一种检测纸质食品包装材料中11种荧光增白剂含量的方
法
技术领域
[0001] 本
发明涉及一种检测纸质
食品包装材料中
荧光增白剂的方法,特别是以
水与有机
溶剂的混合溶剂超声提取,利用高效液相色谱法同时检测纸质食品
包装材料中11种双三
嗪
氨基二苯乙烯型荧光增白剂的高通量检测方法,属于食品分析和包装材料领域。
背景技术
[0002] 荧光增白剂(简称FWAs)被广泛应用于纸张、纺织品和
洗涤剂中来增加商品的白度和
亮度,其中,纸张中80%的FWAs为双三嗪氨基二苯乙烯型荧光增白剂(简称DSD-FWAs)。然而,由于有些不法商家将含有大量DSD-FWAs的办公用废纸回收用于纸质食品包装材料
的生产,另外有些商家向纸质食品包装材料中非法添加DSD-FWAs,从而给
食品安全带来某
些隐患。虽然早期的文献报道DSD-FWAs为低毒性物质,但随着工业中DSD-FWAs生产品种
的日益增多,越来越多未知毒性数据的DSD-FWAs可能被带入纸质食品包装材料中,研究表
明,以C.I 85为代表的DSD-FWAs新品种可能会有提高病毒在人体中传染效率等危害的负
面作用(Bing W, et al. Current Microbiology, 2007, 54(1):5-8.)。美国食品药品管
理监督局(FDA)和中国国标均规定纸质食品包装材料中仅允许添加C.I 220,并严格规定
其限量,而禁止其余DSD-FWAs的添加。
[0003] 荧光增白剂的分析方法有薄层色谱法、荧光光度法、紫外分光光度法和高效液相色谱法等。薄层色谱法操作复杂,且其定量能
力不足;分子荧光光度法和紫外分光光度
法仅能测定FWAs总量,且提取液易受到杂质的干扰,从而导致测定结果偏高;目前测定
荧光增白剂的主流方法为离子对高效液相色谱法,如Shu等使用四丁基溴化铵(TBAB)为
离子对
试剂等度洗脱同时分析4种DSD-FWAs(Shu W C, et al. Journal of Chinese
chemical society, 2009,56(4):797-803.);然而由于DSD-FWAs类化合物结构较为类似,且DSD-FWAs标准品不易获得,有关离子对色谱法对DSD-FWAs分离特性的研究尚不到位,现
有国内外检测技术手段还跟不上DSD-FWAs在纸质材料中的实际应用。另外,国内外对于纸
质食品包装材料中DSD-FWAs提取的方法多采用提取率相对低的热水萃取法(Jeong S K,
et al. Bull. Korean Chem. Soc.2012, 32(3), 3971-3976.),需要研究出一种更高效的提取方法。
[0004] 为满足纸质食品包装材料中DSD-FWAs的高通量分析,本发明使用水与
有机溶剂的混合溶剂,分3次超声提取,并使用四丁基溴化铵(TBAB)为离子对试剂梯度洗脱分离,建立出一种同时检测纸质食品包装材料中11种DSD型荧光增白剂(FWAs)的高效液相色谱方
法。
发明内容
[0005] 本发明采用超声提取法,高效液相色谱
串联二极管阵列或荧光检测仪同时检测纸质食品包装材料中的11种DSD-FWAs , 包括以下步骤:
(一)样品的处理
将纸质食品包装材料样品展开成平板状,逐份通过
碎纸机将样品
粉碎成纸屑;若纸质
材料较为柔软(如面巾纸),可取多份样品用
剪刀剪成纸屑。再将纸屑转移至高速粉碎机中,以10000 转/min的转速粉碎6次,每次约15s,将纸屑粉碎成
纤维状。其中,也可以将纸质
食品包装材料样品直接采用剪刀剪成纸屑后检测,但样品均匀度不如经高速粉碎制备的样
品。
[0006] (二)待测物质的提取称取待测均匀样品0.5g于50mL聚丙烯塑料离心管中;拉紧实验室窗帘并关闭实验室
日光灯,使实验环境处于照度小于20 Lux的避光状态下。加入25 mL 乙腈/水(2:3,v/v),
50℃水浴下超声提取35 min。提取结束后,以3750 转/min的转速离心5 min。转移上清
液至50 mL容量瓶中,再于样品中分两次加入12 mL 乙腈/水(2:3,v/v),同上述提取步骤提取10 min,重复两次。合并前后三次的上清液,并用乙腈/水(2:3,v/v)定容至50 mL,涡旋30s以使提取液充分混匀。其中,样品称取量可以为0.5-1.0 g中的一个;提取溶剂中
的有机溶剂可以是
乙醇、丙
酮、甲醇、乙腈或者为几种溶剂的混合体;提取溶剂中含有机溶剂的比例可以10~90%之间的任何一个,但以40%
含水量为最佳。
[0007] (三)提取液的
脱脂将步骤(二)所得提取液转移至5 mL玻璃试管中,加入0.5 mL正己烷,充分涡旋30s以
使样品提取液充分脱脂。静置2 min后,使用1 mL吸管小心移去正己烷层,并将剩余清液
转移至EP管中,以12000 r/min的速度离心5 min,取上清液供HPLC分析。
[0008] (四)提取液的浓缩检测机构若需要更低的检出限,则将(二)所得的提取液浓缩,经(三)脱脂后再分析;准确移取25 mL步骤(二)所得提取液至鸡心瓶中,于50℃下减压旋转
蒸发至近干。分次加入
0.5 mL乙腈/水(2:3,v/v)润洗瓶身,并将润洗液转移至玻璃试管中。加入1 mL乙腈/水
(2:3,v/v)至鸡心瓶中,用吸管反复润洗瓶身,并小心将润洗液转移至5 mL 玻璃试管中;继续分两次各加入0.5 mL乙腈/水(2:3,v/v)润洗鸡心瓶,合并润洗液至5 mL 玻璃试管中。
使用乙腈/水(2:3,v/v)定容至2 mL后,重复步骤(三),得到溶液待HPLC分析。其中,润洗瓶身时加入乙腈/水(2:3,v/v)的量可以为0.5-1.0 mL的任一个。
[0009] (五)仪器条件色谱柱: Symmetry C18柱(250 mm×4.6 mm,5 μm,Waters公司),或ZORBAX Eclipse
C18柱(100 mm×4.6 mm,5 μm,Agilent公司);柱温:35℃;流速为1.0 mL/min;流动相为(A)甲醇/水,5:95,V:V(含20 mmol/L 四丁基溴化铵),使用前经0.45 μm 滤
膜过滤及
真空脱气;(B)乙腈/甲醇(2:3,v/v);进样方式:梯度洗脱,梯度洗脱程序如表1所示。进样
体积:20 μL。
[0010] 表1 流动相的梯度洗脱表时间(min) 流速(mL/min) A(%) B(%) 曲线
0 1.0 20 80 —
2 1.0 20 80 平行
2.01 1.0 60 40 —
12 1.0 70 30 线性
17 1.0 80 20 线性
19 1.0 100 0 线性
19.01 1.0 20 80 —
23 1.0 20 80 平行
可采用PDA和FLD检测器串联分析,也可采用各检测器单独分析。使用FLD检测器,激
发
波长为350 nm,发射波长为430 nm;使用PDA检测器,定量波长为350 nm。
[0011] (六)本发明所述的荧光增白剂具有如图1所示的共同的母体结构。其中,11种DSD-FWAs的具体信息及所属类型如表2所示。
[0012] 图1 DSD-FWAs的母体结构表2 DSD-FWAs标准物质信息
(七)标准曲线的制备
分别准确称取适量11种DSD-FWAs标准品于10 mL容量瓶中,用乙腈/水(2:3,v/v)溶
解后定容至刻度,充分混匀得到标准储备液,于-18℃
冰箱中放置保存。于避光条件下,分别以11种DSD-FWAs标准储备液配制出20.0 μg/mL 混合标准中间液和1.0 μg/mL的混合
标准使用液,再分别取适量混合标准工作液用乙腈/水(2:3,v/v)稀释成25、150、275、400、
500 ng/mL的标准曲线系列,按照步骤(五)进行进样分析。
[0013] (八)定量方法HPLC进样分析后,以标准曲线溶液的峰面积为Y值,浓度为X(ng/mL)值,进行标准曲
线拟合,得出各物质标准曲线Y=AX+B;样品的测定结果按式(1)计算:
… …(1)
式中:
w ──样品中某一DSD-FWAs的含量,单位为毫克每千克(mg/kg);
Y ──样液中目标物的峰面积;
V ──样品提取液的体积,单位为毫升(mL);
B ──该物质标准曲线的截距;
A ──该物质标准曲线的斜率;
m ──样品称样量,单位为克(g);
w0 ── 空白对照试验值,单位为毫克每千克(mg/kg)。
[0014] 本发明所提供的方法操作简单,灵敏度高,能同时分离检测11种物质、定性定量分析结果准确、
检测限低、分析时间快。
附图说明
[0015] 图1是使用PDA检测器分析11种DSD-FWAs混标(500 ng/mL)色谱图;图2是使用荧光检测器分析11种DSD-FWAs混标色谱图(100 ng/mL)。
具体实施方式
[0016] 实验仪器及材料:LC-20AT液相色谱仪(日本岛津公司,配置有 SPD-M20A二极管阵列检测器和RF-10Axl
荧光检测器);Symmetry C18色谱柱(250 mm×4.6mm,5 μm,Waters公司);G-560E型漩涡混合器(美国Scientific Industries公司); KQ-500DE型数控
超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司,超声最大功率为100kHz);Microfuge型高速离心机(美国Beckman公司,配置转速约为5000 转/min、可容纳50 mL塑料离心管的转头和转速为10,000 转/min以上、可
容纳2.0 mL 塑料离心管的转头);办公用碎纸机,可将纸张粉碎成2 mm×6 mm的纸屑;高速粉碎机,转速为10000 r/min;CP225D
电子天平(准确至0.01mg,德国Sartorious公司,称量标准品);YP202电子天平(上海商品公司,称量样品);
旋转蒸发仪,含
循环水式多用真空
泵。
50 mL 聚丙烯离心管(Corning)、50 mL容量瓶、5 mL玻璃试管、250 mL鸡心瓶,25 mL移液管,2.0 mL EP管,2.0 mL 进样瓶,5 mL 塑料吸管和1 mL塑料吸管,100和1000 μL移液
器各一把,手术剪刀1把。
[0017] 纸质食品包装材料(包括纸巾、纸杯、纸碗、纸袋等)购自当地超市及农贸市场。四丁基溴化铵为分析纯级(中国国药集团上海化学试剂有限公司);乙腈、甲醇均为色谱纯级(Fisher公司);正己烷为色谱纯级(Merck公司);实验用水为符合GB/T 6682规定的一级水。
[0018] 所有的标准溶液用乙腈/水(2:3,v/v)溶解,并于4℃下避光储存。
[0019]
实施例1:纸巾中荧光增白剂含量的检测(一)样品的制备
2
取纸巾样品用剪刀剪成1×1 cm 纸屑。将纸屑全部转移至高速粉碎机中,盖紧粉碎机
盖子,以10000 转/min的转速粉碎6次,每次约15s,将纸屑粉碎成纤维状,每次粉碎后需
使用勺子将纸屑碎末搅匀。样品在室温下置于黑暗处保存,备用。
[0020] (二)待测物质的提取称取0.5g粉碎均匀的纸巾样品至50 mL聚丙烯塑料离心管中;拉紧实验室窗帘并关闭
实验室日光灯,使实验环境处于避光状态。加入25 mL 乙腈/水(2:3,v/v),50℃水浴下超声提取35 min。提取结束后,以3750转/min的转速离心5 min。转移上清液至50 mL容
量瓶中,再于样品中分两次加入12 mL 乙腈/水(2:3,v/v),同上述提取步骤提取10 min,重复两次。合并前后三次的上清液,并用乙腈/水(2:3,v/v)定容至50 mL,充分涡旋混匀后,于黑暗处保存。
[0021] (三)提取液的脱脂取2 mL 步骤(二)所得提取液至5 mL 玻璃刻度试管中,加入0.5 mL 正己烷,充分涡
旋30 s以使脱脂充分。静置2 min,使用1 mL吸管小心移去上层正己烷层,将下层清液转
移至EP管中,以10000 r/min的转速离心5 min,小心将上清液转移至进样瓶中,待HPLC分
析。
[0022] (四)高效液相色谱-二极管阵列联用分析将步骤(三)所得清液通过高效液相色谱-二极管阵列联用仪进行检测,高效液相色
谱-二极管阵列联用仪所需条件如下:
色谱柱: symmetry C18柱(250×4.6 mm,5 μm),Waters公司;柱温:35℃;总流速为
1.0 mL/min;流动相为(A)甲醇/水,5:95,V:V(含20 mmol/L 四丁基溴化铵),使用前经
0.45 μm 滤膜过滤及真空脱气;(B)乙腈/甲醇(2:3,v/v);进样方式:梯度洗脱,梯度洗
脱程序如表1所示。进样体积:20 μL。PDA检测器定量波长为350 nm。
[0023] (五)标准曲线的制备分别准确称取适量11种FWAs标准品于10 mL容量瓶中,用乙腈/水(2:3,v/v)溶解
后定容至刻度,充分混匀得到标准储备液,于-24℃冰箱中放置保存。于避光条件下,分别以11种FWAs标准储备液配制出20.0 μg/mL 混合标准中间液和1.0 μg/mL的混合标准
使用液,再分别取适量混合标准工作液用乙腈/水(2:3,v/v)稀释成25、150、275、400、500 ng/mL的标准曲线系列,按照步骤(四)进行处理分析。
[0024] (六)定量方法HPLC进样分析后,以标准曲线溶液的峰面积为Y值,浓度为X(ng/mL)值,进行标准曲
线拟合,得出各物质标准回归方程Y=AX+B;样品的测定结果按式(1)计算,对于部分测定结果超出标曲线性范围的样品,将进样溶液稀释至标曲线性范围后进样分析。通过结果分析,
11种DSD-FWAs的回收率皆在83.3%~103%之间,重复测定的RSD低于9.51%,显示方法的准
确度和精
密度良好。11种FWAs的回归方程、相关系数、检出限和定量限如表3所示。结果
表明,11种FWAs在25~500 ng/mL范围线性关系良好,相关系数R都在0.9986以上。在30
份纸巾样品中共有5份检出含有DSD-FWAs,其中有4份含有C.I 220,含量在2.9~846 mg/
kg之间;2份检出含有C.I 113,含量在4.51~14.0 mg/kg之间;另有一份餐馆用餐巾纸检
出含有C.I 210、28和353,含量分别为13.0、146和64.0 mg/kg。
[0025] 表3 11种FWAs的回归方程、相关系数、检出限和定量限(PDA检测))
gk/g
m
(
限
量 2. 1. 8. 6. 2. 4. 2. 0. 3. 0. 2.
定 4 4 4 3 5 5 5 5 4 6 4
)g
k/gm
(
限
出检 3.1 2.1 5.1 1.1 6.1 6.1 6.1 5.1 3.1 0.2 3.1
)
Lm/g
n
(
限
出
检
器 2 2 5 1 6 6 6 5 3 8 3
仪 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1
)R
(
数 8 9 2 6 8 9 3 7 9 0 6
系关 999. 999. 999. 899. 999. 999. 999. 999. 999. 000. 999.
相 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0
15 74 8 45 5 17 38 44 19 16
.611 .682 .683 6.03 .411 .882 .562 .753 .002 7.74 .461
程 -x37 -x65 -x28 +x22 -x21 -x66 -x94 -x82 -x44 1-x3 -x55
方归 1.64 8.64 2.24 9.18 5.54 3.13 8.82 9.23 9.75 6.84 0.95
回 =y =y =y =y =y =y =y =y =y =y =y
s
AWF- 022 42 012 58 311 462 353 753 mb5 09 17
DSD I.C I.C I.C I.C I.C I.C I.C I.C AWF I.C I.C
实施例2:纸杯中荧光增白剂含量的检测
(一)样品的制备
取纸杯样品展开成平板状,逐份通过碎纸机将纸杯粉碎成纸屑。将纸屑全部转移至高
速粉碎机中,盖紧粉碎机盖子,以10000 转/min的转速粉碎6次,每次约15s,将纸屑粉碎
成纤维状,每次粉碎后需使用勺子将纸屑碎末搅匀。样品在室温下置于黑暗处保存,备用。
[0026] (二)待测物质的提取称取0.5 g粉碎均匀的纸杯样品至50 mL聚丙烯塑料离心管中;拉紧实验室窗帘并关
闭实验室日光灯,使实验环境处于避光状态。加入25 mL 乙腈/水(2:3,v/v),45℃水浴下超声提取35 min。提取结束后,以3750转/min的转速离心5 min。转移上清液至50 mL
容量瓶中,再于样品中分两次加入12mL 乙腈/水(2:3,v/v),同上述提取步骤提取10 min,重复两次。合并前后三次的上清液,并用乙腈/水(2:3,v/v)定容至50 mL,充分涡旋混匀后,于黑暗处保存。
[0027] (三)提取液的浓缩准确移取25 mL步骤(二)所得提取液至鸡心瓶中,将溶液在50℃下减压旋转蒸发至近
干。加入1 mL 乙腈/水(2:3,v/v)至鸡心瓶中,用吸管反复润洗瓶身,并小心将润洗液转移至5mL 玻璃试管中;继续分两次各加入0.5 mL 乙腈/水(2:3,v/v)润洗鸡心瓶,合并润洗液至5 mL 玻璃试管中。使用乙腈/水(2:3,v/v)定容至2 mL,加入0.5 mL 正己烷,充
分涡旋30s以使脱脂充分。静置2 min,分层后,使用吸管小心移去上层正己烷层,将下层
液体转移至EP管中,10000转/min的转速下离心5 min。小心将液体转移至进样瓶中,待
HPLC分析。
[0028] (四)高效液相色谱-荧光检测仪分析将步骤(三)所得清液通过高效液相色谱-荧光检测仪进行检测,高效液相色谱-荧光
检测仪所需条件如下:
色谱柱: symmetry C18柱(250×4.6 mm,5μm,Waters);柱温:35℃;流速为1.0 mL/
min;流动相为(A)甲醇/水,5:95,V:V(含20 mmol/L 四丁基溴化铵),使用前经0.45um 滤膜过滤及真空脱气;(B)乙腈/甲醇(2:3,v/v);进样方式:梯度洗脱,梯度洗脱程序如表1
所示。进样体积:20 μL。FLD检测器:激发波长为350nm,发射波长为430nm。
[0029] (五)标准曲线的制备分别准确称取适量11种FWAs标准品于10 mL容量瓶中,用乙腈/水(2:3,v/v)溶解
后定容至刻度,充分混匀得到标准储备液,于-24℃冰箱中放置保存。于避光条件下,分别以11种FWAs标准储备液配制出20.0 μg/mL 混合标准中间液和1.0 μg/mL的混合标准
使用液,再分别取适量混合标准工作液用乙腈/水(2:3,v/v)稀释成25、150、275、400、500 ng/mL的标准曲线系列,按照步骤(四)进行处理分析。
[0030] (六)定量方法HPLC进样分析后,以标准曲线溶液的峰面积为Y值,浓度为X(ng/mL)值,进行标准曲
线拟合,得出各物质标准回归方程Y=AX+B;样品的测定结果按式(1)计算,对于部分测定结果超出标曲线性范围的样品,将进样溶液稀释至标曲线性范围后进样分析。通过结果分析,
11种FWAs的回收率皆在70.6%~93.1%之间,重复测定的RSD低于10.0%,显示方法的准确
度和精密度良好。11种FWAs的回归方程、相关系数、检出限和定量限如表4所示。结果表
明,11种FWAs在25~500 ng/mL范围线性关系良好,相关系数R都在0.9993以上。在8份
纸杯样品中共有1份检出含有C.I 220,含量为6.36 mg/kg。
[0031] 表4 11种FWAs的回归方程、相关系数、检出限和定量限(FLD检测)DSD-FWAs 回归方程 相关系数(R) 仪器检出限(ng/mL) 检出限(浓缩后,mg/kg) 定量限(浓缩后,mg/kg)C.I220 y=20471x+272081 0.9993 1.4 0.011 0.037
C.I24 y=19673x+193918 0.9997 1.6 0.013 0.043
C.I210 y=19326x+73684 0.9998 1.8 0.014 0.047
C.I85 y=25748x+681613 0.9995 1.2 0.010 0.033
C.I113 y=17673x+60856 0.9999 2.1 0.017 0.057
C.I264 y=17823x-99681 0.9999 2.3 0.018 0.060
C.I353 y=16701x-75382 0.9997 2.4 0.019 0.063
C.I357 y=16694x-57804 0.9998 2.0 0.016 0.053
FWA5bm y=20379x+145265 0.9996 1.8 0.014 0.047
C.I90 y=15130x+26894 1.0000 2.0 0.016 0.053
C.I71 y=21398x+201066 0.9997 1.3 0.010 0.033