一种用于沙眼衣原体抗原检测的裂解液及检测方法
| 热词 | 抗原 裂解 缓冲 提取 活性剂 沙眼 提取液 衣原体 脂类 缓冲溶液 | ||
| 专利类型 | 发明公开 | 法律事件 | 公开; 实质审查; 授权; |
| 专利有效性 | 有效专利 | 当前状态 | 授权 |
| 申请号 | CN202110937456.0 | 申请日 | 2021-08-16 |
| 公开(公告)号 | CN113567665A | 公开(公告)日 | 2021-10-29 |
| 申请人 | 固安林科特生物工程有限公司; | 申请人类型 | 企业 |
| 发明人 | 杨玮; 史准; | 第一发明人 | 杨玮 |
| 权利人 | 固安林科特生物工程有限公司 | 权利人类型 | 企业 |
| 当前权利人 | 固安林科特生物工程有限公司 | 当前权利人类型 | 企业 |
| 省份 | 当前专利权人所在省份：河北省 | 城市 | 当前专利权人所在城市：河北省廊坊市 |
| 具体地址 | 当前专利权人所在详细地址：河北省廊坊市固安县工业区南区 | 邮编 | 当前专利权人邮编：065500 |
| 主IPC国际分类 | G01N33/558 | 所有IPC国际分类 | G01N33/558 ; G01N33/569 |
| 专利引用数量 | 12 | 专利被引用数量 | 0 |
| 专利权利要求数量 | 10 | 专利文献类型 | A |
| 专利代理机构 | 北京超凡宏宇专利代理事务所 | 专利代理人 | 王焕; |
| 摘要 | 本 发明 提供了一种用于沙眼衣原体 抗原 检测的裂解液及检测方法，涉及 生物 检测技术领域。本发明提供了用于沙眼衣原体抗原检测的裂解液，所述裂解液包括抗原提取液和样本缓冲溶液；所述抗原提取液包含 溶剂 、 表面活性剂 和脂类提取剂，所述样本缓冲溶液包含缓冲液、表面活性剂、 金属离子 和大分子化合物和溶剂。本发明裂解液安全、高效，且便于运输和存储，降低了操作者使用难度；此外，使用本发明的裂解液的检测方法提高了沙眼衣原体抗原检测的灵敏度。 | ||
| 权利要求 | 1.一种用于沙眼衣原体抗原检测的裂解液，其特征在于，所述裂解液包括抗原提取液和样本缓冲溶液；所述抗原提取液包含溶剂、表面活性剂和脂类提取剂，所述样本缓冲溶液包含缓冲液、表面活性剂、金属离子、大分子化合物和溶剂。 |
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| 说明书全文 | 一种用于沙眼衣原体抗原检测的裂解液及检测方法技术领域背景技术[0003] 目前，在临床病人中，有70％～80％的女性患者和50％的男性患者常表现为无临床症状，所以抗原分型临床检验具有重要诊断辅助作用。常见的实验室检查方法有：1)涂片镜检；2)PCR核酸扩增检验；3)抗原检测；4)血清学检测等。使用基于硝酸纤维素膜的层析方法，可以在较短时间提供可靠的辅助诊断依据，同时降低对器械和实验人员的技术要求，极大的方便了患者以及临床检验人员。对于金标抗原类检测方法，裂解液配方对于正确获得目标抗原，提升检测灵敏度，起到主要作用。 [0004] 现有技术中，沙眼衣原体抗原检测的裂解液有较多类型，配方也不尽相同。裂解方法从早期的一步法到后来的两步法。市场上较多的两步法方案中，以酸碱中和方案居多。在酸碱中和方案中，使用的为强酸及强碱的稀溶液，用量控制不准会导致抗原破坏，影响灵敏度。同时，在运输以及检测操作上对相关人员有一定的潜在危害。因此，有必要研发一种新的裂解液配方和新的裂解方法。 [0005] 鉴于此，特提出本发明。 发明内容[0006] 本发明的目的在于提供一种用于沙眼衣原体抗原检测的裂解液及检测方法，本发明的裂解液配方温和，降低了裂解液的储存、运输和操作难度，使用本发明裂解液进行抗原检测，在保证灵敏度的同事，提高了结果的稳定性，节省检验成本。 [0007] 本发明提供的技术方案如下： [0008] 在一个方面，本发明提供了一种用于沙眼衣原体抗原检测的裂解液，所述裂解液包括抗原提取液和样本缓冲溶液；所述抗原提取液包含溶剂、表面活性剂和脂类提取剂，所述样本缓冲溶液包含缓冲液、表面活性剂、金属离子和大分子化合物和溶剂。 [0009] 本发明提供的是一种改进的配方温和的裂解液，避免使用强酸和强碱进行提取，减少对沙眼衣原体的破坏，且方便储存和运输，便于操作人员使用。此外，本发明的裂解液进行沙眼衣原体抗原的提取和检测，提高了检测的灵敏度和稳定性。 [0010] 在一个实施方案中，所述抗原提取液中，所述溶剂、所述表面活性剂和所述脂类提取剂的重量份数比为60～120：0.1～15：0.1～15。 [0011] 在一个实施方案中，所述样本缓冲溶液中，所述缓冲液、所述表面活性剂、所述金属离子、所述大分子化合物和所述溶剂的重量份数比为0.1～20：0.1～15：0.1～5：1～20：90～110。 [0012] 本发明裂解液中的各组分配比设计合理，相互之间具有协同配合作用，使得提取的沙眼衣原体纯度高、对抗原的破坏和影响小；裂解液性质稳定，便于储存和运输。 [0013] 在一个实施方案中，所述溶剂包括水、二甲基亚砜、甲醇、甘油中的一种或多种。 [0014] 在一个实施方案中，所述抗原提取液中的表面活性剂包括聚乙烯吡咯烷酮、聚乙二醇、吐温80、十二烷基硫酸钠、曲拉通‑100的一种或多种；所述样本缓冲溶液的表面活性剂包括聚乙烯吡咯烷酮、聚乙二醇、吐温80、十二烷基硫酸钠、曲拉通‑100和布里洁(brij)的一种或多种。 [0020] 用于沙眼衣原体抗原检测的裂解液的制备方法，依次添加所述表面活性剂、脂类提取剂以及溶剂，在常温下搅拌混匀后得所述抗原提取液；依次添加缓冲液、表面活性剂、大分子化合物和金属离子盐，在常温下搅拌混匀后得所述样本缓冲溶液。 [0021] 在另一个方面，本发明提供了一种非疾病诊断目的的沙眼衣原体抗原的检测方法，使用所述裂解液对其进行检测，包括：采用所述抗原提取液对样本进行裂解和提取，然后添加所述样本缓冲溶液，之后进行抗原检测。 [0022] 在一个具体的实施方案中，所述待检测样本进行裂解的时间为1～2min。 [0024] 在一个具体的实施方案中，所述待检测样本是人的尿道分泌物或女性的宫颈分泌物取出，例如用无菌拭子取出进行检测。 [0025] 有益效果： [0026] (1)本发明提供的裂解液，试剂更安全。在现有技术强酸碱裂解中和法中，使用氢氧化钠对病原体进行破碎，再使用盐酸进行中和。本发明中，使用三羟甲基氨基甲烷和柠檬酸组分的体系来消除样本中酸性pH的干扰，同时降低测试液对人体皮肤的可能腐蚀伤害，对实验人员和相关运输、存储人员更安全友好。 [0027] (2)本发明的检测灵敏度高。强酸碱裂解法中，碱液中的氢氧化钠作为破膜剂，获得相应的抗原。由于氢氧化钠为强碱，其不可逆的破坏作用需要精确的控制反应时间，否则容易导致LPS抗原被破坏从而影响灵敏度。本发明使用表面活性剂结合脂类提取剂，可以温和完整地获得LPS抗原，大幅提高灵敏度。 [0028] (3)使用本发明裂解液进行抗原检测的操作难度低。强酸碱裂解中和法中，需要精确控制碱液的反应时间，以确保有效抗原的产出。若疏忽时间，则可能造成样本中抗原损失，导致测试结果有误。而本发明中，无需考量第二组分的添加时间对测试结果的影响，极大降低操作难度，减少错误操作的可能性。 具体实施方式[0029] 下面将结合实施例对本发明的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。 [0030] 实施例1 [0031] 一种用于沙眼衣原体抗原检测的裂解液，由抗原提取液(A液)和样本缓冲溶液(B液)组成。 [0032] 抗原提取液中，溶剂选择甘油，添加量80g；表面活性剂为吐温80和聚乙烯吡咯烷酮，添加量分别为1g和2g，脂类提取剂选用胆固醇，添加量5g。按照表面活性剂、脂类提取剂以及溶剂的顺序添加，并在常温下搅拌混匀。 [0033] 样本缓冲溶液中，缓冲体系中三羟甲基氨基甲烷缓冲液包括三羟甲基氨基甲烷1.2g，柠檬酸缓冲液，包括柠檬酸0.96g，pH为7.5；表面活性剂包括十二烷基硫酸钠：5g，曲拉通‑100：5g；金属离子盐选用氯化钠1.5g；大分子化合物包括聚乙二醇2.2g、酪蛋白纳 1.5g和牛血清白蛋白0.5g；纯化水100g(100mL)。按照缓冲液、表面活性剂、大分子化合物、金属离子盐、纯化水的顺序添加，并在常温下搅拌混匀。 [0034] 实施例2 [0035] 一种用于沙眼衣原体抗原检测的裂解液，由抗原提取液(A液)和样本缓冲溶液(B液)组成。 [0036] 抗原提取液中，溶剂包括甘油，添加量50g，纯化水，添加量30g；表面活性剂为吐温80，1g，聚乙烯吡咯烷酮2g；脂类提取剂选用高密度脂蛋白3g。按照表面活性剂、脂类提取剂以及溶剂的顺序添加，并在常温下搅拌混匀。 [0037] 样本缓冲溶液中，缓冲体系为三羟甲基氨基甲烷缓冲液，包括三羟甲基氨基甲烷1.2g，硼酸‑硼砂缓冲液(硼酸1g，硼砂0.25g)，pH为7；表面活性剂包括十二烷基硫酸钠10g； 金属离子盐选用氯化镁0.5g，氯化钠1g；大分子化合物包括聚乙二醇2.5g、酪蛋白纳1g和牛血清白蛋白1g；纯化水100g(100mL)。按照缓冲体系、表面活性剂、大分子化合物、金属离子盐、纯化水的顺序添加，并在常温下搅拌混匀。 [0038] 实施例3 [0039] 一种用于沙眼衣原体抗原检测的裂解液，由抗原提取液(A液)和样本缓冲溶液(B液)组成。 [0040] 抗原提取液中，溶剂选择二甲基亚砜，添加量75g；表面活性剂为聚乙烯吡咯烷酮2g，脂类提取剂选用苯酚5g。按照表面活性剂、脂类提取剂以及溶剂的顺序添加，并在常温下搅拌混匀。 [0041] 样本缓冲溶液中，缓冲体系为三羟甲基氨基甲烷缓冲液，包括三羟甲基氨基甲烷1.2g，柠檬酸缓冲液，包括柠檬酸0.96g，pH为7.5；表面活性剂包括十二烷基硫酸钠5g，吐温 80，5g；金属离子盐选用硫酸亚铁1g；大分子化合物包括聚乙烯吡咯烷酮0.5g、酪蛋白纳 1.5g和牛血清白蛋白0.5g；纯化水100g(100mL)。按照缓冲体系、大分子化合物、表面活性剂、金属离子盐、纯化水的顺序添加，并在常温下搅拌混匀。 [0042] 实施例4 [0043] 一种用于沙眼衣原体抗原检测的裂解液，由抗原提取液(A液)和样本缓冲溶液(B液)组成。 [0044] 提取液中，溶剂选择二甲基亚砜75g和甲醇5g，表面活性剂为十二烷基硫酸钠0.5g、聚乙二醇0.5g和聚乙烯吡咯烷酮2g，脂类提取剂选用甘油5g。按照表面活性剂、脂类提取剂以及溶剂的顺序添加，并在常温下搅拌混匀。 [0045] 样本缓冲溶液中，缓冲体系为三羟甲基氨基甲烷缓冲液，包括三羟甲基氨基甲烷1.2g，硼酸‑硼砂缓冲液(硼酸1g，硼砂0.25g)，pH为7；表面活性剂包括十二烷基硫酸钠5g，布里洁，5g；金属离子盐包括氯化钠1g，柠檬酸三钠0.8g；大分子化合物包括聚乙二醇2.2g，酪蛋白纳1.5g；纯化水100g(100mL)。按照缓冲体系、表面活性剂、大分子化合物、金属离子盐、纯化水的顺序添加，并在常温下搅拌混匀。 [0046] 制成的稀释液罐装于聚乙烯塑料瓶中，避光保存。 [0047] 对比例1 [0048] 一种用于沙眼衣原体抗原检测的裂解液，由抗原提取液(A液)和样本缓冲溶液(B液)组成。 [0049] 抗原提取液中，溶剂选择甘油，添加量80g；表面活性剂为吐温80和聚乙烯吡咯烷酮，添加量分别为1g和2g。按照表面活性剂以及溶剂的顺序添加，并在常温下搅拌混匀。 [0050] 样本缓冲溶液中，缓冲体系中三羟甲基氨基甲烷缓冲液包括三羟甲基氨基甲烷1.2g，柠檬酸缓冲液，包括柠檬酸0.96g，pH为7.5；表面活性剂包括十二烷基硫酸钠：5g，曲拉通‑100：5g；金属离子盐选用氯化钠1.5g；大分子化合物包括聚乙二醇2.2g、酪蛋白纳 1.5g和牛血清白蛋白0.5g；纯化水100g(100mL)。按照缓冲液、表面活性剂、大分子化合物、金属离子盐、纯化水的顺序添加，并在常温下搅拌混匀。 [0051] 对比例2 [0052] 一种用于沙眼衣原体抗原检测的裂解液，由抗原提取液(A液)和样本缓冲溶液(B液)组成。 [0053] 抗原提取液中，溶剂选择甘油，添加量80g；表面活性剂为吐温80和聚乙烯吡咯烷酮，添加量分别为1g和2g；脂类提取剂选用乙醚，添加量5g。按照表面活性剂、脂类提取剂以及溶剂的顺序添加，并在常温下搅拌混匀。 [0054] 样本缓冲溶液中，缓冲体系中三羟甲基氨基甲烷缓冲液包括三羟甲基氨基甲烷1.2g，柠檬酸缓冲液，包括柠檬酸0.96g，pH为7.5；表面活性剂包括十二烷基硫酸钠：5g，曲拉通‑100：5g；金属离子盐选用氯化钠1.5g；大分子化合物包括聚乙二醇2.2g、酪蛋白纳 1.5g和牛血清白蛋白0.5g；纯化水100g(100mL)。按照缓冲液、表面活性剂、大分子化合物、金属离子盐、纯化水的顺序添加，并在常温下搅拌混匀。 [0055] 对比例3 [0056] 与实施例1相同，不同之处在于，抗原提取液中，溶剂选择甘油，添加量50g；表面活性剂为吐温80和聚乙烯吡咯烷酮，添加量分别为10g和20g，脂类提取剂选用胆固醇，添加量5g。按照表面活性剂、脂类提取剂以及溶剂的顺序添加，并在常温下搅拌混匀。 [0057] 对比例4 [0058] 酸碱裂解中和法中，抗原提取液100ml中，溶剂选择为水，碱性物质为氢氧化钠，添加量为0.8g；表面活性剂为曲拉通100，添加量为2g。按照碱性物质、表面活性剂的顺序添加，并在常温下搅拌混匀。 [0059] 酸性中和液100ml中，溶剂为0.2M稀盐酸溶液。 [0060] 检测方法与检测结果： [0061] 抗原抗体检测(胶体金免疫层析法) [0062] 检测步骤： [0063] 1.获取待检测样本(以无菌拭子取子宫颈或尿道分泌物标本) [0064] 宫颈拭子：将宫颈拭子插入子宫颈至末端完全进入，在宫颈内壁转动拭子15～20秒后取出； [0065] 尿道拭子：将尿道拭子插入男性尿道2～4cm，旋转尿道拭子3～5秒后取出。 [0066] 2.裂解获取沙眼衣原体抗原： [0068] 在裂解管中滴入250μl样本缓冲溶液(B液)。颠倒混匀后，于平放的测试卡测试孔中递加3滴样本溶液。计时15分钟，15分钟后读取结果。 [0069] 裂解提取抗原的效果： [0070] 裂解效果通过胶体金免疫层析法进行检验。 [0071] 使用实施例1‑4的提取液进行抗原提取可见到明显测试条带，而对比例1(没有添加脂类提取剂)仅可见微弱条带或无法目视的条带，提取效果不良。 [0072] 使用实施例1‑4的特定脂类提取剂可见到明显测试条带，使用其余组分的提取剂(对比例2的提取液)可导致胶体金试纸条无法正常运行，导致测试的失败。 [0073] 使用正确组分比例的提取液可见明显测试条带，使用比例不足或超出(对比例3的提取液)，则无法获得有效的结果。 [0074] 使用实施例1‑4的抗原提取液提取相同样本的样本十分钟后，添加样本稀释液混匀后测试，可见明显条带。而对比例4在超过2分钟后，由于长时间在碱性物质中，导致了提取的LPS分子断裂，无法获得明显的条带。因此可见对裂解时间的控制难度降低，减少了测试中因无法控制时间而导致测试结果假阴性的可能。 [0075] 与对比例4相比较，使用相同的阳性样本，抗原的检测活性更强，反映在检测结果上检测线强度约提升150％，灵敏度提高2～3倍。 [0076] 抗原在提取液中的稳定性更好，可保持30min后仍有检测活性。 [0077] 在非极性的抗原提取液中，提升了测试的特异性，减少了测试结果假阳性的可能。 [0078] 最后应说明的是：以上各实施例仅用以说明本发明的技术方案，而非对其限制；尽管参照前述各实施例对本发明进行了详细的说明，本领域的普通技术人员应当理解：其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改，或者对其中部分或者全部技术特征进行等同替换；而这些修改或者替换，并不使相应技术方案的本质脱离本发明各实施例技术方案的范围。 |
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