技术领域
[0001] 本
发明涉及
生物技术检测领域,特别是涉及一种检测外泌体GPC1蛋白的方法。
背景技术
[0002] 外泌体是细胞经过"内吞-融合-外排"等一系列调控过程而形成的细胞外
纳米级 小囊泡,直径约为50-150nm。外泌体可以携带蛋白,运送RNA,在细胞间物质和信息转导中起 重要作用。外泌体可能通过调控免疫功能,促进
肿瘤血管新生和肿瘤转移,以及直接作用于 肿瘤细胞等途径,影响肿瘤的进展。外泌体可应用于肿瘤的诊断。肿瘤外泌体是体内肿瘤细 胞所分泌的含有特定标记物的外泌体,检测肿瘤外泌体可对整个肿瘤检测提供准确信息。 因外泌体在体液(如血清,腹
水,尿液,
脑脊液)中含量丰富,肿瘤外泌体检测属于微创分析, 且不受样本含量及瘤内异质性的限制。
[0003] 1986年,有学者在体外培养的
绵羊红细胞上清液中发现了一种有膜结构的小囊 泡,被称之为外泌体。至1996年,有学者发现EB病毒转化的人B细胞内一些有膜结构的小囊 泡表面可表达主要组织相容性
复合体(major histocompatibility complex,MHC) Π 类分 子,能激活T细胞,并与红细胞内外泌体的形成过程和排出途径相似。自此之后,人们对外泌 体的研究集中于它的免疫刺激作用。研究发现,
抗原提呈细胞(antigen-presenting cell, APC)分泌的外泌体可以刺激T细胞的体外增殖和诱导体内的抗肿瘤免疫反应。从肿瘤细胞 中分泌出的包含肿瘤抗原的外泌体则可以通过APC交叉呈递给细胞毒性Τ淋巴细胞 (cytotoxic T lymphocyte,CTL),使其产生肿瘤杀伤作用。因此,外泌体作为一种潜
力巨大 的肿瘤
疫苗,得到了广泛的研究。然而,有学者发现肿瘤细胞来源的外泌体对肿瘤生长具有 促进作用。一项研究报道,给予预先种植卵巢癌细胞的小鼠
腹腔注射从卵巢癌患者腹腔积 液中分离出的外泌体,可以明显促进小鼠腹腔内肿瘤的生长。从小鼠皮下肿瘤实体中分离 出外泌体,证实其具有促进肿瘤生长的作用。
[0004] Glypican-1 (简称GPC1,中文名磷脂酰肌醇蛋白聚糖-1),是肿瘤外泌体的特定标 记物,研究发现GPC1在胰腺癌和
乳腺癌细胞外泌体中大量表达,且外泌体GPC1的含量与肿 瘤大小成正比。外泌体GPC1蛋白检测可用于临床癌症诊断和
治疗监测,具有重要意义。目前 外泌体GPC1蛋白检测方法有传统的分子测定法(例如Western印迹,ELISA)和流式细胞仪 法,传统的分子测定法需要大量样品,无法在临床实施,流式细胞仪价格昂贵,不适于临床 推广。
[0005] 因此开发出高灵敏度、高选择性、价钱低廉、制备简单测定GPC1的方法引起了人们 的研究兴趣。
[0006] 免疫
磁珠 (Immunomagnctic beads,IMB)是免疫学和磁载体技术相结合而发展起 来的一类新
型材料。頂B是包被有单克隆
抗体的
磁性微球,可与含有相应抗原的靶物质特 异性地结合形成新的复合物,通过外加
磁场的作用,使磁球和上清快速分离,可以在短时间 内得到浓缩、纯净的待测样品,缩短检测时间,提高检测效益和灵敏度。目前,MB-ELISA检测 方法是免疫磁珠在免疫检测领域最主要的应用,其采用免疫磁珠配合常规ELISA方法主要 用于免疫检测、细胞和
微生物的分离和
蛋白质、DNA、RNA以及mRNA等生物大分子纯化检测, 其基本步骤为:一、用抗原和磁珠进行偶联,制备免疫磁珠 。二、将检测样品和第一种抗体 (简称一抗)按一定比例混合,然后在其中加入适量体积的第一步制备出的免疫磁珠,使免 疫磁珠上的抗原和样品中的抗原竞争结合一抗,然后通过磁性分离,除去上清。三、加入一 定体积的过
氧化物酶标记过的二抗,然后放在37 °C条件下温育1小时,再通过磁性分离,除 去上清。四、加底物显色15分钟,把显色液移入96孔ELISA反应板中,放入酶标仪中读数。
发明内容
[0007] 针对
现有技术的不足,本发明提供了一种将免疫磁珠技术与电化学
传感器检测技 术相结合来检测外泌体GPC1蛋白的方法。
[0008] -种检测外泌体GPC1蛋白的方法,包括以下步骤:
[0009] (1)取待测样品;
[0010] (2)向待测样品中加入修饰有外泌体特异性抗体的免疫磁珠;
[0011] (3)依次加入生物素标记的抗GPC1抗体、链霉亲和素标记的辣根过氧化物酶和辣 根过氧化物酶的底物;
[0012] (4)使用磁力-电化学传感器装置进行检测。
[0013]所述样品为血清、腹水、尿液、脑脊液。
[0014] 所述磁力-电化学传感器装置用于检测反应中产生的微量
电流。通过计时安培分 析法接收并分析电化学传感器的电
信号,电流通常控制在40~45s范围内。工作
电极是还原 电位(-100V vs Ag/AgCl参比电极),电流水平在lmin之内达到平台,值取40-50s产生的平 均电流(I)。以对照抗体(IgG)作为阴性对照,其作用在于补偿由于非特异性结合的外泌体 产生的背景信号,Im差值越大,说明信号越强,检测到的GPC1蛋白越多。
[0015] 优选的,所述外泌体特异性抗体为抗CD9抗体、抗CD63抗体、抗CD81抗体和抗 Floti 11 in-Ι抗体中的一种或一种以上的组合。[00Ί6] 更优选的,所述外泌体特异性抗体为抗⑶9抗体、抗⑶63抗体和抗Floti 11 in-Ι抗 体三种混合。
[0017] 优选的,抗⑶9抗体、抗⑶63抗体和抗Flotillin-Ι抗体的
质量比为1:1:1。
[0018] 优选的,所述修饰有外泌体特异性抗体的免疫磁珠的制备方法为:
[0019] (1)使用
磷酸钠溶液对带有环氧基团的磁珠进行活化;
[0020] (2)分离磁珠并重新分散于磷酸钠溶液中;
[0021] (3)加入外泌体特异性抗体,混匀;
[0023] (5)反应完成后的磁珠用PBS进行洗涤,即制得所述修饰有外泌体特异性抗体的免 疫磁珠。
[0024]优选的,所述带有环氧基团的磁珠直径为2.2~3.2μπι。最优选的,所述带有环氧基 团的磁珠直径为2.7μηι。优选的,所述带有环氧基团的磁珠为invitrogen公司生产的Μ-270 环氧
树脂磁珠。
[0025]优选的,所述带有环氧基团的磁珠与外泌体特异性抗体的质量比为40~60:1。最 优选的,所述带有环氧基团的磁珠与外泌体特异性抗体的质量比为50:1。
[0026]优选的,所述生物素标记的抗GPC1抗体由磺基-NHS-生物素与抗GPC1抗体进行交 联制得。
[0027]优选的,所述辣根过氧化物酶的底物为TMBDTMB的中文名称为3,3 ',5,5 ' -四甲基 联苯胺了,是常用的供氢体。
[0028]本发明一种检测外泌体GPC1蛋白的方法,通过将免疫磁珠技术与电化学传感器检 测技术相结合,结合了两者的优点,本发明方法灵敏度高、所需样本量小,同时检测所用设 备成本低、小型化且可高通量、特异性地检测表达有GPC1蛋白的特定外泌体,对癌症早期诊 断和治疗检测具有重要意义。
附图说明
[0029] 图1为本发明磁力-电化学传感器装置图,其中,图A为外观示意图,图B为
电路图;
[0030] 图2为本发明检测外泌体GPC1蛋白的机理图;
[0031] 图3为本发明方法检测GPC1蛋白的电流信号图;
[0032] 图4为不同单一抗体免疫磁珠效果检测对比图;
[0033]图5为双抗体和三抗体免疫磁珠效果检测对比图;
[0034] 图6为本发明方法与ELISA方法检测外泌体GPC1蛋白结果对比图。
具体实施方式
[0035] 本发明使用到的抗体均为抗人的抗体,各抗体信息如表1所示。
[0036] 表1
[0039]
实施例1磁力-电化学传感器装置 [0040] (1)装置介绍
[0041] 装置具有8个独立通道(图1A)。每个通道都有一个
恒电位仪,能够测量±7.5μΑ范 围的电流。
输入信号是由一个低通
滤波器(截止
频率5Hz)调控,以抑制高频噪声。八个恒电 位仪连接到一个数字-模拟转换器用于电位控制,一个模拟-数字转换器用于信号数字化, 一个多路复用器用于信道选择,以及一个用于系统操作的微控制部件(图1B)。卡边缘连接 器用于连接电极盒,整个磁架有八个圆柱形磁
铁置于电极盒下方,这些磁体能够将磁珠富 集到传感器表面该设备能从每个通道快速读出数据(每个通道耗时50ms),所有数据能通过 专
门设计的
软件进行检测和分析。
[0042] (2)组装磁力-电化学传感器装置
[0043] 该装置包括一个微
控制器(Atmega328,Atmel公司),数字-模拟转换器(DAC8552, 德州仪器),模拟-数字转换器(ADC161S626,德州仪器),一个多路复用器(ADG708,ADI公 司),和八个恒电位仪。每个电位仪由两个
运算放大器(AD8606,模拟装置)组成:一个放大器 用于维护
工作电极和参考电极之间的电位差,而另一个可以作为
跨阻放大器将电流转换为
电压信号。跨阻放大器的电流测量范围为±7.5μΑ。八通道电极由DropSens公司购得 (DropSens,西班牙)。
[0044] 实施例2免疫磁珠制备
[0045] lmL浓度为0.1M的磷酸钠溶液中加入5mg涂覆有环氧基团的磁珠(M-270
环氧树脂 磁珠,直径2.7μηι,购自Invitrogen公司),室温下搅拌lOmin。外加磁场分离磁珠,弃去溶液, 再加入100yL浓度为0.1M的磷酸钠溶液,分别加入100yg抗CD9抗体、抗CD63抗体、抗CD81抗 体或者抗Flotillin-Ι抗体(当需要制备双抗体免疫磁珠时,两种抗体各加入50yg;当需要 制备三抗体免疫磁珠时,三种抗体各加入33.3yg)并充分混匀(作为阴性对照的免疫磁珠加 入IgG并充分混匀),加入100此浓度为3M的硫酸铵溶液,将混合物在4°C下缓慢倾斜旋转温 育过夜。磁珠用PBS溶液洗涤两次,最后分散在2mL含1 %
牛血清
白蛋白(BSA)的PBS溶液中。 [0046]实施例3抗GPC1抗体的生物素标记
[0047] 取浓度为lmg/mL的抗GPC1抗体100yL,用PBS稀释10倍,然后,加入5yL浓度为10mM 的磺基-NHS-生物素溶液,室温下孵育2h,反应完成后,通过Zeba脱盐柱(7K MWC0,购自 Thermo Scientific)除去多余磺基-NHS-生物素,得到生物素标记的抗GPC1抗体80yg。生物 素标记的抗GPC1抗体保存于4°C备用。
[0048]实施例4外泌体的提取
[0049] 人胰腺癌细胞株T3M4和Panc-Ι分别培养于含10%胎牛血清(FBS)和100yg/mL的青 霉素-
链霉素的DMEM培养基中,细胞培养48h后用于提取外泌体。外泌体提取步骤如下:
[0050] (l)3〇Og离心5min去除细胞;
[0051] (2)培养上清通过0 · 2μπι膜滤器过滤;
[0052] (3)取滤过液于100000g离心lh,收集沉淀;
[0053] (4)PBS重悬沉淀,100000g离心lh,收集沉淀;
[0054] (5)将外泌体沉淀重悬于PBS溶液中,采用Nano Sight(纳米微粒追踪分析仪)测定 所提取的外泌体浓度和大小,调整外泌体浓度为109/mL。
[0055]实施例5磁力-电化学传感器检测 [0056] 检测原理如图2所示。
[0057] (1)取10yL浓度为109/mL的外泌体与50yL免疫磁珠溶液(10 8/mL)室温孵育15min;
[0058] (2)外加磁场分离磁珠,弃去溶液,磁珠用80yL PBS(含1%BSA)重悬;
[0059] (3)外加磁场分离磁珠,弃去溶液,磁珠重悬于80yL ros(含1%BSA)溶液中,加入 10yL生物素标记的抗GPC1抗体(使用前将实施例3所制备的生物素标记的抗GPC1抗体稀释 到4yg/mL),室温孵育15min;
[0060] (4)外加磁场分离磁珠,弃去溶液,磁珠用80yL PBS(含1%BSA)重悬;[00611 (5)外加磁场分离磁珠,弃去溶液,磁珠重悬于50yL roS(含1 %BSA)溶液中,加入5 yL链霉亲和素标记的辣根过氧化物酶(HRP)(用PBS以1:100比例稀释),室温孵育15min; [0062] (6)外加磁场分离磁珠,弃去溶液,磁珠用80yL PBS(含1%BSA)重悬;
[0063] (7)外加磁场分离磁珠,弃去溶液,磁珠重悬于7yL PBS(含1%BSA)中;
[0064] (8)7yL磁珠溶液和20yL TMB溶液(ThermoFisher Scientific)加样于丝网印刷电 极,3min后,磁力-电化学传感器装置通过计时安培分析法接收并分析电化学传感器的电信 号,电流通常控制在40~45s范围内。
[0065]采用计时电流法检测信号,监测TMB还原所产生的电流,工作电极是还原电位(_ 100V vs Ag/AgCl参比电极),电流水平在lmin之内达到平台,值取40-50S产生的平均电流 (I)。以对照抗体(IgG)作为阴性对照,其作用在于补偿由于非特异性结合的外泌体产生的 背景信号(图3),IM差值越大,说明信号越强,检测到的GPC1蛋白越多。
[0066] 实施例6不同抗体免疫磁珠效果检测
[0067] (1)利用实施例5所述的方法,分别对实施例2中制备的单一抗体免疫磁珠的效果 进行检测,结果如图4所示,用单一抗体免疫磁珠检测外泌体GPC1蛋白,抗CD9抗体效果最 好,其次是抗Floti 11 in-Ι抗体,抗⑶63抗体,抗⑶81抗体效果最差。
[0068] (2)利用实施例5所述的方法,分别对以实施例2中方法制备的双抗体免疫磁珠(因 CD81抗体效果最差,所以去除掉)的效果进行检测,结果如图5所示,用单一抗体免疫磁珠检 测外泌体GPC1蛋白,用抗⑶9抗体+抗Floti 11 in-Ι抗体效果最好,其次是抗⑶9抗体+抗⑶63 抗体,抗⑶6 3抗体+抗F lotillin-Ι抗体效果最差。
[0069] (3)利用实施例5所述的方法,对以实施例2中方法制备的三抗体免疫磁珠(抗⑶9 抗体+抗Flotillin-Ι抗体+抗CD63抗体)的效果进行检测,结果如图5所示,用三抗体免疫磁 珠检测外泌体GPC1蛋白的效果优于任何一组双抗体免疫磁珠。
[0070] 实施例7磁力-电化学传感器检测方法对外泌体GPC1蛋白的
检测限[0071] 用磁力-电化学传感器检测方法来检测
血浆中的外泌体。将实施例3从T3M4和 Panc-Ι细胞提取收集的外泌体,使用未经过稀释的健康人血浆,按10倍浓度梯度进行稀释。 使用如实施例4所示方法进行检测,结果如图6所示,检测外泌体的下限为3 X 104,在动态范 围内跨越4个数量级。[0072 ]对比例1本发明磁力-电化学传感器检测方法与ELI SA法比较 [0073] (1)外泌体GPC1蛋白的ELISA检测
[0074] 使用96孔板,实验组中包被抗⑶9抗体、抗⑶63抗体和抗Floti 11 in-ι抗体(每种抗 体0.17yg,总共5yg)。设置阴性对照组实验,阴性对照采用IgG,浓度为5yg/mL,加入100yL,4 °C下孵育过夜;
[0075] PBS洗涤后,加入含2 %的BSA的PBS在室温下封闭lh;
[0076] PBS洗涤后,加入100yL外泌体溶液(实施例3制备),室温孵育lh;
[0077] PBS洗涤后,加入生物素标记的4ug/ml抗GPC1抗体,室温孵育lh;
[0078] PBS洗涤后,加入链霉亲和素标记的辣根过氧化物酶(HRP),室温孵育lh;
[0079] PBS洗涤后,加入TMB显色液,避光显色15min,使用浓度为2M硫酸终止反应,450nm
波长测定化学发
光信号。
[0080] (2)本发明磁力-电化学传感器检测方法与ELISA法比较
[0081] 使用实施例7相同的方法准备样品,然后使用ELISA法进行检测,结果如图6所示, 用ELISA法测定需要超过107的外泌体才能检测到信号,比本发明检测方法的检测下限低 了 3个数量级。本发明检测方法比ELISA所需样品更少(10yL和100yL),耗时更短(lh和5h)。