辅因子-底物探针平台用于肿瘤缺氧相关酶的快速定量检测
阅读：609发布：2020-05-11
专利汇可以提供辅因子-底物探针平台用于肿瘤缺氧相关酶的快速定量检测专利检索，专利查询，专利分析的服务。并且辅因子-底物探针平台用于 肿瘤 缺 氧 相关酶的快速定量检测，其属于有机-金属超分子、 生物 无机和生物 荧光 探针领域。本 发明 致 力 于新型超分子探针开发和生物应用的研究，首次提出了辅因子模拟物和底物的融合策略，使酶催化双底物过程简化为单底物过程。使得传统依赖于辅因子浓度的荧光 传感器 不再受辅因子干扰，对目标酶的检测具有超快荧光 信号 响应。更重要的是由于不依赖辅因子，因此辅因子-底物探针的荧光强度与目标酶含量线性相关。该辅因子-荧光底物融合策略为新型快速定量检测缺氧酶提供了有效的工具，为生物示踪、 疾病 诊断等提供了新方法。，下面是辅因子-底物探针平台用于肿瘤缺氧相关酶的快速定量检测专利的具体信息内容。
1.一种用于组装NADH模拟物金属有机笼状配合物的二氢吡啶配体，其特征在于：二氢吡啶配体具备NADH传输电子的功能，该配体为式I所示化合物：
其中：
R1为提供配位原子的基团，R1采用2-吡啶基、2-巯基苯基、2-噻吩、2-吡咯、喹啉或异喹啉；
R2为苯基、氢、卤素、氰基、苄氧基。
2.根据权利要求1所述的一种用于NADH模拟物金属有机笼状配合物的二氢吡啶配体的制备方法，其特征在于，包括如下步骤：
(1)以丙炔酸甲酯、R2-CHO、醋酸铵和冰醋酸为原料制备中间体1所示化合物；所述醋酸铵：丙炔酸甲酯：R2-CHO的摩尔比为4:2:1；
(2)以所示中间体1、卤代化合物4-(2-氯乙基)吗啉、碱、有机溶剂为原料制备中间体2所示化合物；所述碱为碳酸钠、碳酸钾、碳酸铯或有机碱；所述有机溶剂选自丙酮、N,N-二甲基甲酰胺或1,4-二氧六环；所述中间体1：4-(2-氯乙基)吗啉的摩尔比为1:1.1；所述中间体
1：碱的摩尔比为1:2-4；
(3)以中间体2和80％水合肼反应，得到中间体3所示化合物；中间体2与80％水合肼的摩尔比1:5-10；
(4)以中间体3和R1-CHO在醋酸催化下反应，得到最终配体化合物式I结构；所述中间体
3：R1-CHO的摩尔比1:2。
3.根据权利要求1所述的二氢吡啶配体组装得到的NADH模拟物金属-有机笼状配合物，其特征在于：所述二氢吡啶配体与金属离子组装得到的M3N3型金属-有机笼状配合物，M为金属离子，N为二氢吡啶配体。
4.根据权利要求3所述的NADH模拟物金属-有机笼状配合物装配的辅因子-底物探针平台，其特征在于：所述探针平台采用NADH模拟物金属-有机笼状配合物作为主体部分，硝基还原酶荧光底物作为客体部分，辅因子-底物探针平台由NADH模拟物金属-有机笼状配合物和硝基还原酶荧光底物组装得到，NADH模拟物金属-有机笼状配合物与硝基还原酶荧光底物的摩尔比为1:1。
5.根据权利要求4所述的NADH模拟物金属-有机笼状配合物装配的辅因子-底物探针平台，其特征在于：所述硝基还原酶荧光底物为式Ⅱ或式Ⅲ的结构，硝基还原酶荧光底物的制备方法为：
其中：R3为酶催化的荧光底物的荧光团部分，R3采用2-苯基-3a，11b-二氢-1H-菲[9,10-d]咪唑基、萘基、喹喔啉基、卟啉基或卟吩基；
采用R3-OH或R3-NH2与硝基苄溴为原料，合成式Ⅱ或式Ⅲ的结构，作为硝基还原酶荧光底物。
6.根据权利要求4所述的NADH模拟物金属-有机笼状配合物装配的辅因子-底物探针平台的制备方法，其特征在于：
(1)将二氢吡啶配体与所需配位金属盐分别溶于有机溶剂中，将两种溶液充分混合搅拌，通过溶剂挥发结晶、溶剂扩散结晶或加入小极性互溶溶剂沉淀出金属-有机配合物，通过核磁、质谱或单晶结构确认结构M3N3，M为金属离子，N为二氢吡啶配体；
(2)将上述金属-有机配合物和硝基还原酶荧光底物混合，得到辅因子-底物主客体探针。
7.根据权利要求4所述的NADH模拟物金属-有机笼状配合物装配的辅因子-底物探针平台的应用，其特征在于：NADH模拟物金属-有机笼状配合物与硝基还原酶荧光底物融合成辅因子-底物超分子探针平台应用于硝基还原酶的定量检测。
8.根据权利要求7所述的NADH模拟物金属-有机笼状配合物装配的辅因子-底物探针平台的应用，其特征在于：所述辅因子-底物探针平台应用于溶剂中的硝基还原酶的定量检测，向辅因子-底物主客体探针Tris-HCl缓冲液中加入硝基还原酶0-5μg/mL进行荧光滴定实验和荧光动力学实验。
辅因子-底物探针平台用于肿瘤缺氧相关酶的快速定量检测
技术领域
背景技术
[0002] 缺氧是许多癌症的一项重要指标，与肿瘤的各种生理活动密切相关。目前，许多基于底物的酶促荧光探针通过使用靶向低氧激活的方法鉴定癌细胞中低氧酶的位置和表达水平，用于溶液、癌细胞和小动物体内低氧酶异常水平的检测和成像，对癌症的早期诊断和监测治疗至关重要。然而，缺氧酶的浓度和表达水平通常在不同的细胞和肿瘤中差别很大，甚至相同的细胞中也有差异。当一定量的传统探针用于检测时，未知浓度的辅因子和酶两个变量都会导致探针发射随时间发生显着变化，传统探针很难排除辅因子浓度对检测结果的干扰，酶含量与荧光响应没有显示出稳定的线性关系。因此，传统的探针方法来定量检测酶含量，准确区分正常和疾病状态的酶活性变化仍然是一项具有挑战性的课题。
[0003] 对于传统的探针来说其对体内缺氧酶含量的检测高度依赖于辅因子的含量，通常在溶剂检测辅因子依赖性的缺氧酶实验中，研究人员通过加入大量过量(几十倍到几百倍摩尔量)的辅因子，从而消除酶催化反应中辅因子浓度干扰，使得辅因子浓度相控制不再制约缺氧酶催化底物的最大反应速率，响应信号只与酶含量相关。这种方法消除了辅因子的浓度对酶催化探针荧光开启速率的限制，以实现精确、快速的检测。但是细胞中检测时，不同种类的细胞，甚至在具有不同缺氧条件的相同细胞中，缺氧酶和相应辅因子的表达水平是不固定的，而且也无法实现溶剂实验中辅因子大大过量的条件。因此，将基于辅因子-底物的探针组合到一个超分子系统中，该体系中辅因子和底物两者之间具有明确的化学计量比，并且相互接近的主客体分子将促进电子转移效率，这将使探针与酶的反应速率不被内源辅因子浓度干扰，对于快速定量检测很有帮助。
[0004] 金属-有机多面体笼具有酶高效催化底物转化的能力，研究人员使用具有特定亲-疏水腔的金属-有机笼作为独特的主体来催化化学转化。将辅因子模拟物直接引入到金属-有机笼状配合物的骨架中，使催化活性位点靠近底物，并促进反应物之间有效的电子转移过程。将基于酶底物的发光探针封装在辅因子组装的“分子容器”中，得到一种可用于区分和定量检测正常状态和疾病状态下不同酶活性的重要工具。这种新型辅因子-底物结构的主-客体超分子探针融合策略使发光底物、辅因子和酶的氧化还原反应能够有效发生，表现出出色的动力学特性。
发明内容
[0005] 本发明的目的是提出一种基于辅因子-底物探针平台用于肿瘤缺氧相关酶的快速定量检测，包括其制备方法和生物测试应用，金属-有机笼状配合物作为NADH模拟物与底物融合成准分子与酶催化反应，将多底物反应变为单底物反应的策略。通过减少底物种类，缩短各底物之间距离，促进反应动力学改变。
[0006] 本发明的技术方案如下：
[0007] 基于辅因子-底物探针平台结构、基本配体组成单元及酶催化反应，如图1所示。
[0008] 其中，主-客体探针 包括金属-有机笼状配合物主体部分(Zn-MPB)n+
和硝基还原酶荧光底物客体部分(L-NO2)。主体部分由配体(式I)和金属离子(M )组成的M3N3型金属-有机笼状配合物。客体部分由荧光团和对硝基苄基连接(式II、式III)。探针的反应原理：在NTR作用下，主-客体探针的硝基苯基团被还原成氨基苯，并进一步分子内裂解，荧光底物结构明显发生变化，因此相应的荧光响应随之开启。金属-有机笼状配合物作为NADH模拟物与底物融合成准分子与酶催化反应，将多底物反应变为单底物反应，通过减少底物种类，缩短各底物之间距离，促进反应动力学改变。
和硝基还原酶荧光底物客体部分(L-NO2)。主体部分由配体(式I)和金属离子(M )组成的M3N3型金属-有机笼状配合物。客体部分由荧光团和对硝基苄基连接(式II、式III)。探针的反应原理：在NTR作用下，主-客体探针的硝基苯基团被还原成氨基苯，并进一步分子内裂解，荧光底物结构明显发生变化，因此相应的荧光响应随之开启。金属-有机笼状配合物作为NADH模拟物与底物融合成准分子与酶催化反应，将多底物反应变为单底物反应，通过减少底物种类，缩短各底物之间距离，促进反应动力学改变。
[0009] 式I中配体的二氢吡啶部分结构与NADH类似，作为NADH模拟物活性部分，用于质子和电子传递；
[0010] 所述的配体制备方法，包括如下步骤：
[0011]
[0012] 其中：R1为提供配位原子的基团，R1采用2-吡啶基、2-巯基苯基、2-噻吩、2-吡咯、喹啉或异喹啉；R2为苯基、氢、卤素、氰基、苄氧基。R2采用苯基时，式Ⅰ的结构更优。
[0014] (2)以所示中间体1、4-(2-氯乙基)吗啉、碱、有机溶剂为原料制备中间体2所示化合物；所述碱为碳酸钠、碳酸钾、碳酸铯或有机碱；所述有机溶剂选自丙酮、N,N-二甲基甲酰胺或1,4-二氧六环；所述中间体1：4-(2-氯乙基)吗啉的摩尔比为1:1.1；
[0015] (3)以中间体2和80％水合肼反应，得到中间体3所示化合物；中间体2与80％水合肼的摩尔比1:5到1:10；
[0016] (4)以中间体3和R1-CHO在醋酸催化下反应，得到最终配体化合物式I结构；所述中间体3：R1-CHO的摩尔比1:2。
[0017] 其中：当R1为2-吡啶基，R2为苯基时，其制备方法如下：
[0018]
[0020] (2)以所示中间体1、卤代化合物4-(2-氯乙基)吗啉、碱(过量，>2eq)、有机溶剂为原料制备中间体2所示化合物；所述碱为碳酸钠、碳酸钾、碳酸铯或有机碱；所述有机溶剂选自丙酮、N,N-二甲基甲酰胺或1,4-二氧六环；所述中间体1：4-(2-氯乙基)吗啉的摩尔比为1:1.1；
[0021] (3)以中间体2和80％水合肼反应，得到中间体3所示化合物；中间体2与80％水合肼的摩尔比1:5到1:10；
[0022] (4)以中间体3和2-醛基吡啶在醋酸催化下反应，得到最终配体化合物式I结构；所述中间体3：2-醛基吡啶的摩尔比1:2。
[0023] 所述的荧光底物制备方法，包括如下步骤：
[0024]
[0025] 客体结构中，R3为酶催化的荧光底物的荧光团部分，可以是且不仅限于2-苯基-3a，11b-二氢-1H-菲[9,10-d]咪唑基团、萘基团、喹喔啉基团、卟啉或卟吩基团等；
[0026] (1)选择上述羟基、酚羟基或氨基荧光团R3-OH、R3-NH2；
[0027] (2)以上述荧光团和对硝基苄溴为原料，合成式II或式III结构，作为硝基还原酶荧光底物。
[0028] 当R3为2-苯基-3a，11b-二氢-1H-菲[9,10-d]咪唑基时，可采用以下方法进行式Ⅱ或式Ⅲ的合成：
[0029]
[0030] (1)以4-羟基苯甲醛(或4-氨基苯甲醛)、对硝基苄溴为原料，制备中间体4(或中间体5)所示化合物；所述4-羟基苯甲醛(或4-氨基苯甲醛)：对硝基苄溴的摩尔比为1:1；
[0031] (2)以所示中间体4(或中间体5)、9,10-菲咯醌、醋酸铵(>10eq)为原料，醋酸作溶剂，加热回流制备合成式Ⅱ或式Ⅲ的结构，作为硝基还原酶荧光底物；所述中间体4(或中间体5)：9,10-菲咯醌的摩尔比为3:1。
[0032] 所述的辅因子-底物主客体探针平台制备方法，包括如下步骤：
[0033] 1)选择上述式I中配体与所需配位金属盐分别溶于有机溶剂(乙腈、乙醇等)，选取一定比例的这两种溶液充分混合搅拌8h，通过溶剂挥发结晶、溶剂扩散结晶或加入小极性互溶溶剂沉淀出金属-有机配合物，通过核磁、质谱或单晶结构等数据确认结构M3N3；
[0034] 2)以上述配体与金属盐得到的金属-有机笼状配合物和硝基还原酶荧光底物混合，通过质谱、核磁或单晶确认辅因子-底物主客体探针的结构，分析金属-有机笼状配合物与荧光底物的化学计量比。
[0035] 所述的辅因子-底物主客体探针在溶剂中检测硝基还原酶的应用。
[0036] 一类用于溶剂中硝基还原酶定量快速检测的辅因子-底物主客体探针，测试方法：向新配置的硝基还原酶Tris-HCl缓冲液(10.0mM,pH 7.4,25℃)中加入辅因子-底物主客体探针(0-5μM)进行荧光滴定实验和荧光动力学实验。具有辅因子NADH功能的主体金属-有机笼与具有荧光指示功能的底物分子形成的超分子探针，将底物和辅酶模拟物融合成准分子结构，使硝基还原酶原有的辅酶NADH和底物双底物催化过程优化为单底物过程。使硝基还原酶的检测快速达到平衡，不再受NADH含量的影响，因此检测的荧光强度变化只与硝基还原酶含量变化有关，实现快速对硝基还原酶的定量检测。
[0037] 所述的辅因子-底物主客体探针在细胞中检测硝基还原酶的应用。
[0038] 一类用于细胞中硝基还原酶定量快速检测的辅因子-底物主客体探针，测试方法：配置DMEM培养基(加入FBS 10％，双抗1％)用于培养MCF-7和231细胞，配置1640培养基(加入FBS 10％，双抗1％)用于培养A549细胞。设置不同氧含量环境(20％，8％，0.1％)培养细胞6-12h后，再用辅因子-底物超分子探针进行孵育1min，进行不同氧含量下细胞的激光共聚焦荧光成像实验。相同氧含量环境(例如都在0.1％O2)下培养细胞6-12h，然后再辅因子-底物超分子探针对细胞进行不同的孵育时间(如0-10min)，开展细胞荧光成像随时间变化实验。
[0039] 所述的辅因子-底物主客体探针在活体动物中检测硝基还原酶的应用。
[0040] 一类用于小鼠活体内硝基还原酶定量快速检测的辅因子-底物主客体探针，测试方法：利用所需的癌细胞对裸鼠进行种瘤，在成瘤期对小鼠进行注射中所述的辅因子-底物超分子探针(一般注射浓度和范围为10-200μM、50-200μL)，进行小鼠瘤体荧光随时间变化成像实验。
[0041] 本发明的有益效果：
[0042] 通过将缺氧酶中最常见的辅因子NADH模拟物引入金属有机胶囊Zn-MPB的骨架中，我们在此提出了一种基于辅因子-底物的超分子探针 用于水溶液和生物系统中对缺氧酶硝基还原酶(NTR)的催化活性进行生物示踪成像。 作为准分
子结构可以直接一起与NTR反应，将天然NTR与硝基底物以及NADH的双底物酶催化过程优化成更简单的单底物催化过程。该方法在缺氧酶检测中消除了不同浓度对检测结果的干扰，荧光强度和酶含量之间的线性关系有望达到快速平衡。同时，将底物包含在含有NADH的宿主中可以减少外部NADH的转运时间，并缩短底物与辅因子活性位点之间的距离，从而能够对缺氧酶的含量水平进行快速的信号响应。
子结构可以直接一起与NTR反应，将天然NTR与硝基底物以及NADH的双底物酶催化过程优化成更简单的单底物催化过程。该方法在缺氧酶检测中消除了不同浓度对检测结果的干扰，荧光强度和酶含量之间的线性关系有望达到快速平衡。同时，将底物包含在含有NADH的宿主中可以减少外部NADH的转运时间，并缩短底物与辅因子活性位点之间的距离，从而能够对缺氧酶的含量水平进行快速的信号响应。
[0043] 1、该药品主要应用对象：主要适用于仿生催化、肿瘤成像诊断治疗等领域。
[0044] 2、市场及价格定位：由于生活水平的提高，人类寿命得到大幅提高，而老年人群里更易患癌症；另一方面，现代人们的不健康生活方式，吸烟、感染、职业暴露、环境污染、不合理膳食、遗传因素等都会导致癌症发病率增加。2018年CA:A Cancer Journal for Clinicians(影响因子223)期刊上一篇文章总结了当年全球肿瘤统计情况，结果显示全球185个国家地区估计有1819万癌症新增病例以及960万癌症死亡病例。而我国每天约有1万人确诊癌症，相当于平均每分钟就有7个人确诊癌症，我国癌症患病率处于国际中等偏上水平。癌症的早期诊断对于患者的治愈率和存活时间有着巨大的提升，该发明主要针对广谱的癌症标志物缺氧酶的活性的准确检测，来诊断是否患癌。另一方面，本发明还可以作为指导肿瘤切除手术显像剂。可以说在医疗健康领域有着广阔的应用前景。
[0045] 3、应用效益：癌症早期症状不明显，目前对早期癌症的筛查比较复杂昂贵，因此很多患者往往错过最佳治疗时间。将本发明应用到癌症早期诊断可快速对病症进行筛查，而且廉价易行，使得普通民众都能用得起。本专利所建立的方法将有助于解决这一问题，因此具有巨大的潜在经济价值。
[0046] 4、推广价值：据统计数据显示，全球癌症药物市场规模从2013年的729亿美元扩大至2017年的1106亿美元，复合年增长率达12.8％。随着癌症药物市场的进一步扩大，预计2030年以前，全球肿瘤市场销售额将超4000亿美元。本专利涉及的化合物目前还未形成产品，其相关产品一旦市场化，其市场价值将达到百亿元级别。
附图说明
附图说明
[0047] 图1是基于辅因子-底物探针平台结构、基本配体组成单元及酶催化反应图。
[0048] 图2是 的NOESY核磁谱图以及干扰物对其荧光选择性实验图。
[0049] 图3是L-NO2或 与NTR反应的荧光动力学测试图。
[0050] 图4是CCK8实验分析Zn-MPB和L-NO2分别对MCF-7细胞的毒性实验图。
[0051] 图5是L-NO2和 对不同缺氧处理MCF-7细胞的荧光成像图。
[0052] 图6是L-NO2和 对0.1％缺氧处理的MCF-7细胞不同孵育时间的荧光成像图。
[0053] 图7是注射L-NO2以及 对MCF-7成瘤小鼠荧光随时间成像图。
具体实施方式
[0054] 本发明提出了一种基于辅因子-底物探针平台并用于肿瘤缺氧酶的超快定量检测的策略，该主客体探针在溶剂、细胞以及活体实验中表现出超快定量检测的特征，下面结合实施例对本发明做进一步介绍。
[0055] 实施例1：辅因子-底物结构的超分子主客体探针的合成制备
[0056] 所述的 合成制备方法包括主体金属有机笼状配合物合成、NTR荧光底物合成以及 的制备。
[0057] 1.NTR荧光底物合成，包括如下步骤：
[0058]
[0059] (1)以对羟基苯甲醛和对硝基苄溴为原料合成化合物1
[0060] 室温下，将4-羟基苯甲醛(1g，8.20mmol)、对硝基苄基溴(1.7g，8.20mmol)、碳酸钾(1.7g，12.30mmol)和N，N-二甲基甲酰胺(10ml)的混合物在60℃下加热2小时。TCL监测反应进程，反应完成后将混合物冷却至室温，并倒入冷水(50ml)中。抽滤得到灰白色固体，用水(10ml×3)洗涤，真空浓缩并通过柱层析纯化，得到4-(4-硝基-苄氧基)-苯甲醛，产量1.56g，产率74％。1H NMR(400MHz,CDCl3)δ9.91(s,1H),8.27(d,J＝8.3Hz,2H),7.87(d,J＝
8.4Hz,2H),7.62(d,J＝8.3Hz,2H),7.09(d,J＝8.4Hz,2H),5.27(s,2H).13C NMR(101MHz,CDCl3)δ189.61,161.91,146.79,142.26,131.05,129.64,126.64,122.95,114.07,
67.83.ESI-MS m/z:[M+H]calculated for C14H12NO4+258.0761,found 258.0767。
8.4Hz,2H),7.62(d,J＝8.3Hz,2H),7.09(d,J＝8.4Hz,2H),5.27(s,2H).13C NMR(101MHz,CDCl3)δ189.61,161.91,146.79,142.26,131.05,129.64,126.64,122.95,114.07,
67.83.ESI-MS m/z:[M+H]calculated for C14H12NO4+258.0761,found 258.0767。
[0061] (2)以化合物1和9,10-菲咯醌为原料合成NTR荧光底物L-NO2
[0062] 将9,10-菲咯醌(166mg，0.8mmol)，4-(4-硝基苄氧基)-苯甲醛(617mg，2.4mmol)和乙酸铵(123mg，16mmol)的混合物在冰醋酸(4mL)中加热搅拌回流。反应完成后，将冷却至室温，抽滤收集所得浅黄色固体，并用过量的水和甲醇洗涤除去起始原料，DMSO中重结晶，产量295mg，收率83％。1H NMR(500MHz,DMSO)δ13.32(s,1H),8.85(dd,J＝16.6,8.3Hz,2H),8.59(d,J＝7.8Hz,1H),8.54(d,J＝7.9Hz,1H),8.28(dd,J＝8.7,1.9Hz,4H),7.78(d,J＝
8.5Hz,2H),7.76-7.70(m,2H),7.66-7.61(m,2H),7.28(d,J＝8.8Hz,2H),5.39(s,2H).13C NMR(126MHz,DMSO)δ158.81,149.08,147.06,144.76,136.88,128.30,127.75,127.48,
127.43,127.40,127.03,126.96,125.10,124.97,124.03,123.67,123.63,123.60,122.39,
121.82,115.25,68.20.ESI-MS m/z:[M-H]calculated for C28H18N3O3-446.1499,found446.1490。
8.5Hz,2H),7.76-7.70(m,2H),7.66-7.61(m,2H),7.28(d,J＝8.8Hz,2H),5.39(s,2H).13C NMR(126MHz,DMSO)δ158.81,149.08,147.06,144.76,136.88,128.30,127.75,127.48,
127.43,127.40,127.03,126.96,125.10,124.97,124.03,123.67,123.63,123.60,122.39,
121.82,115.25,68.20.ESI-MS m/z:[M-H]calculated for C28H18N3O3-446.1499,found446.1490。
[0063] 2.主体金属有机笼状配合物Zn-MPB合成，包括如下步骤：
[0064]
[0065] (1)以2-吗啉乙醇、二氯亚砜为原料制备如图化合物2
[0066] 将二氯亚砜(4.76g，40mmol)和10ml甲苯加入到圆底烧瓶中，并在冰浴中搅拌15分钟。然后，将2-吗啉-4-基-乙醇(1.31g，10mmol)溶解在甲苯(5ml)中，并用滴液漏斗缓慢滴加到冰浴的圆底烧瓶中。0℃下反应2小时后，将逐渐升温到90℃下再回流8小时。反应完成后，将混合物在冷盐水(50ml)中淬灭。然后将溶液的pH调节至10，用乙酸乙酯萃取，柱层析纯化，得到浅褐色油状化合物2(4-(2-氯乙基)-吗啉)，产量1.33g，收率89％。1H NMR(400MHz,CDCl3)δ3.75–3.69(m,4H),3.59(t,J＝6.9Hz,2H),2.72(t,J＝6.9Hz,2H),2.55–2.48(m,4H).13C NMR(101MHz,CDCl3)δ66.77,60.13,53.52,40.63.ESI-MS m/z:[M+H]+
calculated for C6H13ClNO150.0680,found 150.0677。
calculated for C6H13ClNO150.0680,found 150.0677。
[0067] (2)以醋酸铵、苯甲醛和丙炔酸甲酯为原料制备化合物3
[0068] 将丙酸甲酯(1.68g，20mmol)，苯甲醛(1.06g，10mmol)和乙酸铵(2.31g，30mmol)在冰醋酸(4.0mL)中80℃回流12小时。待反应完成冷却后，将固体产物抽滤并用Et2O(10mL×3)洗涤，得到黄色粉末粗产物化合物3，将其用乙醇重结晶，产量1.32g，产率48％。1H NMR(400MHz,DMSO)δ7.39(s,2H),7.26–7.18(m,4H),7.15–7.08(m,1H),4.75(s,1H),3.95(br,
1H),3.54(s,6H).13C NMR(126MHz,DMSO)δ166.75,147.11,135.08,127.95,127.50,126.15,
105.57,50.82,36.85.NMR(126MHz,DMSO).ESI-MS m/z:[M+H]calculated for C15H16NO4+
274.1074,found 274.1074。
1H),3.54(s,6H).13C NMR(126MHz,DMSO)δ166.75,147.11,135.08,127.95,127.50,126.15,
105.57,50.82,36.85.NMR(126MHz,DMSO).ESI-MS m/z:[M+H]calculated for C15H16NO4+
274.1074,found 274.1074。
[0069] (3)以化合物2和化合物3为原料制备化合物4(DMPDD)
[0070] 将化合物2(1.79g，12mmol)，化合物3(2.73g，10mmol)和碳酸钾(0.35g，25mmol)在丙酮中回流12小时以上，TCL检测反应进程，反应完成后冷却并过滤，收集有机相，并将固体用二氯甲烷充分洗涤，收集有机相。完成后，除去溶剂，并将粗产物通过柱色谱法纯化(乙酸乙酯/石油醚，1：10，v/v)，得到浅黄色固体DMPDD，产量2.04g，收率53％。1H NMR(400MHz,CDCl3)δ7.36–7.31(m,2H),7.25–7.20(m,4H),7.17–7.12(m,1H),4.87(s,1H),3.75–3.71(m,4H),3.63(s,6H),3.50(t,J＝6.1Hz,2H),2.63(t,J＝6.1Hz,2H),2.56–2.52(m,4H).13C NMR(101MHz,CDCl3)δ167.36,146.69,137.92,128.04,128.00,126.45,108.19,66.85,+58.28,53.62,51.63,51.29,37.05.ESI-MS m/z:[M+H]calculated for C21H27N2O5
387.1914,found 387.1911.
387.1914,found 387.1911.
[0071] (4)以化合物4和水合肼为原料，合成酰肼化合物5
[0072] 将80％水合肼(20ml)和化合物4(3.86g，10mmol)的混合溶液在120℃下搅拌回流12小时以上。反应完成后，将其收集并真空干燥。将粗产物通过快速柱色谱法纯化(CH2Cl2/CH3OH，40∶1，v/v)，得到浅黄色固体化合物5。产量3.46g，收率90％。1H NMR(400MHz,DMSO)δ
8.63(br,2H),7.31(d,J＝7.1Hz,2H),7.17(t,J＝7.4Hz,2H),7.12(s,2H),7.08(t,J＝
7.3Hz,1H),4.98(s,1H),4.41(br,4H),3.61–3.55(m,4H),3.49(t,J＝5.9Hz,2H),2.54–
13
2.48(m,2H),2.44(s,4H). C NMR(101MHz,CDCl3)δ172.08,139.20,132.99,132.93,
131.18,112.88,71.53,58.40,55.57,40.60.ESI-MS m/z:[M+H]calculated for C19H27N6O3+387.2139,found 387.2134。
8.63(br,2H),7.31(d,J＝7.1Hz,2H),7.17(t,J＝7.4Hz,2H),7.12(s,2H),7.08(t,J＝
7.3Hz,1H),4.98(s,1H),4.41(br,4H),3.61–3.55(m,4H),3.49(t,J＝5.9Hz,2H),2.54–
13
2.48(m,2H),2.44(s,4H). C NMR(101MHz,CDCl3)δ172.08,139.20,132.99,132.93,
131.18,112.88,71.53,58.40,55.57,40.60.ESI-MS m/z:[M+H]calculated for C19H27N6O3+387.2139,found 387.2134。
[0073] (5)以化合物为原料合成配体H2MPB
[0074] 将化合物5(3.86g，10mmol)加入到含有2-吡啶醛(2.68g，25mmol)的乙醇溶液(50mL)中。加入几滴乙酸后，将混合物在80℃下加热搅拌12小时以上。反应完成后冷却过滤收集浅黄色固体产物，用乙醇洗涤，真空干燥并从甲醇中重结晶，得到纯的化合物H2MPB。产量4.95g，收率88％。1H NMR(500MHz,DMSO)δ11.36(s,2H),8.57(d,J＝4.8Hz,2H),8.29(s,2H),7.86(d,J＝7.8Hz,2H),7.83(td,J＝7.6,1.7Hz,2H),7.47(s,2H),7.38–7.36(m,2H),
7.35(s,2H),7.22(t,J＝7.6Hz,2H),7.12(t,J＝7.3Hz,1H),5.31(s,1H),3.64(s,2H),3.60(s,4H),2.64(s,2H),2.50(s,4H).13C NMR(126MHz,DMSO)δ163.82,153.52,149.37,146.96,
145.03,136.65,135.86,127.92,127.65,126.10,123.91,119.51,108.26,66.28,57.75,
53.20,50.81,35.80.ESI-MS m/z:[M+H]calculated for C31H33N8O3+565.2670,found
565.2670。
7.35(s,2H),7.22(t,J＝7.6Hz,2H),7.12(t,J＝7.3Hz,1H),5.31(s,1H),3.64(s,2H),3.60(s,4H),2.64(s,2H),2.50(s,4H).13C NMR(126MHz,DMSO)δ163.82,153.52,149.37,146.96,
145.03,136.65,135.86,127.92,127.65,126.10,123.91,119.51,108.26,66.28,57.75,
53.20,50.81,35.80.ESI-MS m/z:[M+H]calculated for C31H33N8O3+565.2670,found
565.2670。
[0075] (6)Zn-MPB的组装合成
[0076] 将六水合高氯酸锌(18.6mg，0.05mmol)和H2MPB(28.5mg，0.05mmol)溶于CH3CN(10ml)中，得到黄色澄清溶液。搅拌4小时后，将溶液倒入乙醚中，得到黄色沉淀，离心分离1
并真空干燥，得到橘黄色粉末，产量35mg，产率75％。H NMR(400MHz,DMSO)δ11.45(br,6H),
8.44(m,12H),7.93(m,12H),7.47(m,12H),7.35(d,J＝5.8Hz,6H),7.22(s,6H),7.14(t,J＝
7.2Hz,3H),5.32(s,3H),3.77(s,6H),3.62(s,12H),2.77–2.50(m,18H).ESI MS m/z:[H2Zn3(MPB)3]2+＝942.54。
并真空干燥，得到橘黄色粉末，产量35mg，产率75％。H NMR(400MHz,DMSO)δ11.45(br,6H),
8.44(m,12H),7.93(m,12H),7.47(m,12H),7.35(d,J＝5.8Hz,6H),7.22(s,6H),7.14(t,J＝
7.2Hz,3H),5.32(s,3H),3.77(s,6H),3.62(s,12H),2.77–2.50(m,18H).ESI MS m/z:[H2Zn3(MPB)3]2+＝942.54。
[0077] 3. 的制备，包括如下步骤：
[0078] 将得到的Zn-MPB化合物与L-NO2分别溶解在氘代DMSO中，配置等浓度的溶液，并1:1混合。其NOESY核磁谱如图2A所示。L-NO2的N-H质子与Zn-MPB化合物中多个质子间具有相互租用，说明形成了主客体结构。ESI MS m/z:H2Zn3(MPB)3(L-NO2)]2+＝1166.17.[0079] 实施例2：基于辅因子-底物探针平台的溶剂性质测试
[0080] 辅因子-底物探针平台 的溶剂测试参照文献方法进行，并设置L-NO2为对照组，具体步骤为：
[0081] (1) 稳定性
[0082] 辅因子-底物超分子探针平台的稳定性决定了其应用能力和范围。在氘代DMSO中测试Zn-MPB和L-NO2混合物(1:1)的H-H相互作用，发现L-NO2的N-H与Zn-MPB的其他H有明显的相互作用，说明形成了 主客体结构。 在水性环境中的稳定性对于其在生物测试应用中起着决定性作用。在DMSO Tris-HCl缓冲液(v/v,DMSO 90％,25℃)中进行微量量热滴定和紫外-可见光吸收滴定实验。通过微量量热滴定计算出结合自由能为-9.43kcal/mol，结合常数为8.33×106M-1，说明的Zn-MPB和L-NO2相互作用。通过紫外-可见光吸收滴定计算出结合常数为1.70×106M-1。两种实验计算出的结合常数具有良好的匹配性，说明在测试条件下， 稳定存在。
[0083] (2)超分子探针与NTR相互作用
[0084] 与NTR相互作用才能说明主客体探针策略可能用于NTR活性检测。首先通过分子对接计算，算出了L-NO2与NTR结合口袋绑定的结合自由能为-8.78kcal/mol，与NTR结合口袋绑定的结合自由能为-11.03kcal/mol。计算说明Zn-MPB和L-
NO2与NTR结合后体系能量降低，可自发进行。为了进一步通过实验验证Zn-MPB与NTR结合，将Zn-MPB加入NTR前后进行MALDI-TOF MS测试，实验发现加入Zn-MPB前，NTR质谱的特征峰[M-H+]＝24715；加入Zn-MPB后，NTR-Zn-MPB质谱的特征峰[M-H+]＝25159，相比于NTR质谱数据，NTR-Zn-MPB复合物的形成使得NTR失去了一分子FMN(C17H20N4NaO9P,M＝478.3)、一分子NADH(C21H27N7Na2O14P2,M＝709.4)和14分子H2O。质谱数据验证了酶可以稳定的和Zn-MPB结合形成复合物。在Tris-HCl缓冲液(v/v,DMSO 1％,25℃)中进一步进行了微量量热滴定和紫外-可见光吸收滴定实验来验证它们的相互作用。通过微量量热滴定计算出结合常数为
6 -1
1.92×10M 。说明的Zn-MPB和L-NO2相互作用使得系统能量降低，可自发进行的。通过紫外-可见光吸收滴定计算出结合常数为1.30x106 M-1。两种实验计算出的结合常数具有良好的匹配性，说明在测试条件下，Zn-MPB和NTR能相互作用，超分子探针可能用于生物环境检测NTR活性。
NO2与NTR结合后体系能量降低，可自发进行。为了进一步通过实验验证Zn-MPB与NTR结合，将Zn-MPB加入NTR前后进行MALDI-TOF MS测试，实验发现加入Zn-MPB前，NTR质谱的特征峰[M-H+]＝24715；加入Zn-MPB后，NTR-Zn-MPB质谱的特征峰[M-H+]＝25159，相比于NTR质谱数据，NTR-Zn-MPB复合物的形成使得NTR失去了一分子FMN(C17H20N4NaO9P,M＝478.3)、一分子NADH(C21H27N7Na2O14P2,M＝709.4)和14分子H2O。质谱数据验证了酶可以稳定的和Zn-MPB结合形成复合物。在Tris-HCl缓冲液(v/v,DMSO 1％,25℃)中进一步进行了微量量热滴定和紫外-可见光吸收滴定实验来验证它们的相互作用。通过微量量热滴定计算出结合常数为
6 -1
1.92×10M 。说明的Zn-MPB和L-NO2相互作用使得系统能量降低，可自发进行的。通过紫外-可见光吸收滴定计算出结合常数为1.30x106 M-1。两种实验计算出的结合常数具有良好的匹配性，说明在测试条件下，Zn-MPB和NTR能相互作用，超分子探针可能用于生物环境检测NTR活性。
[0085] (3) 与L-NO2溶剂对比荧光测试
[0086] 在Tris-HCl缓冲液(10.0mM,pH 7.4,25℃)中进行NTR对 或L-NO2的荧光响应测试，表征其活性，激发光468nm，发射范围490到670nm，进行荧光滴定和荧光动力学(图3A，3B)测试。在 实验组测试(主客体探针5μM，NTR 0-5μg/ml)中，发现其快速响应NTR，五秒内即可完成荧光增强响应。而对比组(L-NO2 5μM，NADH 15μM，NTR 0-5μg/ml)则需要十分钟以上，荧光强度才会缓慢达到平衡状态，且最终强度明显小于主客体探针实验组。取530nm处荧光发射为基准，绘制荧光相对强度与反应时间和NTR量关系图(图
3C，3D)，可以看出因为 实验组与NTR超快平衡，荧光强度几乎不随时间变化，荧光强度只与NTR含量线性相关。而L-NO2对比组荧光强度与时间变化以及NTR含量都有关，无法很好地准确定量荧光强度与NTR含量的关系。说明 可以用于溶液中NTR的超快速准确定量检测。通过进一步荧光动力学实验和计算，相比于L-NO2对照组与NTR反应，实验组与NTR反应的最大反应速率和转换次数TON提高了至少100倍以上。说
明相比于传统的探针方法，辅酶-荧光底物主客体探针策略能够更快速、更准确的定量检测NTR。
3C，3D)，可以看出因为 实验组与NTR超快平衡，荧光强度几乎不随时间变化，荧光强度只与NTR含量线性相关。而L-NO2对比组荧光强度与时间变化以及NTR含量都有关，无法很好地准确定量荧光强度与NTR含量的关系。说明 可以用于溶液中NTR的超快速准确定量检测。通过进一步荧光动力学实验和计算，相比于L-NO2对照组与NTR反应，实验组与NTR反应的最大反应速率和转换次数TON提高了至少100倍以上。说
明相比于传统的探针方法，辅酶-荧光底物主客体探针策略能够更快速、更准确的定量检测NTR。
[0087] (4)其他生物分子干扰物对 响应硝基还原酶荧光测试
[0088] 细胞内环境十分复杂，考虑到要将 应用于后续的细胞及生物测试，必须在复杂的生理环境中排除其他离子或分子的干扰，依然对NTR具有准确的响应。选取细胞环境中常见干扰物种葡萄糖(50mM)、二硫苏糖醇(DTT 10mM)、各种氨基酸(1mM的D-Glu，L-Tyr，L-Pro，L-Arg，L-Asp和H-Cys-OH·HCl等)和血清白蛋白(BSA 1μg/mL)分别与(5μM)或L-NO2(5μM)进行干扰物对 响应硝基还原酶荧光测试
(如图2B)。相比于NTR(5μg/ml)，这些干扰物质没有引起 和L-NO2的明显荧光变化，说明它们能够高选择性的对NTR进行识别检测。进行了 和Zn-MPB在血浆及培养基中主体金属-有机笼状配合物的荧光测试(激发光375nm)。发现在十分钟内，和Zn-MPB在血浆和配置好的DMEM细胞培养基中其主体笼Zn-MPB的荧光强度
无明显变化，表明主体笼能够稳定存在于血浆和细胞培养基中，为后续细胞和生物提供了前提保证。
(如图2B)。相比于NTR(5μg/ml)，这些干扰物质没有引起 和L-NO2的明显荧光变化，说明它们能够高选择性的对NTR进行识别检测。进行了 和Zn-MPB在血浆及培养基中主体金属-有机笼状配合物的荧光测试(激发光375nm)。发现在十分钟内，和Zn-MPB在血浆和配置好的DMEM细胞培养基中其主体笼Zn-MPB的荧光强度
无明显变化，表明主体笼能够稳定存在于血浆和细胞培养基中，为后续细胞和生物提供了前提保证。
[0089] 实施例3：基于辅因子-底物探针平台的细胞实验测试
[0090] (1)Zn-MPB和L-NO2对细胞毒性实验
[0091] 在96孔板上接种培养细胞，并向细胞中分别加入0，1，2，5，10，20μM的Zn-MPB或L-NO2进行孵育24h后，通过CCK8分析实验(如图4)，测试化合物对MCF-7细胞的毒性。
[0092] (2) 不同缺氧程度或CoCl2处理细胞成像测试
[0093] 对不同缺氧程度(20％，8％，0.1％O2)处理6h的癌细胞(包括MCF-7、231和A549细胞)使用 (1μM)孵育1min后，进行激光共聚焦成像，激发波长488nm，荧光信号收集范围508-608nm。如图5，使用 (1μM)作为实验组，L-NO2(1μM)作为对照组，分别与不同缺氧处理的MCF-7细胞孵育1min后进行细胞成像测试。实验结果发现，随着细胞缺氧程度增加，所有测试的各种细胞的荧光强度逐渐增加，其中 实验组这一现象更为明显，其荧光强度明显高于对照组。0.1％缺氧程度的细胞， 处理组的荧光远高于对比组。
[0094] (3)利用 对0.1％O2缺氧处理的细胞进行荧光强度随孵育时间成像测试
[0095] 对0.1％O2缺氧处理的各种癌细胞(包括MCF-7、231和A549细胞)使用(1μM)孵育不同时间(0，1，3，5，10min)后，进行激光共聚焦成像，激发波长488nm，荧光信号收集范围508-608nm。如图6，使用 (1μM)作为实验组，L-NO2(1μM)作为对照组，分别与0.1％缺氧处理的MCF-7细胞孵育不同时间后进行细胞荧光成像测试。实验结果发现，随着药物孵育时间增加， 实验组的细胞荧光强度没有明显改变，孵育
1min即可使细胞的荧光强度达到平衡，后续增加孵育时间到10min对细胞荧光强度没有明显变化；而L-NO2对照组中，随孵育时间增加细胞荧光强度逐渐缓慢增加，但整体上明显弱于 实验组。细胞成像荧光动力学测试结果表明，能够快速对细胞缺氧程度及其相应的NTR进行生物荧光示踪。
1min即可使细胞的荧光强度达到平衡，后续增加孵育时间到10min对细胞荧光强度没有明显变化；而L-NO2对照组中，随孵育时间增加细胞荧光强度逐渐缓慢增加，但整体上明显弱于 实验组。细胞成像荧光动力学测试结果表明，能够快速对细胞缺氧程度及其相应的NTR进行生物荧光示踪。
[0096] 实施例4：基于辅因子-底物探针平台的小鼠活体实验测试
[0097] 将裸鼠腋下注射种瘤，分别建立MCF-7荷瘤小鼠模型，待成瘤后，注射(100μL，100μM)进行活体小鼠肿瘤荧光随时间变化(0，2，5，10min)成像测试(λex/λem＝470/530nm)(如图7)。设置L-NO2(100μL，100μM)作为对照组。测试结果表明， 实验组小鼠瘤体荧光强度在10min内即可达到峰值，而对照组小鼠瘤体荧光随时间增加缓慢，在
10min依然没达到平衡。 相比于传统生物探针，具有更快速对瘤体成像的能力。
10min依然没达到平衡。 相比于传统生物探针，具有更快速对瘤体成像的能力。
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