首页 / 专利库 / 诊断设备和程序 / 采血笔 / ATP生物荧光lgCA-lgIA标曲法评价液体消毒剂细菌杀灭效果的方法

ATP生物荧光lgCA-lgIA标曲法评价液体消毒剂细菌杀灭效果的方法

阅读:289发布:2021-01-22

专利汇可以提供ATP生物荧光lgCA-lgIA标曲法评价液体消毒剂细菌杀灭效果的方法专利检索,专利查询,专利分析的服务。并且本 发明 涉及一种液体消毒剂细菌繁殖体杀灭效果评价方法,检测步骤包括:样品提取及最低有效浓度确定;设备选型及 试剂 、培养基配制;菌种保藏、活化及菌悬液制备;ATP浓度对数值lgCA-相对 荧光 强度对数值lgIA标曲建立及接种菌液活菌ATP浓度CA标定;中和剂鉴定及定量悬液试验;回收液IA测定及其活菌ATP浓度CA和TA推算;杀灭率R及灭菌指数A计算;结果判定;其特别之处在于:应用ATP荧光光度计对以R或A表征的消毒剂细菌繁殖体杀灭效果进行精准定量评价。本发明规定回收作用不同时间后的试验样液和对照样液,测定其IA并以lgIA表征和计算R或A;提供结果判定依据。本发明研发的消毒剂细菌繁殖体杀灭效果评价的ATP 生物 荧光lgCA-lgIA标曲法,可完善消毒效果评价方法体系。,下面是ATP生物荧光lgCA-lgIA标曲法评价液体消毒剂细菌杀灭效果的方法专利的具体信息内容。

1.一种液体消毒剂细菌繁殖体杀灭效果的评价方法,包括:(1)样品提取及消毒剂最低有效浓度确定;(2)设备选型及试剂、培养基配制;(3)菌种保藏、活化及菌悬液制备;(4)ATP浓度对数值lgCA-相对荧光强度对数值lgIA标准曲线建立及接种菌液的活菌ATP浓度CA标定;(5)中和剂鉴定及定量悬液试验;(6)回收液相对荧光强度值IA测定;(7)回收液活菌ATP浓度CA和TA推算及杀灭率R和灭菌指数A计算;(8)结果判定;其特征在于,应用ATP荧光光度计对以杀灭率R或灭菌指数A表征的液体消毒剂细菌繁殖体杀灭效果进行精准定量评价的ATP生物荧光lgCA-lgIA标准曲线法,具体的:
在回收液相对荧光强度值IA测定中:
明确样品提取要求,确定消毒剂10min内抑杀指示菌的最低有效浓度,将试验标准菌株进行传代、活化后,取连续转接2次的新鲜细菌培养物制备菌悬液并对其菌数进行初筛,用指示菌种培养液将1.0×10-3mol/L的ATP标准原液稀释为高、低浓度标准系列溶液:8.5×-9 -8 -7 -7
10 mol/L、8.5×10 mol/L、8.5×10 mol/L(如果仪器检测上限无法达到10 mol/L量级或高浓度标准曲线的线性较差,可将其ATP浓度系列改为8.5×10-10mol/L、8.5×10-9mol/L、
8.5×10-8mol/L)和1.0×10-11mol/L、1.0×10-10mol/L、1.0×10-9mol/L,并测定其相对荧光强度值IA;绘制两条相应浓度的lgCA-lgIA标准曲线,推导得出曲线方程式Y=aA0X+bA0(高浓度)、Y=aAX+bA(低浓度)和线性相关系数RA02(高浓度)、RA2(低浓度),对细菌总量为6.0×
108CFU/mL的菌悬液进行连续10倍梯度稀释后,测定其相对荧光强度值IA,根据高浓度曲线方程式Y=aA0X+bA0推算相应的活菌ATP浓度CA;经调整得到CA范围为8.0×10-8mol/L~9.0×
10-8mol/L的接种菌液,然后,以待测消毒剂的最低有效浓度进行中和剂鉴定试验,确定中和剂种类及浓度;同时将3.5mL不同浓度的试验样液和对照样液置于(20±2)℃浴中并使其与0.5mL接种菌液混合;待灭菌作用持续t1、t2、t3、t4四段不同时间后,将0.4mL染菌样液分别与3.6mL中和剂溶液混合,中和作用进行10min后将其混匀液作为回收液;应用ATP荧光光度计测定回收液的相对荧光强度值 和
并根据低浓度标准曲线方程式Y=aAX+bA推算相应的活菌ATP
浓度 和
在杀灭率R或灭菌指数A计算中:
根据ATP低浓度标准曲线lgCA-lgIA的线性方程式Y=aAX+bA,针对t1、t2、t3、t4四段不同灭菌时间,以每次定量悬液试验中各浓度试验样液及对照样液回收活菌的相对荧光强度测定值作为基础数据;计算其对细菌繁殖体的杀灭率 或灭菌指数
并取其五次试验的算术平均值作为相应浓度待测液体消毒剂
样品在相同灭菌时间内对细菌繁殖体的杀灭率 或灭菌指数
同时明确相关数据修约和测量不确定度要求;
在结果判定中:
参考卫生行业通用做法和相关消毒效果生物学评价标准,如果某浓度待测液体消毒剂样液在单次定量悬液试验中,经ATP生物荧光lgCA-lgIA标准曲线法测得的特定灭菌时间内细菌繁殖体杀灭率≥99.9%或灭菌指数≥3.0,则判定其在此次试验中消毒效果合格,当该浓度待测液体消毒剂样液在5次定量悬液试验中相同灭菌时间内的消毒效果均合格时,方可确定其对细菌繁殖体具有消毒效果的最低浓度和最短时间(在实际应用中以有机物保护试验的最低浓度和最短时间为待测液体消毒剂样品达到实用消毒效果所需的浓度和时间)。
2.根据权利要求1所述的液体消毒剂细菌繁殖体杀灭效果的评价方法,其特征在于,所述的样品提取及最低有效浓度确定,按下述步骤进行:
(1)对照样品:以指示菌种培养液作为对照样品;
(2)试验样品:从某生产批号1个完整运输包装中随机抽取1件最小销售包装的液体消毒剂样品,用于中和剂鉴定和定量悬液试验;每组试验样品选择一组对照样品作为参照物并有效标识;
(3)消毒剂样品最低有效浓度的确定:按照待测消毒剂样品使用说明书标注的有效浓度范围,将其用无菌水稀释为高、中、低三个适宜浓度;用灭菌移液枪将3.5mL不同浓度的稀释液分装三支无菌试管,并向各试管中分别滴加0.5mL接种菌液;3000r/min振摇试管30s后,将其置于(20±2)℃水浴中,待试管内溶液温度与水浴温度平衡后开始计时,使消毒剂对细菌繁殖体的杀灭作用持续10min;然后,以其混匀液作为回收液,按照本专利中相对荧光强度值IA测定方法,测定并记录回收液的相对荧光强度值,同时,以3.5mL指示菌种培养液作为对照样品,替代消毒液重复上述杀菌试验及回收液IA测定过程;并依据本专利中杀灭率R计算公式,对不同浓度稀释液的杀灭率进行计算;若某浓度的杀灭率为99.9%,则将此浓度设定为待测消毒剂样品的最低有效浓度。
3.根据权利要求1所述的液体消毒剂细菌繁殖体杀灭效果的评价方法,其特征在于,所述的设备选型及试剂、培养基配制,按下述步骤进行:
(1)通用要求:试验用分析纯试剂及符合GB/T 6682-2008规定的三级水(蒸馏水或去离子水),实验室具备二级生物安全资质,人员具有正规微生物实验室工作经验;
(2)仪器设备:二级生物安全柜;含ATP荧光光度计、配套试剂盒、专用试管等的ATP生物荧光快速检测系统,其中ATP荧光光度计波长量程300nm~650nm,ATP浓度检测范围10-
13mol/L~10-7mol/L;(37±1)℃的恒温培养箱;(10~50)℃±1℃的恒温水浴箱;(121±2)℃、(103±5)kPa的压蒸汽灭菌器;-20℃~-70℃的低温箱;0℃~5℃的冷藏箱;感量
0.001g的电子天平;频率(30~50)kHz的声波清洗器;转速(500~3000)r/min的旋涡振荡器精度±0.1(25℃)的pH计;电炉;
(3)材料器具:1mL、10mL的无菌刻度吸管;0.05mL、0.1mL、0.2mL、1mL、5mL、10mL(计量误差小于1%)的单道可变量程移液枪和无菌移液枪头;容量250mL、500mL的无菌锥形瓶;直径
90mm的无菌培养皿;麦氏细菌标准比浊管及配套试管;无菌试管;直径不大于4mm的接种环;
酒精灯;分度值1mm的直尺; 的温度计;精度0.01s的秒表;A6白色复印
纸;0.7mm芯黑色中性笔;
(4)试剂:小血清;下列试剂分装后121℃高压灭菌30min,5℃~10℃存放30d:85%的生理盐水;将5g硫代硫酸钠溶于1000mL水(用于氯型消毒剂);将1.36g磷酸二氢、2.83g磷酸氢二钠、10g卵磷脂、10g甘酸、30g吐温(80)溶于1000mL水或将1.36g磷酸二氢钾、2.83g磷酸氢二钠、3g卵磷脂、20g吐温(80)溶于1000mL水(用于非化型消毒剂);将20g吐温(80)、1g硫代硫酸钠溶于1000mL磷酸盐缓冲溶液(用于氧型消毒剂)等(或针对待测液体消毒剂样品类型,选择其它相适用的中和剂);
(5)培养基/液(可用市售培养基/液):所配培养基/液分装后经121℃高压灭菌15min,2℃~8℃存放30d;
营养琼脂(NA):将5g牛肉膏、10g蛋白胨、5g氯化钠、15g琼脂加热溶解于1000mL水中,调节pH至7.0~7.2;
营养肉汤(NB):将3g牛肉膏、10g蛋白胨、5g氯化钠加热溶解于1000mL水中,调节pH至
7.0~7.2;
大肠埃希氏菌/金黄色葡萄球菌培养液:将1:500/1:100的营养肉汤(NB)与85%的无菌生理盐水溶液混合,调节pH至7.0~7.2;
(6)ATP荧光反应试剂(或用市售试剂):除磷酸盐缓冲溶液外,所配ATP荧光反应试剂-
20℃~-70℃保存,6个月内使用;
稀释缓冲溶液:0.005mol/L且含0.037%蔗糖的磷酸氢二钠溶液,调节pH至7.2±0.2;
121℃高压灭菌15min,2℃~8℃存放30d;
ATP荧光试剂缓冲溶液:将1117mg三羟甲基氨基甲烷、183mg乙二胺四乙酸二钠、808mg乙酸镁、6.7mg二巯基苏糖醇、25000mg的β-环糊精和925mg葡萄糖加热溶解于250mL水中,调节pH至7.5±0.2;8h内使用;
ATP裂解液:将4.6国际单位/ml的三磷酸腺苷双磷酸酶(EC:3.6.1.5)和46国际单位/ml的磷酸腺苷脱氨酶(EC:3.5.4.6或EC:3.5.4.17)、37mg蔗糖、20mg牛血清蛋白溶解于10mL浓度为0.05mol/L的2-吗啉乙磺酸缓冲溶液中,调节pH至6.0±0.5,8h内使用(1mL裂解液在
15min内可将营养肉汤中的ATP浓度降至10-13mol/L以下);
ATP提取液:将45mg三羟甲基氨基甲烷加热溶解于9.8ml水中,与0.2ml浓度为10%的苯扎氯铵溶液混匀后,调节pH至12.0±0.5;
ATP荧光试剂:将16mg荧光素酶(EC:1.13.12.7)、12.6mg的D-荧光素、56mg牛血清蛋白溶解于30mL的ATP荧光试剂缓冲液中,混匀后室温静置15min,3h内使用。
4.根据权利要求1所述的液体消毒剂细菌繁殖体杀灭效果的评价方法,其特征在于,所述的菌种保藏、活化及菌悬液制备,按下述步骤进行:
(1)指示菌种:大肠埃希氏菌ATCC 8099;金黄色葡萄球菌ATCC 6538(或由国家相应菌种保藏管理中心提供并可溯源的其他菌种);
(2)菌种保藏:以无菌操作打开冻干菌种管,用毛细吸管加入适量营养肉汤,吹吸数次使菌种融化分散,然后,将少许指示菌种悬浮液滴入装有5mL~10mL营养肉汤的试管中,(37±1)℃培养24h~48h;用作斜面保藏菌,(5±1)℃存放(不超过1个月),接种次数不超过14代;
(3)菌种活化:将斜面保藏菌转接营养琼脂斜面培养基,(37±1)℃培养18h~24h;每天转接1次,连续转接不超过15d,试验使用第3代~第14代且于24h内转接的新鲜细菌培养物;
(4)菌悬液制备:用接种环从菌种活化培养基上刮取少量新鲜细菌,加入适量指示菌种培养液制成菌悬液;1000r/min振摇试管1min或以30cm摆幅振摇试管80次,确保细菌悬浮均匀,将一定量菌液移至与麦氏标准比浊管配套无菌试管中,用0.7mm芯黑色中性笔在A6白色
8
复印纸上划3条长度为10cm的平行线;目测试管与标准比浊管(标称含量6.0×10CFU/mL)的浊度差异,滴加培养液直至二者浊度相同为止。
5.根据权利要求1所述的液体消毒剂细菌繁殖体杀灭效果的评价方法,其特征在于,所述的ATP浓度对数值lgCA-相对荧光强度对数值lgIA标准曲线建立及接种菌液的活菌ATP浓度CA标定,按下述步骤进行:
(1)标准系列溶液确定和ATP生物荧光测试样制备:用指示菌种培养液将1.0×10-3mol/L的ATP标准原液稀释为高、低浓度标准系列溶液:8.5×10-9mol/L、8.5×10-8mol/L、8.5×
10-7mol/L(如果仪器检测上限无法达到10-7mol/L量级或高浓度标准曲线的线性较差,可将其ATP浓度系列改为8.5×10-10mol/L、8.5×10-9mol/L、8.5×10-8mol/L)和1.0×10-11mol/L、1.0×10-10mol/L、1.0×10-9mol/L并混匀,然后,用灭菌移液枪将0.1mL的ATP标准系列溶液分别移至三只无菌试管中,依次滴加0.9mL含0.037%蔗糖的磷酸盐缓冲液并混匀;再将
0.1mL不同浓度的混合溶液分别移至三支仪器专用无菌试管中,作为ATP生物荧光测试平行样;
(2)相对荧光强度值IA测定:根据本专利中相对荧光强度值IA测定方法,以指示菌种培养液作为空白样液验证仪器及试剂组本底后;按照浓度从低到高的顺序,向不同浓度ATP标准溶液三个平行样中分别滴加0.1mL的ATP提取试剂,混匀后滴入0.1mL的ATP荧光试剂;再次混匀,立即用ATP荧光光度计测定其相对荧光强度值并记录(确保各环节操作时间一致,避免交叉污染),每个平行样测定时间不超过15s,以各浓度ATP标准溶液三个平行样相对荧光强度值的算术平均值为其IA测定值;
(3)ATP浓度对数值lgCA-相对荧光强度对数值lgIA标准曲线建立:以ATP标准系列溶液的相对荧光强度对数值lgIA作为横坐标,以其相应的ATP浓度对数值lgCA为纵坐标作图;对二者之间的数学关系进行曲线标定,绘制两条相应浓度的lgCA-lgIA标准曲线;并应用最小二乘拟合法推导得出曲线的线性方程式Y=aA0X+bA0(高浓度)、Y=aAX+bA(低浓度)和相关系数RA02(高浓度)、RA2(低浓度),当RA02及RA2≥0.98、置信水平≥0.95时,按照本专利所做的测定有效;
(4)接种菌液活菌ATP浓度CA标定:按照本专利中相对荧光强度值IA测定方法,对经麦氏比浊法初筛后细菌总量为6.0×108CFU/mL的菌悬液10倍稀释液的相对荧光强度值IA进行测定;根据高浓度标准曲线方程式Y=aA0X+bA0推算并标定其活菌ATP浓度CA,然后,经指示菌种培养液调整,得到CA范围为8.0×10-8mol/L~9.0×10-8mol/L的接种菌液。
6.根据权利要求1所述的液体消毒剂细菌繁殖体杀灭效果的评价方法,其特征在于,所述的中和剂鉴定及定量悬液试验,按下述步骤进行:
(1)中和剂鉴定试验:选取作用10min抑杀指示菌99.9%的消毒剂最低有效浓度作为中和剂鉴定试验的样液浓度,并将1mL试验样液与9mL中和剂溶液混合;作用10min形成中和产物后,进行试验分组如下:将0.5mL接种菌液(与曲线lgCA-lgIA标定用菌液取自同一支指示菌种原液试管,2℃±0.2℃保存,2h内使用)分装五支含3.5mL试验样液(1#、2#)、3.5mL中和# # #
产物溶液(3)、3.5mL指示菌种培养液(4)、3.5mL中和剂溶液(5)的无菌试管中,1000r/min振摇试管10min,使其溶液充分混匀,然后,用灭菌移液枪将0.4mL各组混匀液分装五支含
3.6mL指示菌种培养液(1#、3#、4#、5#)、3.6mL中和剂溶液(2#)的无菌试管中,同时将另外一支无菌试管中的4mL指示菌种培养液作为第6#组试验样液,1000r/min振摇各组试管10min后,将其混匀液作为试验样液的回收液,按照本专利中相对荧光强度值IA测定方法,测定并记录上述6组回收液相对荧光强度值;
(2)中和效果评价:如果第1#、6#组回收液的相对荧光强度测定值IA1≥0、IA6=0,第2#~
5#组回收液的相对荧光强度测定值之间关系为:IA2≥0且IA2<IA3、IA2<IA4、IA2<IA5;第3#、
4#、5#组回收液的相对荧光强度测定值接近,即IA3≈IA4≈IA5,其按照公式(1)计算得到的活菌ATP浓度CA3、CA4、CA5组间误差率Δ≤10%;说明所选中和剂种类可用于待测液体消毒剂样品细菌繁殖体杀灭效果试验,并依据等当量中和原则,调整中和剂浓度后重复上述中和剂鉴定试验,确定消毒剂试验浓度所对应的中和剂浓度;
式中:
Δ—第3#、4#、5#组回收液的活菌ATP浓度CA3、CA4、CA5组间误差率,%;
IA3、IA4、IA5—第3#、4#、5#组回收液的相对荧光强度测定值,RLU;
—第3#、4#、5#组回收液的活菌平均ATP浓度,其数值为
aA—低浓度标准曲线lgCA-lgIA斜率;bA—低浓度标准曲线lgCA-lgIA在纵轴截距;
(3)定量悬液试验:按照待测消毒剂使用说明中标注的有效浓度和作用时间范围,用无菌水将其稀释为高、中、低三个适宜浓度:C1、C2、C3(C1为产品说明中规定的最低使用浓度),其中C2=2C1、C3=2C2;同时选取四段不同的灭菌时间t1、t2、t3、t4(t2为产品说明中规定的最短作用时间),其中t1=0.5t2、t3=1.5t2、t4=2t2,然后,用灭菌移液枪将3.5mL不同浓度的试验样液分装三支无菌试管中;并置于(20±2)℃水浴中,待试管内溶液温度与水浴温度平衡后,分别滴加0.5mL接种菌液,3000r/min振摇试管30s后开始计时,当灭菌作用持续至设定的t1、t2、t3、t4四段不同时间后,用灭菌移液枪将0.4mL不同浓度的混匀液分装三支含
3.6mL中和剂溶液的无菌试管中,3000r/min振摇试管30s后开始计时,待中和作用持续
10min后,将其混匀液作为各浓度试验样液的回收液,然后,用指示菌种培养液替代试验样液重复上述试验;
试验重复5次;
然后,将小牛血清加入菌悬液中,使其最终血清含量为10%并确保接种菌液CA为8.0×
10-8mol/L~9.0×10-8mol/L,重复上述定量悬液试验5次;确定待测液体消毒剂样品在有机物存在的条件下,对细菌繁殖体具备消毒效果的有效浓度和时间。
7.根据权利要求1所述的液体消毒剂细菌繁殖体杀灭效果的评价方法,其特征在于,所述的回收液相对荧光强度值IA测定,按下述步骤进行:
(1)仪器及试剂组相对荧光强度本底值校准:用灭菌移液枪将0.1mL试验菌种培养液、
0.8mL含0.037%蔗糖的磷酸盐缓冲液和0.1mL的ATP裂解液分别加入同一支无菌试管中并充分混匀,然后将0.1mL上述混和溶液依次移至三支仪器专用无菌试管中,静置5min~
30min,作为空白测试平行样,向三个平行样中分别滴加0.1mL的ATP提取试剂,混匀后滴入
0.1mL的ATP荧光试剂;再次混匀,立即用ATP荧光光度计测定其相对荧光强度值IA并记录(确保各环节操作时间一致,避免交叉污染),每个平行样测定时间不超过15s,以三个空白测试平行样相对荧光强度值的算术平均值作为仪器和试剂组本底值(或按照仪器使用说明校准本底值);
(2)回收液相对荧光强度值IA测定:如本底水平符合仪器使用要求,用灭菌移液枪将
0.1mL回收液、0.8mL含0.037%蔗糖的磷酸盐缓冲液和0.1mL的ATP裂解液分别加入同一支无菌试管中,充分混匀后再将0.1mL上述混和溶液依次移至三支仪器专用无菌试管中,静置
5min~30min,作为ATP荧光测试平行样,向三个平行样中分别滴加0.1mL的ATP提取试剂,混匀后滴入0.1mL的ATP荧光试剂;再次混匀,立即用ATP荧光光度计测定其相对荧光强度值IA并记录(确保各环节操作时间一致,避免交叉污染),每个平行样测定时间不超过15s,以三个ATP荧光测试平行样相对荧光强度值的算术平均值作为待测样品回收液的IA测定值(或使用仪器配套试剂盒,按照相关使用说明书要求,直接上机测定样品回收液三个平行样的相对荧光强度值IA)。
8.根据权利要求1所述的液体消毒剂细菌繁殖体杀灭效果的评价方法,其特征在于,所述的回收液活菌ATP浓度CA和TA推算以及杀灭率R和灭菌指数A计算,按下述步骤进行:
(1)回收液的活菌ATP浓度CA和TA推算
根据ATP低浓度标准曲线lgCA-lgIA的线性方程式Y=aAX+bA,推算各次不同浓度的试验样液及对照样液经t1~t4四段灭/染菌时间后,回收液的活菌ATP浓度CA和TA,相关计算(使用仪器配套试剂盒时,根据其实际进样量推算1mL回收液的活菌ATP浓度CA及TA)见公式(2)~(9):
式中:
—每次不同浓度的试验样液经四段灭菌时间后回收活菌的
ATP浓度,单位为摩尔每升(mol/L);试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
—每次不同浓度的试验样液经四段灭菌时间后,回收活菌
的相对荧光强度测定值,RLU;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
aA—低浓度标准曲线lgCA-lgIA斜率;bA—低浓度标准曲线lgCA-lgIA在纵轴截距;
—每次不同浓度的对照样液经四段染菌时间后回收活菌的
ATP浓度,单位为摩尔每升(mol/L);试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
—每次不同浓度的对照样液经四段染菌时间后,回收活菌
的相对荧光强度测定值,RLU;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
(2)杀灭率R计算
在中和剂鉴定结果合格的条件下,每次不同浓度的试验样液在四段灭菌时间内对细菌繁殖体的杀灭率 以及相应浓度的待测液体消毒剂样品在同一
灭菌时间内的杀灭率 分别按照公式(10)~(17)计算:
式中:
—每次不同浓度的试验样液在四段灭菌时间内对细菌繁殖
体的杀灭率,%;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
—相应浓度的待测液体消毒剂样品在四段灭菌时间内对细菌
繁殖体的杀灭率,%;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
—每次不同浓度的对照样液经四段染菌时间后回收活菌的
ATP浓度,单位为摩尔每升(mol/L);试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
—每次不同浓度的试验样液经四段灭菌时间后回收活菌的
ATP浓度,单位为摩尔每升(mol/L);试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
—每次不同浓度的试验样液经四段灭菌时间后,回收活菌
的相对荧光强度测定值,RLU;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
—每次不同浓度的对照样液经四段染菌时间后,回收活菌
的相对荧光强度测定值,RLU;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
aA—低浓度标准曲线lgCA-lgIA斜率;
(3)灭菌指数A的计算
在中和剂鉴定结果合格的条件下,每次不同浓度的试验样液在四段灭菌时间内对细菌繁殖体的灭菌指数 以及相应浓度的待测液体消毒剂样品在同
一灭菌时间内的灭菌指数 分别按照公式(18)~(25)计算:
式中:
—每次不同浓度的试验样液在四段灭菌时间内对细菌繁殖
体的灭菌指数;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
—相应浓度的待测液体消毒剂样品在四段灭菌时间内对细菌
繁殖体的灭菌指数;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;;
—每次不同浓度的对照样液经四段染菌时间后回收活菌的
ATP浓度,单位为摩尔每升(mol/L);试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
—每次不同浓度的试验样液经四段灭菌时间后回收活菌的
ATP浓度,单位为摩尔每升(mol/L);试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
—每次不同浓度的试验样液经四段灭菌时间后,回收活菌
的相对荧光强度测定值,RLU;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
—每次不同浓度的对照样液经四段染菌时间后,回收活菌
的相对荧光强度测定值,RLU;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
aA—低浓度标准曲线lgCA-lgIA斜率;
(4)数据修约要求:在标定ATP标准溶液浓度以及接种菌液、回收液的活菌ATP浓度CA时,参考GB 4789.2—2016中有关菌落数的数据修约规定;当CA小于100mol/L时,“四舍五入”取整数;当CA不小于100mol/L时,第3位数字“四舍五入”后取前2位数字,后面用0代替位数;也可用10的指数形式表示,“四舍五入”后采用两位有效数字,试验样液及对照样液经四段灭/染菌时间后,回收液的相对荧光强度测定值取整数,对细菌繁殖体的杀菌率计算结果取三位有效数字,灭菌指数计算结果取两位有效数字;
(5)测量不确定度:本专利方法通过计算5次定量悬液试验中不同浓度的试验样液和对照样液经四段不同的灭/染菌时间后,其回收液15个ATP荧光测试平行样相对荧光强度测定值的变异系数C·V=σ÷μ×100%(μ、σ和C·V计算结果保留到小数点后两位);判断将ATP生物荧光分析法应用于液体消毒剂细菌繁殖体杀灭效果测试的重现性,规定变异系数C·V≤10%,相关计算见公式(26)~(33):
式中:
—经t1、t2、t3、t4四段不同灭菌时间后,5次试验中同一
浓度 的 试验 样 液1 5 个A T P荧 光 测试 平行 样的 相对 荧光 强 度 测定 值的算术平均值;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,
2,3;平行样编号k=1,2,3;
—经t1、t2、t3、t4四段不同灭菌时间后,5次试验中同一
浓度的试验样液的回收液15个ATP荧光测试平行样相对荧光强度测定值
的标准偏差;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,
3;平行样编号k=1,2,3;
—经t1、t2、t3、t4四段不同染菌时间后,5次试验中同一
浓度 的 对照 样 液1 5 个A T P荧 光 测试 平行 样的 相对 荧光 强 度 测定 值的算术平均值;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,
2,3;平行样编号k=1,2,3;
—经t1、t2、t3、t4四段不同染菌时间后,5次试验中同一
浓度的对照样液的回收液15个ATP荧光测试平行样相对荧光强度测定值
的标准偏差;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,
2,3;平行样编号k=1,2,3;
9.根据权利要求1所述的液体消毒剂细菌繁殖体杀灭效果的评价方法,其特征在于,所述的结果判定,按下述步骤进行:
参考卫生行业通用做法和相关消毒效果生物学评价标准,如果某浓度待测液体消毒剂样液在单次定量悬液试验中,经ATP生物荧光lgCA-lgIA标准曲线法测得的特定灭菌时间内细菌繁殖体杀灭率≥99.9%或灭菌指数≥3.0,则判定其在此次试验中消毒效果合格,当该浓度待测液体消毒剂样液在5次定量悬液试验中相同灭菌时间内的消毒效果均合格时,方可确定其对细菌繁殖体具有消毒效果的最低浓度和最短时间(在实际应用中以有机物保护试验的最低浓度和最短时间为待测液体消毒剂样品达到实用消毒效果所需的浓度和时间)。

说明书全文

ATP生物荧光lgCA-lgIA标曲法评价液体消毒剂细菌杀灭效果

的方法

技术领域

[0001] 本发明涉及液体消毒剂的细菌繁殖体杀灭效果效果评价方法,具体是一种应用ATP荧光光度计对以杀灭率R或灭菌指数A表征的液体消毒剂细菌繁殖体杀灭效果进行精准定量检测的ATP生物荧光lgCA-lgIA标准曲线法,属于消毒剂灭菌效果评价技术领域。

背景技术

[0002] 伴随着人们生活平提高和健康意识增强,为切断传染病传播途径,过化物类、类、酚类、季铵盐类等液体消毒剂在医疗、食品、教育、餐饮、居家等领域应用日趋广泛,且对其细菌繁殖体、真菌及其孢子等病原微生物的杀灭作用和广谱要求日益严苛;产业相关工艺创新和产品研发压不断攀升,质检技术与测试效率被提上日程。
[0003] 目前,国内外抗菌消毒效果评价技术体系主要针对细菌和真菌,各国抗细菌效果测试方法原理多基于对细菌进行分离培养的平板计数法,一是日本工业标准提出的浸渍定量试验方法;二是源自美国纺织业的抑菌环法;三是国际通用的振荡烧瓶法;四是源于美国纺织企业的滴下法。虽然我国已颁布实施GB 15981-1995《消毒与灭菌效果的评价方法与标准》、GB 15979-2002《一次性使用卫生用品卫生标准》和QB/T 2738-2012《日化产品抗菌抑菌效果的评价方法》等相关标准,但现有检测方法在技术内容和实际应用中存在以下共性问题:一是所涉实验菌种过少,难以满足企业与时俱进的新品研发与质控需求;二是实验过程繁琐,相关操作受实验员专业经验影响,测试误差大,缺乏可比性;三是测试周期在48小时~72小时之间,时间及经济成本高。近年来,在国际细菌检测技术领域ATP荧光分析法发展日益成熟,与传统平皿法相比ATP检测结果的相关性为98%,准确度高且可实现快速检测;发达国家已将此方法运用于HACCP中。国内ATP相关研究起步较晚,受应用需求牵引,现ATP荧光检测仪已成为中国卫生部指定的卫生监督和食品安全相关的专用检测设备。当前国外抗菌消毒效果检测技术研究向定量化、快速化和简易化趋势发展,注重检测结果准确性和可比性;已借鉴ATP荧光分析原理制定ISO 20743:2007-2013《Textiles-Determination of antibacterial activity of textile products(纺织品-抗菌整理纺织品的抗细菌性能测定)》和ISO 13629-1:2012《Textiles-Determination of antifungal activity of textile products.Part1 Luminescence(纺织品-抗菌整理纺织品的防霉性能测定)》,规定了以样品接种后ATP含量变化表征抗细/霉菌性能的荧光测定法,但其提供的吸收法、转移法和转印法仅适用于具有吸水性且对照样细/霉菌增长值>0的纺织材料或微孔材料;液体消毒剂细菌杀灭效果评估须针对中和效果评价、结果计算公式等关键技术方面形成一整套明确而具体的方法,同时需提供相关测量不确定度评估。另外,该标准方法抗菌性能表征参数较为单一,仅涉及抗菌活性值A,而我国则惯用杀灭率R。
[0004] 因此,为提高疾病防控效果,规范国内市场秩序,促进产品更新换代,亟待研究科学先进、准确性和重现性高、简便易行的液体消毒剂抗细菌效果测试技术。本专利技术路线设计接轨国际,检测方法属全球首创,可填补国内外相关技术领域空白。

发明内容

[0005] 本发明要解决的技术问题是提供一种应用ATP荧光光度计对以杀灭率R或灭菌指数A表征的液体消毒剂细菌繁殖体杀灭效果进行评价的ATP生物荧光lgCA-lgIA标准曲线法,能够解决液体消毒剂乃至其他医疗卫生领域灭菌效果精准定量评价问题。
[0006] 为解决上述技术问题,本发明采用的技术方案是:
[0007] 一种液体消毒剂细菌繁殖体杀灭效果的评价方法,包括:(1)样品提取及消毒剂最低有效浓度确定;(2)设备选型及试剂、培养基配制;(3)菌种保藏、活化及菌悬液制备;(4)ATP浓度对数值lgCA-相对荧光强度对数值lgIA标准曲线建立及接种菌液的活菌ATP浓度CA标定;(5)中和剂鉴定及定量悬液试验;(6)回收液相对荧光强度值IA测定;(7)回收液活菌ATP浓度CA和TA推算及杀灭率R和灭菌指数A计算;(8)结果判定;其特征在于,应用ATP荧光光度计对以杀灭率R或灭菌指数A表征的液体消毒剂细菌繁殖体杀灭效果进行精准定量评价的ATP生物荧光lgCA-lgIA标准曲线法,具体的:
[0008] 在回收液相对荧光强度值IA测定中:
[0009] 明确样品提取要求,确定消毒剂10min内抑杀指示菌的最低有效浓度,将试验标准菌株进行传代、活化后,取连续转接2次的新鲜细菌培养物制备菌悬液并对其菌数进行初-3筛。用指示菌种培养液将1.0×10 mol/L的ATP标准原液稀释为高、低浓度标准系列溶液:
8.5×10-9mol/L、8.5×10-8mol/L、8.5×10-7mol/L(如果仪器检测上限无法达到10-7mol/L量级或高浓度标准曲线的线性较差,可将其ATP浓度系列改为8.5×10-10mol/L、8.5×10-9mol/L、8.5×10-8mol/L)和1.0×10-11mol/L、1.0×10-10mol/L、1.0×10-9mol/L,并测定其相对荧光强度值IA;绘制两条相应浓度的lgCA-lgIA标准曲线,推导得出曲线方程式Y=aA0X+bA0(高浓度)、Y=aAX+bA(低浓度)和线性相关系数RA02(高浓度)、RA2(低浓度)。对细菌总量为6.0×
108CFU/mL的菌悬液进行连续10倍梯度稀释后,测定其相对荧光强度值IA,根据高浓度曲线方程式Y=aA0X+bA0推算相应的活菌ATP浓度CA;经调整得到CA范围为8.0×10-8mol/L~9.0×
10-8mol/L的接种菌液。然后,以待测消毒剂的最低有效浓度进行中和剂鉴定试验,确定中和剂种类及浓度;同时将3.5mL不同浓度的试验样液和对照样液置于(20±2)℃水浴中并使其与0.5mL接种菌液混合;待灭菌作用持续t1、t2、t3、t4四段不同时间后,将0.4mL染菌样液分别与3.6mL中和剂溶液混合,中和作用进行10min后将其混匀液作为回收液;应用ATP荧光光度计测定回收液的相对荧光强度值 和
并根据低浓度标准曲线方程式Y=aAX+bA推算相应的活菌ATP
浓度 和
[0010] 在杀灭率R或灭菌指数A计算中:
[0011] 根据ATP低浓度标准曲线lgCA-lgIA的线性方程式Y=aAX+bA,针对t1、t2、t3、t4四段不同灭菌时间,以每次定量悬液试验中各浓度试验样液及对照样液回收活菌的相对荧光强度测定值作为基础数据;计算其对细菌繁殖体的杀灭率 或灭菌指数 并取其五次试验的算术平均值作为相应浓度待测液体消毒剂
样品在相同灭菌时间内对细菌繁殖体的杀灭率 或灭菌指数
同时明确相关数据修约和测量不确定度要求;
[0012] 在结果判定中:
[0013] 参考卫生行业通用做法和相关消毒效果生物学评价标准,如果某浓度待测液体消毒剂样液在单次定量悬液试验中,经ATP生物荧光lgCA-lgIA标准曲线法测得的特定灭菌时间内细菌繁殖体杀灭率≥99.9%或灭菌指数≥3.0,则判定其在此次试验中消毒效果合格。当该浓度待测液体消毒剂样液在5次定量悬液试验中相同灭菌时间内的消毒效果均合格时,方可确定其对细菌繁殖体具有消毒效果的最低浓度和最短时间(在实际应用中以有机物保护试验的最低浓度和最短时间为待测液体消毒剂样品达到实用消毒效果所需的浓度和时间)。
[0014] 采用上述技术方案的本发明,与现有技术相比,有益效果是:
[0015] (1)先进性:应用现代精密仪器—ATP荧光光度计作为测试设备,达到了活菌ATP浓度测定和液体消毒剂细菌繁殖体杀灭效果评价的现代化;可有效降低实验过程中人为因素影响,避免了传统平皿培养法普遍存在的较大误差;能够确保检测结果的定量化,同时大幅度提高检测数据的准确性;检测技术具备一定的先进性。
[0016] (2)科学性:根据ATP荧光分析法测试原理,建立了适用于多菌种的活菌ATP浓度对数值lgCA─相对荧光强度对数值lgIA标准曲线;构建了液体消毒剂杀菌效果评价ATP生物荧光实时定量分析方法的数学模型。同时,兼顾不同国家消费者认知习惯,采取杀灭率R及灭菌指数A为相关性能评价指标,提高了评价方法的科学性和通用性。
[0017] (3)创新性:与现行操作繁、误差大、周期长的传统方法相比,本专利方法在测试过程中引入自动化和智能化水平较高的ATP荧光光度计,极大地简化了实验步骤,实现了消毒剂细菌繁殖体杀灭效果评价的精准化和定量化并具备良好的重现性和可比性;同时大幅缩短测试周期、降低检测成本;可有效填补目前相关测试技术领域空白。
[0018] (4)前瞻性:建立了以lgCA、lgIA线性关系为基础的标准曲线定量分析方法,创新并丰富了菌悬液活菌浓度表征和测定方法以及消毒剂样品稀释方式,明确了对照样品、标液浓度、测定步骤、计算公式、不确定度等技术内容;首创以仪器直接测得的回收活菌相对荧光强度值IA作为结果判定形式来计算并判定杀灭率R或灭菌指数A,并通过组内及组间变异系数C·V考察测量不确定度,在技术上具有一定的前瞻性。
[0019] (5)可操作性:ATP荧光光度计价格低廉、操作简单、应用广泛,本专利建立的以样品杀菌前后接种菌液的活菌ATP浓度变化为重点的消毒剂细菌繁殖体杀灭效果评价的ATP荧光测试方法简便易行,相关技术说明清晰而具体,易于理解和掌握;在实施过程中具备较强的可操作性,适用于不同专业水平微生物实验人员,有利于促进成果转移转化和推广应用。
[0020] (6)普适性:因ATP普遍存在于生命体细胞内,专利方法可为实验菌种扩增提供具有广谱价值的检测技术支撑;相关仪器的引入可极大简化实验步骤,降低测试成本;有利于扩大在检、学、研、产各界推广应用,能够支撑消毒剂杀菌效果评价技术实现普适化,同时可对日化品、卫生用品等其他领域抗菌效果评价技术研究提供参考借鉴。
[0021] 进一步的,本发明的优选方案是:
[0022] 所述的样品提取及最低有效浓度确定,按下述步骤进行:
[0023] (1)对照样品:以指示菌种培养液作为对照样品;
[0024] (2)试验样品:从某生产批号1个完整运输包装中随机抽取1件最小销售包装的液体消毒剂样品,用于中和剂鉴定和定量悬液试验;每组试验样品选择一组对照样品作为参照物并有效标识。
[0025] (3)消毒剂样品最低有效浓度的确定:按照待测消毒剂样品使用说明书标注的有效浓度范围,将其用无菌水稀释为高、中、低三个适宜浓度;用灭菌移液枪将3.5mL不同浓度的稀释液分装三支无菌试管,并向各试管中分别滴加0.5mL接种菌液;3000r/min振摇试管30s后,将其置于(20±2)℃水浴中。待试管内溶液温度与水浴温度平衡后开始计时,使消毒剂对细菌繁殖体的杀灭作用持续10min;然后,以其混匀液作为回收液,按照本专利中相对荧光强度值IA测定方法,测定并记录回收液的相对荧光强度值。同时,以3.5mL指示菌种培养液作为对照样品,替代消毒液重复上述杀菌试验及回收液IA测定过程;并依据本专利中杀灭率R计算公式,对不同浓度稀释液的杀灭率进行计算;若某浓度的杀灭率为99.9%,则将此浓度设定为待测消毒剂样品的最低有效浓度;
[0026] 所述的设备选型及试剂、培养基配制,按下述步骤进行:
[0027] (1)通用要求:试验用分析纯试剂及符合GB/T 6682-2008规定的三级水(蒸馏水或去离子水),实验室具备二级生物安全资质,人员具有正规微生物实验室工作经验;
[0028] (2)仪器设备:二级生物安全柜;含ATP荧光光度计、配套试剂盒、专用试管等的ATP生物荧光快速检测系统,其中ATP荧光光度计波长量程300nm~650nm,ATP浓度检测范围10-13mol/L~10-7mol/L;(37±1)℃的恒温培养箱;(10~50)℃±1℃的恒温水浴箱;(121±2)℃、(103±5)kPa的压力蒸汽灭菌器;-20℃~-70℃的低温箱;0℃~5℃的冷藏箱;感量0.001g的电子天平;频率(30~50)kHz的声波清洗器;转速(500~3000)r/min的旋涡振荡器精度±0.1(25℃)的pH计;电炉;
[0029] (3)材料器具:1mL、10mL的无菌刻度吸管;0.05mL、0.1mL、0.2mL、1mL、5mL、10mL(计量误差小于1%)的单道可变量程移液枪和无菌移液枪头;容量250mL、500mL的无菌锥形瓶;直径90mm的无菌培养皿;麦氏细菌标准比浊管及配套试管;无菌试管;直径不大于4mm的接种环;酒精灯;分度值1mm的直尺; 的温度计;精度0.01s的秒表;A6白色
复印纸;0.7mm芯黑色中性笔;
[0030] (4)试剂:小血清;下列试剂分装后121℃高压灭菌30min,5℃~10℃存放30d:85%的生理盐水;将5g硫代硫酸钠溶于1000mL水(用于氯型消毒剂);将1.36g磷酸二氢
2.83g磷酸氢二钠、10g卵磷脂、10g甘酸、30g吐温(80)溶于1000mL水或将1.36g磷酸二氢钾、2.83g磷酸氢二钠、3g卵磷脂、20g吐温(80)溶于1000mL水(用于非氧化型消毒剂);将20g吐温(80)、1g硫代硫酸钠溶于1000mL磷酸盐缓冲溶液(用于氧型消毒剂)等(或针对待测液体消毒剂样品类型,选择其它相适用的中和剂);
[0031] (5)培养基/液(可用市售培养基/液):所配培养基/液分装后经121℃高压灭菌15min,2℃~8℃存放30d;
[0032] 营养琼脂(NA):将5g牛肉膏、10g蛋白胨、5g氯化钠、15g琼脂加热溶解于1000mL水中,调节pH至7.0~7.2;
[0033] 营养肉汤(NB):将3g牛肉膏、10g蛋白胨、5g氯化钠加热溶解于1000mL水中,调节pH至7.0~7.2;
[0034] 大肠埃希氏菌/金黄色葡萄球菌培养液:将1:500/1:100的营养肉汤(NB)与85%的无菌生理盐水溶液混合,调节pH至7.0~7.2;
[0035] (6)ATP荧光反应试剂(或用市售试剂):除磷酸盐缓冲溶液外,所配ATP荧光反应试剂-20℃~-70℃保存,6个月内使用;
[0036] 稀释缓冲溶液:0.005mol/L且含0.037%蔗糖的磷酸氢二钠溶液,调节pH至7.2±0.2;121℃高压灭菌15min,2℃~8℃存放30d;
[0037] ATP荧光试剂缓冲溶液:将1117mg三羟甲基氨基甲烷、183mg乙二胺四乙酸二钠、808mg乙酸镁、6.7mg二巯基苏糖醇、25000mg的β-环糊精和925mg葡萄糖加热溶解于250mL水中,调节pH至7.5±0.2;8h内使用;
[0038] ATP裂解液:将4.6国际单位/ml的三磷酸腺苷双磷酸酶(EC:3.6.1.5)和46国际单位/ml的磷酸腺苷脱氨酶(EC:3.5.4.6或EC:3.5.4.17)、37mg蔗糖、20mg牛血清蛋白溶解于10mL浓度为0.05mol/L的2-吗啉乙磺酸缓冲溶液中,调节pH至6.0±0.5,8h内使用(1mL裂解液在15min内可将营养肉汤中的ATP浓度降至10-13mol/L以下);
[0039] ATP提取液:将45mg三羟甲基氨基甲烷加热溶解于9.8ml水中,与0.2ml浓度为10%的苯扎氯铵溶液混匀后,调节pH至12.0±0.5;
[0040] ATP荧光试剂:将16mg荧光素酶(EC:1.13.12.7)、12.6mg的D-荧光素、56mg牛血清蛋白溶解于30mL的ATP荧光试剂缓冲液中,混匀后室温静置15min,3h内使用;
[0041] 所述的菌种保藏、活化及菌悬液制备,按下述步骤进行:
[0042] (1)指示菌种:大肠埃希氏菌ATCC 8099;金黄色葡萄球菌ATCC 6538(或由国家相应菌种保藏管理中心提供并可溯源的其他菌种);
[0043] (2)菌种保藏:以无菌操作打开冻干菌种管,用毛细吸管加入适量营养肉汤,吹吸数次使菌种融化分散。然后,将少许指示菌种悬浮液滴入装有5mL~10mL营养肉汤的试管中,(37±1)℃培养24h~48h;用作斜面保藏菌,(5±1)℃存放(不超过1个月),接种次数不超过14代;
[0044] (3)菌种活化:将斜面保藏菌转接营养琼脂斜面培养基,(37±1)℃培养18h~24h;每天转接1次,连续转接不超过15d。试验使用第3代~第14代且于24h内转接的新鲜细菌培养物;
[0045] (4)菌悬液制备:用接种环从菌种活化培养基上刮取少量新鲜细菌,加入适量指示菌种培养液制成菌悬液;1000r/min振摇试管1min或以30cm摆幅振摇试管80次,确保细菌悬浮均匀。将一定量菌液移至与麦氏标准比浊管配套无菌试管中,用0.7mm芯黑色中性笔在A6白色复印纸上划3条长度为10cm的平行线;目测试管与标准比浊管(标称含量6.0×108CFU/mL)的浊度差异,滴加培养液直至二者浊度相同为止;
[0046] 所述的ATP浓度对数值lgCA-相对荧光强度对数值lgIA标准曲线建立及接种菌液的活菌ATP浓度CA标定,按下述步骤进行:
[0047] (1)标准系列溶液确定和ATP生物荧光测试样制备:用指示菌种培养液将1.0×10-3mol/L的ATP标准原液稀释为高、低浓度标准系列溶液:8.5×10-9mol/L、8.5×10-8mol/L、
8.5×10-7mol/L(如果仪器检测上限无法达到10-7mol/L量级或高浓度标准曲线的线性较差,可将其ATP浓度系列改为8.5×10-10mol/L、8.5×10-9mol/L、8.5×10-8mol/L)和1.0×10-11 -10 -9
mol/L、1.0×10 mol/L、1.0×10 mol/L并混匀。然后,用灭菌移液枪将0.1mL的ATP标准系列溶液分别移至三只无菌试管中,依次滴加0.9mL含0.037%蔗糖的磷酸盐缓冲液并混匀;再将0.1mL不同浓度的混合溶液分别移至三支仪器专用无菌试管中,作为ATP生物荧光测试平行样;
[0048] (2)相对荧光强度值IA测定:根据本专利中相对荧光强度值IA测定方法,以指示菌种培养液作为空白样液验证仪器及试剂组本底后;按照浓度从低到高的顺序,向不同浓度ATP标准溶液三个平行样中分别滴加0.1mL的ATP提取试剂,混匀后滴入0.1mL的ATP荧光试剂;再次混匀,立即用ATP荧光光度计测定其相对荧光强度值并记录(确保各环节操作时间一致,避免交叉污染)。每个平行样测定时间不超过15s,以各浓度ATP标准溶液三个平行样相对荧光强度值的算术平均值为其IA测定值;
[0049] (3)ATP浓度对数值lgCA-相对荧光强度对数值lgIA标准曲线建立:以ATP标准系列溶液的相对荧光强度对数值lgIA作为横坐标,以其相应的ATP浓度对数值lgCA为纵坐标作图;对二者之间的数学关系进行曲线标定,绘制两条相应浓度的lgCA-lgIA标准曲线;并应用最小二乘拟合法推导得出曲线的线性方程式Y=aA0X+bA0(高浓度)、Y=aAX+bA(低浓度)和相2 2 2 2
关系数RA0 (高浓度)、RA (低浓度)。当RA0及RA≥0.98、置信水平≥0.95时,按照本专利所做的测定有效;
[0050] (4)接种菌液活菌ATP浓度CA标定:按照本专利中相对荧光强度值IA测定方法,对经麦氏比浊法初筛后细菌总量为6.0×108CFU/mL的菌悬液10倍稀释液的相对荧光强度值IA进行测定;根据高浓度标准曲线方程式Y=aA0X+bA0推算并标定其活菌ATP浓度CA。然后,经指示菌种培养液调整,得到CA范围为8.0×10-8mol/L~9.0×10-8mol/L的接种菌液;
[0051] 所述的中和剂鉴定及定量悬液试验,按下述步骤进行:
[0052] (1)中和剂鉴定试验:选取作用10min抑杀指示菌99.9%的消毒剂最低有效浓度作为中和剂鉴定试验的样液浓度,并将1mL试验样液与9mL中和剂溶液混合;作用10min形成中和产物后,进行试验分组如下:将0.5mL接种菌液(与曲线lgCA-lgIA标定用菌液取自同一支指示菌种原液试管,2℃±0.2℃保存,2h内使用)分装五支含3.5mL试验样液(1#、2#)、3.5mL中和产物溶液(3#)、3.5mL指示菌种培养液(4#)、3.5mL中和剂溶液(5#)的无菌试管中,1000r/min振摇试管10min,使其溶液充分混匀。然后,用灭菌移液枪将0.4mL各组混匀液分装五支含3.6mL指示菌种培养液(1#、3#、4#、5#)、3.6mL中和剂溶液(2#)的无菌试管中,同时将另外一支无菌试管中的4mL指示菌种培养液作为第6#组试验样液。1000r/min振摇各组试管
10min后,将其混匀液作为试验样液的回收液,按照本专利中相对荧光强度值IA测定方法,测定并记录上述6组回收液相对荧光强度值。
[0053] (2)中和效果评价:如果第1#、6#组回收液的相对荧光强度测定值IA1≥0、IA6=0,第2#~5#组回收液的相对荧光强度测定值之间关系为:IA2≥0且IA2<IA3、IA2<IA4、IA2<IA5;第
3#、4#、5#组回收液的相对荧光强度测定值接近,即IA3≈IA4≈IA5,其按照公式(1)计算得到的活菌ATP浓度CA3、CA4、CA5组间误差率Δ≤10%;说明所选中和剂种类可用于待测液体消毒剂样品细菌繁殖体杀灭效果试验,并依据等当量中和原则,调整中和剂浓度后重复上述中和剂鉴定试验,确定消毒剂试验浓度所对应的中和剂浓度。
[0054]
[0055] 式中:
[0056] Δ—第3#、4#、5#组回收液的活菌ATP浓度CA3、CA4、CA5组间误差率,%;
[0057] IA3、IA4、IA5—第3#、4#、5#组回收液的相对荧光强度测定值,RLU;
[0058] —第3#、4#、5#组回收液的活菌平均ATP浓度,其数值为
[0059] aA—低浓度标准曲线lgCA-lgIA斜率;bA—低浓度标准曲线lgCA-lgIA在纵轴截距;
[0060] (3)定量悬液试验:按照待测消毒剂使用说明中标注的有效浓度和作用时间范围,用无菌水将其稀释为高、中、低三个适宜浓度:C1、C2、C3(C1为产品说明中规定的最低使用浓度),其中C2=2C1、C3=2C2;同时选取四段不同的灭菌时间t1、t2、t3、t4(t2为产品说明中规定的最短作用时间),其中t1=0.5t2、t3=1.5t2、t4=2t2。然后,用灭菌移液枪将3.5mL不同浓度的试验样液分装三支无菌试管中;并置于(20±2)℃水浴中,待试管内溶液温度与水浴温度平衡后,分别滴加0.5mL接种菌液。3000r/min振摇试管30s后开始计时,当灭菌作用持续至设定的t1、t2、t3、t4四段不同时间后,用灭菌移液枪将0.4mL不同浓度的混匀液分装三支含3.6mL中和剂溶液的无菌试管中,3000r/min振摇试管30s后开始计时,待中和作用持续10min后,将其混匀液作为各浓度试验样液的回收液。然后,用指示菌种培养液替代试验样液重复上述试验。
[0061] 试验重复5次。
[0062] 然后,将小牛血清加入菌悬液中,使其最终血清含量为10%并确保接种菌液CA为8.0×10-8mol/L~9.0×10-8mol/L,重复上述定量悬液试验5次;确定待测液体消毒剂样品在有机物存在的条件下,对细菌繁殖体具备消毒效果的有效浓度和时间;
[0063] 所述的回收液相对荧光强度值IA测定,按下述步骤进行:
[0064] (1)仪器及试剂组相对荧光强度本底值校准:用灭菌移液枪将0.1mL试验菌种培养液、0.8mL含0.037%蔗糖的磷酸盐缓冲液和0.1mL的ATP裂解液分别加入同一支无菌试管中并充分混匀,然后将0.1mL上述混和溶液依次移至三支仪器专用无菌试管中,静置5min~30min,作为空白测试平行样。向三个平行样中分别滴加0.1mL的ATP提取试剂,混匀后滴入
0.1mL的ATP荧光试剂;再次混匀,立即用ATP荧光光度计测定其相对荧光强度值IA并记录(确保各环节操作时间一致,避免交叉污染)。每个平行样测定时间不超过15s,以三个空白测试平行样相对荧光强度值的算术平均值作为仪器和试剂组本底值(或按照仪器使用说明校准本底值);
[0065] (2)回收液相对荧光强度值IA测定:如本底水平符合仪器使用要求,用灭菌移液枪将0.1mL回收液、0.8mL含0.037%蔗糖的磷酸盐缓冲液和0.1mL的ATP裂解液分别加入同一支无菌试管中,充分混匀后再将0.1mL上述混和溶液依次移至三支仪器专用无菌试管中,静置5min~30min,作为ATP荧光测试平行样。向三个平行样中分别滴加0.1mL的ATP提取试剂,混匀后滴入0.1mL的ATP荧光试剂;再次混匀,立即用ATP荧光光度计测定其相对荧光强度值IA并记录(确保各环节操作时间一致,避免交叉污染)。每个平行样测定时间不超过15s,以三个ATP荧光测试平行样相对荧光强度值的算术平均值作为待测样品回收液的IA测定值(或使用仪器配套试剂盒,按照相关使用说明书要求,直接上机测定样品回收液三个平行样的相对荧光强度值IA);
[0066] 所述的回收液活菌ATP浓度CA和TA推算以及杀灭率R和灭菌指数A计算,按下述步骤进行:
[0067] (1)回收液的活菌ATP浓度CA和TA推算
[0068] 根据ATP低浓度标准曲线lgCA-lgIA的线性方程式Y=aAX+bA,推算各次不同浓度的试验样液及对照样液经t1~t4四段灭/染菌时间后,回收液的活菌ATP浓度CA和TA。相关计算(使用仪器配套试剂盒时,根据其实际进样量推算1mL回收液的活菌ATP浓度CA及TA)见公式(2)~(9):
[0069]
[0070]
[0071]
[0072]
[0073]
[0074]
[0075]
[0076]
[0077] 式中:
[0078] —每次不同浓度的试验样液经四段灭菌时间后回收活菌的ATP浓度,单位为摩尔每升(mol/L);试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0079] —每次不同浓度的试验样液经四段灭菌时间后,回收活菌的相对荧光强度测定值,RLU;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0080] aA—低浓度标准曲线lgCA-lgIA斜率;bA—低浓度标准曲线lgCA-lgIA在纵轴截距;
[0081] —每次不同浓度的对照样液经四段染菌时间后回收活菌的ATP浓度,单位为摩尔每升(mol/L);试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0082] —每次不同浓度的对照样液经四段染菌时间后,回收活菌的相对荧光强度测定值,RLU;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0083] (2)杀灭率R计算
[0084] 在中和剂鉴定结果合格的条件下,每次不同浓度的试验样液在四段灭菌时间内对细菌繁殖体的杀灭率 以及相应浓度的待测液体消毒剂样品在同一灭菌时间内的杀灭率 分别按照公式(10)~(17)计算:
[0085]
[0086]
[0087]
[0088]
[0089]
[0090]
[0091]
[0092]
[0093] 式中:
[0094] —每次不同浓度的试验样液在四段灭菌时间内对细菌繁殖体的杀灭率,%;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0095] —相应浓度的待测液体消毒剂样品在四段灭菌时间内对细菌繁殖体的杀灭率,%;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0096] —每次不同浓度的对照样液经四段染菌时间后回收活菌的ATP浓度,单位为摩尔每升(mol/L);试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0097] —每次不同浓度的试验样液经四段灭菌时间后回收活菌的ATP浓度,单位为摩尔每升(mol/L);试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0098] —每次不同浓度的试验样液经四段灭菌时间后,回收活菌的相对荧光强度测定值,RLU;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0099] —每次不同浓度的对照样液经四段染菌时间后,回收活菌的相对荧光强度测定值,RLU;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0100] aA—低浓度标准曲线lgCA-lgIA斜率;
[0101] (3)灭菌指数A的计算
[0102] 在中和剂鉴定结果合格的条件下,每次不同浓度的试验样液在四段灭菌时间内对细菌繁殖体的灭菌指数 以及相应浓度的待测液体消毒剂样品在同一灭菌时间内的灭菌指数 分别按照公式(18)~(25)计算:
[0103]
[0104]
[0105]
[0106]
[0107]
[0108]
[0109]
[0110]
[0111] 式中:
[0112] —每次不同浓度的试验样液在四段灭菌时间内对细菌繁殖体的灭菌指数;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0113] —相应浓度的待测液体消毒剂样品在四段灭菌时间内对细菌繁殖体的灭菌指数;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;;
[0114] —每次不同浓度的对照样液经四段染菌时间后回收活菌的ATP浓度,单位为摩尔每升(mol/L);试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0115] —每次不同浓度的试验样液经四段灭菌时间后回收活菌的ATP浓度,单位为摩尔每升(mol/L);试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0116] —每次不同浓度的试验样液经四段灭菌时间后,回收活菌的相对荧光强度测定值,RLU;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0117] —每次不同浓度的对照样液经四段染菌时间后,回收活菌的相对荧光强度测定值,RLU;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0118] aA—低浓度标准曲线lgCA-lgIA斜率;
[0119] (4)数据修约要求:在标定ATP标准溶液浓度以及接种菌液、回收液的活菌ATP浓度CA时,参考GB 4789.2—2016中有关菌落数的数据修约规定;当CA小于100mol/L时,“四舍五入”取整数;当CA不小于100mol/L时,第3位数字“四舍五入”后取前2位数字,后面用0代替位数;也可用10的指数形式表示,“四舍五入”后采用两位有效数字。试验样液及对照样液经四段灭/染菌时间后,回收液的相对荧光强度测定值取整数,对细菌繁殖体的杀菌率计算结果取三位有效数字,灭菌指数计算结果取两位有效数字;
[0120] (5)测量不确定度:本专利方法通过计算5次定量悬液试验中不同浓度的试验样液和对照样液经四段不同的灭/染菌时间后,其回收液15个ATP荧光测试平行样相对荧光强度测定值的变异系数C·V=σ÷μ×100%(μ、σ和C·V计算结果保留到小数点后两位);判断将ATP生物荧光分析法应用于液体消毒剂细菌繁殖体杀灭效果测试的重现性,规定变异系数C·V≤10%。相关计算见公式(26)~(33):
[0121]
[0122]
[0123]
[0124]
[0125]
[0126]
[0127]
[0128]
[0129] 式中:
[0130] —经t1、t2、t3、t4四段不同灭菌时间后,5次试验中同一浓度的试验样液15个ATP荧光测试平行样的相对荧光强度测定值
的算术平均值;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,
2,3;平行样编号k=1,2,3。
[0131] —经t1、t2、t3、t4四段不同灭菌时间后,5次试验中同一浓度的试验样液的回收液15个ATP荧光测试平行样相对荧光强度测定值
的标准偏差;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,
3;平行样编号k=1,2,3。
[0132] —经t1、t2、t3、t4四段不同染菌时间后,5次试验中同一浓度的对照样液15个ATP荧光测试平行样的相对荧光强度测定值
的算术平均值;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,
2,3;平行样编号k=1,2,3。
[0133] —经t1、t2、t3、t4四段不同染菌时间后,5次试验中同一浓度的对照样液的回收液15个ATP荧光测试平行样相对荧光强度测定值
的标准偏差;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,
3;平行样编号k=1,2,3;
[0134] 所述的液体消毒剂样品细菌繁殖体杀灭效果的结果判定,按下述步骤进行:
[0135] 参考卫生行业通用做法和相关消毒效果生物学评价标准,如果某浓度待测液体消毒剂样液在单次定量悬液试验中,经ATP生物荧光lgCA-lgIA标准曲线法测得的特定灭菌时间内细菌繁殖体杀灭率≥99.9%或灭菌指数≥3.0,则判定其在此次试验中消毒效果合格。当该浓度待测液体消毒剂样液在5次定量悬液试验中相同灭菌时间内的消毒效果均合格时,方可确定其对细菌繁殖体具有消毒效果的最低浓度和最短时间(在实际应用中以有机物保护试验的最低浓度和最短时间为待测液体消毒剂样品达到实用消毒效果所需的浓度和时间);

具体实施方式

[0136] 下面结合较佳实施例对本发明进行详细阐述,以使本发明的优点和特征能更易于被本领域技术人员理解,从而对本发明的保护范围做出更为清楚明确的界定。
[0137] 本实施例以浓度为60g/L的13α-(N,N-二甲基氨基)乙氨基苦参消毒液样品对细菌繁殖体的杀灭效果检测为例进行说明。
[0138] 具体的评价方法按下述步骤进行:
[0139] (1)样品提取及最低有效浓度确定
[0140] 1.1对照样品:以指示菌种培养液作为对照样品。
[0141] 1.2试验样品:从某生产批号1个完整运输包装中随机抽取1件最小销售包装的液体消毒剂样品,用于中和剂鉴定和定量悬液试验;每组试验样品选择一组对照样品作为参照物并有效标识。
[0142] 1.3消毒剂样品最低有效浓度的确定:按照待测消毒剂样品使用说明书标注的有效浓度范围,将其用无菌水稀释为高、中、低三个适宜浓度;用灭菌移液枪将3.5mL不同浓度的稀释液分装三支无菌试管,并向各试管中分别滴加0.5mL接种菌液;3000r/min振摇试管30s后,将其置于(20±2)℃水浴中。待试管内溶液温度与水浴温度平衡后开始计时,使消毒剂对细菌繁殖体的杀灭作用持续10min;然后,以其混匀液作为回收液,按照本专利中相对荧光强度值IA测定方法,测定并记录回收液的相对荧光强度值。同时,以3.5mL指示菌种培养液作为对照样品,替代消毒液重复上述杀菌试验及回收液IA测定过程;并依据本专利中杀灭率R计算公式,对不同浓度稀释液的杀灭率进行计算;若某浓度的杀灭率为99.9%,则将此浓度设定为待测消毒剂样品的最低有效浓度。
[0143] (2)设备选型及试剂、培养基配制
[0144] 2.1通用要求:试验用分析纯试剂及符合GB/T 6682-2008规定的三级水(蒸馏水或去离子水),实验室具备二级生物安全资质,人员具有正规微生物实验室工作经验。
[0145] 2.2仪器设备:二级生物安全柜;含ATP荧光光度计、配套试剂盒、专用试管等的ATP生物荧光快速检测系统,其中ATP荧光光度计波长量程300nm~650nm,ATP浓度检测范围10-13mol/L~10-7mol/L;(37±1)℃的恒温培养箱;(10~50)℃±1℃的恒温水浴箱;(121±2)℃、(103±5)kPa的压力蒸汽灭菌器;-20℃~-70℃的低温冰箱;0℃~5℃的冷藏箱;感量0.001g的电子天平;频率(30~50)kHz的超声波清洗器;转速(500~3000)r/min的旋涡振荡器;精度±0.1(25℃)的pH计;电炉。
[0146] 2.3材料器具:1mL、10mL的无菌刻度吸管;0.05mL、0.1mL、0.2mL、1mL、5mL、10mL(计量误差小于1%)的单道可变量程移液枪和无菌移液枪头;容量250mL、500mL的无菌锥形瓶;直径90mm的无菌培养皿;麦氏细菌标准比浊管及配套试管;无菌试管;直径不大于4mm的接种环;酒精灯;分度值1mm的直尺; 的温度计;精度0.01s的秒表;A6白色
复印纸;0.7mm芯黑色中性笔。
[0147] 2.4试剂:小牛血清;下列试剂分装后121℃高压灭菌30min,5℃~10℃存放30d:85%的生理盐水;将5g硫代硫酸钠溶于1000mL水(用于氯型消毒剂);将1.36g磷酸二氢钾、
2.83g磷酸氢二钠、10g卵磷脂、10g甘氨酸、30g吐温(80)溶于1000mL水或将1.36g磷酸二氢钾、2.83g磷酸氢二钠、3g卵磷脂、20g吐温(80)溶于1000mL水(用于非氧化型消毒剂);将20g吐温(80)、1g硫代硫酸钠溶于1000mL磷酸盐缓冲溶液(用于氧型消毒剂)等(或针对待测液体消毒剂样品类型,选择其它相适用的中和剂)。
[0148] 2.5培养基/液(可用市售培养基/液):所配培养基/液分装后经121℃高压灭菌15min,2℃~8℃存放30d;
[0149] 营养琼脂(NA):将5g牛肉膏、10g蛋白胨、5g氯化钠、15g琼脂加热溶解于1000mL水中,调节pH至7.0~7.2;
[0150] 营养肉汤(NB):将3g牛肉膏、10g蛋白胨、5g氯化钠加热溶解于1000mL水中,调节pH至7.0~7.2;
[0151] 大肠埃希氏菌/金黄色葡萄球菌培养液:将1:500/1:100的营养肉汤(NB)与85%的无菌生理盐水溶液混合,调节pH至7.0~7.2。
[0152] 2.6ATP荧光反应试剂(或用市售试剂):除磷酸盐缓冲溶液外,所配ATP荧光反应试剂-20℃~-70℃保存,6个月内使用;
[0153] 稀释缓冲溶液:0.005mol/L且含0.037%蔗糖的磷酸氢二钠溶液,调节pH至7.2±0.2;121℃高压灭菌15min,2℃~8℃存放30d;
[0154] ATP荧光试剂缓冲溶液:将1117mg三羟甲基氨基甲烷、183mg乙二胺四乙酸二钠、808mg乙酸镁、6.7mg二巯基苏糖醇、25000mg的β-环糊精和925mg葡萄糖加热溶解于250mL水中,调节pH至7.5±0.2;8h内使用;
[0155] ATP裂解液:将4.6国际单位/ml的三磷酸腺苷双磷酸酶(EC:3.6.1.5)和46国际单位/ml的磷酸腺苷脱氨酶(EC:3.5.4.6或EC:3.5.4.17)、37mg蔗糖、20mg牛血清蛋白溶解于10mL浓度为0.05mol/L的2-吗啉乙磺酸缓冲溶液中,调节pH至6.0±0.5,8h内使用(1mL裂解液在15min内可将营养肉汤中的ATP浓度降至10-13mol/L以下);
[0156] ATP提取液:将45mg三羟甲基氨基甲烷加热溶解于9.8ml水中,与0.2ml浓度为10%的苯扎氯铵溶液混匀后,调节pH至12.0±0.5;
[0157] ATP荧光试剂:将16mg荧光素酶(EC:1.13.12.7)、12.6mg的D-荧光素、56mg牛血清蛋白溶解于30mL的ATP荧光试剂缓冲液中,混匀后室温静置15min,3h内使用。
[0158] (3)菌种保藏、活化及菌悬液制备
[0159] 3.1指示菌种:大肠埃希氏菌ATCC 8099;金黄色葡萄球菌ATCC 6538(或由国家相应菌种保藏管理中心提供并可溯源的其他菌种)。
[0160] 3.2菌种保藏:以无菌操作打开冻干菌种管,用毛细吸管加入适量营养肉汤,吹吸数次使菌种融化分散。然后,将少许指示菌种悬浮液滴入装有5mL~10mL营养肉汤的试管中,(37±1)℃培养24h~48h;用作斜面保藏菌,(5±1)℃存放(不超过1个月),接种次数不超过14代。
[0161] 3.3菌种活化:将斜面保藏菌转接营养琼脂斜面培养基,(37±1)℃培养18h~24h;每天转接1次,连续转接不超过15d。试验使用第3代~第14代且于24h内转接的新鲜细菌培养物。
[0162] 3.4菌悬液制备:用接种环从菌种活化培养基上刮取少量新鲜细菌,加入适量指示菌种培养液制成菌悬液;1000r/min振摇试管1min或以30cm摆幅振摇试管80次,确保细菌悬浮均匀。将一定量菌液移至与麦氏标准比浊管配套无菌试管中,用0.7mm芯黑色中性笔在A6白色复印纸上划3条长度为10cm的平行线;目测试管与标准比浊管(标称含量6.0×108CFU/mL)的浊度差异,滴加培养液直至二者浊度相同为止。
[0163] (4)ATP浓度对数值lgCA-相对荧光强度对数值lgIA标准曲线建立及接种菌液的活菌ATP浓度CA标定
[0164] 4.1标准系列溶液确定和ATP生物荧光测试样制备:用指示菌种培养液将1.0×10-3 -9 -8
mol/L的ATP标准原液稀释为高、低浓度标准系列溶液:8.5×10 mol/L、8.5×10 mol/L、
8.5×10-7mol/L(如果仪器检测上限无法达到10-7mol/L量级或高浓度标准曲线的线性较差,可将其ATP浓度系列改为8.5×10-10mol/L、8.5×10-9mol/L、8.5×10-8mol/L)和1.0×10-11mol/L、1.0×10-10mol/L、1.0×10-9mol/L并混匀。然后,用灭菌移液枪将0.1mL的ATP标准系列溶液分别移至三只无菌试管中,依次滴加0.9mL含0.037%蔗糖的磷酸盐缓冲液并混匀;再将0.1mL不同浓度的混合溶液分别移至三支仪器专用无菌试管中,作为ATP生物荧光测试平行样。
[0165] 4.2相对荧光强度值IA测定:根据本专利中相对荧光强度值IA测定方法,以指示菌种培养液作为空白样液验证仪器及试剂组本底后;按照浓度从低到高的顺序,向不同浓度ATP标准溶液三个平行样中分别滴加0.1mL的ATP提取试剂,混匀后滴入0.1mL的ATP荧光试剂;再次混匀,立即用ATP荧光光度计测定其相对荧光强度值并记录(确保各环节操作时间一致,避免交叉污染)。每个平行样测定时间不超过15s,以各浓度ATP标准溶液三个平行样相对荧光强度值的算术平均值为其IA测定值。
[0166] 4.3ATP浓度对数值lgCA-相对荧光强度对数值lgIA标准曲线建立:以ATP标准系列溶液的相对荧光强度对数值lgIA作为横坐标,以其相应的ATP浓度对数值lgCA为纵坐标作图;对二者之间的数学关系进行曲线标定,绘制两条相应浓度的lgCA-lgIA标准曲线;并应用最小二乘拟合法推导得出曲线的线性方程式Y=aA0X+bA0(高浓度)、Y=aAX+bA(低浓度)和相关系数RA02(高浓度)、RA2(低浓度)。当RA02及RA2≥0.98、置信水平≥0.95时,按照本专利所做的测定有效。
[0167] 4.4接种菌液活菌ATP浓度CA标定:按照本专利中相对荧光强度值IA测定方法,对经麦氏比浊法初筛后细菌总量为6.0×108CFU/mL的菌悬液10倍稀释液的相对荧光强度值IA进行测定;根据高浓度标准曲线方程式Y=aA0X+bA0推算并标定其活菌ATP浓度CA。然后,经指示菌种培养液调整,得到CA范围为8.0×10-8mol/L~9.0×10-8mol/L的接种菌液。
[0168] (5)中和剂鉴定及定量悬液试验
[0169] 5.1中和剂鉴定试验:选取作用10min抑杀指示菌99.9%的消毒剂最低有效浓度作为中和剂鉴定试验的样液浓度,并将1mL试验样液与9mL中和剂溶液混合;作用10min形成中和产物后,进行试验分组如下:将0.5mL接种菌液(与曲线lgCA-lgIA标定用菌液取自同一支指示菌种原液试管,2℃±0.2℃保存,2h内使用)分装五支含3.5mL试验样液(1#、2#)、3.5mL中和产物溶液(3#)、3.5mL指示菌种培养液(4#)、3.5mL中和剂溶液(5#)的无菌试管中,1000r/min振摇试管10min,使其溶液充分混匀。然后,用灭菌移液枪将0.4mL各组混匀液分装五支含3.6mL指示菌种培养液(1#、3#、4#、5#)、3.6mL中和剂溶液(2#)的无菌试管中,同时将另外一支无菌试管中的4mL指示菌种培养液作为第6#组试验样液。1000r/min振摇各组试管
10min后,将其混匀液作为试验样液的回收液,按照本专利中相对荧光强度值IA测定方法,测定并记录上述6组回收液相对荧光强度值。
[0170] 5.2中和效果评价:如果第1#、6#组回收液的相对荧光强度测定值IA1≥0、IA6=0,第# #2~5组回收液的相对荧光强度测定值之间关系为:IA2≥0且IA2<IA3、IA2<IA4、IA2<IA5;第
3#、4#、5#组回收液的相对荧光强度测定值接近,即IA3≈IA4≈IA5,其按照公式(1)计算得到的活菌ATP浓度CA3、CA4、CA5组间误差率Δ≤10%;说明所选中和剂种类可用于待测液体消毒剂样品细菌繁殖体杀灭效果试验,并依据等当量中和原则,调整中和剂浓度后重复上述中和剂鉴定试验,确定消毒剂试验浓度所对应的中和剂浓度。
[0171]
[0172] 式中:
[0173] Δ—第3#、4#、5#组回收液的活菌ATP浓度CA3、CA4、CA5组间误差率,%;
[0174] IA3、IA4、IA5—第3#、4#、5#组回收液的相对荧光强度测定值,RLU;
[0175] —第3#、4#、5#组回收液的活菌平均ATP浓度,其数值为
[0176] aA—低浓度标准曲线lgCA-lgIA斜率;bA—低浓度标准曲线lgCA-lgIA在纵轴截距。
[0177] 5.3定量悬液试验:按照待测消毒剂使用说明中标注的有效浓度和作用时间范围,用无菌水将其稀释为高、中、低三个适宜浓度:C1、C2、C3(C1为产品说明中规定的最低使用浓度),其中C2=2C1、C3=2C2;同时选取四段不同的灭菌时间t1、t2、t3、t4(t2为产品说明中规定的最短作用时间),其中t1=0.5t2、t3=1.5t2、t4=2t2。然后,用灭菌移液枪将3.5mL不同浓度的试验样液分装三支无菌试管中;并置于(20±2)℃水浴中,待试管内溶液温度与水浴温度平衡后,分别滴加0.5mL接种菌液。3000r/min振摇试管30s后开始计时,当灭菌作用持续至设定的t1、t2、t3、t4四段不同时间后,用灭菌移液枪将0.4mL不同浓度的混匀液分装三支含3.6mL中和剂溶液的无菌试管中,3000r/min振摇试管30s后开始计时,待中和作用持续10min后,将其混匀液作为各浓度试验样液的回收液。然后,用指示菌种培养液替代试验样液重复上述试验。
[0178] 试验重复5次。
[0179] 然后,将小牛血清加入菌悬液中,使其最终血清含量为10%并确保接种菌液CA为8.0×10-8mol/L~9.0×10-8mol/L,重复上述定量悬液试验5次;确定待测液体消毒剂样品在有机物存在的条件下,对细菌繁殖体具备消毒效果的有效浓度和时间。
[0180] (6)回收液相对荧光强度值IA测定
[0181] 6.1仪器及试剂组相对荧光强度本底值校准:用灭菌移液枪将0.1mL试验菌种培养液、0.8mL含0.037%蔗糖的磷酸盐缓冲液和0.1mL的ATP裂解液分别加入同一支无菌试管中并充分混匀,然后将0.1mL上述混和溶液依次移至三支仪器专用无菌试管中,静置5min~30min,作为空白测试平行样。向三个平行样中分别滴加0.1mL的ATP提取试剂,混匀后滴入
0.1mL的ATP荧光试剂;再次混匀,立即用ATP荧光光度计测定其相对荧光强度值IA并记录(确保各环节操作时间一致,避免交叉污染)。每个平行样测定时间不超过15s,以三个空白测试平行样相对荧光强度值的算术平均值作为仪器和试剂组本底值(或按照仪器使用说明校准本底值)。
[0182] 6.2回收液相对荧光强度值IA测定:如本底水平符合仪器使用要求,用灭菌移液枪将0.1mL回收液、0.8mL含0.037%蔗糖的磷酸盐缓冲液和0.1mL的ATP裂解液分别加入同一支无菌试管中,充分混匀后再将0.1mL上述混和溶液依次移至三支仪器专用无菌试管中,静置5min~30min,作为ATP荧光测试平行样。向三个平行样中分别滴加0.1mL的ATP提取试剂,混匀后滴入0.1mL的ATP荧光试剂;再次混匀,立即用ATP荧光光度计测定其相对荧光强度值IA并记录(确保各环节操作时间一致,避免交叉污染)。每个平行样测定时间不超过15s,以三个ATP荧光测试平行样相对荧光强度值的算术平均值作为待测样品回收液的IA测定值(或使用仪器配套试剂盒,按照相关使用说明书要求,直接上机测定样品回收液三个平行样的相对荧光强度值IA)。
[0183] (7)回收液活菌ATP浓度CA和TA推算以及杀灭率R和灭菌指数A计算
[0184] 7.1回收液的活菌ATP浓度CA和TA推算
[0185] 根据ATP低浓度标准曲线lgCA-lgIA的线性方程式Y=aAX+bA,推算各次不同浓度的试验样液及对照样液经t1~t4四段灭/染菌时间后,回收液的活菌ATP浓度CA和TA。相关计算(使用仪器配套试剂盒时,根据其实际进样量推算1mL回收液的活菌ATP浓度CA及TA)见公式(2)~(9):
[0186]
[0187]
[0188]
[0189]
[0190]
[0191]
[0192]
[0193]
[0194] 式中:
[0195] —每次不同浓度的试验样液经四段灭菌时间后回收活菌的ATP浓度,单位为摩尔每升(mol/L);试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0196] —每次不同浓度的试验样液经四段灭菌时间后,回收活菌的相对荧光强度测定值,RLU;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0197] aA—低浓度标准曲线lgCA-lgIA斜率;bA—低浓度标准曲线lgCA-lgIA在纵轴截距;
[0198] —每次不同浓度的对照样液经四段染菌时间后回收活菌的ATP浓度,单位为摩尔每升(mol/L);试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0199] —每次不同浓度的对照样液经四段染菌时间后,回收活菌的相对荧光强度测定值,RLU;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3。
[0200] 7.2杀灭率R计算
[0201] 在中和剂鉴定结果合格的条件下,每次不同浓度的试验样液在四段灭菌时间内对细菌繁殖体的杀灭率 以及相应浓度的待测液体消毒剂样品在同一灭菌时间内的杀灭率 分别按照公式(10)~(17)计算:
[0202]
[0203]
[0204]
[0205]
[0206]
[0207]
[0208]
[0209]
[0210] 式中:
[0211] —每次不同浓度的试验样液在四段灭菌时间内对细菌繁殖体的杀灭率,%;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0212] —相应浓度的待测液体消毒剂样品在四段灭菌时间内对细菌繁殖体的杀灭率,%;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0213] —每次不同浓度的对照样液经四段染菌时间后回收活菌的ATP浓度,单位为摩尔每升(mol/L);试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0214] —每次不同浓度的试验样液经四段灭菌时间后回收活菌的ATP浓度,单位为摩尔每升(mol/L);试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0215] —每次不同浓度的试验样液经四段灭菌时间后,回收活菌的相对荧光强度测定值,RLU;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0216] —每次不同浓度的对照样液经四段染菌时间后,回收活菌的相对荧光强度测定值,RLU;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0217] aA—低浓度标准曲线lgCA-lgIA斜率。
[0218] 7.3灭菌指数A的计算
[0219] 在中和剂鉴定结果合格的条件下,每次不同浓度的试验样液在四段灭菌时间内对细菌繁殖体的灭菌指数 以及相应浓度的待测液体消毒剂样品在同一灭菌时间内的灭菌指数 分别按照公式(18)~(25)计算:
[0220]
[0221]
[0222]
[0223]
[0224]
[0225]
[0226]
[0227]
[0228] 式中:
[0229] —每次不同浓度的试验样液在四段灭菌时间内对细菌繁殖体的灭菌指数;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0230] —相应浓度的待测液体消毒剂样品在四段灭菌时间内对细菌繁殖体的灭菌指数;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;;
[0231] —每次不同浓度的对照样液经四段染菌时间后回收活菌的ATP浓度,单位为摩尔每升(mol/L);试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0232] —每次不同浓度的试验样液经四段灭菌时间后回收活菌的ATP浓度,单位为摩尔每升(mol/L);试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0233] —每次不同浓度的试验样液经四段灭菌时间后,回收活菌的相对荧光强度测定值,RLU;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0234] —每次不同浓度的对照样液经四段染菌时间后,回收活菌的相对荧光强度测定值,RLU;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,3;
[0235] aA—低浓度标准曲线lgCA-lgIA斜率。
[0236] 7.4数据修约要求:在标定ATP标准溶液浓度以及接种菌液、回收液的活菌ATP浓度CA时,参考GB 4789.2—2016中有关菌落数的数据修约规定;当CA小于100mol/L时,“四舍五入”取整数;当CA不小于100mol/L时,第3位数字“四舍五入”后取前2位数字,后面用0代替位数;也可用10的指数形式表示,“四舍五入”后采用两位有效数字。试验样液及对照样液经四段灭/染菌时间后,回收液的相对荧光强度测定值取整数,对细菌繁殖体的杀菌率计算结果取三位有效数字,灭菌指数计算结果取两位有效数字。
[0237] 7.5测量不确定度:本专利方法通过计算5次定量悬液试验中不同浓度的试验样液和对照样液经四段不同的灭/染菌时间后,其回收液15个ATP荧光测试平行样相对荧光强度测定值的变异系数C·V=σ÷μ×100%(μ、σ和C·V计算结果保留到小数点后两位);判断将ATP生物荧光分析法应用于液体消毒剂细菌繁殖体杀灭效果测试的重现性,规定变异系数C·V≤10%。相关计算见公式(26)~(33):
[0238]
[0239]
[0240]
[0241]
[0242]
[0243]
[0244]
[0245]
[0246] 式中:
[0247] —经t1、t2、t3、t4四段不同灭菌时间后,5次试验中同一浓度的试验样液15个ATP荧光测试平行样的相对荧光强度测定值
的算术平均值;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,
2,3;平行样编号k=1,2,3。
[0248] —经t1、t2、t3、t4四段不同灭菌时间后,5次试验中同一浓度的试验样液的回收液15个ATP荧光测试平行样相对荧光强度测定值
的标准偏差;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,
3;平行样编号k=1,2,3。
[0249] —经t1、t2、t3、t4四段不同染菌时间后,5次试验中同一浓度的对照样液15个ATP荧光测试平行样的相对荧光强度测定值
的算术平均值;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,
2,3;平行样编号k=1,2,3。
[0250] —经t1、t2、t3、t4四段不同染菌时间后,5次试验中同一浓度的对照样液的回收液15个ATP荧光测试平行样相对荧光强度测定值
的标准偏差;试验次数i=1,2,3,4,5;浓度序号j=1,2,
3;平行样编号k=1,2,3。
[0251] (8)结果判定
[0252] 参考卫生行业通用做法和相关消毒效果生物学评价标准,如果某浓度待测液体消毒剂样液在单次定量悬液试验中,经ATP生物荧光lgCA-lgIA标准曲线法测得的特定灭菌时间内细菌繁殖体杀灭率≥99.9%或灭菌指数≥3.0,则判定其在此次试验中消毒效果合格。当该浓度待测液体消毒剂样液在5次定量悬液试验中相同灭菌时间内的消毒效果均合格时,方可确定其对细菌繁殖体具有消毒效果的最低浓度和最短时间(在实际应用中以有机物保护试验的最低浓度和最短时间为待测液体消毒剂样品达到实用消毒效果所需的浓度和时间)。
[0253] 本实施例所用实验室生物安全资质、仪器设备、培养基/液、化学试剂、标准菌株:
[0254] (1)实验室生物安全资质
[0255] 在机构注册号为CNAS BL0059的二级生物安全实验室内,由具有副高级技术职称的微生物检测专业人员完成相关实验。
[0256] (2)仪器设备
[0257] 2.1二级生物安全柜:Thermo Scientific 1300系列二级B2型生物安全柜,工作台2 3
表面积0.55m,排气量1130m/h,过滤效率99.99%(0.3μm)。
[0258] 2.2ATP生物荧光快速检测系统:美国Hygiena公司的便携式system SURE ATP荧光检测仪,含配套试剂盒、塑料专用试管等;ATP含量检测下限4×10-18mol/mL、微生物总量检出限1.0CFU/ml,RLU读数范围0~9999,检测时间10s,采样速率1000次/s,测量误差±5%。
[0259] 2.3恒温恒湿培养箱:冠森生物科技(上海)有限公司型号WS-380H、容积380L、控温范围(0℃~50℃)±0.8℃、控湿范围(30~95)%RH±2%RH的恒温恒湿培养箱。
[0260] 2.4恒温水浴箱:上海基玮试验仪器设备有限公司型号DK-S420的电热恒温水槽,容积15L,控温范围(5~99.9)℃±0.5℃,定时范围1min~999min。
[0261] 2.5压力蒸汽灭菌器:日本Sanyo公司型号MLS-3780的高压灭菌器,容积75L,灭菌温度(105~135)℃±2℃,最大压力0.235MPa,定时范围(1~250)min。
[0262] 2.6低温冰箱:中科美菱低温科技股份有限公司型号DW-HL398的超低温冷冻储存箱,有效容积398L,存储温度-10℃~-86℃。
[0263] 2.7冰箱:东莞市昊欣仪器设备有限公司型号HXL-25-250AD的低温箱超低温冰箱,其冷藏箱(2~10)℃±0.1℃,冷冻箱(-30~20)℃±0.1℃。
[0264] 2.8电子天平:日本岛津型号AUX220的电子天平,量程220g,精度±0.1mg。
[0265] 2.9超声波清洗器:上海易净超声波仪器有限公司型号YQ-120C的超声波清洗机,容量3.2L,超声频率40KHz/28KHz/25KHz,定时范围1min~30min/99min。
[0266] 2.10旋涡振荡器:美国品牌Coleparmer Votex-Genie2的旋涡振荡器,转速范围(500~3000)r/min±3r/min,定时范围1s~60s。
[0267] 2.11pH计:上海精密仪器仪表有限公司型号MP512-03的精密pH计,量程范围(-2.000~19.999)pH±0.002pH,温度范围(-10~110)℃±0.4℃。
[0268] 2.12电炉:常州德科仪器有限公司型号DLD-1KW的1KW封闭式调温电炉。
[0269] (3)培养基/液
[0270] 北京陆桥技术股份有限公司生产的培养基/液。
[0271] (4)化学试剂
[0272] 三磷酸腺苷二钠标准品及配制ATP荧光试剂缓冲溶液、ATP裂解液、ATP提取液和ATP荧光试剂所需一系列生化试剂购自上海金畔生物科技有限公司代理的美国Amresco品牌。
[0273] (5)标准菌株
[0274] 大肠埃希氏菌ATCC 8739和金黄色葡萄球菌ATCC 6538购自中国工业微生物菌种保藏管理中心。
[0275] 本实施例的检测数据及结果计算:
[0276] 应用ATP荧光光度计经lgCA-lgIA标准曲线法对13α-(N,N-二甲基氨基)乙氨基苦参碱消毒液样品的细菌繁殖体杀灭效果进行检测,其10min内对大肠埃希氏菌和金黄色葡萄球菌杀灭率达99.9%的最低有效浓度分别为36g/L和57g/L。选择含10g/L卵磷脂、25g/L甘氨酸、100g/L吐温(80)的TPS溶液作为中和剂,可有效中和待测消毒液样品对指示菌种的残留作用;相关中和剂鉴定、定量悬液试验数据和消毒效果评价、测量不确定度计算结果分别见表1~表3。
[0277] 表1中和剂鉴定试验数据及组间误差率计算结果
[0278]
[0279] 表2定量悬液试验数据及杀灭率Rijt、灭菌指数Aijt计算结果
[0280]
[0281]
[0282] 表3消毒效果评价及相对荧光强度值测量不确定度计算结果
[0283]
[0284]
[0285] 以上所述仅为本发明的实施例,并非因此限制本发明的专利范围,凡是利用本发明说明书内容所作的等效变换,或直接或间接运用在其他相关的技术领域,均包括在本发明的专利保护范围内。
相关专利内容
标题 发布/更新时间 阅读量
内置多节式采血针的血糖仪采血笔 2020-05-16 293
一种采血笔笔头结构 2020-05-17 891
采血笔 2020-05-11 327
一种自动定量采血笔 2020-05-20 752
改进型安全采血笔 2020-05-17 730
一种多针头式采血笔 2020-05-17 473
一种多针头式采血笔 2020-05-17 539
一种改进型安全采血笔 2020-05-18 957
采血笔可卸帽式调节头 2020-05-19 27
采血笔 2020-05-15 307
高效检索全球专利

专利汇是专利免费检索,专利查询,专利分析-国家发明专利查询检索分析平台,是提供专利分析,专利查询,专利检索等数据服务功能的知识产权数据服务商。

我们的产品包含105个国家的1.26亿组数据,免费查、免费专利分析。

申请试用

分析报告

专利汇分析报告产品可以对行业情报数据进行梳理分析,涉及维度包括行业专利基本状况分析、地域分析、技术分析、发明人分析、申请人分析、专利权人分析、失效分析、核心专利分析、法律分析、研发重点分析、企业专利处境分析、技术处境分析、专利寿命分析、企业定位分析、引证分析等超过60个分析角度,系统通过AI智能系统对图表进行解读,只需1分钟,一键生成行业专利分析报告。

申请试用

QQ群二维码
意见反馈