病毒性
肝炎、酒精性肝炎、脂肪肝、日本血吸虫病等导致的慢性肝病是我国最常见 的
疾病、多发病。慢性肝病(主要是慢性病毒性肝炎)的重要病理
基础是肝纤维化。肝纤维 化的发生是
机体对
炎症的修复反应,如同瘢痕形成一样。肝穿标本分析表明轻型慢性肝 炎发生纤维化者有62.6%,中、重度者为100%;日本血吸虫病性肝纤维化是日本血吸虫 病的严重后果。其慢性肝病通过纤维化的发展走向肝硬化,乃至发生
门脉高压,肝性脑 病甚至肝癌等严重并发症。如能阻断、减轻肝纤维化,就能在很大程度上改善肝病的预 后,因而成为肝病
治疗的一个方向。
转化生长因子β(TGFβ)是肝纤维化形成过程中最重要的细胞因子之一,它通过自 分泌和旁分泌方式,对细胞的分裂增殖具有促进或抑制双重作用,是目前与肝纤维化相 关的肝脏贮脂细胞(又称肝星状细胞)重要的细胞调节因子。TGFβ的
信号转导首先是通过 靶细胞膜上的特异性受体而介导的。其功能性受体主要为I型受体(TβR I)和II型受 体(TβR II),TβR I为介导TGFβ促细胞外基质合成的信号通道,TβR II则与
细胞增殖、 分化密切相关。因此,利用
基因治疗抗肝纤维化的关键在于阻断TGFβ特异性受体介导 TGFβ的信号转导途径。
随着基因治疗技术的迅速发展,RNA干扰技术已显示出广阔前景,用RNAi干扰技 术制备治疗抗肝纤维化的基因药物是值得探索的重要课题。
图1SiRNA表达模板设计与作用示意图;
①.SiRNA表达模板设计示意图(以TBR I-3为例)
②.对照用six2模板设计示意图
③.SiRNA表达模板作用示意图(以TBR I-3为例)
图2pRNAT-U6.1/Neo质粒和靶序列模板酶切图谱;
①.
退火后模板DNA ②.酶切后质粒 ③.酶切前质粒
图3阳性克隆测序结果;
图4正常组病理切片(放大倍数10×10×)
图5病理组切片(放大倍数10×10×)
图6治疗组病理切片(放大倍数10×10×)。
本发明分别设计了三段TGFβ I靶基因SiRNA表达模板以及一段与TGFβ I序列无关 的对照模板six2(见图1),将SiRNA表达模板与对照模板分别插入到siRNA表达载体 pRNAT-U6.1/Neo(GenScript公司产品)中,得到重组表达质粒pRNA-TBR I-1、 pRNA-TBR I-2、pRNA-TBR I-3以及空白对照pRNA-six2。通过
转染成纤维细胞(3T3 细胞)与MTT法筛选,筛选了效果最明显的一对模板,然后进行动物实验验证。
一、siRNA模板序列的设计
GeneScript公司提供了在线siRNA模板序列设计的
软件,利用该软件可设计siRNA 模板序列,本研究设计了3对siRNA模板及一个空白对照(分别命名为TBR I-1、 TBR I-2、TBR I-3、six2;)供实验筛选,模板序列如下:
TBR1-1:
5′GATCCCG TTGATGCCTTCCTGTTGACTGTTCAAGAGA CAGTCAACAGGAAGGCATCAATTTTTTCCAAA 3′
3′ GGC AACTACGGAAGGACAACTGACAAGTTCTCT GTCAGTTGTCCTTCCGTAGTTAAAAAAGGTTTTCGA 5′
TBR1-2:
5′GATCCC ACAAACGGCCTATCTCGAGGATTCAAGAGA TCCTCGAGATAGGCCGTTTGTTTTTTTCCAAA 3′
3′ GG TGTTTGCCGGATAGAGCTCCTAAGTTCTCT AGGAGCTCTATCCGGCAAACAAAAAAAGGTTTTCGA 5′
TBR1-3:
5′GATCCCG TAAATCTCTGCCTCACGGAACTTCAAGAGA GTTCCGTGAGGCAGAGATTTATTTTTTCCAAA 3′
3′ GGC ATTTAGAGACGGAGTGCCTTGAAGTTCTCT CAAGGCACTCCGTCTCTAAATAAAAAAGGTTTTCGA 5′
Six2:
5′GATCC GGGTCTTACATAAGAGGACTTTAGTACT AGTCCTCTTATGTAAGACCTTTTTA 3′
3′ G CCCAGAATGTATTCTCCTGAAATCATGA TCAGGAGAATACATTCTGGAAAAATTCGA 5′
二、将合成的模板与酶切好的质粒连接,并转染DH5α感受态细菌
1.将siRNA表达质粒pRNAT-U6.1/Neo用EcoR I(Promega公司)、BamH I(Promega 公司)进行双酶切(37℃
水浴箱切4小时,酶切体系见表1),酶切产物进行厚琼脂糖凝胶
电泳(结果见图2),用胶纯化
试剂盒(Promega公司产品)纯化回收酶切后的线性质粒条带 (操作按
说明书进行),-20度
冰箱保存备用。
表1pRNAT-U6.1/Neo质粒酶切体系
Buffer H(Promega公司) 2ul
EcoR I 1ul
BamH I 1ul
质粒pRNAT-U6.1/Neo 5ul
蒸馏水 11ul
总量 20ul
2.将合成的siRNA模板DNA于95℃水浴5分钟变性,然后自然冷却退火。
3.将步骤2处理后的DNA分别与酶切回收的质粒用T4连接酶(Promega公司产品) 16℃连接过夜,连接体系见表2。将连接后产物转化大肠杆菌DH5α感受态态细菌(晶美 公司产品),铺Amp+LB细菌培养板(
氨苄青霉素含量100μg/ml,下同),37℃细菌培 养箱培养过夜。
表2连接反应体系
T4Buffer(Promega公司) 1.5ul
质粒pRNAT-U6.1/Neo(己酶切并
3ul
纯化)
siRNA模板DNA 9ul
T4连接酶 1.5ul
总量 15ul
三、挑阳性克隆进行测序鉴定,以确定siRNA模板是否已正确插入质粒
挑取Amp+LB细菌培养板上阳性菌落接种10mlAmp+LB液体细菌培养基,37℃摇床、 230(转/分钟)扩增过夜,质粒提取试剂盒(QIAGEN公司产品)抽提质粒,送大连宝
生物公司测序。测序结果见图3。
四、体外细胞筛选实验
每对模板选择一个经测序证实已经正确插入载体的克隆,分别大量扩增选择的克隆 并用质粒提取试剂盒抽提质粒,再用
乙醇进行无菌处理(加入95%乙醇于-80℃固定3 小时;16000rpm离心30分钟,去上清,再用70%乙醇重悬后于-80℃冷冻2小时去盐; 16000rpm离心30分钟,适量无菌去离子水溶解沉淀)后,采用LipofectamineTM 2000 (Invitrogen公司)脂质体介导转染3T3细胞,经G418(Geneticin,氨基糖苷类抗生素, Promega公司产品)筛选:起初200μg/ml,两天后换液加至400μg/ml,再过两天换液加到 800μg/ml,维持800μg/ml至空白对照组细胞全部死亡后改为300μg/ml。筛选后建立的稳 定细胞株,分别命名为TBR I-1-3T3细胞、TBR I-2-3T3细胞、TBR I-3-3T3细胞、six2-3T3 细胞。分别消化收集稳定细胞株细胞,以1×105个/ml的
密度种96孔平底细胞培养板, 48小时后加MTT(四唑盐,5mg/ml)20μl,继续5%CO2细胞
培养箱培养4小时,去孔 内培养液,每孔加150μl二甲基亚砜(DMSO)充分溶解孔内形成的甲瓒颗粒,酶标仪 570nm
波长检测各孔OD值,统计软件SPSS 10.0分析结果(见表3)。
表3pRNA-TBR I稳定细胞株生长对比实验结果 稳定细胞株 实验孔OD值 ( x±s) six2-3T3细胞对照 ( x±s) TBR I-1-3T3细胞 TBR I-2-3T3细胞 TBR I-3-3T3细胞 1.803±0.211 1.911±0.207 1.611±0.126** 1.956±0.141
**该组P<0.05,效果显著,进行动物试验进一步验证。
五、动物实验:
取体重150~200g雌性SD大鼠15只(购自中南大学湘雅附二院动物实验中心), 标准
饲料,自由饮水,随机分成3组:正常组、病理组、RNAi治疗组各5只。用60%CCl4 的
橄榄油溶液0.3ml/(100g大鼠体重)皮下注射SD大鼠(正常组用等体积生理盐水代替, 每周2次、共6周)制备肝纤维化模型。治疗组在造模6周后按5ug/(20g大鼠体重)的剂 量皮下注射RNAi载体,病理组及正常给予等体积生理盐水,各组实验动物在最后一次
给药后2天处死,取肝组织作
组织学及病理检查(结果见表4、图4~图6)。
表4pRNA-TBR I-3动物试验病理切片结果 项目 分组 切片数
肝细胞坏死 肝细胞变性 肝细胞脂变 淋巴细胞浸 润 肝细胞桥状 坏死 正常组 病理组 治疗组 5 5 5 - ++ - - ++ - ± +++ + - ++ - - ++ -
由表4病理切片结果结合图4~图6说明:
经pRNA-TBR I-3治疗后,大鼠肝细胞脂肪变明显减少;坏死、变性肝细胞消失; 没有进一步向肝纤维化发展(无肝细胞桥状坏死)。说明pRNA-TBR I-3能明显改善肝细 胞坏死,阻止肝纤维化发生。
<110>苏先狮
<120>
一种抗肝坏死与纤维化的SiRNA表达模板<160>1
<210>1
<211>69
<212>DNA
<213>SiRNA表达模板
<220>
<400>1
gatcccgtaa atctctgcct cacggaactt caagagagtt ccgtgaggca gagatttatt 60
ttttccaaa 69