优选是这两者。在一个实例中,本发明的转基因植物产生的种子、叶、或至少1cm2表面积的叶、茎和/或块茎当与相应的种子、叶、或至少1cm2表面积的叶、茎或块茎相比时具有提高的非极性脂质含量,诸如DAG或TAG,优选是这两者。营养性植物部分、非人生物体或其部分的非极性脂质含量当与相应的非人生物或其部分相比时以重量计高0.5%,或者如特征(i)中所进一步定义。
[1076] 在另一个实施方案中,营养性植物部分、转基因非人生物体或其部分(优选植物或种子)产生富集一种或多种特定脂肪酸的DAG和/或TAG。多种多样的脂肪酸可掺入到 DAG和/或TAG中,包括饱和与不饱和脂肪酸以及短链与长链脂肪酸。可掺入到DAG 和/或TAG中的脂肪酸的某些非限制实例包括:羊蜡酸(10:0)、月桂酸(12:0)、肉豆蔻酸 (14:0)、棕榈酸(16:0)、棕榈油酸(16:1)、硬脂酸(18:0)、油酸(18:1)、异油酸(18:1)、亚油酸(18:2)、桐油酸(18:3)、γ-亚麻酸(18:3)、α-亚麻酸(18:3ω3)、十八碳四烯酸(18:4ω3)、花生酸(20:0)、二十碳二烯酸(20:2)、二高-γ-亚油酸(20:3)、二十碳三烯酸(20:3)、花生四烯酸(20:
4)、二十碳四烯酸(20:4)、二十碳五烯酸(20:5ω3)、二十二烷酸(22:0)、二十二碳五烯酸(22:5ω)、二十二碳六烯酸(22:6ω3)、二十四烷酸(24:0)、神经酸(24:1)、蜡酸(26:0) 和酸(28:0)脂肪酸。在本发明的一个实施方案中,营养性植物部分、转基因生物体或其部分富集包含油酸、或多不饱和脂肪酸的DAG和/或TAG。
[1077] 在本发明的一个实施方案中,将营养性植物部分、转基因非人生物体或其部分(优选植物或种子)用编码如本文所定义的可以具有或可以不具有DGAT活性的MGAT的嵌合DNA转化。MGAT的表达优选导致所述营养性植物部分、转基因非人生物体或其部分中更高水平的非极性脂质诸如DAG或TAG和/或升高的非极性脂质产率。在一个优选的实施方案中,转基因非人生物为植物。
[1078] 在进一步的实施方案中,用编码GPAT或DGAT的嵌合DNA转化所述营养性植物部分、转基因非人生物体或其部分。优选地,用优选共价连接在一个DNA分子诸如单个T-DNA分子上的两种嵌合DNA转化所述营养性植物部分或转基因非人生物体。
[1079] Yang等人(2010)描述了得自具有能够由甘油-3-磷酸(G-3-P)产生sn-2MAG的sn-2 偏好和磷酸酶活性的拟南芥属的甘油-3-磷酸酰基转移酶(GPAT4和GPAT6)(图1)。这些酶被认为是质合成途径的一部分。拟南芥属GPAT4和GPAT6已证实使用酰基辅酶A 作为脂肪酸底物(Zheng等,2003)。
[1080] 将双功能GPAT/磷酸酶与MGAT组合产生新的DAG合成途径,它使用G-3-P作为一种底物,以及衍生自酰基辅酶A的两个酰基基团作为另外的底物。相似地,将这样的双功能GPAT/磷酸酶与具有DGAT活性的MGAT结合产生一种新的TAG合成途径,它使用甘油-3-磷酸作为一种底物,以及衍生自酰基辅酶A的三个酰基基团作为另外的底物。
[1081] 因此,在本发明的一个实施方案中,将营养性植物部分、转基因非人生物体或其部分用双功能GPAT/磷酸酶以及用不具有DGAT活性的MGAT共转化。这将导致通过双功能GPAT/磷酸酶产生MAG,继而将通过MGAT转化成DAG,然后通过天然DGAT 或其他活性转化成TAG。新DAG产生过程可通过例如在包含致死SLC1+SLC4敲除的酵母菌株中进行这样的共转化而加以确认和选择,例如Benghezal等人(2007;图2)所述。Benghezal等人(2007)的图2显示了敲除两个酵母LPATS(SLC1&SLC4)是致死性的。 SLC1+SLC4双酵母突变体只能因提供反式的slc基因之一(对它们而言为SLC1)的互补质粒而得以维持。通过向培养基添加FOA的负选择导致此互补质粒丧失(Ura选择标记的反选择)并使细胞不能存活。
[1082] 在本发明的另一个实施方案中,用编码双功能GPAT/磷酸酶以及具有DGAT活性的MGAT的嵌合DNA共转化营养性植物部分、转基因非人生物体或其部分(优选植物或种子)。这将导致通过双功能GPAT/磷酸酶产生MAG,继而将通过MGAT转化成DAG 然后转化成TAG。
[1083] 在进一步的实施方案中,使不具有可检测的磷酸酶活性的一种或多种内源GPAT 沉默,例如使编码在Kennedy途径中酰化甘油-3-磷酸形成LPA的GPAT(例如,拟南芥 GPAT1)的一种或多种基因沉默。
[1084] 在另一实施方案中,用编码DGAT1、DGAT2、Wrinkled 1(WRI1)转录因子、油体蛋白、或沉默抑制子多肽的嵌合DNA转化营养性植物部分、转基因非人生物体或其部分(优选植物或种子)。所述嵌合DNA优选共价连接至一种DNA分子上,如例如,单个T-DNA分子,并且营养性植物部分、转基因非人生物体或其部分优选对于插入其基因组的一种DNA分子是纯合的。
[1085] 可通过(例如)向表达MGAT变体的转基因H1246酵母菌株提供一定浓度的防止与野生型MGAT基因互补的特定游离脂肪酸(例如,DHA)而将底物偏好工程化到新型 DAG和TAG合成途径中。只有能够使用所提供的游离脂肪酸的变体才能生长。多轮 MGAT工程化将导致产生更偏好特定氨基酸的MGAT。
[1086] 上文所述的各种Kennedy途径互补和补充因为初始底物甘油-3-磷酸的普遍存在性而可在任何细胞类型中进行。在一个实施方案中,转基因的使用导致油产率升高。
[1087] 多核苷酸
[1088] 术语“多核苷酸”和“核酸”可互换使用。它们是指任何长度的聚合物形式的核苷酸,即脱氧核糖核苷酸或核糖核苷酸或其类似物。本发明的多核苷酸可以具有基因组、 cDNA、半合成或合成起源,可为双链或单链的,并且归因于其起源或操纵:(1)与其在自然界中相关的多核苷酸的全部或一部分相关,(2)连接到其在自然界中所连接的之外的多核苷酸,或(3)不存在于自然界中。以下是多核苷酸的非限制性实例:基因或基因片段的编码或非编码区、通过连分析定义的基因座、外显子、内含子、信使RNA (mRNA)、转移RNA(tRNA)、核糖体RNA(rRNA)、核糖酶、cDNA、重组多核苷酸、支化多核苷酸、质粒、载体、任何序列的分离DNA、任何序列的分离RNA、任何序列的嵌合DNA、核酸探针和引物。多核苷酸可包括修饰的核苷酸,诸如甲基化核苷酸和核苷酸类似物。核苷酸结构的修饰当存在时可在聚合物组装前或组装后赋予。核苷酸序列可通过非核苷酸组分而中断。多核苷酸可在聚合反应后进一步修饰,诸如通过与标记组分缀合。
[1089] 提到“分离的多核苷酸”时,其是指已总体上从其天然状态下与之相关或连接的多核苷酸序列中分离的多核苷酸。优选地,分离的多核苷酸至少60%、更优选至少75%、更优选至少90%不含与之天然相关或连接的多核苷酸序列。
[1090] 如本文所用,术语“基因”将采取其最广泛的含义,并包括以下脱氧核糖核苷酸序列,它含有结构基因的转录区以及发生翻译时的蛋白编码区并包括位于5'和3'两个末端上的编码区附近的序列,它们在任一末端上距离末端的距离为至少约2kb并涉及到基因的表达。就这一点而言,基因包含与给定基因天然相关的控制信号,诸如启动子、增强子、终止和/或多聚腺苷酸化信号,或包含异源控制信号,在此情况下,基因称为“嵌合基因”。位于蛋白编码区5'并存在于mRNA上的序列称为5'非翻译序列。位于蛋白编码区3'或下游并存在于mRNA上的序列称为3'非翻译序列。术语“基因”涵盖基因的 cDNA和基因组两种形式。基因的基因组形式或克隆包含可通过称为“内含子”、“间插区”或“间插序列”的非编码序列中断的编码区。内含子是转录成核RNA(nRNA)的基因片段。内含子可包含调控元件,诸如增强子。内含子从核或初级转录物中移除或“剪除”;因此内含子不存在于mRNA转录物中。mRNA在翻译过程中起到指定新生多肽中的氨基酸序列或顺序的作用。术语“基因”包括编码本文所述的本发明蛋白质全部或一部分的合成或融合分子以及与上文任何一种序列互补的核苷酸序列。
[1091] 如本文所用,“嵌合DNA”是指不是天然存在于自然界中的任何DNA分子;本文也称为“DNA构建体”。通常,嵌合DNA包含不是一起天然存在于自然界中的调控和转录或蛋白编码序列。因此,嵌合DNA可包含衍生自不同来源的调控序列和编码序列,或衍生自相同来源的调控序列和编码序列但以不同于自然界中所存在的方式排列。开放阅读框可以或可以不连接到其天然上游和下游调控元件。开放阅读框可以整合到(例如) 植物基因组中、处于非天然位置或处于复制子或载体中,在其中它在天然状态下不存在,诸如细菌质粒或病毒载体。术语“嵌合DNA”不限于能在宿主中复制的DNA分子,而是包括能够通过例如特定的衔接子序列连接到复制子中的DNA。
[1092] “转基因”是已通过转化程序引入基因组中的基因。该术语包括了后代细胞、植物、种子、非人生物体或其部分中的被引入到其祖细胞的基因组内的基因。此类后代细胞等可以至少是所述经首次转化的祖细胞的第三代或第四代后代。后代可以通过性繁殖或者营养性地产生,如例如,从马铃薯中的或者从蔗类的截根苗(ratoon)产生。术语“遗传修饰的”及其变体是范围更宽的术语,其包括通过转化或转导将基因引入细胞,使细胞中的基因突变以及从遗传学上改变或调节细胞中的基因调控,或如上所述进行修饰的任何细胞的子代。
[1093] 如本文所用的“基因组区域”是指基因组内的位置,在该位置处已将转基因或转基因群组(本文也成为基因簇)插入细胞或其前体细胞。此类区域只包含已通过人工干预诸如通过本文所述的方法整合的核苷酸。
[1094] 本发明的“重组多核苷酸”是指已通过人工重组方法构建或修饰的核酸分子。重组多核苷酸与其天然状态相比可以改变的量存在于细胞中或以改变的速率表达(例如,就 mRNA而言)。在一个实施方案中,将多核苷酸引入天然不含该多核苷酸的细胞。通常,将外源DNA用作mRNA转录的模板,然后在转化的细胞内翻译成编码本发明的多肽的氨基酸残基的连续序列。在另一个实施方案中,多核苷酸是细胞的内源多核苷酸,并且其表达通过重组手段改变,例如,将外源控制序列引入所关注的内源基因的上游,以使得转化的细胞能表达由所述基因编码的多肽。
[1095] 本发明的重组多核苷酸包括还未与其所存在的基于细胞或无细胞的表达系统的其他组分分离的多核苷酸,以及在所述基于细胞或无细胞系统中产生、随后从至少某些其他组分中纯化的多核苷酸。多核苷酸可以是存在于自然界中的核苷酸的连续延伸 (contiguous stretch),或者包含不同来源(天然存在的和/或合成的)的接合形成单个多核苷酸的核苷酸的两个或更多个连续延伸。通常,此类嵌合多核苷酸包含至少一个编码本发明多肽的开放阅读框,它可操纵地连接至适合促使该开放阅读框在所关注的细胞中转录的启动子。
[1096] 至于所定义的多核苷酸,应当理解,高于上文所提供的那些值的百分比相同性数值将涵盖优选的实施方案。因此,适用时,按照最低百分比相同性数值,优选的是,多核苷酸所含的多核苷酸序列与相关的指定的SEQ ID NO具有至少60%、更优选至少 65%、更优选至少70%、更优选至少75%、更优选至少80%、更优选至少85%、更优选至少90%、更优选至少91%、更优选至少92%、更优选至少93%、更优选至少94%、更优选至少95%、更优选至少96%、更优选至少97%、更优选至少98%、更优选至少 99%、更优选至少99.1%、更优选至少99.2%、更优选至少99.3%、更优选至少99.4%、更优选至少99.5%、更优选至少99.6%、更优选至少99.7%、更优选至少99.8%甚至更优选至少99.9%的相同性。
[1097] 本发明的多核苷酸或可用于本发明的多核苷酸可在严格条件下选择性杂交到本文所定义的多核苷酸。如本文所用,严格条件为以下这些:(1)在42℃下在杂交期间采用诸如甲酰胺的变性剂,例如50%(v/v)甲酰胺与0.1%(w/v)牛血清白蛋白、0.1%Ficoll、 0.1%聚乙烯吡咯烷酮、含750mM NaCl、75mM柠檬酸钠的50mM磷酸钠缓冲液(pH 6.5);或(2)在42℃下在0.2x SSC和0.1%SDS中采用50%甲酰胺、5x SSC(0.75M NaCl、 0.075M柠檬酸钠)、50mM磷酸钠(pH 6.8)、0.1%焦磷酸钠、5x Denhardt溶液、超声处理的鲑精DNA(50g/ml)、0.1%SDS和10%硫酸葡聚糖;和/或(3)在50℃下采用低离子强度和高温进行洗涤,例如0.015M NaCl/0.0015M柠檬酸钠/0.1%SDS。
[1098] 本发明的多核苷酸当与天然存在的分子相比时可具有一个或多个突变,它们为核苷酸残基的缺失、插入或取代。相对于参考序列具有突变的多核苷酸可以是天然存在的 (也就是说,从天然来源中分离)或合成的(例如,通过对如上所述的核酸进行定点诱变或 DNA改组)。
[1099] 降低内源蛋白表达水平的多核苷酸
[1100] RNA干扰
[1101] RNA干扰(RNAi)对于特异性抑制特定蛋白的产生特别有用。并非用理论来进行局限,Waterhouse等(1998)已经提供了dsRNA(二倍体RNA)可用于降低蛋白产生的机制的模型。此技术依赖于含有与感兴趣基因的mRNA或其部分基本相同的序列的dsRNA分子的存在。方便地,所述dsRNA可以从重组载体或宿主细胞中的单个启动子产生,其中有义和反义序列旁侧有不相关的序列使得所述有义和反义序列能够杂交以形成 dsRNA分子,其中不相关序列形成100p的结构。适宜dsRNA分子的设计和产生是本领域技术人员能力范围之内的,特别是参考Waterhouse等(1998),Smith等(2000)、WO 99/32619、WO 99/53050、WO 99/49029、和WO 01/34815。
[1102] 在一个实例中,引入DNA引导至少部分双链RNA产物(与要失活的靶基因有同源性)的合成。因此该DNA含有有义和反义序列,这二者在转录成RNA时,可以杂交以形成双链RNA区。在本发明的一个实施方案中,有义和反义序列被间隔区分开,所述间隔区包含内含子,该内含子在转录成RNA时被剪切掉。此安排已经显示出导致基因沉默的更高效率。双链区可以包含一个或两个RNA分子,其转录自一个或两个DNA 区。双链分子的存在被认为引发了内源系统的应答,破坏了双链RNA以及同源的RNA 转录物(从靶基因),有效降低了或消除了靶基因的活性。
[1103] 杂交的有义和反义序列的长度每个均应为至少19个连续的核苷酸。可以使用对应于整个基因转录物的全长序列。有义和反义序列与靶转录物的相同性程度应为至少 85%、至少90%、或至少95-100%。所述RNA分子当然可以包含不相关的序列,其可发挥作用以稳定该分子。所述RNA分子可以在RNA聚合酶II或RNA聚合酶III启动子的控制下表达。后者的实例包括tRNA或snRNA启动子。
[1104] 优选的小干扰RNA("siRNA")分子包含与靶mRNA的大约19-21个连续核苷酸相同的核苷酸序列。优选地,所述siRNA序列以双核苷酸AA起始,包含大约30-70%的G-C含量(优选30-60%,更优选40-60%以及更优选大约45%-55%),并且与所要引入的生物体基因组中除靶标之外的任何核苷酸序列不具有高百分比相同性,例如,通过标准的BLAST搜索确定。
[1105] 微RNA
[1106] 微RNA(缩写为miRNA)一般是19-25个核苷酸(在植物中通常为大约20-24个核苷酸)的非编码RNA分子,其衍生自更大的前体(形成不完美的茎-100p结构)。
[1107] miRNA结合至靶信使RNA转录物(mRNA)上的互补序列,通常导致转录阻抑或者靶标降解和基因沉默。
[1108] 在植物细胞中,miRNA前体分子被认为在细胞核中进行大规模加工。pri-miRNA (含有一或多个局部双链或“发夹”区以及mRNA通常的5'"帽"和多聚腺苷酸尾巴)被加工成较短的miRNA前体分子(也包括茎-100p或反折叠(fold-back)结构且被命名为 "pre-miRNA")。在植物中,pre-miRNA由独特的类DICER(DCL)酶切割,产生 miRNA:miRNA*二倍体。在转移出细胞核之前,这些二倍体被甲基化。
[1109] 在细胞质中,来自所述miRNA:miRNA二倍体的miRNA链被选择性地加入到有活性的RNA-诱导沉默复合物(RISC)中用于靶标识别。该RISC-复合物含有特定亚集的 Argonaute蛋白,其发挥序列特异性基因压制作用(参见,例如,Millar and Waterhouse, 2005;Pasquinelli等,2005;Almeida and Allshire,2005)。
[1110] 共抑制
[1111] 基因可以阻抑相关内源基因和/或已存在于基因组中的转基因的表达,称作同源性依赖基因沉默的现象。同源性依赖基因沉默的大部分的情况分为两类——在转基因的转录水平发挥作用的那些,以及在转录后运作的那些。
[1112] 转录后同源性依赖基因沉默(i.e.,共抑制)描述的是转基因植物中转基因和相关的内源或病毒基因表达的丧失。共抑制通常(但并不总是)在转基因转录物丰富的时候发生,并且通常认为其引发至少mRNA水平的加工、定位、和/或降解。已存在若干方法以解释共抑制如何让发挥作用(参见Taylor,1997)。
[1113] 一个模型,"定量”或”RNA阈值"模型提出,细胞能够应付大量转基因转录物的聚积,但是仅仅能高达某个点。一旦越过该关键阈值,则启动转基因和相关内源基因转录物的序列依赖性降解。据提议,可能是在通过过量转基因mRNA的逆转录而合成拷贝 RNA(cRNA)分子之后引发此共抑制的模式,据推断是通过内源RNA-依赖性RNA聚合酶。这些cRNA可以与转基因和内源mRNA杂交,该非正常的杂交物靶向同源的转录物以降解。然而,此模型并未考虑到以下有关的报道,其提出共抑制显然可以在缺少转基因转录时和/或在没有可检测的转基因转录物的累积时发生。
[1114] 为解释这些数据,第二个模型,"定性”或”异常(aberrant)RNA"模型提出,转基因 RNA和DNA之间和/或内源的和引入的DNA之间的相互作用,导致了基因转录区域的甲基化。据认为甲基化的基因产生在某些程度上异常的RNA,其不合常规的特征引发了所有相关转录物的特异性降解。这些异常RNA可以由复合的转基因基因座产生,特别是含有反向重复序列的那些。
[1115] 第三种模型提出,是转录物之间的分子间碱基配对(而不是通过RNA-依赖性RNA 聚合酶的作用产生的cRNA-mRNA杂交物),可以引发共抑制。此碱基配对可以随着转录物水平的升高而变得更加普遍,可能的双链区引发同源转录物的靶向降解。类似的模型提出,是转录物之间的分子内碱基配对而不是分子间碱基配对。
[1116] 共抑制涉及将额外拷贝的基因或其片段以针对用于其表达的启动子而言有义的方向引入至植物中。本领域技术人员会理解,有义片段的大小,其与靶基因区的对应性、以及其与靶基因的序列相同性程度,会发生变化。在一些情形中,基因序列的额外拷贝干扰了靶植物基因的表达。对于共抑制方法的实施,可以参考WO 97/20936和EP 0465572。
[1117] 反义多核苷酸
[1118] 术语“反义多核苷酸"应理解为是指DNA或RNA(或其组合)分子,其至少与编码内源多肽的特定mRNA分子的一部分互补,并且能够干扰转录后的事件如mRNA的翻译。反义方法的使用是本领域熟知的(参见例如,G.Hartmann和S.Endres,Manual of Antisense Methodology,Kluwer(1999))。反义技术在植物中的使用已经由Bourque(1995)和Senior (1998)进行了综述。Bourque(1995)列举了如何在植物体系中使用反义序列作为失活方法的大量实例。Bourque还提到了,可能并不必需要达成任何酶活性的100%抑制,因为部分抑制已经可以导致体系中可测量的变化。Senior(1998)提到了,反义方法现在是用于操控基因表达的很成熟的技术。
[1119] 在一个实施方案中,反义多核苷酸在生理条件下杂交,也即,反义多核苷酸(其为全部或部分单链)至少能够在细胞中的正常条件下与编码蛋白(如内源酶,例如,DGAT、 GPAT、LPAA、LPCAT、PAP、AGPase)的mRNA形成双链多核苷酸。
[1120] 反义分子可包括对应于结构基因的序列或者用于实现针对基因表达或沉默事件的控制的序列。例如,反义序列可以对应于内源基因的靶向编码区、或者5'-非翻译区(UTR) 或3'-UTR或其组合。其可以与内含子序列(可在转录期间或转录后被剪掉)部分互补,优选仅与靶基因的外显子序列互补。考虑到一般而言非常多样的UTR,靶向这些区提供了基因抑制的更高的特异性。
[1121] 反义序列的长度应为至少19个连续核苷酸,优选至少50个核苷酸,且更优选至少100、200、500或1000个核苷酸。可以使用互补于整个基因转录物的全长序列。长度最优选为
100-2000个核苷酸。反义序列与靶标转录物的相同性程度应为至少90%,且更优选95-
100%。反义RNA分子分子当然可以包含不相关的序列,其可发挥作用以稳定该分子。
[1122] 催化多核苷酸
[1123] 术语“催化多核苷酸”是指DNA分子或含DNA的分子(也称作"脱氧核酶")或者 RNA分子或含RNA的分子(也称作"核酶"),其特异性识别独特的底物并催化此底物的化学修饰。催化核酸中的核酸碱基可以是碱基A、C、G、T(以及RNA的U)。
[1124] 通常,催化核酸含有反义序列用以特异性识别靶核酸,以及含有切割酶活性的核酸(在本文也称作"催化结构域")。在本发明中特别有用的核酶的类型有锤头(hammerhead) 核酶(Haseloff and Gerlach,1988;Perriman等,1992)和发夹核酶(Zolotukhin等,1996; Klein等,1998;Shippy等,1999)。
[1125] 可用于本发明的核酶以及编码所述核酶的DNA可以使用本领域已知的方法化学合成。所述核酶也可以从可操纵地连接至RNA聚合酶启动子的DNA分子(在转录时产生RNA分子)制备,所述启动子例如,T7 RNA聚合酶的启动子或SP6 RNA聚合酶的启动子。在另外的实施方案中,可将所述DNA插入至表达盒中或转录盒中。在合成之后,可以通过连接至具有稳定核酶能力的DNA分子来修饰所述RNA分子,使其对RNase 有抗性。
[1126] 与本文所述的反义寡核苷酸、小干扰RNA和微RNA一样,可用于本发明的催化多核苷酸应该能够在“生理条件”(也即植物、藻类或真菌细胞中的那些条件)下"杂交" 靶核酸分子。
[1127] 重组载体
[1128] 本发明的一个实施方案包括重组载体,其包含本文所定义的至少一种多核苷酸并能够将该多核苷酸递送进宿主细胞。重组载体包括表达载体。重组载体包含异源多核苷酸序列,也即,天然不与本文所定义的多核苷酸相邻的多核苷酸序列,优选地,源自不同的种。载体可以是RNA或DNA,原核或真核的,并通常为病毒载体、衍生自病毒、或为质粒。质粒载体通常包含附加的核酸序列,以便于在原核细胞中表达盒的选择、扩增和转化,例如,pUC源载体、pSK源载体、pGEM源载体、pSP源载体、pBS源载体或包含一个或多个T-DNA区域的二元载体。附加的核酸序列包含复制起点,以便以下物质的自主复制:载体,优选编码抗生素或除草剂抗性的选择标记基因,提供多个位点以插入在核酸构建体中编码的核酸序列或基因的独特的多个克隆位点,以及增强原核和真核(特别是植物)细胞转化的序列。
[1129] 如本文所用的“可操纵地连接”是指两个或更多个核酸(如DNA)片段之间的功能关系。通常,是指转录序列的转录调控元件(启动子)的功能关系。例如,将启动子可操纵地连接到本文所定义的多核苷酸的编码序列,如果它在合适的细胞中刺激或调节该编码序列的转录。通常,可操纵地连接到转录序列的启动子转录调控元件与转录序列在物理上连续,即,它们为顺式作用的。然而,某些转录调控元件诸如增强子不需要与它们增强转录的编码序列在物理上连续或在位置上紧邻。
[1130] 当存在多个启动子时,每个启动子可以独立地为相同的或不同的。
[1131] 重组载体还可以包含:(a)一个或多个分泌信号,其编码信号肽序列以使得本文所定义的表达多肽能从产生该多肽的细胞中分泌,或其使表达的多肽定位,例如将多肽保持在细胞内质网(ER)中,或转移到质粒中;和/或(b)包含融合序列,其导致核酸分子作为融合蛋白而表达。合适的信号片段的实例包括能够引导本文所定义的多肽分泌或定位的任何信号片段。优选的信号片段包括但不限于Nicotiana nectarin信号肽(US 5,939,288)、烟草伸展蛋白信号或大豆油体蛋白油体结合蛋白信号。重组载体还可以包含本文所定义的多核苷酸的核酸序列周围和/或内部的间插和/或非翻译序列。
[1132] 为了有利于鉴定转化体,重组载体有利地包含作为本文所定义的多核苷酸的核酸序列或除了本文所定义的多核苷酸的核酸序列外的选择或筛选标记基因。所谓“标记基因”是指使表达该标记基因的细胞具有不同的表型并因此允许将此类转化细胞与不具有该标记的细胞进行区分的基因。选择标记基因赋予一种性状,可以根据对选择剂(如,除草剂、抗生素、辐射、热或对非转化细胞的其他处理伤害)的抗性对其加以选择。筛选标记基因(或报告基因)赋予可通过观察或测试,也就是说通过“筛选”进行鉴定的性状 (如,不存在于非转化细胞中的β-葡糖酸酶、荧光素酶、GFP或其他酶活性)。标记基因和所关注的核苷酸序列不必连接,因为如(例如)US 4,399,216中所述的非连接基因的共转化也是(例如)植物转化中的有效过程。标记的实际选择不是决定性的,只要与所选的细胞诸如植物细胞组合时为双功能的(即,选择性的)即可。
[1133] 细菌选择标记的实例为赋予抗生素抗性的标记,诸如氨苄青霉素、红霉素、氯四环素或四环素抗性,优选卡那霉素抗性。选择植物转化体的示例性选择标记包括但不限于:编码潮霉素B抗性的hyg基因;赋予卡那霉素、巴龙霉素、G418抗性的新霉素磷酸转移酶(nptII)基因;赋予谷胱甘肽源除草剂抗性的得自大鼠肝脏的谷胱甘肽-S-转移酶基因,如(例如)EP 256223中所述;过表达时赋予谷氨酰胺合成酶抑制剂(诸如草胺膦) 抗性的谷氨酰胺合成酶基因,如(例如)WO 87/05327中所述;赋予选择剂草胺膦抗性的得自绿色产色链霉菌(Streptomyces viridochromogenes)的乙酰基转移酶基因,如(例如)EP 275957中所述;编码赋予草双甘膦耐性的5-烯醇式丙酮酸莽草酸-3-磷酸合成酶(EPSPS) 的基因,如(例如)Hinchee等人(1988)所述;赋予双丙氨磷抗性的bar基因,如(例如)WO91/02071中所述;赋予溴苯腈抗性的得自臭鼻克雷伯氏菌(Klebsiella ozaenae)的腈水解酶基因,诸如bxn(Stalker等,1988);赋予甲氨蝶呤抗性的二氢叶酸还原酶(DHFR) 基因(Thillet等,1988);赋予咪唑啉酮类、磺酰脲类或其他ALS抑制性化学剂的突变乙酰乳酸合酶基因(ALS)(EP 154,204);赋予5-甲基色氨酸抗性的突变邻氨基苯甲酸合成酶基因;或赋予除草剂抗性的茅草枯脱卤素酶基因。
[1134] 优选的筛选标记包括但不限于:编码已知其各种生色底物的β-葡糖醛酸酶(GUS) 的uidA基因;编码已知其生色底物的酶的β-葡糖醛酸酶基因;可用于钙敏感生物发光检测的水母发光蛋白基因(Prasher等,1985);绿荧光蛋白基因(Niedz等,1995)或其衍生物;或允许生物发光检测的荧光素酶(luc)基因(Ow等,1986)。所谓“报告基因”是指这样一种分子,通过其化学性质,提供有利于通过参考蛋白产物测定启动子活性的能通过分析而鉴定的信号。
[1135] 优选地,重组载体稳定地整合到细胞诸如植物细胞的基因组中。因此,重组载体可包含允许载体整合到细胞基因组或染色体组中的合适元件。
[1136] 表达载体
[1137] 如本文所用,“表达载体”是能够转化宿主细胞并实现一种或多种指定多核苷酸表达的DNA或RNA载体。优选地,表达载体能够在宿主细胞内复制。表达载体可以为原核或真核的,通常为病毒或质粒。本发明的表达载体包括在本发明的宿主细胞中发挥作用(即,引导基因表达)的任何载体,包括在细菌、真菌、体内寄生虫节肢动物、动物、藻类和植物细胞中。本发明的尤其优选的表达载体可以引导酵母、藻类和/或植物细胞中的基因表达。
[1138] 本发明的表达载体包含调控序列,诸如转录控制序列、翻译控制序列、复制起点以及与宿主细胞相容并控制本发明多核苷酸表达的其他调控序列。具体地讲,本发明的表达载体包括转录控制序列。转录控制序列是控制转录的起始、伸长和终止的序列。尤其重要的转录控制序列是控制转录起始的那些,诸如启动子、增强子、操纵子和阻遏序列。合适的转录控制序列包括能在本发明的重组细胞的至少一者中发挥作用的任何转录控制序列。所用调控序列的选择取决于所关注的目标生物诸如植物和/或目标器官或组织。此类调控序列可得自任何真核生物诸如植物或植物病毒,或者可以化学合成。多种此类转录控制序列是本领域技术人员已知的。尤其优选的转录控制序列为在植物中具有转录指导活性的启动子,或为组成型的或为阶段和/或组织特异性的,具体取决于植物或其部分的使用。
[1139] 许多适合植物细胞稳定转染或适合建立转基因植物的载体已在(例如)Pouwels等, Cloning Vectors:A Laboratory Manual,1985,副刊1987;Weissbach和Weissbach,Methods for Plant Molecular Biology,Academic Press,1989;和Gelvin等,Plant Molecular Biology Manual,Kluwer Academic Publishers,1990中有所描述。通常,植物表达载体包含(例如) 受5'和3'调控序列的转录控制的一个或多个克隆植物基因以及显性选择标记。此类植物表达载体还可以包含启动子调控区域(如,控制诱导或组成型、受环境或发育调控的、或细胞或组织特异性表达的调控区域)、转录起始位点、核糖体结合位点、RNA加工信号、转录终止位点和/或多聚腺苷酸化信号。
[1140] 许多在植物细胞中具有活性的组成型启动子已得到了描述。在植物中组成型表达的合适启动子包括但不限于:花椰菜花叶病毒(CaMV)35S启动子、玄参花叶病毒(FMV) 35S启动子、甘蔗杆状病毒启动子、鸭跖草黄斑驳病毒启动子、得自核酮糖-1,5-二磷酸羧化酶小亚基的光诱导型启动子、水稻细胞溶质丙糖磷酸异构酶启动子、拟南芥腺嘌呤磷酸核糖转移酶启动子、水稻肌动蛋白1基因启动子、甘露氨酸合酶及章鱼碱合酶启动子、Adh启动子、蔗糖合酶启动子、R基因复合启动子和叶绿素α/β结合蛋白基因启动子。这些启动子已用于构建已在植物中表达的DNA载体,参见例如WO 84/02913。所有这些启动子已用于构建各种类型的植物表达性重组DNA载体。
[1141] 为了在植物的源组织诸如叶、根或茎中表达,优选的是,用于本发明的启动子在这些特定组织中具有相对高的表达。为此,可以针对具有组织或细胞特异性表达或增强表达的基因选择多种启动子。在文献中报导的此类启动子的实例包括:得自豌豆的叶绿体谷氨酰胺合成酶GS2启动子、得自小麦的叶绿体果糖-1,6-二磷酸酶启动子、得自马铃薯的核光合作用ST-LS1启动子、得自拟南芥的丝氨酸/苏氨酸激酶启动子和葡萄糖淀粉酶(CHS)启动子。还报导在光合有效组织中具有活性的为得自北美落叶松(Larix laricina)的核酮糖-1,5-二磷酸羧化酶启动子,得自松树的Cab基因Cab6的启动子,得自小麦的Cab-1基因的启动子,得自菠菜的Cab-1基因的启动子,得自水稻的Cab 1R 基因的启动子,得自玉米的丙酮酸磷酸双激酶(PPDK)启动子,烟草Lhcb1*2基因的启动子;拟南芥Suc2蔗糖-H30同向转运启动子,以及得自菠菜的类囊体膜蛋白基因的启动子(PsaD、PsaF、PsaE、PC、FNR、AtpC、AtpD、Cab、RbcS)。叶绿素α/β-结合蛋白的其他启动子也可用于本发明,诸如得自白芥(Sinapis alba)的LhcB基因和PsbP基因的启动子。
[1142] 响应环境、激素、化学和/或发育信号而调控的多种植物基因启动子也可用于在植物细胞中表达RNA结合蛋白基因,包括受以下因素调控的启动子:(1)热;(2)光(如豌豆RbcS-3A启动子、玉米RbcS启动子);(3)激素,诸如脱落酸;(4)创伤(如WunI);或 (5)化学剂,诸如茉莉酸甲酯、水杨酸、甾类激素、醇、安全剂(WO 97/06269),或者也可有利地采用(6)器官特异性启动子。
[1143] 如本文所用,术语“植物贮藏器官特异性启动子”是指当与其他植物组织相比时优先地指导植物贮藏器官中的基因转录的启动子。优选地,该启动子只指导贮藏器官中所关注基因的表达,和/或植物其他部分诸如叶中所关注基因的表达不能通过Northern印迹分析和/或RT-PCR检测。通常,启动子在贮藏器官的生长和发育期间促使基因表达,尤其是贮藏器官中贮藏化合物的合成和积聚阶段。此类启动子可促使整个植物贮藏器官或仅其部分诸如双子叶植物种子的种皮、胚芽或子叶或单子叶植物种子的胚乳或糊粉层中的基因表达。
[1144] 为了在植物的库组织中表达,诸如马铃薯植物的块茎、番茄的果实或大豆、油菜、棉花、玉米、小麦、水稻和大麦的种子,优选的是,用于本发明的启动子在这些特定组织中具有相对高的表达。具有块茎特异性表达或增强表达的基因的多种启动子是已知的,包括I类马铃薯块茎特异蛋白(patatin)启动子、马铃薯块茎ADPGPP基因(大小亚基) 的启动子、蔗糖合酶启动子、主要块茎蛋白(包括22kD蛋白复合物和蛋白酶抑制剂)的启动子、颗粒结合型淀粉合成酶(GBSS)的启动子以及其他I和II类patatin启动子。其他启动子也可用于在特定组织诸如种子或果实中表达蛋白。可以使用β-伴球蛋白的启动子或其他种子特异性启动子,诸如欧洲油菜蛋白(napin)、玉米蛋白、核丝(linin)和菜豆蛋白启动子。也可使用根特异性启动子。这样的启动子的实例为酸性几丁质酶基因的启动子。根组织中的表达也可通过利用已得到鉴定的CaMV 35S启动子的根特异性亚结构域而实现。
[1145] 在特别优选的实施方案中,启动子引导发生脂质生物合成的组织和器官中的表达。此类启动子在合适的时间作用于种子发育以改变种子中的脂质组成。
[1146] 在一实施方案中,启动子为植物贮藏器官特异性启动子。在一个实施方案中,植物贮藏器官特异性启动子为种子特异性启动子。在更优选的实施方案中,启动子相对于种子胚芽中的表达或相对于植物其他器官诸如叶中的表达优先地指导双子叶植物子叶中或单子叶植物胚乳中的表达。种子特异性表达的优选启动子包括:1)编码种子中脂质生物合成和积聚涉及到的酶(诸如去饱和酶和延长酶)的基因的启动子;2)编码种子贮藏蛋白的基因的启动子;和3)编码种子中碳水化合物生物合成和积聚涉及到的酶的基因的启动子。合适的种子特异性启动子为:油料种子油菜napin基因启动子(US 5,608,152)、蚕豆(Vicia faba)USP启动子(Baumlein等,1991)、拟南芥油体蛋白启动子(WO 98/45461)、菜豆(Phaseolus vulgaris)蛋白启动子(US 5,504,200)、芸苔Bce4启动子(WO 91/13980)或豆球蛋白B4启动子(Baumlein等,1992)以及导致单子叶植物诸如玉米、大麦、小麦、裸麦、水稻等种子特异性表达的启动子。值得注意的合适启动子为大麦lpt2或lpt1基因启动子(WO 95/15389和WO 95/23230)或WO 99/16890中所述的启动子(大麦醇溶蛋白基因、水稻谷蛋白基因、水稻素(oryzin)基因、水稻醇溶蛋白基因、小麦醇溶蛋白基因、小麦谷蛋白基因、玉米醇溶蛋白基因、燕麦谷蛋白基因、高粱醇溶蛋白基因、黑麦醇溶蛋白基因的启动子)。其他启动子包括Broun等(1998)、Potenza等(2004)、US 20070192902和US 20030159173所述的那些。在一个实施方案中,种子特异性启动子优先地在种子的限定部分诸如子叶或胚乳中表达。子叶特异性启动子的实例包括但不限于:FP1启动子(Ellerstrom等,1996)、豌豆豆球蛋白启动子(Perrin等,2000)和菜豆植物凝集素启动子(Perrin等,2000)。胚乳特异性启动子的实例包括但不限于:玉米醇溶蛋白-1启动子(Chikwamba等,2003)、水稻谷蛋白-1启动子(Yang等,2003)、D大麦醇溶蛋白启动子(Horvath等,2000)和小麦HMW谷蛋白启动子(Alvarez等,2000)。在进一步的实施方案中,种子特异性启动子在胚芽中和/或种子发芽后不表达或仅以低水平表达。
[1147] 在另一个实施方案中,植物贮藏器官特异性启动子为块茎特异性启动子。实例包括但不限于马铃薯块茎特异蛋白(patatin)B33、PAT21和GBSS启动子以及甘薯贮藏蛋白启动子(有关综述,参见Potenza等,2004)。在优选的实施方案中,该启动子指导相对于块茎的外层(皮)或胚芽优先在块茎髓部中的表达。
[1148] 在另一个实施方案中,植物贮藏器官特异性启动子为果实特异性启动子。实例包括但不限于番茄聚半乳糖醛酸酶E8和Pds启动子以及苹果ACC氧化酶启动子(有关综述,参见Potenza等,2004)。在优选的实施方案中,启动子相对于果皮或果实内的种子优先地指导果实可食用部分(例如果髓)中的表达。
[1149] 在一实施方案中,可诱导启动子是构巢曲霉(Aspergillus nidulans)alc体系。可用于替代构巢曲霉alc体系的可诱导表达体系的实例在Padidam(2003)和Corrado and Karali (2009)的综述中有描述。这些包括基于四环素抑制剂(TetR)的和四环素可诱导的体系 (Gatz,1997),基于四环素抑制剂的和四环素-可失活的体系(Weinmann等,1994),基于糖皮质激素受体的(Picard,1994),基于雌激素受体的和其它的类固醇可诱导体系(Bruce 等,2000),基于糖皮质激素受体、四环素抑制剂的双控制体系(Bohner等,1999),基于蜕皮激素受体的、杀虫剂-可诱导体系(Martinez等,1999,Padidam等,2003,Unger et al,2002,Riddiford等,2000,Dhadialla等,1998,Martinez and Jepson,1999),基于AlcR的、乙醇可诱导体系(Felenbok,1991)和基于ACEI、铜可诱导体系(Mett等,1993)。
[1150] 在另一实施方案中,可诱导启动子是安全剂(safener)可诱导启动子如例如,玉米 ln2-1或ln2-2启动子(Hershey and Stoner,1991),安全剂可诱导启动子是玉米GST-27 启动子(Jepson等,1994),或大豆GH2/4启动子(Ulmasov等,1995)。
[1151] 安全剂是一组结构上不同的化合物,用于提高植物对除草剂化合物的毒性作用的耐受。这些化合物的实例包括酐和N,N-二烯丙基-2,2-二氯乙酰胺(DDCA),其针对硫代氨基甲酸酯类除草剂保护玉米和高粱;胺腈(cyometrinil),其针对甲氧毒草安保护高粱;抑芽唑(triapenthenol),其针对赛克嗪(metribuzin)保护大豆;和取代的苯磺酰胺类,其改善若干种谷类作物物种对磺酰脲类除草剂的耐受。
[1152] 在另一实施方案中,可诱导启动子是衰败诱导启动子,如例如,来自拟南芥的衰败诱导启动子SAG(衰败相关基因)12和SAG 13拟南芥(Gan,1995;Gan and Arnasino, 1995)和来自欧洲油菜的LSC54(Buchanan-Wollaston,1994)。
[1153] 对于在营养性组织中的表达,可以使用叶特异性启动子,如核酮糖二磷酸羧化酶 (RBCS)启动子。例如,番茄RBCS1、RBCS2和RBCS3A基因在叶和光生长的幼苗中表达(Meier等,1997)。可以使用几乎仅在叶片和叶稍中的叶肉细胞内高水平表达的核酮糖二磷酸羧化酶启动子,如Matsuoka等(1994)所述。另一种叶特异性启动子是光收获叶绿素a/b结合蛋白基因启动子(参见,Shiina等,1997)。Li等(1996)所描述的拟南芥myb- 相关基因启动子(Atmyb5)是叶特异性的。所述Atmyb5启动子在发育中的叶表皮毛、托叶、和幼年莲座叶和茎生叶的边缘上的表皮细胞、以及未成熟的种子中表达。也可以使用由Busk等(1997)在玉米中鉴别的叶启动子。
[1154] 在某些情形中,例如重组表达LEC2或BBM时,可能会期望转基因不以高水平表达。能够用于此种情况的启动子的实例是截短的芸苔素A启动子,其保留了种子特异性表达模式但却处于降低的表达水平(Tan等,201 1)。
[1155] 非翻译前导序列可衍生自所选的启动子以表达本发明多核苷酸的异源基因序列,或可相对于待产生的酶的编码区为异源的,并可根据需要进行特定修饰以便增强mRNA 的翻译。有关优化转基因表达的综述,参见Koziel等(1996)。5'非翻译区也可得自植物病毒RNA(烟草花叶病毒、烟草蚀纹病毒、玉米矮小花叶病毒、苜蓿花叶病毒等等),得自合适的真核基因、植物基因(小麦和玉米叶绿素a/b结合蛋白基因前导序列)或得自合成的基因序列。本发明不限于其中非翻译区衍生自伴随启动子序列的5'非翻译区的构建体。前导序列也可衍生自非相关启动子或编码序列。可用于本发明背景的前导序列包括玉米Hsp70前导序列(US 5,362,865和US 5,859,347)以及TMVω元件。
[1156] 转录的终止通过在表达载体中可操纵地连接到所关注多核苷酸的3'非翻译DNA序列而完成。重组DNA分子的3'非翻译区包含在植物中作用于使腺苷酸核苷酸加成到 RNA的3'端的多聚腺苷酸化信号。3'非翻译区可得自在植物细胞中表达的多种基因。胭脂碱合酶
3'非翻译区、豌豆小亚基Rubisco基因的3'非翻译区、大豆7S种子贮藏蛋白基因的3'非翻译区常用于此能力。包含农杆菌属(Agrobacterium)肿瘤诱导(Ti)质粒基因的多聚腺苷酸化信号的3'转录非翻译区也是合适的。
[1157] 重组DNA技术可用于通过操纵(例如)宿主细胞内多核苷酸的拷贝数、这些多核苷酸的转录效率、所得转录物的翻译效率以及转录后修饰的效率而改善转化的多核苷酸的表达。可用于增加本文所定义的多核苷酸的表达的重组技术包括但不限于:将多核苷酸可操纵地连接到高拷贝数质粒、将多核苷酸分子整合到一个或多个宿主细胞染色体、将载体稳定性序列添加到质粒、对转录控制信号(如启动子、操纵子、增强子)的取代或修饰、对翻译控制信号(如核糖体结合位点、Shine-Dalgarno序列)的取代或修饰、对多核苷酸的修饰以对应于宿主细胞的密码子使用以及导致转录物不稳定的序列缺失。
[1158] 转移核酸
[1159] 转移核酸可用于将外源多核苷酸递送到细胞,并包含一个、优选两个边界序列和感兴趣的多核苷酸。转移核酸可以或可以不编码选择标记。优选地,转移核酸在细菌中形成二元载体的一部分,其中该二元载体进一步包含这样的元件,它们允许载体在细菌中复制、选择或维持包含该二元载体的细菌细胞。转移到真核细胞后,二元载体的转移核酸成分能够整合到真核细胞的基因组中。
[1160] 如本文所用,术语“染色体外转移核酸”是指能够从细菌诸如农杆菌属转移到真核细胞诸如植物叶细胞的核酸分子。染色体外转移核酸是一种遗传元件,它作为能够转移随后将其边界内所含的核苷酸序列整合到受体细胞基因组中的元件而广为人知。在这方面,转移核酸的侧翼通常为两个“边界”序列,但在某些情况下,可以使用一个末端的单个边界,而转移核酸的第二末端则在转移过程中随机生成。所关注的多核苷酸通常位于转移核酸的左边界样序列与右边界样序列之间。转移核酸内所含的多核苷酸可以可操纵地连接到多种不同的有利于其表达(即,多核苷酸的转录和/或翻译)的启动子和终止子调控元件。农杆菌属诸如根癌农杆菌(Agrobacterium tumefaciens)或发根农杆菌  (Agrobacterium rhizogenes)的转移DNA(T-DNA)及其人造变体/突变体可能是转移核酸中研究最为透彻的实例。另一个实例是得自植物的包含T-DNA边界样序列的 P-DNA(“植物DNA”)。
[1161] 如本文所用,"T-DNA"是指(例如)根癌农杆菌Ti质粒或发根农杆菌Ri质粒的 T-DNA,或其作为T-DNA发挥作用的人造变体。T-DNA可以包括同时包含左右边界序列的整个T-DNA,但只需要包含转移所需的顺式最小序列,即右侧T-DNA边界序列。本发明的T-DNA已插入它们之间,位于左右侧边界序列(如果存在)之间的任何位置,所关注的多核苷酸的侧翼为位点特异性重组酶的靶点。编码将T-DNA转移到植物细胞所需的因子的反式序列诸如vir基因可以插入T-DNA,或者可以存在于与T-DNA相同的复制子上,或优选地以反式存在于农杆菌属宿主的相容复制子上。此类“二元载体系统”在本领域是熟知的。
[1162] 如本文所用,"P-DNA"是指从植物基因组分离的转移核酸或其人造变体/突变体,并在每个末端或只在一个末端包含T-DNA边界样序列。边界样序列优选与得自农杆菌属诸如根癌农杆菌或发根农杆菌的T-DNA边界序列共有至少50%、至少60%、至少 70%、至少75%、至少80%、至少90%或至少95%但低于100%的序列相同性。因此, P-DNA可用于替代T-DNA从(例如)农杆菌属将P-DNA内所含的核苷酸序列转移到另一细胞。P-DNA在插入待转移的外源多核苷酸之前可以进行修饰以有利于克隆并且应当优选不编码任何蛋白质。P-DNA的特征在于至少包含右侧边界序列并优选地也包含左侧边界序列。
[1163] 如本文所用,转移核酸的“边界”序列可从所选的生物诸如植物或细菌中分离,或者可以为其人造变体/突变体。边界序列促进并有利于其所连接的多核苷酸的转移,并可有利于其在受体细胞基因组中的整合。在一个实施方案中,边界序列的长度介于5-100 个碱基对(bp)之间、10-80bp之间、15-75bp之间、15-60bp之间、15-50bp之间、15-40 bp之间、15-30bp之间、16-30bp之间、20-30bp之间、21-30bp之间、22-30bp之间、 23-30bp之间、24-30bp之间、25-30bp之间或26-30bp之间。农杆菌属T-DNA的边界序列在本领域中是熟知的,并包括Lacroix等(2008)、Tzfira和Citovsky(2006)和Glevin (2003)所述的那些。
[1164] 虽然在传统上仅使用农杆菌属将基因转移到植物细胞,但是现今已鉴定/开发了大量的系统可按类似于农杆菌属的方式发挥作用。最近已对多种非农杆菌属物种遗传修饰,从而能够用于基因转移(Chung等,2006;Broothaerts等,2005)。它们包括根瘤菌属(Rhizobium sp.)NGR234、苜蓿中华根瘤菌(Sinorhizobium meliloti)和百脉根中慢生根瘤菌(Mezorhizobium loti)。通过向细菌提供转化过程所需的机制使细菌能够用于基因转移,该机制即一组通过农杆菌属Ti质粒编码的毒力基因以及位于单独的小二元质粒上的 T-DNA区段。以此方式工程化的细菌能够转化不同的植物组织(叶盘、愈伤组织和椭圆形组织)、单子叶植物或双子叶植物,以及各种不同的植物物种(如烟草、水稻)。
[1165] 在几十年前,通过哺乳动物细胞与携带质粒的大肠杆菌(Escherichia coli)的原生质体的融合,首次实现了真核表达质粒从细菌到真核宿主的直接转移(Schaffner,1980)。从那时起,能够将基因递送进哺乳动物细胞的细菌数量稳定增长(Weiss,2003),由四个小组独立地发现(Sizemore等1995;Courvalin等,1995;Powell等,1996;Darji等,
1997)。
[1166] 已通过弗氏志贺菌(Shigella flexneri)的毒力质粒(pWR100)使得具有侵袭性的减活弗氏志贺菌、鼠伤寒沙氏菌(Salmonella typhimurium)或大肠杆菌已表明能够在侵入宿主细胞后转移表达质粒并因代谢衰减而在细胞内死亡。经鼻或经口腔粘膜施用此类重组志贺氏杆菌或沙门氏菌引起了针对表达质粒所编码的抗原的免疫反应。同时,已证实能在体内外将表达质粒转移到哺乳动物宿主细胞的细菌名单已翻了一倍以上,并针对伤寒沙门菌(S.typhi)、猪霍乱沙门菌(S.choleraesuis)、单核细胞增多性李斯特菌(Listeria monocytogenes)、假结核耶尔森氏菌(Yersinia pseudotuberculosis)和小肠结肠炎耶尔森氏茵(Y.enterocolitica)进行了记述(Fennelly等,1999;Shiau等,2001;Dietrich等,1998; Hense等,2001;Al-Mariri等,2002)。
[1167] 一般来讲,可以假定,所有能够进入宿主细胞(如弗氏志贺菌或单核细胞增多性李斯特菌)胞质溶胶并在此细胞区室内裂解的细菌都应当能够转移DNA。这称为“顿挫”或“自杀”侵入,因为细菌必须裂解才能使DNA发生转移(Grillot-Courvalin等,1999)。此外,甚至许多留在吞噬液泡中的细菌(如鼠伤寒沙门氏菌)也有此能力。因此,已工程化为侵袭性但不能逃离吞噬体的重组大肠杆菌实验室菌株却能将它们的质粒负荷递送到感染哺乳动物细胞的细胞核(Grillot-Courvalin等,1998)。此外,最近也已表明根癌农杆菌能将转基因引入哺乳动物细胞(Kunik等,2001)。
[1168] 如本文所用,术语“转染”、“转化”及其变体通常可互换使用。“转染的”或“转化的”细胞可经过操纵引入所关注的多核苷酸,或者可以为从其衍生的后代细胞。
[1169] 重组细胞
[1170] 本发明还提供重组细胞,例如,重组植物细胞,其为通过本文所定义的一种或多种多核苷酸或载体或它们的组合转化的宿主细胞。术语“重组细胞”与术语“转基因细胞”在本文可互换使用。本发明的合适细胞包括可通过编码(例如)本文所述的多肽或酶的本发明多核苷酸或重组载体转化的任何细胞。该细胞优选为因此能够用于生产脂质的细胞。重组细胞可以是培养中的细胞、体外或生物体(诸如植物)中或器官(诸如种子或叶) 中的细胞。优选地,细胞在植物中,更优选在植物的种子中。在一个实施方案中,所述重组细胞是非人细胞。
[1171] 向其中引入多核苷酸的宿主细胞可以是非转化细胞或已通过至少一种核酸转化的细胞。此类核酸可以与脂质合成相关或不相关。本发明的宿主细胞可以内源性地(即,天然地)能够产生本文所定义的多肽,在此情况下,从其衍生的重组细胞具有增强的产生所述多肽的能力,或者仅在用本发明的至少一种多核苷酸转化后才能产生所述多肽。在一个实施方案中,本发明的重组细胞具有增强的产生非极性脂质的能力。
[1172] 本发明的宿主细胞可以是能够产生至少一种本文所述的蛋白质的任何细胞,并包括细菌、真菌(包括酵母)、寄生虫、节肢动物、动物、藻类和植物细胞。细胞可以是原核或真核的。优选的宿主细胞为酵母、藻类和植物细胞。在一个优选的实施方案中,植物细胞为种子细胞,具体地讲,为种子子叶或胚乳中的细胞。在一个实施方案中,细胞为动物细胞。动物细胞可以为任何类型的动物细胞,诸如非人动物细胞、非人脊椎动物细胞、非人哺乳动物细胞或水生动物细胞,诸如鱼或甲壳纲动物、无脊椎动物、昆虫等。节肢动物的非限制性实例包括昆虫细胞,诸如秋粘虫(Spodoptera frugiperda)(Sf)细胞,例如Sf9、Sf21;粉纹夜蛾(Trichoplusia ni)细胞和果蝇S2细胞。可用作本发明宿主细胞的细菌细胞的实例为聚球藻属(Synechococcus spp.)(也称为集胞藻属(Synechocystis spp.)),例如细长聚球藻(Synechococcus elongatus)。可用作本发明宿主细胞的藻类细胞的实例包括(例如)衣藻属(Chlamydomonas sp.)(例如莱茵衣藻(Chlamydomonas reinhardtii))、杜氏藻属(Dunaliella sp.)、红球藻属(Haematococcus sp.)、小球藻属(Chlorella sp.)、破囊壶菌属(Thraustochytrium sp.)、裂殖壶菌属(Schizochytrium sp.)和团藻属(Volvox sp.)。
[1173] 用于表达本发明核酸的宿主细胞可以包括在宽范围的温度和pH值下在多种原料 (包括简单或复杂碳水化合物、有机酸和醇和/或烃)上生长的微生物宿主。优选的微生物宿主为能够天然合成非极性脂质的产油生物体。
[1174] 宿主细胞可以是适合发酵方法的生物,诸如解脂耶氏酵母(Yarrowia lipolytica)或其他酵母。
[1175] 转基因植物
[1176] 本发明还提供包含本发明的外源多核苷酸或多肽、本发明的细胞、本发明的载体或它们的组合的植物。术语“植物”是指整个植株,而术语“其部分”是指植物器官(如叶、茎干、根部、花朵、果实)、单个细胞(如花粉)、种子、种子部分(诸如胚芽、胚乳、盾片或种皮)、植物组织(诸如脉管组织)、植物细胞及其子代。如本文所用,植物部分包括植物细胞。
[1177] 如本文所用,术语“植物”以其最广泛的含义使用。这包括但不限于草、观赏或装饰性植物、农作物或谷类(如油料种子、玉米、大豆)、秣料或草料、水果或蔬菜植物、草药植物、木本植物、花卉植物或树的任何物种。这不表示将植物限制到任何特定的结构。它还指单细胞植物(如微藻)。关于植物的术语“其部分”是指植物细胞及其子代,大量分化成集落的多个植物细胞(如团藻属)、在植物发育的任何阶段存在的结构、或植物组织。此类结构包括但不限于叶、茎干、花朵、果实、坚果、根部、种子、种皮、胚芽。术语“植物组织”包括植物的分化和未分化组织,包括存在于叶、茎干、花朵、果实、坚果、根部、种子中的那些,例如胚芽组织、胚乳、皮组织(如表皮、周皮)、脉管组织(如木质部、韧皮部)或基本组织(包括薄壁组织、厚角组织和/或厚壁组织细胞)以及培养中的细胞(如单细胞、原生质体、愈伤组织、胚芽等)。植物组织可以在原位,在器官培养、组织培养或细胞培养中。
[1178] “转基因植物”、“遗传修饰的植物”或其变体是指包含不存在于相同物种、品种或品系的野生型植物中的转基因的植物。在本发明背景下定义的转基因植物包括使用重组技术进行遗传修饰以导致在所需的植物或其部分中产生本文所定义的至少一种多核苷酸的植物及其子代。转基因植物部分具有相应的含义。
[1179] 术语“种子”和“谷物”可互换使用。“谷物”是指成熟的粮食,诸如收获的谷物或仍在植物上但已准备收获的谷物,但根据上下文也可以指吸胀或发芽后的谷物。成熟的谷物通常具有低于约18-20%的水分含量。在优选的实施方案中,谷物的水分含量处于一般认为是对储藏安全的水平,优选5%至15%、6%至8%、8%至10%、或12%至15%。如本文所用的“发育种子”是指成熟前的种子,通常存在于受精或开花后的植物生殖结构中,但也可以指从植物中分离的成熟前的此类种子。成熟的种子通常具有低于约18-20%的水分含量。在优选的实施方案中,种子的水分含量处于一般认为是对储藏安全的水平,优选5%至15%、6%至8%、8%至10%、或者12%至15%。
[1180] 如本文所用,术语“植物贮藏器官”是指特化的以贮藏(例如)蛋白质、碳水化合物、脂质形式的能量的植物部分。植物贮藏器官的实例为种子、果实、块状根和块茎。本发明的优选植物贮藏器官为种子。
[1181] 如本文所用,术语“表型正常的”是指遗传修饰的植物或其部分,尤其是贮藏器官,诸如本发明的种子、块茎或果实,它们与未修饰的植物或其部分相比时生长和繁殖能力无明显降低。在一个实施方案中,表型正常的遗传修饰植物或其部分包含编码可操纵地连接到植物贮藏器官特异性启动子的沉默抑制子的重组多核苷酸,并具有基本上与不含所述多核苷酸的相应植物或其部分相同的生长或繁殖能力。优选地,所产生的活力种子的生物质、生长速率、发芽速率、贮藏器官大小、种子大小和/或数量当与不含所述重组多核苷酸的植物在相同的条件下生长时不低于该不含所述重组多核苷酸的植物的相应指标的90%。这个术语不涵盖可以不同于野生型植物但不影响将植物用于商业用途的植物特征,诸如幼苗叶片的ballerina表型。
[1182] 本发明提供的或设想用于实践本发明的植物既包括单子叶植物也包括双子叶植物。在优选的实施方案中,本发明的植物为农作物(例如谷类和豆类、玉米、小麦、马铃薯、木薯、水稻、高粱、小米、大麦或豌豆)或其他豆科植物。植物可以生长产生可食用的根部、块茎、叶、茎干、花或果实。植物可以是蔬菜或观赏植物。本发明的植物可以为:刺干椰,拟南芥,花生,Astrocaryum murumuru(murumuru),星实榈(tucuma), Attalea geraensis(Indaia-rateiro),Attalea humilis(美洲油棕榈),Attalea oleifera(andaia), Attalea phalerata(uricuri),Attalea speciosa(babassu),燕麦,甜菜,芸苔属如Brassica carinata,Brassica juncea,Brassica napobrassica,欧洲油菜(油菜),亚麻荠,大麻,红花,Caryocar brasiliense(pequi),椰子,海甘蓝,甜瓜,油棕(非洲棕榈),大豆,陆地棉(棉花),向日葵属如向日葵,大麦,麻风树,Joannesia princeps(arara nut-tree),浮萍类(duckweed)如青萍,Lemna disperma,Lemna ecuadoriensis,膨胀浮萍,日本浮萍,浮萍,单脉萍,Lemna obscura,稀脉萍,稀脉浮萍,Lemna tenera,吕藻,鳞根萍,Lemna valdiviana,Lemna yungensis,奥蒂树(oiticica),亚麻,羽扇豆,曲叶矛榈(曲叶矛榈),摩帝椰子(inaja palm),芒草类如异源三倍体芒草奇岗和中国芒,烟草类(烟草)如红花烟草或本氏烟草,巴卡巴酒实棕(bacaba-do-azeite),巴套阿酒实棕(pataua),Oenocarpus distichus(bacaba-de-leque),稻类如水稻和光稃稻,柳枝稷,Paraqueiba paraensis(mari),鳄梨,水黄皮(印度山毛榉),毛果杨,蓖麻,蔗类(甘蔗),芝麻,马铃薯,高粱类如两色高粱,高粱,大花可可,三叶草,巴西针棕(巴西针棕),麦类(麦子)如小麦,玉米,紫花苜蓿(Medicago sativa),黑麦(Secale cerale),甜土豆(Lopmoea batatus),木薯(Manihot esculenta),咖啡(Cofea spp.),凤梨(Anana comosus),合欢树(Citrus spp.),可可(Theobroma cacao),茶(Camellia senensis),香蕉(Musa spp.),鳄梨(Persea americana),无花果(Ficus casica),番石榴(Psidium guajava)、芒果(Mangifer indica)、橄榄(Olea europaea)、番木瓜  (Carica papaya)、腰果(Anacardium occidentale)、夏威夷果(Macadamia intergrifolia)、和杏仁(Prunus amygdalus)。
[1183] 在上文提到的之外,其他优选的植物包括C4草类植物,诸如大须芒草(Andropogon gerardi)、垂穗草(Bouteloua curtipendula)、细格兰马草(B.gracilis)、野牛草(Buchloe dactyloides)、裂稃草(Schizachyrium scoparium)、印度草(Sorghastrum nutans)、曲折鼠尾粟(Sporobolus  cryptandrus);C3草类植物,诸如加拿大披碱草(Elymus canadensis)、豆科植物头状胡枝子(Lespedeza capitata)和Petalostemum villosum、非禾本草本植物Aster azureus;以及木本植物,诸如Quercus ellipsoidalis和大果栎(Q.macrocarpa)。其它优选的植物包括C3草类植物。
[1184] 在优选的实施方案中,所述植物为被子植物。
[1185] 在一个实施方案中,植物为油料种子(oilseed)植物,优选为油料种子作物植物。如本文所用,“油料种子植物”是用于从植物种子商业生产脂质的植物物种。油料种子植物可以是油菜籽(诸如油菜)、玉米、向日葵、红花、大豆、高粱属、亚麻(亚麻籽)或甜菜。此外,油料种子植物可以是其他芸苔属植物、棉花、花生、罂粟、芜菁甘蓝、芥菜、蓖麻、芝麻、红花或产坚果植物。植物可以在其果实中产生高水平的脂质,诸如橄榄、油棕或椰子。本发明适用的园艺植物为莴苣、菊苣或蔬菜类芸苔属植物,包括卷心菜、西兰花或菜花。本发明可应用于烟草属植物、葫芦科植物、胡萝卜、草莓、番茄或胡椒。
[1186] 在优选的实施方案中,转基因植物对于已引入的每一个基因(转基因)为纯合的,使得其子代不发生所需表型的分离。转基因植物也可对于引入的转基因为杂合的,优选对于转基因为均匀杂合的,诸如在通过杂交种子生长成的F1子代中。此类植物可提供本领域熟知的多种优点,诸如杂种优势
[1187] 在相关时,转基因植物还可以包含附加的编码产生非极性脂质时涉及到的酶的转基因,诸如但不限于LPAAT、LPCAT、PAP或磷脂:二酰基甘油酰基转移酶(PDAT1、 PDAT2或PDAT3,参见例如Ghosal等,2007)或它们中两种或更多种的组合。本发明的转基因植物还可以通过外源多核苷酸表达油体蛋白。
[1188] 植物的转化
[1189] 转基因植物可使用本领域已知的技术而产生,诸如通常在Slater等,Plant Biotechnology-The Genetic Manipulation of Plants,Oxford University Press(2003),以及 Christou和Klee,Handbook of Plant Biotechnology,John Wiley and Sons(2004)中所述的那些技术。
[1190] 如本文所用,术语“稳定转化”、“稳定转化的”及其变体是指多核苷酸整合到细胞基因组中使得它们在细胞分裂过程中转移到后代细胞而无需对它们的存在进行阳性选择。稳定的转化体或其子代可通过本领域已知的任何方法进行选择,诸如对染色体DNA 的Southern印迹或基因组DNA的原位杂交。
[1191] 农杆菌属介导的转移是将基因引入植物细胞的广泛使用的系统,因为可以将DNA 引入整个植物组织、植物器官或植物培养中的外植体中的细胞,从而瞬时表达或将DNA 稳定整合到植物细胞基因组中。使用农杆菌属介导的植物整合载体将DNA引入植物细胞在本领域是熟知的(参见例如US 5177010、US 5104310、US 5004863或US 5159135)。待转移的DNA区域通过边界序列限定,并且通常将间插DNA(T-DNA)插入植物基因组中。进一步地,T-DNA的整合是相对精确的过程,很少导致重排。在其中农杆菌属介导的转化是有效的那些植物品种中,这是首选的方法,原因在于基因转移的容易性和确定性。优选的农杆菌转化载体能够在大肠杆菌以及农杆菌属中复制,从而允许方便地操纵,如文献所述(Klee等,In:Plant DNAInfectious Agents,Hohn和Schell编辑, Springer-Verlag,New York,pp.179-
203(1985))。
[1192] 可用的加速方法包括(例如)微弹轰击法(microprojectile bombardment)等。将转化核酸分子递送进植物细胞的方法的一个实例为微弹轰击法。该方法在Yang等,Particle Bombardment Technology for Gene Transfer,Oxford Press,Oxford,England(1994)中进行了综述。非生物性粒子(微弹)可用核酸包被并通过推进力递送进细胞。示例性粒子包括由钨、金、铂等构成的那些。微弹轰击法的特定优点除了是可再生转化单子叶植物的有效手段外还在于既不需要分离原生质体也不需要农杆菌属感染的易感性。用于通过加速将DNA递送进玉米细胞的方法的示例性实施方案为生物弹道α粒子递送系统,其可用于通过丝网诸如不锈或Nytex丝网将包被有DNA的粒子推进到覆盖有悬浮培养的玉米细胞的过滤器表面上。适于与本发明一起使用的粒子递送系统为可得自Bio-Rad Laboratories的氦气加速PDS-1000/He基因枪。
[1193] 对于轰击,可将悬浮细胞浓缩在过滤器上。将含待轰击的细胞的过滤器设置在微弹阻档板下方的合适距离处。如果需要,还将一个或多个丝网设置在基因枪与待轰击的细胞之间。
[1194] 或者,将未成熟的胚或其他靶细胞布置在固体培养基上。将待轰击的细胞设置在微弹阻档板下方的合适距离处。如果需要,还将一个或多个丝网设置在加速装置与待轰击的细胞之间。通过使用本文所述的技术,可以获得瞬时表达标记基因的细胞的多达 1000个或更多个集合(focus)。轰击后48小时一个集合中表达基因产物的细胞的数量通常在一个到十个的范围内,平均一个到三个。
[1195] 在轰击转化中,可以优化轰击前的培养条件和轰击参数,以得到最大数量的稳定转化体。在该技术中,轰击的物理和生物参数均具有重要意义。物理因素是涉及操纵 DNA/微弹沉淀(microprojectile precipitate)的那些因素或影响大子弹或微弹飞行和速度的那些因素。生物因素包括在轰击前以及紧接轰击后操纵细胞时涉及到的所有步骤,有助于缓解轰击相关创伤的靶细胞渗透调节,以及转化DNA的性质诸如线性化DNA或完整的超螺旋质粒。据信,轰击前操纵对于成功转化未成熟的胚特别重要。
[1196] 在另一实施方案中,质粒可以稳定转化。针对在高等植物中进行质粒转化所公开的方法包括含有选择标记并通过同源重组将DNA靶向质粒基因组的DNA的粒子枪递送(US 5,451,513、US 5,545,818、US 5,877,402、US 5,932479和WO 99/05265)。
[1197] 因此,预期人们可能希望在小规模研究中调整轰击参数的各个方面以全面优化轰击条件。可能尤其希望调整物理参数诸如间隙距离、飞行距离、组织距离和氦气压力。还可能通过修改影响受体细胞生理状态并因此可影响转化和整合效率的条件而最小化创伤减少因素。例如,可以调节渗透状态、组织水合和传代培养阶段或受体细胞的细胞周期以实现最优转化。按照本公开,执行其他常规调节将是本领域技术人员已知的。
[1198] 植物原生质体的转化可使用基于磷酸钙沉淀、聚乙二醇处理、电穿孔和这些处理的组合的方法而实现。将这些系统应用于不同的植物品种取决于从原生质体再生该特定植物菌株的能力。从原生质体再生谷物的示例性方法已有所描述(Fujimura等,1985; Toriyama等,1986;Abdullah等,1986)。
[1199] 其他细胞转化方法也可使用,并且包括但不限于通过将DNA直接转移进花粉、通过将DNA直接注射进植物的生殖器官或通过将DNA直接注射进未成熟胚的细胞然后通过干燥胚的再水合而将DNA引入植物。
[1200] 通过单个植物原生质体转化株或通过各种转化的外植体实现植物的再生、发育和培养在本领域是熟知的(Weissbach等,见于Methods for Plant Molecular Biology, Academic Press,San Diego,Calif.,(1988))。该再生和生长过程通常包括选择转化细胞、通过胚发育的通常阶段培养那些个体化细胞、通过生根苗阶段的步骤。使转基因胚和种子相似地再生。之后,将所得的转基因生根芽植入合适的生长培养基中,诸如土壤。
[1201] 包含异体外源基因的植物的发育或再生在本领域是熟知的。优选地,使再生的植物自花受粉以提供纯合的转基因植物。或者,将得自再生植物的花粉异花授粉到在农学上重要谱系的由种子长成的植物。反之,将得自这些重要谱系的植物的花粉用于对再生植物授粉。将本发明的包含所需多核苷酸的转基因植物用本领域技术人员熟知的方法进行培养。
[1202] 转化双子叶植物(主要通过使用根癌农杆菌)并获得转基因植物的方法已有公布,如棉花(US 5,004,863,US 5,159,135,US 5,518,908)、大豆(US 5,569,834,US 5,416,011)、芸苔属植物(US 5,463,174)、花生(Cheng等,1996)和豌豆(Grant等,1995)。
[1203] 转化谷类植物诸如小麦和大麦以通过引入外源核酸而将遗传变异引入植物以及通过原生质体或未成熟植物胚再生植物的方法在本领域是熟知的,参见(例如)CA 2,092,588、AU 61781/94、AU 667939、US 6,100,447、PCT/US97/10621、US 5,589,617、 US 6,541,
257,以及其他方法在WO 99/14314中有所阐述。优选地,转基因小麦或大麦植株通过根癌农杆菌介导的转化过程而产生。携带所需多核苷酸的载体可引入可再生的小麦组织培养植株或外植体的细胞,或合适的植物系统诸如原生质体。
[1204] 可再生的小麦细胞优选得自未成熟胚的盾片、成熟胚、由它们衍生的愈伤组织、或分生组织。
[1205] 为了确认转基因在转基因细胞和植物中的存在性,可使用本领域技术人员已知的方法进行聚合酶链反应(PCR)扩增或Southern印迹分析。可根据产物性质按多种方式的任何一种检测转基因的表达产物,并包括Western印迹和酶测定法。定量测定不同植物组织中的蛋白表达并检测复制的一种尤其有用的方式是使用报告基因,诸如GUS。一旦得到转基因植物后,可让它们生长以产生具有所需表型的植物组织或部分。可以收获植物组织或植物部分,和/或收集种子。种子可用作长成其组织或部分具有所需特性的另外植物的来源。优选地,在非极性脂质的产量处于其最高时收获营养性植物部分。在一个实施方案中,在大约开花的时间收获营养性植物部分。
[1206] 使用农杆菌属或其他转化方法形成的转基因植物通常在一条染色体上包含单个遗传基因座。此类转基因植物对于添加的基因可称为半合子的。更优选的是对于添加的基因为纯合的转基因植物,即包含两个添加的基因的转基因植物,一个基因位于染色体对每条染色体上的相同基因座。纯合的转基因植物可通过使半合子转基因植物自株传粉、使产生的其中一些种子发芽以及分析所得植物的所关注基因而获得。
[1207] 还应当了解,包含两个独立分离外源基因或基因座的两种不同的转基因植物也可异花授粉(配育)以产生包含两组基因或基因座的后代。合适的F1子代的自花受精可产生对于两种外源基因或转座子为纯合的植物。还可以想到亲本植株的回交以及与非转基因植物的异交,如营养繁殖。常用于不同性状和农作物的其他育种方法的描述可见于 Fehr,Breeding Methods for Cultivar Development,Wilcox J.编辑,American Society of Agronomy,Madison Wis.(1987)。
[1208] TILLING
[1209] 在一个实施方案中,TILLING(定向诱导基因组局部突变技术)可用于产生其中内源基因被敲除的植物,例如,编码以下酶的基因:DGAT、sn-1甘油-3-磷酸酰基转移酶 (GPAT)、1-酰基-甘油-3-磷酸酰基转移酶(LPAAT)、酰基辅酶A:溶血卵磷脂酰基转移酶 (LPCAT)、磷脂酸磷酸酶(PAP)或它们中两种或更多种的组合。
[1210] 在第一步骤中,通过以下方法在一组植物中诱导引入的突变,诸如新的单一碱基对变化:用化学诱变剂处理种子(或花粉),然后使植物生长到突变将稳定遗传的世代。提取DNA,并从种群的所有成员保存种子,以形成可随时间反复获取的资源。
[1211] 对于TILLING分析,设计PCR引物以特异性扩增所关注的单个基因靶标。如果靶标是基因家族的成员或多倍体基因组的部分,则特异性特别重要。接下来,可用染料标记的引物从多个个体的混合DNA扩增PCR产物。使这些PCR产物变性和再次退火以允许形成错配的碱基对。错配或异源双链代表了均天然存在的单核苷酸多态性 (SNP)(即,种群的多个植株可能携带相同的多态性)和诱导SNP(即,只有极少的单独植株可能显示突变)。形成异源双链后,使用识别和裂解错配DNA的内切酶诸如CelI是发现TILLING种群内的新型SNP的关键。
[1212] 使用该方法,可以筛选数千种植物以鉴定在基因组的任何基因或特定区域中具有单碱基变化以及小插入或缺失(1-30bp)的任何个体。进行分析的基因组片段的大小可以为0.3至1.6kb之间的任何值。每次分析达8倍共用(pooling)、1.4kb片段(略去片段的末端,在末端中SNP检测会因噪音而存在问题)和96道,这一组合允许单次分析可筛选基因组DNA的高达一百万个碱基对,从而使得TILLING成为一种高通量技术。
[1213] TILLING进一步描述见Slade和Knauf(2005)以及Henikoff等(2004)。
[1214] 在实现突变的高效检测之外,高通量TILLING技术是检测自然多态性的理想选择。因此,通过与已知序列构建异源双链来探查未知的同源DNA可揭露多态位点的数量和位置。
核苷酸变化以及小插入和缺失均进行鉴定,包括至少一些重复数多态性。这称为 Ecotilling(Comai等,2004)。
[1215] 每个SNP由其在一些核苷酸内的大致位置而记录。因此,各单倍型可基于其迁移率而归档。序列数据可通过用于错配裂解测定的相同扩增DNA的等分试样以相对小的增量努力获得。用于单一反应的左端或右端测序引物通过其与多态性的接近度而选择。 Sequencher软件执行多重比对并发现碱基变化,这在每种情况下确认了凝胶带
[1216] Ecotilling的执行可比完整测序(当前用于大多数SNP发现的方法)更加便宜。可对包含生态型DNA阵列的平板进行筛选,而不是得自经诱变处理的植物的DNA池。由于检测在近乎碱基对分辨率的凝胶上进行,并且背景图案是均匀交叉的泳道,具有相同大小的条带可以匹配,从而在单个步骤中发现SNP并进行基因分型。以此方式,SNP 的终极测序简单而高效,基于用于筛选的相同PCR产物的等分试样也可用来进行DNA 测序这一事实而尤其如此。
[1217] 增强外源RNA水平和稳定的表达
[1218] 转录后基因沉默(PTGS)是一种既可靶向细胞也可靶向病毒mRNA用以降解的核苷酸序列特异性防御机制。PTGS发生在用重组多核苷酸稳定或瞬时转化的植物或真菌中,并导致与引入的多核苷酸具有序列相似性的RNA分子的聚积降低。"转录后”是指至少部分在(但却未必仅在)初始RNA转录物的产生运行的机制,例如在初始RNA转录物的加工期间、或伴随着RNA的剪切或输出至细胞质、或者在细胞质内通过与蛋白相关联的的复合物。
[1219] 可通过在植物或其部分的贮藏器官中限制沉默抑制子的表达而使RNA分子水平升高,和/或使RNA分子水平稳定数代。如本文所用,“沉默抑制子”是可以在植物细胞中表达的任何多核苷酸或多肽,其提高植物细胞中来自不同转基因的表达产物的水平,尤其是从最初转化的植物起经历数代。在一实施方案中,沉默抑制子是病毒沉默抑制子或其突变体。大量的病毒沉默抑制子在本领域是已知的,并包括但不限于P19、V2、P38、 Pe-Po和RPV-P0。合适的病毒沉默抑制子的实例包括在WO 2010/057246中所述的那些。沉默抑制子可在本发明的植物或其部分中稳定表达。
[1220] 如本文所用,术语“稳定表达”或其变体是指当与不含编码沉默抑制子的外源多核苷酸的相应植物相比时经历数代(例如至少三代、至少五代或至少十代)后在后代植物中基本上相同或更高的RNA分子水平。然而,该术语不排除经历数代后与前一代相比时存在一定程度的RNA分子水平损失的可能性,例如,每代不低于10%的损失。
[1221] 抑制子可选自任何来源,例如植物、病毒、哺乳动物等。抑制子可以为(例如):兽棚病毒B2、黄金葛潜伏病毒P14、黄金葛潜伏病毒AC2、非洲木薯花叶病毒AC4、秋葵黄脉花叶病C2、秋葵黄脉花叶病C4、秋葵黄脉花叶病βC1、番茄褪绿病毒p22、番茄褪绿病毒CP、番茄褪绿病毒CPm、番茄金色花叶病毒AL2、番茄曲叶Java病毒βC1、番茄黄化曲叶病毒V2、中国番茄黄化曲叶病毒C2、中国番茄黄化曲叶病毒Y10分离株βC1、番茄黄化曲叶病毒以色列分离株V2、绿豆黄色花叶病毒豇豆AC2、木槿褪绿环斑病毒CP、芜菁皱缩病毒P38、芜菁皱缩病毒CP、花椰菜花叶病毒P6、甜菜黄化病毒 p21、柑橘衰退病毒p20、柑橘衰退病毒p23、柑橘衰退病毒CP、豇豆花叶病毒SCP、甘薯褪绿矮化病毒p22、黄瓜花叶病毒2b、番茄不孕病毒HC-Pro、甜菜曲顶病毒L2、土壤传播小麦花叶病毒19K、大麦条纹花叶病毒Gammab、早熟禾半潜病毒Gammab、花生簇生病毒P15、稻矮小病毒Pns10、南瓜蚜传黄化病毒P0、甜菜西黄病毒P0、马铃薯病毒X P25、黄瓜脉黄化病毒P1b、李痘病毒HC-Pro、甘蔗花叶病毒HC-Pro、马铃薯病毒Y株HC-Pro、烟草蚀纹病毒P1/HC-Pro、芜菁花叶病毒P1/HC-Pro、鸭茅斑驳病毒P1、鸭茅斑驳病毒挪威分离株P1、水稻黄斑驳病毒P1、水稻黄斑驳病毒尼日利亚分离株P1、水稻白叶病毒NS3、水稻条纹病毒NS3、十字花科感染烟草花叶病毒126K、十字花科感染烟草花叶病毒p122、烟草花叶病毒p122、烟草花叶病毒126、烟草花叶病毒130K、烟草脆裂病毒16K、番茄丛矮病毒P19、番茄斑萎病毒NSs、苹果褪绿叶斑病毒P50、葡萄病毒Ap10、BYV p21的葡萄卷叶相关病毒-2同源物、以及它们的变体/突变体。以上列表提供了可从其获得抑制子的病毒,以及各特定病毒的抑制子的蛋白质(如B2、P14等)或编码区命名。可以通过检查病毒基因组序列,找到在该基因组内相对于包含已知沉默抑制子的相关病毒基因组结构中的相同位置处所编码的蛋白,来获得其它候选沉默抑制子,如本领域技术人员所理解的那样。
[1222] 沉默抑制子可以基于其作用模式进行分类。优先结合具有突出5'末端的双链RNA 分子(相对于具有平末端的相应双链RNA分子而言)的抑制子如V2在与基因沉默(编码 dsRNA的外源多核苷酸)组合使用时对于增强转基因表达特别有用。优先结合长度21 个碱基的dsRNA分子(相对于不同长度的dsRNA分子)的其它抑制子如p19也可以存在编码dsRNA的外源多核苷酸时使转基因在表达,但一般却是较低的程度,例如与V2 相比。这使得可以针对特定目的选择dsRNA、沉默抑制子和过表达的转基因的最佳组合。可以使用本发明的方法来鉴别此类最佳组合。
[1223] 在一实施方案中,相对于具有平末端的相应双链RNA分子而言,所述沉默抑制子优先结合具有突出5'末端的双链RNA分子。就此而言,相应的双链RNA分子优选具有与突出5'末端的双链RNA分子相同的核苷酸序列,但却没有所述突出5'末端。通过本领域技术人员已知的任何方法按常规进行结合测定,例如在体外测定中。
[1224] 可以使用抑制子的多个拷贝。可以一起使用不同的抑制子(例如,一前一后地)。
[1225] 期望在植物贮藏器官中表达的基本上任何RNA分子均可与沉默抑制子共表达。RNA分子可影响农学性状、抗昆虫性、抗病性、抗除草剂性、不育性、粮食特性等。编码的多肽可涉及在脂质、淀粉、碳水化合物、营养物等的代谢中,或可负责蛋白质、肽、脂质、蜡、淀粉、糖、碳水化合物、香气、气味、毒素、类胡萝卜素、激素、聚合物、类黄酮、贮藏蛋白、酚醛酸、生物碱、木质素、纤维素、糖蛋白、糖脂等的合成。
[1226] 在特定的实例中,植物产生升高水平的酶,以在植物如芸苔属植物,例如油料种子油菜或向日葵、红花、亚麻、棉花、大豆或玉米中产生脂质。
[1227] 植物生物质(biomass)
[1228] 植物生物质的总脂质含量的提高等价于更高的能量含量,使得其在生产生物燃料中的用途更加经济。
[1229] 植物生物质是由植物与小量的矿物质(如钠、磷、钙、和铁)一起产生的有机物质,如碳水化合物、脂肪、和蛋白质。植物生物质的主要成分为碳水化合物(大约75%,干重)和木质素(大约25%),其可随着植物类型而变化。碳水化合物主要为纤维素或半纤维素纤维,其赋予了植物结构的强度,以及木质素,其将纤维收拢在一起。一些植物还储存淀粉(另一种碳水化合物聚合物)以及脂肪作为能量来源,主要是在种子中和根部(如玉米、大豆、和马铃薯)。
[1230] 植物生物质是由植物与小量的矿物质(如钠、磷、钙、和铁)一起产生的有机物质,如碳水化合物、脂肪、和蛋白质。植物生物质的主要成分为碳水化合物(大约75%,干重)和木质素(大约25%),其可随着植物类型而变化。碳水化合物主要为纤维素或半纤维素纤维,其赋予了植物结构的强度,以及木质素,其将纤维收拢在一起。一些植物还储存淀粉(另一种碳水化合物聚合物)以及脂肪作为能量来源,主要是在种子中和根部(如玉米、大豆、和马铃薯)。
[1231] 植物生物质通常具有低能量密度,这是其物理形式和水分含量的而结果。这使得其储存和运输不方便且低效,并且常常不适宜于在没有经过某种预加工的情况下使用。
[1232] 有许多方法可用于将其转化成更方便的形式,包括:1)物理预加工(例如,磨碎),或2)用热方法(例如,燃烧、气化、热解)或化学方法(例如,厌氧消化、发酵、堆肥、酯交换)来转化。以此方式,生物质被转化为所描述的生物质燃料。
[1233] 燃烧
[1234] 燃烧是允许可燃物质在空气或氧气的存在下烧着的过程,其中有热的释放。基本过程为氧化。燃烧是生物质可被用为能量的最简便的方法,并被用于提供热。此种热本身即能够以许多方式使用:1)空间加热,2)水(或其它液体)加热以用于中央或区域加热或生产用热,3)产生蒸汽以用于发电或动力。当可燃燃料物质是生物质的形式时,则主要是纤维素、半纤维素、木质素、和其他存在的分子中的碳(C)和氢(H)的氧化以形成二氧化碳(CO2)和水(H2O)。
[1235] 气化(Gasification)
[1236] 气化是部分氧化的过程,其中碳源如植物生物质,被分解成一氧化碳(CO)和氢气 (H2),外加二氧化碳(CO2)和可能的烃分子如甲烷(CH4)。如果气化在相对低的温度发生,如700℃至1000℃,则产物气体将会具有相对高水平的烃(与高温度气化比较)。结果其可以直接被使用,以燃烧用于加热或经蒸汽机发电,或者经适宜的气体净化,可用于运转内部燃烧的发动机用以发电。简单锅炉燃烧室可以与气化器紧密连接,或者产物气体可以被清洁掉长链烃(焦油)、运输、储存、以及在别处燃烧。气化体系可以与组合的循环蒸汽机紧密整合至以用于发电(IGCC–整合的气化组合循环)。较高温度气化 (1200℃至1600℃)导致产物气体中很少的烃,以及较高比例的CO和H2。这已知为合成气体(合成气或生物合成气),因为其能用于合成较长链的烃(使用技术如 Fischer-Tropsch(FT)合成)。如果H2与至CO的比率正确(2:1),FT合成可用于将合成气转化成高质量的与传统化石柴油和柴油机兼容的合成柴油生物燃料。
[1237] 热解(Pyrolysis)
[1238] 如本文所用,术语“热解"是指在缺乏氧气的情况下使用缓慢加热以从生物质产生气态的、油和碳(char)产品的过程。热解是基于脂质的物质(特别是基于甘油三酯的物质) 的热或热-化学转化。热解的产物包括气体、液体和固体碳,其各自的比例取决于过程的参数。较低温度(400℃左右)倾向于产生更多的固体碳(缓慢热解),而较高一些的温度(500℃左右)产生比例高得多的液体(生物油),前提是蒸汽余留时间保持低至1s左右或更短。在此之后,发生第二反应并提高气体产率。快速(较高温度)热解产生的生物油是深褐色、流动液体,其热值大约是传统燃料油的一半。其可直接燃烧、共燃烧(co-fired)、升级为其他燃料或气化。
[1239] 热解涉及脂质的直接热裂解或者热和催化裂解的组合。在大约400-500℃的温度,裂解发生,产生短链烃如烷烃、烯烃、二烯烃、芳烃、石蜡和羧酸、以及一氧化碳和二氧化碳。
[1240] 可使用四类主要的催化剂包括过渡金属催化剂、分子筛型催化剂、激活的铝土 (alumina)和碳酸钠(Maher等,2007)。实例在US 4102938中给出。酸激活的铝土(Al2O3) 是有效的催化剂(US 5233109)。分子筛催化剂是展现出大小选择性的多孔、高度晶体结构,因此仅有特定大小的分子能够穿过。这些包括沸石催化剂如ZSM-5或HZSM-5,其是包含AlO4和SiO4及其他硅胶-铝土催化剂的晶体材料。这些催化剂的活性和选择性取决于酸度、孔径和孔形,且通常在300-500℃运作。过渡金属催化剂例如在US 4992605 中有描述。碳酸钠催化剂已被用于油的热解(Dandik and Aksoy,1998)。
[1241] 酯交换
[1242] 如本文所用,"酯交换"是脂质(原则上是三酰基甘油)转化成脂肪酸甲基酯或乙基酯,其中使用短链醇如甲醇或乙醇,且存在催化剂如碱或酸。甲醇更加常用,因为其低成本和可用性。所述催化剂可以是同质催化剂、异质催化剂或酶催化剂。同质催化剂包括硫酸铁随后是KOH。异质催化剂包括CaO、K3PO4、和WO3/Zr02。酶催化剂包括从南极假丝酵母(Candida antarctica)产生的Novozyme 435。
[1243] 厌氧消化
[1244] 厌氧消化是其中细菌在缺乏空气的情况下分解有机材料的过程,产生含甲烷的生物气。此过程的产物是生物气(原则上市甲烷(CH4)和二氧化碳(CO2)),固体残余(纤维或消化物(digestate)),其与可用作肥料的堆肥(compost)和液体酒(liquor)类似但不相同。甲烷可燃烧用于加热或发电。厌氧消化过程的固体残余可用作土壤调节剂或者可作为燃料燃烧、或气化。
[1245] 通常是对水浆中的生物材料进行厌氧消化。然而,干燥消化器的数目与日俱增。中温消化在20℃至40℃之间发生并且可进行一个月或两个月才完成。热消化在 50-65℃进行并且较快,但是细菌更加敏感。
[1246] 发酵
[1247] 用于生产生物醇的常规发酵方法使用植物作物的淀粉和糖成分。第二代生物醇优于此,其是将半纤维素和纤维素其用酸和/或酶分解成可发酵的糖以利用更大比例的可用生物质。更多的细节在下文标题为"用于脂质生产的发酵方法"中描述。
[1248] 堆肥
[1249] 堆肥是微生物对有机物质的厌氧分解。其通常在比浆相对干燥的材料上进行。作为收集所释放的可燃生物气的替代、或者作为其补充,可利用堆肥过程的放热性质并使用所产生的热,通常是使用
[1250] 非极性脂质的产生
[1251] 在本领域经常用于实践的技术可用于提取、加工、纯化和分析本发明细胞、生物体或其部分产生的非极性脂质。此类技术在诸如以下文献资源中有所描述和解释: Fereidoon Shahidi,Current Protocols in Food Analytical Chemistry,John Wiley&Sons,Inc. (2001)D1.1.1-D1.1.11以及Perez-Vich等(1998)。
[1252] 种子油的产生
[1253] 通常,将植物种子煮熟、压榨和/或提取以产生粗制种子油,然后脱胶、精炼、脱色和除臭。一般来讲,破碎种子的技术是本领域已知的。例如,可通过向油料种子喷水以将含水量提高到(例如)8.5%而使油料种子缓和,然后使用间隙设为0.23至0.27mm的平滑辊压成薄片。取决于种子的类型,在破碎前可不加水。施热使酶失活、有利于进一步破碎细胞、合并脂质、产生液滴以及聚集蛋白颗粒,所有这些都有利于提取过程。
[1254] 在一实施方案中,大部分种子油在通过螺旋榨油机后释放出来。螺旋榨油机排出的油饼然后使用伴热柱通过溶剂提取,例如通过己烷提取。可选择地,可使通过压榨作业产生的粗制种子油通过具有槽线排放盖的沉降槽,以除去在压榨作业期间与种子油榨出的固体。可使澄清的种子油通过板框压滤机以除去任何剩余的细固体颗粒。如果需要,可将通过提取过程回收的种子油与澄清的种子油合并以产生混合的粗制种子油。
[1255] 一旦将溶剂从粗制种子油除去后,使压榨和提取的部分合并,然后接受正常的脂质加工工序(即,脱胶、碱炼、脱色和除臭)。
[1256] 在一实施方案中,通过如Horn等(2007)中所述的近红外反射光谱来分析种子的油和/或蛋白含量。
[1257] 脱胶
[1258] 脱胶是精炼油的早期步骤并且其主要目的是从油中去除大部分的磷脂,其可占总的提取脂质的大约1-2%。在70-80℃将~2%的水(通常含有磷酸)加入到粗制油中,导致大部分磷脂(伴有微量的金属和色素)的分离。被去除的不可溶物质主要是磷脂和三酰基甘油的混合物并且也已知为卵磷脂(lecithin)。脱胶可通过以下方法进行:将浓磷酸加入粗制种子油以将不可水化的磷脂转化成可水化的形式,以及螯合存在的微量金属。通过离心将胶从种子油中分离。种子油可通过加入足量的氢氧化钠溶液以滴定所有脂肪酸并除去因此形成的皂而精炼。
[1259] 碱精炼
[1260] 碱精炼是一种处理粗制油的精炼过程,有时也称作中和。其通常在脱胶之后,并且在漂白之前。在脱胶后,可以通过加入足够量的碱溶液来处理种子油,以滴定所有的脂肪酸和磷酸,并去除因此而形成的皂。适宜的碱物质包括氢氧化钠、氢氧化钾、碳酸钠、氢氧化锂、氢氧化钙、碳酸钙和氨水。此过程通常在室温进行并去除游离的脂肪酸部分。通过离心或通过萃取至皂的溶剂而将皂去除,并用水洗涤中和的油。如果需要,可以用适宜的酸如盐酸或硫酸中和油中任何过量的碱。
[1261] 漂白
[1262] 漂白是精炼过程,其中在漂白粉(0.2-2.0%)的存在下将油在90-120℃加热10-30分钟,并且其中通过用氮气或蒸汽或在真空中操作而缺乏氧气。油加工中的此步骤被设计为去除不期望的色素(类胡萝卜素、叶绿素、棉酚等),并且该过程还去除氧化产物、微量金属、硫化合物和微量的皂。
[1263] 除臭
[1264] 除臭是在高温(200-260℃)和低压(0.1-1mm Hg)下处理油和脂肪。这通常是通过以大约0.1ml/分钟/100ml种子油的速率将蒸汽引入种子油来实现。除臭可通过在真空下将种子油加热到260℃并以大约0.1ml/分钟/100ml种子油的速率将蒸汽缓慢引入种子油而进行。鼓泡约30分钟后,使种子油在真空下冷却。通常将种子油转移到玻璃容器中,用氩气吹扫,然后冷藏。如果种子油的量有限,可将种子油放在真空下,例如在 Parr反应器中,然后加热到260℃持续与除臭会采用的相同时长。该处理改善种子油的色泽,并除去大部分挥发性物质或有气味的化合物,包括任何残余的游离脂肪酸、单酰基甘油和氧化产物。
[1265] 冷滤(Winterisation)
[1266] 冷滤是有时用于油的商业产品的过程,用以在低室温通过结晶将油和脂肪分离成固体(硬脂)和液体(软脂)部分。其最初被应用于棉花种子油以产生无固体的产品。其通常用于降低油中的饱和脂肪酸的含量。
[1267] 用于产生脂质的植物生物质
[1268] 光合作用中涉及到的植物部分(例如,高等植物和水生植物诸如藻类的茎和叶)也可用于产生脂质。与植物的类型无关,有多种方法可从绿色生物质中提取脂质。一种方式是物理提取,其通常不使用溶剂提取。这是一种使用多种不同类型的机械提取的“传统”方式。榨油机压榨提取是常见的类型,如螺旋榨油机和破碎机提取方法。使用这些方法提取的脂质的量差异很大,具体取决于所用的植物材料和机械过程。机械提取的效率通常不如下文所述的溶剂提取高。
[1269] 在溶剂提取中,将有机溶剂(如,己烷)至少与遗传修饰的植物绿色生物质混合,优选在使绿色生物质干燥和研磨后。当然,除了绿色生物质外的其他植物部分(例如,含脂质的种子)也可进行研磨和混合。溶剂使生物质等部分中的脂质溶解,形成的溶液然后通过机械作用(例如,通过上文的压榨过程)而与生物质分离。该分离步骤也可通过过滤(如,使用压滤机或类似装置)或离心等方法进行。然后,可使有机溶剂与非极性脂质分离(如,通过蒸馏)。该第二分离步骤从植物产生非极性脂质,并且在采用常规蒸气回收时可得到能重复利用的溶剂。
[1270] 如果,例如本发明营养性组织,不会立即用于提取和/或加工脂质,优选在收获后操作以确保脂质含量不会降低,或者使得脂质含量的降低尽可能地最小化(参见,例如, Christie,1993)。在一个实施方案中,在收获之后尽可能快的冷冻营养性组织,例如,使用或液氮。在另一实施方案中,将营养性组织保存在冷冻温度,例如在氮气环绕下的-20℃或-60℃。
[1271] 用于产生脂质的藻类
[1272] 藻类一年可以产生陆生植物10至100倍的物质。作为多产生物体之外,藻类也能够产生可转化成生物燃料的油和淀粉。
[1273] 对于生产生物燃料最有用的具体藻类已知为微藻,包括小的、通常是单细胞的类型。这些藻类可以几乎在任何地方生长。有超过100,000种已知的硅藻类(藻类的一种类型),40,000种已知的类绿色植物藻类,以及数目较少的而其他藻类种类,藻类在几乎任何环境、用任何类型的水都会快速生长。具体而言,可用的藻类可以在具有有限的或质量很差的水的贫瘠地区生长,例如在荒芜以及大部分空旷的美国西南。这些区域也具有充足的日照用于光合作用。简言之,藻类可以是用于产生生物燃料的理想生物体-高效的生长、不需要昂贵的土地或水、不与食品作物竞争、比食品作物需要少得多的量的土地、以及以期望的方式储存能量。
[1274] 藻类可以将能量以油或者淀粉的形式储存在其细胞结构中。储存的油可以高达藻类重量的60%。已经鉴别了某些对油或淀粉高度高产的种类,并测试了生长条件。已经开发了用于提取和将这些材料转化成燃料的方法。
[1275] 最常见的产油藻类一般可包括,或者基本由以下构成:硅藻(硅藻类),绿藻(绿藻类),蓝绿藻(蓝藻类),和金褐藻(金藻类)。另外,可以使用已知为定鞭藻类的第五组。包括褐藻类和异鞭毛藻的组。具体的非限制性实例藻类包括以下类别:绿藻纲 (Chlorophyceae),大眼藻纲(Eustigmatophyceae),土栖藻纲(Prymnesiophyceae),硅藻纲 (Bacillariophyceae)。能够产油的硅藻包括以下属:双肋藻属(Amphipleura),双眉藻属 (Amphora),角毛藻属(Chaetoceros),小环藻属(Cyclotella),桥弯藻属(Cymbella),脆杆藻属(Fragilaria),菱板藻属(Hantzschia),舟形藻属(Navicula),菱形藻属(Nitzschia),褐指藻属(Phaeodactylum),和海链藻属(Thalassiosira)。能够产油的绿藻的具体的非限制性实例包括纤维藻属(Ankistrodesmus),葡萄藻属(Botryococcus),小球藻属
(Chlorella),绿球藻属(Chlorococcum),杜氏藻属(Dunaliella),单针藻属
(Monoraphidium),卵胞藻属  (Oocystis),栅藻属(Scenedesmus),和四爿藻属
(Tetraselmis)。在一方面,绿藻可以是小球藻属或杜氏藻属。能够产油的蓝藻的具体的非限制性实例包括颤藻属(Oscillatoria)和聚球藻属(Synechococcus)。能够产油的金藻类的具体实例包括黄金色藻(Boekelovia)。定鞭藻类的具体非限制性实例包括等鞭金藻属(Isochysis)和颗石藻(Pleurochysis)。
[1276] 可用于本发明的具体藻类包括,例如,衣藻属(Chlamydomonas sp.)如莱茵衣藻 (Chlamydomonas reinhardtii),杜氏藻属(Dunaliella sp.)如盐生杜氏藻(Dunaliella salina)、 Dunaliella tertiolecta、嗜酸杜氏藻(D.acidophila)、巴氏杜氏藻(D.bardawil)、双眼杜氏藻(D.bioculata)、D.lateralis、D.maritima、微小杜氏藻(D.minuta)、巴夫杜氏藻(D.parva)、 D.peircei、多型杜氏藻(D.polymorpha)、D.primolecta、D.pseudosalina、D.quartolecta、绿色杜氏藻(D.viridis),红球藻属(Haematococcus sp.),小球藻属(Chlorella sp.)如绿球藻 (Chlorella vulgaris)、Chlorella sorokiniana或原壳小球藻(Chlorella protothecoides),破囊壶菌属(Thraustochytrium sp.),裂殖壶菌属(Schizochytrium sp.),团藻属(Volvox sp.),微拟球藻属(Nannochloropsis sp.),可含有超过60wt%脂质的布朗葡萄藻(Botryococcus braunii),三角褐指藻(Phaeodactylum tricornutum),伪矮海链藻(Thalassiosira pseudonana),等鞭金藻属(Isochrysis sp.),巴夫藻属(Pavlova sp.),绿球藻属(Chlorococcum sp.),后棘藻属(Ellipsoidion sp.),新绿藻(Neochloris sp.),栅藻属(Scenedesmus sp.)。
[1277] 另外,本发明的产油藻类可包括有效量的两种或更多种株的组合,以便最大化来自每种株的益处。作为实践的情况,可能难以达到单个藻类株或期望的藻类株的组合的 100%纯度。然而,在本文中讨论时,产油藻类是要涵盖想要引入的藻类株,而外来株优选最小化并且低于会对期望的产油藻类和藻油产生不利影响的量。可以使用任意数目的技术控制和/或消除不期望的藻类株。例如,小心控制生长环境能够减少引入外来株。作为选择,或作为其它技术的补充,可以将选择性挑选以仅仅特异性靶向外来株的病毒引入到生长的水库中,其量能够有效降低和/或消除外来株。可使用常规技术便捷地鉴别出适宜的病毒。例如,外来藻类的样品通常都会包括少量的针对该外来藻类的病毒。可将此病毒分离并使其生长,以便产生能在期望的产油藻类中有效控制或消除所述外来藻类群体的病毒量。
[1278] 藻产业是一种涉及种植藻类物种(包括微藻类,也称为浮游植物、微植物或浮游藻类,以及大型藻类,通常称为海藻)的水产养殖形式。
[1279] 商业和工业藻类养殖具有许多用途,包括生产食品配料、食品和藻类燃料。
[1280] 单一或混合藻类培养可在开放池塘(诸如水沟类池塘和湖泊)或光生物反应器中进行。
[1281] 藻类可使用微孔筛网、通过离心、通过絮凝(使用例如脱乙酰壳多糖、矾和氯化铁) 以及通过泡沫浮选而收获。中断二氧化碳供应可使藻类自身絮凝,这称为“自絮凝”。在泡沫浮选中,养殖机向水通气形成泡沫,然后从水面撇去藻类。超声和其他收获方法当前正在开发中。
[1282] 脂质可通过机械破碎从藻类分离。当干燥藻类时,藻类保持其脂质含量,然后可通过榨油机“榨出”。由于不同的藻株在其物理特性方面差异巨大,对于特定类型的藻类,多种榨油机构造(螺旋、挤压活塞等)更有效。
[1283] 渗透压休克有时用于从藻类释放细胞成分,诸如脂质。渗透压休克是渗透压的急剧降低,并可导致溶液中的细胞发生破裂。
[1284] 超声提取可加速提取过程,尤其是用于从藻类提取脂质的酶法提取过程。声波用于在溶剂材料中产生空化气泡。当这些气泡在细胞壁附近破灭时,所产生的冲击波和液体射流导致这些细胞壁破碎并将它们的内含物释放进溶剂。
[1285] 化学溶剂(例如,己烷、苯、石油醚)常用于从藻类中提取脂质。索氏提取可用于在特殊玻璃器皿中在回流下用有机溶剂反复洗涤或渗滤而从藻类中提取脂质。
[1286] 酶法提取可用于从藻类中提取脂质。酶法提取以水作为溶剂使用酶降解细胞壁。酶法提取可通过超声波处理加以支持。
[1287] 超临界CO2也可用作溶剂。在该方法中,CO2在压力下液化,并加热到变为超临界状态(同时具有液体和气体的性质)从而允许其作为溶剂的点。
[1288] 用于脂质生产的发酵方法
[1289] 如本文所用,术语“发酵方法”是指任何发酵方法或包括发酵步骤的任何工艺。发酵方法包括但不限于:用于生产醇(如乙醇、甲醇、丁醇)、有机酸(如柠檬酸、乙酸、衣康酸、乳酸、葡萄糖酸)、酮(如丙酮)、氨基酸(如谷氨酸)、气体(如H2和CO2)、抗生素 (如青霉素和四环素)、酶、维生素(如核黄素、β-胡萝卜素)和激素的发酵方法。发酵方法还包括用于消耗品酒业(如啤酒和葡萄酒)、乳品业(如发酵奶制品)、皮革业和烟草业。优选的发酵方法包括本领域熟知的酒精发酵方法。优选的发酵方法为本领域熟知的厌氧发酵方法。合适的发酵细胞通常为能够发酵的微生物,也就是说,将诸如葡萄糖或麦芽糖的糖类直接或间接转化成所需的发酵产物。
[1290] 发酵微生物的实例包括真菌生物,诸如酵母,优选为含油生物体。如本文所用,“含油生物体”是积聚的干重的至少25%为三甘油酯的生物。如本文所用,“酵母”包括酵母属、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)、卡尔酵母(Saccharomyces carlbergensis)、假丝酵母属(Candida spp.)、克鲁维酵母属(Kluveromyces spp.)、毕赤酵母属(Pichia spp.)、汉逊酵母属(Hansenula spp.)、木霉属(Trichoderma spp.)、斯达氏油脂酵母(Lipomyces starkey) 和解脂耶氏酵母。优选的酵母包括解脂耶氏酵母或其他含油酵母和酵母属菌株,尤其是酿酒酵母。
[1291] 在一个实施方案中,发酵微生物是包含一或多种外源多核苷酸的转基因生物体,其中所述转基因生物体在于缺乏所述一或多种外源多核苷酸的相应生物体比较时,具有水平提高的一或多种非极性脂质。转基因微生物优选在使脂肪酸生物合成基因和酰基转移酶基因活性最佳的条件下生长。这导致最多、最经济地产生脂质。一般来讲,可以优化的培养基条件包括碳源的类型和量、氮源的类型和量、碳氮比、氧气水平、生长温度、 pH、生物质生产期的长度、脂质积聚期的长度和细胞收获时间。
[1292] 发酵培养基必须包含合适的碳源。合适的碳源可包括但不限于:单糖(如葡萄糖、果糖)、二糖(如乳糖、蔗糖)、寡糖、多糖(如淀粉、纤维素或其混合物)、糖醇(如甘油) 或得自可再生原料(如干酪乳清渗透物、玉米浸泡液、糖用甜菜糖蜜、大麦麦芽)的混合物。另外,碳源可包括烷烃、脂肪酸、脂肪酸酯、单甘油酯、二甘油脂、三甘油酯、磷脂和各种脂肪酸商业来源,包括植物油(如大豆油)和动物脂肪。另外,碳底物可包括一碳底物(如二氧化碳、甲醇、甲醛、甲酸盐、含碳的胺),已证实了它们代谢转化成关键的生物化学中间体。因此,预期用于本发明的碳源可涵盖多种含碳底物,并且将只受宿主微生物的选择的限制。虽然所有上述碳底物及其混合物源预计均适用于本发明,但优选的碳底物为糖和/或脂肪酸。最优选的是葡萄糖和/或含10-22个碳的脂肪酸。
[1293] 氮可由无机(如(NH4)2SO4)或有机源(如尿素、谷氨酸盐)供应。除了合适的碳源和氮源外,发酵培养基还可以包含合适的矿物质、盐、辅因子、缓冲剂、微生素和本领域技术人员已知适于微生物生长并促进脂质生产所必需的酶途径的其他组分。
[1294] 合适的发酵pH范围通常在约pH 4.0至pH 8.0之间,其中pH 5.5至pH 7.0是初始生长条件的优选范围。发酵可在有氧或无氧条件下进行,其中微氧条件是优选的。
[1295] 通常,含油微生物细胞中高水平脂质的积聚需要两个阶段的过程,因为代谢状态必需在生长与脂肪合成/贮藏之间得到“平衡”。因此,最优选地,两阶段发酵过程是在微生物中生产脂质所必需的。在该方法中,发酵的第一阶段是为了生成和积聚细胞群,并且特征在于快速的细胞生长和细胞分裂。在发酵的第二阶段,优选的是确立培养中的缺氮条件,以促进高水平的脂质积聚。该缺氮的作用是为了降低细胞中的AMP有效浓度,从而降低线粒体的NAD依赖性异柠檬酸脱氢酶的活性。当这种情况发生时,柠檬酸将会积聚,从而在细胞质中形成丰富的乙酰辅酶A库,并引发脂肪酸合成。因此,这一阶段的特征在于细胞分裂终止,然后是脂肪酸的合成和TAG的积聚。
[1296] 虽然细胞通常在大约30℃生长,但一些研究已表明在较低的温度下不饱和脂肪酸的合成增加。基于工艺的经济性,在两阶段发酵的第一阶段后,当出现大量微生物生长时,该温度迁移应该可能发生。
[1297] 预期,可以采用多种发酵方法设计,其中使用本发明的核酸进行脂质商业生产是所需的。例如,由重组微生物宿主商业化生产脂质可通过分批发酵、分批补料发酵或连续发酵方法而进行
[1298] 分批发酵方法是一个封闭的系统,其中培养基组成在工艺开始时设定并且在工艺过程中除了维持pH和氧气水平所需的那些外不进一步添加物料。因此,在培养过程开始时,将培养基用所需的生物接种,不用向培养基添加另外的底物(即,碳源和氮源)即允许生长或代谢活性发生。在分批工艺中,系统的代谢物和生物质组成不断变化,直到停止培养时。在典型的分批工艺中,细胞温和通过静态停滞期到快速生长对数期,最后到静止期,其中生长速率降低或停止。如果不进行处理,静止期的细胞将最终死亡。标准分批工艺的变体为分批补料工艺,其中在发酵方法过程中将底物连续加入发酵罐。分批补料发酵也适用于本发明。分批补料工艺可用在分解代谢产物阻抑倾向于抑制细胞代谢时或者其中希望在任何一个时间培养基中具有有限量的底物的情况。分批补料系统中底物浓度的测量是困难的,因此可以基于可测因素诸如pH、溶解氧和废气(如,CO2) 分压的变化而进行估计。分批和分批补料培养方法是普通的方法,在本领域中是熟知的,实例可见于Brock,Biotechnology:A Textbook of Industrial Microbiology,第2版,Sinauer Associates,Sunderland,Mass.,(1989);或Deshpande和Mukund(1992)。
[1299] 使用本发明的细胞商业生产脂质也可通过连续发酵方法而实现,其中将限定培养基连续加到生物反应器中,同时将等量体积的培养基移除以回收产物。连续培养通常以恒定的细胞密度将细胞维持在生长的对数期。连续或半连续培养方法允许调节影响细胞生长或终产物浓度的一个因素或任何多个因素。例如,一种方法可限制碳源并允许所有其他参数减弱代谢。在其他系统中,影响生长的多个因素可连续改变,而通过培养基浊度衡量的细胞浓度则保持不变。连续系统力求维持稳态生长,因此由于从培养中吸走培养基,细胞生长速率必须与细胞损失保持平衡。调节连续培养工艺的营养物和生长因子的方法以及使产物形成速率最大化的技术在工业微生物学领域是熟知的,上文的Brock 对多种方法进行了详细介绍。
[1300] 包括PUFA的脂肪酸可以游离脂肪酸或酯化形式诸如酰基甘油、磷脂、硫脂或糖脂存在于宿主微生物中,并可通过本领域熟知的多种手段从宿主细胞中提取。
[1301] 一般来讲,用于纯化包括PUFA的脂肪酸的手段可包括有机溶剂提取、超声处理、超临界提取(如,使用二氧化碳)、皂化以及诸如压榨的物理手段,或它们的组合。尤其关注的是在存在水的情况下用甲醇和氯仿提取(Bligh和Dyer,1959)。需要时,可将含水层酸化以使带负电的部分质子化,并因此提高所需产物向有机层中的分配。提取后,可在氮气流下通过蒸发除去有机溶剂。当以共轭形式分离时,可使产物通过酶法或化学方法裂解以释放出所关注的游离脂肪酸或不太复杂的共轭物,然后可接受进一步的操纵以产生所需的终产物。期望地,脂肪酸的共轭形式可用氢氧化钾裂解。
[1302] 如果需要进一步的纯化,可采用标准方法。此类方法可包括提取、尿素处理、分离结晶、HPLC、分馏、硅胶层析、高速离心或蒸馏或这些技术的组合。反应性基团诸如酸或链烯基的保护可通过已知的技术(如,烷化、碘化)在任何步骤进行。所用的方法包括将脂肪酸甲基化产生甲酯。相似地,可在任何步骤除去保护基团。有利地,包含 GLA、STA、ARA、DHA和EPA的馏分的纯化可通过尿素处理和/或分馏而实现。
[1303] 植物生物质用于使用酵母生产生物质浆的用途的实例在WO 2011/100272中有描述。
[1304] 脂质的用途
[1305] 通过所述方法产生的脂质具有多种用途。在一些实施方案中,将脂质用作食用油。在其他实施方案中,将脂质精炼并用作润滑剂或用于其他工业用途,诸如塑料合成。在一些优选的实施方案中,将脂质精炼以生产生物柴油。
[1306] 生物燃料
[1307] 如本文所用,术语“生物燃料”包括生物柴油和生物醇。生物柴油可从源自植物、藻类和真菌的油来制备。生物醇从糖的发酵产生。该糖可以直接从植物提取(例如,甘蔗)、源自植物淀粉(例如,玉米或小麦)或由纤维素制成(例如,木材、叶或茎)。
[1308] 目前生产生物燃料的成本比石油燃料高。在加工成本之外,生物燃料作物需要种植、施肥、应用杀虫剂和除草剂、收获和运输。本发明的植物、藻类和真菌可降低生物燃料的生产成本。
[1309] 用于产生生物燃料的一般方法可以在,例如,Maher and Bressler,2007;Greenwell 等,2010;Karmakar等,2010;Alonso等,2010;Lee and Mohamed,2010;Liu等,
2010a; Gong and Jiang,2011;Endalew等,2011;Semwal等,2011中找到。
[1310] 生物醇
[1311] 生物学产生的醇(例如乙醇、丙醇和丁醇)的生产是已知的。乙醇是最常见的生物醇。
[1312] 生产乙醇的基本步骤为:1)糖的微生物(例如,酵母)发酵,2)蒸馏,3)脱水,以及任选地4)变性。在发酵之前,一些作物需要将碳水化合物(如纤维素和淀粉)糖化(saccharification)或水解成糖。纤维素的糖化称作消除纤维素水解(cellulolysis)。可使用酶来将淀粉转化为糖。
[1313] 发酵
[1314] 生物醇由糖的微生物发酵产生。目前微生物发酵仅仅直接用糖来进行。植物的两种主要成分,淀粉和纤维素,均由糖组成,并且原则上能够被转化为用于发酵的糖。
[1315] 蒸馏
[1316] 对于要用作燃料的乙醇,必须去除大部分的水。大部分的水通过蒸馏去除蒸馏,但是纯度局限在95-96%,这是由于形成了低沸点的水-乙醇共沸物(azeotrope),其最大程度具有(95.6%m/m(96.5%v/v)的乙醇和4.4%m/m(3.5%v/v)的水)。此混合物称作含水乙醇并且可单独用作燃料,但是与污水乙醇不同,含水乙醇不能以任意比例与汽油混合,因此通常在进一步的处理中去除水部分,以便在汽油发动机中与汽油组合燃烧。
[1317] 脱水
[1318] 可以通过脱水将水从共沸的乙醇/水混合物中去除。许多早期燃料乙醇工厂中使用的共沸蒸馏,包括向混合物加入苯或环己烷。当这些成分被加至混合物时,其形成异质的共沸混合物(处于蒸汽-液体-液体平衡),当其蒸馏时在柱底部产生无水乙醇,以及水和环己烷/苯的蒸汽混合物。当浓缩时,这成为两相母的液体混合物。另一种早期方法,称作called萃取蒸馏,包括加入提高乙醇的相对挥发性的三元组分(ternary component)。当蒸馏所述三元混合物时,将会在柱的顶端流上产生无水乙醇。
[1319] 已经出现了第三种方法并且被大多数的现代乙醇工厂所采用。此新方法是用分子筛来从燃料乙醇去除水。在此方法中,压力下的乙醇蒸汽穿过分子筛珠的床。珠的孔经调整大小以允许吸收水分但却排除乙醇。经过一段时间,在真空下或者在惰性气体流(例如N2)中将所述床再生。经常是用两个床,以便在一个正被再生时可以使用另一个。
[1320] 生物柴油
[1321] 生物柴油或烷基酯的生产是熟知的。有三种通过脂质产生酯的基本路线:1)通过醇进行脂质的碱催化酯交换反应;2)通过甲醇进行脂质的直接酸催化酯化反应;以及3) 将脂质转化成脂肪酸,然后通过酸催化形成烷基酯。
[1322] 可以使用用于制备脂肪酸烷基酯和甘油醚(其中甘油上的一个、两个或三个羟基被醚化)的任何方法。例如,可以分别通过用酸或碱催化剂水解或皂化甘油三酯来制备脂肪酸,或者可以使用酶如脂肪酶或酯酶。可以通过将脂肪酸与醇在存在酸催化剂的情况下反应来制备脂肪酸烷基酯。也可以通过将甘油三酯与醇在存在酸或碱催化剂的情况下反应制备脂肪酸烷基酯。可以例如通过将甘油与卤代烷在碱的存在下反应来制备甘油醚,或者将将甘油与与石蜡或醇在酸催化剂的存在下反应来制备甘油醚。
[1323] 在一些优选的实施方案中,使脂质发生酯交换反应以产生甲酯和甘油。在一些优选的实施方案中,使脂质与醇(诸如甲醇或乙醇)在存在催化剂(氢氧化钾或氢氧化钠)的情况下反应以产生烷基酯。烷基酯可用于生物柴油或与基于石油的燃料搀和。
[1324] 所述烷基酯可以直接与柴油燃料搀和(blended),或者用水或其他水溶液洗涤以在搀和前去除杂质(包括催化剂)。可以用碱来中和酸催化剂。然而,此过程产生盐。为避免引擎锈蚀,优选将燃料添加剂成分中的盐浓度最小化。可以例如通过用水洗涤该组合物来从该组合物基本上去除盐。
[1325] 在另一实施方案中,在洗涤后干燥所述组合物,例如,通过使该组合物经过干燥剂如硫酸钙。
[1326] 在另一实施方案中,获得中性燃料添加剂而没有产生盐或使用洗涤步骤,其中是通过使用聚合物酸如Dowex 50TM,其是含有磺酸基的树脂。在酯化和醚化反应完成以后,该催化剂可容易的经过滤去除。
[1327] 植物三酰基甘油作为生物燃料来源
[1328] 植物三酰基甘油用于产生生物燃料的用途在Durrett等(2008)中有综述。简言之,植物油主要由各种三酰基甘油(TAG)组成,也即由三个酯化至甘油的脂肪酸链(通常长度 18或16个碳)组成的分子。脂肪酰基链在化学上类似于构成石油和柴油中所发现分子的大部分的脂肪烃。汽油中的烃每个分子含有5-12个碳原子,且此易挥发燃料与空气混合并在常规引擎中用火花点火。相反,柴油燃料成分通常具有每分子10-15个碳原子,并且在柴油引擎中以很高的压缩点火。然而,大部分的植物TAG具有比常规柴油高得多的粘度范围:分别为17.3-32.9mm2s-1相较于1.9-4.1mm2s-1(ASTM D975;Knothe and Steidley,2005)。此较高的粘度导致在现代引擎中雾化不良,引致不完全燃烧衍生出的问题,如碳沉积和结焦(Ryan等,1984)。为克服此问题,通过用伯醇(最常见为甲醇)酯化而将TAG转化成低粘度的脂肪酸酯。所得的燃料通常称之为生物柴油并具有从1.9 至6.0mm2s-1的动态粘度范围(ASTM D6751)。生物柴油中发现的脂肪酸甲基酯(FAME) 具有高能量密度,如其燃烧的高热量所反映的那样,这与常规柴油类似(如果不是更高的话)(Knothe,2005)。类似地,生物柴油中发现的FAME的十六烷值(柴油点火性能的量度)超过了常规柴油(Knothe,2005)。
[1329] 植物油大部分由物种常见脂肪酸组成,也即棕榈酸酯(16:0)、硬脂酸酯(18:0)、油酸酯(18:1)、亚油酸酯(18:2)和亚麻酸酯(18:3),虽然,根据特定的种类,更长的或更短的脂肪酸也可以是主要成分。这些脂肪酸彼此之间在酰基链长度和双键的数目方面不同,导致了不同的物理性质。因此,衍生自脂肪酸混合物的生物柴油的燃料性质取决于其组成。改变脂肪酸谱因而可以改善生物柴油的燃料性质,如低温流动特征、氧化稳定性和 NOx排放。改变TAG的脂肪酸组成可以降低植物油的粘度,削减化学修饰的需要,因而提高生物燃料的成本效益。
[1330] 大多数的植物油衍生自种子中储藏的三酰基甘油。然而,本发明提供了也用于提高营养性组织中油含量的方法。本发明的植物组织具有提高的总脂质产率。另外,油酸的水平显著提高而多不饱和脂肪酸α-亚麻酸降低。
[1331] 一旦发育出叶,其经历从库(吸收营养)到源(提供糖)的发育学变化。在食品作物中,大部分的糖从源头叶移位出去以支持新叶生长。因为碳水化合物的移位是活动过程,因而在移位期间有碳和能量的损失。另外,在发育中的种子从植物摄取碳之后,又有另外的与碳水化合物转化成油、蛋白或其它主要种子成分相关联的碳和能量损失(Goffman 等,2005)。本发明的植物提高了叶和/或茎的能量含量,从而使整个地上植物都可以被收获并用于产生生物燃料。
[1332] 藻类作为生物燃料来源
[1333] 藻类将油储存在细胞体之内,有时(但并不总是)在囊泡内。此油可以用相对简便的若干方法来回收,包括溶剂、加热、和/或加压。然而,这些方法通常仅仅回收所储存的油的大约80%至90%。提供更有效率的油提取方法的过程(能以低成本回收接近所储存的油的100%)是本领域已知的。这些过程包括或由如下组成:解聚,如生物学分解藻类细胞的细胞壁和/或油囊泡(如果存在的话),以从产油藻类释放油。
[1334] 另外,存在大量的病毒能够侵入藻类细胞并使其破裂,而由此可以释放该细胞的内含物,特别是所储存的油或淀粉。此类病毒式藻类生态系统的组成部分,并且许多所述病毒特异于单一类型的藻类。此类病毒的具体实例包括小球藻属病毒PBCV-1(草履虫 (Paramecium Bursaria)小球藻病毒),其特异于特定小球藻属藻类,以及特异于蓝绿藻类聚球藻属的噬蓝藻体如SM-1、P-60、和AS-1。所选择的特定病毒将取决于生长过程中所要使用的特定藻类类型。本发明的一方面是使用此种病毒时藻类破裂,从而可以回收藻类细胞壁内含有的油。在本发明的另一个具体方面,可使用生物物质的混合物来使藻类细胞壁和/或油囊泡破裂。
[1335] 机械破碎(例如,螺旋轧机(expeller)或压榨机(press))、己烷或丁烷溶剂回收步骤、超临界流体萃取等也可用于从产油藻类的油囊泡中提取油。或者,可使用机械手段与生物学物质组合,以便改善反应速率和/或材料的分离。无论所选择的是何种特定生物学物质或多种物质,其可以量来引入,而足以被用作主要手段来将藻类油从油囊泡或产油藻类中释放,也即,并不仅仅是其附带存在。
[1336] 一旦已经将油从藻类中释放出来,其可以从藻类碎片材料(如细胞残余、油、酶、副产物等)的浆中回收或分离16。这可以通过沉降或离心来完成,而一般离心会更快。淀粉生产可以遵循类似的分离过程。
[1337] 藻类饲料可以从生物质饲料来源以及藻类饲料来源形成。来自藻类或陆生来源的生物质可以各种方式来解聚,例如但不限于糖化、水解或类似的等。来源材料可以几乎是任何足够松散(voluminous)的纤维素、木质纤维素、聚糖或碳水化合物、糖蛋白、或构成来源材料的细胞壁的其它材料。
[1338] 发酵阶段可以是常规的使用酵母将糖发酵成醇。发酵过程产生二氧化碳、醇、和藻类壳。所有这些产物都可被用于本发明方法和体系的其它方面,基本上没有未使用的材料或浪费的热。或者,如果乙醇如此产生,则其可作为产品出售或者被用于产生用于酯交换过程的乙酸乙酯。类似的考量会适用于乙醇之外的其它醇。
[1339] 藻类油可以被通过对该藻类油进行直接脱氢或酯交换而转化为生物柴油。藻类油是与大部分植物油类似的形式,也即是甘油三酯的形式。甘油三酯由三个脂肪酸链组成,甘油骨架中三个碳原子的每一个均附着一个所述脂肪酸链。此种形式的油可以直接燃烧。然而,此种形式的油用于柴油引擎并不理想,并且在没有修饰的情况下,引擎会很快运转不良或者熄火。根据本发明,甘油三酯被转化为生物柴油,其在许多方面都类似于但却优越于石油燃料。
[1340] 将甘油三酯转化为生物柴油的一种方法是酯交换,并且包括将甘油三酯与醇或其它酰基受体反应以产生游离脂肪酸酯和甘油。游离脂肪酸是脂肪酸烷基酯(FAAE)的形式。
[1341] 对于化学方法,需要额外的步骤以分离催化剂并清洁脂肪酸。另外,如果使用乙醇作为酰基受体,其必须是基本上干燥的以防止在过程中经皂化而产生皂,以及甘油必须被纯化。生物学方法,相较而言,可以接受乙醇处于不太干燥的状态并且生物柴油和甘油的清洁和纯化要容易得多。
[1342] 酯交换常使用简单醇,通常是源自石油的甲醇。当使用甲醇时,所得的生物柴油称作脂肪酸甲基酯(FAME),并且目前出售的大部分生物柴油,特别是在欧洲,都是FAME。然而,也可以使用乙醇作为酯交换中的醇,在此情形中生物柴油为脂肪酸乙基酯 (FAEE)。在美国,这两种通常并不区分,并被统称为脂肪酸烷基酯(FAAE),作为通用术语,无论所使用的酰基受体是什么,其都可以适用。直接脱氢也可以用于将至少部分的藻类油转化为生物柴油。因而,在一方面,生物柴油产品可以包括烷烃。
[1343] 藻类甘油三酯也可通过直接脱氢而被转化为生物柴油。在此过程中,产物是烷链,丙烷和水。所述甘油骨架被氢化成丙烷,因而基本上没有产生作为副产物的甘油。另外,不需要醇或酯交换催化剂。所有的生物质可用作产油藻类的饲料,而没有一个需要发酵以产生用于酯交换的醇。所得的烷烃是纯的烃,没有氧,因而此方式所产生的生物柴油具有比所述烷基酯稍微高一些的能量含量,降解更慢,不吸水,并且具有其它期望的化学性质。
[1344] 饲料
[1345] 本发明包括可用作饲料的组合物。出于本发明的目的,“饲料”包括供人或动物消耗 (包括供肠道和/或非肠道消耗)的任何食物或制剂,当进入体内时其:(1)起到滋养或增长组织或供能的作用,和/或(2)维持、恢复或支持足够的营养状况或代谢功能。本发明的饲料包括针对婴儿和/或幼儿的营养组合物。
[1346] 本发明的饲料包括(例如)本发明的细胞、本发明的植物、本发明的植物部分、本发明的种子、本发明的提取物、本发明方法的产物、本发明发酵方法的产物、或与合适载体一起的组合物。术语“载体”以其最广泛的含义使用以涵盖可以或可以不具有营养价值的任何组分。如本领域技术人员将会知道,载体必须适用于(或以足够低的浓度用于)饲料,使得其对消耗饲料的生物不产生有害作用。
[1347] 本发明的饲料包含通过使用本文所公开的方法、细胞或生物直接或间接产生的脂质。组合物可以为固体或液体形式。另外,组合物可以包含特定用途所需量的可食用大量营养素、维生素和/或矿物质。这些成分的量将随组合物是旨在用于正常个体还是用于具有特殊需求的个体诸如患有代谢疾病等的个体而变化。
[1348] 具营养价值的合适载体的实例包括但不限于诸如食用脂肪、碳水化合物和蛋白质的大量营养素。此类食用脂肪的实例包括但不限于椰子油、琉璃苣油、真菌油、黑醋栗油、大豆油以及单-和二-甘油酯。此类碳水化合物的实例包括但不限于葡萄糖、食用乳糖和水解淀粉。另外,可用于本发明的营养组合物的蛋白质的实例包括但不限于大豆蛋白、电渗乳清、电渗析脱脂乳、乳清或这些蛋白质的水解产物。
[1349] 关于维生素和矿物质,可将以下成分添加到本发明的饲料组合物中:钙、磷、钾、钠、氯化物、镁、锰、铁、铜、锌、硒、碘和微生素A、E、D、C和B族。也可以添加其他此类维生素和矿物质。
[1350] 用于本发明的饲料组合物的组分可以具有半纯化或纯化起源。所谓半纯化或纯化是指通过天然材料的纯化或通过从头合成制备的材料。
[1351] 本发明的饲料组合物还可以添加到食物中,甚至在不需要膳食补充时。例如,可将该组合物添加到任何类型的食物中,包括但不限于人造黄油、改性黄油、奶酪、牛奶、酸奶、巧克力、糖果、小吃、色拉油、烹调用油、烹调用脂肪、肉类、鱼肉和饮料。
[1352] 酵母属各物种用于酿造啤酒和葡萄酒,以及作为烘培尤其是面包中的配料。酵母是蔬菜提取物的主要成分。酵母还用作动物饲料中的添加剂。将显而易见的是,可提供适于合成本文所述的脂质的遗传修饰酵母菌株。这些酵母菌株然后可用于食物和葡萄酒及啤酒酿造以提供具有提高的脂质含量的产品。
[1353] 另外,根据本发明产生的脂质或经转化以包含和表达主题基因的宿主细胞也可用作动物食物补充剂以改变动物组织或牛奶脂肪酸组成以更适合人或动物消耗。此类动物的实例包括羊、牛、马等。
[1354] 此外,本发明的饲料可用于水产养殖以提高鱼中的脂肪酸水平供人或动物消耗。
[1355] 本发明的优选饲料为可直接用作人或其他动物的食物或饲料的植物、种子和其他植物部分诸如叶、果实和茎干。例如,动物可直接吃在田野中生长的此类植物或以控制摄食的方式喂养更加定量的量。本发明包括将此类植物和植物部分用作饲料,以提高人和其他动物中的多不饱和脂肪酸水平。
[1356] 组合物
[1357] 本发明还涵盖包含使用本发明的方法产生的一种或多种脂质的组合物,尤其是药物组合物。
[1358] 药物组合物可包含与标准、熟知、无毒药学上可接受的载体、佐剂或媒介物诸如磷酸盐缓冲盐水、水、乙醇、多元醇、蔬菜油、润湿剂或乳剂诸如水/油乳剂相结合的一种或多种脂质。组合物可以为液体或固体形式。例如,组合物可以为片剂、胶囊、可摄取液体、粉末、外用膏剂或霜剂的形式。适当的流动性可(例如)通过就分散剂而言维持所需的粒度以及通过使用表面活性剂而维持。还可能可取的是包含等渗剂,例如糖、氯化钠等。除了此类惰性稀释剂外,组合物还可包含佐剂,诸如润湿剂、乳化及助悬剂、甜味剂、矫味剂和芳香剂。
[1359] 混悬剂除了活性化合物外还可包含助悬剂,诸如乙氧基化异十八烷醇、聚氧乙烯山梨糖醇和脱水山梨糖醇酯、微晶纤维素、氢氧化铝氧化物、膨润土、琼脂和黄蓍胶或这些物质的混合物。
[1360] 固体剂型诸如片剂和胶囊剂可使用本领域熟知的技术制备。例如,根据本发明产生的脂质可和与粘合剂诸如阿拉伯树胶、玉米淀粉或明胶,崩解剂诸如马铃薯淀粉或藻酸以及润滑剂诸如硬脂酸或硬脂酸镁相结合的常规片剂基料诸如乳糖、蔗糖和玉米淀粉一起压片。胶囊可通过将这些赋形剂与抗氧化剂和相关脂质一起装入明胶胶囊中而制备。
[1361] 对于静脉内施用,根据本发明产生的脂质或其衍生物可掺入商业制剂中。
[1362] 特定脂肪酸的典型剂量为0.1mg至20g,每天使用一至五次(每天最多100g),并优选在每天约10mg至约1、2、5或10g的范围内(以一个或多个剂量使用)。如本领域所已知,最低约300mg/天的脂肪酸,特别是多不饱和脂肪酸是可取的。然而,应当理解任何量的脂肪酸将有益于受试者。
[1363] 本发明的药物组合物的可能施用途径包括(例如)肠道和非肠道。例如,可经口施用液体制剂。另外,均匀混合物可完全分散于水中,在无菌条件下与生理上可接受的稀释剂、防腐剂、缓冲剂或推进剂混合以形成喷雾剂或吸入剂。
[1364] 待施用给受试者的组合物的剂型可由本领域的普通技术人员决定,并取决于多种因素,诸如受试者的体重、年龄、总体健康状况、既往史、免疫状态等。
[1365] 另外,本发明的组合物可用于美容目的。该组合物可加到现有美容组合物中使得形成混合物,或者可将根据本发明产生的脂肪酸用作美容组合物中唯一的“活性”成分。
[1366] 多肽
[1367] 术语“多肽”和“蛋白质”通常可互换使用。
[1368] 一种多肽或一类多肽可通过其氨基酸序列与参考氨基酸序列的相同性程度(百分比相同性)或通过与一个参考氨基酸序列比与另一个参考氨基酸序列具有更高的百分比相同性而限定。多肽与参考氨基酸序列的百分比相同性通常通过GAP分析(Needleman和 Wunsch,1970;GCG程序)以空位形成罚分=5和空位延伸罚分=0.3的参数而确定。查询序列的长度为至少100个氨基酸,GAP分析在至少100个氨基酸的区域上比对两个序列。甚至更优选地,查询序列的长度为至少250个氨基酸,GAP分析在至少250个氨基酸的区域上比对两个序列。甚至更优选地,GAP分析在整个长度上比对两个序列。所述一种多肽或一类多肽可具有与参考多肽相同的酶活性、或不同的活性或无活性。优选多肽的酶活性为参考多肽的活性的至少10%。
[1369] 如本文所用,“生物学活性片段”是本发明的多肽的一部分,其保持了全长参考多肽的限定活性,例如MGAT活性。如本文所用的生物学活性片段不包括全长多肽。生物学活性片段可以为任何大小的部分,只要它们保持限定的活性即可。优选地,生物学活性片段保持全长多肽活性的至少10%。
[1370] 至于限定的多肽或酶,应当理解高于本文所提供的那些数值的百分比相同性数值将涵盖优选的实施方案。因此,适用时,按照最低百分比相同性数值,优选的是,多肽/ 酶所含的氨基酸序列与相关的命名SEQ ID NO具有至少60%、更优选至少65%、更优选至少70%、更优选至少75%、更优选至少80%、更优选至少85%、更优选至少90%、更优选至少
91%、更优选至少92%、更优选至少93%、更优选至少94%、更优选至少 95%、更优选至少
96%、更优选至少97%、更优选至少98%、更优选至少99%、更优选至少99.1%、更优选至少
99.2%、更优选至少99.3%、更优选至少99.4%、更优选至少99.5%、更优选至少99.6%、更优选至少99.7%、更优选至少99.8%甚至更优选至少 99.9%相同性。
[1371] 本文所限定的多肽的氨基酸序列突变体可通过将合适的核苷酸变化引入本文所限定的核酸或通过体外合成所需的多肽而制备。此类突变体包括(例如)氨基酸序列内残基的缺失、插入或取代。可使缺失、插入和取代的组合出现在最终构建体中,前提条件是最终多肽产物具有所需的特性。
[1372] 突变(改变)的多肽可使用本领域已知的任何技术例如使用定向进化或合理设计策略(见下文)而制备。衍生自突变/改变的DNA的产物可使用本文所述的技术容易地筛选,以确定它们是否具有酰基转移酶活性,例如MGAT、DGAT或GPAT/磷酸酶活性。
[1373] 在设计氨基酸序列突变体时,突变位点的位置和突变的性质将取决于待修饰的特性。突变位点可例如通过以下方式单独地或连续地进行修饰:(1)根据实现的结果首先通过保守氨基酸选择然后通过更激进的选择进行取代,(2)使目标残基缺失,或(3)邻近定位的位点插入其他残基。
[1374] 氨基酸序列缺失通常在约1至15个残基、更优选约1至10个残基,通常约1至5 个邻接残基的范围内。
[1375] 取代突变体具有至少一个在多肽中移除的氨基酸残基以及在其位置插入的不同残基。取代诱变最受关注的位点包括鉴定为活性位点的位点。所关注的其他位点为其中得自各品系或物种的特定残基为相同的那些位点。这些位置可以对生物学活性具有重要意义。这些位点,特别是落在至少三个其他相同保守位点的序列内的那些位点,优选以相对保守的方式取代。此类保守置换在表1中以“示例性取代”的标题示出。
[1376] 在一个优选的实施方案中,突变体/变体多肽与天然存在的多肽相比时只具有或不超过一个或两个或三个或四个保守氨基酸变化。保守氨基酸变化的详细信息在表1中提供。技术人员将会意识到,此类微小的变化可合理地预测为当在重组细胞中表达时不改变多肽的活性。
[1377] 表1示例性取代
[1378] 原始残基 示例性取代Aln(A) val;leu;ile;gly
Arg(R) lys
Asn(N) gln;his
Asp(D) glu
Cys(C) ser
Gln(Q) asn;his
Glu(E) asp
Gly(G) pro;ala
His(H) asn;gln
Ile(I) leu;val;ala
Lcu(L) ile;val;met;ala;phe
Lys(K) arg
Mct(M) leu;phe
Pbe(F) leu;val;ala
Pro(P) gly
Ser(S) thr
Thr(T) ser
Trp(W) tyr
Tyr(Y) trp;phc
Val(V) ile;leu;met;phe;ala
[1379] 定向进化
[1380] 在定向进化中,将随机诱变应用于蛋白质,并将选择方案用于挑选出具有所需质量 (例如增强的脂肪酸酰基转移酶活性)的变体。然后应用更多轮的突变和选择。典型的定向进化策略涉及三个步骤:
[1381] 1)多样化:使编码所关注的蛋白质的基因随机突变和/或重组以创建大型基因变体文库。变体基因文库可通过易错PCR(参见例如Leung,1989;Cadwell和Joyce,1992)由通过亲本模板制备的DNA酶I消化片段库(Stemmer,1994a;Stemmer,1994b;Crameri 等,1998;Coco等,2001)、由简并寡核苷酸(Ness等,2002,Coco,2002)或由两者的混合物或甚至由未消化的亲本模板(Zhao等,1998;Eggert等,2005;Jezequek等,2008) 构建,并通常通过PCR组装。文库也可由通过同源或非同源重组体内或体外重组的亲本序列而制备(Ostermeier等,1999;Volkov等,1999;Sieber等,2001)。变体基因文库还可通过将所关注的基因亚克隆进合适的载体、将载体转化进“致突变”菌株诸如大肠杆菌XL-1红(Stratagene)然后使转化细菌繁殖合适的代数而构建。变体基因文库也可通过使所关注的基因接受DNA改组(即,通过随机片段化和重新组装而体外同源重组所选突变基因的库)而构建,如Harayama(1998)大体描述。
[1382] 2)选择:使用筛选或选择测试文库具有所需特性的突变体(变体)的存在性。筛选使得能够手动鉴定和分离高性能突变体,而选择则自动消除所有非功能性突变体。筛选可涉及筛选已知保守氨基酸基序的存在性。可选择地或除此之外,筛选可涉及在宿主生物或其部分中表达突变的多核苷酸以及通过(例如)以下方式测定脂肪酸酰基转移酶活性水平:定量从生物或其部分提取的脂质中所得产物的水平,以及测定生物或其部分的提取脂质中相对于不含突变多核苷酸的相应生物或其部分的产物水平并任选地表达亲本(未突变的)多核苷酸。可选择地,筛选可涉及向生物或其部分供给未标记的底物以及测定生物或其部分中相对于不含突变多核苷酸的相应生物或其部分的底物或产物水平并任选地表达亲本(未突变的)多核苷酸。
[1383] 3)扩增:使选择或筛选中鉴定的变体复制许多倍,从而使得研究人员能够对它们的DNA测序以便掌握发生了什么突变。
[1384] 这三个步骤一起称为定向进化的“轮”。大多数实验将采用多于一轮。在这些实验中,将前一轮的“获胜者”在下一轮中多样化,以产生新的文库。在实验结束时,将所有进化的蛋白质或多核苷酸突变体使用生物化学方法进行表征。
[1385] 合理设计
[1386] 蛋白质可基于已知的蛋白质结构和折叠相关信息而合理设计。这可通过对草稿的设计(从头设计)或基于天然支架的重新设计而实现(参见例如Hallinga,1997;以及Lu和 Berry,Protein Structure Design and Engineering,Handbook of Proteins 2,1153-1157 (2007))。蛋白质设计通常涉及鉴定折叠成给定或目标结构的序列并可使用计算机模型而实现。计算机蛋白质设计算法搜索当折叠成目标结构时能量较低的序列的序列-构象空间。计算机蛋白质设计算法使用蛋白质能量学模型评价突变将如何影响蛋白质的结构和功能。这些能量函数通常包括分子力学、统计学(即,基于知识的)和其他经验术语的组合。
合适的可用软件包括IPRO(Interative Protein Redesign and Optimization)、EGAD(A Genetic Algorithm for Protein Design)、Rosetta Design、Sharpen和Abalone。
[1387] 还包括在本发明范围内的是本文所定义的多肽,其在合成期间或合成后(例如)通过以下方式差异修饰:生物素化、苄基化、糖基化、乙酰化、磷酸化、酰胺化、通过已知保护/封闭基团衍生化、蛋白水解裂解、连接到抗体分子或其他细胞配体等。这些修饰可起到提高本发明的多肽的稳定性和/或生物学活性的作用。
[1388] 脂肪酸酰基转移酶的鉴定
[1389] 在一个方面,本发明提供鉴定以下核酸分子的方法,该核酸分子编码在细胞中产生 MAG、DAG和/或TAG的能力升高的脂肪酸酰基转移酶。
[1390] 该方法包括获得这样的细胞,其包含的核酸分子编码可操纵地连接到在细胞中具有活性的启动子的脂肪酸酰基转移酶。核酸分子可编码天然存在的脂肪酸酰基转移酶诸如 MGAT、GPAT和/或DGAT或其突变体。可使用本领域的标准程序(参见上文)使突变体工程化,诸如通过对所关注的已知基因执行随机诱变、定向诱变或饱和诱变,或通过使不同的基因进行DNA改组。例如,可使用(例如)易错PCR和/或DNA改组,使包含编码MGAT的选自SEQ ID NO:1至44任一序列的多核苷酸随机突变和/或重组,以创建大型基因变体(突变体)文库。可基于包含保守氨基酸基序对突变体进行选择以进一步研究。例如,就编码MGAT的候选核酸而言,技术人员可在测试核酸是否编码功能性MGAT 突变体(通过例如转染进宿主细胞诸如植物细胞,并测定脂肪酸酰基转移酶(即MGAT) 活性,如本文所述)之前确定核酸是否包含SEQ ID NO:220、221、222、223和/或224 所提供的序列。
[1391] 核酸或其片段的直接PCR测序可用于确定精确的核苷酸序列以及推导相应的氨基酸序列并因此鉴定保守氨基酸序列。基于保守氨基酸序列的简并引物可用于直接PCR 扩增。简并引物还可用作DNA杂交测定中的探针。可选择地,保守氨基酸序列可在利用以下物质的蛋白质杂交测定中检测,例如:特异性结合到保守氨基酸序列的抗体,或特异性结合到保守氨基酸序列的底物,诸如结合FLXLXXXN(推定的中性脂质结合结构域;SEQ ID NO:224)的脂质。
[1392] 在一个实施方案中,该核酸分子包含编码MGAT的核苷酸序列。核苷酸序列可i) 包含选自SEQ ID NO:1至44任一序列,ii)编码包含具有SEQ ID NO:45至82任一所提供的序列的氨基酸的多肽或其生物学活性片段,iii)与i)或ii)至少50%相同,或iv)在严格条件下与i)至iii)的任一杂交。在另一个或附加的实施方案中,该核酸分子包含编码SEQ ID NO:220、221、222、223和224所提供的一种或多种保守DGAT2和/或 MGAT1/2氨基酸序列的核苷酸序列。在一个优选的实施方案中,该核酸分子包含编码 SEQ ID NO:220和/或SEQ ID NO:
224所提供的保守氨基酸序列的核苷酸序列。
[1393] 在另一个实施方案中,该核酸分子包含编码GPAT、优选具有磷酸酶活性的GPAT 的核苷酸序列。核苷酸序列可i)包含选自SEQ ID NO:84至141的任一序列,ii)编码包含具有SEQ ID NO:144至201任一所提供的序列的氨基酸多肽或其生物学活性片段, iii)与i)或ii)至少50%相同,或iv)在严格条件下与i)至iii)的任一杂交。在另一个或附加的实施方案中,该核酸分子包含编码SEQ ID NO:225、226和227所提供的一种或多种保守GPAT氨基酸序列,或与其至少50%、优选至少60%、更优选至少65%相同的氨基酸序列的核苷酸序列。
[1394] 在另一个实施方案中,该核酸分子包含编码DGAT2的核苷酸序列。核苷酸序列可包含i)选自SEQ ID NO:204至211任一的序列,ii)编码包含具有SEQ ID NO:212至219 任一所提供序列的氨基酸的多肽或其生物学活性片段,iii)与i)或ii)至少50%相同,或 iv)在严格条件下与i)至iii)的任一杂交。在一个优选的实施方案中,DGAT2包含SEQ ID NO:204的核苷酸序列和/或编码包含具有SEQ ID NO:212所提供的序列的氨基酸的多肽的核苷酸序列。
[1395] 包含编码可操纵地连接到在细胞中具有活性的启动子的酰基转移酶的核酸分子的细胞可使用本领域的标准程序获得,诸如通过将核酸分子引入细胞,方式例如为磷酸钙沉淀、聚乙二醇处理、电穿孔以及这些处理的组合。细胞转化的其他方法也可使用并包括但不限于通过直接DNA转移或注射将DNA引入植物。转化的植物细胞也可使用如本文所述的农杆菌属介导的转移和加速方法获得。
[1396] 该方法进一步包括使用本领域已知的技术诸如在实施例1中示例性示出的那些技术测定细胞中产生的MAG、DAG和/或TAG水平与不含该核酸的相应细胞相比时是否升高。例如,可在氯仿/甲醇溶液中提取脂质,干燥,以及通过薄层层析(TLC)分离。TAG、 DAG、MAG、游离脂肪酸和其他脂质的鉴定可在碘蒸气染色后用脂质内标进行确认。所得的色谱图可使用PhosphorImager进行分析并根据已知量的内标对MAG、DAG和 TAG的量进行定量,或者可选择地,可向细胞供给sn-2单油酰基甘油[14C]或[14C]甘油 -3-磷酸,并通过液闪计数法对相关放射性进行定量(即,对标记的MAG、DAG和TAG 的量进行定量)。
[1397] 该方法进一步包括鉴定编码在细胞中产生MAG、DAG和/或TAG的能力升高的酰基转移酶的核酸分子。在优选的实施方案中,酰基转移酶催化MGAT途径中的酶反应。在进一步优选的实施方案中,DAG通过MGAT途径而升高(即,脂肪酰基辅酶A对MAG 的酰化通过MGAT催化形成DAG)。在另一个或附加的实施方案中,底物MAG通过也具有磷酸酶活性的GPAT而产生和/或DAG通过DGAT和/或具有DGAT活性的MGAT 由脂肪酰基辅酶A酰化形成TAG。
[1398] 光泽
[1399] 本发明的某些部分涉及测量营养性材料的光泽度作为该材料中脂质水平的标记,较高的光泽度水平与较高的脂质水平相关联。
[1400] 营养性材料的光泽可用已知方法确定。光泽计(反射计)提供了测量光泽强度的可定量方式,通过定义准确的照射和观察条件而确保了测量的一致性。照射源和观测接收角度的配置均允许对小范围的总反射角度进行测量。光泽计的测量结果与从具有给定折射率(refractive index)黑玻璃标准所反射的光的量相关。将样本的反射与入射光的比率,跟光泽标准的比率相比较,而记录为光泽单位。
[1401] 光泽计的测量尺度,光泽单位(GU),是基于高度抛光的参考黑玻璃标准的尺度,所述参考黑玻璃标准具有给定的折射率在特定的角度有100GU的镜面反射率。此标准用于定立100的上端点校准,而低末端点则在完全无光泽表面上定立为0。此尺度适宜于大多数非金属材料。
[1402] 营养性材料光泽度的光学或预期水平可能会在植物物种之间有变化。本领域技术人员能够容易地分析本发明不同植物的营养性材料的脂质含量,并鉴别出适宜的关泽度预定水平,该水平可用作标准在田野中评估从特定植物物种收获营养性材料的最佳时间。实施例
[1403] 实施例1.一般材料和方法
[1404] 以瞬时表达系统在植物细胞中表达基因
[1405] 使用基本上如Voinnet等(2003)和Wood等(2009)所述的瞬时表达系统使基因在植物细胞中表达。将二元载体引入根癌农杆菌菌株AGL1,该二元载体含有通过强组成型 e35S启动子表达的编码区,该启动子包含重复的增强子区域。将用于表达p19病毒沉默抑制子的嵌合二元载体35S:p19单独地引入AGL1,如WO2010/057246中所述。使重组细胞在补充了50mg/L卡那霉素和50mg/L利福平的LB肉汤中在28℃下生长到静止期。然后使细菌在室温下以5000g离心沉淀5分钟,之后在含有10mM MES pH 5.7、 10mM MgCl2和100μM乙酰丁香酮的渗滤缓冲液中重悬到OD600=1.0。然后,将细胞在28℃下振荡温育3小时,之后测量OD600,将达到OD600=0.125最终浓度所需体积的各培养物(包含35S:p19或35S:V2)加到新的管中。最终体积用上述缓冲液补足。然后将叶用培养混合物渗滤,而植株通常在渗滤后再生长三到五天,之后回收叶圆片用于纯化的细胞裂解物制备或总脂质分离。
[1406] 纯化的叶裂解物测定
[1407] 将之前如上所述渗滤的本氏烟草叶组织在含有0.1M磷酸钾缓冲液(pH 7.2)和0.33 M蔗糖的溶液中用玻璃匀化器研磨。将叶匀浆物在4℃下以20,000g离心45分钟,之后收集各上清液。各上清液中的蛋白质含量根据Bradford(1976)使用Wallac1420多标记计数仪和Bio-Rad蛋白测定染料试剂(Bio-Rad Laboratories,Hercules,CA USA)进行测量。酰基转移酶测定根据作了一些修改的Cao等(2007)方法使用100μg蛋白。反应培养基含有
100mM Tris-HCl(pH 7.0)、5mM MgCl2、1mg/mL BSA(无脂肪酸)、200mM蔗糖、40mM冷油酰基辅酶A、16.4μM sn-2单油酰基甘油[14C](55mCi/mmol,American Radiochemicals,Saint Louis,MO USA)或6.0μM[14C]甘油-3-磷酸(G-3-P)二钠盐(150 mCi/mmol,American Radiochemicals)。测定进行7.5、15或30分钟。
[1408] 脂质分析
[1409] 总而言之,用于分析种子或营养性组织中脂质的方法如下:
[1410] 拟南芥种子和其他类似大小的种子:
[1411] (i)脂肪酸成分-种子中脂肪酸的直接甲基化,无破碎种子。
[1412] (ii)总脂肪酸或TAG定量-种子中脂肪酸的直接甲基化,无破碎种子,使用17:0TAG 标准。
[1413] 油菜种子,亚麻荠(Camelina)种子,和其它大小较大的种子:
[1414] (i)单一种子脂肪酸成分-破坏种皮之后种子中脂肪酸的直接甲基化。
[1415] (ii)总提取脂质的汇集的种子脂肪酸成分-在CHCI3/MeOH中破碎种子以及所提取脂质的等分试样(aliquot)的甲基化。
[1416] (iii)汇集的种子总脂质含量(种子油含量)-在破碎种子后,从已知量的干燥的种子进行两次脂质提取用以完全回收种子脂质,其中来自已知量种子的脂质的甲基化以及用 17:0脂肪酸作为内部标准。
[1417] (iv)汇集的种子-纯化的TAG定量-在破碎种子后,从已知量的干燥的种子进行两次脂质提取用以完全回收种子脂质,使用TLC从脂质分馏TAG,以及在硅胶中(in silica) 使用17:0TAG作为内部标准直接甲基化TAG。
[1418] 叶样品:
[1419] (i)总脂质的脂肪酸成分-冻干样品中脂肪酸的直接甲基化。
[1420] (ii)总脂质定量-已知重量的冻干样品中脂肪酸的直接甲基化,以及17:0FFA。
[1421] (iii)TAG定量-由于叶中大量极性脂质的存在,通过TLC将TAG从提取的总脂质中分馏,并在17:0TAG内部标准的存在下甲基化。步骤:冻干样品,称重,脂质提取,从已知量的总脂质提取TAG,在硅胶中直接甲基化TAG以及17:0TAG作为内部标准。
[1422] 所述方法具体如下:
[1423] 拟南芥种子中油含量的分析
[1424] 当要在小种子如拟南芥种子中确定种子油含量时,种子在干燥器中干燥24小时,并将约4毫克的种子转移至含有Teflon衬里螺旋盖的2mL玻璃小瓶中。将溶于0.1毫升甲苯的0.05毫克甘油三十七烷酸酯(triheptadecanoin)加入到小瓶中作为内部标准。通过将0.7ml的甲醇盐酸(Supelco)加入含种子的小瓶来制备种子FAME。种子的破碎对于小种子如拟南芥种子不是必需的。将混合物简短涡旋并在80℃温育2小时。在冷却至室温之后,将
0.3ml的0.9%NaCl(w/v)和0.1ml的己烷加入至小瓶中并在Heidolph Vibramax 110中好好混合10分钟。将FAME收集至0.3ml的玻璃衬管中并用具有如前所述的火焰离子化检测器(FID)的GC分析。
[1425] 首先在市售标准GLC-411(NU-CHEK PREP,INC.,USA)中存在的已知量的相同 FAME所对应的峰面积响应的基础上将单个FAME的峰面积进行了修正。GLC-411含有等量的31种脂肪酸(重量%),范围从C8:0至C22:6。对于不存在于该标准中的脂肪酸的情况,取用最类似的FAME所对应的峰面积。例如,16:1d9的FAME对应的峰面积被用于16:1d7,而C22:6的FAME对应的峰面积被用于C22:5。通过与内部标准量比较,经修正的面积被用于计算样品中每种FAME的量。油主要以TAG的形式储存并且其重量基于FAME的重量计算。通过计算每种FAME的摩尔数并将FAME的总摩尔数除以三来计算甘油的总摩尔数。使用如下方程将TAG计算为甘油与脂肪酰基部分的和: 油的重量%=100x((41x总的FAME mol/3)+(总的FAME g-(15x总的FAME mol)))/g 种子,其中41和15分别是甘油部分和甲基的分子量。
[1426] 通过提取分析亚麻荠种子和油菜种子中的油含量
[1427] 在植物成熟时收获之后,通过在室温将种子储存在含有硅胶作为干燥剂的干燥器中 24小时而将亚麻荠或油菜种子干燥。种子的水分含量通常为6-8%。通过使用氯仿和甲醇的混合物(2/1v/v)在Eppendorf管中用Reicht组织裂解器(tissue iyser)(22频次/秒进行 3分钟)和金属球破碎种子,以从已知重量的经干燥种子中提取总脂质。加入1体积的 0.1M KC1并将混合物摇晃10分钟。在将该混合物于3000rpm离心5分钟后收集下方的非极性相。用2体积的氯仿通过混合10分钟来洗涤余下的上方(水)相。第二个非极性相也被收集并与第一个汇集。在氮气流下将溶剂从提取物的脂质蒸发,并将总干燥脂质溶于已知体积的氯仿。
[1428] 为了测量所提取的材料中脂质的量,加入已知量的17:0-TAG作为内部标准并将来自已知量种子的脂质在1N的甲醇-HCl(Supelco)中于80℃温育2小时。如此制备的 FAME在己烷中提取并由GC分析。基于17:0TAG-FAME的量将单个FAME定量。在从FAME减去酯化甲基之后,通过处以单个FAME的分子量将单个FAME的重量转化为摩尔数。所有FAME的总摩尔数处以三以计算TAG(以及继而的甘油)的摩尔数。然后,将TAG的摩尔数转化为TAG的重量。最后,使用种子重量计算基于种子重量的百分比油含量,其中为了计算油含量的目标假设所有的提取的脂质为TAG或等价于TAG。此方法是基于Li et al.,(2006)。亚麻荠或油菜种子之外的具有类似大小的种子也可以用此方法来分析。
[1429] 也可以通过核磁共振技术测量油菜和其它种子油含量(Rossell and Pritchard,1991),例如,通过脉冲波NMS 100Minispec(Bruker Pty Ltd Scientific Instruments,Germany),或者通过近红外反射光谱如使用NIRSystems Model 5000单色仪。NMR方法可以同时测量水分含量。也可以根据Li et al,(2006),在来自一个批次种子的样品上通过在大约 100℃干燥种子18个小时来测量水分含量。
[1430] 在要确定油菜种子中油的脂肪酸成分时,可以使用用于拟南芥种子(上文)的直接甲基化方法,其中的修改为增加了破坏油菜种皮。此方法从种子提取足够的油以使得可以进行脂肪酸成分分析。
[1431] 通过叶裂解物测定来分析脂质
[1432] 将得自裂解物测定的脂质用氯仿:甲醇:0.1M KCl(2:1:1)提取并回收。将样品中不同的脂质类别在用10%酸浸渍过的硅胶60薄层层析(TLC)板(MERCK,Dermstadt, Germany)上分离。用于从脂质提取物中分馏TAG的溶剂体系由氯仿/丙酮(90/10v/v)组成。各脂质类别通过将平板暴露于碘蒸气而显色,并通过在相同的TLC平板上运行平行可信标准品而鉴定。将平板过夜暴露于磷成像屏,通过Fujifilm FLA-5000磷屏成像仪进行分析,之后液闪计数以进行DPM定量。
[1433] 总脂质分离和分馏
[1434] 通过Bligh and Dyer(1959)所述将包括叶样品的组织冷冻干燥、称重(干重)并提取总脂质,或者通过使用氯仿:甲醇:0.1M KC1(CMK;2:1:1)作为溶剂。在冻干后,通过在每 1cm直径叶样本加入900μL的氯仿/甲醇(2/1v/v)混合物而从本氏烟草叶样品提取总脂质。
在要进行TLC-FID分析时,每0.5mg干叶重量加入0.8μg的DAGE作为内部标准。使用IKAUltra-Turrax组织分解器将样品匀浆,之后加入500μL的0.1M KC1。将样品涡旋,离心5分钟并收集下方的相。通过加入600μL的氯仿、涡旋并离心而将余下的上方的相进行第二次提取。回收下方的相并将其与前次的收集物汇集。在氮气流下将脂质干燥并在每mg叶干重2μL的氯仿中重悬。如上所述(有一些修改)提取红花烟草叶或叶样品的总脂质。如果组合了4个或6个叶片(每个大约1cm2表面积),使用1.6ml的 CMK溶剂,而如果组合了3个或更少的叶片,则使用1.2ml的CMK。在含有金属球的Eppendorf管中用Reicht组织分解器(Qiagen)将冻干的叶组织匀浆3分钟(20频次/sec)。
[1435] 经TLC和转甲基化分离中性脂质
[1436] 将已知体积的总叶提取物(如例如,30μL),载入至TLC硅胶60平板上(1x20cm) (Merck KGaA,Qermany)。在经平衡的含有己烷/DEE/乙酸(70/30/1v/v/v/)溶剂体系的进展槽(development tank)中经TLC来分离中性脂质。通过碘蒸汽而将TAG条带显色,将其从TLC平板中刮下,转移至2mL的GC小管并用N2干燥。将750μL的1N甲醇 -HCl(Supelco Analytical,USA)与已知量的C17:0TAG(如例如,30μg)一起加入至每个小管,作为内部标准用于定量。
[1437] 当分析具体基因组合对油酸水平的影响时,从TLC平板收集TAG和极性脂质条带。接下来,将15μg的C17:0内部标准加入至样品如TAG样品、极性脂质样品和20μL 的总脂质提取物。在N2下干燥之后,加入70μL的甲苯和700μL的甲醇-HCl。
[1438] 通过将混合物在80℃于甲醇-HCl的存在下温育2小时来将用于通过GC分析脂肪酸成分的脂质样品转甲基化。在将样品冷却至室温之后,通过加入350μL的H2O来使反应终止。通过加入350μL己烷、涡旋并在1700rpm离心5min,而从混合物提取脂肪酰甲基酯(FAME)。收集上部的己烷相并转移至具有圆锥形插入管(conical insert)的GC 小管中。蒸发之后,将样品在30μL的己烷中重悬。将1μL注射入GC。
[1439] 通过GC对脂质部分中个别和总的脂肪酸(TFA)的量进行定量,这是通过确定每个峰下的面积并通过与已知量的内部标准的峰面积比较来计算的。使用如下方程将叶中的 TAG含量计算为甘油与脂肪酰基部分的和:重量%TAG=lOOx((41x总FAME的 mol/3)+(总FAME的g-(15x总FAME的mol)))/叶干重的g,其中41和15分别是甘油部分和甲基的分子量。
[1440] 毛细管气-液色谱(GC)
[1441] 使用Agilent Technologies 7890A GC(Palo Alto,California,USA)来分析FAME,其装配有SGE BPX70(70%氰丙基聚硅亚苯基硅氧烷)柱(30m x 0.25mm i.d.,0.25μm膜厚度)、FID、分流/无分流注射器和Agilent Technologies 7693系列的自动取样器和注射器。氦被用作载体气体。以分流模式(50:1比率)在150℃的烘箱温度下注射样品。注射后,-1 -1将烘箱温度保持在150℃1min,继而以30℃·min 升至210℃以及最终以50℃·min 升至
240℃。使用Agilent Technologies ChemStation软件(Rev B.04.03(16),Palo Alto, California,USA)来对峰定量,其中是基于已知量的外部标准GLC-411(Nucheck)和 C17:0-Me内部标准的反应。
[1442] 经Iatroscan对TAG定量
[1443] 将1μL的脂质提取物装载至用于TLC-FID IatroscanTM(Mitsubishi Chemical Medience Corporation-Japan)的一个Chromarod-SII上。继而将色谱棒架(Chromarod rack) 转移至经平衡的进展槽中,所述进展槽含有70mL的己烷/CHCl3/2-丙醇/甲酸 (85/10.716/0.567/0.0567v/v/v/v)的溶剂体系。温育30min之后,将色谱棒架在100℃干燥3min并立即于Iatroscan MK-6s  TLC-FID分析仪(Mitsubishi  Chemical Medience 
Corporation-Japan)上扫描。使用SIC-480II整合软件(版本:7.0-E,SIC  System instruments Co.,LTD-Japan)整合DAGE内部标准和TAG的峰面积。
[1444] 以两个步骤进行TAG定量。首先,在所有样品中扫描DAGE以纠正提取产率,之后选择经浓缩的样品并稀释。接下来,在稀释的样品中以第二次扫描来对TAG进行定量,其中所述扫描是依照使用三硝酸甘油(Sigma-Aldrich)作为外部标准的外部校准。
[1445] 通过GC对叶样品中的TAG定量
[1446] 首先基于商业标准GLC-411(NU-CHEK PREP,Inc.,USA)中存在的已知量的相同 FAME的峰面积反应来纠正单个FAME的峰面积。经纠正的面积被用于计算样品中每种FAME的质量(通过与内部标准比较)。由于油主要以TAG的形式储存,基于每个样品中的FAME的量来计算油的量。通过计算FAME的摩尔数并将FAME的总摩尔数除以3来确定甘油的总摩尔。使用如下公式将TAG的量计算为甘油与脂肪酰基部分的和: 油的重量%=100x((41x总FAME的mol/3)+(总FAME的g-(15x总FAME的mol)))/叶干重的g,其中41和15分别是甘油部分和甲基的分子量。
[1447] 酿酒酵母H1246中的DGAT测定
[1448] 酿酒酵母菌株H1246因四个基因(DGA1、LRO1、ARE1、ARE2)中的敲除突变而完全没有DGAT活性并缺乏TAG和固醇酯。将游离脂肪酸(如1mM 18:1Δ9)加入H1246生长培养基中在不存在DGAT活性的情况下是有毒的。在此类培养基上的生长可因此用作此酵母菌株中存在DGAT活性的指标或用于选择该活性的存在。
[1449] 将酿酒酵母H1246用pYES2构建体(阴性对照)、编码pYES2中拟南芥DGAT1的构建体或编码pYES2中小家鼠MGAT2的构建体转化。向转化体供给[14C]18:1Δ9游离脂肪酸。
[1450] 在单独的实验中,将酿酒酵母H1246用pYES2构建体(阴性对照)、编码pYES2中 Bernadia pulchella DGAT1的构建体或编码pYES2中小家鼠MGAT1的构建体转化,并补给18:1Δ9游离脂肪酸。用pYES2转化的酿酒酵母S288C野生型菌株作为阳性对照。
[1451] 将酵母转化体重悬在无菌mQ水中,并稀释至OD600=1。将样品以四个连续稀释度进一步稀释,每次以1/10进行。将2μL各稀释液与2μL mQ水和2μL未转化的H1246 细胞悬液(OD600=1)一起点样在各平板上(YNBD、YNBG、YNBG+FA)。将平板在30℃下温育6天,然后对生长进行评分。
[1452] 各平板培养基,每块平板40mL培养基
[1453] ·YNBD:最小省却培养基,不含尿嘧啶,含有2%葡萄糖、0.01%NP40和100μL 乙醇。
[1454] ·YNBG:最小省却培养基,不含尿嘧啶,含有2%半乳糖、1%棉子糖、0.01%NP40 和100μL乙醇。
[1455] ·YNBG+FA:最小省却培养基,不含尿嘧啶,含有溶于100μL乙醇的2%半乳糖、1%棉子糖、0.01%NP40和1M C18:1Δ9。
[1456] 实施例2.单酰基甘油酰基转移酶在植物细胞中的组成型表达
[1457] MGAT1
[1458] 使用如实施例1中所述的瞬时表达系统,在本氏烟草叶组织中证实了小家鼠基因编码的单酰基甘油酰基转移酶1(MGAT1)(Yen等,2002)和在这里用作与MGAT1比较的拟南芥二酰基甘油酰基转移酶(DGAT1)(Bouvier-Nave等,2000)的酶活性。
[1459] 通过在T4 DNA聚合酶处理后将含有35S启动子的PstI片段插入载体pORE04的 SfoI位点使末端钝化而制备命名为35S-pORE04的载体(Coutu等,2007)。通过Geneart 合成对甘蓝型油菜进行密码子优化的编码小家鼠MGAT1的嵌合DNA,并命名为 0954364_MGAT_pMA。通过将EcoRI片段内所含的0954364_MGAT_pMA的整个编码区在EcoRI位点插入35S-pORE04而制备命名为35S:MGAT1并编码小家鼠 MGAT1(Genbank登录号Q91ZV4)以在植物细胞中表达的嵌合DNA。含有35S:MGAT1 构建体的载体命名为pJP3184。相似地,通过将BamHl-EcoRV片段内所含的pXZP513E 的整个编码区在BamHl-EcoRV位点插入35S-pORE04而制备编码拟南芥DGAT1 (Genbank登录号AAF19262)以在植物细胞中表达的嵌合DNA 35S:DGAT1。含有 35S:DGAT1构建体的载体命名为pJP2078。
[1460] 将嵌合载体引入根瘤农杆菌菌株AGL1中,这些培养物的细胞在24℃生长室中渗滤进本氏烟草植株的叶组织中。为了能够进行样品之间的直接比较以及减少叶之间的变化,对进行比较的样品在同一叶的两侧上渗滤。一式三份地进行实验。渗滤后,使植物再生长三天,之后获取叶圆片,冷冻干燥,对从样品中提取的脂质进行分馏和定量,如实施例1中所述。该分析表明,MGAT1和DGAT1基因起到增加本氏烟草中叶油水平的作用,具体如下。
[1461] 仅用35S:p19构建体(阴性对照)转化的叶组织含有每mg叶干重平均4μg衍生自 DAG的游离脂肪酸(FFA)以及每mg叶干重平均5μg衍生自TAG的FFA。用35S:p19 和35S:DGAT1构建体(DGAT1表达的对照)转化的叶组织含有每mg叶干重平均4μg衍生自DAG的FFA以及每mg叶干重平均22μg衍生自TAG的FFA。用35S:p19和 35S:MGAT1构建体转化的叶组织含有每mg叶干重平均8μg衍生自DAG的FFA以及每mg叶干重平均44μg衍生自TAG的FFA。用35S:p19、35S:DGAT1和35S:MGAT1 构建体转化的叶组织所含的DAG或TAG水平没有在35S:p19和35S:
MGAT1渗滤中观察到的那些水平高(图2)。另外,在MGAT表达后,与p19对照或DGAT1样品相比,观察到种子中饱和物质的水平降低(表2)。
[1462] 上述数据表明MGAT1酶在促进叶组织中DAG和TAG两者积聚方面远比DGAT1 酶的活性高。与表达DGAT1时相比,MGAT1基因的表达导致叶组织中的TAG和DAG 的积聚达两倍高。考虑到MGAT是一种在小鼠肠中表达的酶,而小鼠肠是与植物叶大相径庭的生物系统,因此该结果非常令人吃惊并出乎意外。此研究首次证实了植物细胞中的异位MGAT表达。
[1463] 用小家鼠MGAT1渗滤的叶组织相对于仅用拟南芥DGAT1渗滤的叶组织积聚了两倍高的DAG和TAG。鉴于小鼠MGAT只具有如DGAT的非常低的活性,TAG的产生效率也令人吃惊并出乎意外。用编码MGAT1和DGAT1两者的基因渗滤的叶组织相比仅有MGAT1的叶样品并未积聚明显更多的TAG。图1是各种TAG积聚途径的图示,它们中的大多数均在DAG处汇合,DAG是脂质合成中的中心分子。例如,MAG、DAG 和TAG可通过各种酶活性(包括转酰基化、脂肪酶、MGAT、DGAT和PDAT)而相互之间转化。在MGAT表达后也注意到了饱和物质水平的降低。
[1464] MGAT2
[1465] 通过将EcoRI片段内所含的整个MGAT2编码区在EcoRI位点插入35S-pORE04而制备命名为35S:MGAT2并编码小家鼠MGAT2以在植物细胞中表达的嵌合DNA。也使用如实施例1中所述的瞬时表达系统,在本氏烟草叶组织中证实了小家鼠基因编码的单酰基甘油酰基转移酶2(MGAT2)(Yen,2003)(Genbank登录号Q80W94)和在这里用作与 MGAT2比较的拟南芥DGAT1(Bouvier-Nave等,2000)的酶活性。
[1466] 与对照相比时,DGAT1表达将叶TAG提高5.9倍,MGAT2提高7.3倍, MGAT2+DGAT1的组合提高9.8倍(图3)。仅有MGAT2时,在导致TAG的这种明显升高方面的能力因多种原因而出乎意料。首先,存在于叶组织中的底物MAG的量已知较低,预计来自此底物的TAG积聚不会大量升高。其次,只添加MGAT活性(即,添加无DGAT活性的MGAT2)预计会产生DAG而非TAG,特别是在通常只存在很低的天然 DGAT活性的叶环境中。
[1467] 讨论
[1468] 本发明人令人吃惊地证实,MGAT基因的转基因表达导致植物细胞中脂质产率的明显提高。本发明人了解到,Tumaney等人已分离出了具有一些MGAT活性的DGAT,并且他们在尝试克隆如本文所定义的编码MGAT的基因时未能获得成功。Tumaney等人(2001)报道了在花生中的MGAT活性并分离出了负责这种活性的酶。然而,Tumaney 等人并未公布DGAT活性的测试结果,因此看来所报道的酶是具有一些MGAT活性的 DGAT。实际上,此前的工作在鉴定其他物种中的任何MGAT活性时均以失败告终(Stobart等,1997)。此外,令人吃惊的是,Tumaney等人分离的酶是可溶性胞质酶,而非膜结合酶。
[1469] 近来,研究人员已从不成熟花生(Arachis hypogaea)种子中鉴别出微粒体膜结合单酰基甘油酰基转移酶(MGAT)。可以使用粗溶剂和两性离子洗涤剂的组合来将该MGAT从微粒体膜上溶解,并且分离以及表征了功能上有活性的14S多蛋白复合物。已鉴别出油体蛋白3(OLE3)为该多蛋白复合物的一部分,其能够发挥双功能活性如将单酰基甘油 (MAG)酰基化成二酰基甘油(DAG)和磷脂酶A2(PLA2;Parthibane et al.,2012)。
[1470] 实施例3.叶提取物中的转基因MGAT活性的生物化学证明
[1471] 通过已如实施例1中所述用35S:MGAT1、35S:MGAT2和35S:DGAT1浸润的本氏烟草叶组织制备细胞裂解物。对仅含有35S:p19构建体的菌株(阴性对照)、与35S:p19 菌株一起的35S:MGAT2菌株,以及35S:MGAT2和35S:DGAT1农杆菌菌株与35S:p19 菌株的混合物,均一式三份地进行了单独的叶渗滤。三天后收获一式三份样品,通过机械法组织裂解和离心制备纯化的细胞裂解物。通过如实施例1所述向裂解物供给 [14C]MAG而对纯化的细胞裂解物的MGAT活性进行比较。数据在图4中示出。
[1472] 在35S:p19对照样品中观察到了很少的MGAT活性,因为在整个测定中大部分放射性保留在MAG中。相反,35S:MGAT2样品中的大部分标记的MAG快速转化成 DAG(图4,中图),表明由35S:MGAT2构建体表达了强MGAT活性。此外,还产生了大量的TAG。在35S:MGAT2样品中观察到的TAG产生可能是由于天然本氏烟草DGAT 活性所致,或者通过另一条TAG合成路线产生。TAG的产生量通过进一步添加 35S:DGAT1而大大提高(图4,右图),表明MGAT2酶产生了可在植物营养性组织中通过DGAT1转化成TAG的DAG。
[1473] 实施例4.叶提取物中产生MGAT可用的MAG的生物化学证明
[1474] 在使用叶裂解物的实施例3中所述的体外测定中,外源供应底物(sn-2MAG和油酰基辅酶A),而完整植物组织中的体内MGAT活性则需要天然存在这些底物。此前已有人报道了各种植物组织中存在低水平的MAG(Hirayama和Hujii,1965;Panekina等, 1978;Lakshminarayana等,1984;Perry&Harwood,1993)。为了测试MGAT2是否能够使用天然植物途径产生的MAG,重复上述实验,但这次向裂解液供给[14C]G-3-P。所得的数据在图5中示出。
[1475] 在所有样品中均观察到了带标记的MAG的产生,表明在植物叶裂解物中由G-3-P 从头产生了MAG。还在所有样品中观察到了带标记的DAG和TAG产物,尽管这些产物在35S:p19对照样品中相对较低,表明通过内源Kennedy途径产生的这些中性脂质在该样品中相对较低。相反,在MGAT2和MGAT2+DGAT1样品中的大部分标记物出现在DAG和TAG库中,表明外源添加的MGAT通过天然植物途径催化由标记的G-3-P 产生的MAG的转化。
[1476] 实施例2至4证实了若干个要点:1)叶组织可由G-3-P合成MAG,使得MAG可由在叶组织中表达的外源MGAT使用;2)甚至衍生自哺乳动物肠的MGAT也可在未知具有内源MGAT的植物组织中发挥作用,需要与脂质合成中涉及到的其他植物因子成功地相互作用;3)通过外源MGAT活性产生的DAG可由植物DGAT或外源DGAT使用,以产生TAG;以及4)外源MGAT的表达可导致植物组织中TAG水平的大大提高,该水平至少和通过外源拟南芥DGAT1表达所产生的水平一样高。
[1477] 实施例5.DGAT1、MGAT1和MGAT2在酵母中的表达
[1478] 通过将编码拟南芥DGAT1、小家鼠MGAT1和小家鼠MGAT2的基因插入pYES2 载体以产生pYES2:DGAT1、pYES2:MGAT1和pYES2:MGAT2,而构建嵌合酵母表达载体将这些构建体在因四个基因(DGA1、LRO1、ARE1、ARE2)中的敲除突变而完全没有 DGAT活性并缺乏TAG和固醇酯的酿酒酵母菌株H1246中转化。酵母菌株H1246能够通过外源添加的脂肪酸合成DAG,但是由于敲除突变不能将DAG转化成TAG。向转化的酵母培养物供给[14C]18:1Δ9,然后如实施例1中所述提取总脂质并通过TLC分馏。代表性TLC板的放射自显影图在图6中示出。
[1479] 对于含有DGAT1(阳性对照)和哺乳动物MGAT1的酵母细胞,观察到了TAG的形成,表明DGAT活性的存在,但在含有天然小家鼠编码区所编码的MGAT2的细胞中却未观察到。结论是,小鼠的MGAT1也在酵母细胞中具有DGAT活性,并因此作为双功能MGAT/DGAT酶发挥作用,而MGAT2无可检测的DGAT活性因而仅仅是MGAT。包括MGAT2编码区(经密码子优化用于在酵母中表达)的构建体在使用酵母微粒体和标记的MAG底物测试时展现出MGAT活性(产生DAG),而类似的构建体(针对在油菜中的表达而密码子优化)却并未在酵母微粒体中显示出产生DAG。此实验表明了针对要表达异源编码区的生物体进行密码子优化的益处。
[1480] 实施例6.单酰基甘油酰基转移酶在植物、种子和真菌中的表达
[1481] MGAT1在拟南芥种子中的表达
[1482] 将编码小家鼠MGAT1并受种子特异性启动子(FP1,截短的甘蓝型油菜napin启动子)控制的基因用于生成稳定转化的拟南芥植物和后代种子。通过将含有侧翼为FP1启动子和大豆凝集素多聚腺苷酸化信号的EcoRI位点的SalI片段插入载体pCW141的 SalI-XhoI位点而制备命名为pJP3174的载体。pCW141载体还含有作为筛选标记基因的 FP1驱动的、内含子中断的、种子分泌的GFP。通过将EcoRI片段内所含的构建体 0954364_MGAT_pMA的整个编码区在EcoRI位点插入pJP3174从而生成pJP3179而制备命名为FP1:MGAT1-GFP的嵌合基因。将该嵌合载体引入根瘤农杆菌菌株AGL1,将得自转化农杆菌培养物的细胞通过浸花转化法用于处理拟南芥(哥伦比亚生态型)植株 (Clough和Bent,1998)。成熟后,将得自经处理的植株的种子在Leica MZFLIII解剖显微镜和ebq 100的汞灯下观察。对十五粒转基因种子(强GFP阳性)和十五粒非转基因种子(GFP阴性)进行分离,将各组汇集。如实施例1中所述,分析GFP阳性和GFP阴性库的总脂肪酸含量。该分析提供了用MGAT构建体转化的种子的平均脂肪酸含量和组成,但这些种子是在可能包含半合子和纯合转化种子的群体中。
[1483] 该分析揭示,MGAT1基因起到增加拟南芥种子中种子油水平的作用,其中十五粒非转基因种子(对照,与野生型相同)平均含有69.4μg总脂肪酸,而用GFP基因转化并因此可能包含FP1:MGAT1基因构建体的十五粒转基因种子平均含有71.9μg总脂肪酸。相对于对照(野生型),这使油含量提高了3.5%。该分析还揭示,MGAT基因起到在种子中富集多不饱和脂肪酸的作用,如通过从种子获得的总提取脂质的脂肪酸组成所见。具体地讲,存在的ALA的量作为从种子提取的总脂肪酸的百分比从16.0%增至19.6%。相似地,脂肪酸20:2n6的百分比从1.25%增至1.90%,脂肪酸20:3n3的百分比从0.26%增至0.51%(表2)。
[1484] 表2.MGAT表达对种子脂肪酸组成的影响
[1485]
[1486] 开展了进一步的实验,其中对FP1:MGAT1-GFP嵌合DNA进行修饰以移除GFP基因。将命名为FP1:MGAT1的该基因构建体转化到FAD2突变的拟南芥株系中。根据实施例1测定抗生素抗性T1植株的T2种子以及在这些植株旁边生长的亲本品系的总脂肪酸含量。数据在表3中示出。得自对照品系的种子的平均总脂肪酸为347.9μg/100粒种子,而转基因种子的平均值则为381.0μg/100粒种子。当排除对照株系C6的数据以确定平均值时,对照的平均值为370μg/100粒种子。转基因种子中的油含量与非转化种子中的油含量相比相对而言提高了约3%。
[1487]
[1488]
[1489] 将小鼠MGAT2基因的编码区(为在植物细胞中表达而密码子优化)取代上述构建体中的MGAT1并引入拟南芥中。在温室中以随机排列分布种植每个转基因系的30棵植物(T1和T2植物,产生T2-和T3-代种子),并与对照植物比较。来自所述转基因植物的种子相对于对照种子提高了其油含量(图7)。T3转基因种子的平均TAG百分比与未经转化的种子中的TAG百分比相比显示出大约8%的相对提高(表4)。在转基因种子中观察到了TAG中多不饱和脂肪酸(特别是ALA)的显著提高,以及饱和脂肪酸(如棕榈酸和硬脂酸)的降低。另外,提高的TAG水平和改变的脂肪酸成分在T3代中比在T2种子中表现得更明显,据推断是由于T3种子中转基因的纯合状态。
[1490] 表4.与未经转化的对照种子相比,提取自表达MGAT2的拟南芥T2和T3种子的TAG中TAG水平和脂肪酸组成
[1491] C14:0 C16:0 C16:1 C18:0 C18:1d9 C18:1d11 C18:2 C18:3 对照 0.1 8.1 0.3 3.3 13.2 1.8 28.4 20.0T2种子 0.1 7.2 0.2 2.8 13.0 1.3 27.9 24.3
T3种子 0.1 6.1 0.2 2.5 12.3 1.2 28.4 26.7
               
  C20:0 C20:1 20:1iso 20:2n6 C22:1 C24:0 24:1 种子重量的%TAG
  2.2 17.2 1.9 1.8 1.2 0.3 0.2 32.4
  1.6 14.8 3.1 1.8 1.2 0.3 0.2 37.9
  1.8 15.3 1.5 1.9 1.5 0.4 0.2 40.2
[1492] MGAT1在欧洲油菜种子中的表达
[1493] 将用于在拟南芥种子中表达小家鼠MGAT1的载体FP1:MGAT1用于生成转化的油菜植株。将载体通过标准电穿孔程序引入根瘤农杆菌菌株AGL1。使培养物在150rpm 搅拌下在28℃的LB培养基中过夜生长。通过在4000rpm下离心5分钟收集细菌细胞,使用Winans′AB(Winans,1988)进行洗涤,然后重悬在10mL Winans′AB培养基(pH 5.2) 中,并在添加100μM乙酰丁香酮下,与卡那霉素(50mg/L)和利福平(25mg/L)一起过夜生长。感染欧洲油菜细胞前两小时,加入亚精胺(120mg/L),并用新鲜AB培养基将细菌最终密度调节到0.3-0.4的OD 
600nm。将得自在1/2MS(Murashige-Skoog,1962)上生长8天大的欧洲油菜幼苗的新分离子叶柄或在含有1mg/L噻苯隆(TDZ)+0.1mg/Lα- 萘乙酸(NAA)的MS培养基上预处理3-4天的下胚轴段用10mL农杆菌培养物感染5分钟。然后将农杆菌感染的外植体(子叶柄和下胚轴)涂在无菌滤纸上,以除去多余的农杆菌,并转移到补充或未补充不同抗氧化剂(L-半胱氨酸
50mg/L和抗坏血酸15mg/L)的共培养培养基(具有1mg/L TDZ+0.1mg/L NAA+100μM乙酰丁香酮的MS培养基)中。将所有平板用石蜡密封,在23-24℃的暗处温育48小时。
[1494] 然后将共培养的外植体(子叶柄和下胚轴)用无菌蒸馏水+500mg/L头孢噻肟+50 mg/L特美汀洗涤10分钟,在无菌蒸馏水中漂洗10分钟,在无菌滤纸上吸干,转移到预选培养基(MS+1mg/L TDZ+0.1mg/L NAA+20mg/L硫酸腺嘌呤(ADS)+1.5mg/L AgNO3+250mg/L头孢噻肟和50mg/L特美汀)并在24℃下以16小时/8小时的光周期培养五天。然后将它们转移到含有1.5mg/L草铵膦的选择培养基(MS+1mg/L TDZ+0.1 mg/L NAA+20mg/L ADS+1.5mg/L AgNO3+250mg/L头孢噻肟和50mg/L特美汀)中,在 24℃下以16小时/8小时的光周期培养4周,其中两周一次传代培养到相同的培养基上。将具有绿色愈伤组织的外植体转移到长芽培养基(MS+1mg/L激动素+20mg/L ADS+ 1.5mg/L AgNO3+250mg/L头孢噻肟+50mg/L特美汀+1.5mg/L草铵膦)并再培养2-3 周。将从抗性外植体长出的芽转移到芽伸长培养基(具有
0.1mg/L赤霉酸+20mg/L ADS +1.5mg/L AgNO3+250mg/L头孢噻肟+1.5mg/L草铵膦的MS培养基)并再培养两周。选择2-3cm长的健康芽,转移到生根培养基(具有1mg/L NAA+20mg/L ADS+1.5mg/L AgNO3+250mg/L头孢噻肟的1/2MS)并培养2-3周。将具有根的完全长成的芽转移到盆(育苗混合物)中,在生长室中生长两周,随后转移到温室。确认了十六个单独的转化体为FP1:MGAT1构建体转基因的,并使它们在温室条件下正常生长。植株的生长表现正常,并且植株正常繁殖、开花和结实。使植株生长到成熟,收获得自转化植株的种子。分析了来自一些转化的植株的种子的油含量和脂肪酸组成。来自这些初步分析的数据在油含量和脂肪酸组成上显示出变化性,可能是由于所述植物在不同的时间种植以及在不同的环境条件下。为了减低变化性,产生了表达MGAT1的T1植株并在与相同表型的对照(野生型,Oscar品系)植株一样的条件下种植,并比较了油含量。
[1495] MGAT1在陆地棉种子中的表达
[1496] 将用于在拟南芥种子中表达小家鼠MGAT1的相同种子特异性嵌合基因用于生成转化的陆地棉植株。通过标准电穿孔程序将命名为FP1:MGAT1的载体引入根瘤农杆菌菌株AGL1,将得自农杆菌培养物的细胞用于将嵌合DNA引入陆地棉品种Coker315的细胞。将从10天大的棉苗离体的子叶用作外植体,用根瘤农杆菌感染并共培养两天的时间。然后在含有0.1mg/L 2,4-D、0.1mg/L激动素、50mg/L硫酸卡那霉素和25mg/L头孢噻肟的MS培养基(Murashige和Skoog,1962)上进行六周的选择。在28℃下将衍生自子叶外植体的健康愈伤组织转移到含有5mg/L 6-(γ,γ-二甲基烯丙基氨基)嘌呤(2ip)、0.1 mg/L萘乙酸(NAA)、
25mg/L卡那霉素和250mg/L头孢噻肟的MS培养基持续第二段为期六周的时间。使在温育约六至十周后形成的体细胞胚在相同的培养基上但不添加植物激素或抗生素的情况下发芽和维持。将由体细胞胚发育成的苗转移到土壤中,以28℃ /20℃(白天/晚上)的生长温度在温室中维持,直到发育出叶和根。使含有FP1-MGAT1构建体的10株独立的初代转基因植物(T0)在温室中生长,开花,产生含有种子的棉铃。在成熟时收获种子。为了增强油含量分析的可靠性,从该10株初代转基因植株的每一个都建立5株植株,并对成熟的T2种子进行油含量分析。MGAT1的种子特异性表达提高油含量,并提高棉花种子油中多不饱和脂肪酸的百分比。
[1497] 稳定转化后MGAT1和MGAT2基因在本氏烟草植株中的表达
[1498] 将本氏烟草用实施例2中所述的35S:MGAT1构建体稳定转化。通过标准电穿孔程序将35S:MGAT1引入根瘤农杆菌菌株AGL1。使转化的细胞在补充了卡那霉素(50mg/L) 和利福平(25mg/L)的固体LB培养基上生长,在28℃温育两天。将单一集落用于启动新的培养。在48小时的有力培养后,以2,000x g离心收集细胞,移除上清液。将细胞以 OD600=0.5的密度重悬在含有50%LB和50%MS培养基的新鲜溶液中。
[1499] 切下体外生长的本氏烟草叶样品,在浸入根瘤农杆菌溶液的同时用锋利的解剖刀切成大小约0.5-1cm2的方形部分。使淹没在根瘤农杆菌中的创伤本氏烟草叶碎片在室温下静置10分钟,然后在无菌滤纸上吸干,再转移到无补充物的MS平板上。在24℃下的两天共培养期后,用无菌液体MS培养基将外植体洗涤三次,然后用无菌滤纸吸干,再放到补充了1.0mg/L苄氨基嘌呤(BAP)、0.25mg/L吲哚乙酸(IAA)、50mg/L卡那霉素和250mg/L头孢噻肟的选择性MS琼脂上。将平板在24℃温育两周,以使转化的本氏烟草叶碎片发育出芽。
[1500] 为了在体外形成生根的转基因植株,将健康的绿芽切断,转移到装有补充了25μg/L IAA、50mg/L卡那霉素和250mg/L头孢噻肟的MS琼脂培养基的200mL组织培养盆中。从转基因芽获取足够大的叶圆片,冷冻干燥,用于如实施例1中所述的TAG分馏和定量分析(表5)。与对照品系中85.02μg/100mg干重叶组织的平均TAG含量相比,最佳的35S:MGAT1本氏烟草植株具有204.85μg/100mg干重叶组织的TAG含量,这表示TAG含量升高了241%。
[1501] 将本氏烟草也用实施例2中所述的35S:MGAT2构建体以及对照二元载体pORE4 稳定转化(表6)。与对照株系中9.5μg/100mg干重叶组织的TAG含量相比,最佳的 35S:MGAT2本氏烟草植株具有79.0μg/100mg干重叶组织的TAG含量,这表示TAG 含量升高了731%。TAG部分的脂肪酸谱也发生改变,其中饱和脂肪酸16:0和18:0的水平明显降低,而多不饱和脂肪酸尤其是18:3ω3(ALA)的水平升高(表6)。得自相同叶样品的极性脂质的脂肪酸谱不受明显影响,表明非极性脂质的脂肪酸组成的变化是真正存在的。该实验中的对照植株比使用35S:MGAT1构建体的先前实验中的植株小,并在生理学上是不同的,这可能对一个实验与另一个实验之间对照植株的油含量不同给出了解释。使用大小和生理相同的植株进行直接将
35S:MGAT1和35:MGAT2构建体与对照植株进行比较的实验。
[1502] 使用具有重复增强子区域(e35S)的35S启动子制备了一组新的组成型二元表达载体。如下制备35S:MGAT1#2(pJP3346)、35S:MGAT2#2(pJP3347)和35S:DGAT1#2 (pJP3352):首先将BamHI-EcoRI片段内所含的e35S启动子在BamHI-EcoRI位点克隆进pORE04以产生pJP3343。然后通过分别将MGAT1和MGAT2基因克隆进pJP3343 的EcoRI位点而制备pJP3346和pJP3347。通过将XhoI-AsiSI位点内所含的拟南芥DGAT1 克隆进pJP3343的XhoI-AsiSI位点而制备pJP3352。
[1503] 将农杆菌菌株AGL1中的pJP3346、pJP3347和pJP3352如上所述用于转化本氏烟草。回收十四棵经确认的转基因植株的pJP3346,以及22棵pJP3347。已通过pJP3352 生成了许多卡那霉素抗性的转化芽。在用MGAT1或MGAT2转化的植株上进行了转基因的表达分析。选择具有高表达水平的植株。对用拟南芥DGAT1转化的植株进行表达分析。植物正常生长,并使其长至成熟。成熟时收获种子:将得自高表达后代的种子直接播种到土壤上,对包括纯合和杂合植株两者的T2分离群进行脂质分析。表达高水平 MGAT1或MGAT2的植株叶的油含量与用拟南芥DGAT1转化的植株或对照植株相比明显升高。与空白情形(null event)相比,MGAT2转基因植株显示出不包含脂肪酸18:1的显著提高,以及1%的总脂肪酸含量的相对提高(表7)。
[1504] 将AGL1中的pJP3346、pJP3347和对照载体也如上所述用于转化拟南芥。鉴定了 25棵经确认的含有来自pJP3346的T-DNA的转基因T2植株,以及43棵pJP3347的相应转基因植株。对转基因植株进行表达分析。收获高表达后代的种子,直接播种到土壤上。对得自T2和T3后代(包括不含转基因的分离子)的叶进行脂质分析,包括油含量。在对MGAT转基因纯合的植株中获得了最高水平的TAG。
[1505]
[1506]
[1507]
[1508] 每个转基因系的30棵植株以随机安排的方式在温室中种植(以及亲代对照植物)。分析了T2种子的油含量,与亲代种子的总脂肪酸含量相比,其油含量(总脂肪酸水平) 显示出提高了大约2%(图8)。
[1509] MGAT1在稳定转化的白三叶草(Trifolium repens)植株中的表达
[1510] 将编码小家鼠MGAT1的嵌合基因用于转化另一种双子叶植物白三叶草。将含有嵌合基因35S:MGAT1和35S:DGAT1的载体通过标准电穿孔程序引入根瘤农杆菌。两种载体还含有35S:BAR选择标记基因。使转化的农杆菌细胞在补充了卡那霉素(50mg/L) 和利福平(25mg/L)的固体LB培养基上生长,在28℃温育两天。将单一集落用于启动各构建体新的培养。在48小时的有力培养后,将农杆菌培养物用于处理已从吸水饱和种子解剖出来的海发白三叶草(cv.Haifa)子叶,如Larkin等人(1996)所述。在共培养三天后,将外植体暴露于5mg/L PPT以选择转化的芽,然后转移到生根培养基形成根,再转移到土壤。得到含有MGAT1的转化植株。35S启动子在转化植株的细胞中组成型表达。油含量至少在营养性组织诸如叶中升高。
[1511] MGAT在稳定转化的大麦中的表达
[1512] 将含有小家鼠MGAT1的嵌合载体用于产生稳定转化的单子叶植物大麦。通过将整个小家鼠MGAT1和拟南芥DGAT1编码区分别克隆进pWVEC8-Ubi而构建含有嵌合基因Ubi:MGAT1和Ubi:DGAT1的载体。将含有嵌合基因Ubi:MGAT1和Ubi:DGAT1的载体通过标准电穿孔程序引入根瘤农杆菌菌株AGL1。使转化的农杆菌细胞在补充了卡那霉素(50mg/L)和利福平(25mg/L)的固体LB培养基上生长,将平板在28℃温育两天。将各细菌的单一集落用于启动新的培养。
[1513] 在48小时的有力培养后,根据公开的方法(Tingay等,1997;Bartlett等,2008)但作出一些修改,将农杆菌培养物用于转化黄金大麦(cv.Golden Promise)成熟胚中的细胞。简言之,从未成熟的颖果分离长度为1.5到2.5mm之间的胚,去除胚轴。将所得的外植体与转基因农杆菌共培养2-3天,然后在暗处在含有特美汀和潮霉素的培养基上培养 4-6周以生成胚性愈伤组织,再移到低光照条件下的过渡培养基两周。然后将愈伤组织转移到再生培养基以允许芽和根再生,再转移到土壤中。得到转化植株,然后转移到温室。使MGAT1编码区在Ubi启动子控制下在转化植株的细胞中组成型表达。产生转基因植株并分析了其组织的油含量。由于在第一次转化时所得到的转基因情形数目低,从数据中不能得出统计学显著的结论。
[1514] 为在植物细胞中表达而密码子优化的小鼠MGAT2基因的编码区取代上述构建体中的MGAT1,并如上所述引入大麦中。所得转基因植株的营养性组织的油含量升高。
[1515] MGAT在酵母细胞中的表达
[1516] 将包含小家鼠MGAT1的嵌合载体用于转化酵母,在该实施例中为酿酒酵母,这是适合通过发酵产生油的真菌微生物。通过将EcoRI片段内所含的命名为 0954364_MGAT_pMA的构建体的整个编码区在EcoRI位点插入pYES2从而生成 pJP3301而制备基因构建体Gal1:MGAT1。相似地,通过将整个拟南芥DGAT1编码区插入pYES2制备在这里用作比较并单独编码拟南芥DGAT1酶的基因构建体 Gal1:DGAT1。通过热休克将这些嵌合载体引入酿酒酵母菌株S288C中,在含有2%棉子糖作为唯一碳源的酵母基本培养基(YMM)平板上选择转化体。在含有2%棉子糖作为唯一碳源的液体YMM中建立克隆接种培养物。将得到的实验培养物接种到含有1% NP-40的YMM中,达到约0.3的OD600。使培养物在28℃振荡(约100rpm)条件下生长,直到OD600为约1.0。此时,将半乳糖加入达到2%(w/v)的最终浓度。将培养物在 25℃再振荡培养48小时,然后离心收获。将细胞沉淀用水洗涤,然后冷冻干燥,用于如实施例1所述进行脂质类别分馏和定量分析。Gal启动子在转化酵母细胞中诱导表达,从而提高细胞中的油含量。
[1517] 为在酵母细胞中表达而密码子优化的小鼠MGAT2基因的编码区取代上述构建体中的MGAT1,并引入酵母中。所得的转基因细胞的油含量升高。还将基因引入含油酵母、解脂耶氏酵母中以提高油含量。
[1518] MGAT在藻类细胞莱茵衣藻中的表达
[1519] 将含有小家鼠MGAT1的嵌合载体用于稳定转化藻类细胞。通过将MGAT1编码区克隆进通过莱茵衣藻RBCS2启动子表达的含有花椰菜花叶病毒35S启动子盒和巴龙霉素抗性基因(氨基糖苷-O-磷酸转移酶VIII)的克隆载体中而制备命名为35S:MGAT1的基因构建体。通过改良微玻璃珠方法(Kindle,1990)将35S:MGAT1单独引入5x107个 cc503(莱茵衣藻的细胞壁缺陷菌株)的对数培养物。两种载体还含有BLE抗性基因作为选择标记基因。简而言之,使保持在约24℃的TAP琼脂平板上的非转化细胞的集落经四天生长到约5x106个细胞/mL,于室温将所得的细胞在3000g下离心沉淀3分钟,然后在300μL TAP培养基中重悬以得到5x107个细胞。将300μL 0.6mm直径的玻璃珠、 0.6μg溶于5μL和100μL 20%PEG MW8000中的质粒加入,将混合物以最大速度涡旋 30秒,然后转移到10mL TAP,在暗处振荡温育16小时。
将细胞离心沉淀,重悬在200 μL TAP中,然后接种到含有5mg/L博莱霉素的TAP平板上,在暗处温育3周。将转化的集落传代培养到新的TAP+博莱霉素5mg/L平板,然后使它们在标准培养基条件下通过博莱霉素筛选而长大。离心收获后,将细胞沉淀用水洗涤,然后冷冻干燥,用于如实施例1中所述进行脂质类别分馏和定量分析。35S:MGAT1启动子在转化的藻类细胞中组成型表达。细胞的油含量明显升高。
[1520] 为在植物细胞中表达而密码子优化的小鼠MGAT2基因的编码区取代上述构建体中的MGAT1,并引入衣藻中。所得转基因细胞中的油含量明显升高。
[1521] MGAT在稳定转化的羽扇豆中的表达
[1522] 将包含小家鼠MGAT1的嵌合载体用于转化豆科植物羽扇豆。如Pigeaire等人(1997) 所述,将农杆菌中的嵌合载体35S:MGAT1和35S:DGAT1用于转化羽扇豆。简言之,将枝条尖外植体与转基因农杆菌共培养,然后用PPT溶液(2mg/ml)彻底润湿,再转移到无PPT的再生培养基上。将枝条尖发育的多个腋生枝切下到含有20mg/L PPT的培养基上,将存活的枝条转移到含有20mg/L PPT的新鲜培养基中。然后将健康的枝条转移到土壤中。35S启动子在转化植株的细胞中组成型表达,从而提高营养性组织和种子中的油含量。种子特异性启动子用于进一步提高转基因羽扇豆种子中的油含量。
[1523] 为在植物细胞中表达而密码子优化的小鼠MGAT2基因的编码区取代上述构建体中的MGAT1,并引入羽扇豆中。所得转基因植株的种子和营养性组织的油含量升高。
[1524] MGAT在稳定转化的两色高梁中的表达
[1525] 将含有小家鼠MGAT1的嵌合载体用于稳定转化两色高梁。如Gurel等人(2009)所述将根瘤农杆菌菌株AGL1中的Ubi:MGAT1和Ubi:DGAT1用于转化两色高梁。将农杆菌首先在4℃下以5,000rpm离心5分钟,然后用液体共培养基稀释到OD550=0.4。将之前分离的未成熟胚随后用农杆菌悬液完全覆盖15分钟,然后在24℃于暗处在共培养基上以盾片侧向上培养2天。将未成熟的胚然后转移到含有100mg/L羧苄青霉素以抑制农杆菌生长的愈伤组织诱导培养基(CIM)中,并保持4周。然后将组织转移到再生培养基中以发芽生根。Ubi启动子在转化植株的细胞中组成型表达,从而提高至少营养性组织中的油含量。
[1526] 为在植物细胞中表达而密码子优化的小鼠MGAT2基因的编码区取代上述构建体中的MGAT1,并引入高粱中。所得转基因植株的营养性组织的油含量升高。
[1527] MGAT在稳定转化的大豆植株中的表达
[1528] 将编码小家鼠MGAT1的嵌合基因用于稳定转化可用于产油的另一种豆科植物大豆。如Zhang等人(1999)所述,将农杆菌中的35S:MGAT1用于转化大豆。将农杆菌与得自五天大的幼苗的子叶外植体共培养三天。然后将外植体在补充了1.67mg/L BAP和 5.0mg/L草铵膦的Gamborg B5培养基上培养四周,之后将外植体传代培养到含有MS 大量盐和微量盐以及B5维生素(MS/B5)的培养基,其补充了1.0mg/L玉米素核苷、0.5 mg/L GA3和0.1mg/L IAA,用1.7mg/L或2.0mg/L的草铵膦改良。使长枝条在补充了 0.5mg/L NAA的MS/B5生根培养基上生根,无需进一步的草胺磷筛选。35S启动子在转化植株的细胞中组成型表达,从而提高营养性组织和种子中的油含量。
[1529] 为在植物细胞中表达而密码子优化的小鼠MGAT2基因的编码区取代上述构建体中的MGAT1,并引入大豆中。所得转基因植株的营养性组织和种子的油含量升高。
[1530] MGAT在稳定转化的玉米中的表达
[1531] 将编码小家鼠MGAT1的嵌合基因用于稳定转化玉米。如Gould等人(1991)所述,将含有35S:MGAT1和35S:DGAT1的载体用于转化玉米。简言之,将枝条尖外植体与转基因农杆菌共培养两天,然后转移到含有卡那霉素和羧苄西林的MS盐培养基上。多轮传代培养后,转化的芽和根同时形成,然后移植到土壤中。35S启动子在转化植株的细胞中表达,从而提高营养性组织和种子中的油含量。
[1532] 为在植物细胞中表达而密码子优化的小鼠MGAT2基因的编码区取代上述构建体中的MGAT1,并引入玉米中。所得转基因植株的营养性组织和种子的油含量升高。可选择地,使MGAT编码区在胚乳特异性启动子诸如玉米蛋白启动子或得自单子叶植物的胚特异性启动子的控制下表达,以增强表达和提高种子中的油含量。将另外的编码具有磷酸酶活性的GPAT诸如拟南芥GPAT4或GPAT6的嵌合基因与MGAT组合引入玉米中,从而进一步提高玉米种子中的油含量。
[1533] MGAT在稳定转化的油棕(棕榈油)中的表达
[1534] 将编码小家鼠MGAT1的嵌合基因用于稳定转化油棕。使用农杆菌中命名为 Ubi:MGAT1和Ubi:DGAT1的嵌合载体。48小时的有力培养后,如Izawati等人(2009) 所述将细胞用于转化油棕。Ubi启动子在转化植株的细胞中组成型表达,从而提高至少果实和种子中的油含量,并可用于获得油。
[1535] 为在植物细胞中表达而密码子优化的小鼠MGAT2基因的编码区取代上述构建体中的MGAT1,并引入油棕中。所得转基因植株的种子油含量升高。
[1536] MGAT在稳定转化的燕麦中的表达
[1537] 将编码小家鼠MGAT1的嵌合基因用于稳定转化另一种单子叶植物燕麦。如Zhang 等人(1999)所述,将如上所述的并均含有Ubi:BAR选择标记的命名为Ubi:MGAT1和Ubi: DGAT1的嵌合载体用于转化燕麦。
[1538] 为在植物细胞中表达而密码子优化的小鼠MGAT2基因的编码区取代上述构建体中的MGAT1,并引入燕麦中。所得转基因植株的种子油含量升高。
[1539] 实施例7.改造具有DGAT活性的MGAT
[1540] 可通过对感兴趣的MGAT基因执行随机诱变、定向诱变或饱和诱变或者通过将不同的MGAT和/或DGAT基因进行DNA改组而改造具有改变的DGAT活性的MGAT(特别是提高的DGAT活性和可能提高了的MGAT活性)。DGAT功能可通过使用以下酵母菌株而进行阳性筛选(例如该酵母菌株在供给游离脂肪酸时具有TAG合成互补的绝对需求),如在四个基因(DGA1、LRO1、ARE1、ARE2)中包含突变的H1246。在这样的菌株中转化MGAT变体然后向转化的酵母提供一定浓度的防止与野生型MGAT基因互补的游离脂肪酸,由于提高的DGAT活性将只允许具有增强的TAG合成能力的变体生长。这些突变基因的MGAT活性可通过供给带标记的sn-1或sn-2MAG并对带标记的DAG 的产生情况进行定量而测定。与合理蛋白设计相结合的多轮定向进化将导致具有类似MGAT和DGAT活性的新型MGAT基因的产生。
[1541] 用Taq DNA聚合酶在0.15mM MnCl2的存在下,对编码小家鼠MGAT1酰基转移酶的基因进行了易错PCR以引入随机突变。经随机化的编码区继而被用作大引物 (megaprimer)以扩增整个酵母表达载体(使用高保真PCR反应条件)。对回收的、经诱变的9099bp的DNA的测序表明了大约0.8%的突变频率,相应于每个基因8个突变,或者,平均每个多肽5.3个氨基酸取代。将整个诱变的库转化至大肠杆菌(E.coli)DH5α以用于储藏在-80℃以及质粒制备。该MGAT1库的大小据估算为3.8356E6个克隆。将该 MGAT1库的拷贝转化至酵母株H1246株中,导致了大小为3E6个克隆的库。对转化至酿酒酵母H1246的所述MGAT1库以及pYES2阴性对照进行8轮选择,每轮包括在C18:1 游离脂肪酸以1mM的终浓度存在下,在最小省却诱导培养基(1%棉子糖+2%半乳糖;稀释至OD600=0.35-0.7)中(再)稀释培养物。阴性对照包括在最小省却培养基(含2%葡萄糖)中且在缺乏C18:1游离脂肪酸的情况下同时培养的相同培养物。8轮选择之后,将所选的MGAT1库的等分试样铺板在含葡萄糖(2%)的最小省却培养基上。总共120个集落在96微滴定平板中的240μL的最小省却诱导培养基中生长以测定中性脂质产率,其中如Siloto等(2009)所述使用Nile Red荧光测定法。从显示出最高TAG水平的
113个克隆 (=前6%)制备了的质粒小量制备。
[1542] 对所选克隆的整个MGAT1编码区进行测序仪鉴别独特突变体的数目,以及鉴别所选择突变的性质。将独特MGAT1突变体转化至酿酒酵母H1246以用于体外MGAT和 DGAT测定,其中分别使用标记的MAG和C18:1底物(参见实施例5)。所选的MGAT1 变体被发现展现出与野生型酰基转移酶相比提高的DGAT活性,而MGAT活性也可能提高。
[1543] 展现出提高的MGAT和/或DGAT活性的MGAT1变体在DNA改组反应中被用作亲本。所得的库经过与上文相同的选择体系,导致进一步改善了一般酰基转移酶活性。另外,将C18:1以外的游离脂肪酸加入至生长培养基,以选择展现出改变的酰基-供体特异性的MGAT1变体。
[1544] 实施例8.植物中拟南芥二酰基甘油酰基转移酶2的组成型表达
[1545] 拟南芥DGAT2在酵母(Weselake等,2009)和昆虫细胞(Lardizabal等,2001)中的表达未证实DGAT活性。相似地,DGAT2未能与拟南芥DGAT1敲除互补(Weselake等, 2009)。如实施例1所述,使用本氏烟草瞬时表达系统测定了拟南芥DGAT2在叶组织中的酶活性。通过基因组PCR获得拟南芥DGAT2(登录号Q9ASU1),然后在35S启动子控制下克隆进二元表达载体,以生成35S:DGAT2。将该嵌合载体引入根癌农杆菌菌株 AGL1,在24℃的生长室中将得自这些培养物的细胞渗滤进本氏烟草植株的叶组织,其中使用35S:DGAT1作为对照。为了进行多个直接比较,将进行比较的样品在同一叶的两侧上渗滤。一式三份地进行实验。渗滤后,使植株再生长五天,然后获取叶圆片,冷冻干燥,用于如实施例1所述进行脂质类别分馏和定量分析。该分析表明DGAT1和DGAT2两者都起到提高本氏烟草叶油水平的作用(表8)。
[1546] 用35S:p19构建体转化的叶组织(阴性对照)每100mg叶干重平均含有25μg衍生自 TAG的游离脂肪酸。用35S:p19和35S:DGAT1构建体转化的叶组织(阳性对照)每100mg 叶干重平均含有241μg TAG。用35S:p19和35S:DGAT2构建体转化的叶组织每100mg 叶干重平均含有551μg TAG。
[1547] 上述数据表明,拟南芥DGAT2酶在促进叶组织中的TAG积聚方面比拟南芥DGAT1 酶更具活性。与过表达DGAT1时的TAG量(作为相对的100%)相比,DGAT2基因的表达导致叶组织中的TAG积聚高达229%(图9)。
[1548] 瞬时转化的本氏烟草叶组织(仅表达P19(对照)、或者表达P19与AtDGATl或 AtDGAT2)也被用来制备用于体外酶活性测定的微粒体。进行了DGAT生物化学测定:使用相应于50μg蛋白的微粒体并加入10nmol[14]C6:0-DAG和5nmol酰基-CoA,每个测定是在50mM Hepes缓冲液中、pH 7.2、含有5mM MgCl2、和1%BSA、最终总体积100μL。所述测定在30℃进行30分钟。提取每个测定的总脂质,并将样品载入 TLC平板,其使用己烷:DEE:Hac溶剂(70:30:1vol:vol:vol)来运行。DAG和TAG斑点中放射性的量通过Phosphorlmage测量来定量。对每个微粒体制备,均计算了转化成TAG 的DAG百分比。
[1549] 在本氏烟草叶中检测到一些內源DGAT活性,因为P19对照测定显示出低水平的 TAG生产。在测定补加C18:1-CoA或C18:2-CoA时,AtDGAT1的表达产生了相对于 P19对照提高了的DGAT活性,但是在补加C18:3-CoA时却无提高,其中P19对照与 AtDGAT1的TAG水平类似。然而,在所有于叶组织中表达AtDGAT2的微粒体测定中,与AtDGAT1相比均观察到了更高水平的DGAT活性(TAG生产)。在微粒体补加 C18:2-CoA或C18:3-CoA时,观察到相对于补加C18:1-CoA而言更高水平的TAG生产 (图10)。这表明DGAT2相较于DGAT1而言有不同的底物偏好,特别是偏好C18:3-CoA (ALA)。
[1550] 实施例9.转基因种子中MGAT和GPAT的共表达
[1551] Yang等人(2010)描述了均具有sn-2偏好(即,优先形成sn-2MAG而非sn-1/3MAG) 和磷酸酶活性的两种甘油-3-磷酸酰基转移酶(GPAT4和GPAT6),它们能够由G-3-P产生 sn-2MAG(图1)。些酶被认为是角质合成途径的一部分。GPAT4和GPAT6不在种子组织中高表达。
将这种双功能GPAT/磷酸酶与MGAT组合产生了使用G-3-P作为底物的新DAG合成途径,其可代替或补充植物中合成DAG的典型Kennedy途径,尤其是油料种子中,或其他细胞中,从而导致油含量升高,尤其是TAG水平升高。
[1552] 通过以下方式制备与用于在植物种子中表达的小家鼠MGAT2一起的分别编码 GPAT4和GPAT6且命名为pJP3382和pJP3383的嵌合DNA:首先将SwaI片段内所含的整个MGAT2编码区在Smal位点插入pJP3362,得到pJP3378。pJP3362为含有空FAE1 和FP1表达盒以及作为选择标记的卡那霉素抗性基因的二元表达载体。拟南芥GPAT4 由cDNA扩增,并在NotI位点克隆进pJP3378,得到pJP3382,其中GPAT4通过截短的napin启动子FP1表达,而MGAT2通过拟南芥FAE1启动子表达。相似地,拟南芥 GPAT6由cDNA扩增,并在NotI位点克隆进pJP3378,得到pJP3384,其中GPAT6可操纵地连接到截短的napin启动子FP1,而MGAT2通过拟南芥FAE1启动子表达。将 pJP3382和pJP3383通过浸花法转化入拟南芥(哥伦比亚生态型)中。将得自处理过的植株的种子接种到含有抗生素卡那霉素的培养基平板上,以选择转化的后代植株(T1植株)。将转基因幼苗转移到土壤中,在温室内生长。测定发育胚中的转基因表达。选择具有最高水平的表达并表现出每个株系3:1的转基因:非转基因植株比的转基因植株(表明单个基因座插入转基因),并长至成熟。从这些植株(T2)获得种子,而这些植株中的一些为转基因纯合的。使每个株系的十五棵后代植株(T2植株)在土壤中生长,测定所得种子的脂质含量、TAG含量和脂肪酸组成。总脂肪酸含量(从总FAME确定),特别是既含MGAT也含GPAT4或GPAT6的种子的TAG含量,与对照相比实质上和显著地提高了近3%(绝对水平)或大约9%(相对提高),以及与只含MGAT或只含拟南芥DGAT1的种子相比有提高(图11)。
[1553] 将小鼠MGAT2基因的编码区(针对植物细胞中的表达而密码子优化),与编码拟南芥GPAT4的嵌合基因一起,引入到油菜中。收获来自所得植株的种子,并对一些进行了分析。这些初步分析的数据显示出油含量和脂肪酸组成的变化性,或许是由于植物在不同的时间生长以及处于不同的环境条件下。种植种子以产生后代植株,并收获后代种子。
[1554] 实施例10.通过GPAT沉默和突变测试GPAT4和GPAT6对MGAT介导的TAG升高的影响[1555] GPAT家族是一个庞大的家族,所有已知的成员均包含两个保守结构域:plsC酰基转移酶结构域和HAD样水解酶超家族结构域。此外,拟南芥GPAT4-8均包含与磷酸丝氨酸磷酸酶结构域同源的N端区域。拟南芥GPAT4和GPAT6均含有已知对磷酸酶活性至关重要的保守残基(Yang等,2010)。
[1556] 设计基于保守氨基酸序列GDLVICPEGTTCREP(SEQ ID NO:228)的简并引物,以在叶组织中表达的本氏烟草GPAT上扩增片段。将使用这些引物和oligo-dT反向引物对从本氏烟草叶组织中分离的RNA执行3’RACE。具有磷酸酶活性的GPAT(即,类 GPAT4/6)通过它们与上述N端磷酸丝氨酸磷酸酶结构域的同源性而加以鉴定。生成靶向这些基因的35S驱动的RNAi构建体,并在根瘤农杆菌菌株AGL1中转化。相似地,将含有V2病毒沉默抑制蛋白的35S:V2构建体在根瘤农杆菌菌株AGL1中表达。V2已知可抑制原生植物沉默机制,以允许有效的瞬时表达,但也允许基于RNAi的基因沉默起作用。
[1557] 然后在用以下菌株混合物渗滤的瞬时转化叶样品之间对TAG积聚进行比较:1) 35S:V2(阴性对照);2)35S:V2+35S:MGAT2(阳性对照);3)35S:V2+GPAT-RNAi;4) 35S:V2+GPAT-RNAi+35S:MGAT2。预计,35S:V2+GPAT-RNAi+35S:MGAT2混合物会导致比35S:V2+35S:
MGAT2样品更少的TAG积聚,因为GPAT沉默导致了sn-2MAG合成中断。
[1558] 使用突变的拟南芥和本氏烟草GPAT4/6样序列进行类似的实验,以移除已知对磷酸酶活性至关重要的保守残基(Yang等,2010)。这些突变基因(统称为GPAT4/6-δ)然后克隆入35S驱动的表达二元载体中,并在根瘤农杆菌中转化。然后在用以下菌株混合物渗滤的瞬时转化叶样品之间对TAG积聚进行比较:1)35S:p19(阴性对照);2)35S:p19+ 35S:MGAT2(阳性对照);3)35S:p19+GPAT4/6-δ;4)35S:p19+GPAT4/6-δ+35S:MGAT2。预计,35S:p19+GPAT4/6-δ+35S:MGAT2混合物会导致比35S:p19+35S:MGAT2样品更少的TAG积聚,因为GPAT突变导致了sn-2MAG合成中断。虽然天然本氏烟草 GPAT4/6样基因将存在于该实验中,但预计高水平的GPAT4/6-δ构建体表达在获取G-3-P 底物方面将超出内源基因。
[1559] 实施例11.二酰基甘油酰基转移酶和WRI1转录因子在植物细胞中的组成型表达[1560] 通过在T4 DNA聚合酶处理成平末端之后将含有35S启动子的Pstl片段插入至载体pORE04的Sfol位点,而制备了命名为35S-pORE04的载体(Coutu等,2007)。制备了编码拟南芥二酰基甘油酰基转移酶DGAT1的遗传构建体35S:Arath-DGAT1 (Bouvier-Nave等,2000)。WO 2009/129582的实施例3描述了pXZP163中AtDGAT1 的构建。来自pXZP163的具有Kpnl和EcoRV末端的PCR扩增片段被插入至pENTR11 以产生pXZP513E。将包含在BamHI-EcoRV片段内的整个pXZP513E的AtDGAT1编码区插入至35S-pORE04的BamHI-EcoRV位点处,产生pJP2078。合成了编码拟南芥WRI1 转录因子的合成片段Arath-WRI1(Cemac and Benning,
2004),其旁侧有EcoRI限制性位点并且针对欧洲油菜进行了密码子优化。通过将整个Arath-WRI1的编码区(旁侧有 EcoRI位点)克隆至35S-pORE04的EcoRI位点处产生pJP3414而制备了命名为 35S:Arath-WRI1的遗传构建体。根据如实施例1中所述的瞬时表达体系来进行基因在本氏烟草叶组织中的表达。
[1561] 由Iatroscan对经渗滤的本氏烟草叶的TAG水平进行的定量表明,拟南芥DGAT1 和WRI1基因的组合表达与WRI1和V2阴性对照的表达相比分别导致了TAG含量的 4.5倍和14.3倍的提高(表9)。这分别对应于5.7%和6.51%的平均和最大观测TAG产率/叶干重(表9和图12)。叶油的提高并不仅仅是由于过表达的DGAT1酰基转移酶的活性,基于WRI1退出该组合时TAG水平降低可以清楚这一点。另外,观察到了协同效应,其造成48%的总TAG提高。
[1562] DGAT1和WRI1构建体也均导致以经渗滤的本氏烟草叶TAG成分中亚油酸为代价的油酸水平的提高(表10)。这些结果确认了Andrianov等(2010)最近的发现,他们报道了用拟南芥DGAT1酰基转移酶转化的转基因烟草植株中TAG、磷脂和TFA脂质成分的类似变化。然而,当共表达DGAT1和WRI1基因时,在本氏烟草叶中油酸的累积上观察到了协同效应——当两种基因都表达时此协同性造成了据估算52%的总油酸含量。转基因本氏烟草叶中TAG积累和油酸水平上出乎意料的协同效应证明了在营养性组织中同时上调两种代谢过程(脂肪酸生物合成和摄取酰基至非极性脂质如TAG中)的潜力,两种代谢过程在发育中的油种中高度活跃。
[1563] 重复了瞬时表达实验,除了其中用P19病毒沉默抑制子替换了V2抑制子,以及小心地比较了相同叶上的样品以避免叶与叶之间的差异。为此,将用于表达番笳丛矮病毒 P19病毒沉默抑制子蛋白的嵌合35S:P19构建体(Wood等,2009)单独引入至根瘤土壤杆菌GV3101中用以共渗滤。
[1564] 此实验中用Iatroscan对经渗滤的本氏烟草叶的DGAT1和WRI1的TAG水平进行的定量表明,拟南芥DGAT1和WRI1基因的组合瞬时表达导致了与P19阴性对照相比 TAG含量141倍的提高(图13)。当与相同叶上DGAT1和WRI1基因单独表达相比时,组合渗滤将TAG水平分别提高了17和5倍。再次,两种基因的共表达对叶的油积累有协同(大于加合)效应,其中协同部分造成了73%的总TAG提高。与此前实验(14.3倍) 相比,此实验中TAG含量的更大幅度提高(141倍)可能是由于使用了P19沉默抑制子而不是V2并因此提高了转基因的基因表达。
[1565] 表11显示了TAG的脂肪酸组成。当DGAT1和WRI1基因在本氏烟草中共表达时,又一次观察到了对叶TAG部分中油酸累积水平的协同效应。此提高主要是以中等链不饱和脂肪酸棕榈酸和硬脂酸为代价的(表11)。亚油酸也得到提高,这可以由可用于內源 FAD2Δ12-去饱和酶的更高的油酸底物水平来解释。DGAT1和WRI1基因在本氏烟草中的单独表达导致TAG谱的中等改变,不如油酸的提高。另外,但却与第一个实验相反,检测到了更高水平的α-亚麻酸(ALA),但是观察到的程度比DGAT1和WRI1在叶组织中共表达低。
[1566] 所观察到的DGAT1和WRI1表达对TAG生物合成的协同效应通过如下得到了更具体的确认:在相同的叶中,比较两种基因单独或组合引入本氏烟草,相较于单独引入 P19基因作为对照。着在降低叶与叶之间的差异上是有益的。另外,将重复的数目提高到5并且将相同植株的不同叶的样品汇集以改善数据的质量。结果在表12中给出。
[1567]
[1568]
[1569]
[1570]
[1571] 表12.WRI1+DGAT1与单个基因一起的比较
[1572] 基因组合 TAG水平(%干重) 比例(与P19比较)P19(control) 0.01±0.00 1
P19+WRI1 0.08±0.04 8
P19+DGAT1 0.27±0.03 27
P19+WRI1+DGAT1 1.29±0.26 129
[1573] 基于DGAT1和WRI1基因对本氏烟草中表达的单独的效应,在仅存在加合效应热缺少任何协同效应时,本发明人预计与P19对照相比TAG的水平提高大约0.35或35 倍。然而,引入这两种基因二者则导致了TAG水平比P19对照高129倍。基于这些结果,本发明人估计对TAG积累的加合效应和协同效应分别为26.9%和73.1%。另外,当用GC分析叶样品中总脂质的脂肪酸组成时,在用WRI1和DGAT1渗滤(每个三个重复3)的本氏烟草叶的TAG部分中观察到了对C18:1Δ9水平的协同效应。数据在表11中示出。
[1574] 对于WRI1+DGAT1组合的种子特异性表达,用二元载体构建体转化拟南芥,所述二元载体构建体包括:具有pFAE1::WRI1和pCln2::DGAT1基因二者的嵌合DNA,或者作为比较的,单一基因pFAE1::WRI1或pCln2::DGAT1。从植株收获T1种子。确定该种子的油含量。该种子含有提高的油含量。
[1575] 实施例12.单酰基甘油酰基转移酶和WRI1转录因子在植物细胞中的组成型表达[1576] 编码小家鼠MGAT2且针对欧洲油菜密码子优化的嵌合DNA(Cao等,2003;Yen and Farese,2003)由Geneart合成。命名为35S:Musmu-MGAT2的遗传构建体通过如下方式制备:将包含在EcoRI片段中的1022341_MusmuMGAT2的整个编码区插入至pJP3343 的EcoRI位点处,产生pJP3347。35S:Arath-WRI1构建体的克隆在实施例11中描述。在本氏烟草叶组织中的瞬时表达如实施例1中所述那样进行。
[1577] 当小鼠MGAT2和拟南芥WRI1转录载体表达时,平均本氏烟草叶TAG水平与单独WRI1的表达相比提高了3.3倍(表13)。另外,该两个基因的表达导致了叶TAG累积上小的(29%)协同效应。用MGAT2基因在存在WRI1时所获得的TAG水平为3.78%(由 Iatroscan定量)(图12)。用动物MGAT2和植物DGAT1酰基转移酶组合拟南芥WRI1所获得的类似结果表明,协同效应可能是在WRI和酰基转移酶于非油累积营养性植物组织中过表达时的共同现象。
[1578] 重复了该实验以引入表达V2+MGAT2与V2+MGAT2+WRI1相比的构建体,从而汇集了来自相同植物的三个叶的经渗滤的样品(对每两个植株)。总计,每个组合因而具有6个重复的渗滤。与第一个实验中所做的在不同植物之间汇集样品相比,这产生了较小的标准差。此实验的数据在表14中示出。早先的结果(表13)得到了确认。虽然绝对TAG水平不同(取决于Benth测定和样品的不同汇集),在WRI1与V2+MGAT2共表达时TAG的相对提高是类似的(2.45和2.65倍)。
[1579] 实施例13.单酰基甘油酰基转移酶、二酰基甘油酰基转移酶和WRI1转录因子在植物细胞中的组成型表达
[1580] 根据如实施例1中所述的瞬时表达体系在本氏烟草叶组织以不同的组合表达编码拟南芥二酰基甘油酰基转移酶DGAT1、小鼠单酰基甘油酰基转移酶MGAT2和拟南芥 WRl1的基因。不同构建体的具体描述可以在实施例11和12中找到。
[1581] DGAT1、WRI1和MGAT2基因的组合表达导致了几乎3倍的平均TAG的进一步提高(与后两者的表达相比)(表15)。所获得的最大观测TAG产率为7.28%(由Iatroscan 定量)(图12)。当小鼠MGAT2酰基转移酶的基因被排除在此组合之外时,叶TAG水平并未受显著影响。
然而实施例16中所述的结果,清楚地证明了小鼠MGAT2在与WRI1、 DGAT1和芝麻油体蛋白组合表达时对本氏烟草叶中中性脂质生物合成的正面影响。
[1582]
[1583]
[1584] 在进一步的实验中获得了额外的数据,所述实验中在相同植株中汇集叶样品,每个六次重复。数据在表16中示出。
[1585] 表16:经渗滤的本氏烟叶样品的TAG含量
[1586]
[1587] 实施例14.单酰基甘油酰基转移酶、二酰基甘油酰基转移酶、WRI1转录因子和甘油-3-磷酸酰基转移酶在植物细胞中的组成型表达
[1588] 通过如下制备35S:GPAT4遗传构建体:从分离自发育中的长角果(silique)组织的总 RNA克隆拟南芥GPAT4基因(Zheng等,2003),随后作为EcoRI片段插入至pJP3343 中导致pJP3344。其它构建体在实施例11和12中描述。在本氏烟草叶组织中的瞬时表达如实施例1中所述那样进行。
[1589] 拟南芥GPAT4酰基转移酶与MGAT2、DGAT1和WRI1组合的瞬时表达导致了本氏烟草叶TAG含量的小提高(由Iatroscan定量)(表17)。也发现在GPAT4被包括在渗滤混合物中时,TAG水平(5.78%)较低(图12)。然而,此发现并未排除sn2-MAG由GPAT4 酰基转移酶催化从G3P合成的假设。实际上,其表明此催化步骤在叶组织中由于內源 GPAT4基因的高表达水平而不太可能是速率限制(Li等,2007)。另外,拟南芥GPAT8 酰基转移酶展现出与GPAT4类似的表达谱并且已经被显示出展现重叠的功能(Li等, 2007)。在发育中的种子中GPAT4和GPAT8的表达水平低下。作为结果,GPAT4在种子背景中的共表达对于确保足够的sn2-MAG底物(用于异源表达的MGAT酰基转移酶) 而言可能是很关键的。
[1590]
[1591] 在进一步的实验中获得了额外的数据,所述实验中在相同植株中汇集叶样品,每个六次重复。数据在表18中示出。
[1592] 表18.经渗滤的本氏烟叶样品的TAG含量
[1593]
[1594] 实施例15.单酰基甘油酰基转移酶、二酰基甘油酰基转移酶、WRI1转录因子和AGPase-hpRNAi沉默构建体在植物细胞中的组成型表达
[1595] 合成了对应于编码红花烟草AGPase小亚基(DQ399915)的mRNA第595至1187位核苷酸的DNA片段(Kwak等2007)。首先用NcoI切割593bp的1118501_NtAGP片段,用DNA聚合酶I大(Klenow)片段处理以产生5'平末端以及最后用XhoI消化。类似地,首先用BamHI消化pENTR11-NCOI进入载体(entry vector),用DNA聚合酶I大(Klenow) 片段处理并用XhoI切割。将1118501_NtAGP插入物连接至pENTR11-NCOI中产生了 pENTR11-NCOI-Nt AGP进入克隆。pENTR11-NCOI-NtAGP进入克隆和pHELLSGATE12 目的载体之间的LR重组产生了pTV35,一个含有35S启动子控制下的NtAGPase RNAi 盒的二元载体。其它构建体在实施例11和12中描述。在本氏烟草叶组织中的瞬时表达如实施例1中所述那样进行。
[1596] 红花烟草AGPase沉默构建体与编码MGAT2和WRI的基因一起的表达导致了叶 TAG水平1.7倍的提高(由Iatroscan定量)(表19)。在缺少MGAT2酰基转移酶时,TAG 水平降低了接近3倍。因此所观测到的TAG提高不能仅仅归因于內源本氏烟草AGPase 基因的沉默。令人惊奇地,用MGAT2取代拟南芥DGAT1并未改变经渗滤的本氏烟草叶中的TAG水平(与红花烟草AGPase沉默构建体组合)。本氏烟草AGPase的沉默因而表现出对MGAT和DGAT酰基转移酶具有不同的代谢作用。在最大观测TAG水平中也观测到类似的差异,其中以WRI1和AGPase沉默构建体与MGAT2或DGAT1组合分别产生6.16%和5.51%的叶油(图12)。
[1597]
[1598] WRI1和MGAT的过表达与AGPase沉默在淀粉累积组织中提高油产量方面特别有前景。实例包括块茎如马铃薯,和谷物的胚乳,可能导致具有提高的粮食油含量的谷物(Barthole等,2011)。虽然红花烟草和本氏烟草的AGPase基因很可能具有显著地序列相同性,本氏烟草AGPase-hpRNAi构建体很可能会由于改善的沉默效率而进一步提升 TAG产率。
[1599] 在进一步的实验中获得了额外的数据,所述实验中在相同植株中汇集叶样品,每个六次重复。数据在表19和20中示出。
[1600] 表20.经渗滤的本氏烟叶样品的TAG含量
[1601]
[1602] 实施例16.单酰基甘油酰基转移酶、二酰基甘油酰基转移酶、WRI1转录因子和油体蛋白在植物细胞中的组成型表达
[1603] 含有35S启动子控制下的编码芝麻种子油体蛋白基因的pRSh1二元载体(Scott等, 2010)由N.Roberts博士(AgResearch Limited,New Zealand)提供。其它构建体在实施例 
11和12中描述。在本氏烟草叶组织中的瞬时表达如实施例1中所述那样进行。
[1604] 当芝麻油体蛋白与拟南芥WRI转录因子和小家鼠MGAT2酰基转移酶一起表达时,本氏烟草叶中的TAG水平(由Iatroscan定量)被发现高了2.2倍(表21)。未检测到叶TAG 脂肪酸谱的显著变化(表22)。当包括拟南芥DGAT1酰基转移酶时,也观测到了TAG的小提高。与V2阴性对照相比,WRI1、DGAT1和芝麻油体蛋白的组合表达导致了3倍的TAG提高和7.72%的最大观测TAG水平(表21和图12)。在包括MGAT2酰基转移酶时,叶TAG水平以2.5的因子进一步提高。这对应于平均的5.7%和最大观测的18.8%的TAG(基于干重)。当包括MGAT2时叶TAG的另外的提高清楚地证明了此酰基转移酶在转基因叶组织中对生物合成和中性脂质积累的正面作用。
[1605] 用表达V2和V2+MGAT2+DGAT1+WRI1+油体蛋白的基因的组合重复了该实验,在不同的本氏烟草植株中测试,其中汇集来自相同植株的叶的样品并且每个有12次重复渗滤。数据在表23中示出。也汇集来自相同的植株的叶的重复样品,其中每个渗滤 6次重复:数据在表24和25中示出。
[1606] 虽然本氏烟草叶的渗滤导致了水平提高的叶油(TAG),在总脂质含量上未检测到显著提高,表明发生了从来自不同脂质池(pool)的脂肪酸到TAG的重分配。相反,当MGAT2 基因与DGAT1、WRI1和油体蛋白基因共表达时,总脂质提高了2.21倍,证明了叶脂质合成的净增长。
[1607] 实施例17.单酰基甘油酰基转移酶、二酰基甘油酰基转移酶、WRI1转录因子和FAD2-hpRNAi沉默构建体在植物细胞中的组成型表达
[1608] 通过LR重组至pHELLSGATE8目的载体以产生载体pFN033而获得了35S启动子控制下的本氏烟草FAD2 RNAi盒。其它构建体在实施例11和12中有描述。
[1609]
[1610]
[1611] 表23.经渗滤的本氏烟叶样品的TAG含量
[1612]
[1613] 表24.经渗滤的本氏烟叶样品的TAG含量
[1614]
[1615] 表25.经渗滤的本氏烟叶样品的总脂肪酸含量
[1616]V2 3.12±0.14 1
V2+MGAT2 3.28±0.33 1.05
V2+MGAT2+DGAT1+WRI1+油体蛋白 6.88±0.37 2.21
[1617] 将编码小鼠单酰基甘油酰基转移酶MGAT2、拟南芥二酰基甘油酰基转移酶 DGAT1、拟南芥WRI1和本氏烟草FAD2 Δ12-脂肪酸去饱和酶发夹RNAi构建体(Wood 等,文稿准备中)的基因在本氏烟草叶组织中组合表达,其中使用如实施例1中所述的瞬时表达体系。
[1618] 在以WRI1、MGAT2、DGAT1和所述Fad2沉默构建体渗滤的本氏烟草叶中的TAG、极性脂质和TFA的脂肪酸组成观测到了类似的变化(表26-28)。在所有的三种脂质成分中,油酸水平进一步提高并达到了几乎20%(极性脂质中)、40%(TFA中)和超过 55%(TAG中)。此提高主要以亚油酸为代价而来,反应了对内质网FAD2Δ12-去饱和酶的沉默效应。叶TAG也含有较少的α-亚麻酸而TFA和极性脂质的水平则不受影响。
[1619] 当重复这些实验并确定TAG、极性脂质和总脂质的脂肪酸组成时,其结果(表29) 与第一次实验一致。
[1620]
[1621]
[1622]
[1623]
[1624] 实施例18.小家鼠MGAT1和MGAT2经稳定转化在本氏烟草细胞中的表达
[1625] 在本氏烟草中的组成型表达
[1626] 在本氏烟草中确定了小家鼠MGAT1和MGAT2的酶活性。将嵌合载体 35S:Musmu-MGAT1和35S:Musmu-MGAT2引入至根瘤土壤杆菌菌株AGL1(经常规电穿孔过程)和并使其在固体LB培养基(补加了卡那霉素(50mg/L)和利福平(25mg/L))上生长以及在28℃诱导2天。使用单菌落来起始新的培养。在以有力通风培养48小时后,通过在2,000x g离心收集细胞并去除上清和。在含有50%的LB和50%的MS培养基的新溶液中以OD600=0.5的密度重悬所述细胞。将在体外无菌生长的本氏烟草植株的叶样品,在浸润于所述根瘤土壤杆菌溶液的时,用锋利的手术刀切离并切割成大小约 0.5-1cm2的方形切片。使损伤的本氏烟草叶片(浸在根瘤土壤杆菌中)处于室温10min,之后在无菌滤纸上吸附干燥并转移至无补加物的MS平板上。在24℃2天的共培养时段后,用无菌液体MS培养基将外植体洗涤三次,并最后用无菌滤纸吸附干燥以及放置在选择性琼脂固化的MS培养基(补加了1.0mg/L的苯甲酸嘌呤(BAP)、0.25mg/L的吲哚乙酸(IAA)、50mg/L的卡那霉素和250mg/L的头孢噻肟)上并在24℃诱导2周用以使转化的本氏烟草叶切片发育出枝条。为了在体外形成转基因植株,将健康的绿枝条切断,转移到装有补加了25μg/L IAA和50mg/L卡那霉素和250mg/L头孢噻肟的MS琼脂培养基的200mL组织培养盆中。
[1627] 通过实时PCR确定MGAT1和MGAT2转基因的表达。选择了高度表达的品系并收获了其种子。将此种子直接种植在土壤中并在4周后收获幼苗的分离群体。选择高度表达的情形并且将由其产生的种子直接种植在土壤中以产生30株幼苗的分离群体。3周后从每个幼苗取叶切片用于提取DNA和随后的PCR以确定哪些品系是转基因的以及哪些品系对转基因而言是空白的。继而收获所述群体,其中将每个幼苗的气生组织清除土壤并冻干。记录每个样品的干重并分离了总脂质。通过TLC-FID将这些总脂质样品中的TAG定量并确定每个样品中TAG与内部标准(DAGE)的比例(图14)。 35S:Musmu-MGAT2品系3347-19的转基因幼苗中TAG的平均水平局发现比空白幼苗中 TAG的平均水平高4.1倍。最大TAG提高的情形中具有比空白情形的平均值高7.3倍的TAG。
[1628] 在拟南芥中的组成型表达
[1629] 在拟南芥中证明了小家鼠MGAT1和MGAT2的酶活性。通过浸花法(floral dip method)将嵌合载体35S:Musmu-MGAT1和35S:Musmu-MGAT2与空白载体对照pORE04 一起转化至拟南芥中,并在卡那霉素培养基上选择初代转化体的种子。收获来自这些 T1植株的T2种子并确定来自每个植株的种子的TFA(图15)。平均mg TFA/g种子据发现对于对照pORE04品系为139±13其中中位值136.0,而对于35S:MGAT1品系为152±14 其中中位值为155.1,以及对于35S:MGAT2品系为155±11其中中位值为154.7。这代表着与对照相比9.7%(35S:MGAT1)和12.1%(35S:MGAT2)的平均TFA提高。
[1630] 实施例19.另外的基因
[1631] 进一步提高油
[1632] 与上文的组合一起测试了另外的基因,以确定是否能实现油的进一步提高。这些包括如下的拟南芥基因:AT4G02280,蔗糖合酶SUS3;AT2G36190,转化酶CWINV4; AT3G13790,转化酶CWTNVl;AT1G61800,葡糖糖6磷酸:磷酸转运蛋白GPT2; AT5G33320,磷酸烯醇丙酮酸转运蛋白PPT1;AT4G15530,丙酮酸磷酸二激酶质体 -PPDK;AT5G52920,丙酮酸激酶pPK-β1。合成了编码这些酶的基因并将其作为EcoRI 片段克隆至组成型二元表达载体pJP3343以用于在本氏烟草中测试。
[1633] 当一些基因被加入到WRI1、DGAT1、MGAT2和油体蛋白的组合中并在本氏烟草叶中表达时,未观测到TAG水平的额外提高,也即:红花PDAT、拟南芥PDAT1、拟南芥DGAT2、拟南芥油体钙蛋白、花生油体蛋白、拟南芥血红蛋白2、智人iPLAh、拟南芥GPAT4、大肠杆菌G3P脱氢酶、酵母G3P脱氢酶、蓖麻LPAAT2、拟南芥β-呋喃果糖苷酶(ATBFRUCT1、NM_112232)、拟南芥β-呋喃果糖苷酶(cwINV4、 NM_129177),表明这些酶活性在瞬时表达时没有一个是在本氏烟草叶中是速率限制。这并不表明它们将会对稳定转化的植株(如在种子中)、或其它生物体没有影响。
[1634] 另外的基因测试了其加合性或协同性的油提高活性。这些包括如下的拟南芥基因模型或其编码的蛋白、以及来自其它物种的同源物,其是基于可能的功能分组并且此前已显示出在油含量提高的组织中被上调。蔗糖降解中涉及的基因/蛋白:AT1G73370、 AT3G43190、AT4G02280、AT5G20830、AT5G37180、AT5G49190、AT2G36190、 AT3G13784、AT3G13790、AT3G52600。氧化戊糖磷酸途径中涉及的基因/蛋白: AT3G27300、AT5G40760、AT1G09420、AT1G24280、AT5G13110、AT5G35790、 AT3G02360、AT5G41670、AT1G64190、AT2G45290、AT3G60750、AT1G12230、 AT5G13420、AT1G13700、AT5G24410、AT5G24420、AT5G24400、AT1G63290、 AT3G01850、AT5G61410、AT1G71100、AT2G01290、AT3G04790、AT5G44520、 AT4G26270、AT4G29220、AT4G32840、AT5G47810、AT5G56630、AT2G22480、 AT5G61580、AT1G18270、AT2G36460、AT3G52930、AT4G26530、AT2G01140、 AT2G21330、AT4G38970、AT3G55440、AT2G21170。糖分解中涉及的基因/蛋白: AT1G13440、AT3G04120、AT1G16300、AT1G79530、AT1G79550、AT3G45090、 AT5G60760、AT1G56190、AT3G12780、AT5G61450、AT1G09780、AT3G08590、 AT3G30841、AT4G09520、AT1G22170、AT1G78050、AT2G36530、AT1G74030。功能为质体转运蛋白的基因/蛋白:AT1G61800、AT5G16150、AT5G33320、AT5G46110、 AT4G15530、AT2G36580、AT3G52990、AT3G55650、AT3G55810、AT4G26390、 AT5G08570、AT5G56350、AT5G63680、AT1G32440、AT3G22960、AT3G49160、 AT5G52920。苹果酸和丙酮酸代谢中涉及的基因/蛋白:AT1G04410、AT5G43330、 AT5G56720、AT1G53240、AT3G15020、AT2G22780、AT5G09660、AT3G47520、AT5G58330、AT2G19900、AT5G11670、AT5G25880、AT2G13560、AT4G00570。
[1635] 制备了包括编码这些候选蛋白的序列的构建体,如前述的实验那样将其渗滤至本氏烟草叶中,并分析了脂肪酸含量和组成。将有助于提高非极性脂质含量的基因与上文所述的基因(基本上即编码MGAT、WRI1、DGAT1和油体蛋白的哪些)组合,并用于转化植物细胞。
[1636] 不常见脂肪酸的提高
[1637] 将另外的基因与上文所述的基因一起进行了测试,以确定是否能实现不常见脂肪酸的提高。这些包括根据可能的功能分组的如下基因(所提供的是GenBank登录号)以及来自其它物种的同源物。Δ-12炔化酶ABC00769、CAA76158、AA038Q36、AAO38032;Δ-12 轭合酶AAG42259、AAG42260、AAN87574;Δ-12去饱和酶P46313、ABS18716、 AAS57577、AAL61825、AAF04093、AAF04094;Δ-12环氧化酶XP_001840127、 CAA76156、AAR23815;Δ-12羟化酶ACF37070、AAC32755、ABQ01458、AAC49010;和Δ-12P450酶如AF406732。
[1638] 制备了包括编码这些候选蛋白的序列的构建体,如前述的实验那样将其渗滤至本氏烟草叶中,并分析了脂肪酸含量和组成。编码区的多核苷酸序列可以针对感兴趣的宿主物种进行密码子优化。将有助于提高不常见脂肪酸含量的基因与上文所述的其它基因 (基本上即编码MGAT、WRI1、DGAT1和油体蛋白的哪些)组合,并用于转化植物细胞。
[1639] 实施例20.用提高油的基因的组合稳定转化包括红花烟草的植物
[1640] 使用现有的二元表达载体pORE04+11ABGBEC(US  Provisional  Patent Application No。61/660392,其含有表达NPTII卡那霉素抗性基因和三个基因表达盒的双增强子区 35S启动子)作为起始载体来制备若干构建体,所述构建体每个均含有稳定转化植株的基因组合。如下,通过将表达的基因换为油提高基因来改造此载体。首先通过插入内含子中断的芝麻油体蛋白基因(旁侧有NotI位点)来改造所述pORE04+11ABGBEC,从载体pRSh1-PSPl插入至pORE04+11ABGBEC的NotI位点以产生pJP3500。继而通过将密码子优化的编码拟南芥WRL1基因的DNA片段插入EcoRI位点而修饰pJP3500,以产生pJP3501。通过将编码野生型拟南芥DGAT1编码区的DNA片段(旁侧有AsiSI位点) 插入至AsiSI位点而进一步修饰pJP3501,以产生pJP3502(SEQ ID NO:409)。最后的修饰是通过将另一表达盒(包含表达编码小家鼠MGAT2的编码区的双增强子区35S启动子),作为StuI-ZraI片段插入至pJP3502的SfoI位点,以产生pJP3503(SEQ ID NO:410)。将MGAT2表达盒从pJP3347的StuI+ZraI位点处剪下。pJP3502和pJP3503二者均用于如下文所述稳定转化红花烟草。同这些构建体,pJP3502含有了拟南芥WRL1和 DGAT1编码区(其是非别由拟南芥Rubisco小亚基启动子(SSU)和双增强子区35S启动子驱动)、以及SSU:芝麻油体蛋白盒。此构建体的T-DNA区在图
16中示意性示出。载体 pJP3503另外含有e35S::MGAT2盒。此构建体在图17中示意性示出。
构建体pJP3503 的T-DNA区的多核苷酸序列在SEQ ID NO:412给出。
[1641] 用基因的组合稳定转化红花烟草
[1642] 通过标准的电穿孔过程将二元载体pJP3502和pJP3503分别引入至根瘤土壤杆菌菌株AGL1。选择转化的细胞并使其在LB-琼脂(补加了卡那霉素(50mg/1)和利福平(25 mg/1))上生长以及在28℃诱导2天。使用每个的一个单菌落在LB肉汤里起始新的培养。在以有力通风培养48小时后,通过在2,000x g离心收集细胞并去除上清和。在含有50%的LB和
50%的MS培养基的新溶液中以OD600=0.5的密度重悬所述细胞。
[1643] 将在体外无菌生长的红花烟草品系W38的叶样品,在浸润于所述根瘤土壤杆菌的悬液时,用锋利的手术刀切离并切割成大小约0.5-1cm2的片。将切好的叶片于室温留在所述根瘤土壤杆菌悬液中15分钟,之后在无菌滤纸上吸附干燥并转移至无补加物的 MS平板上。在24℃2天的共培养时段后,用无菌液体MS培养基将外植体洗涤三次,继而用无菌滤纸吸附干燥并放置在MS琼脂培养基(补加了1.0mg/L的苯甲酸嘌呤 (BAP)、0.5mg/L的吲哚乙酸(IAA)、100mg/L的卡那霉素和200mg/L的头孢噻肟)上。将平板在24℃诱导2周用以使转化的红花烟草叶片发育出枝条。
[1644] 为了在体外形成生根的转基因植株,将健康的绿枝条切断并转移到补加了25μg/L IAA、100mg/L卡那霉素和200mg/L头孢噻肟的MS琼脂培养基中。在枝条发育出之后,将个体植株转移至土壤并在温室中生长。在植物发育的不同阶段收获叶样品,包括开花前和开花期间。如实施例1所述,通过TLC/GC将总脂肪酸、极性脂质和TAG定量并确定其脂肪酸谱。
[1645] pJP3503转化体的分析
[1646] 对于用pJP3503转化("4-基因构建体"),在形成花蕾之前从30株初代转化体取大约 1cm2的叶样品,并通过Iatroscan对样品中的TAG水平进行定量。7株植株被选择进行进一步的分析,其中5株展现出提高的叶油水平以及两株展现出与野生型植株基本上相同的油水平。通过TLC和GC分析了来自这些植株的冻干叶样品的总脂质含量和TAG 含量以及脂肪酸成分。发现编号为4和29的经转化植株与野生型相比具有可观地提升了的叶油水平,而编号21的植株展现出基本处于野生型水平的最低TAG水平(表30)。编号11、15和27的植株具有中等水平的叶油。发现TAG中的油酸水平与TAG产率负相关,这与先前本氏烟草中瞬时表达实验的结果一致。
[1647] 在编号4和29的转化植株中,叶油含量(作为干重的百分比)据发现在开花的时间可观地提高了(表31)。从表31的数据,植株4和29的提高分别为至少1.7倍和2.4倍。对于植株21没有观察到此种变化,其具有类似于野生型对照的TAG水平。分离自每个样品的TAG部分的油酸水平遵循类似的模式。此脂肪酸累积了高达22.1%的来自植株4 和29的TAG中的脂肪酸,与植株21和野生型相比提高了17-18倍。油酸的提高伴随着亚油酸和棕榈酸水平的提高,而α-亚麻酸水平与植株21和野生型对照相比下降了。与TAG不同,极性脂质水平在三个品系中于开花阶段轻微降低(表32)。该三种品系的极性脂质部分中C18单不饱和和多不饱和脂肪酸水平的变化类似于其TAG组成中的变化,虽然油酸和亚油酸的变化没那么显著。植株4和29在开花期间观测到总叶脂质的显著提高,其水平达到了超过10%的干重(表33)。
总植株21在开花前和开花期间的叶脂质水平与野生型植株中相同阶段观测到的水平类似(表33和35)。所有三个品系的总脂质脂肪酸成分的变化类似于其各自的TAG脂肪酸成分。在结种(seed setting)期间植株 4中的叶油据发现在叶失绿开始时得到了进一步的提升。在此阶段观测到的最高叶TAG 水平对应于比植株21在结种期间类似年龄的叶提高了65倍,以及相应于比开花期间的野生型植株的类似叶提高了130倍(表34;图18)。
[1648] 此植株中提高的TAG与提升的油酸水平相符。与植株4不同,其它两株初代转化体以及野生型烟草中的叶TAG水平在开花后和失绿期间并未提高、或者仅仅略微提高。植株4和29的较低叶在衰败时展现出降低的TAG水平。在所有植株中,随着叶年龄的增进,亚油酸水平下降而α-亚麻酸水平提高。
[1649] 与提高的TAG水平一致,植株4和29在结种期间叶中的总脂质水平与这二者在开花期间的类似叶相比得到了进一步的提升(表33和35)。在植株4中检测到的最高总脂质水平基于干重为15.8%,等价于与植株21和野生型植株的类似叶相比分别提高了7.6 倍和11.2倍。虽然野生型植株和植株21中总脂质的脂肪酸成分类似,但植株4和29 中却观测到了显著差异。这些变化与这两者的初代转化体中所发现的类似。
[1650] 有趣的是,在结种前和在结种期间对植株4和29的叶通过光泽表面进行了表征,提供了表型变化,该表型是可用作辅助确定最大油含量收获时机且可容易地进行视觉评分的表型。
[1651] 总而言之,植株4和29的叶在开花期间直至结种迅速积累TAG。在后一个阶段,大部分的叶展现出基于干重7%至13%的TAG水平,相比较而言植株21则为0.1%- 0.2%。这些观测到的TAG水平和总脂质水平远远超过了Andrianov等(2010)所实现的水平,其报道了在红花烟草的叶中基于拟南芥DGAT1的组成型表达和拟南芥LEC2基因的可诱导表达最大的5.8%和6.8%的TAG。
[1652] 表30.从所选择的转化了pJP3503的初代烟草植株的叶子分离的TAG 中的百分比TAG(叶干重的%重量)和油酸水平(总脂肪酸的%)
[1653]
[1654]
[1655]
[1656]
[1657]
[1658]
[1659] 用pJP3502转化的烟草植株的分析
[1660] 对于用pJP3502("3基因构建体")转化,将MS琼脂培养基中的蔗糖水平降低至标准水平的一半直至建立起足够的愈伤组织,其有助于表达WRI1的转化体的回收。从 pJP3502的转化中获得了41株初代转化体并转移至温室。在开花或者结种阶段收集不同年龄的叶样品(表36)。所述植株在表型方面看起来都正常,除了三株转化体以外,该三株转化体在转化过程中源自相同的愈伤组织并因此很可能来自相同的转化事件,该三株转化体稍微小些并展现出类似于(上文中)具有pJP3503的植株4的有光泽叶表型,但程度较低。
[1661] 在开花期间收获了初代转化体的叶圆片(disk)样品,并通过在TLC后的碘染色对 TAG进行定量可视化。对于选择的展现出与野生型对照相比提高了的TAG水平的转基因植株,通过TLC和GC对其进行更具体的进一步分析。幼年绿色叶中的最高的TAG 水平在品系8.1中观测到并对应于基于干重的8.3%的TAG、或者与相同年龄野生型相比提高了大约83倍(表36)。黄绿色的叶与更年幼的绿色叶相比通常含有更高的油含量,其中最大TAG水平在品系14.1中观测到(基于干重17.3%的TAG)。所述叶中总脂质的总脂质含量和脂肪酸成分也进行了定量(表37)。
[1662] 在种子成熟时从初代转化体收集种子(T1种子),并将一些播种以产生T1植株。这些植株预期会因转基因而分化以及因而在T1群体预期会有一些空白分化株,其在已知的野生型之外可以用作适宜的阴性对照(在同时以及相同条件下生长)。将衍生自初代转化体14.1(具有单一拷贝的T-DNA插入物)的51株T1植株(6-8周龄以及10-25cm长)与 12株野生型植株一起分析。所述植株表现为表型正常、绿色且健康,并且并未显示出比相应的衍生自植株小。从完全展开的绿色叶取大约1cm直径的叶样品。30株T1植株在叶中显示出提升的TAG水平,其中8株显示了高水平的TAG,与处于相同植物发育阶段的初代转化体14.1相比大约翻倍水平的TAG。后者这些植株很可能对于转基因而言是纯合的。通过将从大约5mg干重的叶组织分离的脂质载入到每条TLC道而测定了所选择T1植株叶中的TAG水平和TAG脂肪酸成分,数据在表38中示出。
[1663]
[1664]
[1665]
[1666] 通过如下制备了适宜于单子叶植物转化的遗传构建体:将pJP3502和pJP3503中的Arath-SSU启动子更换为在单子叶植物中更有活性的启动子。适宜的启动子包括:来自单子叶植物病毒的组成型病毒启动子或者已证实在单子叶物种的转基因背景中能发挥功能的启动子(例如,Christensen等,1996描述的玉米Ubi启动子)。类似地,将pJP3502 和pJP3503中的CaMV-35S启动子更换为在单子叶物种中更有活性的启动子。使用标准方法将这些构建体转化至小麦、大麦和玉米。
[1667] 芒草类物种
[1668] 通过将pJP3502和pJP3503中的Arath-SSU启动子更换为在芒草类(Miscanthus)中更有活性的启动子而制备了用于芒草类物种转化的遗传构建体。适宜的启动子包括组成型病毒启动子、泛素启动子(Christensen等,1996)或者已证实在芒草类的转基因背景中能发挥功能的启动子。类似的,将pJP3502和pJP3503中的CaMV-35S启动子更换为在芒草类中更有活性的启动子。通过类似于Wang等,2011中所描述的微量弹射 (microprojectile)介导的方法将新的构建体转化至芒草类中。
[1669] 柳枝稷(Panicum virsatum)
[1670] 通过将pJP3502和pJP3503中的Arath-SSU启动子更换为在柳枝稷中更有活性的启动子而制备了用于柳枝稷转化的遗传构建体。适宜的启动子包括组成型病毒启动子或者已证实在柳枝稷的转基因背景中能发挥功能的启动子(例如,Mann等,2011)。类似的,将pJP3502和pJP3503中的CaMV-35S启动子更换为在柳枝稷中更有活性的启动子。通过类似于Chen等,2010和Ramamoorthy and Kumar,2012中所描述的土壤杆菌介导的方法将新的构建体转化至柳枝稷中。
[1671] 甘蔗
[1672] 通过将pJP3502和pJP3503中的Arath-SSU启动子更换为在甘蔗中更有活性的启动子而制备了用于甘蔗转化的遗传构建体。适宜的启动子包括组成型病毒启动子或者已证实在甘蔗的转基因背景中能发挥功能的启动子(例如,Christensen等,1996中所描述的玉米Ubi启动子)。类似的,将pJP3502和pJP3503中的CaMV-35S启动子更换为在甘蔗中更有活性的启动子。通过类似于Bower等,1996中所描述的微量弹射介导的方法将新的构建体转化至甘蔗中。
[1673] 象草(Elephant grass)
[1674] 通过将pJP3502和pJP3503中的Arath-SSU启动子更换为在象草中更有活性的启动子而制备了用于象草(Pennisetum purpureum)转化的遗传构建体。适宜的启动子包括组成型病毒启动子或者已证实在狼尾草属(Pennisetum)物种如珍珠稷(P.glaucum)之类的转基因背景中能发挥功能的启动子(例如,Christensen等,1996中所描述的玉米Ubi启动子)。类似的,将pJP3502和pJP3503中的CaMV-35S启动子更换为在狼尾草属物种中更有活性的启动子。通过类似于Girgi等,2002中所描述的微量弹射介导的方法将新的构建体转化至象草(P.purpureum)中。
[1675] 黑麦草(Lolium)
[1676] 通过将pJP3502和pJP3503中的Arath-SSU启动子更换为在黑麦草(ryegrass)中更有活性的启动子而制备了用于多年生黑麦草(Lolium perenne)和其它黑麦草物种转化的遗传构建体。适宜的启动子包括组成型病毒启动子或者已证实在黑麦草物种的转基因背景中能发挥功能的启动子(例如,Christensen等,1996中所描述的玉米Ubi启动子)。类似的,将pJP3502和pJP3503中的CaMV-35S启动子更换为在狼尾草属物种中更有活性的启动子。通过类似于Dalton等,2002中所描述的金刚砂介导的方法、或者通过类似于 Bettany等,2003中所描述的土壤杆菌介导的方法将新的构建体转化至多年生黑麦草中。
[1677] 通过将CaMV-35S和Arath-SSU启动子(除了选择性标记盒)更换为在靶标种子中有活性的种子特异性启动子而将pJP3502和pJP3503修饰为种子特异性表达遗传构建体。
[1678] 油菜
[1679] 通过将pJP3502和pJP3503中的Arath-SSU启动子更换为在欧洲油菜中更有活性的启动子而制备了用于油菜转化的遗传构建体。适宜的启动子包括此前已经在欧洲油菜转基因背景中证实了能发挥作用的启动子(例如,拟南芥FAE1启动子、欧洲油菜napin启动子、亚麻conlinin1和conlinin2启动子)。如此前所述的那样讲新的构建体转化至欧洲油菜中。
[1680] 大豆(Glycine max)
[1681] 通过将来自具有SEQ ID NO:415所示的多核苷酸序列的合成的DNA片段(大豆协同插入物(synergy insert);图19A)的PspOMI片段克隆至二元载体如pORE04中的NotI 位点处而制备了遗传构建体。此片段含有由Arath-FAE1启动子表达的Arath-WRI1、由 Linus-Cnl2启动子表达的Arath-DGAT1、由Linus-Cnl1表达的Musmu-MGAT2和由 Linus-Cnl1表达的Arath-GPAT4。通过将GPAT编码区更换为油体蛋白编码区而制备了另外的遗传构建体。通过缺失MGAT表达盒而制备了另外的遗传构建体。
[1682] 通过将来自具有SEQ ID NO:415所示的多核苷酸序列的DNA分子的SbfI-PstI片段克隆至pORE04的PstI位点而产生了遗传构建体pJP3569(图21)。此构建体含有(i) 编码拟南芥WRI1转录因子的编码区,针对大豆中的表达而密码子优化,并从大豆kunitz 胰蛋白酶抑制剂3(Glyma-KTi3)启动子表达,(ii)编码拉曼伞形霉(Umbelopsis ramanniana)DGAT2A的编码区(如Lardizabal等,2008中所述进行密码子优化)并且从大豆α-亚基β-伴大豆球蛋白(Glyma-b-伴大豆球蛋白)启动子表达,以及(iii)编码小家鼠 MGAT2的编码区,针对大豆中的表达而密码子优化。通过将来自具有SEQ ID NO:415 所示的多核苷酸序列的DNA分子的SbfI-SwaI片段克隆至pORE04的EcoKV-PstI位点处以产生含有表达拟南芥WRI1转录因子和拉曼伞形霉(U.ramanniana)DGAT2A酶基因的二元载体,从而制备了第二个遗传构建体pJP3570。类似地,通过将来自具有SEQ ID NO:415所示的多核苷酸序列的DNA分子的AsiSI片段克隆至pORE04的AsiSI位点以产生含有编码拉曼伞形霉DGAT2A酶基因的二元载体,从而制备了第三个遗传构建体 pJP3571。通过将来自具有SEQ ID NO:415所示的多核苷酸序列的DNA分子的NotI片段克隆至pORE04的NotI位点处以产生含有表达拟南芥WRI1转录因子基因的二元载体,从而制备了第三个遗传构建体pJP3572。通过将来自具有SEQ ID NO:415所示的多核苷酸序列的DNA分子的SwaI片段克隆至pORE04的EcoKV位点以产生含有编码小家鼠MGAT2基因的二元载体,从而产生第五个遗传构建体pJP3573。
[1683] 通过用芝麻油体蛋白替换小家鼠MGAT2而产生了第六个遗传构建体pJP3580。
[1684] 这六个构建体的每一个均用于转化大豆,其中使用如实施例6中所述的方法。用每个所述构建体(特别是pJP3569)转化所产生的转基因植株,产生具有提高的油含量的种子。
[1685] 甜菜
[1686] 用于烟草的载体pJP3502和pJP3503(见上文)被用于通过土壤杆菌介导的转化(由 Lindsey&Gallois(1990)描述)来转化甜菜(Beta vilgaris)的植株。所述植株在其叶中产生水平大大提高的TAG,与上文所述的烟草植株所产生的程度类似。收获转基因甜菜植株是在叶还是绿色的时候进行、或者优选恰恰在衰败开始之前的绿/黄色的时候或者在该发育过程的早期,也即,当甜菜的糖含量处于高水平以及等TAG在叶中累积之后。这使得可以产生双目的的甜菜,其适宜于从甜菜产生以及从叶产生脂质;可以通过破碎叶并将所得的材料离心以分离油部分来直接将所述脂质转化为生物柴油燃料,或者通过叶材料的高温分解直接产生烃。
[1687] 在甜菜的根(块茎)中有活性的启动子也被用于在块茎中表达转基因。
[1688] 实施例21.具有提高油的基因的马铃薯的稳定转化
[1689] 通过如下来修饰前文实施例中所述的中间二元表达载体pJP3502:首先由AscI+NcoI 消化来剪掉一个SSU启动子并将其换为旁侧有AscI和NcoI的马铃薯B33启动子以产生pJP3504。将pJP3504中的SSU启动子与拟南芥WRL1基因的片段一起在PspOMI 位点用马铃薯B33启动子替换以产生pJP3506,所述马铃薯B33启动子具有旁侧为 NotI-PspOMI的相同的拟南芥WRL1基因片段。如上文实施例中所述将pJP3347加至 pJP3506以产生pJP3507。此构建体在图20中示意性示出。其序列在SEQ ID NO:413 中给出。所述构建体用于转化马铃薯(Solatium tuberosum)以提高块茎中油含量。
[1690] 实施例22.GPAT-MGAT融合酶
[1691] 测试了GPAT-MGAT酶融合物的酶活性以确定这是否能提高GPAT产生的MAG对于MGAT活性的可及性。首先合成了适宜的接头区并克隆至克隆载体中。此接头含有用于克隆N-末端(EcoRI-ZraI)和C-末端编码区(NdeI-SmaI或NdeI-PstI)的适宜的位点。 atttaaatgcggccgcgaattcgtcgattgaggacgtccctactagacctgctggacctcctcctgctacttactacgattctctcgctgtg catatggtcagtcatgcccgggcctgcaggcggccgcatttaaat(SEQ ID NO:414)
[1692] 通过如下制备了GPAT4-MGAT2融合物(GPAT4 N-末端和MGAT2 C-末端):首先将编码拟南芥GPAT4的DNA片段(旁侧有Mfel和ZraI位点且无C-末端终止密码子)克隆至EcoRI-ZraI位点中。继而将编码小家鼠MGAT2的DNA片段(旁侧有NdeI-PstI位点) 克隆至NdeI-PstI位点以产生单一的GPAT4-MGAT2编码序列。继而将该融合的编码序列作为NotI片段克隆至pYES2以产生pYES2::GPAT4-MGAT2以及组成型二元表达载体pJP3343以产生pJP3343::GPAT4-MGAT2。
[1693] 类似地,通过如下制备了MGAT2-GPAT4融合物(MGAT2 N-末端和GPAT4 C-末端):首先将编码小家鼠MGAT2的DNA片段(旁侧有EcoRI和ZraI位点且无C-末端终止密码子)克隆至EcoRI-ZraI位点。继而将编码拟南芥GPAT4的DNA片段(旁侧有NdeI-PstI 位点)克隆至NdeI-PstI位点以产生单一的MGAT2-GPAT4编码序列。继而将该融合的编码序列作为NotI片段克隆至pYES2以产生pYES2::MGAT2-GPAT4以及组成型二元表达载体pJP3343以产pJP3343::MGAT2-GPAT4。
[1694] 在酵母酿酒酵中测试了酵母表达载体,以及在本氏烟草中测试了二元载体并与单一编码区对照比较了油含量和组成。
[1695] 实施例23.新的WRL1序列的发现
[1696] 将三个新的WRL1序列克隆至pJP3343和其它的适宜的二元组成型表达载体中并在本氏烟草中进行了测试。这些包括编码Sorbi-WRL1(来自两色高粱;SEQ ID NO:334)、 Lupan-WRL1(来自羽扇豆;SEQ ID N0.335)和Ricco-WRL1(来自蓖麻;SEQ ID NO:336) 的基因。在本氏烟草叶测定中将这些构建体与拟南芥WRI1-编码基因进行了比较测试。
[1697] 作为此过程中的起始步骤,将部分cDNA片段(对应于WRL1)在羽扇豆的发育中种子EST数据库中进行了鉴别(NA-080818_Plate14f06.b1,SEQ ID NO:277)。随后通过进行5'-和3'-RACE PCR回收了全长cDNA(SEQ ID NO:278),其中使用嵌套引物和分离自发育中的羽扇豆种子的cDNA。全长cDNA长度为1729bp,包括1284bp的蛋白编码序列编码428个氨基酸的预期的多肽(SEQ ID NO:337)。继而将全长羽扇豆WRL1 cDNA的整个编码区用均掺入了EcoRI限制性位点的正向和逆向引物进行PCR扩增,以促进克隆至pJP3343载体(以有义方向在35S启动子的控制下)。如实施例1中所述,将携带有pJP3343-LuangWRL1的根瘤土壤杆菌菌株AGL1渗滤至本氏烟草叶组织中。继而收获瞬时表达pJP3343-LuangWRL1的叶圆片并分析了油含量。
[1698] 实施例24.红花烟草中CGI-58同源物的沉默
[1699] James等(2010)已经报道了,拟南芥CGI-58同源物的沉默在叶中导致了高达10倍的TAG累积,主要是作为细胞质中的脂质小滴。半乳糖脂水平据发现也更高,而大部分主要磷脂种类的水平保持不变。有趣的是,种子中的TAG水平未受影响,这与其他 TAG降解突变体不同,未观测到种子萌发方面的负面影响。
[1700] 在本氏烟草的转录物组中发现了三个全长和两个部分转录物,显示出与拟南芥 CGI-58基因的相同性。从本氏烟草分离的叶RNA扩增所有5个转录物种都存在的434 个bp的区,并经LR克隆(Gateway)克隆至pHELLSGATE12目的载体中。所得的命名为pTV46的表达载体编码发夹RNA(dsRNA)分子(用于降低编码CGI-58同源物的烟草基因的表达),并用于如实施例1中所述那样转化红花烟草,产生52个初代转化体。
[1701] 将在其营养性组织中展现出提高的TAG水平的初代转化体与实施例20中所述的纯合品系杂交。
[1702] 实施例25.红花烟草ADP-葡萄糖焦磷酸化酶(AGPase)小亚基的沉默
[1703] Sanjaya等(2011)证明了AGPase小亚基的沉默与WRI过表达的组合进一步提高了拟南芥幼苗中的TAG累积,而淀粉水平则降低了。已经从花蕾克隆了AGPase的小亚基(Kwak等,2007)。推断出的氨基酸序列显示出与拟南芥AGPase 87%的相同性。合成了593bp的片段并经LR克隆(Gateway)克隆至pHELLSGATE12中,导致了二元载体 pTV35。如实施例1中所述完成了红花烟草的转化并产生了43个初代转化体。
[1704] 将展现出总叶淀粉水平降低的初代转化体与实施例20和21中所述的纯合品系杂交。另外,将初代转化体与纯合的品系(其是实施例20和21中所述品系杂交的结果)杂交。
[1705] 实施例26.用于包括可诱导启动子的基因组合的构建体的产生和用途
[1706] 使用可诱导启动子体系制备的另外的遗传构建体,以驱动上文所述基因组合中的至少一个基因的表达,特别是在pJP3503和pJP3502中。在修饰的构建体中,由可诱导启动子如黑曲霉(Aspergilus niger)alcA启动子在存在表达的黑曲霉alcR基因的情况下表达 WRI1基因。或者,使用可诱导启动子表达DGAT。这对于不是在发育期间的所有时间都期望最大TAG积累的情况是有利的。可诱导启动子体系或者发育控制的启动子体系 (优选驱动转录因子如WRI1),使得可以在发育期间的适当时间诱导高TAG表型,以及随后TAG累积至高水平。
[1707] 可以通过转录因子(包括胚胎发生转录因子如LEC2或BABY BOOM(BBM, Srinivasan等,2007))的共表达进一步提高TAG。这些在上文所述的可诱导启动子的控制下并且超转化(super-transform)至转基因品系上或者与WRI和DGAT共表达。
[1708] 通过将MAR间隔区作为AatII片段克隆至pORE04的AatII位点中产生pJP3590。通过将第二MAR间隔区作为Kpnl片段克隆至pJP3590的KpnI位点而产生pJP3591。通过将具有SEQ ID NO:416所示多核苷酸序列的DNA分子(12ABFJYC_pJP3569_insert;图19B)的AsiSI-SmaI片段克隆至pJP3591的AsiSI-EcoRV位点而产生pJP3592。通过将旁侧有PstI的可诱导表达盒(含有表达小家鼠MGAT2和大豆凝集素多腺苷酸化信号的 alcA启动子)克隆至pJP3592的SbfI位点而产生pJP3596。通过在FseI-AscI位点用旁侧有HPH的基因取代NPTII可选择标记基因,而产生pJP3592和pJP3596的潮霉素抗性版本(分别为pJP3598和pJP3597)。
[1709] 这些构建体被用于转化实施例20所述的相同植物物种。通过在其已经实质性生长至后用转基因植株的诱导物处理,来提高从可诱导启动子的表达,从而其积累提高水平的TAG。这些构建体也被超转化至稳定转化的构建体(已经含有油提高构建体)中,包括三-基因或四-基因TDNA区(分别为SEQ ID NO:411和SEQ ID NO:412)。或者,将来自所述三-基因和四-基因构建体的基因表达盒克隆至pJP3597和pJP3598的NotI位点以产生组合的组成型和可诱导载体体系用于高脂肪酸和TAG分析、累积和储存。
[1710] 在其它的可诱导启动子之外,另一选择是可以通过使用仅在特定发育阶段或者尽在特定组织中有活性的启动子来对基因表达进行临时性地和空间性的限制。內源化学可诱导启动子也被用于将表达限制在特定的发育窗口期。
[1711] 本领域技术人员将会认识到,在不脱离广义描述的本发明精神或范围的情况下,可以对具体实施方案中所示的发明进行多种改变和/或修改。因此,本实施方案在所有方面都应视为示例性而非限制性的。
[1712] 本申请要求2011年12月27日提交的US 61/580590和2012年10月25日提交的 US 61/718,563的优先权,其二者的整体内容均援引加入本文。
[1713] 本文所讨论和/或参考的所有出版物整体援引加入本文。
[1714] 已包括在本说明书中的对文件、行动、材料、装置、物品等的任何讨论仅仅是为了向本发明提供背景。不应视作承认任何或所有这些事项因为其在本申请各权利要求项的优先权日之前已存在而构成了现有技术基础的一部分或是本领域中与本发明相关的常见性一般知识。
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