一种小鼠股动脉和/或股静脉血管插管模型的操作方法 |
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| 申请号 | CN201510294682.6 | 申请日 | 2015-06-02 | 公开(公告)号 | CN104887342A | 公开(公告)日 | 2015-09-09 |
| 申请人 | 宁波大学; | 发明人 | 刘禹; 赵进顺; 邹宝波; 周琪; 谷元亮; | ||||
| 摘要 | 本 发明 的一种小鼠股动脉和/或股静脉血管 插管 模型的操作方法，用细 铜 管弯曲成J型制作成软管模具，软管模具分为垂直部和弯曲部，弯曲部的外侧设置有口径大于J型软管外径的缺口，将聚乙烯 导管 浸于75-85℃的热芝麻油中通过拉伸使管径变细，截取合适长度后插入软管模具中，浸于80℃ 水 中后再放于 冰 块 中冷却，制得J型软管；将J型软管从小鼠模型的颈部引到小鼠模型的腹股沟处，并用细线固定，最后将已经制作好的双股细 铁 丝缝合固定在小鼠模型的颈部上，再用 胶带 将J型软管与细铁丝固定在一起。本发明操作方法应用于相适配的小鼠模型上，能够提高操作者对小鼠股动脉和/或股静脉血管插管操作的熟练程度。 | ||||||
| 权利要求 | 1.一种小鼠股动脉和/或股静脉血管插管模型的操作方法，其特征是：包括以下步骤： |
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| 说明书全文 | 一种小鼠股动脉和/或股静脉血管插管模型的操作方法技术领域[0001] 本发明涉及动物血管插管模型，尤其是指一种小鼠股动脉和/或股静脉血管插管模型的操作方法。 背景技术[0002] 血管插管模型是为了研究动物生理、病理和药理等建立的血管导出体外模型，可在体外动态连续观察和研究机体内各项生理、病理指标的变化，以掌握药物、毒物、营养物等在体内的代谢、生理和病理作用机理，是一种经济有效的实验研究技术。 [0003] 目前血管插管模型主要是以猪、犬和大鼠等大型动物作为血管插管模型的动物，导管也为直型硬管或软管，直型硬管或软管插入的血管如颈总动、静脉，股动、静脉，尾动、静脉等，如包伦等在“大鼠股动脉、静脉插管手术方法的建立及应用”（医药卫生论坛，2005，18：235-236），则公开了以大鼠股动脉、静脉作为插管对象，直型软管一端插入股动脉或股静脉并缝合、固定，另一端连接有阀门，可以通过阀门与注射器、注射泵、多向给药系统、电子信号系统等连接，进行药物、毒物、营养物等在体内的代谢、生理和病理作用机理研究，以及实验动物的生理研究等。但目前的血管插管模型多以大型动物为实验动物，来源少，成本高，且由于大型动物运动剧烈，只能借助于麻醉在动物未完全清醒状态下才可进行间隔式研究。因此目前已建立的该类大动物血管插管模型无法在动物完全清醒和自由活动的情况下进行连续动态观察、研究，应用该类模型得到的实验结果参数波幅较大，不能反应动物正常活动状态下的生理病理变化。 发明内容[0004] 本发明所要解决的技术问题是针对上述现有技术现状，而提供一种小鼠股动脉和/或股静脉血管插管模型的操作方法，操作方法简单，其应用在小鼠模型上的操作方法，具有能有效地提升使用者的熟练度的作用。 [0005] 本发明解决上述技术问题所采用的技术方案为：一种小鼠股动脉和/或股静脉血管插管模型的操作方法，包括以下步骤： 步骤一、软管模具制作：将细铜管弯曲成J型，得到软管模具，所述的软管模具分为垂直部和弯曲部，所述的弯曲部的外侧设置有口径大于J型软管外径的缺口； 步骤二、J型软管制作：双手提起聚乙烯导管，并将两手之间的聚乙烯导管浸于 75-85℃的热芝麻油中，浸后立即提出聚乙烯导管，并在加热处的两端以水平方向左右均匀拉伸至聚乙烯导管的中部管腔内径0.10-0.15mm；自然冷却后，在显微镜下根据J型软管长度进行切割，得到聚乙烯导管制作管；将聚乙烯导管制作管的头端插入所述软管模具的垂直部，当其从软管模具的缺口穿出时，边拉聚乙烯导管制作管，边将聚乙烯导管制作管的头端插入弯曲部内至该聚乙烯导管制作管的头端从弯曲部的端部伸出，然后将插有聚乙烯导管的软管模具的弯曲部浸于80℃水中，取出后再放于冰块中冷却，然后从插有聚乙烯导管的软管模具中抽出聚乙烯导管，得到J型软管； 步骤三、J型软管安装：将小鼠模型俯卧于操作台上，将J型软管从小鼠模型的颈部引到小鼠模型的腹股沟处，J型软管的直行段与注射器连接，用注射器排出J型软管中的空气；用牵拉器提起近心端股动脉模型和/或股静脉模型，用眼科剪在近心端与远心端结扎处的股动脉模型和/或股静脉模型的管壁上剪一切口，将J型软管的弯曲段的头端从切口插入股动脉模型和/或股静脉模型内，并用细线固定； 步骤四、J型软管固定：将已经制作好的双股细铁丝缝合固定在小鼠模型的颈部上，再用胶带将J型软管与细铁丝固定在一起。 [0006] 为优化上述技术方案，采取的措施还包括：上述的步骤二中的J型软管由直行段和弯曲段组成。 [0007] 上述的步骤二中两手之间的聚乙烯导管长度为4.5cm至5.5cm。 [0008] 上述的聚乙烯导管制作管的头端从弯曲部的缺口处伸出的长度为0.4cm至0.6cm。 [0009] 上述的J型软管由直行段和弯曲段组成，将该J型软管的弯曲段的头端剪成30°至45°的斜切口。 [0010] 上述的步骤二中将插有聚乙烯导管的软管模具的弯曲部浸于80℃水中的时间为5秒至8秒。 [0011] 上述的步骤二中将插有聚乙烯导管的软管模具的弯曲部放于冰块中冷却的时间为3分钟至5分钟。 [0012] 上述的步骤三中将J型软管从小鼠模型的颈部引到小鼠模型的腹股沟处时使用18号针头。 [0013] 与现有技术相比，本发明的一种小鼠股动脉和/或股静脉血管插管模型的操作方法，其在相匹配的小鼠模型上进行操作，能让本方法的使用者在活体试验之前就能获得足够的操作熟练度，提高小鼠股动脉和/或股静脉血管插管手术成功的几率。 [0014] 对市售的管腔内径较大的聚乙烯导管浸入热芝麻油后立即拉伸，得到管腔口径大小较均匀且管径较细的聚乙烯导管。 [0015] 铜管弯曲成J型，并在弯曲部的外侧设置缺口，便于聚乙烯导管穿入软管模具内，使操作更加方便。聚乙烯导管插入软管模具内后，再将其浸于80℃水后再放入冰块中冷却，抽出聚乙烯导管，得到J型软管，定型快速、方便。通过软管模具制作的J型软管，符合生理弯曲，J型软管不易堵塞。附图说明 [0016] 图1为本发明的软管模具的结构示意图；图2为本发明的软管模具与J型软管相配合示意图。 具体实施方式[0017] 以下结合附图实施例对本发明作进一步详细描述。 [0018] 如图1至图2所示为本发明的结构示意图，其中的附图标记为：软管模具1、垂直部11、弯曲部12、缺口13、J型软管2、直行段21、弯曲段22、斜切口23。 [0019] 在小鼠股动脉和/或股静脉血管插管，操作难度较大，应在活体小鼠操作前在小鼠模型上进行多次练习操作，以达到提高操作熟练度的目的。 [0020] 一种小鼠股动脉和/或股静脉血管插管模型的操作方法，包括以下步骤：步骤一、软管模具1制作：将细铜管弯曲成J型，得到软管模具1，所述的软管模具1分为垂直部11和弯曲部12，所述的弯曲部12的外侧设置有口径大于J型软管2外径的缺口 13； 步骤二、J型软管2制作：双手提起聚乙烯导管，并将两手之间的聚乙烯导管浸于 75-85℃的热芝麻油中，浸后立即提出聚乙烯导管，并在加热处的两端以水平方向左右均匀拉伸至聚乙烯导管的中部管腔内径0.10-0.15mm；自然冷却后，在显微镜下根据J型软管2长度进行切割，得到聚乙烯导管制作管；将聚乙烯导管制作管的头端插入所述软管模具1的垂直部11，当其从软管模具1的缺口13穿出时，边拉聚乙烯导管制作管，边将聚乙烯导管制作管的头端插入弯曲部12内至该聚乙烯导管制作管的头端从弯曲部12的端部伸出，然后将插有聚乙烯导管的软管模具1的弯曲部12浸于80℃水中，取出后再放于冰块中冷却，然后从插有聚乙烯导管的软管模具1中抽出聚乙烯导管，得到J型软管2； 步骤三、J型软管2安装：将小鼠模型俯卧于操作台上，将J型软管2从小鼠模型的颈部引到小鼠模型的腹股沟处，J型软管2的直行段21与注射器连接，用注射器排出J型软管2中的空气；用牵拉器提起近心端股动脉模型和/或股静脉模型，用眼科剪在近心端与远心端结扎处的股动脉模型和/或股静脉模型的管壁上剪一切口，将J型软管2的弯曲段22的头端从切口插入股动脉模型和/或股静脉模型内，并用细线固定； 步骤四、J型软管2固定：将已经制作好的双股细铁丝缝合固定在小鼠模型的颈部上，再用胶带将J型软管2与细铁丝固定在一起。 [0021] 实施例中，步骤二中的J型软管2由直行段21和弯曲段22组成。 [0022] 实施例中，步骤二中两手之间的聚乙烯导管长度为4.5cm至5.5cm。 [0023] 实施例中，聚乙烯导管制作管的头端从弯曲部12的缺口13处伸出的长度为0.4cm至0.6cm。 [0024] 实施例中，J型软管2由直行段21和弯曲段22组成，将该J型软管2的弯曲段22的头端剪成30°至45°的斜切口23。 [0025] 实施例中，步骤二中将插有聚乙烯导管的软管模具1的弯曲部12浸于80℃水中的时间为5秒至8秒。 [0026] 实施例中，步骤二中将插有聚乙烯导管的软管模具1的弯曲部12放于冰块中冷却的时间为3分钟至5分钟。 [0027] 所述的步骤三中将J型软管2从小鼠模型的颈部引到小鼠模型的腹股沟处时使用18号针头。 [0028] 在活体小鼠上作实验时，方法又有所不同，具体方法包括以下步骤：步骤一、软管模具1制作：将细铜管弯曲成J型，得到软管模具1，所述的软管模具1分为垂直部11和弯曲部12，所述的弯曲部12的外侧设置有口径大于J型软管2外径的缺口 13； 步骤二、J型软管2制作：双手提起聚乙烯导管，并将两手之间的长度4.5cm至5.5cm的聚乙烯导管浸于75-85℃的热芝麻油中，浸后立即提出聚乙烯导管，并在加热处的两端以水平方向左右均匀拉伸至聚乙烯导管的中部管腔内径0.10-0.15mm；自然冷却后，在显微镜下根据J型软管2长度进行切割，得到聚乙烯导管制作管；将聚乙烯导管制作管的头端插入所述软管模具1的垂直部11，当其从软管模具1的缺口13穿出时，边拉聚乙烯导管制作管，边将聚乙烯导管制作管的头端插入弯曲部12内至该聚乙烯导管制作管的头端从弯曲部12的端部伸出，然后将插有聚乙烯导管的软管模具1的弯曲部12浸于80℃水中5秒至8秒，取出后再放于冰块中冷却3分钟至5分钟，然后从插有聚乙烯导管的软管模具1中抽出聚乙烯导管，得到J型软管2；J型软管2由直行段21和弯曲段22组成，将该J型软管2的弯曲段22的头端剪成30°至45°的斜切口23； 步骤三、颈部手术：先用重量百分浓度为1.5-5%的异氟烷对小鼠进行吸入性麻醉，将小鼠俯卧在手术恒温台上，用肥皂水涂搽颈部背面的局部毛发，再用剃毛刀剪去该局部毛发进行备皮，医用酒精消毒皮肤，用手术刀做纵向切口并分离皮下组织； 步骤四、腹股沟手术：将小鼠翻转至侧仰位，用肥皂水涂搽左或右侧腹股沟的局部毛发，再用剃毛刀剪去该局部毛发进行备皮，医用酒精消毒皮肤，用手术刀做纵向切口并分离皮下组织，在显微镜下小心分离出股动脉和/或股静脉，在分离出的股动脉和/或股静脉中进行远心端结扎； 步骤五、J型软管2安装：将J型软管2用18号针头从小鼠的颈部引到小鼠的腹股沟处，J型软管2的直行段21与1ml装有20U的肝素的注射器连接，用注射器排出J型软管 2中的空气；用牵拉器提起近心端股动脉模型和/或股静脉模型，用眼科剪在近心端与远心端结扎处的股动脉模型和/或股静脉模型的管壁上剪一切口，将J型软管2的弯曲段22的头端从切口插入股动脉模型和/或股静脉模型内，并用细线固定；放下牵拉器，在检查J型软管2中血液通畅的情况下，剪去多余的细线，再用胶水固定手术部位，最后在检查手术部位无渗血后，缝合腹股沟的皮肤切口； 步骤六、J型软管2固定：将已经制作好的双股细铁丝缝合固定在小鼠颈部的肌肉上，缝合颈部皮肤，再用胶带将J型软管2与细铁丝固定在一起。然后将小鼠移到饲养笼中，将细铁丝固定在旋转阀门上，再用血管钳夹住J型软管2的直行段21，去除与之连接的注射器，将直行段21与阀门连接。移去血管钳，用输液泵给予少量的20u的肝素，观察J型软管 2软管内液体的流动情况，最后以12-15µl/h的速度持续给予20u的肝素，以保持动脉导管不堵塞。这样就完成了股动脉和/或股静脉的血管插管。 [0029] 上述方法以小鼠为实验动物，来源广，成本低，达到在动物完全清醒和自由活动状态下进行连续动态观察、研究小鼠的生理、病理和药理变化，研究参数波幅小，研究结果较佳，可提供动物正常活动状态下的生理病理变化情况。 [0030] 上述方法进行的插管，J型软管2包埋在小鼠皮下，从腹股沟至颈背部引出，并在小鼠腹股沟和颈部有两处固定，加上小鼠运动幅度较小，这样制得的血管插管在小鼠清醒运动状态下，该血管插管模型中的软导管不会脱落。因此可在小鼠清醒、自由活动与进食的状态下，通过静脉插管给予研究因素，通过动脉插管采集血样检测各种因素的动态变化，该模型在生理、病理、器官移植、药物代谢及毒理学等研究领域中用途广泛。 [0031] 本发明的最佳实施例已阐明，由本领域普通技术人员做出的各种变化或改型都不会脱离本发明的范围。 |
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