腹膜透析法
专利汇可以提供腹膜透析法专利检索，专利查询，专利分析的服务。并且提供了含有三 磷酸 腺苷或其盐的腹膜 透析 液 及采用该 腹膜透析 液的腹膜透析法。它是即使长期实施透析也不会产生腹膜损伤的安全的腹膜 透析液 。，下面是腹膜透析法专利的具体信息内容。
1.腹膜透析液，其特征在于，含有三磷酸腺苷或其盐。
2.如权利要求1所述的腹膜透析液，其特征还在于，还含有葡萄糖及电 解质。
3.腹膜损伤预防治疗剂，其特征在于，以三磷酸腺苷或其盐为有效成分。
4.糖引起的细胞损伤的治疗剂，其特征在于，以三磷酸腺苷或其盐为有 效成分。
5.如权利要求4所述的治疗剂，其特征还在于，糖引起的细胞损伤为葡 萄糖引起的腹膜间皮细胞的损伤。
6.三磷酸腺苷或其盐在腹膜透析液的制备中的应用。
7.如权利要求6所述的应用，其特征还在于，所述透析液还含有葡萄糖 及电解质。
8.三磷酸腺苷或其盐在腹膜损伤预防治疗剂的制备中的应用。
9.三磷酸腺苷或其盐在糖引起的细胞损伤的治疗剂的制备中的应用。
10.如权利要求9所述的应用，其特征还在于，糖引起的细胞损伤为葡萄 糖引起的腹膜间皮细胞的损伤。
11.腹膜透析法，其特征在于，采用含有效量的三磷酸腺苷或其盐的透析 液。
12.如权利要求11所述的腹膜透析法，其特征还在于，在腹腔内植入了 导管的肾病患者的腹膜中，利用该导管注入含有效量的三磷酸腺苷或其盐的透 析液。
13.如权利要求11或12所述的腹膜透析法，其特征还在于，透析液中的 三磷酸腺苷或其盐的浓度为10～5000μM。
14.如权利要求11或12所述的腹膜透析法，其特征还在于，透析液中还 含有葡萄糖及电解质。
15.如权利要求14所述的腹膜透析法，其特征还在于，葡萄糖浓度为1000～ 4000mg/dl。
16.如权利要求11所述的腹膜透析法，其特征还在于，在腹腔内植入了 导管的肾病患者的腹膜中，利用该导管注入含有效量的三磷酸腺苷或其盐及生 理浓度的葡萄糖的透析液，然后注入含高浓度葡萄糖的透析液。
17.如权利要求16所述的腹膜透析法，其特征还在于，葡萄糖的生理浓 度为0.08～0.16％(w/v)，葡萄糖浓度为1000～4000mg/dl。
18.腹膜损伤的处置方法，其特征在于，给予有效量的三磷酸腺苷或其盐。
19.糖引起的细胞损伤的处置方法，其特征在于，给予有效量的三磷酸腺 苷或其盐。
20.如权利要求19所述的处置方法，其特征还在于，糖引起的细胞损伤 为葡萄糖引起的腹膜间皮细胞的损伤。
技术领域
本发明涉及腹膜透析时的腹膜损伤的预防治疗剂、不产生腹膜损伤等的安 全的腹膜透析液及使用了该透析液的腹膜透析法。
背景技术
其中，腹膜透析与血液透析相比，具有如下优点，即，无需机器和人手， 不去医院也可进行，由于腹膜透析是一个缓慢的过程，所以可保持病人身体状 况的稳定，不会导致低血压和透析后的疲劳感，而且无血液透析那样的时间限 制，因此近年来被广泛采用。
但是，腹膜透析是利用了作为半透膜的腹膜的透析，它是在腹腔内植入导 管、在其中注入含高浓度的葡萄糖的透析液、在存储5～6小时后排液的手段， 所以如果长期进行，则出现因高浓度的葡萄糖导致的腹膜硬化、腹膜炎等引发 腹膜功能损伤等问题。
发明的揭示
因此，本发明提供了不会产生腹膜损伤、可长期连续使用的腹膜透析液及 使用了该透析液的腹膜透析法。
本发明者着眼于覆盖腹膜表皮的腹膜间皮细胞，找寻可防止高浓度的糖存 在下产生的腹膜间皮细胞的损伤的成分，发现三磷酸腺苷(ATP)或其盐具有防 止腹膜间皮细胞受损的作用，所以ATP或其盐作为腹膜损伤预防治疗剂有用， 还发现如果掺入ATP或其盐，则可获得能够长期实施腹膜透析的透析液，从而 完成了本发明。
即，本发明提供了含有ATP或其盐的腹膜透析液。
此外，本发明提供了以ATP或其盐为有效成分的腹膜损伤预防治疗剂。
本发明还提供了以ATP或其盐为有效成分的糖引起的细胞损伤的治疗剂。
本发明还提供了ATP或其盐在腹膜透析液的制备中的应用。
本发明还提供了ATP或其盐在腹膜损伤预防治疗剂的制备中的应用。
本发明还提供了ATP或其盐在糖引起的细胞损伤的治疗剂的制备中的应 用。
本发明还提供了以采用含有效量的ATP或其盐的透析液为特征的腹膜透析 法。
本发明还提供了以给予有效量的ATP或其盐为特征的腹膜损伤的处置方 法。
本发明还提供了以给予有效量的ATP或其盐为特征的糖引起的细胞损伤的 处置方法。
利用本发明获得即使长期进行透析也不会产生腹膜损伤的安全的腹膜透 析液。
附图的简单说明
图1表示ATP对葡萄糖(5.8mM、75mM、140mM)引起的HPMC的细胞生存率(吸 光度)的下降的效果。
图2表示腺苷对葡萄糖(5.8mM、75mM、140mM)引起的HPMC的细胞生存率(吸 光度)的下降的效果。
图3表示ATP受体拮抗剂(舒拉明，Suramin，10μM)影响ATP对葡萄糖 (5.8mM、75mM、140mM)引起的HPMC的细胞生存率(吸光度)的下降的效果的结 果。
图4为表示ATP受体拮抗剂(活性蓝，Reactive Blue，2，30μM)影响ATP 对葡萄糖(5.8mM、75mM、140mM)引起的HPMC的细胞生存率(吸光度)的下降的 效果的结果。
图5表示ATP受体拮抗剂(PPADS，10μM)影响ATP对葡萄糖(5.8mM、75mM、 140mM)引起的HPMC的细胞生存率(吸光度)的下降的效果的结果。
实施发明的最佳方式
本发明所用的三磷酸腺苷(ATP)作为细胞功能的能量源而众所周知，但完 全未知其对细胞、特别是腹膜间皮细胞因高浓度的糖、特别是葡萄糖造成的损 伤有防止作用。此外，如下面的实施例所示，如果在ATP受体拮抗体对腹膜间 皮细胞进行前处理后使ATP发挥作用，则未见对腹膜间皮细胞损伤的改善作用。 由此可知，ATP的细胞损伤治疗作用并不是将ATP引入细胞内部作为能量源使 其发挥作用，而是通过ATP受体使其发挥作用。
作为ATP的盐，较好为钠盐等碱金属盐，镁盐和钙盐等碱土类金属盐等。
本发明的腹膜透析液含有有效量的ATP或其盐。腹膜透析液中的ATP或其 盐的浓度为10～5000μM，较好为50～3000μM，更好为50～2000μM。
本发明的腹膜透析液中除了ATP或其盐以外，最好还含有葡萄糖及电解质。 葡萄糖浓度为1000～4000mg/dl，特别好为1200～3600mg/dl。此外，电解质 可采用Na+、Ca2+、Mg2+及Cl-。Na+较好为100～200mEq/l，Ca2+较好为4～5mEq/l， Mg2+较好为1～2mEq/l，Cl-较好为80～120mEq/l。此外，最好还掺入乳酸等有 机酸30～50mEq/l。腹膜透析液的渗透压最好调整至300～700m0sm/l。余量为 水。
采用本发明的含有ATP或其盐的腹膜透析液可防止腹膜损伤，可防止因高 浓度的糖引起的细胞损伤，特别是腹膜间皮细胞损伤。这里，作为腹膜损伤可 例举腹膜炎、硬化性被囊性腹膜炎、顽固性延迟性腹膜炎、弥漫性腹膜炎等。 但是，本发明的腹膜损伤预防治疗剂及细胞损伤治疗剂不论腹膜透析液的形态 如何，可以口服、静脉内给药、肌内给药、局部给药等方式被使用。这些给药 剂型可通过掺入制药学所允许的载体、利用对本领域普通技术人员来说公知惯 用的制剂方法制得。
调制口服用固形制剂时，可在ATP或其盐中加入赋形剂，并根据需要加入 粘合剂、崩解剂、润滑剂、着色剂、矫味剂和脱臭剂后，通过常规方法制得片 剂、包衣片剂、颗粒剂、散剂和胶囊剂等。上述添加剂可采用该领域常用的添 加剂，例如，作为赋形剂可例举乳糖、白糖、氯化钠、葡萄糖、淀粉、碳酸钙、 白陶土、微晶纤维素、硅酸等，作为粘合剂可例举水、乙醇、丙醇、单糖、葡 萄糖液、淀粉液、明胶液、羧甲基纤维素、羟丙基纤维素、羟丙基淀粉、甲基 纤维素、乙基纤维素、虫胶、磷酸钙、聚乙烯吡咯烷酮等，作为崩解剂可例举 干燥淀粉、褐藻酸钠、琼脂粉末、碳酸氢钠、碳酸钙、月桂基硫酸钠、单甘油 硬脂酸酯、乳糖等，作为润滑剂可例举精制滑石粉、硬脂酸盐、硼砂、聚乙二 醇等，作为矫味剂可例举白糖、橙皮、柠檬酸和酒石酸等。
调制口服用液体制剂时，可在ATP或其盐中加入矫味剂、缓冲剂、稳定剂 和脱臭剂，通过常法制得内服溶液剂、糖浆剂、酏剂等。这种情况下，作为矫 味剂可例举香草醛等，作为缓冲剂可例举柠檬酸钠等，作为稳定剂可例举西黄 蓍胶、阿拉伯树胶和明胶等。
调制注射剂时，可在ATP或其盐中加入pH调整剂、缓冲剂、稳定剂、等 渗剂和居麻剂等，通过常法制得皮下、肌内及静脉内注射剂。这种情况下的pH 调整剂及缓冲剂可例举柠檬酸钠、乙酸钠、磷酸钠等。作为稳定剂可例举焦亚 硫酸钠、EDTA、巯基乙酸、硫代乳酸等。作为居麻剂可例举盐酸普鲁卡因、盐 酸利多卡因等。作为等渗剂可例举氯化钠和葡萄糖等。
本发明的前述医药品(腹膜透析液除外)的给药量因年龄、体重、症状、给 药方式及给药次数等而有所不同，通常成人最好1天1次或分数次口服或静脉 内给药1～1000mg的ATP。
采用腹膜透析液进行透析时，可按照一般的腹膜透析法实施。即，利用在 腹腔内植入了导管的肾病患者的腹膜中、通过该导管在其中注入含ATP的透析 液(通常1.5～2.0L)的方法，或者是利用注入含ATP的生理葡萄糖浓度液后再 注入以往的透析液(例如，上述高浓度的葡萄糖液)的方法实施透析，在存储约 5～6小时后排液。通常该操作1天进行3～5次。这里，葡萄糖的生理浓度为 0.08～0.16％(w/v)。
实施例
以下例举实施例对本发明进行更详细的说明，但本发明并不仅限于此。
实施例1
将腹膜间皮细胞(HPMC)在含ATP(0、10、100及1000μM)的培养液(M199) 中预培养3小时。用HPMC培养液(生理盐水缓冲剂)洗涤后，将其在含有3种 浓度(5.8mM、75mM、140mM)的葡萄糖的培养液(M199)中培养8小时，用细胞计 数法(WST-1)测定HPMC的细胞生存率。
其结果如图1所示，在不含ATP的培养液中对HPMC进行预培养的情况下， 随着葡萄糖浓度的提高细胞生存率下降，与此相反，如果在含ATP的培养液中 对HPMC进行预培养，则由高浓度的葡萄糖引起的细胞生存率的下降得到了实 质性的改善。
实施例2
用作为ATP代谢物的腺苷替代ATP，探讨其对高浓度葡萄糖中的HPMC的细 胞生存率的下降的作用。
其结果如图2所示，未确认腺苷对HPMC的细胞生存率的下降具有ATP那 样的改善作用。
实施例3
在实施例1的于含ATP的培养液中进行预培养之前，采用作为选择性的ATP 受体拮抗剂的(1)舒拉明(P2X、P2Y受体拮抗剂，10μM)、(2)活性蓝2(P2Y受 体拮抗剂，30μM)或(3)PPADS(P2X受体拮抗剂，10μM)，对HPMC进行30分钟 的预培养，然后与实施例1同样进行实验。
其结果如图3、4、5所示，如果使ATP受体拮抗剂发挥作用，则未确认ATP 对HPMC的细胞生存率下降的改善作用。
从实施例1的结果可知，ATP具有实质性地防止由高浓度葡萄糖引起的腹 膜间皮细胞的损伤的作用。从实施例2及3的结果可知，ATP的这种作用并不 是将ATP引入细胞内作为能量源使其发挥作用而产生的效果，而是通过P2受 体直接发挥作用。
实施例4
腹膜透析液的配方
(1)含ATP的透析液
在3种含葡萄糖的透析液(1.36、2.27、3.86％)中添加氯化钠、乳酸钠、 氯化钙、氯化镁等，使它们的浓度与以往相同，并添加ATP使其浓度达到50～ 2000μM。
(2)含ATP的生理葡萄糖浓度液
在生理葡萄糖浓度液(0.1％)中添加氯化钠、乳酸钠、氯化钙、氯化镁等， 使它们的浓度与以往相同，并添加ATP使其浓度达到50～2000μM。
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