用于无菌制备脂质-核酸颗粒的单次使用系统 |
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| 申请号 | CN201280054023.X | 申请日 | 2012-11-02 | 公开(公告)号 | CN103906503B | 公开(公告)日 | 2016-12-14 |
| 申请人 | 日东电工株式会社; | 发明人 | V·克诺波夫; R·P·维特; P·卡尔玛里; R·李; D·韦布; | ||||
| 摘要 | 本文描述一种在无菌条件下简单且可重复地形成脂质-核酸纳米颗粒的方法，其包含单次使用的组件。 | ||||||
| 权利要求 | 1.一种用于无菌制备脂质-核酸纳米颗粒的系统，所述系统包含： |
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| 说明书全文 | 用于无菌制备脂质-核酸颗粒的单次使用系统[0001] 相关申请的交叉引用 技术领域[0003] 本申请涉及在无菌条件下简单且可重复地形成脂质-核酸纳米颗粒的方法的系统，其包含单次使用的组分。 背景技术[0004] 脂质可以用作载体用于递送治疗分子，特别是用于递送核酸。脂质形成脂质体，其可以包裹、络合或包埋核酸分子，从而在给药(例如静脉内给药至循环)时增加递送这类治疗分子至靶细胞。它们在药物组合物中的有用性受到可用于可重复地制备脂质-核酸纳米颗粒的方法的限制。已设计各种方法以制备这类纳米颗粒。 [0005] 一种简单且可重复地非超声制备仅由脂质(囊泡)组成的纳米颗粒的方法利用Batzri et al.,1973,Biophys Biochem Acta298:1015-19和Kremer et al.,1977,Biochemistry16:3932-35所述的乙醇注射，其中将溶于乙醇的脂质注射入水溶液以自发地形成脂质体。 [0006] Van Buitenen et al.US7468151描述了用于灭菌包括脂质体在内的微粒的回路系统。该回路系统包括连接至反流过滤(TFF)单元的混合室。TFF单元在无菌条件下纯化微粒的分散液。将液体从混合室无菌泵过TFF。通过混合室和TFF单元回收保留在TFF中的物质(保留物)直至纯化。在一个装置中无菌进行纯化过程而不移出TFF保留物中的微粒。 [0007] 其他人描述了利用特异性方法制备核酸-脂质体颗粒以组合脂质和核酸的过程。Hirota et al.,1999,BioTechniques27:286-89教导当将乙醇中的阳离子脂质注射入核酸的水溶液时，包被核酸分子的脂质体自发地形成。 Maurer et al.,2001,Biophysical J, 80:2310-26和Maurer et al.US7094423教导一种在脂质体中包裹核酸分子的方法。这种方法包括使用包含阳离子脂质的预制脂质体。通过将乙醇添加至水溶液来使脂质体不稳定。 将核酸分子添加至不稳定的脂质。当去除乙醇时，脂质体在复原的同时包裹核酸。Semple et al.,2001,Biophys Biochem Acta1510:152-66和Semple et al.US6858225教导了一种在脂质体中包裹核酸的可选方法。这种方法通过使用可电离的阳离子脂质形成脂质体来增加包裹效率。将脂质的乙醇溶液与在低pH下缓冲的水溶液中的核酸组合。然后去除乙醇，同时将pH升高至中性值。两种方法均需要所得脂质体的进一步加工，因为复原期间的聚集产生大小的广泛差异。 [0008] MacLachlan et al.US7901708描述了用于制备包裹核酸的均一大小的脂质体的方法和装置。将水性缓冲液中的RNA流与乙醇中的阳离子脂质体流在T连接器中以大约相等的流速混合，其中在高乙醇浓度(45％)中脂质囊泡立即形成。通过混合过程保持溶剂和溶质浓度恒定。不包括静态混合器，其中脂质体被稀释。在过程结束时将稳定的核酸脂质体灭菌，立即进行无菌填充步骤。 [0009] 上述方法需要大量劳动以最小化制备脂质体过程中的细菌污染，包括灭菌、洗涤和满足监管负担。对包裹核酸而不需要广泛的机械加工步骤以制备预制脂质体且不需要加工步骤将脂质-核酸颗粒减少至单分散群体的制备方法仍有相当的需求。发明内容 [0010] 本申请的一方面为一种用于无菌制备脂质-核酸纳米颗粒的系统，其包含： [0011] 第一盛放单元，其用于包含与水混溶的有机溶剂中的脂质的有机脂质溶液； [0012] 第二盛放单元，其用于包含治疗药物的水溶液； [0013] 混合单元，其具有静态混合器； [0014] 注射装置，其将所述有机脂质溶液添加至所述混合室； [0015] 第三盛放单元，其用于水性缓冲液； [0016] 稀释单元； [0017] 浓缩单元，其包含用于浓缩所述脂质体悬浮液并去除所述有机溶剂的反流滤器；以及 [0018] 单次使用的床，其用于在去除有机溶剂之后收集浓缩的脂质体悬浮液；其中所述混合单元包含所述药物水溶液，并且历时至少5分钟将所述脂质溶液稳定地添加至所述混合单元内的药物溶液中，以制备具有最多12:1的脂质:RNA比例的脂质-药物混合物，[0019] 其中将所述脂质-药物混合物转移至所述稀释单元并通过添加所述水性缓冲液进行稀释；并且 [0020] 其中所述系统由无菌且一次性的组件组成以适合单批使用。 [0021] 所述系统还可以包含连接至所述第一盛放单元的用于制备有机脂质溶液的单元。所述系统还可以包含用于在将有机脂质溶液转移至所述第一盛放单元时灭菌所述溶液的滤器。所述系统还可以包含无菌的脂质溶液、药物溶液、脂质-药物混合物和悬浮液。所述浓缩单元可以包含具有单次使用的泵室的隔膜计量泵。所述脂质可以包含阳离子脂质、辅助脂质、甾醇和聚乙二醇(PEG)-脂质缀合物，并且还包含靶向脂质。所述治疗药物为dsRNA分子。所述混合物中脂质和dsRNA的浓度由2.5:1的脂质:RNA电荷比例组成。所述与水混溶的有机溶剂可以为乙醇。所述第一和第二溶液可以在35-40℃的温度下组合。所述第二盛放单元可以包含pH 3.5-pH 4.5的水性缓冲液中的治疗药物。所述第三盛放单元可以包含中性pH的水性缓冲液。包裹所述治疗药物的脂质体的平均粒径可以为80nm-150nm。所述注射装置包含将所述有机溶液递送至所述混合单元中的水溶液的气水界面的注射口，或者包含浸入所述混合单元内的水溶液中并向其递送所述有机溶液的注射口。所述系统还可以包含冷冻干燥步骤。所述冷冻干燥步骤可以包含冷冻步骤和干燥步骤。所述水性缓冲液可以包含蔗糖或海藻糖。所述冷冻步骤可以以1℃/分钟将所述脂质-药物混合物从20℃冷却至-40℃。所述干燥步骤包含在约-15℃至约-35℃下干燥所述脂质-药物混合物的步骤。 附图说明 [0022] 图1示出本说明的单次使用的系统。 具体实施方式[0023] 本文涉及一种用于制备脂质包裹的治疗分子的方法，所述治疗分子包括带负电荷的治疗聚合物，例如核酸、蛋白和肽。本文包括一种用于制备脂质包裹的核酸分子的方法。所述方法特别适合大规模制备由脂质体包裹的治疗分子组成的颗粒。所述方法提供意想不到和令人惊讶的结果，即所制备的颗粒是单分散的(如本文所定义的，即少于0.2多分散性指数(PDI))，50-150nm的狭窄且均匀的大小分布。这种方法提供一种包裹方式，组合溶于与水混溶的有机溶剂如乙醇的脂质与溶于水溶液的带负电荷的治疗聚合物，并且去除有机溶剂。脂质和带负电荷的治疗聚合物的绝对和相对浓度足以制备小颗粒。通过本文的方法制备的颗粒不需要机械加工如挤出以获得单分散群体。 [0024] 本文的方法相对于以前的方法具有优势，其可以容易地放大至大体积，并且其对于广泛的温度、溶质、pH和加工时间是稳健的。 [0025] 本文的方法相对于以前的方法具有优势，其可重复地制备颗粒的均一群体而没有制备预制囊泡所需的额外步骤。 [0026] 本文的方法相对于以前的方法具有优势，其可重复地制备纳米颗粒的均一群体而没有机械加工脂质和带负电荷的治疗聚合物的混合物产生的颗粒所需的额外步骤。这些额外步骤包括例如超声、匀浆或挤出以减小它们的大小并使均匀性达到治疗可接受的范围。 [0027] 本文的方法具有优势，其达到等于或优于以前方法的核酸包裹效率而没有制备纳米颗粒的额外加工步骤。 [0028] 本文的方法的其他优势会随着本说明中提供的关于脂质组分和条件的进一步细节而变得显而易见。 [0029] 以下缩写用于本说明 [0030] VF：排气滤器 [0031] TG：温度计 [0032] SUB：单次使用的床 [0033] TFF：反流滤器 [0035] PG：压力计 [0036] 刻度：测量重量的方式 [0037] 图1示出包含以下元件的单次使用的系统。 [0038] 脂质储备：这个容器包含有机的与水混溶的溶剂中的所选脂质。据证实乙醇为优选溶剂。可以调整脂质的浓度以增加生产量。所述容器由具有TG和混合装置的一次性袋组成。所述袋具有用于添加96-100％乙醇中的脂质的开口、VF以及由阀控制的出口管。将所述袋放置在可加热的可重复使用的电接地的容器中。所述袋具有添加额外的乙醇以将脂质溶液稀释至操作浓度的装置。 [0039] PP1：蠕动泵1。其将脂质储备从脂质储备容器泵过0.45/0.22μm滤器至过滤的脂质储备容器。 [0040] 过滤的脂质储备：这个容器包含操作浓度的脂质。所述容器是具有混合装置和TG的一次性袋。其具有用于脂质储备进入的开口、VF以及由阀控制的出口管。将袋放置在可加热的可重复使用的电接地的具有刻度的容器中。 [0041] sRNA储备：这个容器包含水性缓冲液中的所选药物。siRNA为优选药物，并且柠檬酸盐缓冲液为优选缓冲液。可以调整浓度以增加生产量。所述容器是具有混合装置的一次性袋。所述袋具有用于添加溶质和溶剂的开口以及由阀控制的出口管。所述袋具有添加额外的缓冲液以将RNA溶液稀释至操作浓度的装置。 [0042] PP2：蠕动泵2。其将siRNA储备从siRNA储备容器泵过0.45/0.22μm滤器至过滤的siRNA储备容器。 [0043] 过滤的siRNA储备：这个容器包含操作浓度的siRNA。这个元件包含刻度。所述容器是置于可重复使用的容器中的一次性袋。其具有用于siRNA储备的开口以及由阀控制的出口管。将袋放置在可重复使用的具有刻度的容器中。 [0044] PP3：用于将过滤的脂质储备转移至标有35％乙醇中的脂质体siRNA的容器的蠕动泵3。其装有PG(PG1)。 [0045] PP4：用于将过滤的siRNA储备转移至35％乙醇中的脂质体siRNA容器的蠕动泵4。其也装有PG(PG2)。 [0046] 35％乙醇中的脂质体siRNA：这个容器包含在35％乙醇中的脂质体和 药物的混合物。这个元件包含VF和TG。用于过滤的脂质和siRNA储备的开口与由阀控制的出口管分开。优选单元是置于可重复使用的容器中的一次性袋。 [0047] 磷酸盐缓冲液：这个容器包含缓冲液(优选磷酸盐缓冲液)、混合装置和刻度。它是具有开口盖以及具有阀的出口管的大容器。 [0048] 过滤的磷酸盐缓冲液：这个容器通过管道、0.45/0.22μm滤器和蠕动泵连接至磷酸盐缓冲液容器。其具有混合装置以及具有阀的出口管，通过PP5通往管道至10％乙醇中的脂质体siRNA容器和TFF SUB容器。所述容器是衬有一次性衬垫的可重复使用的容器。 [0049] PP5：其将过滤的磷酸盐缓冲液从过滤的磷酸盐缓冲液容器泵至35％乙醇中的脂质体siRNA容器以及泵至TFF SUB容器。PP5连接至PG(PG4)。 [0050] 10％乙醇中的脂质体siRNA：这个容器包含通过过滤的磷酸盐缓冲液容器中的缓冲液稀释在35％乙醇的脂质体和药物之后10％乙醇中的脂质体和药物的混合物。所述容器是衬有一次性衬垫的可重复使用的容器，具有脂质体siRNA溶液的进口、VF、刻度以及具有阀的通往TFF SUB容器的出口。 [0051] PP6：这个将10％乙醇中的脂质体和药物从10％乙醇中的脂质体siRNA容器泵过0.45/0.22μm滤器至TFF SUB容器。 [0052] TFF SUB：这个容器包含来自10％乙醇中的脂质体siRNA容器的10％乙醇中的脂质体和药物的入口、来自过滤的磷酸盐缓冲液容器的缓冲液的入口以及来自TFF单元的保留物的入口，每个均具有阀。其还包含VF以及具有阀的出口。 [0053] 具有一次性泵头的计量泵：这个高压泵连接有两个PG(PG3和PG4)。其将脂质体和药物从TFF SUB转移至TFF单元。 [0054] TFF：这个单元确认为具有对角线的矩形对。操作期间，乙醇溶液中的脂质体/药物通过TFF单元以去除乙醇。通过TFF单元去除的乙醇离开系统。可以平行操作一个以上的TFF，通过阀连接。保留的溶液(保留物)离开TFF，再循环至TFF SUB，并且在需要去除所有乙醇时再循环通过TFF单元。压力计(PG4)监测保留物的压力。在需要产生背压时，N2罐中储存的氮气用来加强计量泵，并且最终促进TFF保留物转移至第一10L SUB容器。 [0055] 10L SUB：这是装有刻度的单次使用的容器。任选地，SUS包括一系列3个10L SUB容器。将TFF保留物泵过0.45/0.22μm滤器以减少生物负荷并确保产物完全不含可能已进入加工流的微生物污染所致的微生物污染。如果全流程真的无菌，则可以省略后来的过滤步骤。在无菌填充期间包装所得的TFF保留物。 [0056] 无菌填充：这个步骤在冷冻干燥之前，其利用不同设备作为单独的过程进行。冷冻干燥之前的无菌填充步骤可以包括添加载体物质如甘露糖、葡萄糖，或者用于提供膨胀性或在冷冻干燥步骤期间稳定RNA的其他物质。 [0057] 将系统排列用于手动控制材料移动通过每个步骤。与脂质、药物、溶剂和缓冲液接触的所有组分均为单次使用和一次性的。据证实所述系统为10L一批，并且可放大至超过1000L。组分设计为每批脂质体/药物使用一次。 [0058] 完成制备过程的设备以流程图(图1)所示的步骤的顺序放置如下。 [0059] 在脂质储备和siRNA储备容器中分别制备脂质和药物储备溶液。可以制备高浓度的储备溶液。通过在储备容器中搅拌来进行混合。可以将脂质储备溶液的温度调整至设定温度。选择用于制备脂质储备的容器以便在升高的温度下使用纯有机溶剂时具有最少可浸出物质。 [0060] 将储备溶液分别泵过0.45/0.22μm滤器至过滤的脂质储备容器和过滤的siRNA储备容器。可以将储备溶液与更多溶剂组合以在转移至过滤的储备容器之前或期间稀释储备溶液。 [0061] 以相同的方式在磷酸盐缓冲液容器中制备水性缓冲液，并且通过泵至过滤的磷酸盐缓冲液容器来过滤除菌。 [0062] 将过滤的siRNA溶液泵至35％乙醇中的脂质体siRNA容器。 [0063] 在受控制的设定温度下，以在35％乙醇的终浓度中有效形成脂质-药物颗粒的速率将有机溶剂中的脂质泵入35％乙醇中的脂质体siRNA容器中的siRNA水溶液，同时混合水溶液。 [0064] 添加脂质可以通过单个接口或多个接口进行，通过针或一套针。其可以水溶液表面的上方进行，或者可以将其从表面的下方注射入水溶液。通过添加和混合，35％乙醇中的脂质体siRNA容器中的溶液的乙醇浓度增加 至30％-40％，优选35％。增加是逐步的，形成从初始(优选0％)至最终(优选35％)值的梯度。这种梯度可以延伸1分钟-60分钟或更长。 [0065] 一旦35％乙醇中的脂质体siRNA容器中的溶液达到最终乙醇浓度(优选35％)，则将溶液泵出35％乙醇中的脂质体siRNA容器并与单独泵自过滤的磷酸盐缓冲液容器的缓冲液混合一致，以便稀释与水混溶的醇(优选10％-20％乙醇，最优选10％乙醇)中的混合物，并且转移至10％乙醇中的脂质体siRNA容器。 [0066] 将10％乙醇溶液对水性缓冲液渗滤以去除乙醇。 [0067] 将TFF保留物(0％乙醇，100水性缓冲液)储存在第一10L SUB中。 [0068] 可以任选地将TFF保留物过滤以减少生物负荷用于无菌填充。 [0069] 无菌填充包括冷冻干燥的步骤。冷冻干燥步骤与第10步产生无菌TFF保留物的过程不连续。即这个步骤优选在与提供TFF保留物的SUS单元不同的位置进行。可以在冷冻干燥之前添加碳水化合物如蔗糖或葡萄糖以稳定纳米颗粒和/或添加膨胀性。 [0070] 用于本文的方法的脂质混合物包含至少带正电荷的脂质(阳离子脂质)以与带负电荷的治疗聚合物和包含聚乙二醇的脂质缀合物(PEG-脂质)络合以防止聚集。阳离子脂质可以是在广泛的pH条件下永久的阳离子电荷；可电离的阳离子脂质，其在低pH(低于pH6)下带电荷而在中性pH(pH6.5-8)下没有净电荷；或者永久和可电离的阳离子脂质的组合。脂质混合物还可以包含靶向脂质、聚合物、类固醇、磷脂或另一脂质组的成员，包括脂肪、蜡、脂溶性维生素、单酸甘油酯或甘油二酯、脂肪酰基、甘油脂、甘油磷脂、鞘脂类、糖脂和聚酮。这种方法还可以用于仅用中性或带负电荷的组分形成脂质体。 [0071] 优选地，脂质混合物的组分可以选自以下组。 [0072] 阳离子脂质 [0073] 在本文的范围内为式I的阳离子脂质 [0074] [0075] 其中 [0076] Z＝烷基接头，C2-C4烷基 [0077] Y＝烷基接头，C1-C6烷基 [0078] R1和R2互相独立地为C10-C30烷基、C10-C30烯基、或C10-C30炔基、C10-C30烷基、C10-C20烷基、C12-C18烷基、C13-C17烷基、C13烷基、C10-C30烯基、C10-C20烯基、C12-C18烯基、C13-C17烯基、C17烯基；R3和R4互相独立地为氢、C1-C6烷基、或-CH2CH2OH、C1-C6烷基、C1-C3烷基；n为1-6；并且X为反荷离子，包括任何氮反荷离子，该术语在本领域中容易理解。优选的氮反荷离子包括卤素，特别优选氯化物和溴化物。另一优选的反荷离子为甲磺酸盐(-SO3CH3)。 [0079] 式I的示例性化合物包括： [0080] [0081] 其他在生理pH下带阳离子电荷的脂质包括但不限于N,N-二油基-N,N- 二甲基氯化铵("DODAC")；N-(2,3-二油基氧基)丙基)-N,N,N-三甲基氯化铵("DOTMA")；N,N-二硬脂基-N,N-二甲基溴化铵("DDAB")；N-(2,3-二油基氧基)丙基)-N,N,N-三甲基氯化铵("DOTAP")；N-(l,2-二肉豆蔻基氧基丙-3-基)-N,N-二甲基-N-羟基乙基溴化铵("DMRIE")、3β-(N-(N',N'-二甲基氨基乙烷)氨甲酰基)胆固醇("DC-Chol")、二十八烷基酰氨基甘氨酰基羧基亚精胺("DOGS")；以及N-(l-(2,3-二油基氧基)丙基)-N-(2-(精胺酰氨基)乙基)-N,N-二甲基三氟乙酸铵("DOSPA")。 [0082] 可电离的阳离子脂质 [0083] 在本文的范围内为式II的可电离的阳离子脂质 [0084] [0085] 其中 [0086] Z＝烷基接头，C2-C4烷基，-CH2SCH2CH2- [0087] Y＝烷基接头，C1-C6烷基 [0088] R1和R2互相独立地为C10-C30烷基、C10-C30烯基、或C10-C30炔基、C10-C30烷基、C10-C20烷基、C12-C18烷基、C13-C17烷基、C13烷基、C10-C30烯基、C10-C20烯基、C12-C18烯基、C13-C17烯基、C17烯基；R3和R4互相独立地为氢、C1-C6烷基、或-CH2CH2OH、C1-C6烷基、C1-C3烷基。 [0089] 一些带正电荷的脂质具有生理pH或接近生理pH的pKa，并且在弱酸条件下为阳离子，在生理pH下为弱阳离子。这类可电离的阳离子脂质包括但不限于((2-((2-(二甲基氨基)乙基)硫代)乙酰基)氮烷二基)双(乙烷-2,1-二基)二四癸酸酯(“S104”)、(Z)-((3-(二甲基氨基)丙酰基)氮烷二基)双(乙烷-2,1-二基)二油酸酯(“i-Et-DODC”)、N-(2,3-二油基氧基)丙基)N,N-二甲基氯化铵("DODMA")和1,2-二油酰基-3-二甲基铵-丙烷("DODAP")。 [0090] [0091] [0092] 应当认识到如下文所示，可电离的脂质可以促进活性药物成分(API)的结合和/或释放。 [0093] [0094] 中性脂质 [0095] 中性脂质的实例包括但不限于磷脂、氨基脂质和鞘脂类。中性脂质包括两亲脂质。磷脂的代表性实例包括但不限于磷脂酰胆碱、磷脂酰乙醇胺、磷脂酰丝氨酸、磷脂酰肌醇、磷脂酸、棕榈酰油酰基磷脂酰胆碱、溶血磷脂酰胆碱、溶血磷脂酰乙醇胺、二棕榈酰磷脂酰胆碱、二油酰基磷脂酰胆碱、二硬脂酰基磷脂酰胆碱或二亚油酰基磷脂酰胆碱。缺少磷的其他化合物如鞘脂类、鞘糖脂家族、二酰基甘油和3-酰氧基酸也在称为两亲脂质的组内。此外，上述两亲脂质可以与包括甘油三酯和甾醇在内的其他脂质混合。 [0096] PEG-脂质 [0097] 双层稳定组分为缀合至脂质头基如磷脂酰乙醇胺的聚乙二醇("PEG")。另一双层稳定组分为缀合至神经酰胺的PEG。可以利用本领域技术人员已知并使用的标准偶联反应将PEG缀合至磷脂酰乙醇胺，或者缀合至神经酰胺。此外，预制的PEG-磷脂酰乙醇胺("PEG-PE")缀合物是可商购的。 [0098] 不同分子量的PEG可以用来形成本发明的双层稳定组分。不同分子量的PEG可商购自许多不同来源，或者，它们可以利用本领域技术人员公知的标准聚合技术来合成。在目前优选的实施方案中，聚乙二醇具有200-10000Da、优选500-4000Da、并且最优选1000-2000Da的分子量。一般来说，已发现增加PEG的分子量减少达到稳定所需的双层稳定组分的浓 度。 [0099] 可以将具有各种不同链长度和饱和程度的酰基链基团的磷脂酰乙醇胺缀合至PEG以形成双层稳定组分。这类磷脂酰乙醇胺是可商购的，或者可以利用本领域技术人员已知的常规技术分离或合成。优选具有C10-C20的碳链长度的包含饱和或不饱和脂肪酸的磷脂酰乙醇胺。还可以使用具有单或二不饱和脂肪酸以及饱和或不饱和脂肪酸的混合物的磷脂酰乙醇胺。合适的磷脂酰乙醇胺包括但不限于以下：二肉豆蔻酰基磷脂酰乙醇胺(DMPE)、二棕榈酰磷脂酰乙醇胺(DPPE)、二油酰基磷脂酰乙醇胺(DOPE)和二硬脂酰基磷脂酰乙醇胺(DSPE)。 [0100] 上述组合物还可以包含本领域已知的PEG缀合的脂质，包括PEG-磷脂和PEG-神经酰胺，包括选自以下的一种或多种分子：PEG2000-DSPE、PEG2000-DPPE、PEG2000-DMPE、PEG2000-DOPE、PEG1000-DSPE、PEG1000-DPPE、PEG1000-DMPE、PEG1000-DOPE、PEG550-DSPE、PEG550-DPPE、PEG-550DMPE、PEG-1000DOPE、PEG-胆固醇、PEG2000-神经酰胺、PEG1000-神经酰胺、PEG750-神经酰胺和PEG550-神经酰胺。 [0101] 此外，组合物还可以包括单分散(md)peg-脂质，其具有通式mdPEG-接头-脂质，实例包括但不限于83-羟基-3,6,9,12,15,18,21,24,27,30,33,36,39,42,45,48,51,54,57,60,63,66,69,72,75,78,81-二十七氧杂八十三烷酰基(heptacosaoxatrioctacontyl)(2, 3-双(十四烷基氧基)丙基)氨基甲酸酯(“HO-PEG1251-cBTP”)和134-羟基-3,6,9,12,15, 18,21,24,27,30,33,36,39,42,45,48,51,54,57,60,63,66,69,72,75,78,81,84,87,90, 93,96,99,102,105,108,111,114,117,120,123,126,129,132-四十四氧杂一百三十四烷酰基(tetratetracontaoxatetratriacontahectyl)(2,3-双(十四烷基氧基)丙基)氨基甲酸酯(“HO-PEG2000-cBTP”)。 [0102] [0103] 类固醇 [0104] 类固醇包括胆甾烷(例如，胆固醇)、胆烷和胆汁酸(例如，鹅脱氧胆酸酯和胆酸酯)、麦角甾醇、羊毛甾醇、皮质类固醇(例如，糖皮质激素)、孕烷(例如，孕酮)和植物甾醇。还可以以与亲水部分如聚乙二醇的缀合物形式包括这些。优选的类固醇为胆固醇。 [0105] 靶向脂质 [0106] 靶向脂质的实例为式(A)的化合物， [0107] L-X-R A [0108] 其中脂质(L)选自DSPE、DOPE和DC；接头(X)选自无(nothing)、PEG550、PEG2000、PEG-谷氨酸酯(-Glu)、Glu、C6、甘氨酸、和GluNH、N1,N19-双(3-(2-(2-(3-氨基丙氧基)乙氧基)乙氧基)丙基)-4,7,10,13,16-五氧杂十九烷-1,19-二酰胺；并且类视黄醇(R)选自维甲酸、阿达帕林、视黄醇、4-羟基(苯基)维甲酰胺(4-HPR)、视黄酸(维生素A)、9-(2,6,6-三甲基环己-1-烯-1-基)壬酸、3,7-二甲基-9-(2,6,6-三甲基环己-1-烯-1-基)壬酸、3,7-二甲基-9-(2,2,6-三甲基环己基)壬酸，以及任何部分或完全饱和的类视黄醇或者它们的衍生物。 [0109] 靶向脂质的另一实例为式(B)的化合物， [0110] R-X-R B， [0111] 其中接头(X)为N1,N19-双(3-(2-(2-(3-氨基丙氧基)乙氧基)乙氧基)丙基)-4,7,10,13,16-五氧杂十九烷-1,19-二酰胺(“双酰氨基-PEG”)或N1,N19-双(16,20-二氨基-15-氧代-4,7,10-三氧杂-14-氮杂二十级烷基(azaicosyl))-4,7,10,13,16-五氧杂十九烷-1, 19-二酰胺(“lys-双酰氨基-PEG-lys”)；并且类视黄醇(R)选自维甲酸、阿达帕林、视黄醇、 4-羟基(苯基)维甲酰胺(4-HPR)、和视黄酸(维生素A)、9-(2,6,6-三甲基环己-1-烯-1-基)壬酸、3,7-二甲基-9-(2,6,6-三甲基环己-1-烯-1-基)壬酸、3,7-二甲基-9-(2,2,6-三甲基环己基)壬酸，以及任何部分或完全饱和的类视黄醇或者它们的衍生物。 [0112] 脂质混合物中可以包括其他靶向分子，例如叶酸、维生素E、肽配体和/或单克隆抗体。 [0113] RNA-脂质颗粒组合物和制剂 [0114] 本文包括包含有或没有活性剂的脂质颗粒的组合物，其中所述活性剂在存在时与所述脂质颗粒相关联。在具体实施方案中，所述活性剂为治疗剂。在具体实施方案中，所述活性剂包裹在所述脂质颗粒的水性内部。在其他实施方案中，所述活性剂存在于所述脂质颗粒的一个或多个脂质层内。在其他实施方案中，所述活性剂结合至脂质颗粒的脂质外表面或内表面。 [0115] 在某些实施方案中，本发明的脂质颗粒与核酸相关联，导致核酸-脂质颗粒。在具体实施方案，核酸完全包裹在脂质颗粒中。如本文所用，术语“核酸”包括任何寡核苷酸或多核苷酸。包含多达50个核苷酸的片段一般称为寡核苷酸，而更长的片段称为多核苷酸。在具体实施方案中，本发明的寡核苷酸长度为15-50个核苷酸。 [0116] 在本文中术语“多核苷酸”和“寡核苷酸”指由天然存在的碱基、糖和糖间(骨架)键组成的核苷酸或核苷单体的聚合物或寡聚物。术语“多核苷酸”和“寡核苷酸”还包括这样的聚合物或寡聚物，其包含功能相似的非天然存在的单体或其部分。相对于天然形式，常优选这类修饰或取代的寡核苷酸，这是因为特性，例如增加的细胞摄取以及在核酸酶的存在下增加的稳定性。 [0117] 寡核苷酸可以为寡脱氧核糖核苷酸或寡核糖核苷酸。寡脱氧核糖核苷酸由脱氧核糖组成，脱氧核糖在这种糖的5'和3'碳处共价连接至磷酸酯以形成交替的不分支的聚合物。寡核糖核苷酸有相似的重复结构组成，其中每个核苷酸具有核糖基团。寡核糖核苷酸中可以包括修饰的核糖分子。 [0118] 存在于本发明的脂质-核酸颗粒中的核酸包括已知的任何形式的核酸。本文所用的核酸可以为单链DNA或RNA，或者双链DNA或RNA，或者DNA-RNA杂化物或PNA双链体的RNA-PNA和/或DNA-PNA杂化物。双链DNA的实例包括结构基因、包括控制和终止区的基因以及自我复制系统如病毒或质粒DNA。双链RNA的实例包括siRNA和其他RNA干扰试剂。单链核酸包括例如反义寡核苷酸、核糖核酸酶、微RNA和三链形成寡核苷酸。 [0119] 核酸可以具有各种长度，一般取决于核酸的具体形式。例如，在具体实施方案中，质粒或基因长度可以为约1,000-100,000个核苷酸残基。在具体实施方案中，寡核苷酸长度可以为约10-100个核苷酸。在各种相关实施 方案中，无论单链、双链或三链，寡核苷酸长度可以为约10-约50个核苷酸，约21-约50个核苷酸，约15-约30个核苷酸，约20-约30个核苷酸。 [0120] 在具体实施方案中，寡核苷酸(或其链)可以特异性杂交至靶多核苷酸或与靶多核苷酸互补。“可特异性杂交”或“互补”是用于指示足够程度的互补性的术语，从而DNA或RNA靶标与寡核苷酸之间发生稳定和特异性的结合。应当理解寡核苷酸不必与其靶核酸序列100％互补以便可特异性地杂交。当寡核苷酸与其靶标的结合干扰靶分子的正常功能以引起功用或由此表达的丧失，并且有足够程度的特异性碱基配对以避免在期望特异性结合的条件下(即，在体内测定或治疗的情况下在生理条件下，或者在体外测定的条件下在进行测定的条件下)寡核苷酸与非靶标序列的非特异性结合时，寡核苷酸可特异性地杂交。因此，在其他实施方案中，与其靶向或特异性杂交的基因或mRNA序列的区域相比，这种寡核苷酸包括1、2或3个碱基取代。 [0121] 在具体实施方案中，核酸-脂质颗粒可以与RNA干扰(RNAi)分子相关联。利用RNAi分子的RNA干扰方法可以用来破坏所关注的基因或多核苷酸的表达。siRNA是通常15-30个核苷酸长的RNA双链，其可以与称为RNAi诱导的沉默复合物(RISC)的细胞质多蛋白复合物相关联。装有siRNA的RISC介导同源mRNA转录物的降解；因此可以设计siRNA以高特异性地敲低蛋白表达。不像其他反义技术，siRNA通过非编码RNA控制基因表达所发展的天然机制来发挥功能。一般认为这是为什么它们的活性在体外和体内比反义寡核苷酸或核糖核酸酶更强的原因。RNAi试剂可以包括能够介导RNAi的DNA正义:RNA反义杂化物、RNA正义:DNA反义杂化物和DNA:DNA杂化物。因此，可以使用包含任何这些不同类型的双链分子的RNAi分子。此外，应当理解可以以各种形式使用RNAi分子和将RNAi分子引入细胞。因此，如本文所用，RNAi分子涵盖能够在细胞中诱导RNAi反应的任何和所有分子，包括但不限于包含两个不同链，即正义链和反义链的双链多核苷酸，例如小干扰RNA(siRNA)；包含形成双链区的互补序列的发夹环的多核苷酸，例如shRNAi分子，以及表达能够单独或与另一多核苷酸组合形成双链多核苷酸的一种或多种多核苷酸的表达载体。 [0122] RNA干扰(RNAi)可以用来特异性地抑制靶多核苷酸的表达。双链RNA 介导的基因和核酸表达的抑制可以根据本发明通过将dsRNA、siRNA或shRNA引入细胞或生物体来完成。siRNA可以为双链RNA，或者包含RNA和DNA的杂交分子，例如一条RNA链和一条DNA链，或者sisiRNA。 [0123] 可以根据本领域已知的方法容易地制备靶向特异性多核苷酸的RNAi分子。因此，本领域技术人员会理解各种不同的siRNA分子可以用来靶向特异性基因或转录物。在某些实施方案中，本发明的siRNA分子为长链，长度为16-30或18-25个核苷酸，包括其间的每个整数。 [0124] 一般来说，siRNA分子与靶DNA分子的一条链完全互补。在其他实施方案中，siRNA可以具有修饰的组成，例如2'脱氧或2'-O-甲基修饰。但是，在优选实施方案中，siRNA的整条链没有2'脱氧或2'-O-修饰的碱基。 [0125] 在某些实施方案中，本发明涉及用于制备脂质包裹的核酸颗粒的方法和组合物，其中核酸包裹在脂质层内。这类掺入siRNA寡核苷酸的核酸-脂质颗粒的特征在于使用各种生物物理参数，包括：(1)核酸比脂质比例；(2)包裹效率；以及(3)粒径。高包裹效率、良好的核酸酶抗性和血清稳定性以及可控的粒径(直径一般小于200nm)是期望的。此外，核酸聚合物的性质是明显的，因为努力赋予核酸酶抗性的核酸修饰增加治疗的费用，但是在许多情况下仅提供有限的抗性。除非另有说明，在本说明书中这些标准计算如下： [0126] 核酸比脂质比例是在限定的制品体积中核酸的量除以相同体积中脂质的量。这可以以摩尔/摩尔基础或重量/重量基础或重量/摩尔基础表示。对于最终的准备给药的制剂，在透析、色谱和/或酶(例如，核酸酶)消化已用来去除尽可能多的外部核酸之后计算核酸:脂质比例。 [0127] 包裹 [0128] 为了确定表示为脂质-核酸颗粒中包裹的siRNA百分比的siRNA包裹效率(EE)，利用RiboGreen测定如下。该方法可以用来确定溶液中双链和单链RNA或DNA浓度。 [0129] 设备包括BioTek Instruments,Inc.FLx800、可变移液器和涡旋混合器。试剂包括不含RNA酶的水(MilliQ级，或者相当)，20x TE缓冲液“不含RNA酶”(Invitrogen,T11493，或者相当)，Quant-iT RiboGreen试剂(Invitrogen,R11491)以及水中的10％曲拉通(Triton)X-100(Thermo Scientific,28314，或 者相当)。 [0130] 1X TE缓冲液的制备包括利用50mL量筒将38mL不含RNA酶的水转移入50mL离心管以及将2mL的20X TE缓冲液移入该离心管并利用涡旋器混合。 [0131] 1X TE缓冲液中2％曲拉通X-100和1％曲拉通X-100的制备包括分别将2mL或1mL的10％曲拉通X-100移入不含RNA酶的15mL锥形管，分别添加8mL或9mL的1X TE缓冲液，并且旋转以混匀。 [0133] 通过制备TE缓冲液中的RNA溶液并加入96孔板来制备标准品。如图1所示，将样品稀释至约80μg/mL siRNA的终浓度并转移至96孔板。添加RiboGreen工作液并与每个样品和标准品混合。分析之前将样品避光温育1-2分钟。 [0134] 然后将TE缓冲液中的1％曲拉通X-100添加至重复的样品，然后添加RiboGreen工作液。 [0135] 从利用每个样品所得的荧光平均值的荧光测量确定包裹效率，对外部样品的平均值基线测量(不存在RNA的RiboGreen试剂的荧光)进行修正，之后由于曲拉通X-100的存在，修正信号强度减少8％。然后利用以下等式计算包裹效率： [0136] EE＝(曲拉通样品–脂质体样品)/(曲拉通样品) [0138] 大小 [0139] 大小表示形成的颗粒的大小(直径)。可以利用Malvern Zetasizer Nano-ZS动态光散射(DLS)仪器确定大小分布。 [0140] 这种方法用来测量过程中(in-process)的脂质体样品的体积平均直径、Z-平均直径和多分散性。多分散性是粒径分布的数值。 [0141] 在室温下进行测量。应当将样品和试剂平衡至室温。确定体积加权的 平均粒径和多分散性指数。 [0142] 制备方法 [0143] 脂质体的制备 [0144] 可以将脂质混合物溶于与水混溶的有机溶剂，优选无水乙醇。在大多数实施方案中，以可商购的形式使用有机溶剂。 [0145] 在一示例性实施方案中，脂质混合物为阳离子氨基脂质、中性脂质(除氨基脂质以外)、类固醇(例如，胆固醇)和PEG修饰的脂质(例如，PEG-S-DMG、PEG-C-DOMG或PEGDMA)的混合物，共溶于有机溶剂。在优选实施方案中，脂质混合物基本上由阳离子氨基脂质、中性脂质、胆固醇和PEG修饰的脂质组成。在其他优选实施方案中，脂质混合物由各种摩尔比的阳离子脂质、DOPE(或其他辅助脂质，具有可电离或永久的阳离子电荷)、胆固醇和PEG缀合的脂质组成。优选的摩尔范围为40-60摩尔％阳离子脂质、10-30％中性脂质、20-40％胆固醇和1-10％PEG修饰的脂质。 [0146] 可以将靶向脂质以0.1-5的摩尔比(靶向脂质:总脂质)添加至脂质混合物，例如diVA-PEG750-diVA(或其他VA缀合的靶向脂质)。 [0147] 脂质的总浓度少于25mg/ml，优选少于5mg/ml。将脂质混合物通过膜如0.45或0.2μm滤器过滤。 [0148] 根据本发明，将脂质混合物与缓冲水溶液组合。缓冲水溶液可以是其中缓冲液具有低于脂质混合物中质子化脂质的pKa的pH的溶液。合适的缓冲液的实例包括柠檬酸盐、磷酸盐和乙酸盐。特别优选的缓冲液为柠檬酸盐缓冲液。优选的缓冲液在1-1000mM阴离子的浓度范围中，这取决于包裹的核酸的化学性质，并且缓冲液浓度的优化对于达到高负荷水平具有重要意义。可以适当地添加冷冻保护剂和/或非离子溶质，这会平衡整个颗粒膜的渗透势，例如在透析颗粒以去除乙醇时增加pH，或者与药学可接受的载体或稀释剂混合。缓冲液中核酸的量为约0.08-0.8mg/mL。 [0149] 在添加乙醇时，水溶液的温度为25-45℃，优选30-40℃。通过喷洒在气水界面上，在细流中，或者通过浸入水溶液的管递送的乙醇之间的液体-液体界面来将乙醇溶液添加至水溶液。 [0150] 通过重力或通过泵来添加有机溶液，以受控速率、优选恒定速率将有机溶液递送至水溶液。有机溶液的递送可以在1分钟-100分钟内进行，优 选1-25分钟。可以通过单一喷洒或流，通过管或喷嘴，或者通过多喷嘴系统来添加有机溶液。在将有机溶液加入水溶液的同时可以通过搅拌、振荡或再循环来混合所得的溶液。添加步骤获得优选25-45％乙醇，最优选35％乙醇的终浓度。 [0151] 通过透析或过滤，优选通过渗滤处理终溶液以去除有机溶剂。去除乙醇的同时，将水溶液转化为缓冲中性pH，pH6.8-pH7.5、优选pH7.2的水溶液，例如磷酸盐或HEPES缓冲液。优选在储存或使用之前例如通过0.22μm滤器过滤来将所得的水溶液灭菌。 [0152] 包裹带负电荷的治疗聚合物的脂质体 [0153] 本文所述的方法可用于制备具有带负电荷的治疗聚合物如RNA分子的脂质颗粒。在本文所述的方法中，将脂质的混合物与聚合物的水溶液组合。聚合物有效地包裹在所得的脂质颗粒中。 [0155] 在添加时带负电荷的聚合物的总电荷必须少于或等于脂质混合物中正电荷的数量，优选0.06-0.16(w:w)。例如，在使用RNA时，包裹的核酸以RNA:脂质0.06-0.16，电荷:电荷(-/+)，优选1:2.5-1:1的最终比例存在。 [0156] 当脂质混合物包含具有电荷的阳离子脂质时，可以在带负电荷的聚合物的存在下形成脂质囊泡以包裹并包埋聚合物。可以通过将介质的pH升高至生理pH或更高来中和所得的颗粒。以这种方式形成的囊泡提供核酸含量高的囊泡大小均匀的制剂。 [0157] 在任一情况下，包裹聚合物的囊泡(纳米颗粒)具有50-150nm的大小范围。 [0158] 根据本文所述的方法，将脂质混合物与可以包含带负电荷的聚合物的缓冲水溶液组合。缓冲水溶液可以是其中缓冲液具有低于脂质混合物中质子化脂质的pKa的pH的溶液。合适的缓冲液的实例包括柠檬酸盐、磷酸盐、乙酸盐和MES。特别优选的缓冲液为柠檬酸盐缓冲液。优选的缓冲液在1-1000mM阴离子的范围中，这取决于包裹的聚合物的化学性质，并且缓冲液浓度的优化对于达到高负荷水平具有重要意义。 [0159] 可以适当地添加冷冻保护剂和/或非离子溶质，这会平衡整个颗粒膜的 渗透势，在透析颗粒以去除乙醇时增加pH，或者与药学可接受的载体或稀释剂混合。 [0160] 对于RNA，本文所述方法的示意图如图1所示。通过将冻干或固体材料溶于水来制备溶液，优选例如用50mM柠檬酸盐缓冲在pH3.5-4.5下。缓冲液中核酸的量为0.08-0.8mg/mL。在添加乙醇时，水溶液的温度为25-45℃，优选30-40℃。如果使用单链核酸，在升高的温度下短暂加热是可用的，例如在65℃下1-2分钟。 [0161] 通过喷洒在气水界面上，在细流中，或者通过连接至具有水溶液的容器的管递送的乙醇之间的液体-液体界面来将乙醇溶液添加至水溶液。 [0162] 通过以受控速率，优选恒定速率将有机溶液递送至水溶液来添加有机溶液。有机溶液的递送可以在1分钟-100分钟中进行，优选1-25分钟。可以通过单一喷洒或流，通过管或喷嘴，或者通过多喷嘴系统来添加有机溶液。在将有机溶液加入水溶液的同时，可以通过搅拌、振荡或再循环来混合所得的溶液。添加步骤获得足以破坏脂质体双层结构的终浓度，优选25-45％乙醇，最优选35％乙醇。 [0163] 对于脂质-核酸颗粒，最终RNA浓度为0.001-1mg/ml，优选0.01-0.5mg/ml，最优选0.05-0.5mg/ml。最终药物/脂质比例为0.06-0.16w:w(2.5:1-1:1，电荷:电荷比例)。 [0164] 通过透析或过滤，优选通过渗滤处理终溶液以去除有机溶剂。去除乙醇的同时，将水溶液转化为缓冲在中性pH，pH6.8-pH7.5、优选pH7.2的水溶液，例如磷酸盐缓冲液。优选在储存或使用之前例如通过0.22μm滤器过滤来将所得的水溶液灭菌。 [0165] 最终包裹效率大于85％。最终平均粒径为50-150nm。多分散性指数PDI少于0.2，优选少于0.1。 [0166] 冷冻干燥 [0167] 本公开部分涉及冷冻干燥的药物组合物，在复原时，其具有最少量的大聚集体。这类大聚集体可以具有大于约0.2μm，大于约0.5μm，或者大于约1μm的大小，并且在复原溶液中可以是不期望的。可以利用各种技术测量聚集体大小，包括美国药典32<788>所示的那些方法，其援引加入本文。测试可以包括光阻粒子计数测试、显微粒子计数测试、激光衍射和单 粒子光学传感。在一实施方案中，利用激光衍射和/或单粒子光学传感测量给定样品中的粒径。动态光散射(DLS)可以用来测量粒径，但是其依赖于布朗运动，所以该技术不可以检测一些较大的颗粒。激光衍射依赖于颗粒与悬浮介质之间折射率的差异。该技术能够在亚微米至毫米范围内检测颗粒。可以在纳米颗粒悬浮液中确定相对少量(例如，约1-5重量％)的较大颗粒。单粒子光学传感(SPOS)使用稀悬浮液的不透光度以计数约0.5pm的单个颗粒。通过知道测量的样品中的颗粒浓度，可以计算聚集体的重量百分比或聚集体浓度(颗粒/mL)。 [0168] 聚集体的形成可以在冷冻干燥的冷冻和/或干燥步骤发生，例如由于颗粒表面的脱水。冷冻过程具有浓缩效果，在冰形成时可以减少颗粒之间的距离(Alison et al.,Biochim Biophys Acta.2000Sep29；1468(1-2):127-38；Armstrong and Anchordoquy,J Pharm Sci.2004Nov；93(11):2698-709)。通过在冷冻干燥之前于悬浮液中使用冻干保护剂如多糖可以避免这种脱水。合适的多糖包括蔗糖、乳果糖、乳糖、麦芽糖、海藻糖、或纤维素二糖、曲二糖、黑曲霉二糖、异麦芽糖、海藻糖、2-葡糖-β-葡糖苷、昆布二糖、龙胆二糖、松二糖、麦芽酮糖、帕拉金糖、gentiobiulose、甘露二糖、蜜二糖、车前二糖、芸香糖、芦丁糖(rutinulose)和木二糖。在一实施方案中，所述组合物包含为蔗糖的多糖。在另一实施方案中，所述组合物包含为海藻糖的多糖。申请人的结果显示，当与起始悬浮液相比时，在复原时获得相当的DLS大小分布。 [0169] 以前认为在玻璃状赋形剂中固定大分子的过程玻璃化在防止脂质体聚集中不是促进因素，并且需要糖的高渗溶液(Alison等人)。本发明人发现冷冻干燥的冷冻和干燥步骤的结果取决于一定的脂质:多糖比例(w:w)，这提供一种防止脂质体聚集、脂质体扩散屏障的破坏以及释放包裹的RNA以形成核酸脂质复合物的方式。在一实施方案中，所述组合物包含12-15％(w:w)蔗糖和5-20mg/ml脂质，优选12％蔗糖和9mg/ml脂质。更优选地，所述组合物还包含缓冲液，最优选中性pH的HEPES。 [0170] 冷冻干燥步骤在合适的玻璃容器中进行，优选10ml的圆柱形玻璃小瓶。所述玻璃小瓶必须承受在短时间内低于-40℃和高于室温的极端温度变化，并且切割为均匀形状。将包含填充剂(bulking agent)和包裹核酸的脂质 体的组合物添加至小瓶，优选体积为3ml，并且优选具有9mg/ml脂质。 [0171] 冷冻干燥的步骤可以包括在高于约-40℃，或者例如低于约-30℃的温度下冷冻所述组合物，形成冷冻的组合物，并且干燥所述冷冻的组合物以形成冻干的组合物。冷冻步骤优选在约6分钟内使得温度线性降低至最终温度，优选以1℃/分钟从20℃至-40℃。更优选地，可以使用12-15％的蔗糖，并且干燥步骤在约50-150毫托(mTorr)下，首先在约-15℃至约-35℃的低温下，然后在室温至约25℃的较高温度下，并且在3-7天内完成。在本公开的另一实施方案中，可以使用海藻糖，并且干燥步骤在约50-100毫托下，首先在约0℃至约-15℃的低温下，然后在较高温度下。 [0172] 在另一方面，本发明提供一种防止药物纳米颗粒组合物中颗粒大量聚集的方法，所述方法包括将糖和盐添加至冻干的制剂中以防止聚集以及从脂质体内部释放核酸。 [0173] 药物组合物 [0174] 本发明的脂质颗粒，特别是当与治疗剂关联时，可以配制为药物组合物，例如其还包含药学可接受的稀释剂、赋形剂或载体，如生理盐水或磷酸盐缓冲液，根据给药途径和标准药物实践来选择。 [0175] 在具体实施方案中，根据标准技术制备包含本发明的脂质-核酸颗粒的药物组合物，并且其还包含药学可接受的载体。一般来说，生理盐水用作药学可接受的载体。其他合适的载体包括例如水、缓冲水、0.9％盐水、0.3％甘氨酸、糖或多糖，例如蔗糖和/或海藻糖等，包括用于增加稳定性的糖蛋白，如白蛋白、脂蛋白、球蛋白。可以包括填充剂、冷冻保护剂和/或冻干保护剂以及金属清除剂如EDTA。在包含盐水或其他包含盐的载体的组合物中，优选在脂质颗粒形成之后添加载体。因此，形成脂质-核酸组合物之后，可以将组合物稀释入药学可接受的载体如生理盐水。 [0176] 可以通过常规的公知的灭菌技术将所得的药物制品灭菌。然后可以将水溶液包装使用或者在无菌条件下过滤并冻干，在给药之前将冻干的制品与无菌水溶液混合。在需要时所述组合物可以包含药学可接受的辅助物质以接近生理条件，例如pH调节剂和缓冲剂，张力调节剂等，如乙酸钠、乳酸钠、氯化钠、氯化钾、氯化钙等。此外，脂质悬浮液可以包括脂质保护剂，其在储存时保护脂质免受自由基和脂质过氧化损伤。亲脂性自由基猝 灭剂如生育酚和水溶性铁特异性螯合剂如铁草胺(ferrioxamine)是合适的。 [0177] 药物制剂中脂质颗粒或脂质-核酸颗粒的浓度可以广泛变化，即从少于约0.01重量％，通常为或至少为约0.05-5重量％至多达10-30重量％，并且会根据所选的具体给药模式主要通过流体体积、粘度等来选择。例如，可以增加浓度以降低与治疗相关的流体负荷。在患有动脉粥样硬化相关的充血性心力衰竭或严重高血压的患者中这可以是特别可取的。 可选地，可以将由刺激性脂质组成的复合物稀释至低浓度以减轻给药部位的炎症。在一组实施方案中，核酸具有连接的标记并用于诊断(通过指示互补核酸的存在)。在这种情况下，给药的复合物的量会取决于所用的具体标记、诊断的疾病状态和临床医生的判断，但是一般为约0.01-约50mg/公斤体重，优选约0.001-约5mg/kg体重。 [0178] 使用方法 [0179] 本文所述的脂质颗粒可以用来在体外或体内将核酸递送至细胞。虽然使用本发明的脂质颗粒和相关药物组合物的各种方法的以下描述通过与核酸-脂质颗粒相关的描述来示例，但是应当理解这些方法和组合物可以容易地适合递送任何治疗剂用于治疗会受益于这类治疗的任何疾病或病症。 [0180] 在某些实施方案中，本发明提供用于将核酸引入细胞的方法。用于引入细胞的优选核酸为siRNA、免疫刺激寡核苷酸、质粒、反义和核糖核酸酶。这些方法可以通过使本发明的颗粒或组合物与细胞接触足以发生细胞内递送的一段时间来进行。 [0181] 本发明的组合物可以吸附至几乎任何细胞类型。一旦吸附，核酸-脂质颗粒可以被一部分细胞胞吞，与细胞膜交换脂质或者与细胞融合。复合物的核酸部分的转移或掺入可以通过这些途径中的任一种进行。为了不限制本发明的范围，认为在颗粒通过胞吞作用摄入细胞的情况下，颗粒与核内体膜相互作用，导致核内体膜不稳定，可能通过非双层相的形成，导致将包裹的核酸引入细胞质。相似地，在颗粒与细胞质膜直接融合的情况下，当融合发生时，脂质体膜整合入细胞膜，并且脂质体的内容物与细胞内流体混合。当在体外进行时，细胞与脂质-核酸组合物之间的接触在生物相容的介质中进行。组合物的浓度可以根据具体应用而广泛变化，但是一般为1μmol-10mmol。在某些实施方案中，用脂质-核酸组合物处理细胞一般在生 理温度(37℃)下进行1-24小时的时间，优选2-8小时。对于体外应用，可以将核酸递送至培养物中生长的任何细胞，无论植物或动物来源、脊椎动物或无脊椎动物以及任何组织或类型。在优选实施方案中，细胞为动物细胞，更优选哺乳动物细胞，并且最优选人细胞。 [0182] 在一组实施方案中，将脂质-核酸颗粒悬浮液添加至60-80％汇合的平板细胞，其具有约103-约105个细胞/mL的细胞密度，更优选约2x104个细胞/mL。添加至细胞的悬浮液的浓度优选为约0.01-20μg/mL，更优选约1μg/mL。 [0183] 典型的应用包括利用公知的方法提供siRNA的细胞内递送以敲低或沉默特异性细胞靶标。可选地，应用包括递送编码治疗可用的多肽的DNA或mRNA序列。 [0184] 本发明的方法可以在体外、离体或体内实施。例如，本发明的组合物还可以用于在体内将核酸递送至细胞，使用本领域技术人员已知的方法。 [0186] 在其他方法中，可以通过将制品直接施用至组织来使药物制品与靶组织接触。施用可以通过局部、“开放”或“封闭”方法进行。“局部”表示将药物制品直接施用至暴露于环境的组织，例如皮肤、口咽、外耳道等。“开放”方法是包括切开患者的皮肤并直接可见施用药物制品的皮下组织的方法。这一般通过外科手术完成，例如胸廓切开术以接近肺，腹部探查术以接近腹部内脏，或者其他直接手术方法至靶组织。“封闭”方法为侵入性方法，其中内部靶组织并不直接可见，但是通过皮肤中的小伤口插入仪器来接近。例如，可以通过针灌洗来将制品给药至腹膜。同样地，可以通过如通常用于脊髓麻醉或脊髓的甲泛葡胺成像的在腰椎穿刺期间输液然后患者的适当定位来将药物制品给药至脑膜或脊髓。可选地，可以通过内窥镜设备给药所述制品。 [0187] 脂质-核酸组合物还可以在吸入肺的气雾剂中给药，或者通过在疾病部位直接注射来给药。 [0188] 本发明的方法可以在各种个体或宿主中实施。优选的个体或宿主包括 哺乳动物物种如人、非人灵长类、狗、猫、牛、马、羊等。在具体实施方案中，所述个体为需要治疗或预防疾病或病症的哺乳动物如人，例如诊断患有疾病或病症或者认为有疾病或病症风险的个体。 [0189] 本发明的脂质-治疗剂颗粒的剂量取决于治疗剂比脂质的比例以及基于患者的年龄、体重和疾病状况的主管医生的意见。 [0190] 在一实施方案中，本发明提供一种调节靶多核苷酸或多肽表达的方法。这些方法一般包括使细胞与本发明的脂质颗粒接触，所述脂质颗粒与能够调节靶多核苷酸或多肽表达的核酸相关联。如本文所用，术语“调节”指改变靶多核苷酸或多肽的表达。在不同实施方案中，调节可以表示增加或提高，或者其可以表示减少或降低。测量靶多核苷酸或多肽的表达水平的方法在本领域中是已知和可用的，并且包括例如采用反转录-聚合物链式反应(RT-PCR)和免疫组化技术的方法。在具体实施方案中，与适当的对照值相比，靶多核苷酸或多肽的表达水平增加或减少至少10％、20％、30％、40％、50％或大于50％。 [0191] 例如，如果期望多肽的表达增加，则核酸可以是包括编码期望多肽的多核苷酸的表达载体。另一方面，如果期望多核苷酸或多肽的表达减少，则核酸可以是例如反义寡核苷酸、siRNA或微RNA，其包含特异性杂交至编码靶多肽的多核苷酸的多核苷酸序列，从而破坏靶多核苷酸或多肽的表达。可选地，核酸可以是表达这样的反义寡核苷酸、siRNA或微RNA的质粒。 [0192] 在具体实施方案中，核酸活性剂或治疗剂选自siRNA、微RNA、反义寡核苷酸以及能够表达siRNA、微RNA或反义寡核苷酸的质粒，并且其中siRNA、微RNA或反义RNA包含特异性结合编码多肽的多核苷酸的寡核苷酸或其互补物(complement)，从而多肽的表达减少。 [0193] 在其他实施方案中，核酸为编码多肽或者其功能变体或片段的质粒，从而多肽或者其功能变体或片段的表达增加。 [0194] 在相关实施方案中，本发明提供一种治疗疾病或病症的方法，所述疾病或病症的特征在于个体中多肽的过量表达，所述方法包括向所述个体提供本发明的药物组合物，其中治疗剂选自siRNA、微RNA、反义寡核苷酸以及能够表达siRNA、微RNA或反义寡核苷酸的质粒，并且其中所述 siRNA、微RNA或反义RNA包含特异性结合编码所述多肽的多核苷酸的寡核苷酸或其互补物。 [0195] 在另一相关实施方案中，本发明包括一种治疗疾病或病症的方法，所述疾病或病症的特征在于个体中多肽的低表达，所述方法包括向所述个体提供本发明的药物组合物，其中治疗剂为编码所述多肽或者其功能变体或片段的质粒。 [0196] 实施例 [0197] 实施例1 [0198] 参考图1利用2种不同siRNA制备20L-200L的各种规模的脂质体/RNA纳米颗粒和仅脂质的纳米颗粒。 [0199] 将储备脂质溶液混合如下。将所有脂质组分(阳离子脂质、DOPE、胆固醇、PEG缀合的脂质和diVA-PEG750-diVA溶于无水乙醇至4.5mg/mL的重量浓度。使乙醇中的脂质升高至35-40℃并混合直至明显地溶解。 [0200] 将脂质溶液从脂质储备容器泵过0.45/0.22μm滤器至过滤的脂质储备容器。 [0201] 在siRNA储备容器中将siRNA以0.26mg/mL或0.16mg/ml的浓度溶于50mM柠檬酸盐缓冲液，这取决于最终siRNA比脂质比例。将siRNA溶液从siRNA储备容器泵过0.45/0.22μm滤器至35％乙醇中的脂质体siRNA容器。 [0202] 使35％乙醇中的脂质体siRNA容器至35-40℃，同时连续搅拌内容物。利用喷嘴将脂质溶液喷在包含siRNA的缓冲液的表面以自发地形成负载siRNA的脂质体。将脂质与siRNA组合以达到14:1或9:1(wt:wt)的最终总脂质比siRNA比例以及35％的乙醇浓度。 [0203] 然后将脂质体溶液用0.22μm过滤的PBS缓冲液稀释入20升Flex Boy单次使用的袋，至约10％的最终乙醇浓度。将所得的脂质体溶液浓缩，然后对10x体积的PBS渗滤以去除乙醇并交换缓冲液。利用装有单次使用的泵室、单次使用的软管和单次使用的中空纤维膜筒(cartridge)的Quattro Flow(隔膜)泵进行整个浓缩和渗滤步骤。通过0.45/0.22μm滤器过滤最终的悬浮液至最终的单次使用的收集瓶以减少生物负荷。结果如表1所示。 [0204] 表1 [0205] [0206] 脂质体的制备 [0207] 在一示例性实施方案中，脂质混合物为阳离子氨基脂质、中性脂质(除氨基脂质以外)、类固醇(例如，胆固醇)和PEG修饰的脂质(例如，PEG-S-DMG、PEG-C-DOMG或PEGDMA)的混合物，共溶于有机溶剂。在优选实施方案中，脂质混合物基本上由阳离子氨基脂质、中性脂质、胆固醇和PEG修饰的脂质组成。在其他优选实施方案中，脂质混合物由各种摩尔比的阳离子脂质、DOPE(或其他辅助脂质，具有可电离或永久的阳离子电荷)、胆固醇和PEG缀合的脂质组成。优选的摩尔范围为40-60摩尔％阳离子脂质、10-30％中性脂质、20-40％胆固醇和1-10％PEG修饰的脂质。可以将靶向脂质以0.1-5的摩尔比(靶向脂质:总脂质)添加至脂质混合物，例如diVA-PEG750-diVA(或其他VA缀合的靶向脂质)。脂质混合物还可以包括聚合物或加工助剂的混合物，其可以是天然(例如壳聚糖)或合成(例如PEI)来源。脂质的总浓度少于25mg/ml，优选少于5mg/ml。将脂质混合物通过膜如0.45或0.2μm滤器过滤。 [0208] 根据本发明，将脂质化合物与缓冲水溶液组合。缓冲水溶液可以是其中缓冲液具有低于脂质混合物中可质子化的脂质的pKa的pH的溶液。合适的缓冲液的实例包括柠檬酸盐、磷酸盐、乙酸盐和MES。特别优选的缓冲液为柠檬酸盐缓冲液。优选的缓冲液在1-1000mM阴离子的浓度范围中，这取决于包裹的核酸的化学性质，并且缓冲液浓度的优化对于达到高负荷 水平具有重要意义。可选地，可以使用用HCl、H2SO4等酸化至pH5-6的纯水。可以适当地添加非离子溶质，这会平衡整个颗粒膜的渗透势，例如，在透析颗粒以去除乙醇时增加pH，或者与药学可接受的载体如生理盐水混合。缓冲液还可以包括加工助剂(例如泊洛沙姆、表面活性剂、去污剂)、填充剂(例如，甘露醇)或冷冻保护剂(例如，蔗糖、海藻糖、半乳糖、菊粉)。缓冲液中核酸的量为约0.08-0.8mg/mL。 [0209] 在添加乙醇时，水溶液和乙醇的温度为25-45℃，优选30-40℃。通过液体-液体界面将乙醇溶液添加至水溶液，并且通过浸入水溶液的管或喷嘴递送乙醇。 [0210] 通过以受控速率，优选恒定速率将有机溶液递送至水溶液的泵添加有机溶液。有机溶液的递送可以在1分钟-100分钟中进行，优选2-20分钟。可以通过单一的孔或喷嘴，或者通过多孔或喷嘴系统添加有机溶液。单一(或多喷嘴阵列)的孔径可以为10-1000μm，优选300-600μm。添加可以通过将0-30psi施用于有机流以辅助分散来进行。在将有机溶液加入水溶液的同时，通过搅拌或再循环来混合所得的溶液。添加步骤获得优选25-45％乙醇，最优选35％乙醇的终浓度。 [0211] 通过透析或优选通过渗滤处理终溶液以去除有机溶剂。去除乙醇的同时，将水溶液转化为缓冲在中性pH，pH6.8-pH7.5、优选pH7.2的水溶液，例如磷酸盐缓冲液。缓冲液还可以包括加工助剂(例如泊洛沙姆、表面活性剂、去污剂)、填充剂(例如，甘露醇)或冷冻保护剂(例如，蔗糖、海藻糖、半乳糖、菊粉)。优选在储存或使用之前例如通过0.22μm滤器过滤来将所得的水溶液灭菌。 [0212] 这种脂质体制备方法可以与包含SUS亚单元系统的歧管SUS联用。这种歧管系统可以包含以下亚单元：脂质混合单元，其由用于制备与水混溶的有机溶剂中的脂质溶液的脂质混合袋、脂质盛放袋以及将脂质溶液从脂质单元转移至脂质盛放单元的装置组成；RNA混合单元，其由用于制备RNA溶液的RNA混合袋、RNA盛放袋以及将RNA溶液从RNA单元转移至RNA盛放单元的装置组成；将脂质溶液从脂质盛放袋转移至RNA溶液的装置；以及渗滤系统，其由中空纤维膜、单次使用的隔膜泵头以及各种盛放袋组成。 [0213] SUS设备可以是预先灭菌的，并且利用无菌连接/断开操作以利用无菌过程制备脂质体。无菌加工消除对最终灭菌(0.22μm)过滤的需要。没有0.22μm滤器允许加工更大范围的粒径(>200nm)，并且解决任何可能的滤器/药物产品相容性问题。 [0214] 实施例2：浓度对RNA-脂质粒径的影响 [0215] 这个实施例描述siRNA和脂质浓度对粒径的影响。 [0216] 通过本文所述的方法制备纳米颗粒。分别以50:10:38:2:5的摩尔比将阳离子脂质、DOPE、胆固醇、PEG-BML和diVA-PEG750-diVA溶于无水乙醇。将siRNA溶于pH4.5的50mM柠檬酸盐缓冲液。 [0217] 在混合容器中连续搅拌的同时使包含siRNA的缓冲液达到35-40℃。然后利用歧管/喷嘴阵列将乙醇/脂质混合物喷在包含siRNA的缓冲液的表面以自发地形成负载siRNA的脂质体。调整脂质和RNA浓度以达到0.05-0.5mg/mL的最终siRNA浓度范围、0.08(wt:wt)的药物:脂质比例以及35％的乙醇浓度。对于所有测试的条件，脂质比siRNA比例保持恒定。 [0218] 将负载siRNA的脂质体稀释至～10％乙醇以稳定颗粒，然后对10X体积的PBS(pH7.2)渗滤以去除乙醇并交换缓冲液。通过0.22μm的灭菌级PES滤器过滤最终产物以减少生物负荷。利用动态光散射(DLS)确定体积、平均粒径和多分散性指数(PDI)。结果如表2所示。 [0219] 表2 [0220] [0221] 结果显示粒径随着siRNA浓度(以mg/ml计)的增加而增加。减少脂质和siRNA浓度(保持相同的相对比例)减少粒径，而增加浓度会增加粒径。在所有情况下，0.05-0.5mg/ml的最终siRNA浓度产生具有96.7-141.9nm，小于150nm的平均粒径且具有少于0.2的多分散性指数的纳米颗粒。 [0222] 通过本文所述的方法制备了小于150nm的粒径和少于0.2的PDI，不 制备空的预制脂质囊泡和/或不机械加工。 [0223] 实施例3：过程参数对RNA-脂质颗粒形成的影响 [0224] 这个实施例描述各种过程参数对RNA-脂质颗粒形成的影响。在这个实验期间筛查几个参数，包括温度、乙醇浓度、缓冲液、脂质:siRNA比例以及用来分散脂质溶液的喷嘴类型。 [0225] 以40:30:25:5:2的摩尔比将HEDC、DOPE、胆固醇、PEG-BML和diVA-PEG750-diVA溶于无水乙醇。在混合容器中连续搅拌的同时使包含siRNA的缓冲液达到所示温度。然后利用喷嘴将乙醇/脂质混合物喷在包含siRNA的缓冲液的表面以自发地形成负载siRNA的脂质体。以所示药物/脂质比例和所示最终乙醇百分比将脂质与siRNA组合以达到0.1mg/mL的最终siRNA浓度。 [0226] 将siRNA溶于柠檬酸盐缓冲液，所述柠檬酸盐缓冲液浓度为25-100mM变化且pH3.5-pH6.5变化。混合物温度为25-45℃。最终乙醇浓度为25-45％。药物:脂质比例(wt/wt)为0.07-0.11。水合喷嘴内径(ID)为0.005-0.125英寸。每个条件均作为测量进行以比较每个过程参数的影响。除非说明，每个条件用50mM柠檬酸盐缓冲液，pH4.5，35℃，35％最终乙醇，0.07的药物:脂质比例以及0.005英寸的喷嘴ID进行。 [0227] 将负载siRNA的脂质体稀释至10％乙醇以稳定颗粒，然后对10X体积的PBS(pH7.2)渗滤以去除乙醇并交换缓冲液。通过0.22μm的灭菌级PES滤器过滤最终产物以减少生物负荷。 [0228] 表3示出pH对脂质-核酸纳米颗粒的平均直径和PDI的影响。增加缓冲液pH导致粒径增加，尽管小于150nm平均粒径。 [0229] 表3 [0230] [0231] 表4示出缓冲液浓度对各种参数的影响。结果显示增加缓冲液浓度减少siRNA回收率。平均粒径和PDI看来不受影响。对pH3.5观察到最小粒径，并且对25mM柠檬酸盐缓冲液观察到最大siRNA回收率。 [0232] 表4 [0233] [0234] 表5示出将水合温度从25℃增加至45℃，粒径从135.7减少至102.2nm，同时siRNA回收率从80％提高至87％。增加最终乙醇百分比会增加粒径，对siRNA回收率没有影响，但是将包裹效率减少至88％。 [0235] 表5 [0236] [0237] 表6示出渐增的药物:脂质比例减少，siRNA回收率从80增加至87％。在0.07药物:脂质(w:w)比例下观察到最大回收率。所有其他测量的特征均不受药物:脂质比例影响。鉴于Maurer等人和Semple等人的公开，这个结果是令人惊讶和出人意料的，两者均描述最佳回收率在等于或大于0.16的药物:脂质(w:w)(等于或小于6.25的药物:脂质(w:w))。目前的结果表明利用本发明获得了相反趋势。 [0238] 表6 [0239] [0240] 表7示出增加喷嘴ID25倍不影响粒径、包裹效率或siRNA回收率。用来将乙醇/脂质添加至缓冲液表面的喷嘴孔有很大的灵活性。这种灵活性在放大期间可以提供主要优点。 [0241] 表7 [0242] [0243] 实施例4：用于批量制备脂质体的所述方法与参考方法的比较 [0244] 这些结果比较本文所述的用于制备脂质/核酸颗粒的方法与Semple,等人的美国专利6,858,225所述的方法(对照方法或对照方法所用的对照组合物)，根据实施例3的组合物或利用对照方法制备。 [0245] 实施例3的组合物由以40:30:25:5:2的摩尔比共溶的阳离子脂质、DOPE、胆固醇、PEG缀合的脂质和靶向脂质组成(参见上文实施例2)。 [0246] 对照组合物由以25:20:45:10的摩尔比共溶的DODAP、DSPC、胆固醇和PEG-CER-14组成。 [0247] 在实施例3的方法中，将脂质以4.32mg/ml溶于无水乙醇，并且将siRNA以0.163mg/ml溶于50mM柠檬酸盐，pH4.5。在混合容器中连续搅拌的同时使siRNA溶液达到35-40℃。然后利用歧管/喷嘴阵列将乙醇/脂质混合物喷在包含siRNA的缓冲液的表面。最终的乙醇浓度为35％，并且最终的脂质/siRNA比例为14:1(w:w)。然后将所得的颗粒稀释至10％乙醇，然后对10x体积的PBS(pH7.2)渗滤。 [0248] 在对照方法中，将脂质以25mg/ml溶于无水乙醇，并且将siRNA以4.17mg/ml溶于300mM柠檬酸盐，pH4.0。在混合容器中连续搅拌的同时使包含siRNA的缓冲液保持室温。然后利用单一喷嘴将乙醇/脂质混合物喷在包含siRNA的缓冲液的表面以自发地形成负载siRNA的脂质体。最终的乙醇浓度为40％，并且最终的脂质/siRNA比例为6:1(wt:wt)。混合之后，将脂质/siRNA悬浮液转移入用2个100nm聚碳酸酯膜制备并在65℃下预平衡的10mL挤出机。在300psi下利用10通道挤出悬浮液。将所得的颗粒对10x体积的PBS，pH7.2渗滤。 [0249] 使每种方法所得的颗粒通过0.22μm滤器。如本文所述测量平均粒径、PDI和EE。 [0250] 实施例3的方法产生比没有挤出步骤的对照方法更小的脂质纳米颗粒。在挤出之前测量通过对照方法制备的颗粒的大小。利用对照方法制备自NDT-0009组合物的颗粒具有大于250nm颗粒的平均粒径。挤出和渗滤之后，平均粒径减少至128nm。实施例3的方法产生具有少于150nm的平均粒径的颗粒而不进行挤出。用对照组合物开始观察到相似的趋势。 [0251] 在将siRNA包裹入脂质纳米颗粒方面，实施例3的方法比对照方法更高效。通过实施例3的方法制备的颗粒的包裹效率(EE)高于通过对照方法形成的颗粒的包裹效率(在两种产物中于渗滤之前测量)。通过实施例3的方法制备的颗粒的EE大于95％，高于通过对照方法形成的颗粒的EE。在对照方法中，在渗滤之后去除了许多游离的siRNA，这导致最终产物的EE的提高。 [0252] 实施例3的方法产生具有比对照方法更高的包裹效率的纳米颗粒。如在两种产物中渗滤之后所测量的，通过实施例3的方法的siRNA的最终回收率是通过对照方法获得的回收率的2倍以上(72％比33％)。这些数据反映EE的提高以及在实施例3的方法中没有挤出步骤。实施例3的方法提供更好的siRNA回收率，因为对照方法的额外的挤出步骤结构上改变脂质体，并且显然从颗粒解离siRNA。这些结果表明本文所述的方法相对于对照方法提供若干优势，减少加工步骤的数目，同时提高包裹效率以及具有少于150nm的平均粒径的纳米颗粒的收率。 [0253] 实施例5：脂质体批量生产的放大期间变异性的比较 [0254] 用包括永久带电的(HEDC)阳离子脂质和可电离的(S104)阳离子脂质分子的不同脂质组合物进行实施例3所述的方法。以20:20:30:25:5:2的摩尔比将HEDC、S104、DOPE、胆固醇、PEG-BML和diVA-PEG750-diVA溶于无水乙醇。放大期间，评价不同siRNA分子、不同批体积以及不同siRNA(药物)/脂质比例。 [0255] 表8总结了表征条件范围所得的纳米颗粒的结果。 [0256] 表8 [0257] [0258] 结果显示本文所述的方法非常稳健。在跨越50倍范围的放大期间获得相似的粒径和PDI。粒径始终少于100nm，具有>90％的产物收率。多分散性指数值在非常低的范围中，表明接近单分散群体的囊泡。 [0259] 实施例6：对于包含蔗糖的制剂脂质体批量生产的放大期间变异性的比较 [0260] 用以20:20:30:25:5:2的摩尔比溶于乙醇的HEDC、S104、DOPE、胆固醇、PEG-BML和diVA-PEG750-diVA进行实施例3所述的方法。在如本文所述的囊泡的制品中包含蔗糖。评价不同的批体积并进行冻融。表9总结了表征一定范围的条件所得的纳米颗粒的结果。 [0261] 表9 [0262] 利用半单次使用的制备列制备的冷冻(包含蔗糖的)制剂 [0263] [0264] 结果显示冻融不改变脂质纳米颗粒的特性。结果还显示批次之间的变异性非常低，并且所述方法可重复地产生均匀的纳米颗粒。 [0265] 以建立通过冷冻干燥稳定药物:脂质颗粒的条件。可以将根据实施例2制备的药物:脂质颗粒冷冻干燥而不损失活性。其中形成药物:脂质颗粒的蔗糖的终浓度为8％(w/v)。通过添加蒸馏水来复原冻干制品，并且测量i.v.注射之后它们在小鼠肺中的转染活性。冷冻和融解复原制品不影响活性。表10所示的结果证实使用本文所述的方法制备的颗粒在冷冻干燥期间保留它们的特性，因此是稳定的。具体地，它们在冷冻干燥之前、期间和之后稳定并保留粒径。 [0266] 表10 [0267] 利用半单次使用的制备列制备的冷冻(包含蔗糖的)制剂 [0268] [0269] 颗粒的稳定性是脂质组成、脂质:RNA(w:w)值以及制剂中使用的多糖的选择的函数。本文所述的制备在体内表现出高生物活性的脂质:RNA复合物的稳定制剂的方法赋予建立药学可接受的制品的优势，并且因此促进基于脂质体的RNA递送。 [0270] 实施例7：脂质的浸入注射 [0271] 进行实施例3所述的方法，修改为利用浸入注射制备囊泡。以20:20:30:25:5:2的摩尔比将HEDC、S104、DOPE、胆固醇、PEG-BML和diVA-PEG750-diVA溶于乙醇。表11总结了与表面添加方法相比，表征浸入添加方法所得的纳米颗粒的结果。结果显示令人惊讶和出人意料的结果，当通过浸入注射将脂质添加至水相时，平均粒径大大减少。 [0272] 表11 [0273] 利用半单次使用的制备列制备的液体制剂 [0274] [0275] 利用半单次使用的制备列制备的冷冻(包含蔗糖的)制剂 [0276] [0277] 相同的加工方法用来制备在缓冲液中包含蔗糖的脂质体。表12总结了表征不同添加时间所得的纳米颗粒的结果，并且表13总结了与浸入添加相比，表征利用表面制备的纳米颗粒的结果。 [0278] 表12 [0279] 利用半单次使用的制备列制备的液体制剂 [0280] [0281] 表13 [0282] 利用半单次使用的制备列制备的液体制剂 [0283] [0284] 结果显示令人惊讶和出人意料的结果，当通过浸入注射以少于2分钟的添加时间将脂质添加至水相时，平均粒径大大减少。结果还显示令人惊讶的结果，当通过浸入注射将脂质添加至水相时，平均粒径大大减少。 |
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