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一种膝多糖的提取与纯化方法

阅读:522发布:2023-02-11

专利汇可以提供一种膝多糖的提取与纯化方法专利检索,专利查询,专利分析的服务。并且本 发明 公开了 牛 膝多糖的提取与纯化方法,包括以下步骤:A1牛膝多糖的粗提;A2牛膝多糖的纯化:A21 DEAE-Sepharose fast-flow柱色谱:ABP粗品溶于10mmol/L 磷酸 盐 缓冲液,pH 6.8,使其浓度约为30%,每次上样量60L;DEAE-Sepharose fast-flow柱预先用上述缓冲液平衡,上样后,用同样缓冲液洗脱,流速约300ml/min,按旋光检测收集多糖组份,然后减压浓缩;A22 Sephadex G-150柱色谱:浓缩液上Sephadex G-150柱,用0.2mol/L NaCl洗脱,按旋光检测收集多糖组分;经中空 纤维 透析 器 对蒸馏 水 透析脱盐,减压浓缩, 冷冻干燥 ,得白色冻干粉ABP。采用本发明的方法提高了总多糖的含量及其纯度。,下面是一种膝多糖的提取与纯化方法专利的具体信息内容。

1.一种膝多糖的提取与纯化方法,其特征在于,包括以下步骤:
A1牛膝多糖的粗提:
将新鲜牛膝根晒至干皱,含份<7%,用粉碎机粉碎并过筛;称取约60目牛膝根粉,装入多功能提取罐,加工业乙醇,加热80℃回流4h;滤除乙醇,残渣减压蒸发至干,再装入提取罐;每次加蒸馏水,在100℃下搅拌提取3次,每次时间分别为5h、4h、3h;3次提取液合并,加热至沸,在搅拌下缓缓加入1%鞣酸溶液,待反应完全,继续煮沸15min,加入三次合并的提取液重量的2%活性炭,搅拌10min,抽滤除去沉淀及活性炭,得无色澄清滤液;滤液经中空纤维透析器对蒸馏水透析至无鞣酸为止;然后真空浓缩至约为三次合并的提取液原体积的1/10;浓缩液内加入3倍重量的80%乙醇,调PH至10,得白色沉淀;沉淀用80%乙醇洗涤几次,然后依次用90%、95%和无水乙醇脱水,60℃真空干燥,得粗品ABP;
A2牛膝多糖的纯化:
A21 DEAE-Sepharose fast-flow柱色谱:
ABP粗品溶于10mmol/L磷酸盐缓冲液,pH 6.8,使其浓度约为30%,每次上样量60L;
DEAE-Sepharose fast-flow柱预先用上述缓冲液平衡,上样后,用同样缓冲液洗脱,流速约
300ml/min,按旋光检测收集多糖组份,然后减压浓缩;
A22 Sephadex G-150柱色谱:
浓缩液上Sephadex G-150柱,用0.2mol/L NaCl洗脱,按旋光检测收集多糖组分;经中空纤维透析器对蒸馏水透析脱盐,减压浓缩,冷冻干燥,得白色冻干粉ABP。

说明书全文

一种膝多糖的提取与纯化方法

技术领域

[0001] 本发明涉及中药有效成分提取方法,尤其涉及的是一种牛膝多糖(ABP)的提取与纯化方法。

背景技术

[0002] 中药牛膝(Radix Achyranthis Bidentatae)是苋科植物牛膝(Achyranthes bidentata B1.)的干燥根,它具有活血、通经、补肝肾、强筋骨之功用。在祖国医学中,牛膝被用于治疗多种疑难杂症,而且现代医学临床也证实牛膝对很多疾病有确切疗效。又因其原植物牛膝分布广泛,资源丰富,很有开发价值。牛膝含有多种次生代谢产物,如齐墩果酸及其皂甙、蒽醌类化合物、黄类化合物、生物蜕皮素等,它们都具有生理活性。牛膝还含有较高比例的可溶性多糖。牛膝多糖(Achyranthes bidentata polysaccharides,ABP)有显著的抗癌、抗放射、抗肝炎、抗衰老等功效,而且具有双向免疫调节作用。牛膝多糖又有分子量小,溶性好,毒性低的优点,不但可以口服,还可以注射,是一种很有前景的治疗用多糖药物。提取、分离、纯化牛膝多糖就显得特别重要,总多糖含量及纯度较高的牛膝多糖可为其药理及制剂研究提供原料。

发明内容

[0003] 本发明所要解决的技术问题是针对现有技术的不足提供一种牛膝多糖的提取与纯化方法。
[0004] 本发明的技术方案如下:
[0005] 牛膝多糖的提取与纯化方法,包括以下步骤:
[0006] A1牛膝多糖的粗提:
[0007] 将新鲜牛膝根晒至干皱,含水份<7%,用粉碎机粉碎并过筛;称取约60目牛膝根粉,装入多功能提取罐,加工业乙醇,加热80℃回流4h;滤除乙醇,残渣减压蒸发至干,再装入提取罐;每次加蒸馏水,在100℃下搅拌提取3次,每次时间分别为5h、4h、3h;3次提取液合并,加热至沸,在搅拌下缓缓加入1%鞣酸溶液,待反应完全,继续煮沸15min,加入三次合并的提取液重量的2%活性炭,搅拌10min,抽滤除去沉淀及活性炭,得无色澄清滤液;滤液经中空纤维透析器对蒸馏水透析至无鞣酸为止;然后真空浓缩至约为三次合并的提取液原体积的1/10;浓缩液内加入3倍重量的80%乙醇,调PH至10,得白色沉淀;沉淀用80%乙醇洗涤几次,然后依次用90%、95%和无水乙醇脱水,60℃真空干燥,得粗品ABP。
[0008] A2牛膝多糖的纯化
[0009] A21 DEAE-Sepharose fast-flow柱色谱:
[0010] ABP粗品溶于10mmol/L磷酸盐缓冲液,pH 6.8,使其浓度约为30%,每次上样量60L;DEAE-Sepharose fast-flow柱预先用上述缓冲液平衡,上样后,用同样缓冲液洗脱,流速约300ml/min,按旋光检测收集多糖组份,然后减压浓缩;
[0011] A22 Sephadex G-150柱色谱:
[0012] 浓缩液上Sephadex G-150柱,用0.2mol/L NaCl洗脱,按旋光检测收集多糖组分;经中空纤维透析器对蒸馏水透析脱盐,减压浓缩,冷冻干燥,得白色冻干粉ABP。
[0013] 目前有关牛膝多糖的提取、分离、纯化方法所提取牛膝多糖的含量和纯度都较低。采用本发明的方法提高了总多糖的含量及其纯度。
附图说明
[0014] 图1为苯酚-硫酸法测定牛膝多糖标准曲线;

具体实施方式

[0015] 以下结合具体实施例,对本发明进行详细说明。
[0016] 1试验方法
[0017] 1.1牛膝多糖的粗提
[0018] 将新鲜牛膝根晒至干皱(含水份<7%),用万能粉碎机粉碎并过筛。称取约60目牛膝根粉200kg,装入多功能提取罐,加工业乙醇400L,加热80℃回流4h。滤除乙醇(回收),残渣减压蒸发至干,再装入提取罐。每次加蒸馏水300L,在100℃下搅拌提取3次,每次时间分别为5h、4h、3h。3次提取液合并,加热至沸,在搅拌下缓缓加入1%鞣酸溶液,待反应完全(至滴入鞣酸溶液不出现混浊时为止),继续煮沸15min,加入2%的活性炭,搅拌10min,抽滤除去沉淀及活性炭,得无色澄清滤液。滤液经中空纤维透析器对蒸馏水透析至无鞣酸为止。然后真空浓缩至约为原体积的1/10。浓缩液内加入3倍量的80%乙醇,调PH至10,得白色沉淀;沉淀用80%乙醇洗涤几次,然后依次用90%、95%和无水乙醇脱水,
60℃真空干燥,得粗品ABP约48kg。
[0019] 1.2牛膝多糖的纯化
[0020] 1.2.1 DEAE-Sepharose fast-flow柱色谱:
[0021] ABP粗品溶于10mmol/L磷酸盐缓冲液(pH 6.8),使其浓度约为30%,每次上样量60L。DEAE-Sepharose fast-flow柱(30×45cm)预先用上述缓冲液平衡,上样后,用同样缓冲液(含1mol/L NaCI)洗脱,流速约300ml/min,按旋光检测收集多糖组份,然后减压浓缩。
[0022] 1.2.2 Sephadex G-150柱色谱:
[0023] 浓缩液上Sephadex G-150柱(4×47cm),用0.2mol/L NaCl洗脱,按旋光检测收集多糖组分。经中空纤维透析器对蒸馏水透析脱盐,减压浓缩,冷冻干燥,得白色冻干粉ABP约1.16kg。
[0024] 1.3多糖含量的测定
[0025] 1.3.1最大吸收波长的选择
[0026] 精确称取105℃干燥至恒重的葡萄糖24.76mg,定容至100ml容量瓶中,加蒸馏水至刻度,混匀。精确吸取该溶液0.5ml,加水1.5ml,加入5%苯酚溶液1.0ml,浓硫酸5.0ml,室温放置15min,然后置100℃恒温水浴中加热15min,取出,冷水中冷却至室温。以蒸馏水2.0ml同上法作空白对照,于380~580nm范围内测定吸收度,其最大吸收波长为490nm。
[0027] 1.3.2牛膝总多糖样品液的制备
[0028] 取干燥至恒重的牛膝约0.5g(5份),精确称取,用95%乙醇回流1h,醇提后药材挥散醇后用100ml蒸馏水回流1h,提取多糖,过滤,药渣用热水洗涤3次,合并滤液和洗液,置于500ml容量瓶中用蒸馏水定容,使其浓度约20μg/ml,供总多糖含量分析用。
[0029] 1.3.3标准曲线的绘制
[0030] 以干燥至恒重的葡萄糖为标准品,精确称取,用蒸馏水溶解定容,使其浓度为1.16μg/μl的标准溶液。另外取苯酚10g,加水150mL溶解,置于棕色瓶内,即苯酚试液。
精确吸取标准溶液10,20,40,60,80,100μl,分别置于有塞的试管中,各加蒸馏水使体积为
1ml,再各加苯酚试液1.0ml,摇匀,迅速滴加浓硫酸5.0ml,摇匀后置沸水浴中加热15min,取出冷却至室温;另取蒸馏水1ml,加苯酚和硫酸,同上操作为空白对照。用721型分光光度计于490nm处测定吸收度,以吸收度(A)为横坐标,浓度(C)为纵坐标,绘制标准曲线(图
2
1),得到回归方程:C=138.07A-1.4216,R =0.9993。
[0031] 1.3.4总多糖的含量测定
[0032] 精确吸取样品液1ml按标准曲线项下方法测定吸收度,根据回归方程,求得牛膝中总多糖平均含量为28.86%,RSD=2.30,n=5。
[0033] 1.3.5稳定性试验
[0034] 提取供试液,每隔30min测定一次吸光度,连续6次,以考察其稳定性。结果在显色3h内吸收度值无变化。
[0035] 1.3.6回收率测定
[0036] 精确称取牛膝样品1.0g(3份),再分别精确加入一定量标准牛膝多糖(0.5g),按样品溶液制备和多糖含量测定项进行操作,计算回收率平均值为99.11%,RSD=1.92,n=5。
[0037] 1.4纯度鉴定
[0038] 高压液相色谱法(HPLC)分析柱:TSK-2000SW,洗脱液为双蒸水,流速为1.0mL/min,检测方式为示差检测(RI)。经粗提取后进行纯化得到的牛膝多糖经HPLC分析柱,示差检测(RI),测得其纯度为98.62%。
[0039] 2小结
[0040] 本方法中牛膝根经热水提取、乙醇分级沉淀,酸去除蛋白质,再经DEAE-Sepharose fast-flow柱和Sephadex G-150凝胶过滤,洗脱液对蒸馏水透析、冻干,得到纯度为98.62%的牛膝多糖。因此,本方法提取、分离、纯化的牛膝多糖能作为其生物学功能研究的实验样品。
[0041] 应当理解的是,对本领域普通技术人员来说,可以根据上述说明加以改进或变换,而所有这些改进和变换都应属于本发明所附权利要求的保护范围。
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